WO1998013676A1 - Method and instrument for polarization measurement - Google Patents
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Definitions
- the present invention relates to a polarization measuring apparatus and method for measuring the polarization of fluorescence or Raman scattered light generated by irradiating a sample with light.
- a fluorescent probe bound to the sample exists. That is, when a sample containing a fluorescent probe is irradiated with linearly polarized pulse excitation light, fluorescence is generated from the fluorescent probe.
- the polarization state of the fluorescent light is almost linearly polarized at the beginning of the excitation light irradiation, but if the fluorescent probe rotates irregularly due to Brownian motion, the molecular axis of the excited fluorescent probe is disturbed, and as a result, With the passage of the light, the polarization of the fluorescent light is canceled, and finally the fluorescent light enters the non-polarized state.
- the speed of this depolarization differs between the case where the fluorescent probe is bound to the target and the case where it is free, so the difference in the speed of depolarization is used to make the fluorescent probe bound to the target in the evening. Can be known.
- a two-dimensional image of the degree of depolarization of the fluorescence can be measured under a microscope, the position where the fluorescent probe bound to the target exists can be specified. It is also expected to contribute to elucidation of various functions in cells, for example, because it can analyze the behavior of targets in a sample. Similarly, measurement of the two-dimensional polarization image of Raman scattered light under a microscope is expected to provide useful information about the sample.
- the technique described in D. Axelrod's paper measures the orientation of fluorescent dyes introduced into biological membranes by measuring the state of polarization of fluorescence generated by irradiation with stationary light (excitation light of linearly polarized light) under a microscope. And to examine motility.
- the photodetector used here is a photomultiplier tube, and a two-dimensional fluorescence polarization image is obtained by scanning a stop on the fluorescence image plane.
- a problem in measuring the polarization of such fluorescence is a measurement error caused by the optical system other than the polarizing element and the photodetector exhibiting different responses to different polarization directions.
- the technique described in this paper corrects the measurement error (polarization response correction) by passing all unpolarized light through the receiving optical system (optical system from the sample to the photodetector) and the photodetector. ing.
- the present invention has been made in order to solve the above-mentioned problems, and has been made in consideration of the polarization of a second light flux (fluorescence, Raman scattering light) generated from a sample irradiated with a first light flux (excitation light, irradiation light). It is an object of the present invention to provide a polarization property measuring method and apparatus capable of accurately measuring the property. Disclosure of the invention
- the polarization measuring method comprises: a first light beam irradiating the sample and a second light beam generated from the sample, which are reflected by the first light beam and the second light beam transmitted by the second light beam.
- the first light beam is irradiated to the sample as p-polarized light to the light beam branching means, and the intensity I of the p-polarized light component of the second light beam generated accordingly
- the intensity I PS of the PP and s-polarized light components is measured
- the first light beam is irradiated to the sample as s-polarized light by the light beam branching means, and the second light beam generated accordingly measuring the intensity I ss of the intensity I sp and s-polarized light component of p-polarized light component of Is determined.
- the polarization response correction factor G is obtained by the above equation, and in a fourth step, the polarization response is corrected based on the polarization response correction factor G, and the polarization of the second light flux is obtained. Sex is required.
- the sample having the same arrangement as that at the time of the measurement in the first step is irradiated with the first light beam.
- the polarization of the second light beam is measured in a system in which the substance that generates the second light beam is randomly oriented in the sample.
- a sample located at a predetermined rotation angle position with a predetermined direction as a center axis is irradiated with a first light beam
- the first light flux is applied to a sample at a rotation angle position different from the predetermined rotation angle position by 90 degrees with respect to the center axis.
- the polarization of the second light beam is measured in a system in which the substance that generates the second light beam is oriented in a certain direction in the sample.
- the polarization of the second light flux is measured.
- the first light beam is a light beam having a wavelength that can be multiphoton-absorbed by the sample
- the second light beam is a light beam generated due to the multiphoton absorption.
- the polarization of the second light beam is measured with high sensitivity and an excellent S / N ratio.
- the polarization measuring apparatus comprises a first light beam irradiating the sample and a second light beam generated from the sample, the first light beam being reflected by one of the first light beam and the second light beam being transmitted by the other.
- a light source unit that outputs a first light beam of polarized light; (2) a polarization direction rotating unit that rotates the polarization direction of the first light beam output from the light source unit; and (3) a first light beam is applied to the sample.
- Detecting means for detecting the respective intensities of the p-polarized light component and the s-polarized light component of the second light beam that has passed through the light beam branching means of the light beam generated by the light source; and (4) the polarization direction.
- the intensity of the p-polarized light component I ⁇ and the intensity of the s-polarized light component I PS of the second light beam detected from the second light beam, and the first light beam converted to s-polarized light by the polarization direction rotating means to the light beam branching means are applied to the sample. Based on the intensity I sp of the p-polarized component of the second light flux and the intensity I ss of the s-polarized component of the second light beam detected by the detecting means when irradiated.
- Correction factor calculating means for obtaining a polarization response correction factor G by the following formula: (5) polarization property calculating means for performing polarization response correction based on the polarization response correction factor G to obtain the polarization property of the second light flux; Is provided.
- this polarization measuring device the first light beam of linearly polarized light irradiated to the sample is output from the light source unit, the polarization direction is rotated by the polarization direction rotating means, and the sample is irradiated to the sample through the light beam branching means.
- the second light beam that has passed through the light beam branching unit is detected by the detection unit to detect the p-polarized component and the s-polarized component and their respective intensities. Then, the intensity I ⁇ ⁇ of the ⁇ -polarized light component of the second light beam detected by the detecting means when the first light beam, which has been turned into ⁇ -polarized light, is irradiated on the sample by the polarization azimuth rotating stage to the light beam branching means.
- the intensity of the s-polarized component I PS , and the second light beam detected by the step without being detected when the first light beam converted to s-polarized light by the polarization azimuth rotating means is irradiated to the sample Based on the intensity I SP of the p-polarized component and the intensity I ss of the s-polarized component, the polarization response correction factor G is obtained by the above equation using the correction factor calculation means, and the polarization response correction factor G is obtained by the polarization calculation means. The polarization response is corrected based on G, and the polarization of the second light flux is obtained.
- the correction element calculating means may be configured such that the correction W element calculation means is based on the intensities I p p, I ps , I sp and I ss detected by the detection means with respect to the sample in a fixed arrangement. Find the polarization response correction factor G. In this case, the polarization of the second light beam is measured in a system in which the substance that generates the second light beam is randomly oriented in the sample.
- the polarization measuring apparatus further comprises a sample rotating means for rotating the sample about a predetermined direction as a central axis
- the correction factor calculating means comprises a detecting means for the sample at a predetermined rotation angle position about the central axis.
- the intensity I PP and I PS detected by, and the intensity I SP and intensity I SP detected by the detection means for the sample set at a rotation angle position 90 ° different from the predetermined rotation angle position about the central axis by the sample rotation means.
- a polarization response correction factor G is obtained based on I ss .
- the polarization of the second light flux is measured in a system in which the substance that generates the second light flux is oriented in a certain direction in the sample.
- the polarization calculating means may be configured to determine the polarization of the second light flux.
- the light source unit outputs a light beam having a wavelength that can be multiphoton-absorbed by the sample as the first light beam, and the detection unit detects the light beam generated due to the multiphoton absorption. Detected as the second light flux. In this case, the polarization of the second light beam is measured with high sensitivity and high S / N ratio.
- the polarization measuring device includes: (1) a light source unit that outputs a first light beam for irradiating the sample; and (2) a light source unit that irradiates the first light beam to the sample.
- a first light beam splitting means that receives a second light beam, reflects one of the first light beam and the second light beam, and transmits the other light beam; (3) spectral characteristics of the first light beam splitting means Equal
- a second light beam output from the first light beam splitting means having an incident surface different from the incident surface of the first light beam splitting means for the second light beam by 90 degrees, and having a second light beam input from the first light beam splitting means.
- Polarization operation means for measuring the polarization of the second light flux based on the respective intensities of the p-polarized light component and the s-polarized light component of the second light flux.
- the first light beam irradiated on the sample is output from the light source unit, and is irradiated on the sample via the first light beam branching means.
- the second light beam generated by irradiating the sample with the first light beam passes through the first and second light beam branching means sequentially, and the respective intensities of the P polarization component and the s polarization component are detected by the detection means. And the polarization property is measured based on these intensities.
- the first and second light beam splitting means have the same spectral characteristics as each other and have incident surfaces different from each other by 90 degrees with respect to the second light beam. The spectral characteristics of each means are cancelled, and the polarization measurement error caused by these is eliminated.
- Fig. 1 is an explanatory diagram of how to find the G factor in zero-dimensional (point) polarization measurement.
- FIG. 2 is an explanatory diagram of how to determine the G factor in the method and the apparatus for measuring polarization according to the present invention.
- FIG. 3 is an explanatory diagram of how to determine the G factor when the molecular axes of the fluorescent probes in the sample are oriented and distributed in the method and the apparatus for measuring polarization according to the present invention.
- FIG. 4 is a graph showing decay curves of fluorescence polarization component intensities parallel and perpendicular to excitation light from a fluorescent molecule having a rotational correlation time of ⁇ .
- FIG. 5 is a graph showing decay curves of fluorescence polarization component intensity parallel and perpendicular to excitation light from a fluorescent molecule having a rotational correlation time of 6> 2 .
- FIG. 6 is a graph showing an attenuation curve of the polarization P !.
- Figure 7 is a graph showing the decay curve of the polarization P 2.
- FIG. 8 is a graph showing an attenuation curve of the polarization property Pa.
- Figure 9 is a graph showing the decay curve of polarization P 4.
- FIG. 10 is a configuration diagram of the polarization measuring device according to the present invention.
- Figure 11 is a graph showing the decay curve (bold line) when the intensity of the fluorescence generated from the sample was measured without passing through a polarizing element, and the response function of the device under a microscope (thin line).
- FIG. 12 is a graph showing the respective decay curves of the p-polarized light component (thick line) and the s-polarized light component (fine line) of the fluorescence generated when excited by the p-polarized pulsed excitation light. 13, anisotropic obtained by performing the polarization response correction by the factor G ratio P 2 of the attenuation curve (the thick line), the attenuation curve of the anisotropy ratio P 2 obtained without performing the polarization response correction (Thin line).
- Figure 14 performs the attenuation curve of the anisotropy ratio P 2 obtained by performing the polarization response correction in polarization measurement apparatus according to the present invention (thick line), the polarization response correction in polarization measuring device of a conventional configuration graph der showing the obtained anisotropic ratio P 2 of the decay curve (thin line) Ru.
- Figure 15 is a graph showing the decay curves of the P-polarized component (thick line) and the s-polarized component (thin line) of the fluorescence generated when the HDAF solution was excited with p-polarized pulsed excitation light.
- FIG. 16 is a graph showing the respective decay curves of the p-polarized component (thick line) and the s-polarized component (fine line) of the fluorescence generated when the HDAF-stained NG cells were excited by the p-polarized pulsed excitation light.
- Figure 17 shows a HDAF solution (thin line) and HDAF staining NG cells (bold line) the attenuation curve of the anisotropic ratio P 2 obtained by performing the polarization response complement IE by factor G for the fluorescence generated when exciting the It is a graph.
- Figure 18 is a schematic diagram of a sample in which a free fluorescent probe (HDAF solution) and a fluorescent probe bound to the target (HDAF-stained NG cells) coexist.
- Figure 1 9 is a table showing the values of the anisotropy ratio P 2 of the free area and the bound region and its contrast.
- Figures 2 ⁇ A and 20B are each a block diagram of the fluorescence detection optical system of the polarization measuring device that is also suitably used in the case of multiphoton excitation, and is perpendicular to the optical axis of the fluorescence detection optical system. It is a diagram viewed from each of two directions perpendicular to each other.
- Figure 21 is a graph showing the excitation probabilities for one-photon excitation (thin line) and two-photon excitation (thick line).
- FIG. 22 is a diagram illustrating the relationship between the polarization direction of the excitation light and the direction of the molecular axis of the fluorescent probe.
- Figure 23 shows the values of the anisotropy ratio P 2 of the fluorescence in the case of one-photon excitation (thin line) and the case of two-photon excitation (thick line) for steady-state excitation with respect to ⁇ / ⁇ . It is the graph which was set.
- FIG. 25 is a table summarizing the measured values of the fluorescence anisotropy ratio P 2 and the standard deviation with respect to the glycerol ratio in each of the one-photon excitation and the two-light f excitation.
- FIG. 28 shows the values of the ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ 2 increments in the fluorescence anisotropy ratio P 2 for the one-photon excitation (thin line) and the two-photon excitation (thick line) for each 10% increase in the glycerol ratio.
- Figure 29 shows the value obtained by dividing the anisotropy ratio of fluorescence P 2 by the standard deviation (P 2 / cr) with respect to the glycerol ratio for the case of one-photon excitation and the case of two-photon excitation, respectively, and 9 is a table summarizing values ( ⁇ 2 / ⁇ ) obtained by dividing an increment ⁇ 2 of anisotropy ratio P 2 of fluorescence by a standard deviation.
- Figure 30 is 1 when photon excitation (thin line) and 2 cases of photon excitation for, respectively it (thick line), relative to glycerol ratio, split Tsutachi ([rho anisotropy ratio of fluorescence [rho 2 with standard deviation beauty 2 / ⁇ ) is plotted.
- Figure 31 for, respectively it when the case (thin line) and two-photon excitation of the one-photon excitation (bold line), relative to glycerol ratio, divided by the anisotropy ratio [rho 2 increment [Delta] [rho] 2 fluorescence with a standard deviation beauty 6 is a graph in which the values ( ⁇ 2 / ⁇ ) are plotted.
- polarization response correction in general will be described.
- One of the major causes of measurement errors in polarization measurement is the light receiving optical system (optical system from the sample to the photodetector) and the polarization characteristics of the photodetector.
- the receiving optical element and the photodetector other than the polarizing element should respond equally to different polarizations, but actually respond differently depending on the polarization direction. Therefore, to determine the polarization of true fluorescence, correct the polarization response. Need to be
- This polarization response correction amount is usually called a G factor (polarization response correction factor), and is defined as follows in a zero-dimensional (point) polarization measurement.
- Fig. 1 is an explanatory diagram of how to determine the G factor in 0-dimensional (point) polarization measurement.
- Linearly polarized excitation light polarized in the p-direction is incident on the sample and generates fluorescence. From the direction orthogonal to this incident direction, the polarizer is used to determine the linear polarization components of the p-direction (direction parallel to the p-direction of the excitation light) and s direction (direction perpendicular to the p-direction of the excitation light).
- the fluorescence is measured, and the respective intensities are defined as IPP and IPS .
- the degree of polarization (generally expressed as p) is expressed as PP-IP
- the actually measured fluorescence intensity is obtained through the light receiving optical system and the photodetector, it reflects those anisotropy. That is, assuming that the response of the receiving optical system and the photodetector to P-polarized light is T P, and the response to s-polarized light is T s , the actual measured fluorescence intensities I P p and I PS , respectively, are the true fluorescence between each intensity I PP you and I PS,
- This G factor is obtained as follows.
- the sample is irradiated with s-polarized excitation light, and the fluorescence of the linearly-polarized components of the P-polarized light and s-polarized light of the resulting fluorescence is measured, and their intensities are defined as I Sf , 'and I ss '. These are between the true fluorescence intensities I SP and I ss, respectively, as in equation (3),
- the G factor represented by the equation (6) is calculated using the measured fluorescence intensities I SP ′ and I ss ,
- FIG. 2 is an explanatory diagram of how to determine the G factor in the method and the apparatus for measuring polarization according to the present invention.
- the factor G is determined in two ways: the case where the molecular axes of the fluorescent probes in the sample are not oriented and are completely random, and the case where the molecular axes of the fluorescent probes in the sample are oriented and distributed. Are explained separately.
- Light beam splitting means is a dichroic p-polarized component of the fluorescence generated by the sample irradiation of p-polarized light of the excitation light to worship mirrors and s-polarized light component each intensity (true value) and II PS, is detected by a photodetector
- the measured values be I ⁇ ⁇ 'and I ps'.
- the intensities (true values) of the P-polarized component and the s-polarized component of the fluorescence generated by irradiating the sample with the s-polarized excitation light to the dichroic mirror are defined as I SP and I ss, and the actual measurement is detected by the photodetector.
- the values be I SP ,, I ss '. At this time, the question of these quantities, the response T P of the receiving optical system and the photodetector to P-polarized light, and the response ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ s to s-polarized light
- the anisotropy ratio P 2 (P) obtained for p-polarized excitation light irradiation and the s-polarized excitation light irradiation Is equal to the anisotropy ratio P 2 (s) obtained for
- the G factor is the p-polarized light intensity of the fluorescence generated by irradiating the sample with p-polarized and s-polarized excitation light. And s-polarized light intensity are measured, and based on these intensities, (determined by the equation. Then, by correcting the polarization response by the factors thus obtained, the degree of polarization P of fluorescence and the anisotropy ratio it can be determined P 2 with high accuracy.
- the molecular axis of the fluorescent probe in the aforementioned sample is not oriented and Applying the method of calculating the G factor when the light is randomly distributed, even if the receiving optical element or photodetector except the polarizing element does not have anisotropy in polarization, it is as if it were anisotropic. Fluorescence will be measured as if Therefore, when the molecular axis of the fluorescent probe in the sample is oriented and distributed, the assumption of Equation (17) does not hold, and the anisotropy ratio P obtained for irradiation with p-polarized excitation light is not satisfied. 2 (P) is generally different from the anisotropy ratio P 2 (s) obtained with irradiation of s-polarized excitation light,
- the intensity of the P-polarized component and the s-polarized component of the fluorescence generated from the sample by irradiation of the p-polarized excitation light are defined as I PP and I PS, and the fluorescence generated from the sample by the irradiation of the s-polarized excitation light is If the intensities of the P-polarized component and the s-polarized component are I SP and I ss , respectively, if the molecular axes of the fluorescent probes in the sample are completely random,
- the G factor is obtained as follows. That is, the intensity (true value) of each of the P-polarized component and the s-polarized component of the fluorescence generated from the sample by the irradiation of the p-polarized excitation light is defined as I PP (0) and I PS (0). Let ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ (0) 'and I PS (0) be the measured values detected by. Also, as shown in Fig.
- the fluorescence generated from the sample by the irradiation of the s-polarized excitation light Let the intensities (true values) of the P-polarized component and the s-polarized component of I be ( SP ) (90) and I ss (90), and the measured values detected by the photodetector are I SP (90) 'and I ss ( 90) 'to c at this time, between the these quantities, and response T P with respect to the light receiving optical system and a photodetector p-polarized light, and response T s for the s-polarized light,
- equations (24) and (25) can be expressed as
- the molecular axis of the fluorescent probe in the sample is oriented and distributed, the anisotropy obtained by s-polarized excitation light irradiation after rotating the sample by 90 degrees around the excitation light irradiation direction as the central axis
- the sex ratio P 2 (s, 90) is equal to the anisotropy ratio P "p, 0) obtained by irradiation with p-polarized excitation light before rotating the sample.
- the G factor is the rotation angle of the sample with the excitation light irradiation direction as the central axis.
- the sample irradiation it is assumed that they differ from each other by 90 degrees.
- the p-polarized light intensity and the s-polarized light intensity of the fluorescence generated by the sample irradiation of the excitation light of each of the p-polarized light and the s-polarized light are measured, and based on these intensities (30 ). Then, by performing the polarization response correction by factor G obtained in this way, it is possible to determine the degree of polarization and anisotropy ratio P 2 with high accuracy.
- S representing the polarization property is represented by:
- P, (p) -Defines the polarization expressed by -G to (32).
- the polarities P 3 and P 4 are amounts that show relatively good agreement with the degree of polarization and the anisotropy ratio P 2 . That is, consider two types of fluorescent molecules with the same fluorescence lifetime r and different rotation correlation times 0 (the amount characterizing the speed of the rotating Brownian motion).
- Equations (31) and (32) are the defining equations for the degree of polarization P and the anisotropy ratio P 2
- the polarization P 3 and P 4 can be obtained with a smaller amount of calculation than the calculation for obtaining the degree of polarization and the anisotropy ratio P 2 . Therefore, the calculation of the polarization properties P 3 and P 4 by the calculation using the equations (31) and (32) is performed when the change in the polarization property is measured in real time or when the polarization property is calculated for a large amount of two-dimensional data.
- FIG. 10 is a configuration diagram of the polarization measuring device according to the present invention.
- the pulse excitation light source 1 outputs pulse excitation light (first luminous flux) for exciting the fluorescent probe in the sample 7.
- the pulsed excitation light output from the pulsed excitation light source 1 is converted into linearly polarized light by the polarizer 2, and then enters the half-wave plate (polarization azimuth rotation means) 3 to be a dichroic mirror (optical splitter). With respect to 5, it is rotated to either the p-polarization orientation or the s-polarization orientation. Then, the sample 7 is irradiated with the p-polarized or s-polarized pulsed excitation light by the objective lens 6.
- the pulsed excitation light is made into a predetermined light beam diameter and shape by the excitation light introducing optical system 4, reflected by the dike aperture mirror 5, condensed by the objective lens 6, and transferred to the sample stage (sample rotating means) 8.
- the observation area on the placed sample 7 is irradiated.
- the sample stage 8 can rotate the sample 7 about the optical axis of the pulsed excitation light incident on the sample 7.
- fluorescence (second light beam) is generated from the fluorescent probe in the sample 7.
- the intensity distribution of the fluorescence is determined by the The light that exits in the same direction is measured separately for p-polarized light and s-polarized light. That is, of the fluorescence emitted from the sample 7, the light beam incident on the objective lens 6 passes through the objective lens 6, passes through the dichroic mirror 15, passes through the bandpass filter 9, and passes through the polarization beam splitter 10.
- the light is split into a p-polarized component and an s-polarized component, and the fluorescent polarized images of the p-polarized component and the s-polarized component are imaged by the imaging lenses 11 and 12 and the gated image intensifiers 13 and 1 respectively.
- An image is formed on each of the four image planes, and the intensity distribution is measured by each of the image intensifiers 13 and 14 with a gate function.
- the band-pass filter 9 transmits the fluorescence, but absorbs the scattered light of the pulse excitation light generated in the sample 7, and the polarization beam splitter 10 generates the p-polarized component of the fluorescence. Is transmitted, and the s-polarized light component is reflected.
- Each of the image intensifiers 13 and 14 with the gate function opens and closes the gate based on the gate signal output from the gate controller 15 and connects to the imaging surface when the gate is open. This is for capturing the fluorescence polarization image thus formed.
- the gate controller 15 uses the timing at which the pulsed excitation light is output from the pulsed excitation light source 1 as a reference time, and sets the image intensifiers 13 and 14 with a gate function only from time tu to time At. A gate signal is output to instruct the gate to open.
- the image intensifiers 13 and 14 with the gate function, and the p-polarized component and the s-polarized component and the fluorescence polarization image of each of them captured by the image intensifiers 13 and 14 are input to the image calculation unit 16.
- the image calculation unit 16 performs polarization response correction based on these fluorescence polarization images, and obtains a two-dimensional image of polarization ( ⁇ ,, P 2 , P 3 , P 4 ).
- a method for obtaining a two-dimensional image of the anisotropy ratio P 2 of the fluorescence subjected to the polarization response correction using the polarization measuring device Polarization degrees P i, P 2, and P 3, and their respective two-dimensional images are obtained in a similar manner.
- the two-dimensional image of the polarization response correction and the fluorescence anisotropy ratio P 2 is obtained by calculation in the image calculation unit 16. It is. Note that, in the following, the case where the molecular axes of the fluorescent probes in Sample 7 are not oriented and are completely randomly distributed, and the case where the molecular axes of the fluorescent probes in Sample 7 are oriented and distributed. Will be described separately.
- the optical axis of the half-wave plate 3 is appropriately set, and the sample 7 is irradiated with the pulse excitation light output from the pulse excitation light source 1 as p-polarized light.
- the time t according to the instruction of the gate signal from the gate controller 15.
- the optical axis of the half-wave plate 3 is appropriately set, and the sample 7 is irradiated with the pulse excitation light output from the pulse excitation light source 1 as s-polarized light.
- the p-polarized light and the s-polarized light which are respectively imaged by the image intensifiers 13 and 14 with the gate function, are respectively converted into I SP (t., ⁇ t) and I ss (t., 1 :)
- the optical axis of the half-wave plate 3 is appropriately set, and the sample 7 is irradiated with the pulse excitation light output from the pulse excitation light source 1 as p-polarized light.
- the gate signal from the gate controller 15 at time t.
- the pulse excitation light output from the pulse excitation light source 1 is similarly set by appropriately setting the optical axis of the half-wave plate 3. Irradiates the sample 7 as s-polarized light.
- the fluorescence images of the p-polarized light and the s-polarized light captured by the image intensifiers 13 and 14 with the gate function and the I SP (90, t , ⁇ t) and I ss (90, to, m t).
- the pulse excitation light source 1 is a mode-locked titanium sapphire laser light source.
- the pulse excitation light applied to the sample 7 includes the second harmonic (wavelength: 400 nm, pulse width: 200 femtoseconds) , And a repetition frequency of 100 kHz.
- the polarizer 2 is a Glan laser prism, and the half-wave plate 3 is a Fresnel rhomb half-wave plate.
- the fluorescence intensity was measured by a time-correlated photon counting method (TCPC method) using a photomultiplier tube with a built-in microchannel plate. It was measured.
- TCPC method time-correlated photon counting method
- FITC Fluorescein isothiocyanate
- the G factor was determined by equation (18)
- the anisotropy ratio P 2 of the fluorescence was determined by equation (15).
- Figure 11 is a graph showing the decay curve (bold line) when the intensity of the fluorescence generated from the sample was measured without passing through a polarizing element, and the response function of the device under a microscope (thin line).
- Fig. 12 is a graph showing the decay curves of the P-polarized component (thick line) and the s-polarized component (thin line) of the fluorescence generated from Sample 7 when excited with p-polarized pulsed excitation light.
- the decay curve of the s-polarized light component (thin line) is shown as a value obtained by multiplying the measured value by the G factor.
- Figure 1 3 is a polarization response correction and a go-obtained anisotropy ratio P 2 of the attenuation curve (thick line), polarization response correction of anisotropy ratio P 2 obtained without performing attenuation by factor G It is a graph showing a curve (thin line). In other words, the bold line indicates that the G factor was determined based on the results of the polarization measurement of the fluorescence generated from sample 7 when excited with the p-polarized and s-polarized pulsed excitation light, and that the excitation was performed with the p-polarized pulsed excitation light.
- FIG. 14 shows the decay curve (thick line) of the anisotropy ratio P 2 obtained by performing polarization response correction under a microscope (the configuration of FIG. 2) such as the polarization measuring device according to the present invention.
- they show good agreement. That is, it was confirmed that the correct anisotropy ratio P 2 can be measured by performing the polarization response correction even under a microscope such as the polarization measuring device according to the present invention.
- the pulse excitation light source 1 is a mode-locked titanium sapphire laser light source.
- the pulse excitation light irradiating the sample 7 includes the second harmonic (wavelength 465 ⁇ m, pulse width 20 Zero femtoseconds and a repetition frequency of 100 kHz were used.
- the polarizer 2 is a Glan laser prism, and the half-wave plate 3 is a Fresnel rhomb half-wave plate.
- Sample 7 was NG cells (NG108-15), the fluorescent probe was HDAF (5- (N-hexadecanoyl) aminofluorescein) that specifically binds to the cell membrane, and the staining concentration was 10 1. M and the staining time was 30 minutes.
- the fluorescence The molecular axis of the probe is not oriented in the plane perpendicular to the light receiving optical axis and is distributed at random. Therefore, the G factor was determined by equation (18), and the anisotropy ratio P 2 was determined by equation (15).
- Figure 15 shows the p-polarized component (thick line) and the s-polarized component (thin line) of the fluorescence generated when a free fluorescent probe (HDAF solution) 'was excited with p-polarized pulsed excitation light, and their decay curves. It is a graph. In this figure, the decay curve of the s-polarized light component (thin line) is shown by multiplying the measured value by the G factor.
- Figure 16 shows the p-polarized component (thick line) and s-polarized component (thin line) of the fluorescence generated when a fluorescent probe (HDAF-stained NG cells) bound to the target was excited by p-polarized pulsed excitation light. 5 is a graph showing a decay curve of FIG. Also in this figure, the decay curve of the s-polarized light component (thin line) is shown by multiplying the measured value by the G factor.
- Figure 17 is a graph showing the decay curve of the anisotropic ratio P 2 obtained by performing the polarization response correction by factor G for the fluorescence generated when exciting the HDAF solution (thin line) and HDAF staining NG cells (bold line) It is. That is, thin line, a decay curve of the anisotropy ratio P 2 when the fluorescent probe is free state, bold lines, different when a state in which fluorescence professional one blanking is bound to evening one Getting Bok it is the attenuation curve of isotropic ratio P 2.
- the free fluorescent probe binds to the target but has a lower polarization (faster depolarization) than the fluorescent probe. Therefore, by measuring the degree of depolarization, it is possible to separate the free fluorescent probe from the fluorescent probe bound in the evening.
- the gate time t of the fluorescence anisotropy ratio P 2 with a gate function Ime diyne intensifier 13 and 14 from the sample. 2 ns (time set to 0 ns when excited by the pulsed light and set to the time when the polarization of the free fluorescent probe is sufficiently eliminated), and measured for a time interval of 3 ns (time-resolved measurement). ).
- the contrast of the free area and the bound region by the time question resolved measurements is improved in comparison with the DC measurement. From the above, it can be seen that the position where the fluorescent probe bound to the target exists can be specified by measuring the two-dimensional image of the fluorescence polarization under a microscope.
- the polarization characteristic of the dichroic mirror 15 which is considered to mainly contribute to the polarization response correction factor in the polarization measuring device according to the present invention is physically (optically) offset. How to do this will be described.
- FIGS. 2OA and 20B are configuration diagrams of the detection optical system of the polarization measuring device for canceling the polarization characteristics of the dichroic mirror 5, and are perpendicular to the optical axis of the detection optical system.
- FIG. 3 is a view seen from two directions perpendicular to each other.
- the detection optical system shown in Fig. 20A and Fig. 20B corresponds to the detection optical system from the sample stage 8 to the polarization beam splitter 10 in the polarization measuring apparatus shown in Fig. 10. And the same elements are denoted by the same reference numerals.
- the configuration of the parts other than the detection optical system is the same as the corresponding configuration in the polarization measuring apparatus shown in FIG.
- the detection optical system shown in FIG. 2 OA and FIG. 20B is the same as the detection optical system of the polarization measuring device shown in FIG. 10 on the optical path between the first dichroic mirror 15 and the bandpass filter 9.
- the second dichroic mirror 17 is inserted.
- the second dichroic mirror 17 has the same characteristics as the first dichroic mirror 5, and is arranged in a direction in which the first dichroic mirror 5 is rotated 90 degrees around the optical axis. Have been.
- the p-polarized or s-polarized linearly polarized excitation light with respect to the dichroic mirror 5 enters the first dichroic mirror 5 and is reflected therefrom.
- the sample 7 on the stage 8 is irradiated.
- the fluorescence generated in the sample 7 by the irradiation of the excitation light passes through the objective lens 6, sequentially passes through the dichroic mirrors 15 and 17, and reaches the bandpass filter 9.
- the dichroic mirror 5 and 1 7 of each property is the same, etc. properly responding T P of one another for p-polarized light at each Dyke port Itsukumira one 5 and 1 7, also, dichroic mirrors 5 and 1 7, respectively
- the response T s to s-polarized light is also equal to each other.
- the responses of the dichroic mirrors 5 and 17 are equal for both the p-polarized component and the s-polarized component of the fluorescence.
- the fluorescence of p-polarized light and s-polarized light (based on dichroic mirror 5) , Mainly due to dichroic mirror 5.
- the light receiving optical system of the polarimeter having the detection optical system shown in Fig. 2 OA and Fig. 20B shows the fluorescence of p-polarized light and s-polarized light in dichroic mirrors 5 and 17 (based on dichroic mirror 15), respectively.
- the response to P-polarized light and s-polarized light in the entire receiving optical system is small. It will be cheap.
- the polarization measuring apparatus having the detection optical system shown in FIGS. 2OA and 20B, since the second dichroic mirror 17 is provided in addition to the first dichroic mirror 5, Since the polarization response characteristics of the optical system are improved and the polarization response is corrected based on the G factor, the polarization of the fluorescence can be measured with high accuracy.
- the polarization measurement method and apparatus described above can be applied to both one-photon excitation and multi-photon excitation. However, compared to the one-photon excitation, the multi-photon excitation has a more remarkable effect. Therefore, next, the case of two-photon excitation will be described in comparison with the case of one-photon excitation.
- Polarization measurement is performed by irradiating a sample with linearly polarized excitation light to selectively excite the fluorescent probe in the sample that has a molecular axis in a specific direction, and generate fluorescent light. It measures the polarization property of the fluorescent probe, and detects the speed of the rotational Brownian motion of the fluorescent probe based on the polarization property. Therefore, it is desirable that only a fluorescent probe having a molecular axis in the direction parallel to the polarization direction of the excitation light be excited. However, in practice, a fluorescent probe having a molecular axis in a direction different from the polarization direction of the excitation light is also excited with a certain probability.
- the amplitude component of the excitation light in the molecular axis direction of the fluorescent probe is proportional to cos. Therefore, in the case of one-photon excitation, the probability of excitation of the fluorescent probe (excitation probability) p 1 P is proportional to the intensity of the excitation light in the molecular axis direction of the fluorescent probe (that is, the square of the amplitude).
- p I) p. lp 'represented by cos 2 Fei --- (44).
- the excitation probability ⁇ in the case of two-photon excitation is proportional to the square of the intensity of the excitation light in the molecular axis direction of the fluorescent probe.
- p 2p (hi) p. 2p 'represented by cos 4 a ⁇ (45).
- FIG. 21 is a graph showing the excitation probability P (h) for one-photon excitation and the excitation probability p 2p (h) for two-photon excitation.
- the value of each 2p is normalized to 1.
- the excitation probability in the case of two-photon excitation sharply decreases as the absolute value of the angle becomes larger than in the case of one-photon excitation.
- the fluorescence having the molecular axis in the direction (H0) different from the polarization direction of the excitation light is compared with the excitation probability of the fluorescent probe.
- the excitation probability of the probe is smaller for two-photon excitation than for one-photon excitation. Therefore, when performing polarization measurement in a system in which the orientation of the molecular axis of the fluorescent probe is randomly oriented in the sample, the excitation light is more excited in the case of two-photon excitation than in the case of one-photon excitation.
- a fluorescent probe having a molecular axis parallel to the polarization direction is excited more selectively.
- FIG. 22 is a view for explaining the relationship between the polarization direction of the excitation light and the direction of the molecular axis of the fluorescent probe.
- An Xyz orthogonal coordinate system is set, the propagation direction of the excitation light is set to the X direction, and the polarization direction P of the excitation light is set to the z direction.
- the orientation A of the molecular axis of the fluorescent probe and the polarization direction E of the fluorescence are the same, and form an angle with the z-axis, and the projection onto the xy plane forms an angle ⁇ with the X-axis. It is also assumed that the molecular axis of the fluorescent probe is randomly oriented.
- ⁇ (H) the distribution of fluorescent probes whose molecular axis ⁇ is at an angle to the ⁇ axis among fluorescent probes excited by the excitation light irradiation.
- ⁇ (H) which is a group of fluorescent probes.
- the intensity I z of the component in the z- axis direction of the fluorescence generated from the sample, the intensity Ix of the component in the X-axis direction, and the intensity I y of the component in the y-axis direction are given by Eqs. (46a), (46b), and (46c).
- ⁇ is a proportionality constant
- the dynamic range of polarization measurement is 1.43 times wider in the case of two-photon excitation than in the case of one-photon excitation, as the value gradually decreases. The same applies to the case of the steady light excitation.
- the sensitivity of the polarization measurement in one-photon excitation and two-photon excitation is examined.
- the measurement sensitivity of the polarization property of the fluorescence generated from a fluorescent probe that is continuously excited at a constant intensity is examined.
- the fluorescence lifetime is r
- the rotational correlation time of the fluorescent probe is 0, and the maximum value of the anisotropy ratio of fluorescence (the value obtained by equation (55) or (56)) is P 2 (0).
- the anisotropy ratio of fluorescence P 2 is
- the rotation correlation time 0 is an amount characterizing the speed of the rotational Brownian motion of the fluorescent probe, and is different between the fluorescent probe bound to the sunset and the fluorescent probe in the free state.
- the rotation correlation time ⁇ is expressed as follows: V is the volume of the fluorescent probe, V is the absolute temperature of the solvent, r is the viscosity of the solvent, and k is the Boltzmann constant.
- Figure 23 shows the values of the fluorescence anisotropy ratio P '2 (Equation (60)) for the one-photon excitation (thin line) and the two-photon excitation (thick line) for steady-state excitation. This is a graph in which is plotted against 0 /.
- Figure 24 shows the slope of the anisotropy ratio P 2 (Eq. (60)) of the fluorescence in the case of one-photon excitation (thin line) and the case of two-photon excitation (thick line) in the case of steady-state excitation. It is a graph plotted.
- the value of the fluorescence anisotropy ratio P 2 is larger in the case of two-photon excitation (thick line) than in the case of one-photon excitation (thin line),
- the slope of the anisotropy ratio P 2 with respect to 0 / end is also large. Therefore, two-photon excitation is better than one-photon excitation.
- the fluorescence anisotropy ratio P 2 is more sensitive to the change of 6> / r. Differentiating the above equation (60) with respect to 6>
- the S / N ratio of the measured polarization of ffi light is examined in the case of one-photon excitation and the case of two-photon excitation, respectively.
- the S / N ratio of the two-photon excitation is 1.43 compared to the one-photon excitation. Twice as large.
- the detection limit of the rotational correlation time 0 of the fluorescent probe when the standard deviation (noise) of the measured polarization is given.
- the average anisotropy ratio for rotation correlation time value 0 is ⁇ P ((9)>)
- the average anisotropy ratio for rotation correlation time value 0 + is P ( ⁇ + ⁇ ⁇ )>.
- the polarization response correction based on the G factor is performed, so that a two-dimensional image of the polarization of the light can be measured with high accuracy under a microscope. can do.
- a fluorescent probe having a molecular axis parallel to the polarization direction of the excitation light is selectively excited.
- Polarizing ( ⁇ ⁇ P 2, P: i, P 4)
- the initial value of large dynamic range of the polarization measurement is wide, sensitivity to rotational correlation time 6) polarizing measurement is high, the polarization measurements
- the S / N ratio is large, the number of photons required to obtain the same S / N ratio may be small, and the detection limit of the rotational correlation time 0 is high, so that the effect is even better than that of one-photon excitation. To play.
- a BODIPY dye was used as a fluorescent probe, and a solution in which the BODIPY dye was dissolved in a solution containing ethanol and glycerol was used as a sample.
- Adjustment of the rotational correlation time 0 of the fluorescent probe that is, the speed of the rotational browning, is based on the viscosity of the solution. That is, the adjustment was performed by adjusting the ratio of glycerol.
- the speed of the rotating Brownian motion is inversely proportional to the viscosity 77 of the solution.
- the polarization measuring device used here was configured as shown in FIG. 10, and the polarization was measured under a microscope.
- a mode-locked titanium sapphire laser light source is used as the pulse excitation light source 1, and in the case of two-photon excitation, the laser light output from this laser light source (wavelength 920 nm, pulse width 200 femtoseconds, repetition frequency 7.6 MHz) was used as the excitation light, and in the case of one-photon excitation, the second harmonic (wavelength: 450 nm, repetition frequency: 100 kHz) was used as the excitation light.
- An objective lens 6 having a magnification of 20 was used.
- the gates of the image intensifiers 13 and 14 with the gate function were used with the gate always open.
- FIG. 25 is a table summarizing the measured values of the fluorescence anisotropy ratio P 2 and the standard deviation with respect to the glycerol ratio in the case of one-photon excitation and the case of two-photon excitation, respectively.
- the ratio of the anisotropy ratio P 2 of fluorescence in the case of two-photon excitation to that in the case of one-photon excitation is 1.15 at a glycerol ratio of 50%, 1.19 at 60%, and 70 % Was 1.41, 80% was 1.40, 90% was 1.31, and glycerol ratios of 70% and 80% were close to the theoretical value of 1.43.
- FIG. 27 for each case where and two-photon excitation of the one-photon excitation, with respect to 10% increase in glycerol proportions are diagrams table summarizing the increment [Delta] [rho] 2 of anisotropy ratio P 2 of the fluorescence.
- FIG. 28 for one-photon case of excitation case (thin line) and two-photon excitation (bold line), respectively, relative to 1 0% increase in glycerol fraction, the anisotropic ratio P 2 of the fluorescence increment [Delta] [rho] 2 5 is a graph in which values are plotted.
- Figure 29 for each case where and two-photon excitation of the one-photon excitation, with respect to glycerol ratio, a value obtained by dividing the anisotropy ratio [rho 2 fluorescence with a standard deviation Beauty ([rho 2 / beauty), and, a value obtained by dividing the anisotropy ratio [rho 2 increment [Delta] [rho] 2 fluorescence with a standard deviation beauty ( ⁇ , / ⁇ ) is a table summarizing.
- Figure 30 shows the values obtained by dividing the anisotropy ratio of fluorescence ⁇ 2 by the standard deviation with respect to the glycerol ratio for each of the one-photon excitation (thin line) and the two-photon excitation (thick line) ( ⁇ 2 / This is a graph that plots) and).
- FIG. 3 1, 1 case of photon excitation (thin line) and 2 when photon excitation (bold line) with the respective, relative to glycerol ratio, the anisotropy ratio of fluorescence [rho 2 increment [Delta] [rho] 2 standard deviations beauty It is a graph that plots the value ( ⁇ 2 / ( ⁇ ) divided by.
- the polarization measuring device having the configuration shown in FIG. 10 can be used also in the case of two-photon excitation.
- the measurement of the polarization of the fluorescence generated from the fluorescent probe in the sample excited by two-photon excitation has an excellent effect.
- the excitation light needs to be very intense.To obtain the same level of fluorescence intensity as in the case of one-photon excitation, the excitation is about 100 times that of one-photon excitation. Light intensity is required. Therefore, in the configuration shown in FIG.
- the excitation light that is reflected and scattered by the sample 7 and passes through the dichroic mirror 15 to reach the image intensifiers 13 and 14 with the gate function is 1 It is stronger than the case of photon excitation and may not be ignored. Therefore, in addition to the configuration shown in FIG. 10, a filter that cuts off the excitation light is provided on the optical path between the dike aperture mirror 15 and the image intensifiers 13 and 14 with the gate function. It is preferable to additionally insert.
- a polarimeter having the detection optical system shown in FIGS. 2OA and 20B can be used in the case of two-photon excitation.
- the dichroic mirror 17 not only cancels out the polarization characteristics of the dichroic mirror 5, but also functions as a filter for blocking strong excitation light reflection and scattered light. The ratio is improved.
- the polarization measurement has been described by taking depolarization imaging as an example.
- the present invention is not limited to two-dimensional (imaging).
- the present invention is applicable to zero-dimensional (point) and one-dimensional polarization measurement, and is not limited to depolarization measurement.
- the measurement of the polarization of the fluorescence generated by irradiating the sample with the excitation light was described, but the measurement of the polarization of the Raman scattered light is exactly the same.
- the polarization measuring method and apparatus provide a method for measuring the polarization of the second light flux (fluorescence, Raman scattering light) generated by irradiating the sample with the first light flux (excitation light, irradiation light). Can be measured under a microscope. Therefore, for example, when the present invention is used for fluorescence depolarization imaging, the position where the fluorescent probe bound to the target exists can be specified with high accuracy, and the behavior of the target in the sample can be determined. Because it can be analyzed, it can contribute to elucidation of various functions in cells, for example.
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Description
明 細 書 偏光性測定方法及び装置 技術分野
この発明は、 試料に光が照射されたことにより発生する蛍光やラマン散乱光の 偏光性を測定する偏光性測定装置および方法に関するものである。 背景技術
試料に光を照射すると、 その光と同一波長の光が反射光や散乱光として生じる が、 その他にも、 その照射光の波長とは異なる波長の光 (例えば、 蛍光、 ラマン 散乱光) も発生する場合がある。 この蛍光やラマン散乱光の強度を測定すること により、 その試料に関する有益な情報が得られるが、 これらの偏光性を測定する ことによつても、 試料に関する有益な情報が得られる。
例えば、 蛍光プローブを含む試料に励起光を照射し、 その試料から発生する蛍 光の偏光解消を測定することにより、 夕一ゲッ卜に結合した蛍光プローブが存在 するか否かを知ることができる。 すなわち、 蛍光プローブを含む試料に直線偏光 のパルス励起光が照射されると、 その蛍光プローブから蛍光が発生する。 その蛍 光の偏光状態は、 励起光照射当初は略直線偏光であるが、 蛍光プローブがブラウ ン運動により不規則な回転を行うと、 励起された蛍光プローブの分子軸が乱れ、 そのために、 時間の絰過とともに蛍光の偏光性は解消され、 遂には非偏光状態と なる。 この偏光解消の速度は、 蛍光プローブがターゲッ トに結合している場合と、 フリーな場合とでは異なるので、 その偏光解消の速度の差異を利用して、 夕一ゲ ッ卜に結合した蛍光プローブの存否を知ることができる。
したがって、 顕微鏡下で、 この蛍光の偏光解消の度合いの 2次元像を測定する ことができれば、 夕ーゲッ 卜に結合した蛍光プローブが存在する位置を特定する
ことができ、 また、 試料中のターゲッ トの挙動等を解析することができるので、 例えば、 細胞における諸機能の解明に貢献し得るものとして期待されている。 同 様に、 顕微鏡下でラマン散乱光の偏光性の 2次元像を測定することによつても、 試料に関する有益な情報が得られるものと期待されている。
ところで、 蛍光の偏光状態の 2次元像を観察する技術が、 D.Axelrod, "Carboc yanine Dye Orientation in Red Cel l Membrane studied by Microscopic Fluor escence Polarization" , Biophys. J. , Vol .26, pp.557-574 ( 1979) および K. Su zuki , et al , "Spatiotemporal Relationships Among Early Events of Ferti li zation in Sea Urchin Eggs Revealed by Multiview Microscopy" , Biophys.J . , Vol .68, pp.739-748 ( 1995) に記載されている。
D.Axelrod の論文に記載されている技術は、 顕微鏡下で定常光 (直線偏光の励 起光) 照射により発生した蛍光の偏光状態を測定することにより、 生体膜に導入 された蛍光色素の配向および運動性を調べるものである。 ここで用いられている 光検出器は光電子増倍管であり、 蛍光像面上の絞りを走査することにより 2次元 的な蛍光偏光像を得ている。 このような蛍光の偏光を測定するに際して問題とな るのが、 異なる偏光方位に対して偏光素子以外の光学系および光検出器が異なつ た応答を示すことにより生じる測定誤差である。 この論文に記載の技術では、 全 くの非偏光の光を受光光学系 (試料から光検出器までの光学系) および光検出器 に通すことにより、 その測定誤差を補正 (偏光応答補正) している。
K. Suzukiの論文に記載されている技術は、 試料から発生した^光を偏光ビーム スプリッ夕により互いに直交する直線偏光成分それぞれに分岐し、 その 2分岐さ れた蛍光の像それぞれを単一のカメラにより撮像することにより、 試料の定常的 な分子配向を解析するものである。 この論文に記載の技術では、 均質な試料を非 偏光の励起光で励起し、 その試料から発生する蛍光が全く無偏光であることを利 用して偏光応答補正を行っている。
しかしながら、 D .Axelrod の論文や K. Suzuki の論文に記載されている技術で
は、 非偏光の光を用いて偏光応答補正を行っているが、 この非偏光の光は本来観 察すべき蛍光とは異なるため補正精度は低く、 したがって、 偏光性の測定精度も 低い。 また、 理想的な非偏光の光を作成するのは容易ではない。
本発明は、 上記問題点を解消する為になされたものであり、 第 1の光束 (励起 光、 照射光) が照射された試料から発生する第 2の光束 (蛍光、 ラマン散乱光) の偏光性を精度良く測定することができる偏光性測定方法および装置を提供する ことを目的とする。 発明の開示
本発明に係る偏光性測定方法は、 試料に照射する第 1の光束および試料から発 生する第 2の光束のうち何れか一方を反射し他方を透過する光束分岐手段を用い て、 第 1の光束を光束分岐手段を経て試料に照射し、 該照射により試料から発生 し光束分岐手段を経た第 2の光束の偏光性を測定する偏光性測定方法であって、 ( 1 ) 第 1の光束を光束分岐手段に対して p偏光として試料に照射したときに発生 する第 2の光束の p偏光成分の強度 I p pおよび s偏光成分の強度 I P Sを測定する 第 1のステップと、 (2) 第 1の光束を光束分岐手段に対して s偏光として試料に 照射したときに発生する第 2の光束の p偏光成分の強度 I S Pおよび s偏光成分の 強度 I s sを測定する第 2のステップと、 (3) 偏光応答補正因子 Gを
^一 C ( Ι ρρ ·丄 s p) / 、ェ ps, I s s 」
なる式により求める第 3のステップと、 (4) 偏光応答補正因子 Gに基づいて偏光 応答補正を行って第 2の光束の偏光性を求める第 4のステップと、 を備える。 この偏光性測定方法によれば、 第 1のステップで、 第 1の光束は光束分岐手段 に対して p偏光として試料に照射され、 これに伴い発生した第 2の光束の p偏光 成分の強度 I P Pおよび s偏光成分の強度 I P Sが測定され、 また、 第 2のステップ で、 第 1の光束は光束分岐手段に対して s偏光として試料に照射され、 これに伴 い発生した第 2の光束の p偏光成分の強度 I s pおよび s偏光成分の強度 I s sが測
定される。 そして、 第 3のステップで、 偏光応答補正因子 Gが上記の式で求めら れ、 第 4のステップで、 この偏光応答補正因子 Gに基づいて偏光応答補正がなさ れ、 第 2の光束の偏光性が求められる。
また、 本発明に係る偏光性測定方法は、 第 2のステップで、 第 1のステップの 測定時と同じ配置の試料に対して第 1の光束を照射する。 この場合には、 試料中 に第 2の光束を発生する物質がランダムに配向している系において第 2の光束の 偏光性が測定される。
また、 本発明に係る偏光性測定方法は、 第 1のステップで、 所定方向を屮心軸 とする所定回転角度位置にある試料に対して第 1の光束を照射し、 第 2のステツ プで、 中心軸について所定回転角度位置とは 90度異なる回転角度位置にある試 料に対して第 1の光束を照射する。 この場合には、 試料中に第 2の光束を発生す る物質が一定方向に配向している系において第 2の光束の偏光性が測定される。 また、 本発明に係る偏光性測定方法は、 第 4のステップで第 2の光束の偏光性 を
または、
P,(s)= (G- Iss- Isp) / (G- I SS+ I SP)
なる式により求めてもよいし、
Pz(p)= (IPp-G- Ips) / (Ipp+2-G- IPS)
または、
P2(s)= (G' Iss- I Sp) / (G- I ss+2-Isp)
なる式により求めてもよいし、
または、
P3(s) = G - ( /し)
なる式により求めてもよいし、
P4(P)= (Ipp Ips) 一 G
または、
P4(s) = G- (Iss/I sp) — 1
なる式により求めてもよい。 何れも、 第 2の光束の偏光性を表すのに好適なパラ メ一夕である。 特に、 P3および P4は、 少ない演算量で求めることができる。 また、 本発明に係る偏光性測定方法は、 第 1の光束が、 試料により多光子吸収 され得る波長の光束であり、 第 2の光束が、 その多光子吸収に伴い発生する光束 である。 この場合には、 第 2の光束の偏光性は、 高感度かつ S/N比良く測定さ れる。
本発明に係る偏光性測定装置は、 試料に照射する第 1の光束および試料から発 生する第 2の光束のうち何れか一方を反射し他方を透過する光束分岐手段を用い て、 第 1の光束を光束分岐手段を経て試料に照射し、 該照射により試料から発生 し光束分岐手段を経た第 2の光束の偏光性を測定する偏光性測定装置であって、 (1) 試料に照射する直線偏光の第 1の光束を出力する光源部と、 (2) 光源部から 出力された第 1の光束の偏光方位を回転させる偏光方位回転手段と、 (3) 第 1の 光束が試料に照射されて発生した光束のうち光束分岐手段を絰た第 2の光束の p 偏光成分および s偏光成分それぞれの強度を検出する検出手段と、 (4) 偏光方位 回転手段により光束分岐手段に対して P偏光とされた第 1の光束が試料に照射さ れたときに検出手段により検出された第 2の光束の p偏光成分の強度 I μρおよび s偏光成分の強度 IPS、 並びに、 偏光方位回転手段により光束分岐手段に対して s偏光とされた第 1の光束が試料に照射されたときに検出手段により検出された 第 2の光束の p偏光成分の強度 I spおよび s偏光成分の強度 I ssに基づいて、
G= [ (Ιρρ· ISP) / (IPS- I SS) ] 1/2
なる式により偏光応答補正因子 Gを求める補正因子演算手段と、 (5) 偏光応答補 正因子 Gに基づいて偏光応答補正を行って第 2の光束の偏光性を求める偏光性演 算手段と、 を備える。
この偏光性測定装置によれば、 試料に照射される直線偏光の第 1の光束は、 光 源部より出力され、 偏光方位回転手段により偏光方位が回転され、 光束分岐手段 を経て試料に照射される。 第 1の光束が試料に照射されて発生した光束のうち光 束分岐手段を経た第 2の光束は、 検出手段により、 p偏光成分および s偏光成分 それそれの強度が検出される。 そして、 偏光方位回転 段により光束分岐手段に 対して Ρ偏光とされた第 1の光隶が試料に照射されたときに検出手段により検出 された第 2の光束の ρ偏光成分の強度 I Ρ Ρおよび s偏光成分の強度 I P S、 並びに、 偏光方位回転手段により光束分岐手段に対して s偏光とされた第 1の光束が試料 に照射されたときに検出ず段により検出された第 2の光束の p偏光成分の強度 I S Pおよび s偏光成分の強度 I s sに基づいて、 補正因子演算手段により、 上記の式 により偏光応答補正因子 Gが求められ、 偏光性演算手段により、 偏光応答補正因 子 Gに基づいて偏光応答補正がなされ、 第 2の光束の偏光性が求められる。
また、 本発明に係る偏光性測定装置は、 補正 W子演算手段が、 一定配置にある 試料について検出手段により検出された強度 I P p, I P S , I S Pおよび I s sそれそ れに基づいて偏光応答補正因子 Gを求める。 この場合には、 試料中に第 2の光束 を発生する物質がランダムに配向している系において第 2の光束の偏光性が測定 される。
また、 本発明に係る偏光性測定装置は、 所定方向を中心軸として試料を回転さ せる試料回転手段を更に備え、 補正因子演算手段は、 中心軸について所定回転角 度位置にある試料について検出手段により検出された強度 I P Pおよび I P S、 並び に、 試料回転手段により中心軸について所定回転角度位置とは 9 0度異なる回転 角度位置に設定された試料について検出手段により検出された強度 I S Pおよび I s sに基づいて、 偏光応答補正因子 Gを求める。 この場合には、 試料中に第 2の光 束を発生する物質が一定方向に配向している系において第 2の光束の偏光性が測 疋される。
また、 本発明に係る偏光性測定装置は、 偏光性演算手段が第 2の光束の偏光性
Pを
P.(p)= ( I pp - G - I p s ) / ( I pP + G - I P S )
または、
P l(s) = · I s s— I S p) / I s s + I s p)
なる式により求めてもよいし、
P2(p)= (IPP— G'IPS) / (IPP+2-G-IPS)
または、
P2(s)= ( G - I s s - I S P ) / ( G - I s s+2- I s p)
なる式により求めてもよいし、
P3(p)= 1 -G- (IPS/IPP)
または、
P3(s) = G - (ISP/ISS)
なる式により求めてもよいし、
または、
P4(s) = G- ( I SS I SP) - 1
なる式により求めてもよい。 何れも、 第 2の光束の偏光性を表すのに好適なパラ メ一夕である。 特に、 P3および P4は、 少ない演算量で求めることができる。 また、 本発明に係る偏光性測定装置は、 光源部が、 試料により多光子吸収され 得る波長の光束を第 1の光束として出力するとともに、 検出手段が、 その多光子 吸収に伴い発生する光束を第 2の光束として検出する。 この場合には、 第 2の光 束の偏光性は、 高感度かつ S/N比良く測定される。
また、 本発明に係る偏光性測定装置は、 (1) 試料に照射する第 1の光束を出力 する光源部と、 (2) 第 1の光束を試料に照射し、 該照射により試料から発生した 第 2の光束を入力し、 第 1の光束および第 2の光束のうち何れか一方を反射し他 方を透過する第 1の光束分岐手段と、 (3)第 1の光束分岐手段の分光特性と等し
い分光特性を有し、 第 1の光束分岐手段における第 2の光束に対する入射面と 9 0度異なる入射面を有し、 第 1の光束分岐手段から出力された第 2の光束を入力 する第 2の光束分岐手段と、 (4 ) 第 2の光束分岐手段を経た第 2の光束の p偏光 成分および s偏光成分それぞれの強度を検出する検出手段と、 (5 ) 検出手段によ り検出された第 2の光束の p偏光成分および s偏光成分それぞれの強度に基づい て第 2の光束の偏光性を測定する偏光性演算手段と、 を備える。
この偏光性測定装置によれば、 試料に照射される第 1の光束は、 光源部より出 力され、 第 1の光束分岐手段を経て試料に照射される。 第 1の光 ¾が試料に照射 されて発生した第 2の光束は、 第 1および第 2の光束分岐手段を順次経て、 その P偏光成分および s偏光成分それぞれの強度が検出手段により検出され、 そして、 これらの強度に基づいて偏光性が測定される。 ここで、 第 1および第 2の光束分 岐手段は、 互いに等しい分光特性を有し、 第 2の光束に対して互いに 9 0度異な る入射面を有するので、 第 1および第 2の光束分岐手段それぞれの分光特性が相 殺され、 これらに起因する偏光性測定誤差がなくなる。 図面の簡単な説明
図 1は、 0次元 (ポイント) の偏光性測定における G因子の求め方の説明図で ある。
図 2は、 本発明に係る偏光性測定方法および装置における G因子の求め方の説 明図である。
図 3は、 本発明に係る偏光性測定方法および装置において試料中の蛍光プロ一 ブの分子軸が配向して分布している場合の G因子の求め方の説明図である。
図 4は、 θ ,の回転相関時間を持つ蛍光分子からの励起光に平行および垂直な 蛍光偏光成分強度の減衰曲線を示すグラフである。
図 5は、 6> 2の回転相関時間を持つ蛍光分子からの励起光に平行および垂直な 蛍光偏光成分強度の減衰曲線を示すグラフである。
図 6は、 偏光性 P!の減衰曲線を示すグラフである。
図 7は、 偏光性 P2の減衰曲線を示すグラフである。
図 8は、 偏光性 Paの減衰曲線を示すグラフである。
図 9は、 偏光性 P4の減衰曲線を示すグラフである。
図 10は、 本発明に係る偏光性測定装置の構成図である。
図 1 1は、 試料から発生した蛍光の強度を偏光素子を通さないでそのまま測定 したときの減衰曲線 (太線) と、 顕微鏡下での装置の応答関数 (細線) とを示す グラフである。
図 12は、 p偏光のパルス励起光で励起したときに発生した蛍光の p偏光成分 (太線) および s偏光成分 (細線) それぞれの減衰曲線を示すグラフである。 図 13は、 G因子による偏光応答補正を行って得られた異方性比 P2の減衰曲 線 (太線) と、 偏光応答補正を行わないで得られた異方性比 P 2の減衰曲線 (細 線) とを示すグラフである。
図 14は、 本発明に係る偏光性測定装置において偏光応答補正を行って得られ た異方性比 P 2の減衰曲線 (太線) と、 従来構成の偏光性測定装置において偏光 応答補正を行って得られた異方性比 P2の減衰曲線 (細線) とを示すグラフであ る。
図 15は、 p偏光のパルス励起光で HDAF溶液を励起したときに発生した蛍 光の P偏光成分 (太線) および s偏光成分 (細線) それぞれの減衰曲線を示すグ ラフである。
図 16は、 p偏光のパルス励起光で HDAF染色 NG細胞を励起したときに発 生した蛍光の p偏光成分 (太線) および s偏光成分 (細線) それぞれの減衰曲線 を示すグラフである。
図 17は、 HDAF溶液 (細線) および HDAF染色 NG細胞 (太線) を励起 したときに発生した蛍光について G因子による偏光応答補 IEを行って得られた異 方性比 P 2の減衰曲線を示すグラフである。
図 1 8は、 フリーな蛍光プローブ (H D A F溶液) とターゲットに結合した蛍 光プローブ (H D A F染色 N G細胞) が共存する試料の模式図である。
図 1 9は、 フリー領域とバウンド領域の異方性比 P 2の値とそのコントラスト を示す図表である。
図 2◦ Aおよび図 2 0 Bそれぞれは、 多光子励起の場合にも好適に用いられる 偏光性測定装置の蛍光検出光学系の構成図であり、 蛍光検出光学系の光軸に対し て垂直であって且つ互いに垂直な 2方向それぞれから見た図である。
図 2 1は、 1光子励起の場合 (細線) および 2光子励起の場合 (太線) それそ れについて励起確率を示すグラフである。
図 2 2は、 励起光の偏光方位と蛍光プローブの分子軸の方位との関係を説明す る図である。
図 2 3は、 1光子励起の場合 (細線) および 2光子励起の場合 (太線) それぞ れについて、 定常光励起の場合の蛍光の異方性比 P 2の値を θ / τに対してプロ ットしたグラフである。
図 2 4は、 1光子励起の場合 (細線) および 2光子励起の場合 (太線) それぞ れについて、 定常光励起の場合の蛍光の異方性比 Ρ 2の^ /てに対する傾斜をプ ロッ トしたグラフである。
図 2 5は、 1光子励起の場合および 2光 f励起の場合それぞれについて、 グリ セロール割合に対して、 蛍光の異方性比 P 2および標準偏差びの測定値をまとめ た図表である。
図 2 6は、 1光子励起の場合 (細線) および 2光子励起の場合 (太線) それぞ れについて、 グリセロール割合に対して、 蛍光の異方性比 P 2の測定値をプロッ トしたグラフである。
図 2 7は、 1光子励起の場合および 2光子励起の場合それぞれについて、 グリ セロール割合の 1 0 %増に対して、 蛍光の異方性比 P 2の増分 Δ Ρ 2をまとめた図 表である。
図 28は、 1光子励起の場合 (細線) および 2光子励起の場合 (太線) それぞ れについて、 グリセロール割合の 10%増に対して、 蛍光の異方性比 P2の増分 ΔΡ 2の値をプロヅ 卜したグラフである。
図 29は、 1光子励起の場合および 2光子励起の場合それぞれについて、 グリ セロール割合に対して、 蛍光の異方性比 P2を標準偏差びで割った値 (P2/cr)、 および、 蛍光の異方性比 P2の増分 ΔΡ2を標準偏差びで割った値 (ΔΡ2/σ) をまとめた図表である。
図 30は、 1光子励起の場合 (細線) および 2光子励起の場合 (太線) それぞ れについて、 グリセロール割合に対して、 蛍光の異方性比 Ρ2を標準偏差びで割 つた値 (Ρ2/σ) をプロットしたグラフである。
図 31は、 1光子励起の場合 (細線) および 2光子励起の場合 (太線) それぞ れについて、 グリセロール割合に対して、 蛍光の異方性比 Ρ2の増分 ΔΡ2を標準 偏差びで割った値 (ΔΡ2/σ) をプロットしたグラフである。 発明を実施するための最良の形態
以下、 添付図面を参照して本発明の実施の形態を詳細に説明する。 なお、 図面 の説明において同一の要素には同一の符号を付し、 重複する説明を省略する。 ま た、 以下では、 蛍光の偏光性の測定について説明するが、 ラマン散乱光の偏光性 の測定についても同様である。 また、 「偏光性」 なる語は、 以下に述べる Ρ,, Ρ , Ρ3および Ρ4を総称したものを表す。
先ず、 本発明に係る偏光性測定方法および装置の説明に先立って、 偏光応答補 正一般について説明する。 偏光性測定に際して、 測定誤差の大きな要因の 1つと なるのが、 受光光学系 (試料から光検出器までの光学系) および光検出器の偏光 特性である。 偏光素子以外の受光光学素子および光検出器は、 理想的には、 異な る偏光に対しても等しく応答すべきであるが、 実際には、 偏光方位によって異な る応答をする。 したがって、 真の蛍光の偏光性を求めるには、 偏光応答を補正す
る必要がある。
この偏光応答の補正量は、 通常、 G因子 (偏光応答補正因子) と呼ばれ、 0次 元 (ポイント) の偏光性測定においては、 以下めように定義されている。 図 1は、 0次元 (ポイント) の偏光性測定における G因子の求め方の説明図である。 p方 位に偏光した直線偏光の励起光を試料に入射し、 蛍光を発生させる。 この入射方 向に対して直交する方向から、 偏光子を用いて p方位 (励起光の p方位と平行な 方位) および s方位 (励起光の p方位に垂直な方位) それぞれの直線偏光成分の 蛍光を測定し、 それぞれの強度を IPPおよび IPSとする。 そして、 蛍光の偏光性 を特徴付けるパラメ一夕として、 偏光度 ( -般には、 pで表現される) が、 ェ P P― I P
P »(P) = ―—— '··")
I P P + I P s
で定義され、 また、 異方性比 P 2 (—般には、 rで 現される) が、
I P P一 I P s 、
P2(p) 二 … )
1 p p ~1~ *-« I p s
で定義されている。
しかし、 実際に測定される蛍光強度は、 受光光学系および光検出器を経て得ら れるため、 それらの異方性を反映したものとなる。 すなわち、 受光光学系および 光検出器の P偏光に対する応答を TP とし、 s偏光に対する応答を Ts とすると、 実際に測定される蛍光強度 IPp, および IPS, それぞれは、 真の蛍光強度 IPPお よび I PSそれぞれとの間に、
丄 pp 一 1 " 1 p p
) なる関係がある。 したがって、 偏光度 および異方性比 P2それぞれと実測蛍光 強度 IPP, , Ips' との間の関係は、 (3)式を (1)式および (2)式それぞれに代 入して、
I p ― ^J" * p
P P) = … )
なる関係式で表される。 ここで、 (4)式および (5)式それぞれに現れる Gは、 G 因子と呼ばれる偏光応答補正因子であり、 p偏光に対する応答 TP と s偏光に対 する応答 Ts との比
T p
G = —— 6) Ts
で表される。
この G因子は、 以下のようにして求める。 s偏光の励起光を試料に照射して、 究生した蛍光の P偏光および s偏光それぞれの直線偏光成分の蛍光を測定し、 そ れそれの強度を ISf,' および I s s' とする。 これらは真の蛍光強度 I SPおよび I ssそれぞれとの間に、 (3)式と同様に、
s —— * I s p \ I s s —— I s ' I s s* " " ( なる関係がある。 そして、 s偏光の励起光に対して発生する蛍光の p偏光成分の 強度 I SPと s偏光成分の強度 I ssとは相等しいと考えられるので、 (7)式から、
τ -1 P T s p '
Ts I ss
が得られ、 したがって、 (6)式で表される G因子は、 実測された蛍光強度 ISP' および I ss, を用いて、
T s p '
G = —— -(9) で求められる。 すなわち、 この G因子による偏光応答補正を行うことにより、 偏 光度 P ,および異方性比 P 2を高精度に求めることができる。
以上に述べた偏光応答補正は、 0次元 (ポイント) の偏光性測定装置について のものであるが、 本発明に係る偏光性測定方法および装置のような顕微鏡下では、 試料に対して励起光を照射する方向と蛍光を観察する方向とが同 であるので、
上述した方法では G因子を求めることはできない。 そこで、 この場合には、 偏光 応答補正を以下のようにして行う。 図 2は、 本発明に係る偏光性測定方法および 装置における G因子の求め方の説明図である。 なお、 以下では、 G因子の求め方 を、 試料中の蛍光ブローブの分子軸が配向しておらず全くランダムに分布してい る場合と、 試料中の蛍光プローブの分子軸が配向して分布している場合とに分け て説明する。
先ず、 試料中の蛍光プローブの分子軸が配向しておらず全くランダムに分布し ている場合における G因子の求め方について説明する。
光束分岐手段であるダイクロイツクミラーに対して p偏光の励起光の試料照射 により発生した蛍光の p偏光成分および s偏光成分それぞれの強度 (真値) を I I PSとし、 光検出器により検出される実測値を I Ρ Ρ' , I ps' とする。 また、 ダイクロイックミラーに対して s偏光の励起光の試料照射により発生した蛍光の P偏光成分および s偏光成分それぞれの強度 (真値) を ISP, I ssとし、 光検出 器により検出される実測値を I S P, , I ss' とする。 このとき、 これらの量と、 受光光学系および光検出器の P偏光に対する応答 TP と、 s偏光に対する応答 Τ s との問には、
I P ―丄 ρ · _ ρρ ヽ l p s — 1 s " I p s * " " \ 10 )
I s 一丄 ェ s p 、 l s s 一 1 s * I s s "·、11) なる関係がある。
また、 ρ偏光の励起光の照射について得られる異方性比 Ρ2(Ρ)は、
I 一 I p s I ρ ρ ― , / i s ) 丄 p s
P2(P)= = -(12)
~ l p s I ρ + I s / l ps
なる式で表され、 s偏光の励起光の照射について得られる異方性比 P2(s) は、
I s ― 1 s p I s s ― ( 1 s/ 1 p ) I s p
P2(s)= = 〜(13)
l s s + s p I s s H " ^ s/ ^l p 丄 s p
なる式で表される。 また、 因子は、
τ
なる式で表されるから、 ( 式および( 式それぞれは、
一 ,
P P)= Γ (15)
丄
rT - τ ,一了 ,
P2(s)= ;
G · I + Z I
で表される。
試料中の蛍光プローブの分子軸が全くランダムに分布している場合には、 p偏 光の励起光の照射について得られる異方性比 P2(P)と、 s偏光の励起光の照射に ついて得られる異方性比 P2(s)とは相等しく、
P2(P) = P2(s) -(17) となる。 この( 式に(15)式および( 式を代入することにより、 因子は、
二 , ,)
で与えられることになる。
すなわち、 試料中の蛍光プローブの分子軸が配向しておらず全くランダムに分 布している場合における G因子は、 p偏光および s偏光それぞれの励起光の試料 照射により発生する蛍光の p偏光強度および s偏光強度を測定し、 これらの強度 に基づいて( 式により求められる。 そして、 このようにして得られた 因子に よる偏光応答補正を行うことにより、 蛍光の偏光度 P ならびに異方性比 P 2を高 精度に求めることができる。
次に、 試料中の蛍光プローブの分子軸が配向して分布している場合における G 因子の求め方について説明する。 なお、 実際の測定対象はこのような系に近い場 合が多い。
この場合において、 前述の試料中の蛍光プローブの分子軸が配向しておらず全
くランダムに分布している場合における G因子の求め方を適用すると、 偏光素子 を除く受光光学素子や光検出器が偏光について異方性を有していない場合であつ ても、 あたかも異方性を有しているかのように蛍光が測定されることになる。 し たがって、 試料中の蛍光プローブの分子軸が配向して分布している場合には、 (1 7)式の仮定は成り立たず、 p偏光の励起光の照射について得られる異方性比 P 2 (P)と、 s偏光の励起光の照射について得られる異方性比 P2(s)とは 般には異 なり、
P2(p)≠P2(s) -(19) である。
すなわち、 p偏光の励起光の照射により試料から発生する蛍光のうちの P偏光 成分および s偏光成分それぞれの強度を I PPおよび I PSとし、 s偏光の励起光の 照射により試料から発生する蛍光のうちの P偏光成分および s偏光成分それぞれ の強度を I SPおよび I ssとすると、 試料中の蛍光プローブの分子軸が全くランダ ムに分布している場合には、
丄 s 丄 s p
—— = —— … 。)
I
であるが、 蛍光プローブの分子軸が配向して分布している場合には、
-- p s -L a
—— ≠ —— (21)
I PP I s s
である。
そこで、 蛍光ブローブの分子軸が配向して分布している場合には、 G因子を以 下のようにして求める。 すなわち、 p偏光の励起光の照射により試料から発生す る蛍光のうちの P偏光成分および s偏光成分それぞれの強度 (真値) を I PP(0) および I PS(0) とし、 光検出器により検出される実測値を ΙΡΡ(0)'および IPS(0) ,とする。 また、 図 3に示すように励起光照射方向を中心軸として試料を 90度 回転した後において、 s偏光の励起光の照射により試料から発生する蛍光のうち
の P偏光成分および s偏光成分それぞれの強度 (真値) を I SP(90)および I ss(9 0)とし、 光検出器により検出される実測値を I SP(90)' および Iss(90)' とする c このとき、 これらの量と、 受光光学系および光検出器の p偏光に対する応答 TP と、 s偏光に対する応答 Ts との間には、
また、 試料を回転する前における異方性比 P2(p,0)は、
PP(0),— (Tp/Ts) Ips(O)'
P2(P,0) = •(24)
I PP(0)' + 2 (TP/TS) I P"0),
なる式で表され、 試料を 90度回転した後における異方性比 P2(s, 90) は、
(TP/TS) I Ss(90)' - I Sp(90)'
P2(s,90) = •(25)
(TP/Ts) Iss(90), + 2 I SP(90)'
なる式で表される。 こ で、 (14)式で表される G因子を用いると、 (24)式および (25)式それぞれは、
>P(0)'-G ,(0),
G- ISS(90)'- I SP(90)'
P2(s,90) = •(27)
G- I ss(90)' + 2- I sp(90)'
で表される。
試料中の蛍光プローブの分子軸が配向して分布している場合には、 励起光照射 方向を中心軸として試料を 90度回転した後において s偏光の励起光の照射につ いて得られる異方性比 P2(s, 90) は、 試料を回転する前において p偏光の励起光 の照射について得られる異方性比 P"p,0)と相等しい。 すなわち、
P2(s,90) = P2(p,0) ー(28) である。 したがって、 (26)式と(27)式とを(28)式に代入して、
G-Iss(90)' -Isp(90)' IPP(0),一 G'IPS(0),
■(29)
G- I ss(90)' +2'ISP(90), Ipp(0)' + 2G-IPS(0)'
が得られ、 これを解いて、 G因子を表す式として、
G二 [ (IPP(0),*Isp(90),)
/ (IpS(0)'-Iss(90)') ] 1/2 〜(30) が得られる。
すなわち、 試料中の蛍光プローブの分子軸が配向して分布している場合におけ る G因子は、 励起光照射方向を中心軸とする試料の回転角度を p偏光および s偏 光それぞれの励起光の試料照射の場合で互いに 90度異なるものとし、 これら p 偏光および s偏光それぞれの励起光の試料照射により発生する蛍光の p偏光強度 および s偏光強度を測定し、 これらの強度に基づいて(30)式により求められる。 そして、 このようにして得られた G因子による偏光応答補正を行うことにより、 偏光度 ならびに異方性比 P 2を高精度に求めることができる。
さらに、 本発明に係る偏光性測定方法および装置では、 h述の偏光度 およ び異方性比 P 2とは別に、 偏光性を表す Sとして、
P3(p) = 1 - G. - 〜(31) 丄 P P
P,(p) = - -G 〜(32) で表される偏光性を定義する。 この偏光性 P3および P4は、 偏光度 および異 方性比 P2と比較的よい一致を示す量である。 すなわち、 いま蛍光寿命 rが同じ で回転相関時間 0 (回転ブラウン運動の速さを特徴付ける量) の異なる 2種類の 蛍光分子を考える。 図 4および図 5は、 2種類の蛍光分子からの蛍光をそれぞれ 別にパルス光励起により G= 1の系で測定したときの励起光の偏光方位に平行な 蛍光偏光成分強度 I ΡΡ'と垂直な蛍光偏光成分強度 I PS 'をシミュレーションした 結果である。 但し、 !をての。. 1倍、 02を の 10倍として計算した。 こ
のデータをもとに、 偏光性 を(4)式により、 P 2を(5 )式により、 P 3を(31 )式 により、 P 4を(32)式により求めた結果が図 6〜図 9である。 図から判るように、 偏光性 P P 2 , P 3および P 4は、 時間および 0の変化に対して略一致した減衰 パターンをとつている。
また、 (31 )式および(32)式を、 偏光度 P ,および異方性比 P 2それぞれの定義式 である (4)式および (5 )式と比較すれば判るように、 偏光性 P 3および P 4は、 偏 光度 および異方性比 P 2を求める演算よりも少ない演算量で求めることができ る。 したがって、 (31 )式および(32 )式を用いた演算による偏光性 P 3および P 4の 算出は、 偏光性の変化をリアルタイムに測定する場合や、 2次元の大量のデ一夕 について偏光性を求める場合のように、 短時間に偏光性を求めたいときに極めて 有効である。 また、 演算量が減少することから、 演算時の誤差も低減される。 次に、 本発明に係る偏光性測定装置の構成について説明する。 図 1 0は、 本発 明に係る偏光性測定装置の構成図である。
パルス励起光源 1は、 試料 7中の蛍光プローブを励起するパルス励起光 (第 1 の光束) を出力するものである。 パルス励起光源 1から出力されたパルス励起光 は、 偏光子 2により直線偏光とされた後に、 1 / 2波長板 (偏光方位回転手段) 3に入射して、 ダイクロイツクミラー (光朿分岐手段) 5に関して p偏光方位お よび s偏光方位の何れかに回転させられる。 そして、 p偏光または s偏光とされ たパルス励起光は、 対物レンズ 6により試料 7に照射される。 すなわち、 パルス 励起光は、 励起光導入光学系 4により所定の光束径および形状にされ、 ダイク口 イツクミラ一 5により反射され、 対物レンズ 6により集光されて、 試料ステージ (試料回転手段) 8に置かれた試料 7上の観察領域に照射される。 この試料ステ ージ 8は、 試料 7に入射するパルス励起光の光軸を中心として試料 7を回転させ ることができるものである。
試料 7にパルス励起光が照射されると、 試料 7中の蛍光プローブから蛍光 (第 2の光束) が発生する。 その蛍光の強度分布は、 検出手段により、 励起光照射方
向と同じ方向に出たものが p偏光と s偏光とに分離されて測定される。 すなわち、 試料 7から発した蛍光のうち対物レンズ 6に入射した光束は、 対物レンズ 6を通 過し、 ダイクロイツクミラ一 5を透過し、 バンドパスフィル夕 9を透過し、 偏光 ビームスプリヅ夕 1 0により p偏光成分と s偏光成分とに分岐され、 その p偏光 成分および s偏光成分それぞれの蛍光偏光像が結像レンズ 1 1および 1 2それそ れによりゲート機能付イメージインテンシファイア 1 3および 1 4それぞれの撮 像面に結像され、 そして、 ゲート機能付イメージインテンシファイア 1 3および 1 4それぞれにより強度分布が測定される。
ここで、 バンドパスフィル夕 9は、 蛍光を透過させるものであるが、 試料 7で 生じたパルス励起光の散乱光を吸収するものであり、 偏光ビームスプリッ夕 1 0 は、 蛍光の p偏光成分を透過させ、 s偏光成分を反射させるものである。 ゲート 機能付イメージインテンシファイア 1 3および 1 4それぞれは、 ゲートコント口 —ラ 1 5から出力されたゲー卜信号に基づいてゲ一卜を開閉し、 ゲートが開いて いるときに撮像面に結像された蛍光偏光像を撮像するものである。 また、 ゲート コントローラ 1 5は、 パルス励起光源 1からパルス励起光が出力されるタイミン グを基準時刻として、 時刻 t u から時間 A tの間だけゲート機能付イメージイン テンシファイア 1 3および 1 4それぞれのゲートを開くよう指示するゲー卜信号 を出力する。
ゲ一卜機能付イメージィンテンシファイア 1 3および 1 4それそれにより撮像 された p偏光成分および s偏光成分それそれの蛍光偏光画像は、 画像演算部 1 6 に入力される。 画像演算部 1 6は、 これらの蛍光偏光画像に基づいて、 偏光応答 補正を行い、 偏光性 (Ρ , , P 2 , P 3 , P 4 ) の 2次元画像を求める。
次に、 この偏光性測定装置を用いて偏光応答補正のなされた蛍光の異方性比 P 2の 2次元画像を取得する方法について説明する。 偏光度 P i, P 2および P 3それ それの 2次元画像も同様にして求められる。 この偏光応答補正および蛍光の異方 性比 P 2の 2次元画像は、 画像演算部 1 6における演算によって求められるもの
である。 なお、 以下では、 試料 7中の蛍光プローブの分子軸が配向しておらず全 くランダムに分布している場合と、 試料 7中の蛍光プローブの分子軸が配向して 分布している場合とに分けて説明する。
試料 7中の蛍光プローブの分子軸が配向しておらず全くランダムに分布してい る場合には、 異方性比 P 2の 2次元画像は以下のようにして取得される。
この場合、 1/2波長板 3の光学軸を適切に設定して、 パルス励起光源 1から 出力されたパルス励起光を p偏光として試料 7に照射する。 このとき、 ゲートコ ントローラ 15からのゲ一卜信号の指示により、 時刻 t。 から時間 Atの間にゲ ―ト機能付イメージィンテンシファイア 13および 14それぞれにより撮像され た P偏光および s偏光それそれの蛍光画像を、 IPP(tu, Δ t )および I PS( t Δ t )とする。
同様にして、 1/2波長板 3の光学軸を適切に設定して、 パルス励起光源 1か ら出力されたパルス励起光を s偏光として試料 7に照射する。 このとき、 ゲート コントローラ 15からのゲート信号の指示により、 ゲー卜機能付イメージィンテ ンシファイア 13および 14それぞれにより撮像された p偏光および s偏光それ それの蛍光画像を、 ISP(t。, Δ t )および I ss( t。, 1:)とする
そして、 偏光応答補正に関する G因子を、
G= [ ( I PP(t。,厶 t)' I (to,At))
/ (IPS(to,At)-Iss(to,At)) ] 1/2 (33) で求め、 異方性比 P2(p, t o, At)を、
I PP(to,At)-G- I "to,厶 t)
P P,t。,At) = -(34)
I (t0,At)+ 2 G- I ps(t05At)
で求める。 なお、 蛍光画像 IPP(t„, At) , IPS(t。, Δ t ) , ISP(t。, 厶 t ) および Iss(t。, Δ t ) 、 G因子ならびに異方性比 Ρ2(ρ, t。, At) は、 全て、 試料 7に照射されるパルス励起光の光軸に垂直な面上の座標 (X, y) の 関数である。 このようにして、 試料中の蛍光プローブから発生した蛍光の異方性
比 P の 2次元画像を高精度に測定することができる。
試料 7中の蛍光プローブの分子軸が配向して分布している場合には、 異方性比 P 2の 2次元画像は以下のようにして取得される。
この場合、 1/2波長板 3の光学軸を適切に設定して、 パルス励起光源 1から 出力されたパルス励起光を p偏光として試料 7に照射する。 このとき、 ゲートコ ントローラ 15からのゲート信号の指示により、 時刻 t。 から時間 Atの間にゲ 一卜機能付イメージィンテンシファイア 13および 14それぞれにより撮像され た P偏光および s偏光それぞれの蛍光画像を、 IPP(0, t o, 厶 ^ぉょびェ^ (0, t。, At )とする。
続いて、 試料ステージ 8の回転により試料 7を 90度回転させた後、 同様にし て、 1/2波長板 3の光学軸を適切に設定して、 パルス励起光源 1から出力され たパルス励起光を s偏光として試料 7に照射する。 このとき、 ゲートコントロー ラ 15からのゲート信号の指示により、 ゲート機能付イメージインテンシフアイ ァ 13および 14それそれにより撮像された p偏光および s偏光それぞれの蛍光 画像を、 ISP(90, t ο, Δ t ) および Iss(90, to, 厶 t )とする。
そして、 偏光応答補正に関する G因子を、
G= [ (I (0,t„,At)-ISP(905to,At))
/ ( I PS(0,t0,厶 t)' I ss(90,t。,At)) ] 1/ -(35) で求め、 p偏光の励起光の試料照射時における蛍光の異方性比 P P, to, Δ を、
I PP(0,t。,At)— G' I PS(0,t„,At)
P"p,t0,At)= -(36)
I P(0,to,At)+2 G- I ps(0,t。,厶 t)
で求める。 なお、 蛍光画像 IPP(0, t。, 厶 t ) , IPS(0, to, At) 、 ISP
(90, t。, 厶 t ) および I ss(90, t。, 厶 t) , G因子ならびに異方性比 P
2(p, t o, Δ )は、 全て、 試料 7に照射されるパルス励起光の光軸に垂直な面 上の座標 (x, y) の関数である。 このようにして、 ターゲッ トに結合した蛍光
プローブから発生した蛍光の異方性比 P 2の 2次元画像を高精度に測定すること ができる。
次に、 本発明に係る偏光性測定装置における偏光応答補正について行った実験 の結果について説明する。 ここで用いた偏光性測定装置の具体的な構成は以下の とおりである。 パルス励起光源 1は、 モード同期チタンサファイアレーザ光源で あり、 試料 7に照射されるパルス励起光としては、 これから出力される第 2高調 波 (波長 4 0 0 nm、 パルス幅 2 0 0フェム ト秒、 繰り返し周波数 1 0 0 k H z ) を用いた。 偏光子 2は、 グランレーザプリズムであり、 1 / 2波長板 3は、 フレ ネルロム 1 / 2波長板である。 なお、 ゲ一卜機能付イメージインテンシファイア 1 3および 1 4それぞれに替えて、 ここでは、 マイクロチャンネルプレート内蔵 型光電子增倍管を用いて、 時間相関光子計数法 (T C P C法) により蛍光強度を 測定した。 試料 7として、 F I T C (Fluorescein isothiocyanate) で標識され た 1 7 merD N Aを用いた。 この試料 7中では、 蛍光プローブの分子軸は配向し ておらず全くランダムに分布している。 したがって、 G因子を(18)式で求め、 蛍 光の異方性比 P 2を(15 )式で求めた。
図 1 1は、 試料から発生した蛍光の強度を偏光素子を通さずそのまま測定した ときの減衰曲線 (太線) と、 顕微鏡下での装置の応答関数 (細線) とを示すグラ フである。 図 1 2は、 p偏光のパルス励起光で励起したときに試料 7から発生し た蛍光の P偏光成分 (太線) および s偏光成分 (細線) それぞれの減衰曲線を示 すグラフである。 なお、 この図 1 2では、 s偏光成分 (細線) の減衰曲線は、 実 測値に G因子を掛けた値で表示されている。
図 1 3は、 G因子による偏光応答補正を行って得られた異方性比 P 2の減衰曲 線 (太線) と、 偏光応答補正を行わないで得られた異方性比 P 2の減衰曲線 (細 線) とを示すグラフである。 すなわち、 太線は、 p偏光および s偏光それぞれの パルス励起光で励起したときに試料 7から発生した蛍光の偏光測定の結果に基づ いて G因子を求め、 p偏光のパルス励起光で励起したときに試料 7から発生した
蛍光の P偏光成分および s偏光成分それぞれの強度の測定値について G因子によ る偏光応答補正を行って得られた異方性比 P 2の減 a曲線を示している。 一方、 細線は、 実測値が真値であるとの仮定に下に、 G因子による偏光応答補正を行う ことなく求めた異方性比 P 2の減衰曲線を示している。 G因子の値は、 1.076であ つた。 なお、 この装置において、 ダイクロイツクミラー 5が G因子に主に寄与し ているものと考えられる。
図 1 4は、 本発明に係る偏光性測定装置のような顕微鏡下 (図 2の構成) にお いて偏光応答補正を行って得られた異方性比 P 2の減衰曲線 (太線) と、 従来構 成の偏光性測定装置 (¾ 1の構成) において偏光応答補正を行って得られた異方 性比 P 2の減衰曲線 (細線) とを示すグラフである。 この図に示すように、 両者 は良い一致を示している。 すなわち、 本発明に係る偏光性測定装置のような顕微 鏡下においても偏光応答補正を行うことにより正確な異方性比 P 2を測定するこ とできることが確認できた。
次に、 本発明に係る偏光性測定装慰を用いた蛍光偏光性の測定結果について説 明する。 ここで用いた偏光性測定装置の具体的な構成は以下のとおりである。 パ ルス励起光源 1は、 モード同期チタンサファイアレーザ光源であり、—試料 7に照 射されるパルス励起光としては、 これから出力される第 2高調波 (波長 4 6 5 η m、 パルス幅 2 0 0フエムト秒、 繰り返し周波数 1 0 0 k H z ) を用いた。 偏光 子 2は、 グランレーザプリズムであり、 1 / 2波長板 3は、 フレネルロム 1 / 2 波長板である。 なお、 蛍光の減衰曲線を測定するときには、 ゲート機能付ィメ一 ジインテンシファイア 1 3および 1 4それぞれに替えて、 マイクロチャンネルブ レート内蔵型光電子増倍管を用いて、 時間相関光子計数法 (T C P C法) により 蛍光強度を測定した。
試料 7は、 N G細胞 (N G 1 0 8— 1 5 ) であり、 蛍光プローブは、 細胞膜に 特異的に結合する H D A F (5-(N-hexadecanoyl )aminofluorescein) であり、 染 色濃度は 1 0〃Mであり、 染色時間は 3 0分であった。 この試料 7中では、 蛍光
プローブの分子軸は受光光軸に垂直な面では配向しておらず全くランダムに分布 している。 したがって、 G因子を(18)式で求め、 異方性比 P2を(15)式で求めた。 図 15は、 p偏光のパルス励起光でフリーな蛍光プローブ (HDAF溶液) 'を 励起したときに発生した蛍光の p偏光成分 (太線) および s偏光成分 (細線) そ れそれの減衰曲線を示すグラフである。 なお、 この図で、 s偏光成分 (細線) の 減衰曲線は、 実測値に G因子を掛けた値で表示されている。 図 16は、 p偏光の パルス励起光で夕ーゲッ 卜に結合した蛍光プローブ (HDAF染色 NG細胞) を 励起したときに発生した蛍光の p偏光成分 (太線) および s偏光成分 (細線) そ れそれの減衰曲線を示すグラフである。 なお、 この図でも、 s偏光成分 (細線) の減衰曲線は、 実測値に G因子を掛けた値で表示されている。
図 17は、 HDAF溶液 (細線) および HDAF染色 NG細胞 (太線) を励起 したときに発生した蛍光について G因子による偏光応答補正を行って得られた異 方性比 P 2の減衰曲線を示すグラフである。 すなわち、 細線は、 蛍光プローブが フリーな状態であるときの異方性比 P2の減衰曲線であり、 太線は、 蛍光プロ一 ブが夕一ゲッ 卜に結合している状態であるときの異方性比 P2の減衰曲線である。 図から判るように、 フリーな蛍光プローブは、 ターゲッ トに結合しも蛍光プロ一 ブに比べて速く偏光性が低下している (速く偏光解消している) 。 したがって、 偏光解消の度合いを測定することにより、 夕一ゲッ 卜に結合した蛍光プローブと フリーな蛍光プローブの分離が可能となる。
そこで、 図 18の模式図に示すようにフリーな蛍光プローブ (HDAF溶液) と夕一ゲッ トに結合した蛍光プローブ (HDAF染色 NG細胞) が共存する試料 において蛍光の偏光性を 2次元的に解析した。 まず。 試料からの蛍光を偏光素子 を通さずにそのまま測定したときの蛍光強度の 2次元分布 (通常の蛍光画像) は、 蛍光プローブがフリーに存在している領域 (フリー領域) で平均値 1(F)二 36 655 (標準偏差び ) = 1863) 、 蛍光プローブが夕ーゲッ 卜に結合してい る領域 (バウンド領域) で平均値 I(B) = 43864 (標準偏差 cr(B)= 3378)
であった。 これらの値から、 コントラスト C(I)を
1(B)— 1 (F)
C(I) 二 ー(37)
KB)+ I(F)
により計算すると 0. 09であり非常に低く、 また励起光強度の 2次元的なムラ もあってフリ一領域とバウンド領域の差が明確ではなかった。 次に、 試料からの 蛍光異方性比 P 2の 2次元画像をゲート機能付イメージインテンシファイア 13 および 14のゲ一卜を常に開いた状態で測定した (DC測定) 。 その結果、 図 1 9に示すように異方性比 P 2の値は、 フリー領域で平均値 P2(F)= 0. 044、 バウンド領域で平均値 P"B)= 0. 086であった、 これらの値からコントラス ト C(P2)を
PZ(B)-P2(F)
C(P2)= -(38)
P2(B) + P2(F)
により計算すると 0. 32であり、 フリー領域とバウンド領域が明確に区別でき るようになった。 さらに、 試料からの蛍光の異方性比 P2をゲート機能付ィメー ジインテンシファイア 13および 14のゲートを時刻 t。= 2 n s (パルス光に より励起された時刻を 0 n sとし、 フリ一な蛍光プローブの偏光性が十分解消し た時刻に設定した) から時間 3 nsの間だけ開いて測定した (時間分解測定) 。 その結果、 図 19に示すように異方性比 P2の値は、 フリー領域で平均 P2=◦ . 01 6、 バウンド領域で平均 P 2 = 0. 069であった。 これらの値からコント ラストを(38)式により計算すると 0. 62になった。 すなわち、 異方性比 P2の 2次元画像において、 時問分解測定をすることによりフリー領域とバウンド領域 のコントラストが DC測定に比べて向上した。 以上のことから、 顕微鏡下で蛍光 の偏光性の 2次元画像を測定することにより、 ターゲットに結合した蛍光プロ一 ブが存在する位置を特定できることが分かる。
次に、 本発明に係る偏光性測定装置における偏光応答補正因子に主に寄与して いると考えられるダイクロイツクミラ一 5の偏光特性を物理的 (光学的) に相殺
する方法について述べる。
図 2 O Aおよび図 2 0 Bそれぞれは、 ダイクロイツクミラー 5の偏光特性を相 殺するための偏光性測定装置の検出光学系の構成図であり、 検出光学系め光軸に 対して垂直であって且つ互いに垂直な 2方向それぞれから見た図である。 図 2 0 Aおよび図 2 0 Bに示す検出光学系は、 図 1 0に示す偏光性測定装置における試 料ステージ 8から偏光ビ一ムスプリッ夕 1 0に到るまでの検出光学系に相当する ものであり、 同一要素には同一符号が付されている。 なお、 この検出光学系以外 の部分の構成は、 図 1 0に示す偏光性測定装置において相当するものと同様の構 成である。
図 2 O Aおよび図 2 0 Bに示す検出光学系は、 図 1 0に示す偏光性測定装置の 検出光学系において、 第 1のダイクロイックミラ一 5とバンドバスフィル夕 9と の間の光路上に、 第 2のダイクロイヅクミラー 1 7を挿入したものである。 この 第 2のダイクロイツクミラ一 1 7は、 第 1のダイクロイツクミラー 5と同一特性 のものであって、 第 1のダイクロイツクミラー 5を光軸の回りに 9 0度回転させ た方位に配置されている。
この検出光学系によれば、 ダイクロイツクミラー 5に対して p偏光または s偏 光の直線偏光の励起光は、 第 1のダイクロイックミラー 5に入射して反射され、 対物レンズ 6を絰て、 試料ステージ 8上の試料 7に照射される。 励起光の照射に より、 試料 7で発生した蛍光は、 対物レンズ 6を経て、 ダイクロイツクミラ一 5 および 1 7それぞれを順次透過し、 バンドパスフィルタ 9に到達する。 ここで、 ダイクロイツクミラー 5および 1 7それぞれの特性は同一であるから、 ダイク口 イツクミラ一 5および 1 7それぞれにおける p偏光に対する応答 T P は互いに等 しく、 また、 ダイクロイツクミラー 5および 1 7それぞれにおける s偏光に対す る応答 T s も互いに等しい。
したがって、 試料 7で発生し対物レンズ 6を通過した蛍光の p偏光成分 (ダイ クロィヅクミラ一 5を基準) の強度を I P(0)とすると、 この偏光成分が第 1のダ
ィクロイツクミラ一 5を透過した後の強度 I P(l)は、
ΙΡ(1) = ΤΡ·ΙΡ(0) 〜(39) であり、 さらに第 2めダイクロイツクミラー 17を透過した後の蛍光の ρ偏光成 分の強度 I Ρ(2)は、
I P(2) = TS-I P(1)=TS-TP- IP(0) 〜(40) である。
一方、 試料 7で発生し対物レンズ 6を通過した蛍光の s偏光成分 (ダイクロイ ックミラ一 5を基準) の強度を I s(0)とすると、 この偏光成分が第 1のダイク口 ィックミラー 5を透過した後の強度 I s(l)は、
IS(1)=TS'IS(0) …( ) であり、 さらに第 2のダイクロイツクミラ一 17を透過した後の蛍光の s偏光成 分の強度 I s(2)は、
IS(2)=TVIS(1)=TP'TS'IS(0) —(42) である。
すなわち、
であり、 ダイクロイツクミラー 5および 17の応答は、 蛍光の p偏光成分および s偏光成分の何れに対しても相等しい。
図 10に示す偏光性測定装置の受光光学系 (試料から光検出器に到るまでの光 学系) では、 p偏光および s偏光の蛍光 (ダイクロイックミラー 5を基準) それ それに対する応答の相違は、 主にダイクロイツクミラー 5に起因する。 しかし、 図 2 OAおよび図 20Bに示す検出光学系を有する偏光性測定装置の受光光学系 では、 ダイクロイツクミラー 5および 17における p偏光および s偏光の蛍光 (ダイクロイヅクミラ一 5を基準) それぞれに対する応答は相等しいので、 受光 光学系全体において P偏光および s偏光の蛍光それぞれに対する応答の相違は小
さくなる。
したがって、 図 2 O Aおよび図 2 0 Bに示す検出光学系を有する偏光性測定装 置では、 第 1のダイクロイックミラー 5に加えて第 2のダイクロイヅクミラ一 1 7を備えたことにより、 受光光学系の偏光応答特性が改善され、 また、 G因子に 基づく偏光応答補正を行うので、 高精度に蛍光の偏光性を測定することができる。 以上に説明した偏光性測定方法および装置は、 1光子励起および多光子励起の 何れの場合にも適用され得るものである。 しかし、 1光子励起の場合と比較して、 多光子励起の場合には更に顕著なる効果を奏する。 そこで、 次に、 1光子励起の 場合と比較しつつ、 2光子励起の場合について説明する。
偏光性測定は、 直線偏光の励起光を試料に照射することにより、 試料中の蛍光 プロ一ブのうちで特定の方位に分子軸を有するものを選択的に励起し、 これによ り生じる蛍光の偏光性を測定するものであり、 この偏光性に基づいて蛍光プロ一 ブの回転ブラウン運動の速さ等を検出するものである。 したがって、 励起光の偏 光方位に平行な方位に分子軸を有する蛍光プローブのみが励起されるのが望まし レ、。 しかし、 実際には、 励起光の偏光方位と異なる方位に分子軸を有する蛍光プ ローブも或る確率で励起される。
励起光の偏光方位と蛍光プローブの分子軸方位とがなす角度をひとすると、 蛍 光ブローブの分子軸方位の励起光の振幅成分は cosひに比例する。 したがって、 1光子励起の場合に、 蛍光プローブが励起される確率 (励起確率) p 1 Pは、 その 蛍光プローブの分子軸方位の励起光の強度 (すなわち、 振幅の 2乗) に比例する ので、
p I ひ ) = p。 l p 'cos2ひ ---(44) で表される。 ここで、 ρ β 1 ρ は、 1光子励起の場合において、 励起光の偏光方位 に平行な方位 (ひ = 0 ) に分子軸を有する蛍光プローブの励起確率である。 一方、 2光子励起の場合の励起確率 ρ は、 その蛍光プローブの分子軸方位の励起光の 強度の 2乗に比例するので、
p2p (ひ) = p。2p'cos4a 〜(45) で表される。 ここで、 p。2p は、 2光子励起の場合において、 励起光の偏光方位 に平行な方位'(ひ = 0 ) に分子軸を する蛍光プローブの励起確率である。
図 21は、 1光子励起の場合の励起確率 P (ひ)および 2光子励起の場合の励 起確率 p2p (ひ)それぞれを示すグラフである。 ここでは、 ひ =0のときの励起確 率である p。lp および p。2p それぞれの値を 1に規格化してある。 この図に示す ように、 1光子励起の場合よりも、 2光子励起の場合の方が、 角度ひの絶対値が 大きくなるに従い、 励起確率は急激に減少している。 すなわち、 励起光の偏光方 位に平行な方位 (ひ =0) に分子軸を有する蛍光プローブの励起確率に対して、 励起光の偏光方位と異なる方位 (ひ≠0) に分子軸を有する蛍光プローブの励起 確率は、 1光子励起の場合よりも、 2光子励起の場合の方が小さい。 したがって、 試料中で蛍光プローブの分子軸の方位がランダムに配向している系において偏光 性測定を行う場合には、 1光子励起の場合よりも、 2光子励起の場合の方が、 励 起光の偏光方位に平行な分子軸を有する蛍光プローブは、 より選択的に励起され る。
次に、 1光子励起の場合および 2光子励起の場合それぞれについて、 上記の励 起確率で励起された蛍光プローブから発生する蛍光の異方性比 P 2を求める。 ] 22は、 励起光の偏光方位と蛍光プローブの分子軸の方位との関係を説明する図 である。 X y z直交座標系を設定し、 励起光の伝搬方向を X方向とし、 励起光の 偏光方位 Pを z方向とする。 蛍光プローブの分子軸の方位 Aおよび蛍光の偏光方 位 Eは、 互いに同一であって、 z軸と角度ひをなし、 xy平面への投影が X軸と 角度^をなすものとする。 また、 蛍光プローブの分子軸の方位はランダムに配向 しているものとする。
i x= k «sin2 a -cos2/? •••(46b) i y= k -sin2 a *sin2 ? ·'·(46(;) で表される。
また、 分子軸の方位 Αがひとひ + dひとの間および9と/? + d ?との間にある 蛍光プローブの数は、
sina -ά -ά/3 ·'·(47) に比例する。 したがって、 励起光により励起された蛍光プローブのうちで、 分子 軸の方位 Α (すなわち、 蛍光の偏光方位 E) がひとひ + dひとの間および/?と /3 + d ?との間にある蛍光プローブの数は、 (44)式、 (45)式および (47)式より、 1 光子励起の場合には、
cos^ - sina · ά ' d 0≡ Ω i p( )' d a - d j3 ·'·(48) に比例し、 2光子励起の場合には、
cos4 'sinひ -dひ ·ο! ?≡Ω2(Λひ ) 'dひ '··(49) に比例する。
また、 一般に、 励起光照射により励起された蛍光プローブのうちで分子軸の方 位 Αが ζ軸に対し角度ひである蛍光プローブの分布を Ω (ひ)とすると、 蛍光プロ ーブの集団である試料から発生する蛍光の z蚰方位の成分の強度 I z 、 X軸方位 の成分の強度 Ix および y軸方位の成分の強度 I y それぞれは、 (46a), (46b), (46c)式より、
S cos2ひ. Ω (ひ ) · d α
= κ α ττ/2 ■(50a)
S Ω (ひ ) · dひ rr/2
K S sin2ひ · Ω (ひ ) · dひ
I χ= a
一 ■(50b)
2 Ω ( )· d
K S sin2ひ · Ω (ひ )' dひ
― . Q ^ •(50c)
2 S Ω( a)-d a で表され、 また、
さらに、 一般に、 蛍光の異方性比 Ρ2は、 励起光の偏光方位に平行な蛍光偏光 成分の強度 Ιζ と励起光の偏光方位に垂直な蛍光偏光成分の強度 Ιχ または Iy との差を、 全蛍光量1>(+1>^+1!! で割ったものであり、
P, = (Iz-Ix) / (Iz+ 2 Ix) … 2) で表される。 この(52)式に(50a), (50b), (50c)式を代人すると、
= ( 3 ·く cos2ひ〉一 1 ) /2 〜(53) が得られる。 ただし、
S cos2 · Q( a)- d a
•icos^ひ > 一 Q ■(54)
S Ω (ひ) 'd a である。
以上より、 1光子励起の場合、 励起直後 (すなわち、 蛍光プローブの回転ブラ ゥン運動により偏光解消を受ける前) の蛍光の異方性比 P 2'p(0)の値は、 (48)式 の Ω l p (ひ)を(54)式の Ω (ひ)に代入して(53)式より得られ、
Ρ2 1ρ(0)= 2/5 = 0. 4 〜(55) である。 一方、 2光子励起の場合、 励起直後の蛍光の異方性比 P2 2p(0)の値は、 (49)式の Ω2Ρ (ひ)を(54)式の Ω (ひ)に代入して(53)式より得られ、
Ρ2 2ρ(0)=4/7 = 0. 57 〜(56) である。
このように、 1光子励起の場合よりも、 2光子励起の場合の方が、 蛍光の異方 性比の初期値 Ρ2(0)は、 1. 43倍 (= 0. 57/0. 4) だけ大きい。 したが つて、 励起された蛍光プローブが回転ブラウン運動していると、 蛍光プローブか ら発生する蛍光の異方性比 Ρ 2の値は、 上記(55)式または(56)式で示される初期 値から次第に小さくなつていくので、 1光子励起の場合よりも、 2光子励起の場 合の方が、 偏光性測定のダイナミックレンジは、 1. 43倍広い。 また、 定常光 励起の場合も同様である。
次に、 1光子励起の場合および 2光子励起の場合それぞれにおける偏光性測定 の感度について検討する。 励起直後において、 励起光の偏光方位と平行な蛍光偏 光成分の強度 Ι Ρ I J と、 励起光の偏光方位に垂直な蛍光偏光成分の強度 I , (= I y) との比は、 (50a), (50b), (50c)式より、
I s i sin" a a) - d a
—— = —— ― (57)
I p 2 - S cos ひ · Ω (ひ ) · dひ で表される。 1光子励起の場合には、 (48)式の Ω1Ρ (ひ)を(57)式の Ω (ひ)に代人 して、
I s/IP= l/5 〜(59) が得られる。 したがって、 励起された蛍光プローブが回転ブラウン運動すること
により、 比 IS/I Pは、 1光子励起の場合には 1/3から 1まで変化するのに対 して、 2光子励起の場合には 1/5から 1まで変化するので、 1光子励起の場合 よりも、 2光子励起の場合の方が、 偏光性測定の感度は高い。
次に、 1光子励起の場合および 2光子励起の場合それぞれにおいて、 一定の強 度で連続的に励起されている蛍光プローブから発生する蛍光の偏光性の測定感度 について検討する。 蛍光寿命を" rとし、 蛍光プローブの回転相関時間を 0とし、 蛍光の異方性比の最大値 ((55)式または(56)式で えられる値) を P2(0) とす ると、 蛍光の異方性比 P2は、
P2(0)
P2= 〜(60) l +r/θ
で表される。 ここで、 回転相関時間 0は、 蛍光プローブの回転ブラウン運動の速 さを特徴付ける量であり、 夕ーゲッ 卜に結合している蛍光プローブとフリー状態 にある蛍光プローブとでは異なる値となる。 回転相関時間^は、 蛍光プローブが 球状粒子である場合には、 蛍光プローブの体積を Vとし、 溶媒の絶対温度をてと し、 溶媒の粘度を r?とし、 ボルツマン定数を kとすると、
1 k-T
一 = —— (61)
Θ V- 7?
で表される。
図 23は、 1光子励起の場合 (細線) および 2光了-励起の場合 (太線) それぞ れについて、 定常光励起の場合の蛍光の異方性比 P '2 ((60)式) の値を 0/てに 対してプロットしたグラフである。 また、 第 24図は、 1光子励起の場合 (細線) および 2光子励起の場合 (太線) それぞれについて、 定常光励起の場合の蛍光の 異方性比 P2 ((60)式) の に対する傾斜をプロットしたグラフである。 こ れらの図から判るように、 1光子励起の場合 (細線) よりも、 2光子励起の場合 (太線) の方が、 蛍光の異方性比 P2の値は大きく、 また、 蛍光の異方性比 P2の 0/てに対する傾斜も大きい。 したがって、 1光子励起の場合よりも、 2光子励
起の場合の方が、 蛍光の異方性比 P2は、 6>/rの変化に対して敏感である, 上記 (60)式を 6>に関して微分すると、
が得られる。 1光子励起の場合と 2光子励起の場合とで蛍光寿命 rが同一であれ ば、 (55)式および (56)式より、
P2 2p(0) > Ρ 1ρ(0) 〜(63) であるので、
d P dP
> ,(64) d Θ d θ
となる。 すなわち、 1光子励起の場合よりも、 2光子励起の場合の方が、 蛍光の 異方性比 Ρ 2は回転相関時間 0の変化に対して感度が高い。
次に、 1光子励起の場合および 2光子励起の場合それぞれにおいて、 ffi光の偏 光性測定値の S/N比について検討する。 蛍光の異方性比 P 2の平均値をく P2>で 表し、 異方性比 P2の標準偏差をびとし、 励起光の偏光方位と平行な蛍光偏光成 分の光検出器への入射光子数を く nP>とし、 励起光の偏光方位に 3直な蛍光偏光 成分の光検出器への入射光子数を く ns>とし、 光検出器の光電変換面の量子効率 を £とすると、 蛍光の偏光性測定値の S/N比は、
S <P2>
= <Ρ2>· [£· (く nP〉 + <ns>)] 1/2 '(65)
N a
で与えられる。 定常光励起の場合、
P2(0)
<P 2> = ■(66)
1 +τ/θ
であるから、 (65)式は、
S P2(0)
[£'(<nP> + <ns>)] 1/2 ■(67)
N 1+τ/θ
となる。
したがって、 1光子励起の場合と 2光子励起の場合とで同一光子数の蛍光が得 られれば、 1光子励起の場合より、 2光子励起の場合の方が、 S/N比は 1. 4 3倍大きい。 また、 1光子励起の場合と 2光子励起の場合とで、 て/ Sの同一値 に対して同一の S/N比を得る為に必要な光子数の比は、
(<nP>+<ns>)
= P2 lp(0)/P,2p(0)) 2= 1/2 -(68)
(< nP> + <ns>) ip
である。 すなわち、 1光子励起の場台と比較して、 2光子励起の場合には、 て/ 0の同 値に対して同一の S/N比を得る為に必要な光子数は、 1/2でよい。 次に、 1光子励起の場合および 2光子励起の場合それぞれにおいて、 偏光性測 定値の標準偏差 (ノイズ) びが与えられたときの蛍光プローブの回転相関時間 0 の検出限界について検討する。 回転相関時間の値 0に対する平均異方性比を <P ( (9 )>とし、 回転相関時間に値 0 + に対する平均異方性比をく P (Θ + Α Θ)> とし、 回転相関時間 ( の検出限界を Δ 6>とすれば、
<Ρ2(Θ +Α Θ)> - <Ρ2(6» )> = ο 〜(69) が成り立つ。 これより、 回転相関時間 0の検出限界 を表す式として、
(θ + τ)2
ΑΘ = (70)
(ΡΛ )/σ)τ-(θ + τ)
が得られる。 (63)式および (70)式より、 1光子励起の場合よりも、 2光子励起の 場合の方が、 -ノイズの条件の下では回転相関時間 0の検出限界 は高い。 以上では、 蛍光の異方性比 Ρ 2について、 1光子励起の場合と 2光子励起の場 合それぞれについて述べたが、 他の偏光性 (P h Ρ3, Ρ-») についても同様で ある。 また、 2光子励起の場合であっても、 1光子励起の場合と同様に、 G因子 に基づく偏光応答補正を行うことにより、 ¾光の偏光性の 2次元画像を顕微鏡下 で高精度に測定することができる。 2光子励起の場合には、 これに加えて、 励起 光の偏光方位に平行な分子軸を有する蛍光プローブは選択的に励起されるので、
偏光性 (Ρ ^ P 2, P :i , P 4 ) の初期値は大きく、 偏光性測定のダイナミックレ ンジは広く、 偏光性測定の回転相関時間 6)に対する感度は高く、 偏光性測定値の S /N比は大きく、 同一の S /N比を得る為に必要な光子数は少なくてよく、 ま た、 回転相関時間 0の検出限界 は高く、 1光子励起の場合よりも更に優れた 効果を奏する。
以上の理論を検証するため、 以下のような実験を行った。 蛍光プローブとして B O D I P Y色素を用い、 この B O D I P Y色素をエタノールおよびグリセ口一 ルを含む溶液中に溶かした溶液を試料とした。 この蛍光プローブの回転相関時間 0すなわち回転ブラゥン運動の速さの調整は、 溶液の粘度??すなわちグリセロー ルの割合を調整することにより行った。 なお、 回転ブラウン運動の速さは、 溶液 の粘度 77に反比例する。
ここで用いた偏光性測定装置は、 図 1 0に示した構成とし、 顕微鏡下で偏光性 の測定を行った。 パルス励起光源 1としてモード同期チタンサファイアレーザ光 源が用いられ、 2光子励起の場合には、 このレーザ光源から出力されたレーザ光 (波長 9 2 0 n m、 パルス幅 2 0 0フェムト秒、 繰り返し周波数 7 6 M H z ) が 励起光として用いられ、 1光子励起の場合には、 その第 2高調波 (波長 4 6 0 n m、 繰り返し周波数 1 0 0 k H z ) が励起光として用いられた。 対物レンズ 6と して、 倍率 2 0倍のものが用いられた。 また、 ゲート機能付イメージインテンシ ファイア 1 3 , 1 4のゲートが常に開いている状態で用いられた。
図 2 5は、 1光子励起の場合および 2光子励起の場合それぞれについて、 グリ セロール割合に対して、 蛍光の異方性比 P 2および標準偏差びの測定値をまとめ た図表である。 また、 第 2 6図は、 1光子励起の場合 (細線) および 2光子励起 の場合 (太線) それぞれについて、 グリセロール割合に対して、 蛍光の異方性比 P 2の測定値をプロッ トしたグラフである。 これらの図から判るように、 1光子 励起の場合および 2光子励起の場合の何れも、 グリセロール割合が多いほど、 す なわち、 溶液の粘度 ?7が大きく回転相関時間 ( が大きいほど、 蛍光の異方性比 P
2が大きい。 また、 1光子励起の場合よりも、 2光子励起の場合の方が、 蛍光の 異方性比 P2が大きい。 これらは、 上述した理論に合致するものである。 さらに、 1光子励起の場合に対する 2光子励起の場合の蛍光の異方性比 P2の比は、 グリ セロール割合 50%で 1. 1 5であり、 60%で 1. 1 9であり、 70%で 1. 4 1であり、 80%で 1. 40であり、 90%で 1. 3 1であり、 グリセロール 割合 70%および 80%では理論値 1. 43に近い値が得られた。
図 27は、 1光子励起の場合および 2光子励起の場合それぞれについて、 グリ セロール割合の 10%増に対して、 蛍光の異方性比 P 2の増分 ΔΡ 2をまとめた図 表である。 また、 図 28は、 1光子励起の場合 (細線) および 2光子励起の場合 (太線) それぞれについて、 グリセロール割合の 1 0%増に対して、 蛍光の異方 性比 P2の増分 ΔΡ2の値をプロヅ卜したグラフである。 これらの図から判るよう に、 1光子励起の場合よりも、 2光子励起の場合の方が、 蛍光の異方性比 Ρ2の 増分 ΔΡ2が大きい。 これらは、 上述した理論に合致するものである。 さらに、 1光子励起の場合に対する 2光子励起の場合の蛍光の異方性比 Ρ2の増分 ΔΡ 2の 比は、 平均 1. 42であり、 理論値 1. 43に近い値が得られた。
図 29は、 1光子励起の場合および 2光子励起の場合それぞれについて、 グリ セロール割合に対して、 蛍光の異方性比 Ρ2を標準偏差びで割った値 (Ρ2/び) 、 および、 蛍光の異方性比 Ρ2の増分 ΔΡ2を標準偏差びで割った値 (ΔΡ,/σ) をまとめた図表である。 図 30は、 1光子励起の場合 (細線) および 2光子励起 の場合 (太線) それぞれについて、 グリセロール割合に対して、 蛍光の異方性比 Ρ 2を標準偏差びで割った値 (Ρ2 /び) をプロッ トしたグラフである。 また、 図 3 1は、 1光子励起の場合 (細線) および 2光子励起の場合 (太線) それぞれに ついて、 グリセロール割合に対して、 蛍光の異方性比 Ρ2の増分 ΔΡ 2を標準偏差 びで割った値 (ΔΡ2/(Τ) をプロットしたグラフである。 これらの図から判る ように、 1光子励起の場合よりも、 2光子励起の場合の方が、 S/N比 ( = Ρ 2 /σ) は良く、 また、 回転相関時間 6>の検出限界 Δ6> ( = ΔΡ,/σ) も高い。
次に、 2光子励起の場合に好適に用いられ得る偏光性測定装置の構成について 説明する。
図 1 0に示した構成の偏光性測定装置は、 2光子励起の場合にも用いられ得る ものである。 しかし、 ヒ述の理論および実験結果で示したように、 2光子励起に より励起された試料中の蛍光プローブから発生する蛍光の偏光性測定は優れた効 果を奏するものであるが、 2光子励起の場合には、 励起光は非常に強力である必 要があり、 1光子励起の場合と同程度の蛍光強度を得る為には、 1光子励起の場 合の約 1 0 0倍の励起光強度が必要である。 それ故、 図 1 0に示した構成では、 試料 7で反射 ·散乱されダイクロイックミラ一5を透過してゲ一ト機能付ィメ一 ジインテンシファイア 1 3 , 1 4に達する励起光は、 1光子励起の場合よりも強 く、 無視し得ない場合がある。 そこで、 図 1 0に示した構成に加えて、 ダイク口 ィヅクミラ一 5とゲ一卜機能付イメージィンテンシファイア 1 3 , 1 4それぞれ との問の光路上に、 励起光を遮断するフィル夕を追加して挿入するのが好適であ る。
また、 より好適には、 図 2 O Aおよび図 2 0 Bに示す検出光学系を有する偏光 性測定装置が 2光子励起の場合に用いられ得る。 すなわち、 ダイク όイツクミラ 一 1 7は、 ダイクロイツクミラー 5のもつ偏光特性を相殺するだけでなく、 強力 な励起光の反射 ·散乱光を遮断するフィル夕としても機能し、 偏光測定の S /Ν 比が改善される。
以上のように、 本発明に係る偏光性測定方法および装置によれば、 蛍光プロ一 ブを含む試料から発生した蛍光の偏光性 (P l 5 Ρ 2, Ρ 3 , Ρ 4 ) の 2次元画像を 顕微鏡下で得ることができる。 しかも、 本究明に係る偏光性測定装置のような顕 微鏡下であっても、 偏光応答補正を行うことで高精度な偏光性の測定を行うこと ができる。
なお、 以上の実施形態の説明においては、 偏光解消イメージングを例にして偏 光性測定について説明したが、 2次元 (イメージング) に限られるものではなく、
0次元 (ポイント) や 1次元の偏光性測定にも本発明は適用可能であり、 また、 偏光解消の測定に限られるものではない。 また、 試料に励起光を照射して発生し た蛍光の偏光性の測定について述べたが、 ラマン散乱光の偏光性の測定について も全く同様である。 産業上の利用可能性
以上のように、 本発明に係る偏光性測定方法および装置は、 試料に第 1の光束 (励起光、 照射光) が照射されて発生した第 2の光束 (蛍光、 ラマン散乱光) の 偏光性の 2次元画像を顕微鏡下で測定することができる。 したがって、 例えば、 本発明が蛍光偏光解消イメージングに用いられる場合には、 ターゲッ 卜に結合し た蛍光プローブが存在する位置を高精度に特定することができ、 試料中のターゲ ッ卜の挙動等を解析することができるので、 例えば細胞における諸機能の解明に 貢献し得るものである。
Claims
1. 試料に照射する第 1の光束および前記試料から発生する第 2の光束のうち何 れか一方を反射し他方を透過する光束分岐手段を用いて、 前記第 1の光束を前記 光束分岐手段を絰て前記試料に照射し、 該照射により前記試料から発生し前記光 束分岐手段を経た前記第 2の光束の偏光性を測定する偏光性測定方法であって、 前記第 1の光束を前記光束分岐手段に対して p偏光として前記試料に照射した ときに発生する前記第 2の光束の p偏光成分の強度 I PPおよび s偏光成分の強度 I PSを測定する第 1のステヅプと、
前記第 1の光束を前記光朿分岐手段に対して s偏光として前記試料に照射した ときに発生する前記第 2の光束の p偏光成分の強度 I SPおよび s偏光成分の強度 I ssを測定する第 2のステップと、
偏光応答補正因子 Gを
G= [ (IPP- ISP) / (Ips- I ss) ] 1 2
なる式により求める第 3のステップと、
前記偏光応答補正因子 Gに基づいて偏光応答補正を行って前記第 2の光束の偏 光性を求める第 4のステップと、
を備えることを特徴とする偏光性測定方法。
2. 前記第 2のステップは、 前記第 1のステップの測定時と同じ配置の前記試料 に対して前記第 1の光束を照射する、 ことを特徴とする請求の範囲第 1項記載の 偏光性測定方法。
3. 前記第 1のステップは、 前記所定方向を中心軸とする所定回転角度位置にあ る前記試料に対して前記第 1の光束を照射し、
前記第 2のステップは、 前記中心軸について前記所定回転角度位置とは 90度 異なる回転角度位置にある前記試料に対して前記第 1の光束を照射する、 ことを特徴とする請求の範囲第 1項記載の偏光性測定方法。
4. 前記第 4のステップは、 前記第 2の光束の偏光性 Pを
Ρι(Ρ)二 ( I pp-G- I ps) / ( I p + G- I ps)
または、
なる式により求める、 ことを特徴とする請求の範囲第 1項記載の偏光性測定方法
5. 前記第 4のステップは、 前記第 2の光束の偏光性 Pを
P2(p)= ( I Pp-G- I PS) / ( Ι ρρ+ 2 -G· I PS)
または、
P2(s)= (G- I SS- I SP) / (G- I Si+ 2 - I SP)
なる式により求める、 ことを特徴とする請求の範囲第 1頃記載の偏光性測定方法
6. 前記第 4のステップは、 前記第 2の光束の偏光性 Pを
または、
P3(s) = G— ( I SP/I S S)
なる式により求める、 ことを特徴とする請求の範囲第 1項記載の偏光性測定方法 c
7. 前記第 4のステップは、 前記第 2の光束の偏光性 Pを
または、
FAs) = G- ( I SS/I sp) - 1
なる式により求める、 ことを特徴とする請求の範囲第 1項記載の偏光性測定方法 c
8. 前 第 1の光朿は、 前記試料により多光子吸収され得る波長の光束であり、 前記第 2の光束は、 その多光子吸収に伴い発生する光束である、 ことを特徴とす る請求の範囲第 1項記載の偏光性測定方法。
9. 試料に照射する第 1の光束および前記試料から発生する第 2の光束のうち何 れか一方を反射し他方を透過する光束分岐手段を用いて、 前記第 1の光束を前記 光束分岐手段を経て前記試料に照射し、 該照射により前記試料から発生し前記光
朿分岐手段を経た前記第 2の光束の偏光性を測定する偏光性測定装置であって、 試料に照射する直線偏光の第 1の光束を出力する光源部と、
前記光源部から出力された前記第 1の光束の偏光'方位を回転させる偏光方位回 転手段と、
前記第 1の光束が前記試料に照射されて発生した光束のうち前記光束分岐手段 を絰た前記第 2の光束の p偏光成分および s偏光成分それぞれの強度を検出する 検出手段と、
前記偏光方位回転手段により前記光束分岐手段に対して P偏光とされた前記第 1の光束が前記試料に照射されたときに前記検出手段により検出された前記第 2 の光束の P偏光成分の強度 I PPおよび s偏光成分の強度 I PS、 並びに、 前記偏光 方位回転手段により前記光束分岐手段に対して s偏光とされた前記第 1の光束が 前記試料に照射されたときに前記検出手段により検出された前記第 2の光束の p 偏光成分の強度 I SPおよび s偏光成分の強度 I ssに基づいて、
G二 [ (I pp- I sp) / ( - I ss) ] 1/2
なる式により偏光応答補正因子 Gを求める補正因子演算手段と、
前記偏光応答補正因子 Gに基づいて偏光応答補正を行って前記第 2の光束の偏 光性を求める偏光性演算手段と、
を備えることを特徴とする偏光性測定装置。
10. 前記補正因子演算手段は、 一定配置にある前記試料について前記検出手段 により検出された前記強度 I PP, I PS, I SPおよび I ssそれぞれに基づいて、 前 記偏光応答補正因子 Gを求める、 ことを特徴とする請求の範囲第 9項記載の偏光 性測定装置。
1 1. 前記所定方向を中心軸として前記試料を回転させる試料回転手段を更に備 え、
前記補正因子演算手段は、 前記中心軸について所定回転角度位置にある前記試 料について前記検出手段により検出された前記強度 IPPおよび IPS、 並びに、 前
記試料回転手段により前記中心軸について前記所定回転角度位置とは 90度異な る回転角度位置に設定された前記試料について前記検出手段により検出された前 記強度 I SPおよび I ssに基づいて、 前記偏光応答補正因子 Gを求める、 ことを特 徴とする請求の範囲第 9項記載の偏光性測定装置。
12. 前記偏光性演算手段は、 前記第 2の光束の偏光性 Pを
または、
P.(s)= (G-ISS-ISP) / (G-ISS+ISP)
なる式により求める、 ことを特徴とする請求の範囲第 9項記載の偏光性測定装置。
13. 前記偏光性演算手段は、 前記第 2の光束の偏光性 Pを
P2(p)= (Ipp-G-IpS) / (IPP+2-G-IPS)
または、
P2(s)= (G-Iss-ISp) / (G-Is.s+2-ISP)
なる式により求める、 ことを特徴とする請求の範囲第 9項記載の偏光性測定装置。
14. 前記偏光性演算手段は、 前記第 2の光束の偏光性 Pを
または、
なる式により求める、 ことを特徴とする請求の範囲第 9項記載の偏光性測定装置 c
15. 前記偏光性演箅手段は、 前記第 2の光束の偏光性 Pを
または、
P4(s) = G- ( I SS/I Sp) ― 1
なる式により求める、 ことを特徴とする請求の範囲第 9項記載の偏光性測定装置 <
16. 前記光源部は、 前記試料により多光子吸収され得る波長の光束を前記第 1 の光束として出力するとともに、 前記検出手段は、 その多光子吸収に伴い発生す
る光束を前記第 2の光束として検出する、 ことを特徴とする請求の範囲第 9項記 載の偏光性測定装置。
1 7 . 試料に照射する第 1の光束を出力する光源部と、
前記第 1の光束を前記試料に照射し、 該照射により前記試料から発生した第 2 の光束を入力し、 前記第 1の光束および前記第 2の光束のうち何れか 方を反射 し他方を透過する第 1の光束分岐手段と、
前 ffi第 1の光束分岐手段の分光特性と等しい分光特性を有し、 前記第 1の光束 分岐手段における前記第 2の光束に対する入射面と 9 0度異なる人射面を有し、 前記第 1の光束分岐手段から出力された前記第 2の光束を入力する第 2の光束分 岐手段と、
前記第 2の光束分岐手段を経た前記第 2の光束の p偏光成分および s偏光成分 それぞれの強度を検出する検出手段と、
前記検出手段により検出された前記第 2の光束の p偏光成分および s偏光成分 それぞれの強度に基づいて前記第 2の光束の偏光性を測定する偏光性演算手段と、 を備えることを特徴とする偏光性測定装置。
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