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WO1998048033A1 - SOUCHE PRODUISANT UNE QUANTITE IMPORTANTE DE ε-POLY-L-LYSINE ET PROCEDE POUR PRODUIRE DE LA ε-POLY-L-LYSINE AU MOYEN DE CETTE SOUCHE - Google Patents

SOUCHE PRODUISANT UNE QUANTITE IMPORTANTE DE ε-POLY-L-LYSINE ET PROCEDE POUR PRODUIRE DE LA ε-POLY-L-LYSINE AU MOYEN DE CETTE SOUCHE Download PDF

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WO1998048033A1
WO1998048033A1 PCT/JP1997/001403 JP9701403W WO9848033A1 WO 1998048033 A1 WO1998048033 A1 WO 1998048033A1 JP 9701403 W JP9701403 W JP 9701403W WO 9848033 A1 WO9848033 A1 WO 9848033A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
strain
lysine
poly
producing
streptomyces
Prior art date
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Ceased
Application number
PCT/JP1997/001403
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Toshiharu Iwata
Yumiko Iwasawa
Shinji Shiraishi
Jun Hiraki
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
JNC Corp
Original Assignee
Chisso Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority to JP11324096A priority Critical patent/JP3525190B2/ja
Application filed by Chisso Corp filed Critical Chisso Corp
Priority to PCT/JP1997/001403 priority patent/WO1998048033A1/ja
Priority to CNB971822530A priority patent/CN1161455C/zh
Priority to KR10-1999-7009787A priority patent/KR100433741B1/ko
Publication of WO1998048033A1 publication Critical patent/WO1998048033A1/ja
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Ceased legal-status Critical Current

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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00Preparation of peptides or proteins
    • C12P21/02Preparation of peptides or proteins having a known sequence of two or more amino acids, e.g. glutathione
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • C12N1/205Bacterial isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • C12R2001/465Streptomyces

Definitions

  • the present invention relates to a strain that produces a large amount of ⁇ PL-L-lysine (hereinafter referred to as PPL) and a method for producing ⁇ PL by fermentation using the strain.
  • PPL ⁇ PL-L-lysine
  • £ PL has high safety because it is a polymer of L-lysine, an essential amino acid, and has unique physical properties because of its high cation content. Therefore, applications such as toiletries, cosmetics, feed additives, pharmaceuticals, agricultural chemicals, food additives, and electronic materials can be expected. In particular, in the field of food additives, it is attracting attention as a natural additive. Background technology
  • the resulting mutant strain Streptomyces albras, Lysinopolymeras 11011A-1 strain (Shenzhen No. 1109) is cultured in a medium, and the resulting culture is separated and purified.
  • a method for obtaining the £ PL is also known (Japanese Patent Publication No. 3-42070, Japanese Patent Publication No. 3-78998).
  • an object of the present invention is to provide a strain which has a higher ⁇ PL-producing ability and can improve ⁇ PL productivity as compared with a conventional £ PL-producing strain or an improved strain thereof. It is also an object of the present invention to provide a method for producing an inexpensive and significant amount of PL using the strain. Disclosure of the invention
  • the present invention is constituted by the following technical means.
  • the B21021 strain described in the above (2) is aerobically cultured in a medium, and £ -poly-L-lysine produced and accumulated in the culture solution is collected. Manufacturing method.
  • AEC used in the present invention is a structural analog of L-lysine (analog substance).
  • L-lysine is a compound with a structure that differs only in that the carbon atom at the 4-position is replaced with a sulfur atom. is there.
  • the AEC is added to the medium, the growth of the bacteria is inhibited, but the combination of L-threonine clearly shows the growth inhibition more strongly.
  • the 11011A-1 strain disclosed in Japanese Examined Patent Publication No. 3-42070 is a £ PL-producing strain resistant to AEC, an analog of L-lysine, but was screened in the presence of AEC at a concentration of 2 mg / ml.
  • an improved strain of AEC concentration c present invention show no growth at 10mg / ml or more, 10mg / ml or more concentrations of It is a microorganism belonging to the genus Streptomyces that has a degree of resistance that can grow even at an AEC concentration of 40 mg / ml, and has a mycological property that is one of that of the parent strain 11011A-1 that has been screened in the presence of AEC. Differences are noted in some parts.
  • any microorganism of the genus Streptomyces that can produce ⁇ PL can be used.
  • Streptomyces. Albras • lysinopolymeras 1101 1A-1 strain (Microe Kenjiro No. 1109) is preferred.
  • mutation treatment refers to a treatment in which a microorganism (strain) of the genus Streptomyces producing ⁇ PL is mutated into an improved strain resistant to AEC at a high concentration of lOmg / ml or more.
  • strain a microorganism
  • NTG N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine
  • Chemical or physical mutation treatment methods can be mentioned.
  • inoculation is performed on a minimal agar medium supplemented with AEC of 10 mg or more per 1 ml of medium and L-threonine at 1 mg per 1 ml of medium.
  • a method of collecting a growing strain can be mentioned.
  • the present invention will be described in detail.
  • One specific method for obtaining the improved strain of the present invention is to use the spores of Streptomyces albras subsp. Lysinopolymeras 11011A-1 strain, which is a PL-producing strain, by tris-maleic acid.
  • the suspension is suspended in a buffer (pH 6.0), NTG is added to the buffer at 1.5 mg / mL of the buffer, and the mixture is contacted at 37 ° C. for 60 minutes.
  • the cells are collected by centrifugation, washed with phosphate buffer (0.05 M, pH 7.0), and then added to a minimal agar medium containing 20 mg of AEC per 1 ml of medium and 1 mg of L-threonine per ml of medium (glucose 5 %, Ammonium sulfate 1%,
  • the productivity of ⁇ PL was evaluated for the thus obtained AEC high-concentration resistant strains, and the strain with the highest productivity was Strep-Small Myces, Albraz, Subspecies, Lysinopolymereras B21021 strain (Ministry of International Trade and Industry Technical Research Institute ( ⁇ 305, 1-3 1-3 Higashi 1-chome, Tsukuba, Ibaraki, Japan), International Accession Number: FERM BP-52926, 1997 (April 18) Transfer from the original deposit (FERM P-1 513, original deposit date: September 20, 1995) to an international deposit based on the Busu-Busto Treaty], followed by the B22107 strain, ⁇ 222 ( ⁇ shares.
  • the degree of AEC resistance of the resulting improved strain which is resistant to high concentrations of AEC, is measured as follows. That is, the resistant strain was applied to each of the minimal agar medium (described above) to which AEC and L-threonine at the respective concentrations shown in Table 1 described below were added at a rate of 1 ml per 1 mg of the medium. After culturing for 7 to 7 days, the degree of resistance is compared by observing the growth with the naked eye. Table 1 shows the results.
  • the parent strain, 11011A-1 grows at an AEC concentration of 5 mg / nd, but shows no growth at a concentration of 10 mg / ml, whereas the highly resistant strain, B2102 vermilion, £ (: Even if the concentration is 401 ⁇ / 1111 Growth is observed.
  • the improved strain of the present invention can be clearly distinguished from the parent strain in that it has resistance to high concentrations of AEC.
  • the spores are circular or elliptical, about 1.2.5 in size, and their surface structure is Spiny.
  • Optimal growth temperature around 30.
  • the bacteriological properties of one of the improved strains of the present invention are different in some respects from the bacteriological properties of the parent strain, 11011A-1 c .
  • 11011A-1 strain cannot use salicin, B2102 Red is available.
  • 11011A-1 strain grows a gray-brown aerial mycelium on sucrose / nitrate agar medium, while B21021 strain does not grow on c- nutrient agar medium. The mycelium grows abundantly, but the aerial hyphae grows only slightly in the B21021 strain.
  • a soluble pigment is also observed in the glucose-asparagine agar medium and the glycerol-asparagine agar medium for 11011A-red, but not for both mediums in the B21021 strain.
  • the B21021 strain can be clearly distinguished from the parent strain 11011A-1 also in bacteriological properties.
  • the improved strain is inoculated into a medium, cultured, and ⁇ PL produced and accumulated from the culture solution is separated and purified. Any medium can be used as long as it contains a carbon source, a nitrogen source, inorganic substances and other nutrients.
  • the carbon source is not limited as long as the improved strain such as glucose, fructose, glycerin, starch and the like can be assimilated, and its content is preferably 1 to 5% (g / dl%).
  • the nitrogen source peptone, casein hydrolyzate, amino acids, but may be any inorganic Anmoniu ⁇ like, the content of preferably c nitrogen source is sulfuric Anmoniu ⁇ is from 0.2 to 2% (% is g / dl %) Is preferred.
  • a carbon source and a nitrogen source may be added sequentially.
  • Inorganic substances include phosphate ion, potassium ion, sodium ion, magnesium ion, zinc ion, iron ion, manganese ion, nickel ion, sulfate ion and the like.
  • yeast extract is contained in an amount of 0.1 to 0.5% (% is g / dl%), the growth of the bacterium is improved, and a favorable result is also obtained in the production of ⁇ PL.
  • Culture is performed under aerobic conditions, such as shaking culture or stirring culture.
  • the culture temperature is preferably 25 to 35 ° C.
  • the pH of the medium is preferably around neutral (pH 6 to 8), but after the culture starts, the pH decreases as the bacteria grow. When the pH drops to 4, add alkali to maintain the pH at 4.
  • Ammonia water is preferably used as the additive, and sodium hydroxide, potassium hydroxide or the like may be used.
  • ⁇ PL is accumulated in the culture solution in 1 to 7 days.
  • the cell-removed solution After removing the cells from the culture by centrifugation or a filter, the cell-removed solution is purified, decolorized, and concentrated. Crystallization from the concentrated solution with an organic solvent such as acetone or ethanol gives PL.
  • the amount of PL produced in the culture solution was measured by the method described in Itzhaki et al., Analytical Biochemistry, 50, 569, (1972). That is, after removing the cells by centrifugation of the culture solution, 2 ml of the supernatant ( ⁇ L: 0 to 200 ⁇ g) and 2 mM of 1 mM aqueous solution of methyl orange are mixed and left at room temperature for 30 minutes. The resulting ⁇ PL-methyl orange complex is removed by centrifugation, and the supernatant is measured for absorbance at 465 nm to determine the ePL amount in the culture solution.
  • C % in Examples and Comparative Examples Is weight (g) / volume (dl)% unless otherwise specified. (Example 1)
  • Table 3 shows the amount of PL production and the yield to sugar after 72 hours of culture.
  • the culture was carried out according to Example 1 except that Streptomyces albras subsp. Lysinopolymeras B210107 strain was used instead of Streptomyces albras subsp. Lysinopolymeras B21021 strain.
  • the amount of PL was measured. Table 3 shows the amount of PL production and the yield to sugar after 72 hours of culture.
  • Streptomyces ⁇ Alblas ⁇ Sub-species ⁇ Lysinopolymeras B21021 instead of the strain, the cells were cultured according to Example 1 except that Streptomyces'Albras'Subspecies' Lysinopolymeras 222 (a strain was used), and the amount of PL in the culture solution was measured. Table 3 shows the amount of ⁇ PL produced and the yield relative to sugar.
  • Example 6 Culture was carried out in accordance with Example 4, except that Streptomyces 'Albras' Subsp. Was measured. Table 4 shows the sPL production amount and the sugar yield after the culture for 168 hours. (Example 6)
  • Streptomyces albus subsp. Lysinopolymeras The procedure was performed in accordance with Example 4, except that the parent strain Streptomyces albus brass subspecies lysinopolymeras 11011A-1 was used instead of the B21021 strain. Table 4 shows the amount of PL production and the yield to sugar after culturing for 168 hours.
  • Example 7 With respect to the culture solution cultured for 16 hours in Example 4, the culture solution was centrifuged to remove cells, adjusted to pH 7.5, and then treated with IRC-50 (cation exchange resin) and IR A- Separation and purification were performed using ion exchange resins of 402 (anion exchange resin) and XT-106 (cation exchange resin), and ⁇ PL was obtained by concentration with a reverse osmosis membrane (RO). The yield is shown in Table 5.
  • the improved strain having high resistance to AEC of the present invention has the ability to produce ⁇ PL in high production and high yield.
  • PL can be produced with high productivity and high yield. It is possible to manufacture.

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Description

明 細 書 ε —ポリ一 Lーリジンを著量に生産する菌株及びそれを用いた £—ポリ— L— リジンの製造法 技 術 分 野
本発明は、 £ 一ボリ一 L一リジン (以下、 ε P Lという) を著量に生産する菌 株と該菌株を用いて発酵法により ε P Lを製造する方法に関する。
£ P Lは、 必須ァミノ酸である L一リジンのポリマーであるため安全性が高く、 また、 カチオン含量が高いので、 特異な物性を有する。 したがってトイレタリー 用品、 化粧品、 飼料添加物、 医薬、 農薬、 食品添加物、 電子材料等の用途が期待 できる。 特に食品添加物の分野では、 天然物系の添加物として注目されている。 背 景 技 術
従来、 発酵法による £ P Lの製造法としては、 自然界から分離されたストレブ トマイセス属に属する P L生産株であるストレブトマイセス ·アルブラス ·サ ブスピ一シス' · リジノホリ メラス (Streptomyc es albulus subsp. lys i nopolymer us) No. 346- D株 (微ェ研菌寄第 3834号) を培地に培養し、 得られる培養物から £ P Lを分離、 精製して得る方法が知られている (特公昭 59- 20359号公報) 。 ま た、 該ストレブトマイセス ·アルブラス ·サブスピーシズ · リジノポリメラス No. 346- D株を、 L— リ ジンのアナログ物質である S— (2—アミノエチル) 一 L一 システィンに耐性を有する変異株に変異処理して、 得られた変異株であるストレ プトマイセス ·アルブラス · リジノポリメラス 11011A-1株 (微ェ研条寄第 1109 号) を培地に培養して、 得られる培養物から、 分離、 精製して該 £ P Lを得る方 法も知られている (特公平 3-42070号公報、 特公平 3-78998号公報) 。
しかしながら、 種々の用途に対応しうる安価な ε P Lを製造するには、 該 11011A- 1株を用いても、 ε P Lの生産量及び対糖収率は未だ充分ではないとう点 もあり、 さらに ε Ρ L生産能を高めた改良株及び該改良株を用いて工業的に安価 で効率的な ε P Lの製造法の開発が望まれていた。 本発明者らは、 従来の £ PL生産株またはその変異株にくらべて、 e PL生産 能をさらに高めた ε P L生産株を得るべく鋭意研究を重ねた。 その結果、 lOmg/ml以上の高濃度の S— (2—アミノエチル) —L一システィン (以下、 A E Cという) に対して耐性を有する変異株が ε P Lを著量に生産することのでき る菌株になることを見いだすとともに、 該菌株を好気的に培地に培養することに より、 £ PLを著量に生産することができることを見い出し、 これらの知見に基 づき、 本研究を完成した。
以上の記述から明らかなように、 本発明の目的は、 従来の £ PL生産株または その改良株に比べてさらに ε PLの生産能が高く、 ε PLの生産性を向上させる ことのできる菌株を提供するとともに、 該菌株を用いて £ PLを安価で、 著量に 製造する方法を提供することである。 発 明 の 開 示
本発明は以下の技術的手段で構成される。
( 1 ) ε—ポリ一 L一リジンの生産能を有するストレブトマイセス 'アルブラス ( Streptomyces albulus) 種の微生物を変異処理して得られ、 lOmg/ml以上の高 濃度の S— (2—アミノエチル) —L一システィンに対して耐性を有する £ーポ リー L—リジンを著量に生産する菌株。
( 2 ) ストレブトマイセス ·アルブラス .サブスピ一シズ · リジノポリメラス (Streptomyces albulus subsp. lysinopolymerus)11011A- 1株 (微ェ研条寄第
1109号) を変異処理して得られ、 10mg/ml以上の高濃度の S— (2—アミノエチ ル) —L一システィンに対して耐性を有する ε—ポリ— Lーリジンを著量に生産 する B21021株 (寄託番号 FERM Β Ρ - 5 9 2 6号) 。
(3) 10mg/ml以上の高濃度の S— (2—アミノエチル) —L一システィンに対 して耐性を有し、 かつ ε—ポリ— Lーリジン生産能を有するストレブトマイセス 属に属する微生物を、 好気的に培地に培養し、 培養液中に生成蓄積した 一ポリ — L—リジンを採取することを特徴とするど—ポリ— L—リジンの製造法。
(4) 前記第 2項記載の B21021株を好気的に培地に培養し、 培養液中に生成蓄積 した £一ポリ一 L—リジンを採取することを特徴とする £一ポリ一 Lーリジンの 製造法。
本発明で用いる A E Cは、 L一リ ジンの構造類似物質 (アナログ物質) であり、 Lーリジンとは、 4位の炭素原子が硫黄原子と交換されていることのみが異なつ た構造の化合物である。 該 A E Cを培地中に添加すると菌の生育阻害を引き起こ すが、 さらに Lースレオニンを組み合わせることにより、 生育阻害が明らかによ り強く示される。
特公平 3-42070 号公報に開示の 11011A- 1株は、 L一リジンのアナログ物質であ る A E Cに対する耐性を有する £ P L生産株ではあるが、 2mg/mlの濃度の A E C 存在下でスクリーニングしたものであり、 その生育範囲は A E C濃度がせいぜい 5 mg/ml以下の場合だけで、 A E C濃度が 10mg/ml 以上では全く生育を示さない c 本発明の改良株は、 10mg/ml以上の濃度の A E C存在下でスクリ一ニングした もので、 A E C濃度が 40mg/mlでも生育可能な耐性度を有するストレブトマイセ ス属に属する微生物であり、 さらに菌学的性質も親株である 11011A- 1株とは一部 で違いが認められる。
かかる改良株を得る際に使用される親株としては、 ε P Lを生産するストレブ トマイセス属の微生物であれば使用できるが、 ストレブトマイセス .アルブラス • リジノポリメラス 1101 1A- 1 株 (微ェ研条寄第 1109号) が好ましい。
本発明で変異処理とは、 ε P Lを生産するストレブトマイセス属の微生物 (菌 株) を、 lOmg/ml以上の高濃度の A E Cに対して耐性を有する改良株に変異させ る処理のことをいい、 かかる変異処理の方法としては、 N—メチルー N' —二ト ロー N—ニトロソグァ二ジン (以下 N T Gという) を、 緩衝液 lml当たり 0. lmg 〜3mgの濃度になるように添加して、 1 0分間〜 2時間該菌株と該 N T Gを接触 させる方法や、 紫外線を照射線量 100〜1000J/cm2で該菌株に照射する方法、 5 -プロモウラシル等の薬剤で処理する方法、 その他慣用の化学的もしくは物理的 変異処理方法を挙げることができる。
変異処理した菌株をスクリーニングする方法としては、 培地 lml当たり A E C を 10mg以上になるように、 さらに L—スレオニンを培地 lml当たり lmgになるよ うに添加した最少寒天培地上に接種し、 該培地上に生育してくる菌株を採取する 方法を挙げることができる。 以下に本発明を詳細に説明する。
A E C高濃度耐性株である本発明の改良株の具体的な取得方法の 1つは、 £ P L生産株であるストレプトマイセス ·アルブラス ·サブスピーシズ · リジノポリ メラス 11011A-1 株の胞子をトリス—マレイン酸緩衝液(pH 6.0)に懸濁し、 NT Gを該緩衝液 lmL当たり 1.5 mgとなるように該緩衝液に添加して、 3 7 °Cで 6 0 分間接触させる。 その後、 遠心分離により胞子を集め、 リン酸緩衝液 (0.05M,pH 7.0)で洗浄したあと、 液体栄養培地 (グルコース 5 %、 硫酸アンモニゥム 1 %、 酵母エキス 0.5%、 K2HP04 0.08 %、 KH2P04 0.136%、 MgS04-7H20 0.05 %、 ZnS04-7H20 0.004%, FeS04-7H20 0.003% pH6.8、 ただし、 %とは g/dl%を いう) 中で一夜培養する。 培養後、 遠心分離で菌体を集め、 リン酸緩衝液 (0.05M, pH 7.0)で洗浄したのち、 培地 lml当たり A E Cを 20mg及び培地 lml当たり L一 スレオニンを lmg含む最少寒天培地 (グルコース 5 %、 硫酸アンモニゥム 1 %、
K2HP04 0.08%. KH2P04 0.136%. MgS04-7H20 0.05 %、 ZnS04-7H20 0.004 %、 FeS04-7H20 0.003% pH6.8、 寒天 1.5 %、 ただし、 ^ :g/dl%をいう) 上 に塗布し、 3 0°Cで 3〜4日間培養し、 生育したコロニーを採取する。 こうして 得られた AE C高濃度耐性株について ε PLの生産性の評価を行い、 最も生産性 の高い菌株がストレプ小マイセス■アルブラス ·サブスピーシズ · リジノポリメ ラス B21021 株 〔通商産業省工業技術院生命工学工業技術研究所 (〒3 0 5 日 本国茨城県つくば市東一丁目 1番 3号) 、 国際受託番号: FERM BP- 5 9 2 6、 平成 9年 ( 1 9 9 7年) 4月 1 8日に原寄託 (FERM P— 1 5 1 9 3、 原寄託日 :平成 7年 9月 2 0日) からブ夕ブスト条約に基づく国際寄託へ移管〕 であり、 これに続くのが B22107株、 Β222(Π株である。
得られた改良株である A E C高濃度耐性株の A E Cに対する耐性度は、 次のよ うにして測定する。 すなわち、 後述の表一 1に記載した各濃度の AECと Lース レオニンを培地 lmg当たり 1ml添加した最少寒天培地 (前記) のそれぞれに該耐 性株を塗布して、 3 0°Cで 2日〜 7日間培養し、 生育を肉眼で観察することによ り、 耐性度を比較する。 その結果を表 1に示した。 親株である 11011A-1株は、 A E C濃度が 5mg/nd では生育が認められるが、 10mg/mlの濃度では全く生育を示 さないのに対して、 高濃度耐性株である B2102 朱は、 八£(:濃度が401^/1111 でも 生育が認められる。 この様に、 本発明の改良株は、 高濃度の A E Cに対するの耐 性を有するという点で、 親株と明確に区別することができる。
表 1 試験菌株 A E C濃度 培養日数 (曰)
(mg/ml) 2 3 4 5 6 7
B21021 5 + + + + + +
1 0 + + + + + +
2 0 + + + + + +
4 0 ― + + + +
B22107 5 + + + + + +
1 0 + + + + + +
2 0 + + + + + +
4 0 + + +
B22201 5 + + + + + +
1 0 + + + + + +
2 0 + + + + + +
4 0 + + + + +
(親株) 2 土 + +
5 + + +
1 0
2 0 注) + : 生育あり 土 : ごくわずカ こ生育あり 生育なし
次に、 B2102 朱の菌学的性質を示すと次の通りである,
( 1 ) 形態学的性質
①胞子形成菌糸の分技法及び形態
単純分枝、 閉鎖らせん状 (c l osed sp i ral )
②胞子の数:数 10個 ③胞子の表面構造及び大きさ
胞子は円ないし楕円形で大きさは約 1. 2 1. 5 であり、 その表面構造はス パイ二一(Spiny) である。
④鞭毛、 菌核、 胞子のうの有無:認められない。
⑤胞子柄の着生位置:気菌糸上
( 2 ) 各種培地上における培養性状
表 2の各種培地上における性状はそれぞれ 3 0 °Cで 10 14日間培養後の観察結 果である。
表 2 培 地 気菌糸 溶解性色素 シュークロース · 生育なし 生育なし なし 硝酸塩寒天培地 グルコース · ァスパ 白色〜淡黄色 灰褐色 なし
ラギン寒天培地 グリセロール · ァス 淡黄色 白色、 粉状 なし
パラギン寒天培地 チロシン寒天培地 淡褐色 白色 褐色
栄養寒天培地 黄色 白色 なし
生育わずか イース ト ·麦芽寒天 黄褐色 灰褐色、 粉状 なし
培地 オー ト ミール寒天培 黄褐色 白色 なし
地 ( 3 ) 生理的性質
①生育温度範囲
約 1 5〜 4 0 °C。 生育最適温度: 3 0で付近。
②ゼラチンの液化、 でんぷんの加水分解及び脱脂牛乳のぺプトン化
すべて陽性
③脱脂牛乳の凝固:陰性
④メラニン様色素の生成
チロシン寒天培地上では褐色の色素を生成する。
⑤細胞壁組成
細胞壁組成成分中のジァミノピメリン酸の型についてベッカー (Becker) ら の方法 [アプライド 'マイクロバイオロジー (Appl i ed Mi crobi ol ogy) 第 1 3巻、 p 2 3 6 (1965年) ] により分析した結果、 L , L型であった。
( 4 ) 炭素源の利用性 (プリ ドハム ·ゴッ トリーブ寒天培地)
Lーァラビノース 一
D—キシロース 一
D—グルコース +
D—フラク トース +
L一ラムノース 一
D—ガラクトース +
シユークロース 一
ラフイ ノース 一
D—マンニトール +
イノシトール +
サリ シン +
+ :利用する、 一 :利用しない
以上記述したように、 本発明の改良株の 1つである B21021株の菌学的性質は、 親株である 11011A-1株の菌学的性質といくつかの点において違いが認められる c 例えば、 炭素源の利用性において、 11011A- 1株はサリシンを利用できないが、 B2102 朱は利用できる。 また、 培養性状においても、 シユークロース ·硝酸塩寒 天培地上で、 11011A- 1株は灰褐色の気菌糸が生育するが、 B21021株は生育しない c 栄養寒天培地上では、 11011A- 朱は白色の気菌糸が豊富に生育するが、 B21021株 では気菌糸の生育がわずかである。 さらに溶解性色素が、 11011A- 朱ではグルコ ース ·ァスパラギン寒天培地及びグリセロール ·ァスパラギン寒天培地でも認め られるのに対して、 B21021株では両方の培地ともに認められない。 この様に、 菌 学的性質においても B21021株は親株である 11011A- 1株と明確に区別ができる。 得られた改良株を用いて £ PLを生産するには、 該改良株を培地に接種して培 養し、 培養液から生成蓄積した ε PLを分離、 精製する。 培地としては、 炭素源、 窒素源、 無機物及びその他栄養物を適当に含有する培地ならばいずれも使用でき る。 炭素源としては、 グルコース、 フラク ト一ス、 グリセリン、 スターチ等の該 改良株が資化可能なものなら制限されず、 その含有量は 1〜5 % は g/dl%) が好ましい。 窒素源としては、 ペプトン、 カゼイン加水分解物、 アミノ酸、 無機 アンモニゥ厶塩等いずれでもかまわないが、 好ましくは硫酸アンモニゥ厶である c 窒素源の含有量は、 0.2 〜2%(%は g/dl%)が好ましい。 培養途中で、 炭素源 及び窒素源を逐次添加しても良い。 無機物としてはリン酸イオン、 カリウムィォ ン、 ナトリウムイオン、 マグネシウムイオン、 亜鉛イオン、 鉄イオン、 マンガン イオン、 ニッケルイオン、 硫酸イオン等が挙げられる。 また酵母エキスを 0.1 〜 0.5 % (%は g/dl%) 含有させると、 菌の生育を良好にし、 ε PLの生産におい ても好ましい結果を与える。
培養は、 好気的条件下で振とう培養、 撹拌培養等で行う。 培養温度は 2 5〜3 5°Cが好ましい。 培地の pHは中性付近 (pH 6〜8) が好ましいが、 培養開始 後、 菌の生育とともに pHは低下する。 pHが 4まで低下した時点で、 アルカリ を添加して pHを 4に維持させる。 添加するアル力リはアンモニア水が好ましい 力、 水酸化ナトリウム、 水酸化カリウム等でも差し支えない。 通常 1〜7日間で ε P Lは培養液中に蓄積される。
上記培養液から遠心分離もしくはフィルタ一で菌体を除いたのち、 菌体除去液 を精製、 脱色し、 これを濃縮する。 濃縮液からアセ トン、 エタノール等の有機溶 媒で晶析することにより、 £ PLが得られる。 発明を実施するための最良の形態
本発明を実施例により更に詳細に説明する。
培養液中の P L生産量の測定は、 ィッアキ(Itzhaki)らのアナリティカルバ ィォケミストリ(Analytical Biochemistry), 50, 569、 (1972)に記載の方法により 測定した。 すなわち、 培養液を遠心分離して菌体を除いたのち、 上澄液 (ε Ρ L: 0 〜200〃g ) 2mlと 1 mMメチルオレンジ水溶液 2ndとを混合し、 室温で 3 0分放置後、 生じた ε PL—メチルオレンジコンプレツクスを遠心分離で除き、 その上澄水の 4 6 5 nmにおける吸光度を測定し、 培養液中の e P L量を求める c また、 実施例、 比較例中の%は特に断らない限り重量(g)/容量(dl)%である。 〔実施例 1〕
グルコース 5 %、 酵母エキス 0.5%、 硫酸アンモニゥ厶 1 %、 K2HP04 0.08%、 KH2P04 0.136%、 MgS04 ·7Η20 0.05 %、 ZnS04-7H20 0.004%、 FeS04'7H20 0.003%、 pH 6.8 の培地 2リッ トルを調製し、 3リッ トル容ジャーに入れ、 こ れに取得した改良株であるストレブトマイセス ·アルブラス ·サブスピーシズ · リジノポリメラス B21021株の前培養液 100mlを接種し、 3 0 °C、 7 0 0 rpm、 通 気量 3リ ッ トルノ分で 7 2時間、 好気培養を行った。 ただし、 pHの調整は、 10 %アンモニア水を用いて p H 4に維持した。 また、 グルコース及び硫酸アンモニ ゥムについては、 残存濃度が低下した時点で逐次添加を行った。
7 2時間培養後の £ PL生産量及び対糖収率を表 3に示した。 ここで対糖収率
(%) とは (£ PL生産量 Zグルコース消費量) X I 0 0で表される値のことで ある。
〔実施例 2〕
ストレブトマイセス ·アルブラス ·サブスピ一シズ · リジノポリメラス B21021 株の代わりに、 ストレプトマイセス ·アルブラス 'サブスピ一シズ · リジノポリ メラス B22107株を用いる以外は実施例 1に準拠して培養し、 培養液中の £ PL量 を測定した。 72時間培養後の £ PL生産量及び対糖収率を表 3に示した。
〔実施例 3〕
ストレプトマイセス ·アルブラス ·サブスピ一シズ · リジノポリメラス B21021 株の代わりに、 ストレプトマイセス 'アルブラス 'サブスピ一シズ ' リジノポリ メラス Β222(Π株を用いる以外は実施例 1に準拠して培養し、 培養液中の £ PL量 を測定した。 7 2時間培養後の ε PL生産量及び対糖収率を表 3に示した。
〔比較例 1〕
ストレブトマイセス 'アルブラス■サブスピ一シズ · リジノポリメラス B21021 株の代わりに、 親株であるストレプトマイセス ·アルブラス ·サブスピーシズ · リジノポリメラス 11011A- 朱を用いる以外は実施例 1に準拠して行った。 7 2時 間培養後の P L生産量及び対糖収率を表 3に示した。 表 3 菌 株 P L生産量 対糖収率
( g/1) (¾)
B21021 (実施例 1 ) 16.2 12.1
B22107 (実施例 2 ) 15.6 11.1
B22201 (実施例 3 ) 14.3 13.0
11011A-1 (比較例 1 ) 9.2 7.7
〔実施例 4〕
グルコース 5 %、 酵母エキス 0.5%、 硫酸アンモニゥ厶 1 %、 K2HP0 0.08%、 KH2PO4 0.136%、 MgS04-7H20 0.05 %、 ZnS04'7H20 0.004%、 FeS04-7H20 0.003%、 pH 6.8 の培地 2 リ ッ トルを調製し、 3 リ ッ トル容ジャーに入れ、 こ れに取得した改良株であるストレプトマイセス ·アルブラス ·サブスピーシズ - リジノポリメラス B2102 朱の前培養液 100mlを接種し、 3 0で、 7 0 0 rpm 、 通 気量 3 リ ッ トル Z分で 1 6 8時間、 好気培養を行った。 ただし、 pHの調整は、 10%アンモニア水を用いて pH 4に維持した。 また、 グルコース及び硫酸アンモ ニゥ厶については、 残存濃度が低下した時点で逐次添加を行った。 1 6 8時間培養後の £ P L生産量及び対糖収率を表 4に示した。
〔実施例 5〕
ストレプトマイセス 'アルブラス ·サブスピ一シズ · リジノポリメラス B21021 株の代わりに、 ストレプトマイセス 'アルブラス 'サブスピーシズ · リジノポリ メラス B22107株を用いる以外は実施例 4に準拠して培養し、 培養液中の ε PL量 を測定した。 1 6 8時間培養後の s PL生産量及び対糖収率を表 4に示した。 〔実施例 6 )
ストレプトマイセス ·アルブラス ·サブスピーシズ · リジノポリメラス B21021 株の代わりに、 ストレブトマイセス ·アルブラス ·サブスピーシズ · リジノポリ メラス B222CU株を用いる以外は実施例 4に準拠して培養し、 培養液中の ε PL量 を測定した。 1 6 8時間培養後の ε PL生産量及び対糖収率を表 4に示した。 〔比較例 2〕
ストレプトマイセス ·アルブラス ·サブスピ一シズ · リジノポリメラス B21021 株の代わりに、 親株であるストレブトマイセス ·アルブラス ·サブスピーシズ · リジノポリメラス 11011A-1株を用いる以外は実施例 4に準拠して行った。 1 6 8 時間培養後の £ PL生産量及び対糖収率を表 4に示した。
表 4 菌 株 P L生産量 対糖収率
( g/1) (¾)
B21021 (実施例 4 ) 31.0 12.4
B22107 (実施例 5 ) 28.6 12.6
B22201 (実施例 6 ) 25.0 11.4
11011A-1 (比較例 2 ) 19.1 7.8
〔実施例 7〕 実施例 4で 1 6 8時間培養した培養液について、 この培養液を遠心分離して菌 体を除き、 PH7.5に調整してから、 I RC— 5 0 (カチオン交換樹脂) 、 I R A- 4 0 2 (ァニオン交換樹脂) 、 XT— 1 0 0 6 (カチオン交換樹脂) の各ィ オン交換樹脂で分離、 精製し、 逆浸透膜 (RO) で濃縮して ε PLを得た。 その 収量を表 5に示した。
〔比較例 3〕
比較例 2で 1 6 8時間培養した培養液について、 実施例 7と同様に培養液を遠 心分離して菌体を除き、 PH7.5に調整してから、 I RC— 5 0 (カチオン交換 樹脂) 、 I RA— 4 0 2 (ァニオン交換樹脂) 、 XT— 1 0 0 6 (カチオン交換 樹脂) の各イオン交換樹脂で分離、 精製し、 逆浸透膜で濃縮して、 ?しを得た: その収量を表 5に示した。 表 5
¾ 株 ε P L収量
( S )
B21021 (実施例 7 ) 3 9
11011A-1 (比較例 3 ) 2 4
表 3、 表 4及び表 5の結果から明かなように、 B21021株の ε P L生産量及び対 糖収率はともに、 11011A- 朱のそれに比べて顕著に増大していることが分かる。 産業上の利用可能性
本発明の A EC高濃度耐性を有する改良株は、 高生産かつ高収率で ε PLを生 産する能力を有し、 該生産株を用いることにより、 高い生産性と高収率で PL を製造することが可能である。

Claims

請 求 の 範 囲
1 . £—ポリ一 L —リジンの生産能を有するストレブトマイセス■アルブラス( Streptomyces albulus) 種の微生物を変異処理して得られ、 10mg/ml以上の高濃 度の S— ( 2—アミノエチル) 一 L一システィンに対して耐性を有するど一ポリ 一 Lーリジンを著量に生産する菌株。
2 . ス トレプトマイセス · アルブラス ·サブスピ一シズ · リジノポリメラス (Streptomyces albu l us subsp. lys i nopo l ymerus) 11011A-1株 (微ェ研条寄第 1109号) を変異処理して得られ、 lOmg/ml以上の高濃度の S— (2 —アミノエチ ル) — L—システィンに対して耐性を有する £—ポリ一 Lーリジンを著量に生産 する B21021株 (寄託番号 F E R M B P - 5 9 2 6号) 。
3 . iOmg/ml以上の高濃度の S— ( 2 —アミノエチル) —L—システィンに対し て耐性を有し、 かつ ε —ポリ一 L—リジン生産能を有するストレプトマイセス属 に属する微生物を、 好気的に培地に培養し、 培養液中に生成蓄積した ε —ポリ一 L—リジンを採取することを特徴とする ε —ポリ一 Lーリジンの製造法。
4 . 請求の範囲第 2項記載の B2102 朱を好気的に培地に培養し、 培養液中に生成 蓄積した —ポリ— L—リジンを採取することを特徴とする £ 一 L—リジンの製 造法。
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