WO1993012131A1 - Derives de 2',3'-didesoxy-3'-aminothymidine, leur preparation et leur application en therapeutique - Google Patents
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- WO1993012131A1 WO1993012131A1 PCT/FR1992/001173 FR9201173W WO9312131A1 WO 1993012131 A1 WO1993012131 A1 WO 1993012131A1 FR 9201173 W FR9201173 W FR 9201173W WO 9312131 A1 WO9312131 A1 WO 9312131A1
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07H—SUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
- C07H21/00—Compounds containing two or more mononucleotide units having separate phosphate or polyphosphate groups linked by saccharide radicals of nucleoside groups, e.g. nucleic acids
- C07H21/04—Compounds containing two or more mononucleotide units having separate phosphate or polyphosphate groups linked by saccharide radicals of nucleoside groups, e.g. nucleic acids with deoxyribosyl as saccharide radical
Definitions
- the present invention relates to derivatives of 2 ', 3'-dideoxy-3'-aminothymidine (or amino-dT), their preparation and their application in therapy.
- R is NH 4 + or HO (CH 2 ) 2 -SS- (CH 2 ) 2 -.
- the thin layer chromatographies were carried out on Merck 60F 254 silica plates (art.5554).
- the chromatographies on a silica gel column were carried out with Merck 60 H silica (art. 7736) or with RP2 Merck silanized silica (art. 7719).
- the HPLC analyzes were carried out on a Waters Radial-Pak column (diam .: 8 mm, 1: 100 mm) C 18 with a spherical particle size of 10 ⁇ m. This column is protected by a Guard-Pak precolumn.
- the HPLC system is composed of a U 6 K injector, two M-6000 A pumps, an M-720 programmer
- the HPLC purifications were carried out on a SFCC Nucleosil column (diam .: 19 mm, 1: 150 mm) with a spherical particle size of 10 ⁇ m.
- the HPLC system is composed of a U 6 K injector, two M-510 EF pumps, an M-720 programmer, a M-481 UV detector and a Data Module 746 recorder (Waters) . Elution is carried out with a solution of acetonitrile in water at a flow rate of 6.25 ml per minute. Before analysis, HPLC purification or lyophilization, the solutions were filtered through a Millex HV-4 filter (Millipore).
- UV spectra were recorded on a spectrophotometer
- Mass spectra were taken on a JEOL JMS device DX 300 by the FAB ionization method in a matrix of glycerol (G), glycerol / thioglycerol (GT) or 3-nitrobenzyl alcohol (NBA).
- G glycerol
- GT glycerol / thioglycerol
- NBA 3-nitrobenzyl alcohol
- the proton NMR spectra were recorded on a Varian EM 360 device or on a Br ⁇ ker AC 250 device.
- the chemical shifts are expressed in ppm relative to the tetramethylsilane (TMS) signal.
- the multiplicity and the pace of the signals observed by NMR are indicated by one (or more) letter (s): s (singlet), d (doublet), t (triplet), m (multiplet), 1 (wide).
- the phosphorus NMR spectra were recorded on a Br ⁇ ker WP 200 SY device with decoupling of the proton.
- the chemical shifts are expressed in ppm relative to the H 3 P0 4 signal taken as an external reference.
- the crude is taken up with 82 ml of a 2% iodine solution in the pyridine, water mixture (98: 2).
- the reaction medium is diluted with CH 2 Cl2 containing 1% of Et 3 N and with an aqueous solution of NaHC0 3 , then is treated with an aqueous solution of sodium thiosulfate until the coloring due to iodine.
- the organic phase is separated, washed with water, dried over Na 2 S0 4 , concentrated and coevaporated with toluene.
- Diester 6 (2.27 g, 66%) is obtained after chromatography on a silica gel column (eluent: MeOH (0-10%), And 3 N (0.5%) in CH 2 C1 2 ).
- the organic phase is dried over Na 2 S0 4 , concentrated and coevaporated with toluene.
- the crude is directly deprotected by reaction with 7.5 ml of a 2% solution of benzene sulfonic acid in MeOH in 2 h.
- the acid is neutralized by the addition of a 1 M solution of triethylammonium bicarbonate.
- the aqueous phase is washed with CH 2 Cl2 and concentrated under reduced pressure.
- the crude product obtained is purified by semi-preparative HPLC (nucleosil column C 1 5, eluent: 12% CH 3 CN in a 0.05 M solution of triethylammonium acetate). The appropriate fractions are evaporated and lyophilized 4 times in water.
- the compounds of the invention have been subjected to pharmacological tests showing their advantage in the treatment of viral diseases.
- HIV-1 strain HTLV IIIB
- MT4 cells The multiplication of HIV-1 (strain HTLV IIIB) in MT4 cells is followed by the cytopathic effect induced by the virus.
- the cells are infected with a dose of HIV-1 produisan after 5 days a 90% decrease in the number of living cells.
- the compounds tested are added, after adsorption of the. virus, in the culture medium at different concentrations. The highest concentration used is 10 M.
- the viability of the cells is measured by a colorimetric reaction based on their ability to reduce the bromide of 3- (4,5 dimethylthiazol-2-yl) -2,5 diphenyl-tetrazolium to formazan , property due to mitochondrial dehydrogenases.
- the amount of formazan produced is assessed by measuring the D.O. at 540 nm: this D.O. is proportional to the number of living cells.
- the percentage of protection of infected cells by treatment with the compounds is calculated by applying the formula proposed by Pauwels et al.
- the compounds of the invention exhibit anti-HIV activity
- the toxic effect of the compounds on uninfected MT4 cells is measured by the same colorimetric reaction.
- the 50% cytotoxic dose (CD50) is the concentration of compound causing a halving of the OD 540 by _ * - compared to that of the control cells.
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Abstract
Dérivés de 2',3'-didesoxy-3'-aminothymidine répondant à la formule (I) dans laquelle R est NH4+ ou HO(CH2)2-S-S-(CH2)2-. Application thérapeutique.
Description
DERIVES DE 2' ,3'-DIDESOXY-3'-AMINOTHYMIDINE, LEUR PREPARATION ET LEUR APPLICATION EN THERAPEUTIQUE La présente invention a pour objet des dérivés de 2' ,3'-didésoxy-3'-aminothymidine (ou amino-dT), leur préparation et leur application en thérapeutique.
Les composés de 1'invention répondent à la formule donnée e annexe 1 dans laquelle
R est NH4 + ou HO(CH2)2-S-S-(CH2)2-.
La préparation des composés de l'invention est indiquée ci-après.
Les chromatographies sur couche mince ont été réalisées sur plaques de silice Merck 60F 254 (art.5554). Les chromato¬ graphies sur colonne de gel de silice ont été effectuées av de la silice Merck 60 H (art. 7736) ou avec de la silice silanisée RP2 Merck (art. 7719).
Les analyses CLPH ont été effectuées sur colonne Waters Radial-Pak (diam. : 8 mm, 1 : 100 mm) C18 de granulométrie sphérique de 10 μm. Cette colonne est protégée par une préco lonne Guard-Pak. Le système CLHP est composé d'un injecteur U6K, de deux pompes M-6000 A, d'un programmateur M-720
(Waters), d'un détecteur UV multicanal Pye Unicam PU 4021 et d'un centre de contrôle vidéo PU 4850 (Philipps). L'élution été réalisée avec une solution d'acétonitrile dans un tampon d'acétate d'ammonium 0,1 M (pH 5,9) à un débit de 2 ml par minute (TR temps de rétention).
Les purifications CLHP ont été effectuées sur colonne SFCC Nucléosil (diam.: 19 mm, 1 : 150 mm) de granulométrie sphérique de 10 μm. Le système CLHP est composé d'un injec¬ teur U6K, de deux pompes M-510 EF, d'un programmateur M-720, d'un détecteur UV M-481 et d'un enregistreur Data Module 746 (Waters). L'élution est réalisée avec une solution d'acétoni trile dans l'eau à un débit de 6,25 ml par minute. Avant analyse, purification CLHP ou lyophilisation, les solutions ont été filtrées sur filtre Millex HV-4 (Millipore).
Les spectres UV ont été enregistrés sur un spectrophotomètre
UVIKON 810.
Les spectres de masse ont été pris sur un appareil JEOL JMS
DX 300 par la méthode d'ionisation FAB dans une matrice de glycérol (G), glycérol/thioglycérol (GT) ou d'alcool 3-nitrobenzylique (NBA) .
Les spectres RMN du proton ont été enregistrés sur un appareil Varian EM 360 ou sur appareil Brϋker AC 250.
Les déplacements chimiques sont exprimés en ppm par rapport au signal du tétraméthylsilane (TMS).
La multiplicité et l'allure des signaux observés par RMN son indiquées par une (ou plusieurs) lettre(s) : s (singulet), d (doublet), t (triplet), m (multiplet), 1 (large).
Les spectres RMN du phosphore ont été enregistrés sur un appareil Brϋker WP 200 SY avec découplage du proton. Les déplacements chimiques sont exprimés en ppm par rapport au signal de H3P04 pris comme référence externe.
5'-O-Tertiobutyldimêthylsilyl 3'-amino 2',3'-didésoxythy- midine 2.
A une solution de 8,35 g (34,6 mol.) de 3'-amino-2' ,3'-di- desoxythymidine 1_ dans 250 ml de pyridine sont ajoutés 6,26 (41,5 m ol.) de chlorure de tertiobutyldimétylsilyle. La réaction est laissée 24 h. Le mélange est dilué avec du CHgClg, lavé avec une solution aqueuse de ΝaHC03 puis avec de l'eau. La phase organique est séchée sur Na2S04 et concentrée L'huile obtenue est chromatographiée sur gel de silice
(éluant MeOH (0-10%) dans CH2C12) pour conduire à 11,8 g (96%) de 2 sous forme de mousse.
2UV (EtOH) :max 266 nm (ε 10600) min 233 nm (ε 1700)
SM (FAB positif, GT) : 711 (2M+H)+, 356 (M+H)+, 127 (BH2)+ RMNΗ (DMSO-?e) : δ = 0,07 (s; 6H, (CH3)2Si) ; 0,88 (s, 9H, (CH3)3CSi) ; 1,77 (s, 3H, CH3) ; 2,03 (m, 2H, H-2',2'1) ; 3,38 (m, 1H, H-3*) ; 3,58 (m, 1H, H-4' ) ; 3,72 (dd, 1H, H-51, J = 3,9 et 10,4 Hz) ; 3,83 (dd, 1H, H-5'*, J = 2,8 et 10,4 Hz) ; 6,11 (t, 1H, H-1 ' , J = 6,2 Hz), 7,48 (s,-1H, H-6) ppm.
5'—O- ertiobutyldiméthylsilyl 3'—(__—(4-méthoxytrityl)—amino)
2* ,3'—didésoxythymidine 3.
Le composé 2 (11,7 g ; 32,9 mmol.) est traité par 15,2 g (49,2 mmol.) de chlorure de 4-méthoxytrityle dans 295 ml de pyridine durant 20 h. Le mélange est repris avec du CH2C12 (1 Et3N) , lavé avec une solution aqueuse de NaHC03 puis à l'eau. La phase organique est séchée sur Na2S04, évaporée et coévap rée avec du toluène. Une purification sur colonne de gel de silice (éluant : MeOH (0-3%), Et3N (1%) dans CH2C12) conduit 17,5 g (85%) de 3 sous forme de mousse.
3UV (EtOH) :λ max 266 nm (ε 11300) λ min 254 nm (ε 10200) λ inflex 232 nm (ε 15800)
SM (FAB positif, GT) : 628 (M+H)+, 127 (BH2)+
RM^H (OMSO-d6) : δ = -0,08 et -0,04 (s et s, 3H et 3H, (CH3)2Si) ; 0,79 (s, 9H, (CH3)3CSi) ; 1,10-1,37 (m, 2H, H-2',2'') ; 1,69 (s, 3H, CH3) ; 3,17 (m, 1H, H-3') ; 3,50 (m, 2H, H-4', NH) ; 3,70 (m, 1H, H-5') ; 3,71 (s, 3H, CH3OTr) ; 3,85 (m, 1H, H-5'') ; 6,09 (t, 1H, H-1 ' ; J = 6,9 Hz) ; 6,82-7,47 (m, 14H, Tr), 7,20 (s, 1H, H-6) ppm.
3'-(N-(4-Methoxytrityl)-amino) 2* ,3'-didésoxythymidine 4.
Le traitement de 17,4 g (27,7 mmol.) de 3_ par 83 ml (91 mmol.) d'une solution 1,1 M de fluorure de tetrabutylammoniu dans le THF conduit à 10,2 g (72%) de après évaporation du solvant et 4 chromatographies sur colonne de gel de silice (éluant : MeOH (0-15%), Et3N (0,5%) dans CH2C12) pour chasser les sels de butylaπunonium.
4UV (EtOH) :λ max 265 nm (ε 9900) X min 255 nm (ε 8600) λ inflex 231 nm (ε 14000)
SM (FAB positif, GT) : 514 (M+H)+, 127 (BH2)+ R ^H (DMSO-d5): δ = 1,02-1,19 (m, 1H, H-2') ; 1,19-1,37 (m, 1H, H-2'') ; 1,68 (s, 3H, CH3) ; 2,8 (si, 1H, NH) ; 3,19 (m, 1H, H-3') ; 3,44 (m, 1H, H-5') ; 3,64 (m, 1H, H-5") ; 3,71 (s, 3H, CH30) ; 3,72 (m, 1H, H-4') ; 4,90 (t, 1H, OH, J = 4, Hz) ; 5,97 (t, 1H, H-1', J = 6,5 Hz) ; 6,81-7,55 (m, 14H,
Tr) ; 7 , 55 (s, 1H, H-6 ) ; 1 1 , 2 ( si, 1 H, NHCO) ppm.
O-(3'-(N-(4-méthoxy rityl)-amino) 2',3'-didésoxy- thymidin-5'-y1)-hydrogenophosphonate 5.
Une solution de 6,65 g (97,7 mmol.) d'imidazole dans 69 ml d'acétonitrile est traitée à 0°C par 2,60 ml (29,8 mmol.) de trichlorure de phosphore et 15,3 ml (110 mmol. ) de triéthyl- a ine durant 30'. Ce mélange est additionné à 5,12 g (9,99 mmol. ) de 4 dans 69 ml d'acétonitrile. La phosphorylation est laissée 7 h puis 5 ml d'eau sont additionnés. La solution est alors concentrée sous pression réduite, reprise avec une solution de bicarbonate de triéthylammonium et extraite avec du CH2Cl2* La phase organique est lavée à l'eau, séchée sur sulfate de sodium et évaporée. Le brut est purifié sur colonne de gel de silice (éluant : MeOH (0-20%), Et3N (0,05%) dans CH2Cl2) pour conduire à 5,1 g (75%) de 5.
J5UV (EtOH) :λ max 265 nm (ε 8700) λ min 254 nm (ε 7600) λ inflex 231 nm (ε 12300)
SM (FAB négatif, GT) : 576 (M)"
RMN1H (DMS0-d ) : δ = 1,00-1,50 (m, 2H, H-2',2''), 1,18 (t,
9H, (CH3CH2)3N, J = 7,3 Hz) ; 1,75 (s, 3H, CH3) ; 3,04 (quadruplet, 6H, (CH3CH2)3N, J = 7,3 Hz), 3,21 (m, 1H, H-3') ;
3,60-3,95 (m, 3H, H-4' ,5' ,5' ' ) ; 3,72 (s, 3H, CH3OTr) ; 6,00
(t, 1H, H-V, J = 6,3 Hz) ; 6,61 (d, 1H, HP, J = 585 Hz) ;
6,80-7,55 (m, 14H, Tr) ; 7,66 (s, 1H, H-6) ; 10,5 (si, 1H,
NH) ; 10,8 (si, 1H, NH) ppm RMN31P (DMS0-d$) : δ = 2,055 ppm.
0-0'-bis (3*-N- 4-méthoxy ri yl)-amino) 2',3*didésoxy- thymidin-5'-yl)-phosphate 6. Au mélange de 2,19 g (3,23 mmol.) d'hydrogenophosphonate 5 et de 1,49 g (2,90 mmol.) du nucléoside A dans 42 ml de pyridine sont ajoutés 1,20 ml (9,74 mmol.) de chlorure de pivaloyle. Après 2 h de réaction, le milieu est dilué avec du CH2Cl2, lavé avec une solution aqueuse de NaHC03 puis à l'eau. La
phase organique est séchée sur Na2SÛ4, concentrée et coéva- porée avec du toluène. Le brut est repris avec 82 ml d'une solution d'iode à 2% dans le mélange pyridine, eau (98:2). Après 30', le milieu réactionnel est dilué avec du CH2Cl2 contenant 1% de Et3N et avec une solution aqueuse de NaHC03, puis est traité avec une solution aqueuse de thiosulfate de sodium jusqu'à disparition de la coloration due à l'iode. La phase organique est séparée, lavée avec de l'eau, séchée sur Na2S04, concentrée et coévaporée au toluène. Le diester 6 (2,27 g, 66%) est obtenu après chromatographie sur colonne d gel de silice (éluant : MeOH (0-10%), Et3N (0,5%) dans CH2C12).
6UV (EtOH) :λ max 265 nm (ε 12300) λ min 254 nm (ε 9200) λ inflex 231 nm (ε 15300)
SM (FAB négatif, GT) : 1088 (M)", 816 (MH-MTr)"
RMN1H (DMSO-d6) : δ = 1,08-1,50 (m, 2H, H-2',2'') ; 1,19 (t,
9H, (CH3CH2)3N, J = 7,3 Hz) ; 1,75 (s, 3H, CH3) ; 3,05 (quadruplet, 6H, (CH3CH2)3N, J = 7,3 Hz) ; 3,20 (m, 1H, H-3') ; ≈ 3,4 (m, H-4' masqué par l'eau) ; 3,70 (s, 3H, CH3OTr) ; 3,78 (m, 2H, H-5',5'') ; 6,04 (t, 1H, H-1 ' , J = 6,1 Hz) ; 6,80-7,52 (m, 14H, Tr) ; 10,3 (si, 1H, NH) ; 10,9 (si, 1H, NH) ppm RMN31P (DMSO-d5) : δ = -1,126 ppm.
0,0,-bis(3,-amino-2' ,3'-didésoxy hymidin-5'-yl) phosphate (sel d'ammonium) 7, (composé 1). Le composé 6 (300 mg, 0,252 mmol.) est déprotégé par réactio avec 7,6 ml d'une solution à 2% d'acide benzène sulfonique dans le méthanol pendant 2 h. L'acide est neutralisé par addition d'une solution aqueuse de bicarbonate de triéthylammonium. La phase aqueuse est extraite avec du CH2Cl puis concentrée sous pression réduite. Le résidu obtenu est chromatographie .2 fois sur couche mince de gel de silice (éluant : ammoniaque (10%), eau (10%) dans l'isopropanol) pour conduire, après filtration sur filtre Millipore et lyophilisation dans l'eau, à 41 mg (31%) du diester 1_ sous
forme de sel d'ammonium.
7CLHP : TR : 510 S (99, 4%) (5% CH3CH/Ac ONH4 0,1M) UV (H20) :λ max 266 nm (ε 15000) λ min 235 nm (ε 4000)
SM (FAB négatif, GT) : 543 (M)"; (FAB positif, GT) : 589 (M+2Na)+, 567 (MH+Na)+, 545 (M+2H)+
RMN1H (DMSO-d5) : δ = 1 ,77 (s, 6H, 2CH3) ; 2,00-2,29 (m, 4H, 2H-2',2") ; 3,46 (m, 2H, 2H-3*) ; 3,70 (m, 2H, 2H-4') ; 3,9 (m, 4H, 2H-5*,5'') ; 6,07 (t, 2H, 2H-1 ' , J = 5,4 Hz) ; 7,64 (s, 2H, 2H-6) ppm RMN31P (DMS0-d5) :δ = -0,627 ppm.
0,0'-bis(3'-amino-2*,3*-didésoxy hymidin-5*-yl) 0-(S-(2-hydr xyéthylsulfidyl) 2-thioêthyl) phosphate 8 (composé 2). Un mélange de 300 mg (0,252 mmol.) de diester 6, de 3 5 mg (2,52 mmol.) de 4-méthoxypyridine N-oxyde et de 1,07 g (2,51 mmol.) de 0-mono-(4-méthoxytrityl) dithiodiéthanol (préparé par réaction d'un grand excès de dithiodiéthanol avec du chlorure de 4-méthoxytrityle) en solution dans 63 ml de CH2C1 est traité avec 373 mg (1,26 mmol.) de 1-(2-mésitylène-sul- fonyl) 3-nitro 1 ,2,4-triazole. Après 3 h de réaction, le milieu réactionnel est dilué avec du CH2Cl2. lavé avec une solution aqueuse de NaHC03 puis avec de l'eau. La phase organique est séchée sur Na2S04, concentrée et coévaporée au toluène. Le brut est directement déprotégé par réaction avec 7,5 ml d'une solution à 2% d'acide benzène sulfonique dans le MeOH en 2 h. L'acide est neutralisé par addition d'une solu- tion 1 M de bicarbonate de triethylammonium. La phase aqueuse est lavée avec du CH2Cl2 et concentrée sous pression réduite. Le brut obtenu est purifié par CLHP semi préparative (colonne nucléosil C15, éluant : 12% CH3CN dans une solution 0,05 M d'acétate de triethylammonium). Les fractions appropriées sont évaporées et lyophilisées 4 fois dans l'eau. Après filtration, sur filtre Millipore, une dernière lyophilisation donne 50 mg (25%) de triester 8_ associé à deux molécules d'acide acétique.
8CLHP : TR 320s (94% ; 7 : 4%) (15% CH3CN/AcONH40,1 M) UV (H20) :λ max 265 nm (ε 15700) λ min 234 nm (ε 4100)
SM (FAB positif, GT) : 681 (M+H)+, 545 (M-(OCH2CH2S)2+ H)+ RMN1H (DMS0-d5) :δ = 1,78 (s, 6H, 2CH3) ; 1,89 (s, 6H, 2CH3COO") ; 1,95-2,19 (m, 4H, 2H-2',2") ; 2,77 (t, 2H, CH2CH2OH, J = 6,4 Hz) ; 2,96 (t, 2H, (CH2CH2OP, J = 6,5 Hz) ; 3,40 (m, 2H, 2H-3') ; 3,59 (t, 2H, (CH2CH2)OH, J = 6,4 Hz) ; 3,71 (m, 2H, 2H-4') ; 4,10-4,22 (m, 6H, 2H-5',5'\ CH2CH2OP) 6,14 (dd, 2H, 2H-1 * , J = 5,7 et 6,7 Hz) ; 7,47 et 7, 46 (s e s, 2H, 2H-6) ppm RMN31P (DMSO-d6, D20) :δ = -0,504 ppm.
TABLEAU
Les composés de l'invention ont été soumis à des essais pharmacologiques montrant leur intérêt dans le traitement de maladies virales.
- Evaluation de l'activité anti VIH 1 dans les cellules MT4 MT4 = cellule T humaine transformée par HTLV1 HTLV = human T ly photropic virus.
La multiplication du VIH-1 (souche HTLV IIIB) dans les cellules MT4 est suivie par l'effet cytopathogène induit par le virus.
Les cellules sont infectées avec une dose de VIH-1 produisan après 5 jours une diminution de 90 % du nombre de cellules vivantes.
Les composés testés sont ajoutés, après l'adsorption du . virus, dans le milieu de culture à différentes concentrations. La concentration la plus élevée utilisée est 10 M. La viabilité des cellules est mesurée par une réactio colorimétrique basée sur leur capacité à réduire le bromure de 3-(4,5 diméthylthiazol-2-yl)-2,5 diphényl-tetrazolium en formazan, propriété due aux deshydrogenases mitochondriales. La quantité de formazan produit est appréciée par la mesure de la D.O. à 540 nm : cette D.O. est proportionnelle au nombre de cellules vivantes. Le pourcentage de protection des cellules infectées par le traitement avec les composés est calculé en appliquant la formule proposée par Pauwels et col.
D.O. 540 des cellules D.O. 540 des cellules infectées infectées traitées non traitées
D.O. 540 des cellules D.O. 540 des cellules infectées non infectées non traitées
Les composés de l'invention présentent une activité anti VIH,
L'effet toxique des composés sur les cellules MT4 non infectées est mesuré par la même réaction colorimétrique. La dose cytotoxique 50 % (CD50) est la concentration de composé provoquant une diminution de moitié de la D.O. 540 par
_* - rapport à celle des cellules témoins.
ANNEXE 1
-O-aminodT
Claims
1. Dérivés de 2' ,3'-didésoxy-3'-amino-thymidine répondant à la formule
R est NH4 + ou H0(CH2 )2-S-S- (CH2) 2- -
2. Médicament contenant un dérivé selon la revendication 1.
3. Composition pharmaceutique contenant un dérivé selon la revendication 1 en association avec tout excipient pharmaceutique acceptable.
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| FR91/15421 | 1991-12-12 | ||
| FR9115421A FR2684996A1 (fr) | 1991-12-12 | 1991-12-12 | Derives de 2',3'-didesoxy-3'-aminothymidine, leur preparation et leur application en therapeutique. |
Publications (1)
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Also Published As
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