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TWI419715B - 蛋白質穩定化調配物 - Google Patents

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TWI419715B
TWI419715B TW096147554A TW96147554A TWI419715B TW I419715 B TWI419715 B TW I419715B TW 096147554 A TW096147554 A TW 096147554A TW 96147554 A TW96147554 A TW 96147554A TW I419715 B TWI419715 B TW I419715B
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rhgdf
trehalose
protein
freeze
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TW200840597A (en
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Venkata R Garigapati
Dongling Su
Steven J Sawamura
Rehan Khanzada
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Johnson & Johnson Regenerative Therapeutics Llc
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Description

蛋白質穩定化調配物
本發明係關於穩定骨成形蛋白(BMP's)以及在處理、儲存和重構過程中與生長和分化因子(GDF's)息息相關的配製物和方法。更明確而言,本發明係關於包含海藻糖和其他賦形劑以保護冷凍乾燥、儲存和重構過程中之rhGDF-5的配製物,其包括用作為傳遞rhGDF-5之載劑的各種基質。此外,本發明包括製備及利用此類配製物於處理各種骨骼肌肉缺陷和狀況的方法。
生物分子(biomolecules)具有立體的構造或構象,以及藉由此構造表現其生物活性及特徵。此類生物分子的實例包括去氧核糖核酸(DNA)、核糖核酸(RNA)和蛋白質。這些生物分子為生命所必需,以及為治療各種醫學病症和疾病中的治療劑和標的。蛋白質代表一大類的生物分子。不同種類的蛋白質如酵素、生長因子、受體、抗體和信號分子視構象上構造決定其活性。其他具有一級結構之種類的蛋白質如膠原蛋白和軟骨本身不具有生物活性。
暴露生物分子於各種環境如酸鹼度、溫度、溶劑、滲透濃度等的變異會使生物分子的構態導致不可逆的變化或變性而造成生物性的不活化。不活化這些生物分子的一些機制包括凝聚、氧化、各種類型的鍵斷裂包括水解和脫醯胺作用,以及各種類型的鍵形成包括交聯和其他共價鍵 結,例如雙硫鍵的重排。
骨形成蛋白及息息相關的生長和分化因子(單體和雙體型)屬於TGF-β蛋白質的大家族。此類蛋白包括藉由初步鑑定其誘發異位軟骨內骨生成能力之骨形成蛋白家族的成員(請看Cheng等人,”14種類型之人類骨形成蛋白的成骨活性”J. Bone Joint Surg. Am . 85A:1544~52(2003))。這些蛋白質具有許多別名(請看Lories等人,Cytokine Growth Factor Rev . 16:287~98(2005))。這些家族的全部成員有共通的構造上特徵,包括羧基端活性功能區以及約97~106個胺基酸的成熟長度。全部成員具有產生三個分子內雙硫鍵及一個分子間雙硫鍵之半胱胺酸殘基的高度保留模式。該活性型可為單一家族成員的雙硫鍵型同源雙體或兩種不同成員的異源雙體(請看Massague,Annu. Rev. Cell Biol 6:957(1990);Sampath等人,J. Biol. Chem . 265:13198 (1990);Ozkaynak等人,EMBO J . 9:2085~93(1990);Wharton等人,PNAS 86:4554~58(1989);美國專利案5,011,691和美國專利案5,266,683。
已完善建立許多溶液內以及可保護分離細胞和生物分子的糖穩定化生物分子。這些化合物已被完善建立作為各種的抗凍劑和滲透調節劑(請看Yancey,J. Exper. Biol . 208:2819~30(2005))。為了改善蛋白質的穩定性及延長其儲存期限通常加入糖(多糖和多元醇)以形成冷凍乾燥藥用蛋白。糖穩定化作用的機制有兩種主要的理論:(1)糖賦形劑可作為固態內之蛋白質的稀釋劑,因而減少蛋白質-蛋白 質間的相互作用及避免分子的變質如凝集作用;以及(2)糖賦形劑可提供降低蛋白質移動性及反應性的玻璃基質。在這些機制中,其關鍵為糖維持在非晶形的蛋白質接觸相。各種的環境因子例如增加溫度和濕度能誘發糖的結晶。因此,最適化該條件及使用材料以配適考慮中之特定生物分子及系統極為重要。
冷凍乾燥法(冷凍-乾燥)為通常用於保存生物分子的方法。一般認為冷凍-乾燥比冷凍-融解或溫度誘發變性對生物分子的生物活性更具破壞性。破壞的程度視不同生物分子和不同條件而有極大差異,以及許多研究人員已研究過各種的系統。水溶液的冷凍可初步增加溶質的濃度而較冷凍本身更易破壞不安定化合物。可加入例如糖、蛋白質、聚合物和表面活性劑的賦形劑以穩定生物分子的活性,但是視系統具有侷限性及不同的成功率。Crowe等人述及藉由糖之磷脂質雙層及蛋白質的穩定化作用(Biochem. J . 242:1~10(1987)),以及亦參考”海藻糖神話再探討:乾態內細胞之穩定化作用研討會導論”,Cryobiology 43:89~105 (2001)中細胞之海藻糖的穩定化作用。目前認為維持活性及有效凍乾蛋白上有兩種獨立而不同的要求:(1)在冷凍過程中必需保護該蛋白質;以及(2)在其後的乾燥和重構過程中必需保護該蛋白質。這些為不必然符合任何一賦形劑或條件設定的不同要求。
許多研究人員曾報告利用各種賦形劑保護各種的生物分子,例如Gloger等人(Intl.J. Pharm . 260:59~68(2003)) 述及利用低分子量葡聚醣之aviscumine的凍乾保護作用以穩定化蛋白質,以及顯示該緩衝系統和單獨polysorbate 80適合在冷凍時用於保護蛋白質,但葡聚醣則用於保護在乾燥中的蛋白質;Goodnough等人(Appl. Env. Biol . 58(10:3426~28(1992))利用作為穩定劑的血清白蛋白及各種其他的賦形劑研究在冷凍乾燥中對A型肉毒桿菌毒素的穩定化作用,以及報告無一賦形劑具有任何的有益效應,但從冷凍乾燥混合物中清除NaCl以及藉由控制酸鹼度可戲劇性地恢復活性毒素而戲劇性地獲得改善;Costantino等人(J. Pharm. Sci . 87(11):1412~20(1998))述及各種多糖對冷凍乾燥重組人類生長激素之穩定性和構造上的效應,以及顯示全部受測賦形劑可明顯改善蛋白質的穩定性;Ramos等人(Appl. Envir. Microbiol . 63(10):4020~25(1997))指出2-O-β-甘露糖基甘油酸可有效保護分離自各種熱緊迫來源的數種脫氫酶,以及該2-O-β-甘露糖基甘油酸的保護作用在全部的酵素試驗中類似或優於海藻糖,但無法保護分離自高溫嗜熱菌(P. furiosis)的麩胺酸脫氫酶;Brus等人(J. Control. Rel. 95:119~31(2004))藉由冷凍乾燥研究寡核苷酸-聚乙烯亞胺(PEI)複合物的穩定化作用,以及報告這些複合物無法受益於添加例如蔗糖或海藻糖之糖類,但質粒-PEI複合物則可受益於添加此糖類。由於對各種生物分子的各種測定方法,研究人員有各種不同成功率的報告。這些研究人員無一曾報告其對BMP's的保護作用。
因此,賦形劑提供生物分子凍乾保護的最佳組合在證 據上仍存有衝突性。無任何一種賦形劑的組合最適合用於全部的生物分子,因此需要許多的試驗以獲得用於該生物分子的所欲結果。在冷凍乾燥、儲存和使用的過程中仍亟需一種用於保護BMP's之賦形劑的醫藥上可接受組合。
發明之摘要
本發明一般係關於於各種配製物和組成物內的穩定化BMP's,而可保留至少60%的生物活性及改善儲存要求條件如溫度和濕度。本發明的配製物主要包括用於冷凍乾燥含BMP組成物及其後儲存和重構之作為賦形劑的海藻糖,以及進一步包含其他賦形劑如緩衝劑和表面活性劑。
本發明驚訝地發現海藻糖在冷凍乾燥期間及之後對於保存BMP's的生物活性上足以及優於其他賦形劑。在許多其他生物分子的穩定化中糖類之間僅提供極小差異的保護程度,但對於BMP's則有明顯的差異。此發現提供接受處理各種骨骼肌肉缺陷之組成物的病人對附加賦形劑不產生不良反應。本發明亦驚訝地發現添加例如抗壞血酸和麩胱苷肽(glutathione)之抗氧化劑不會增加以海藻糖冷凍乾燥之BMP的穩定性,而是降低提供自海藻糖的穩定性。
本發明之目的係利用足量的海藻糖以穩定經冷凍乾燥BMP,而使BMP再水合時保留至少60%的生物活性,該再水合液體製品易於被醫生所處理。
本發明的另一目的係利用足量的海藻糖以穩定經冷凍 乾燥BMP、至少一BMP及附加的賦形劑,該附加賦形劑係選自由緩衝劑、表面活性劑及其混合物所構成的群組,而使BMP再水合時保留至少60%的生物活性,該再水合液體製品易於被醫生所處理。
本發明的另一目的係利用足量的海藻糖以穩定經冷凍乾燥BMP、至少一BMP及顆粒膠原纖維以提供用於製備含有穩定BMP及再水合時保留至少60%生物活性之冷凍乾燥生物相容可流動材料的組成物及方法,而使該再水合製品易於被醫生所處理。
本發明的另一目的係利用足量的海藻糖以穩定經冷凍乾燥BMP、至少一BMP及生物相容基質以提供用於製備含有穩定BMP及再水合時保留至少60%生物活性之冷凍乾燥生物相容基質的組成物及方法,而使該再水合製品易於被醫生所處理。生物相容基質的實例包括膠原蛋白;礦化膠原蛋白;磷酸鈣之鹽類;含鈣陶瓷;各種來源的骨骼包括自體、同種異體和異種;以及聚合物包括聚丙交酯(PLA)、聚乙交酯(PGA)、PLA-PGA共聚物、聚碳酸酯、聚己內酯及其混合物。
本發明的另一目的係利用足量的海藻糖以穩定經冷凍乾燥BMP、至少一BMP、生物相容基質和附加賦形劑,該附加賦形劑係選自由緩衝劑、表面活性劑及其混合物所構成的群組,以提供用於製備含有穩定BMP及再水合時保留至少60%生物活性之冷凍乾燥生物相容基質的組成物及方法,而使該再水合可鍛鑄製品易於被醫生所處理。
本發明的另一目的係利用足量之選自由海藻糖、低分子量葡聚醣、環糊精、聚乙二醇、聚乙二醇酯及其混合物所構成之群組的一或多種凍乾保護劑,以穩定經冷凍乾燥BMP及至少一BMP以提供製備經冷凍乾燥BMP而使該BMP再水合時保留至少60%生物活性的組成物及方法,該再水合製品易於被醫生所處理。
本發明的另一目的係利用選自由海藻糖、低分子量葡聚醣、環糊精、聚乙二醇、聚乙二醇酯及其混合物所構成之群組的一或多種凍乾保護劑,至少一BMP及膠原蛋白以提供用於製備含有穩定BMP及再水合時保留至少60%生物活性之冷凍乾燥生物相容膠原蛋白基質的組成物及方法,而使該再水合可鍛鑄製品易於被醫生所處理。
本發明的另一目的係利用選自由海藻糖、低分子量葡聚醣、環糊精、聚乙二醇、聚乙二醇酯及其混合物所構成之群組的一或多種凍乾保護劑,至少一BMP及顆粒膠原纖維以提供用於製備含有穩定BMP及再水合時保留至少60%生物活性之冷凍乾燥生物相容可流動材料的組成物及方法,而使該再水合製品易於被醫生所處理。
本發明又另一目的係利用包含至少一凍乾保護劑和至少一BMP之冷凍乾燥混合物的組成物處理病人。此類組成物可用於處理各種的骨骼肌肉缺陷以促進癒合過程,其可藉由直接塗抹該重構BMP溶液於病人的患部舉例如骨折處、骨縫、骨間隙、椎間盤、軟骨缺陷、韌帶、肌腱等,或塗抹該重構BMP溶液至被植入病人內的裝置例如觸骨人 工植體如人工髖關節、膝關節、肩關節、椎間盤關節等;腱錨(tendon anchor);韌帶錨錠、縫線、縫釘等;置換支架;自體骨質植體;異種骨質植體;脫礦骨質植體等。
在水溶液或乾燥固體內的塊狀BMP並不穩定,以及需要冷藏於-20℃以下以保留該蛋白質的生物活性。由於BMP對凝集、雙硫鍵的再重排、脫醯胺作用和氧化作用具有敏感性,其為配製物保留及保護冷凍乾燥MBP之生物活性所必需。
該冷凍乾燥BMP製品必需具有改良的穩定性和儲存能力。
該冷凍乾燥BMP製品必需可利用水溶液重構以注射入軟組織內例如椎間盤、非人工和人工軟骨以促進該組織的再生。
該冷凍乾燥BMP製品必需提供具有適當濃度BMP以供醫生使用的可植入生物相容支架,因而可減少或消除許多伴隨包括污染、不當劑量和洩漏如浪費和導入非所欲手術部位的危險。
該冷凍乾燥BMP製品必需可被重構於生物相容可流動材料內而易於施用於手術部位。
發明之詳細說明
由於BMP的發現,因此進行大量有關尋找其用於處理各種骨骼肌肉缺陷和狀況之適當組成物的研究。目前含有BMP的市售產品為冷凍乾燥固體,其必需被重構成液體然 後由醫生施予至被植入的支架或在使用時塗抹於手術部位。目前rhBMP-2的配製物係使用蔗糖USP、L-麩胺酸FCC、氯化鈉USP和polysorbate 80 NF作為賦形劑,以及被儲藏於室溫(15~25℃)。目前OP-1的配製物係單獨使用牛膠原蛋白,以及必需被儲存於2~8℃。已發表的報告中並無描述有關賦形劑對重構BMP之穩定性的效力。
在冷凍乾燥期間加強BMP穩定性的其他嘗試包括利用甘露糖醇、蔗糖及其混合物;藉由將BMP嵌入聚合物基質如PLGA內;藉由加入抗氧化劑如甲硫胺酸;藉由加入其他賦形劑如組胺酸、精胺酸、環糊精和牛血清白蛋白;以及藉由加入表面活性劑如TWEEN 80;或其組合。這些嘗試的成功與否受到不同程度的限制。
美國專利案5,318,898和5,516,654中披露利用培養基內的硫酸葡聚糖製造BMP的改良方法,但未討論其達到效益的機制或揭示穩定蛋白質的任何其他有用賦形劑。美國專利案5,385,887中Yim等人披露用於傳遞BMP的冷凍乾燥組成物及配製物,該組成物包含BMP、糖、甘胺酸和麩胺酸。雖然Yim等人披露該冷凍乾燥配製物藉由W-20鹼性磷酸酶檢測法證明可保留生物活性,但未披露在任何數量效益上顯示優於其他任何配製物的比較資料。這些發明者並未討論或確認海藻糖在BMP的冷凍乾燥保護上較蔗糖更為優越。
本發明在一態樣中提供製備穩定冷凍乾燥BMP以於其後用於手術中處理骨骼和軟骨缺陷的組成物及方法。如此 處所預期,此類組成物包含至少一BMP及足以穩定BMP的海藻糖。此類組成物被用於處理各種的骨骼肌肉缺陷,其係直接將該重構蛋白質溶液施予至病人的手術區域例如骨折處、骨縫、骨間隙、椎間盤、預備手術接合的椎間盤空隙、軟骨缺陷、韌帶、肌腱等,或被植入病人體內以與骨骼或軟骨如人工髓關節、人工膝關節、人工肩關節、人工椎間盤關節、腱錨、韌帶錨錠、縫線、縫釘、骨支架、脫礦骨質植體等接觸的材料。
此處名詞”成形素(morphogen)”、”骨成形素”、”骨成形蛋白”、”骨形成蛋白”、"BMP"、”成骨蛋白”、”成骨因子”、”生長和分化因子”和"GDF"均被統一稱為rhGDF-5。然而具有本發明技術者將瞭解rhGDF-5僅代表真正組織成形素能作為BMP而非擬侷限於該描述的TGF-β家族亞群。此處”抗凍劑(cryoprotectant)”一詞指能穩定冷凍過程中之生物分子的分子,其等同於本文中之”凍乾保護劑”一詞,其為能穩定冷凍乾燥(凍乾法)過程中之生物分子的分子。此處”顆粒化”一詞指獲得自及藉由切割、剁碎、篩濾、研磨、粉碎或者縮減生物相容基質如膠原蛋白之體積而縮小個別顆粒或纖維的整體大小。此處”賦形劑”一詞指加入至少一BMP的至少一附加化合物,該附加化合物係選自由胺基酸、蛋白質、緩衝劑、表面活性劑及其混合物所構成的群組。
已知rhGDF-5在pH 4.5至10.5的自然酸鹼度之下具有低溶解度。在此pH範圍內不易配製及製造rhGDF-5製品。因此發明者設計在pH 3和4緩衝液內測定rhGDF-5溶解度 的一種試驗,其對形成蛋白質配製物的適當酸鹼度範圍的選擇上極具關鍵性。該試驗結果述於實例11。該rhGDF-5的溶解度不僅視緩衝液的酸鹼度亦需視該緩衝液的離子強度。在pH 4時,該rhGDF-5溶液在約10毫克/毫升時於5和10毫克分子磷酸鈉緩衝液內呈霧狀,而於50和100毫克分子磷酸鈉緩衝液內該rhGDF-5形成大顆粒而最後被沈澱。在另一試驗(未顯示資料)中當rhGDF-5被配製成於pH 3.5和4之5毫克分子磷酸鹽緩衝液內的3.5毫克/毫升時,該溶液亦呈霧狀。
藉由測量離心或過濾一過飽和/沈澱溶液之後的蛋白質濃度可測定一蛋白質的正常溶解度。然而,一些霧狀蛋白溶液不易被離心或過濾。即使霧狀溶液被離心或過濾以移除(0.22微莫耳)不溶性顆粒之後,其通常因濾過物存有極細小顆粒而仍呈霧狀以及蛋白質有時會黏著於過濾器表面而失去大部分蛋白質所導致的過濾失敗。因此,當配製於pH 3.5或4緩衝液內之3.5毫克/毫升或10毫克/毫升的rhGDF-5時不易獲得清徹的溶液。
當於pH 3.0之5、10和25毫克分子磷酸鈉溶液內配製10毫克/毫升的rhGDF-5時可獲得清徹的蛋白質溶液;但是於較高離子強度溶液如50和100毫克分子磷酸鈉內配製10毫克/毫升的rhGDF-5時則該rhGDF-5溶液呈霧狀。因此,在一較佳具體實施例中該rhGDF-5必需被配製於約pH 3.0之低離子強度的緩衝液內。
根據本發明的一具體實施例中,藉由冷凍乾燥至少一 BMP和可穩定BMP之足量海藻糖的水性混合物製備組成物,製備含生物相容基質的製品時該海藻糖對BMP的乾重量比為每1毫克BMP在約1至約500毫克海藻糖的範圍內,以及每1毫克BMP更佳為在約5至約200毫克海藻糖。添加海藻糖可改善冷凍乾燥配製物內之蛋白質的溶解度和穩定性。根據本技術一般習知的實務進行冷凍乾燥。
在另一具體實施例中,藉由冷凍乾燥至少一BMP、可穩定BMP之足量海藻糖和一緩衝劑的水性混合物製備根據本發明的組成物。加入緩衝劑可改善冷凍乾燥配製物內之蛋白質的溶解度和穩定性。技術中已知的生物相容緩衝劑包括甘胺酸;醋酸之鈉、鉀或鈣鹽;檸檬酸之鈉、鉀或鈣鹽;乳酸之鈉、鉀或鈣鹽;磷酸之鈉或鉀鹽包括單鹼式磷酸鹽、雙鹼式磷酸鹽、三鹼式磷酸鹽及其混合物。加入組成物內的甘胺酸緩衝劑亦可作為充填劑。每1毫克BMP的甘胺酸加入比例為約0.04至約200毫克甘胺酸,以及更佳為每0.04毫克BMP為從約1至約80毫克甘胺酸。緩衝劑和充填劑的加入比單獨含海藻糖之組成物有較優的蛋白質穩定性,其酸鹼度控制在約pH 2.0至約5.0內,以及更佳為在約pH 2.5至約4.5單位內。
在一另類的具體實施例中,根據本發明之組成物及方法的製備係藉由冷凍乾燥至少一BMP、可穩定BMP之足量海藻糖、一緩衝劑和選自由polysorbate 80、polysorbate 20及其混合物所構成群組之表面活性劑的水性混合物。該表面活性劑的加入濃度每1毫克BMP為從約0.001至約0.2 毫克。該加入的表面活性劑藉由改變溶解度和冷凍乾燥特性而提供額外的蛋白質穩定性。可根據技術中習知的一般實務進行冷凍乾燥。
在本發明的另一具體實施例中,製備一穩定冷凍乾燥BMP之組成物和方法為包含至少一BMP、可穩定至少一BMP的足量海藻糖凍乾保護劑以及至少一附加賦形劑,該附加賦形劑係選自由緩衝劑和表面活性劑所構成的群組。此類緩衝劑和表面活性劑的加入與單獨含海藻糖作為賦形劑的組成物比較可增加冷凍乾燥BMP之穩定性的改善程度。
在一另類的具體實施例中,根據本發明之組成物及方法的製備係藉由在冷凍乾燥BMP/膠原蛋白混合物之前沈澱至少一BMP和至少一賦形劑於冷凍乾燥膠原蛋白上。該膠原蛋白視需要可被交聯或礦化,或被交聯和礦化而提供例如被稱為Healos® 的材料及述於美國專利案5,972,385;5,866,165;5,776,193;5,455,231;以及5,231,169。此具體實施例中的組成物特別可有效用於處理骨科上的醫學狀況以及提供易於被醫生置入手術部位以形成骨骼、軟骨或肌腱的柔軟、可鍛鑄材料。該BMP/膠原蛋白混合物可被水溶液包括滅菌水、食鹽溶液和骨髓抽出液所重構,以及可直接被應用於病人的缺陷部位例如骨折處、骨縫、骨間隙、準備用於脊椎融合手術的椎間盤空隙。此外,該BMP/膠原蛋白混合物可被用於充填脊椎融合手術期間置入椎間盤空隙內之骨片和植體間的空隙、損傷或軟骨缺失的區域例如 撕裂或損傷肌腱、撕裂或損傷韌帶、關節軟骨內的軟骨缺陷,以及關節軟骨內的軟骨下缺陷。
在一另類的具體實施例中,根據本發明之組成物及方法的運用係藉由製備至少一BMP及至少一賦形劑的冷凍乾燥混合物,以水、食鹽溶液或骨髓抽出液重構該冷凍乾燥BMP混合物,以及在手術植入該BMP/膠原蛋白混合物之前將該重構BMP溶液置於冷凍乾燥膠原蛋白上。該膠原蛋白視需要可被交聯或礦化,或被交聯和礦化而提供例如被稱為Healos® 的材料。此具體實施例中的組成物特別可有效用於處理骨科上的醫學狀況以及提供易於被醫生置入手術部位以形成骨骼、軟骨或肌腱的柔軟、可鍛鑄材料。該BMP/膠原蛋白混合物可直接被應用於病人的缺陷部位例如骨折處、骨縫、骨間隙、準備用於脊椎融合手術的椎間盤空隙、充填脊椎融合手術期間置入椎間盤空隙內之骨片和植體間的空隙、損傷或軟骨缺失的區域例如撕裂或損傷肌腱、撕裂或損傷韌帶、關節軟骨內的軟骨缺陷,以及關節軟骨內的軟骨下缺陷。此具體實施例的組成物和方法亦藉由與膠原蛋白隔開的BMP成分和容器而易於儲存和製備。
在一另類的具體實施例中,根據本發明之組成物和方法的製備係在冷凍乾燥BMP/顆粒膠原蛋白混合物之前藉由沈澱至少一BMP及至少一賦形劑的溶液於冷凍乾燥顆粒膠原蛋白上。該顆粒膠原蛋白視需要可被交聯或礦化,或交聯及礦化。此類碎塊化可形成約25微米寬乘約110微米長的小塊膠原蛋白纖維,其可成為適合被注入手術部位的 可流動組成物。利用水溶液如滅菌水、食鹽水或骨髓抽出液與膠原凝膠的混合物可重構此類的組成物,該膠原凝膠可控制該重構製品的黏度。該膠原凝膠含有從約0.1至約30%重量/重量的膠原蛋白,以及更佳為從約0.3至約3.0%重量/重量的膠原蛋白,該膠原凝膠的黏度較佳為從約10至約400厘泊,以及更佳為從約70至約100厘泊。該膠原凝膠的酸鹼度較佳為從約4.0至約8.0 pH單位。此類組成物可用於處理各種的骨骼肌肉狀況,包括但不侷限於骨折處、骨縫、骨間隙、準備用於脊椎融合手術的椎間盤空隙、充填脊椎融合手術期間置入椎間盤空隙內之骨片和植體間的空隙、損傷或軟骨缺失的區域例如撕裂或損傷肌腱、撕裂或損傷韌帶、關節軟骨內的軟骨缺陷,以及關節軟骨內的軟骨下缺陷。
在一另類的具體實施例中,根據本發明之組成物及方法的運用係藉由製備至少一BMP及至少一賦形劑的冷凍乾燥混合物,以水、食鹽溶液或骨髓抽出液重構該冷凍乾燥BMP混合物,以及將該重構BMP溶液注入椎間盤內。此具體實施例中的組成物及方法可用於椎間盤的處理。
在下述的實例中,係利用下列的試驗方法:RP-HPLC純化試驗 ,將重構的rhGDF-5試樣以10毫克分子HCl稀釋至0.1毫克/毫升的濃度,以及在50℃和0.3毫升/分鐘流速之下於Vydac 218TP52管柱上進行逆向
-HPLC。利用214奈米下進行UV偵測之0.15%三氟乙酸內的乙腈梯度洗脫rhGDF-5。
圓偏振二旋光譜儀(CD)試驗 ,在AVIV 60DS型的圓偏振二色光譜儀上進行光譜測定。樣本的掃描值減去以對應賦形劑操作的基線安慰劑掃描值。掃描係利用平均殘基重量(115之值)被常態化然後插入下列的方程式:[Θ]=[0.1xM殘基 ]/[濃度(毫克/毫升)x光路徑]在各波長計算[Θ]值而獲得平均殘基橢圓率。最後,二級結構的測量係利用PROSEC 2.1版程式(AVIV聯合實驗室1987年版權所有)進行測定。
在MicroCal VP-DSC儀器上進行微差掃描熱量法(DSC)。掃描速率為60℃/小時。溫度範圍為5~100℃。從加熱受測樣本的掃描值減去儀器的基線掃描值(安慰劑資料)。該蛋白質的濃度為0.33毫克/毫升。
利用偏振光顯微鏡(PLM)進行結晶性測定。在1%相對濕度的乾空氣袋內收集玻璃瓶的微量固體樣本。將該固體樣本分佈於載玻片上然後將一滴矽油滴於該固體樣本上。
接著以配備新立CCD-IRIS/RGB彩色錄相機和偏振光配件的蔡氏(Zeiss)光學顯微鏡觀察該玻片。利用Flash Bus FBG軟體捕捉影像。
於-80℃之10毫克分子HCl內3.8毫克/毫升濃度的冷凍格式內從Biopharm接收大部分的rhGDF-5。在使用配製 物之前將該冷凍本體蛋白質於2~8℃下解凍隔夜。
實例1 :含rhGDF-5(0.5毫克/毫升,5毫升/條)和50毫克/毫升海藻糖的Healos® 條(未滅菌)。各條帶含有2.5毫克的rhGDF-5及250毫克的海藻糖。
製備海藻糖溶液:
小心地稱取25.48克的海藻糖二水合物然後置入滅菌聚丙烯瓶內,在室溫下加入350毫升的純水然後緩慢攪拌直至獲得清徹溶液為止。將0.1當量HCl逐滴加入該清徹溶液使pH調節至3.9,然後以純水調節容積至獲得400毫升的終體積。測定酸鹼度並發現其為pH 4.2。將該溶液過濾通過0.22微米濾過器然後直接用於稀釋該蛋白質溶液。
以海藻糖溶液稀釋rhGDF-5溶液:
將22.39毫升的rhGDF-5溶液小心地置入聚丙烯燒瓶內,小心地加入海藻糖溶液而將容積調節至150毫升;其測得的酸鹼度為pH 2.5。在室溫下將溶液攪拌15分鐘。獲得UV消光係數以準確地計算蛋白質濃度。根據該UV讀數,加入更多的海藻糖溶液以獲得170毫升溶液內0.5毫克/毫升的所欲濃度;其測得的酸鹼度為pH 2.7;UV讀數顯示具有0.499毫克/毫升的蛋白質含量。
將rhGDF-5/海藻糖溶液過濾通過0.22微米濾過器然後將其直接分佈於Healos® 條上。利用滅菌吸管將2.5毫升的 rhGDF-5/海藻糖溶液分佈於條帶上,其各條帶上相當於兩點總共5毫升的rhGDF-5/海藻糖溶液。將條帶插入小型2乘5釐米的PETG盤內,及將小盤插入大PETG盤內然後進行冷凍乾燥。每個大盤內可容納24只條帶。
實例2 :含rhGDF-5(0.5毫克/毫升,5毫升/條)和50毫克/毫升甘露糖醇的Healos® 條(未滅菌)。各條帶含有2.5毫克的rhGDF-5及250毫克的甘露糖醇。
製備海藻糖溶液:
小心地稱取23.03克的甘露糖醇然後置入滅菌聚丙烯瓶內,在室溫下加入350毫升的純水然後緩慢攪拌直至獲得清徹溶液為止。其測得的酸鹼度為pH 7.2;逐滴加入0.1當量HCl使pH調節至3.8;然後以純水調節容積至獲得400毫升的終體積。測定酸鹼度並發現其為pH 3.9。將該溶液過濾通過0.22微米濾過器然後直接用於稀釋該蛋白質溶液。
以甘露糖醇溶液稀釋rhGDF-5溶液:
將22.37毫升的rhGDF-5溶液小心地置入聚丙烯燒瓶內,小心地加入該甘露糖醇溶液而將容積調節至150毫升。其測得的酸鹼度為pH 2.7。在室溫下將溶液攪拌15分鐘。獲得UV消光係數以準確地計算蛋白質濃度。根據該UV讀數,加入更多的甘露糖醇溶液以獲得170毫升溶液內0.5毫克/毫升的所欲濃度;其測得的酸鹼度為pH 2.8;UV讀數顯示具有0.493毫克/毫升的蛋白質含量。
將rhGDF-5/甘露糖醇溶液過濾通過0.22微米濾過器然後將其直接分佈於Healos® 條上。利用滅菌吸管將2.5毫升的rhGDF-5/甘露糖醇溶液分佈於條帶上,其各條帶上相當於兩點總共5毫升的rhGDF-5/甘露糖醇溶液。將條帶插入小型2乘5釐米的PETG盤內,及將小盤插入大PETG盤內然後進行冷凍乾燥。每個大盤內可容納24只條帶。
實例3 :含rhGDF-5(0.5毫克/毫升,5毫升/條)和100毫克/毫升海藻糖的Healos® 條(滅菌)。各條帶含有2.5毫克的rhGDF-5及500毫克的海藻糖。
製備海藻糖溶液:
小心地稱取25.49克的海藻糖二水合物然後置入滅菌聚丙烯瓶內,在室溫下加入190毫升的純水然後緩慢攪拌直至獲得清徹溶液為止。測定該清徹海藻糖溶液的酸鹼度並發現其為pH 6.2。並未加入調節海藻糖溶液酸鹼度的 HCl。以純水調節容積而獲得200毫升的終體積。測定酸鹼度並發現其為pH 6.3。利用此溶液直接稀釋該蛋白質溶液。
以海藻糖溶液稀釋rhGDF-5溶液:
將23.03毫升的rhGDF-5溶液小心地置入聚丙烯燒瓶內,小心地加入海藻糖溶液而將容積調節至170毫升。其測得的酸鹼度為pH 3.0。在室溫下將溶液攪拌15分鐘。獲得UV消光係數以準確地計算蛋白質濃度。根據該UV讀數,加入更多的海藻糖溶液以獲得175毫升溶液內0.5毫克/毫升的所欲濃度;其測得的酸鹼度為pH 3.0;UV讀數顯示具有0.518毫克/毫升的蛋白質濃度。
將rhGDF-5/海藻糖溶液過濾通過0.22微米濾過器然後將其直接分佈於滅菌Healos® 條上。利用滅菌吸管將2.5毫升的rhGDF-5/海藻糖溶液分佈於條帶上,其各條帶上相當於兩點總共5毫升的rhGDF-5/海藻糖溶液。將條帶置於不銹鋼盤上,其被小心地包裝入滅菌雙囊袋內然後在滅菌條件下進行冷凍乾燥。
實例4 :含低劑量rhGDF-5(5毫克/條,0.5毫克/毫升)、40毫克/毫升海藻糖和10毫克/毫升甘胺酸的Healos® 條(滅菌)。各條帶含有2.5毫克的rhGDF-5、200毫克的海藻糖和50毫克的甘胺酸。
製備海藻糖/甘胺酸溶液:
小心地稱取17.84克的海藻糖二水合物和4.03克的甘胺酸然後置入滅菌聚丙烯瓶內,在室溫下加入300毫升的純水然後緩慢攪拌直至獲得清徹溶液為止。測定酸鹼度並發現其為pH 5.5。在不加入任何酸之下以純水將容積調節至350毫升。測定酸鹼度並發現其為pH 5.5。
以海藻糖/甘胺酸溶液稀釋rhGDF-5溶液:
將39.47毫升的rhGDF-5溶液小心地置入聚丙烯燒瓶內,小心地加入海藻糖/甘胺酸溶液而將容積調節至295毫升。其測得的酸鹼度為pH 4.1。在室溫下將溶液攪拌15分鐘。獲得UV消光係數以準確地計算蛋白質濃度。根據該UV讀數,加入更多的海藻糖溶液以獲得300毫升溶液內0.5毫克/毫升的所欲濃度;其測得的酸鹼度為pH 4.1;UV讀數顯示具有0.507毫克/毫升的蛋白質濃度。
將溶液過濾通過0.22微米濾過器然後將其直接分佈於滅菌Healos® 條上。利用滅菌吸管將2.5毫升的rhGDF-5/海藻糖/甘胺酸溶液分佈於條帶上,其各條帶上相當於兩點總共5毫升的rhGDF-5溶液。將條帶置於不銹鋼盤上,其 被小心地包裝入滅菌雙囊袋內然後在滅菌條件下進行冷凍乾燥。
實例5 :含rhGDF-5(0.5毫克/毫升;2.5毫克/條)、40毫克/毫升海藻糖、10毫克/毫升甘胺酸和0.1毫克/毫升polysorbate 80的Healos® 條(滅菌)。各條帶含有2.5毫克的rhGDF-5、200毫克的海藻糖、50毫克的甘胺酸和0.5毫克的polysorbate 80。
製備polysorbate 80溶液:
稱取23.03毫克的polysorbate 80並置入50毫升滅菌可拋棄式試管內,加入25毫升的純水然後振盪2分鐘而獲得均質的溶液。
製備海藻糖/甘胺酸/polysorbate溶液:
小心地稱取10.19克的海藻糖二水合物和2.303克的甘胺酸然後置入滅菌聚丙烯瓶內,然後加入25毫升上述的polysorbate 80溶液。以25毫升純水淋洗聚山梨糖醇酯試管兩次然後置入海藻糖/甘胺酸/聚山梨糖醇酯溶液。將額外量的純水加入海藻糖/甘胺酸/聚山梨糖醇酯溶液而使其達到190毫升的總容積。將溶液攪拌2分鐘而獲得清徹溶液。測定酸鹼度並發現其為pH 5.6;以純水將容積調節至200毫升。測定酸鹼度並發現其為pH 5.5。
以海藻糖/甘胺酸/聚山梨糖醇酯溶液稀釋rhGDF-5溶液:
將23.03毫升的rhGDF-5溶液小心地置入聚丙烯燒瓶內,小心地加入海藻糖/甘胺酸/聚山梨糖醇酯溶液而將容積調節至170毫升。其測得的酸鹼度為pH 4.1。在室溫下將溶液攪拌15分鐘。獲得UV消光係數以準確地計算蛋白質濃度。根據該UV讀數,加入更多的海藻糖/甘胺酸/聚山梨糖醇酯溶液以獲得175毫升溶液內0.5毫克/毫升的所欲濃度;其測得的酸鹼度為pH 4.1;UV讀數顯示具有0.510毫克/毫升的蛋白質濃度。將溶液過濾通過0.22微米濾過器然後在無菌狀態的層流操作台內將其直接分佈於滅菌 Healos® 條上。利用滅菌吸管將2.5毫升的rhGDF-5/海藻糖/甘胺酸/聚山梨糖醇酯溶液分佈於條帶上,其各條帶上相當於兩點總共5毫升的rhGDF-5/海藻糖/甘胺酸/聚山梨糖醇酯溶液。將條帶置於不銹鋼盤上,其被小心地包裝入滅菌雙囊袋內然後在滅菌條件下進行冷凍乾燥。
實例6 :含rhGDF-5(0.5毫克/毫升)加海藻糖(50毫克/毫升)的冷凍乾燥玻璃瓶製品。
製備海藻糖溶液:
將12.16克的海藻糖二水合物置入滅菌聚丙烯瓶內然後磁棒攪拌,於室溫下加入190毫升的純水。在室溫下攪拌該溶液直至海藻糖完全溶解為止。其測得的酸驗度為pH 6.5。將0.1當量HCl逐滴加入該清徹的海藻糖溶液而將酸鹼度調節至pH 5.8。以純水將體積調節至200毫升;其測得的酸鹼度為pH 5.5。將溶液過濾通過0.22微米濾過器然 後直接用於稀釋該蛋白質溶液。
以海藻糖溶液稀釋rhGDF-5溶液:
將14.47毫升的rhGDF-5溶液小心地置入聚丙烯燒瓶內,緩慢地加入海藻糖溶液而在攪拌中將其調節至100毫升終體積。在室溫下將溶液斷續攪拌15分鐘;其測得的酸鹼度為pH 3.0。根據UV讀數,加入更多的海藻糖溶液以獲得110毫升溶液內0.5毫克/毫升的所欲濃度;其測得的酸鹼度為pH 3.1;UV讀數顯示具有0.510毫克/毫升的蛋白質濃度。將溶液過濾通過0.22微米濾過器然後直接被分配入玻璃瓶內。
充填玻璃瓶:將1.1毫升的rhGDF-5/海藻糖溶液以人工分配入5毫升的第1型火石玻璃瓶內,然後在置入冷凍乾燥機內前以瓶塞部分封閉各玻璃瓶。冷凍乾燥之後,將瓶塞壓實然後摺皺封口。其可獲得白色至灰白色餅狀的產物。
實例7 :含rhGDF-5(0.5毫克/毫升)加甘露糖醇(50毫克/毫 升)的冷凍乾燥玻璃瓶製品
製備甘露糖醇溶液:
將11.52克的甘露糖醇置入滅菌聚丙烯瓶內然後磁棒攪拌,於室溫下加入185毫升的純水。在室溫下將混合物攪拌10分鐘直至甘露糖醇完全溶解為止。其測得的酸鹼度為pH 6.6。將0.1當量HCl逐滴加入該清徹溶液而將酸鹼度調節至pH 5.5。以純水將體積調節至200毫升;其測得的酸鹼度為pH 5.7。將溶液過濾通過0.22微米濾過器然後直接用於稀釋該蛋白質溶液。
以甘露糖醇溶液稀釋rhGDF-5溶液:
將14.48毫升的rhGDF-5溶液小心地置入聚丙烯燒瓶內;小心地加入甘露糖醇溶液而將其調節至100毫的體積。在室溫下將溶液攪拌15分鐘。獲得UV消光係數以準確地計算蛋白質濃度。根據UV讀數,加入更多的甘露糖醇溶液以獲得110毫升溶液內0.5毫克/毫升的所欲蛋白質濃度;其測得的酸鹼度為pH 3.1;UV讀數顯示具有0.498毫克/毫升的蛋白質濃度。將溶液過濾通過0.22微米濾過器然後直接被分配入玻璃瓶內。
充填玻璃瓶:將1.1毫升的甘露糖醇/rhGDF-5溶液以人工分配入5毫升的第1型火石玻璃瓶內,然後在置入冷凍乾燥機內前以瓶塞部分封閉各玻璃瓶。冷凍乾燥之後,將瓶塞壓實然後摺皺封口。其可獲得白色至灰白色餅狀的 產物。
實例8 :甘胺酸-HCl pH 3.0緩衝液內rhGDF-5(0.5毫克/毫升)加海藻糖(50毫克/毫升)的冷凍乾燥玻璃瓶製品
製備海藻糖溶液:
將12.16克的海藻糖二水合物置入滅菌聚丙烯瓶內然後磁棒攪拌,於室溫下加入200毫升的5毫克分子甘胺酸-HCl pH 3.0緩衝液。在室溫下攪拌溶液直至海藻糖完全溶解為止。海藻糖/甘胺酸溶液的酸鹼度為pH 3.1。將溶液過濾通過0.22微米濾過器然後直接用於稀釋該蛋白質溶液。
以海藻糖溶液稀釋rhGDF-5溶液:
在2~8℃下利用3000分子量的阻隔膜以5毫克分子甘胺酸-HCl緩衝液將本體rhGDF-5溶液透析隔夜。該溶液在透析之後被稍濃縮至3.8毫克/毫升。將14.47毫升的rhGDF-5溶液小心地置入聚丙烯燒瓶內,緩慢地加入海藻糖-甘胺酸溶液而在攪拌中調節至100毫升終體積。在室溫下將溶液斷續攪拌15分鐘;其測得的酸鹼度為pH 3.0。根據UV讀數,加入更多的海藻糖-甘胺酸溶液以獲得110毫升溶液內0.5毫克/毫升的所欲蛋白質濃度;其測得的酸鹼 度為pH 3.0;UV讀數顯示具有0.507毫克/毫升的蛋白質濃度。將溶液過濾通過0.22微米濾過器然後直接被分配入玻璃瓶內。
充填玻璃瓶:將1.1毫升的rhGDF-5/海藻糖溶液以人工分配入5毫升的第1型火石玻璃瓶內,然後在置入冷凍乾燥機內前以瓶塞部分封閉各玻璃瓶。冷凍乾燥之後,將瓶塞壓實然後摺皺封口。其可獲得白色至灰白色餅狀的產物。
實例9 :pH 3.0磷酸鹽緩衝液內rhGDF-5(0.5毫克/毫升)加海藻糖(50毫克/毫升)的冷凍乾燥玻璃瓶製品
製備海藻糖溶液:
將12.16克的海藻糖二水合物置入滅菌聚丙烯瓶內然後磁棒攪拌,於室溫下加入200毫升的5毫克分子pH 3.0磷酸鹽緩衝液。在室溫下攪拌溶液直至海藻糖完全溶解為止。海藻糖/磷酸鹽緩衝液的酸鹼度為pH 3.0。將溶液過濾通過0.22微米濾過器然後直接用於稀釋該蛋白質溶液。
以海藻糖溶液稀釋rhGDF-5溶液:
在2~8℃下利用3000分子量的阻隔膜以磷酸鹽緩衝液將本體rhGDF-5溶液透析隔夜。該溶液在透析之後被稍濃縮至3.8毫克/毫升。將14.47毫升的rhGDF-5溶液小心地置入聚丙烯燒瓶內,緩慢地加入海藻糖/磷酸鹽緩衝液而在攪拌中調節至100毫升終體積。在室溫下將溶液斷續攪拌15分鐘;其測得的酸鹼度為pH 3.0。根據UV讀數,加入更多的海藻糖/磷酸鹽緩衝液以獲得110毫升溶液內0.5毫克/毫升的所欲蛋白質濃度;其測得的酸鹼度為pH 3.0;UV讀數顯示具有0.50毫克/毫升的蛋白質濃度。將溶液過濾通過0.22微米濾過器然後直接被分配入玻璃瓶內。
充填玻璃瓶:將1.1毫升的rhGDF-5/海藻糖溶液以人工分配入5毫升的第1型火石玻璃瓶內,然後在置入冷凍乾燥機內前以瓶塞部分封閉各玻璃瓶。冷凍乾燥之後,將 瓶塞壓實然後摺皺封口。其可獲得白色至灰白色餅狀的產物。
實例10 :含2.5毫克rhGDF-5和250毫克海藻糖的顆粒膠原管
製備海藻糖溶液:
小心地稱取9.56克的海藻糖二水合物然後置入滅菌聚丙烯瓶內,在室溫下加入145毫升的純水然後緩慢攪拌直至獲得清徹溶液為止。測定該清徹海藻糖溶液的酸鹼度並 發現其為pH 5.3。以純水調節容積至獲得150毫升的終體積。測定溶液的酸鹼度並發現其為pH 5.3。溶液直接被用於稀釋該蛋白質溶液。
以海藻糖溶液稀釋rhGDF-5溶液:
將16.45毫升的rhGDF-5溶液小心地置入聚丙烯燒瓶內,小心地加入海藻糖溶液而將容積調節至120毫升;其測得的酸鹼度為pH 2.9。在室溫下將溶液攪拌15分鐘。獲得UV消光係數以準確地計算蛋白質濃度。根據該UV讀數,加入更多的海藻糖溶液以獲得125毫升溶液內0.5毫克/毫升的所欲蛋白質濃度;其測得的酸鹼度為pH 2.9;UV讀數顯示具有0.498毫克/毫升的蛋白質濃度。
含rhGDF-5/海藻糖溶液之顆粒膠原管的劑量:
將溶液過濾通過0.22微米濾過器然後使該溶液直接分配於包裝在鐵氟龍模內的預成形顆粒膠原管。各管在冷凍乾燥之前置入5毫升的rhGDF-5/海藻糖溶液。
表11資料顯示沈澱於Healos® 上及經冷凍乾燥之無任何賦形劑的rhGDF-5在-20℃下為穩定,但在2~8℃下則否,其證明為2~8℃樣本之RP-HPLC試驗內出現後期的透析峰,但-20℃樣本則否。
形成不同樣本所製造含賦形劑的可流動顆粒膠原蛋白/rhGDF-5和可溶性膠原凝膠,以及評估各樣本的性能、穩定性和易製造性。
顆粒膠原蛋白實例1:
●冷凍乾燥成乾態的顆粒膠原管和rhGDF-5●濕態的膠原凝膠被分開放置●均被分開放置於2~8℃的分開針筒內●注射前均被混合
顆粒膠原蛋白實例2:
●顆粒膠原管、rhGDF-5和膠原凝膠被共同混合成濕態
(未冷凍乾燥)
●全被被置於2~8℃之濕態的單一針筒內;備用
顆粒膠原蛋白實例3:
●顆粒膠原管、rhGDF-5和膠原凝膠被冷凍乾燥成濕態●全被被置於2~8℃之乾態的單一針筒內●注射前以水再水合
顆粒膠原蛋白實例4:
●糊狀的顆粒膠原管和膠原凝膠●rhGDF-5以乾態分開放置●均被分開放置於2~8℃的分開針筒內●注射前均被混合
顆粒膠原蛋白實例5:
●乾態的顆粒膠原管和膠原凝膠●rhGDF-5以乾態分開放置●均被分開放置於2~8℃的分開針筒內●以滅菌水或骨髓抽出液重構rhGDF-5●注射前以重構rhGDF-5溶液混合乾顆粒膠原及膠原蛋白
利用下述技術測定rhGDF-5的穩定性:
在有和無緩衝劑和抗氧化劑之下含數種賦形劑如甘露 糖醇、蔗糖和海藻糖的RP-HPLC、微差掃描熱量法(DSC)、圓偏振二旋光譜儀(CD)、偏振光顯微鏡(PLM)和生物檢定法。數種含蔗糖之rhGDF-5的冷凍乾燥配製物在儲藏期間會形成不需要的黃色及玻璃渣構造因而不被使用。
利用DSC研究冷凍乾燥rhGDF-5配製物的熔化特性。該DSC資料證明海藻糖和甘露糖醇化配製物可明顯改善本體rhGDF-5的熱穩定性。第1、2和3圖為與本體rhGDF-5對照之rhGDF-5海藻糖配製物和甘露糖醇配製物的DSC曲線比較。本體rhGDF-5顯示兩種主要的轉變:一種接近40℃及另一種接近85℃。該高溫的轉變可能代表蛋白質的熱伸展。有意思的是必需指出存在賦形劑時第一吸熱轉變的熔解溫度(Tm )增加7~14℃。當單獨考慮時,此試驗認為作為穩定劑的海藻糖和甘露糖醇均具有相同的效益。
第4圖為海藻糖/rhGDF-5配製物的偏振光顯微鏡(PLM)圖。該樣本未呈現顯著的雙折射現象。因此,該系統為適合用於治療用途的非晶態。第5圖為經過一段儲存期之後甘露糖醇/rhGDF-5配製物的PLM。觀察樣本內的許多結晶,顯示甘露糖醇在儲存過程中被結晶化。此結果認為海藻糖為用於rhGDF-5的較佳凍乾劑。遠紫外線CD顯示海藻糖化配製物與原生本體蛋白質比較具有二級結構分佈。
冷凍乾燥rhGDF-5藉由含各種賦形劑之RP-HPLC的即時穩定性試驗證明含或不含緩衝劑及聚山梨糖醇酯之50或100毫克/毫升海藻糖的rhGDF-5可改善rhGDF-5在2~8℃及15~25℃儲存條件下的穩定性,同時甘露糖醇在類似儲存 條件下則無法提供相同程度穩定性。
凍乾渣配製物的即時穩定性試驗清楚顯示甘露糖醇無法穩定化蛋白質,其證據為在室溫及2~8℃儲存條件下主峰明顯地降低及凝集峰的增加。由於會導致免疫反應及副作用,因此凝集物為蛋白質配製物內最有害的種類。對照之下,海藻糖在即時穩定性試驗中特別於2~8℃儲存條件下藉由抑制形成凝集物及其主峰的保護明顯可穩定化該蛋白質。因此海藻糖在穩定配製物內之rhGDF-5中優於甘露糖醇。同樣,該即時穩定性資料顯示rhGDF-5/海藻糖配製物含有作為緩衝劑之控制酸鹼度的磷酸鹽或甘胺酸而優於不含緩衝劑的rhGDF-5/海藻糖配製物。該即時穩定性資料顯示rhGDF-5海藻糖/甘胺酸配製物的理想儲藏溫度為2~8℃,其亦適合儲藏於25℃。
除了海藻糖化rhGDF-5配製物的有利生物化學和生物物理學資料之外,這些配製物在鹼性磷酸酶生物檢測中亦顯示具有活性。在體外分析的物理化學檢測法和即時穩定性資料顯示海藻糖在穩定化用於處理各種骨骼肌肉障礙之單獨冷凍乾燥rhGDF-5製品及膠原蛋白化組合物製品上為極佳的賦形劑。
實例11 :在不同離子強度溶液及兩種pH緩衝液(pH 3和pH 4)內rhGDF-5的溶解度
本試驗使用各種離子強度的磷酸鈉緩衝液。將本體蛋白質溶液濃縮至約10毫克/毫升及在pH 3和pH 4以5、10、 25、50和100毫克分子磷酸鹽緩衝液進行透析。透析之後,檢查樣本的清徹度及在UV-Vis分光光度計上分析蛋白質的濃度。其細節詳述如下。
製備緩衝液 pH 3的100毫克分子磷酸鹽緩衝液:
將13.5毫升的濃H3 PO4 (14.8克分子)溶液置入2000毫升燒杯內,然後加入去離子水至1900毫升刻度處。以NaOH溶液將該溶液滴定至pH 3然後置入2000毫升量筒內。加入額外的水使其達2000毫升。將內容物置回燒杯內然後混合均勻。
pH 3的50毫克分子磷酸鹽緩衝液:
將6.76毫升的濃H3 PO4 (14.8克分子)溶液置入2000毫升燒杯內,然後加入去離子水至1900毫升刻度處。以NaOH溶液將該溶液滴定至pH 3然後置入2000毫升量筒內。加入額外的水使其達2000毫升。將內容物置回燒杯內然後混合均勻。
pH 3的25毫克分子磷酸鹽緩衝液:
將3.39毫升的濃H3 PO4 (14.8克分子)容液置入2000毫升燒杯內,然後加入去離子水至1900毫升刻度處。以NaOH溶液將該溶液滴定至pH 3然後置入2000毫升量筒內。加入額外的水使其達2000毫升。將內容物置回燒杯內然後混 合均勻。
pH 3的10毫克分子磷酸鹽緩衝液:
將1.35毫升的濃H3 PO4 (14.8克分子)溶液置入2000毫升燒杯內,然後加入去離子水至1900毫升刻度處。以NaOH溶液將該溶液滴定至pH 3然後置入2000毫升量筒內。加入額外的水使其達2000毫升。將內容物置回燒杯內然後混合均勻。
pH 3的5毫克分子磷酸鹽緩衝液:
將0.376毫升的濃H3 PO4 (14.8克分子)溶液置入2000毫升燒杯內,然後加入去離子水至1900毫升刻度處。以NaOH溶液將該溶液滴定至pH 3然後置入2000毫升量筒內。加入額外的水使其達2000毫升。將內容物置回燒杯內然後混合均勻。
製備樣本
在2~8℃下熔解本體蛋白質rhGDF-5(批號2142131)。利用離心過濾裝置(Pall Life科學公司,貨號OD010C37,10K MWCO)將該本體蛋白質溶液(3.8毫克/毫升之24毫升)濃縮至約6毫升的體積。將0.9毫升之濃縮rhGDF-5溶液置入各透析膜卡匣(Pierce,貨號66380)及在室溫下以磷酸鹽緩衝液透析隔夜。小心地從透析膜卡匣移除該濃縮rhGDF-5溶液然後置入小玻璃瓶內以檢查溶液清徹度。如 分析法一節中所述在UV-Vis分光光度計上測定蛋白質的濃度。
在pH 4的溶解度
藉由添加更多NaOH溶液至該pH 3緩衝液內而從pH 3緩衝液製備pH 4的緩衝液。在室溫下以pH 4緩衝液將該蛋白質溶液透析隔夜。分析該樣本的溶液清徹度及蛋白質濃度。
分析方法
檢查小玻璃瓶內之溶液樣本的清徹度及顆粒。利用黑色背景的垂直光線檢查該樣本玻璃瓶。比較該受測樣本與作為對照之純水樣本的清徹度。直接利用刻度酸鹼度計測定各溶液樣本的酸鹼度。
結果
10毫克/毫升rhGDF-5溶液之溶解度試驗結果顯示在5、10和25毫克分子磷酸鈉的較低離子強度緩衝液可形成清徹溶液而具有較佳的溶解度,同時在50和100毫克分子磷酸鈉的較高離子強度緩衝液則形成混濁溶液而具有較差的溶解度。在25、50和100克分子的磷酸鈉緩衝液於離心後形成清徹溶液,但具有接近0的蛋白質回收率,此表示該蛋白質已被沈澱。因此,接近pH 3的低離子強度緩衝液將優於在較高pH的高離子強度緩衝液。
實例12 :於含有5%海藻糖的各種緩衝液內rhGDF-5在各種溫度下的穩定性
在此試驗中測定各種緩衝液在冷凍乾燥及儲藏於5℃期間對0.7毫克/毫升rhGDF-5於5%海藻糖溶液內的保護效應。該受測緩衝液為pH 3的5毫克分子甘胺酸-HCl、pH 3的5毫克分子磷酸鈉、pH 3的5毫克分子檸檬酸鈉、pH 3的10毫克分子乳酸鈉、水中的0.01%TFA、1毫克分子的HCl,及於1毫克分子HCl內不含海藻糖的對照rhGDF-5溶液。依如下方法製備緩衝液:
pH 3的5毫克分子甘胺酸緩衝液:
將0.75克甘胺酸(分子量75.05克)及1900毫升的去離子水置入2000毫升的燒杯內;在攪拌下以HCl溶液將該溶液滴定至pH 3。加入額外的水使其達2000毫升然後攪拌均勻。
pH 3的5毫克分子檸檬酸鹽緩衝液:
將2.11克檸檬酸單水合物(分子量210.14)及1900毫升的去離子水置入2000毫升的燒杯內;以NaOH溶液將該溶液滴定至pH 3。加入額外的水使其達2000毫升然後攪拌均勻。
pH 3的5毫克分子磷酸鹽緩衝液:
將0.676毫升磷酸鹽溶液(14.8莫耳)置入含1900毫升 去離子水的2000毫升燒杯內;以NaOH溶液將該溶液滴定至pH 3。加入額外的水使其達2000毫升然後攪拌均勻。
pH 3的10毫克分子乳酸鹽緩衝液:
將1.81克乳酸(分子量90.08)和1900毫升去離子水充填入2000毫升燒杯內;以NaOH溶液將獲得的溶液滴定至pH 3。加入額外的水使其達2000毫升然後攪拌均勻。
1毫克分子HCl溶液:
將1毫升的2當量HCl溶液置入含1900毫升去離子水的2000毫升燒杯內。藉由加入更多的去離子水將溶液的終體積調節至2000毫升刻度。
0.01%的TFA溶液:
將0.2毫升的TFA溶液置入含1900毫升去離子水的2000毫升燒杯內。藉由加入額外水將溶液終體積調節至2000毫升然後均勻混合該溶液。
製備配製物
在2~8℃下熔解本體蛋白質rhGDF-5(批號2142131)。利用離心過濾裝置(Pall Life科學公司,貨號OD010C37,10K MWCO)將該本體蛋白質溶液(3.8毫克/毫升之55毫升)濃縮至約10毫升的體積。將約1.4毫升之濃縮rhGDF-5溶液置入各透析膜卡匣(Pierce,貨號66380)及在2~8℃下以該 受測緩衝液將該卡匣透析隔夜。
小心地從透析膜卡匣移除該rhGDF-5溶液然後置入小玻璃瓶內。利用UV-Vis分光光度計測定該溶液的蛋白質濃度。在受測緩衝液內以含5%(重量/體積)海藻糖的約0.7毫克/毫升配製該蛋白質然後過濾通過0.22微米濾過器。在冷凍乾燥之前將該溶液儲藏於2~8℃。
充填和冷凍乾燥
將各配製溶液以1毫升/瓶充填入3毫升玻璃瓶(West Phar. Services,貨號68000316)。以塞子(West Phar. Services,貨號99150630)部分封閉玻璃瓶然後置入冷凍乾燥機(FTS System,LyoStar II)。將熱電偶計置入安慰瓶內以監控冷凍乾燥的過程。亦測定無海藻糖作為對照的另一配製物。將1毫克分子HCl溶液內200微升的4.5毫克/毫升rhGDF-5置入各玻璃瓶然後冷凍乾燥。
分析方法 凍乾渣的完整性
在各時間點檢查冷凍乾燥樣本之凍乾渣的裂痕、收縮率和塌陷。
重構時間
將1毫升去離子水加入各冷凍乾燥樣本然後緩慢地混合。記錄其重構時間。
溶液清徹度-視覺外觀
檢查小玻璃瓶內之溶液樣本的清徹度和顆粒。利用黑色背景的垂直光線檢查該樣本玻璃瓶。比較該受測樣本與作為對照之純水樣本的清徹度。
酸鹼度
利用刻度pH計直接測定各溶液樣本的酸鹼度。
UV光譜分析儀
利用UV-Vis分光光度計測定蛋白質濃度。利用在280奈米之1.16毫升/毫克*釐米的消光係數計算rhGDF-5的濃度。
HPLC法
利用非還原rpHPLC法(TM 0051 D)監控蛋白質的改良品種。以50毫克分子醋酸將受測樣本稀釋至約0.1毫克rhGDF-5/毫升溶液。將該稀釋樣本(各50微升)注於HPLC管柱(Vydac 218TP52,C18管柱)上。以0.3毫升/分鐘之水中0.15%(體積/體積)TFA及乙腈中0.15%(體積/體積)TFA作為流動相洗提該樣本。在214奈米偵測該洗提峰。計算各峰面積的百分比以監控主峰和次峰(遞減峰)的變化。
體積排除色譜法(SEC)
利用SEC法監控蛋白質的凝集作用。通常,將30微升 的各樣本直接注於SEC管柱(TOSOH Bioscience,貨號08540)上然後以0.5毫升/分鐘之0.1%(體積/體積)TFA及水中45%(體積/體積)乙腈洗提。在280奈米監控蛋白質峰及計算凝集物的百分比。
凝膠電泳法
利用凝膠電泳法監控蛋白質凝聚物及崩解小碎片。通常,乾燥約10微克蛋白質然後以70微升含或不含10% β-巰基乙醇的SDS-PAGE樣本緩衝液(Invitrogen,貨號LC 2676)進行重構。該樣本在95℃培養5分鐘。將約18微升的各樣本裝載於凝膠(Invitrogen,貨號NP0341Box)上。XY 200伏特利用電泳緩衝液將該凝膠電泳約35分鐘。然後以Simplyblue溶液(Invitrogen,貨號LC6060)染色該凝膠及以去離子水去染色。掃描該凝膠及收集其影像。
生物活性分析
僅分析6-個月穩定性樣本(甘胺酸配方及HCl配方)的生物活性。使用細胞檢測儀(TM 0046)測量鹼性磷酸酶活性以評估樣本的穩定性。
含水量
利用卡爾費雪(Karl Fischer)滴定法藉由PDD進行水氣含量的檢測。
結果 凍乾渣的完整性
從零時間至9-個月時間點受測樣本濾渣在全部儲藏條件下呈白至灰白色固體。濾渣周圍看到些微的回縮,或該濾渣稍與玻璃瓶壁相隔開,其常見於作為充填劑的糖例如海藻糖或蔗糖。全部受測樣本的濾渣無塌陷。通常濾渣的塌陷會改變重構時間而導致蛋白質的不穩定。同時,無海藻糖的配製物內形成毛絨和鬆軟的濾渣。
重構時間
在測定時將1毫升的水加入各樣本玻璃瓶內。緩慢混合該樣本然後記錄其重構時間。完全溶解濾渣約需30至40秒的時間。
溶液清徹度
在黑色背景的垂直光線下檢查重構樣本;全部樣本溶液呈清徹及無色。
酸鹼度
利用刻度pH計測定重構溶液的酸鹼度。全部試驗過程中全部配製物的pH值無明顯改變。含海藻糖/緩衝液之配製物樣本的酸鹼度約在3.0±0.2。無海藻糖之配製物的酸鹼度約為4.0。
UV光譜分析儀
利用UV-Vis分光光度計測定蛋白質濃度。全部試驗過程中含甘胺酸緩衝液、磷酸鹽緩衝液、檸檬酸鹽緩衝液、乳酸鹽緩衝液,或0.01% TFA的rhGDF-5/海藻糖配製物的蛋白質濃度無明顯改變。當儲藏於25℃/60%和40℃/75% RH時rhGDF-5/海藻糖/HCl配製物增加在280奈米的吸光度。儲存於40℃的配製物內似乎增加蛋白質的濃度;在零時間的最初蛋白質濃度從0.7毫克/毫升增加至在第6個月時間點的1毫克/毫升。此可能因為海藻糖被裂解成在280奈米具有類似吸光度的呋喃甲醛化合物。
非還原rpHPLC法結果
利用非還原rpHPLC法監控rhGDF-5藉由甲硫胺酸氧化、脫醯胺反應及其他反應所形成的裂解品種。除HCl配製物及無海藻糖配製物之外,於2~8℃和25℃之下儲藏9個月之全部配製物的主峰百分比無明顯改變。兩者配製物在第9個月的時間點具有低於90%的主峰。
然而,當該配製物被儲藏於加速儲藏條件下例如40℃/75% RH時,僅一配製物(即,rhGDF-5/海藻糖/甘胺酸)在第6個月時間點具有大於91%的主峰。在加速儲藏條件下的其他配製物的穩定性均不如rhGDF-5/海藻糖/甘胺酸配製物。明確而言,rhGDF-5/海藻糖/HCl配製物在第6個月時僅具有66%的主峰。第6和7圖顯示rhGDF-5/海藻糖/甘胺酸配製物和rhGDF-5/海藻糖/HCl配製物在40℃/75% RH儲藏6個月的HPLC色譜圖。第8、9和10圖顯示儲藏於5、25和40℃之各種受測緩衝液的回收蛋白質%。
rpHPLC分析的結果顯示海藻糖和甘胺酸組合的緩衝液對儲存期間的冷凍乾燥rhGDF-5最具有穩定效果。此外,由於HCl的強酸對蛋白質及海藻糖均具有某些去穩定化效果,因此rhGDF-5/海藻糖/HCl配製物的穩定性較差。
實例13 :於含有5%海藻糖的pH 3甘胺酸緩衝液內rhGDF-5在各種溫度下的穩定性
在此試驗中,rhGDF-5被配製成含5%(重量/體積)海藻糖及5毫克分子甘胺酸-HCl之pH 3緩衝液的約0.01、0.03、0.1、2.5、4.5和9毫克/毫升濃度。使用配製溶液以1毫升/瓶充填入3毫升玻璃瓶內然後冷凍乾燥該玻璃瓶。將經冷凍乾燥樣本玻璃瓶儲藏於2~8℃、25℃/60% RH及40℃/75% RH。在各預設時間點,分析該樣本之製品的穩定性。用於此試驗的方法包括濾渣外觀、重構時間、溶液清徹度、酸鹼度、rpHPLC(逆向高效液態層析法)、UV(紫外線光譜法)、SEC(體積排除色譜法)和凝膠電泳法。在三種儲藏條件儲存6個月之後,發現含從低至0.1毫克/毫升到高至9毫克/毫升之蛋白質濃度的配製物內無明顯的變化。當蛋白質濃度過低如0.01和0.03毫克/毫升時,此方法無法偵測出微量的變化。
此試驗的結果顯示含海藻糖和甘胺酸-HCl的冷凍乾燥rhGDF-5配製物其各種蛋白質濃度在2~8℃、25℃/60% RH
之下可至少穩定儲藏6個月。儲存於40℃/75% RH之加速儲藏條件下的製品在第6個月時其rpHPLC曲線稍有變化。
實例14 :於含有5%海藻糖的pH 3甘胺酸緩衝液內rhGDF-5在各種濃度下的穩定性
在此試驗中,rhGDF-5被配製成含5%(體積/重量)海藻糖及5毫克分子甘胺酸之pH 3緩衝液的約0.01、0.03、0.1、2.5、4.5和9.0毫克/毫升rhGDF-5濃度。此外,以10%(重量/體積)海藻糖及5毫克分子甘胺酸緩衝液(pH 3)的配製物作為比較。然後將該配製溶液以1毫升/瓶充填入3毫升玻璃瓶內然後冷凍乾燥。將該冷凍乾燥樣本儲存於穩定的室內。
pH 3的5毫克分子甘胺酸-HCl緩衝液:
稱取3x0.75克甘胺酸(分子量75.07克)置入3x2000毫升燒杯內及各燒杯內加入約1900毫升的去離子水。以HCl溶液將該溶液滴定至pH 3。各燒杯內加入額外的水使其達2000毫升的終體積然後充分混合。
製備配製物
在2~8℃下熔解本體蛋白質rhGDF-5(批號2142131)。利用離心過濾裝置(Pall Life科學公司,貨號OD010C37,10K MWCO)將該蛋白質溶液(3.8毫克/毫升之96毫升)濃縮至約24毫升的總體積。將約3x8毫升之濃縮rhGDF-5溶液
置入3x透析膜卡匣(Pierce,貨號66380)及在2~8℃下以甘胺酸-HCl緩衝液透析隔夜。
將rhGDF-5溶液從透析膜卡匣轉置入小玻璃瓶內。利用UV-Vis分光光度計測定蛋白質濃度。以含5或10%(重量/體積)的海藻糖及上述5毫克分子甘胺酸緩衝液配製各種濃度的蛋白質。將該配製溶液過濾通過0.22微米濾過器然後在冷凍乾燥之前儲藏於2~8℃。
充填和冷凍乾燥
將各配製溶液以1毫升/瓶充填入3毫升玻璃瓶(West Phar. Services,貨號68000316)。以塞子(West Phar. Services,貨號99150630)部分封閉玻璃瓶。將樣本玻璃瓶置入冷凍乾燥機(FTS System,LyoStar II)。將熱電偶計置入安慰瓶內以監控冷凍乾燥過程中溫度曲線。
其分析方法類似實例11和12中所述。
結果 凍乾渣的完整性
從零時間至6-個月時間點受測樣本濾渣在全部儲藏條件下呈白色固體。濾渣周圍看到些微的回縮,或該濾渣稍與玻璃瓶壁相隔開。此常見於當使用糖如海藻糖或蔗糖作為充填劑時。全部受測樣本未看到塌陷的濾餅。
重構時間
在測定時將1毫升的水加入各樣本玻璃瓶內。緩慢混合該樣本然後記錄其重構時間。完全溶解濾渣約需30至40秒的時間。
溶液清徹度
在黑色背景的垂直光線下檢查該蛋白質溶液時全部重構樣本呈清徹及無色。
酸鹼度
利用刻度pH計測定重構溶液的酸鹼度。試驗過程中全部樣本的pH值無明顯改變。配製物的pH值為在3.0至3.3的範圍內。
UV光譜分析儀
利用UV-Vis分光光度計測定蛋白質濃度。該UV光譜亦提供蛋白質凝集(基線光散射)的資料。用於0.01至0.1毫克/毫升的蛋白質濃度時,使用10毫米的光析管。用於2至9毫克/毫升的蛋白質濃度時,使用含未稀釋或無破壞樣本的1毫升光析管。在整個穩定性試驗過程中0.1至9毫克/毫升的樣本的蛋白質濃度未觀察到明顯的變化。對0.01和0.03毫克/毫升的低濃度樣本而言,由於吸光度過低而看到更大的變化。需要用於進一步試驗之低濃度樣本的一種新穎樣本製備方法。
非還原rpHPLC法結果
利用非還原rpHPLC法監控rhGDF-5藉由例如甲硫胺酸氧化、脫醯胺反應所形成的裂解品種。於2~8℃、25℃和40℃之下儲藏6個月之全部樣本的主峰百分比無明顯改變。儲存6個月之樣本的rhGDF-5主峰與零時間樣本獲得的資料比較回收率仍≧96%。不易藉由HPLC法分析0.01和0.03毫克/毫升的低濃度樣本。需要製備用於進一步試驗的新穎樣本。
體積排除色譜法(SEC)
利用SEC法監控蛋白質的凝集作用。在6個月穩定性試驗的整個測定期間,全部樣本的凝集作用未發現有明顯的變化。未分析0.01和0.03毫克/毫升的低濃度樣本。
凝膠電泳法
亦利用凝膠電泳法監控蛋白質凝聚作用及崩解小碎片。整個6個月的儲藏期間全部樣本無明顯的變化。
在儲藏期間任何樣本均未形成蛋白質的小碎片,因其未發現於還原SDS-PAGE上。
含水量
樣本具有從約0.19至0.32%的低含水量。蛋白質濃度和含水量之間無相關性或趨勢。
此結果顯示存在海藻糖和甘胺酸緩衝液的冷凍乾燥 rpHPLC製品藉由rpHPLC和SEC色譜法證明在2~8℃、25℃/60% RH和40℃/75% RH可至少穩定6個月。可配製成含5%(重量/體積)海藻糖/5毫克分子甘胺酸-HCl緩衝液(pH 3)從0.1至9毫克/毫升(預冷凍乾燥)之各種濃度的蛋白質然後被冷凍乾燥。當被配製成低濃度如0.01和0.03毫克/毫升時,偵測其變化的現有方法具有某些限制。
本發明已利用相關的舉例性具體實施例進行敘述。由於上述配製物可作出某些變化而不偏離本發明的範圍,因此包含於上述敘述或示於附圖的全部資料擬被解釋為舉例性而非其範圍的限制。例如,熟練本技術者將瞭解本發明之舉例性具體實施例的配製物非僅侷限於使用BMP以及可被用於任何適當生物系統內的其他生物分子。
亦必需瞭解下列的申請專利範圍涵蓋本發明此處所敘述的全部一般和特定性質,以及本發明範圍的全部陳述根據其語言必然仍在該範圍內。
第1圖為述於實例6之rhGDF-5海藻糖配製物的DSC曲線。其中以水重構冷凍乾燥配製物,終濃度為0.33毫克/毫升的蛋白質+3.3%海藻糖。
第2圖為述於實例7之rhGDF-5甘露糖醇配製物的DSC曲線。其中以水重構冷凍乾燥配製物。終濃度為0.33毫克/毫升的蛋白質+3.3%甘露糖醇。
第3圖為rhGDF-5天然蛋白質的DSC曲線。其中以 0.01% TFA透析10毫克分子HCl內的3.8毫克/毫升本體GDF-5。
第4圖為述於實例6之rhGDF-5海藻糖配製物的偏振光顯微鏡圖。其中冷凍乾燥配製物:實例6,rhGDF-5濃度:0.5毫克/瓶,pH2.9之rhGDF-5的50毫克/0.5毫克海藻糖。
第5圖為述於實例7之rhGDF-5甘露糖醇配製物的偏振光顯微鏡圖。其中冷凍乾燥配製物:實例7,rhGDF-5濃度:0.5毫克/瓶,pH2.9之rhGDF-5的50毫克/0.5毫克甘露糖醇。
第6圖為述於實例12中rhGDF-5/海藻糖/甘胺酸配製物在40℃/75% RH之下六個月後的rpHPLC曲線。
第7圖為述於實例12中rhGDF-5/海藻糖/鹽酸配製物在40℃/75% RH之下六個月後的rpHPLC曲線。
第8、9和10圖為述於實例12中儲存於5、25和40℃之下在各種時間點之各種受測緩衝劑的蛋白質回收%。
第11圖為述於實例14中於選定溫度之pH 3甘胺酸緩衝液內以5%或10%海藻糖冷凍乾燥之各種濃度rhGDF-5的穩定性。

Claims (5)

  1. 一種包含rhGDF-5、甘胺酸及穩定該rhGDF-5之足量海藻糖的組成物,其中該組成物具有2.5至3.5酸鹼度。
  2. 如申請專利範圍第1項之組成物,其中該組成物經冷凍乾燥。
  3. 一種用於穩定rhGDF-5的方法,其包含:(a)提供含rhGDF-5、甘胺酸及穩定該rhGDF-5之足量海藻糖的組成物,其中該組成物具有2.5至3.5酸鹼度;(b)冷凍乾燥該混合物。
  4. 一種用於植入哺乳動物體內的裝置,該裝置包含一生物相容基質及含rhGDF-5、甘胺酸及穩定該rhGDF-5之足量海藻糖的組成物,其中該組成物具有2.5至3.5酸鹼度。
  5. 如申請專利範圍第4項之裝置,其中該生物相容基質選自由膠原蛋白、礦化膠原蛋白、磷酸鈣之鹽類、含鈣陶瓷、自體骨骼、同種異體骨骼、異種骨骼、聚丙交酯(PLA)、聚乙交酯(PGA)、PLA-PGA共聚物、聚碳酸酯、聚己內酯及其混合物所組成之群組。
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