[go: up one dir, main page]

SU539538A3 - Method for producing metabolite 2776 - Google Patents

Method for producing metabolite 2776

Info

Publication number
SU539538A3
SU539538A3 SU2002131A SU2002131A SU539538A3 SU 539538 A3 SU539538 A3 SU 539538A3 SU 2002131 A SU2002131 A SU 2002131A SU 2002131 A SU2002131 A SU 2002131A SU 539538 A3 SU539538 A3 SU 539538A3
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
medium
streptomyces
substance
monensin
nrrl
Prior art date
Application number
SU2002131A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Рэй Браннон Дональд
Рой Хортон Дональд
Original Assignee
Эли Лилли Энд Компани (Фирма)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Эли Лилли Энд Компани (Фирма) filed Critical Эли Лилли Энд Компани (Фирма)
Application granted granted Critical
Publication of SU539538A3 publication Critical patent/SU539538A3/en

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K36/00Medicinal preparations of undetermined constitution containing material from algae, lichens, fungi or plants, or derivatives thereof, e.g. traditional herbal medicines
    • A61K36/06Fungi, e.g. yeasts
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/70Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P33/00Antiparasitic agents
    • A61P33/02Antiprotozoals, e.g. for leishmaniasis, trichomoniasis, toxoplasmosis
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07HSUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H19/00Compounds containing a hetero ring sharing one ring hetero atom with a saccharide radical; Nucleosides; Mononucleotides; Anhydro-derivatives thereof
    • C07H19/01Compounds containing a hetero ring sharing one ring hetero atom with a saccharide radical; Nucleosides; Mononucleotides; Anhydro-derivatives thereof sharing oxygen

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Natural Medicines & Medicinal Plants (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Alternative & Traditional Medicine (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Medical Informatics (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Fodder In General (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Feed For Specific Animals (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Compounds Of Unknown Constitution (AREA)
  • Heterocyclic Carbon Compounds Containing A Hetero Ring Having Oxygen Or Sulfur (AREA)

Description

Изобретение относитс  к способам получени  биологически активных веществ путем микробиологического синтеза.The invention relates to methods for producing biologically active substances by microbiological synthesis.

Известен способ получени  биологически активных веш,еств, включающий культивирование микроорганизмов вида Streptomyces candidus в водной питательной среде, содержащей источники углерода, азота и минеральных веществ, при ее аэрации.A known method of obtaining biologically active substances, including the cultivation of microorganisms of the species Streptomyces candidus in an aqueous nutrient medium containing sources of carbon, nitrogen and mineral substances, during its aeration.

Целью изобретени   вл етс  получение нового биологически активного вещест ва, обладающего пониженной токсичностью, эффективно действующего против кокцидий, а также повышающего усво емость кор.ма жвачными животными.The aim of the invention is to obtain a new biologically active substance with reduced toxicity, effectively acting against coccidia, as well as increasing the digestibility of feed ruminants.

Дл  этого в качестве культуры микроорганизма берут Streptomyces candidus NRRL 5449, а .в питательную среду ввод т дополнительно глюкозу и монензин, продуцируемый микроорганизмом Streptomyces cinnamonensis . При этом в качестве источника монензина используют стерилизованную жидкую среду выращивани  Streptomices cinnamoneusis. Питательную среду можно также подвергнуть контактированию либо с отделенным от клеток и лиофилизированным бульоном среды выращивани  при получении культуры Streptomyces candidus NRRL 5449, либо с отделенным клеточным материалом этого микроорганизма , подвергнутым очистке посредством обработки ультразвуком, центрифугировани  и диализа.For this, Streptomyces candidus NRRL 5449 is taken as a culture of the microorganism, and glucose and monensin produced by the organism Streptomyces cinnamonensis are additionally introduced into the nutrient medium. At the same time, sterptized growth medium of Streptomices cinnamoneusis is used as a source of monensin. The nutrient medium can also be contacted with either the cultured and lyophilized broth of the growth medium separated from the cells upon receipt of a culture of Streptomyces candidus NRRL 5449, or with the separated cellular material of this microorganism purified by sonication, centrifugation and dialysis.

На прилагаемом чертеже показан инфракрасный спектр поглощени  метаболита А 27106 в хлороформе.The accompanying drawing shows an infrared absorption spectrum of metabolite A 27106 in chloroform.

Биологически активное вещество, получаемое предлагаемым способом в виде натриевой соли, обозначают как метаболит А 27106. Исходным материалом дл  получени  вещества А 27106  вл етс  монензин, который получают нз культуральной лсидкости или из мицели  культуры Streptomyces cinnamonensis АТСС 15413. Вещество А 27106 получают из монензина в присутствии глюкозы под воздействием ферментов, выдел емых новым штаммом Streptomyces candidus, имеющимс  в коллекции посто нных культур в Северном отделеннн исследовательских и опытных работ службы сельскохоз йственных исследований Министерства сельского хоз йства США под номером NRRL 5449.The biologically active substance obtained by the proposed method in the form of a sodium salt is designated as the metabolite A 27106. The starting material for the preparation of the substance A 27106 is monensin, which is obtained either from culture culture or from the mycelium of the culture Streptomyces cinnamonensis ATCC 15413. Substance A 27106 is obtained from monensin the presence of glucose under the influence of enzymes secreted by the new strain of Streptomyces candidus, present in the collection of permanent cultures in the North of the separate research and experimental works of the agricultural research service vany Ministry agriculturally US-keeping under the accession number NRRL 5449.

Новый штамм Streptomyces candidus NRRL 5449 был изолирован из образца почвы на горе Арарат в Турции. Стрептомицеты NRRL 5449 характеризуютс  наличием спорофор. имеющих форму от пр молинейной до волниугой; споры имеют гладкую поверхность и форму от овальной до слабоцилиндрической размер спор составл ет в среднем 1,165Х Х0,57 мкм, размер цепочек епор колеблетс  от 10 до 50 мкм. Воздушный мицелий обычно белого цвета, при 26°С наблюдаетс  лишь вегетативный рост, цри 45°С роста не происходит , а максимальный рост и спорул ци  имеют место при 30-37°С. Характеристики среды культивировани : ICP 1. Удовлетворительный рост; светложелтый обратимый цвет (1IC1); отсутствие воздуншого мицели  или епор; растворимый пигмепт отсутствует . ICP 2. Обильный рост; светло-желтый обратимый цвет (1013); обильный воздушный мицелий и споры; (W) белый а; растворимый пигмент отсутствует . ICP 3. Хороший рост; светло-желтый, обратимый зеленый цвет (10С1); хороший воздушный мицелий и споры; (W) белый а; растворимый пигмент отсутствует. ICP 4. Рост хороший до обильного; обратимый умеренный желтый цвет (10Н4); хороший до обильного мицелий и споры; (W) белый коричневый раст1воримый пигмент. ICP 5. Обильный роет; обратимый умеренный ораижево-желтый цвет (1016); обильный воздушный мицелий и еиоры, (Y) светло-желтый 2db; слабо-коричневый растворимый пигмент . ICP 7. Хороший рост; обратимый светложелтый , зеленый цвет (10В1); хороший воздушный мицелий и споры; (W) белый а; растворимый пигмеит отсутствует. Глицерпп-глицин. Обильный роет; средней интенсивности коричневый обратимый цвет (1114); обильное формирование спор и воздушного мицели , (W) белый а и (Y) светло-желтый 2 db; слабый, светло-коричневый растворимый пигмент. Среда Эмерсона. Обильный рост; сероватожелтый обратимый цвет (12НЗ); воздушный мицелий и споры отсутствуют; растворимый пигмент отсутствует. Среда Беннетте. Хороший рост; светло-желтый обратимый цвет (1112); скудный воздушный мицелий и споры; (W) белый растворимый пигмент отсутствует. Среда Чацека. Хороший рост; умеренный оранл ево-желтый цвет (1117); обильный воздушный мицелий и споры; (W) белый а; раствориимый пигмент отсутствует. Глюкоза-аспарагин. Рост удовлетворительный до хорошего; светло-желтый, обрати мый 6 зеленый цвет (10Н1); воздушный мицелий и споры отсутствуют; растворимый пигмент отсутствует . Кальциева  соль  блочной кислоты. Обильный рост; обратимый серовато-желтый цвет (11Е4),обильный воздушный мицелий и опоры; (Y) светло-желтый 2 Ьа; слабо-коричневый растворимый пигмент. Питательный агар. Хороший рост; обратимый светло-желтый, зеленый цвет (10 С1); отсутствие воздушного -мицели  или спор; растворимый пигмент отсутствует. При исследовании физиологических свойств Streptomyces eandidus NRRL 5449 в соответствии со стандартными методиками было обнаружено следуюш,ее. Действие на сн тое молоко. Просветление; створаживание через 14 дней. Восстановление нитрата. Положительное. Образование меланина из дрожжевого экстракта бульона триптона. Пезначительное. Агар-тирозин. Отсутствие. Желатины ожиженные. Отсутствие на 21 день. Требовани  в отношении температуры. 26°С - лишь вегетативный рост; 36-37°С - хороший вегетативный роет, хороший воздушный мицелий и споры; при 43-53°С рост отсутствует . Результаты испытаний на утилизацию угерода с помош,ью Streptomyces eandidus RRL 5449 приведены ниже. Символы, исользованные дл  индикации реакци роста, ледующие: -f утилизаци  - хороший рост; -f- : веро тна  утилизаци  - плохоймеренный рост; - сомнительна  утилизаци  - слабый ост или отсутствие его; - утилизации нет - отсутствие роста. Источник углерода Раффиноза+ D-Фруктоза + Целлобиоза-(L-Арабиноза-|/ )-Маннитол+ Рамноза-}Пеллюлоза- Декстроза + до - Д-Ксилоза 4- Инозитол-Jс (отсутствие углевода - до + Среда дл  вырагцивани  Streptomyces eandis NRRL 5449 может быть любой подход ей дл  этого микроорганизма. Однако предчтительными источниками углеводов при оведении ферментации в большом объеме огут быть инвертный сахар или кукурузный рон, но можно использовать глюкозу, фрукзу , мальтозу, крахмал, инозитол и подобные . Если предполагаетс  использовать культуS . eandidus NRRL 5449 дл  получени  биогически активного вещества А 27106, то еда должна содержать источник глюкозыA new strain of Streptomyces candidus NRRL 5449 was isolated from a soil sample on Mount Ararat in Turkey. Streptomycetes NRRL 5449 are characterized by the presence of sporophore. having a shape from straight to wave; the spores have a smooth surface and the shape is from oval to weakly cylindrical; the size of the spores is on average 1.165 x 10.5 microns; the size of the epor chains ranges from 10 to 50 microns. Aerial mycelium is usually white, at 26 ° C only vegetative growth is observed, with 45 ° C growth does not occur, and maximum growth and sporulation occur at 30-37 ° C. Characteristics of the culture medium: ICP 1. Satisfactory growth; light yellow reversible color (1IC1); the absence of a raised mycelium or epor; soluble pygmept is absent. ICP 2. Abundant growth; light yellow reversible color (1013); abundant aerial mycelium and spores; (W) white a; soluble pigment is missing. ICP 3. Good growth; light yellow, reversible green color (10С1); good aerial mycelium and spores; (W) white a; soluble pigment is missing. ICP 4. Growth good to abundant; reversible moderate yellow color (10H4); good to abundant mycelium and spores; (W) White brown soluble pigment. ICP 5. Abundant digs; reversible, moderate orange-yellow color (1016); plentiful aerial mycelium and eiory, (Y) light yellow 2db; slightly brown soluble pigment. ICP 7. Good growth; reversible light yellow, green color (10В1); good aerial mycelium and spores; (W) white a; soluble pygmyite is absent. Glycepp-glycine. Abundant digs; medium intensity brown reversible color (1114); plentiful formation of spores and aerial mycelium, (W) white a and (Y) light yellow 2 db; weak, light brown soluble pigment. Emerson Wednesday. Abundant growth; greyish yellow reversible color (12NZ); aerial mycelium and spores are absent; soluble pigment is missing. Wednesday Bennett. Good height; light yellow reversible color (1112); poor aerial mycelium and spores; (W) white soluble pigment is missing. Wednesday Chacek. Good height; moderate orange-yellow color (1117); abundant aerial mycelium and spores; (W) white a; no soluble pigment. Glucose-asparagine. Growth is satisfactory to good; light yellow, reversible 6 green color (10H1); aerial mycelium and spores are absent; soluble pigment is missing. Calcium salt malic acid. Abundant growth; reversible grayish-yellow color (11E4), abundant aerial mycelium and supports; (Y) light yellow 2 La; slightly brown soluble pigment. Nutrient agar. Good height; reversible light yellow, green color (10 C1); no air - targets or dispute; soluble pigment is missing. In the study of the physiological properties of Streptomyces eandidus NRRL 5449 in accordance with standard techniques, the following was found. Action on skim milk. Enlightenment; Texturing after 14 days. Nitrate reduction. Positive. Formation of melanin from yeast extract of tryptone broth. Minor. Agar-tyrosine. Absence Gelatin liquefied. Absence for 21 days. Temperature requirements. 26 ° C - only vegetative growth; 36-37 ° С - good vegetative digs, good aerial mycelium and spores; at 43-53 ° C growth is absent. The results of testing the disposal of carbon with the aid of Streptomyces eandidus RRL 5449 are given below. The symbols used to indicate the growth response are as follows: -f utilization - good growth; -f-: scrapping likely to occur - poor growth; - utilization is doubtful - weak or no ost; - no disposal - no growth. Carbon source Raffinose + D-Fructose + Cellobiose- (L-Arabinose- | /) -Mannitol + Rhamnose-} Pellulose- Dextrose + to - D-Xylose 4- Inositol-Jс (no carbohydrate - to + Medium for extracting Streptomyces eandis NRRL 5449 can be any approach for this microorganism.However, predtchitelnymi sources of carbohydrates in the ovedenii fermentation in large quantities can be invert sugar or corn ron, but you can use glucose, frukzu, maltose, starch, inositol, and the like. If you want to use cult S. eandidus NRRL 5449 to obtain biogich if active substance A 27106, then the food must contain a source of glucose

дл  обеспечени  эффективной конверсии. Если S. candidus NRRL 5449 выращивают с целью получени  свойственной ей энзимной системы дл  последующего применени  ее дл  получени  вещества А 27106, то наличие глюкозы во врем  ферментации  вл етс  произвольным .to ensure efficient conversion. If S. candidus NRRL 5449 is grown to obtain an enzyme system characteristic of it for later use to obtain substance A 27106, the presence of glucose during fermentation is arbitrary.

Предпочтительными источниками азота служат пептоны, соева  мука, смеси аминокислот и другие подобные им вещества.Preferred sources of nitrogen are peptones, soy flour, mixtures of amino acids and other similar substances.

В качестве минеральных солей можно ввести в состав среды обычные растворимые соли , содержащие ноны железа, натри , кали , аммони , кальци  фосфата, хлорида, карбоната и др. Среда также должна содержать необходимое количество микроэлементов.As mineral salts, ordinary soluble salts containing nonons of iron, sodium, potassium, ammonium, calcium phosphate, chloride, carbonate, etc. can be incorporated into the medium. The medium must also contain the necessary amount of trace elements.

Начальное значение рН среды дл  культивировани  можно варьировать, но желательно выбирать и поддерживать рН среды при культивировании в пределах 5,7-7,5.The initial pH of the culture medium can be varied, but it is desirable to select and maintain the pH of the medium when cultured in the range of 5.7-7.5.

Как и другие виды Streptomyces, S. candidus NRRL 5449 требует аэробных условий дл  выращивани . Инокулирование водной среды можно производить с помощью суспензии, содержащей споры, или вегетативным прививочным материалом. Температуру выращивани  выбирают в интервале 26-40°С, однако максимальный рост и спорообразование происход т при 32-37°С. Подачу стерильного воздуха в среду культивировани  дл  обеспечени  эффективного роста микробной культуры и получени  достаточно высокого выхода вещества А 27106 осуществл ют со скоростью не менее 0,1 объема воздуха в 1 мин на единицу объема среды дл  культивировани , но предпочтительнее, если объем воздуха составл ет от 1/3 до 1/2 объема воздуха в 1 мин на объем среды дл  культивировани .Like other Streptomyces species, S. candidus NRRL 5449 requires aerobic conditions for cultivation. The inoculation of the aqueous medium can be carried out with a suspension containing spores or with a vegetative graft material. The growing temperature is chosen in the range of 26-40 ° C, however, the maximum growth and sporulation occur at 32-37 ° C. The supply of sterile air to the culture medium to ensure effective growth of the microbial culture and to obtain a sufficiently high yield of substance A 27106 is carried out at a rate of at least 0.1 volume of air per minute per unit volume of culture medium, but it is preferable if the volume of air is from 1/3 to 1/2 volume of air in 1 min per volume of culture medium.

Наличие подход щего источника глюкозы  вл етс  необходимым условием дл  конверсии монензина или фактора А антибиотического комплекса А 3823 в биологически активное вещество А 27106.The presence of a suitable source of glucose is a prerequisite for the conversion of monensin or factor A of the antibiotic complex A 3823 to the biologically active substance A 27106.

При наличии в среде глюкозы в необходимом количестве, а монензина в количестве 0,1 -1,0 г/л среды культивирование в основном заверщаетс  приблизительно за 36- 72 час. Оптимальна  степень конверсии достигаетс , когда монензин присутствует в количестве 0,5-0,7 г/л, а глюкоза 2-2,5 вес. % на количество среды.When glucose is present in the medium in the required amount, and monensin in an amount of 0.1-1.0 g / l of the medium, the cultivation generally ends in about 36-72 hours. The optimal degree of conversion is achieved when monensin is present in an amount of 0.5-0.7 g / l, and glucose is 2-2.5 wt. % by amount of medium.

Если содержание глюкозы в среде меньще 2%, то ее необходимо добавл ть, поддерлсива  концентрацию на оптимальном уровне.If the content of glucose in the medium is less than 2%, then it must be added, keeping the concentration at an optimal level.

Если дл  получени  биологически активного вещества А 27106 используют ферментную систему S. candidus NRRL 5449, то необходимо , чтобы ферментный препарат имел повыщенную степень очистки. Активна  ферментна  система S. candidus NRRL 5449 присутствует в отфильтрованном бульоне, полученном пои ферментации, и в клеточном материале. Например, отфильтрованный бульон можно лиофилизировать и хранить в течение не менее двух недель до повторного растворени If the enzyme system of S. candidus NRRL 5449 is used to obtain the active substance A 27106, it is necessary that the enzyme preparation has an increased degree of purification. The active enzyme system of S. candidus NRRL 5449 is present in the filtered broth obtained by fermentation and in the cellular material. For example, the filtered broth can be lyophilized and stored for at least two weeks until re-dissolving.

буферным раствором в количестве 1/6 объема первоначального бульона. Эффективна  конверси  достигаетс  примерно через 72 час, когда берут 2,5 г такого лиофилизированного препарата и 25 мг монензина.buffer solution in the amount of 1/6 of the volume of the initial broth. Effective conversion is achieved in about 72 hours when 2.5 g of such a lyophilized preparation and 25 mg of monensin are taken.

Ферментный препарат из клеточного материала S. candidus NRRL 5449, отделенного от бульона после ферментации, можно получить следующим образом.The enzyme preparation from S. candidus NRRL 5449 cellular material, separated from the broth after fermentation, can be obtained as follows.

Клеточный материал можно заморозить и хранить не менее трех мес цев. После оттаивани  клетки суспендируют в буферном растворе , дополнительно очищают посредством обработки ультразвуком и центрифугировани , отделенные остатки клеточного материала суспендируют в буферном растворе и диализируют . Из 200 г клеточного материала получают количество диализата, достаточное дл  превращени  глюкозы и 25 мг монензинаCell material can be frozen and stored for at least three months. After thawing, the cells are suspended in a buffer solution, further purified by sonication and centrifugation, the separated residues of cellular material are suspended in a buffer solution and dialyzed. From 200 g of cellular material, a quantity of dialysate is obtained, sufficient to convert glucose and 25 mg of monensin.

в биологически активное вещество А 27106.in the biologically active substance A 27106.

Вещество А 27106 содержитс  и в культуральном бульоне в мицелии Streptomyces candidus NRRL 5449.Substance A 27106 is also contained in the culture broth in the mycelium of Streptomyces candidus NRRL 5449.

В соответствии с этим технические приемыIn accordance with this technique

дл  выделени  его выбирают с расчетом наибольщего извлечени  продукта из одного или обоих источников. Так, например, ферментационную среду фильтруют, после чего фильтрат и плотную массу мицели , полученнуюfor selection, it is selected with the intent of extracting the product from one or both sources. For example, the fermentation medium is filtered, after which the filtrate and dense mycelium mass obtained

после фильтровани , экстрагируют с -применением подход щих растворителей дл  получени  вещества А 27106. Продукт извлекают из растворителей с помощью обычных приемов в данной отрасли промышленности.after filtration, it is extracted with the use of suitable solvents to obtain substance A 27106. The product is extracted from the solvents using conventional techniques in the industry.

Однако выделение вещества А 27106 можно производить из культуральной среды и мицели , не подверга  экстрагированию, но предпочтительно удалив воду из них. Например, среду дл  культивировани  можно высушитьHowever, the isolation of the substance A 27106 can be made from the culture medium and mycelium, without being extracted, but preferably by removing water from them. For example, the culture medium can be dried.

лиофилизацией, после чего смешать с материалом , поступающим на переработку. Кроме того, из твердых веществ можно не полностью удалить воду и приготовить суспензию, пригодную дл  добавлени  к влажной массе затора (суслу) или к аналогичному исходному сырью.lyophilization, and then mixed with the material received for processing. In addition, water can be completely removed from the solids and a suspension suitable for adding mash (wort) to the wet mass or to similar feedstock can be prepared.

Одним из удовлетворительных способов выделени  вещества А 27106 может быть следующий . Среду, в которой производилосьOne of the satisfactory methods for isolating A 27106 may be the following. Wednesday in which it was made

культивирование микроорганизма, фильтруют,   плотную массу, отжатую на фильтре, экстрагируют пол т)ным растворителем, например метанолом. Метанольный экстракт концентрируют , а затем добавл ют к фильтрату. Объегтиненный раствор экстрагируют дважды добавлением половинного объема хлороформа. Хлороформенные экстракты упаривают в вавакууме , образуетс  маслообразный продукт темно- нтарного цвета, который обесцвечивают , пропуска  над активированным углем в колонке с применением хлороформа.cultivation of the microorganism, filtered, dense mass, pressed on the filter, extracted with a solid solvent, such as methanol. The methanol extract is concentrated and then added to the filtrate. The diluted solution is extracted twice by adding half the volume of chloroform. Chloroform extracts are evaporated in a vacuum, an oily product of dark amber color is formed, which discolor, passes over activated charcoal in a column using chloroform.

Полученный после вымывани  адсорбента экстракт снова концентрируют в вакууме, что обеспечивает получение масла от светло-желтого цвета до бесцветного. Это масло раствор ют в минимальном количестве хлороформа и подвергают хроматотрафированию в колонке , заполненной силикагелем с использованием этилацетата в качестве растворител . Элюирование желательно производить методом тонкослойной хроматографии. Загр знени  отмывают от адсорбента этилацетатом, а от.мывание адсорбента смесью этилацетата с метанолом позвол ет выделить биологически активное вещество А 27106.The extract obtained after washing out the adsorbent is again concentrated in vacuo, which ensures the production of an oil from light yellow to colorless. This oil is dissolved in a minimum amount of chloroform and chromatographed on a silica gel column using ethyl acetate as the solvent. Elution is desirable to produce by thin layer chromatography. The impurities are washed from the adsorbent with ethyl acetate, and washing the adsorbent with a mixture of ethyl acetate and methanol allows the isolation of the biologically active substance A 27106.

Биологически активное вещество А 27106 (натриева  соль) представл ет собой белое твердое кристаллическое вещество, плав щеес  при температуре около 170-175°С. Оно про вл ет тенденцию к легкому образованию гидрата и других сольватов, при этом его температура плавлени  измен етс  (обычно на несколько градусов ниже указанной).The biologically active substance A 27106 (sodium salt) is a white solid crystalline substance melting at a temperature of about 170-175 ° C. It tends to easily form hydrate and other solvates, and its melting point changes (usually a few degrees lower than indicated).

Элементарный состав вещества А 27106 следующий (%): С 58,78, Н 8,51, О 27,85 и Na 3,63, что соответствует эмпирической формуле C42H7iO,6Na.The elemental composition of substance A 27106 is the following (%): C 58.78, H 8.51, O 27.85, and Na 3.63, which corresponds to the empirical formula C42H7iO, 6Na.

Вещество А 27106 практически не про вл ет никакого ультрафиолетового поглощени  в области выше, чем 235 мкм.Substance A 27106 shows practically no ultraviolet absorption in the region higher than 235 microns.

Инфракрасный спектр поглощени  его в хлороформе показан на прилагаемом чертеже. Достижимые максимумы поглощени  у спектра таковы: 3.1; 3,36; 3,69; 6,82; 7,1; 7,25; 7,9 (плато); 8,1; 8,3; 8,67; 8,8 (плато); 9.04; 9,22; 9,51; 9,66; 10,03; 10,26; 10,66; 11,23; 11,47; И,83 и 12,15.Its infrared absorption spectrum in chloroform is shown in the accompanying drawing. The achievable absorption maxima at the spectrum are: 3.1; 3.36; 3.69; 6.82; 7.1; 7.25; 7.9 (plateau); 8.1; 8.3; 8.67; 8.8 (plateau); 9.04; 9.22; 9.51; 9.66; 10.03; 10.26; 10.66; 11.23; 11.47; And, 83 and 12.15.

Масс-спектр вещества А 27106 показывает наличие молекул рно-ионного пика при гп/е S54.44630 и характеристических пиков при m/e836.44I29, 779.44690, 761.44740The mass spectrum of substance A 27106 shows the presence of a molecular-ion peak at gp / e S54.44630 and characteristic peaks at m / e836.44I29, 779.44690, 761.44740

Эти полученные дапные совпадают с эмпирической формулой и значением молекул рного веса, равным 854 дл  натриевой соли вещества А 27106.These resulting drops coincide with an empirical formula and a molecular weight value of 854 for the sodium salt of substance A 27106.

Обычно вещество А 27106 легко растворимо 3 растворител х высокой степени пол рности, нерастворимо в непол рных растворител х и  меет различную степень растворимости в эастворител х промежуточной пол рности. Например, вещество А 27106 растворимо в низших алифатических спиртах, частично в |)еноле, диэтиловом эфире и ацетоне и срав1ительно нерастворимо в жидких низщих .Typically, substance A 27106 is easily soluble in 3 high-polarity solvents, insoluble in non-polar solvents, and exhibits varying degrees of solubility in intermediate polar solvents. For example, substance A 27106 is soluble in lower aliphatic alcohols, partly in | enol, diethyl ether and acetone, and is comparatively insoluble in liquid lower ones.

Электрометрическое титрование вещества 27106 в кислотной форме при начальном значении рН 8 показало наличие группировки, :пособной титроватьс  лри рКа 7,2.Electrometric titration of the substance 27106 in acid form at the initial pH value of 8 showed the presence of a grouping: a benefit titrated with pKa 7.2.

Описанна  монопатриева  соль  вл етс  естественной формой вещества А 27106. Исхо1  из натриевой соли, легко получают кисло у; из кислоты получают аммонийную и друие соли, образованные щелочным металлом литием, ка ием, рубидием, цезием). Все они )бладают биологической активностью.The monopotric salt described is the natural form of substance A 27106. Isho1 from the sodium salt is easily obtained sourly; ammonium and other salts derived from alkali metal lithium, ka, rubidium, cesium are obtained from the acid). All of them have biological activity.

Точна  структура вещества А 27106 неизве:тна . Известно, что ппи конверсии монензина О вещества А 27106 необходимо наличие люКозы, котора  расходуетс  даже при отсутст1вии подвергающихс  метаболизму клеток S. candidus. Молекул рный вес вещества А 27106 соответствует молекул рному весу глюкозила монензипа.The exact structure of substance A 27106 is unknown: tna. It is known that the conversion of monensin O of substance A 27106 requires the presence of lucose, which is consumed even in the absence of S. candidus cells undergoing metabolism. The molecular weight of substance A 27106 corresponds to the molecular weight of glucosyl monenzip.

Вещество А 27106 менее токсичпо, чем монензин . Например, при введении монензина группам мышей по 6 голов в каждой внутрибрюшинно в дозировке 50 мг/кг одна из шести погибла, при дозировке 100 мг/кг три изSubstance A 27106 is less toxic than monensin. For example, when monensin was injected into groups of mice with 6 heads in each intraperitoneally at a dosage of 50 mg / kg, one out of six died, at a dosage of 100 mg / kg, three of

шести погибли. В то же врем  мопепзин при аналогичных услови х эксперимента при дозировке 10 мг/кг приводил к смерти одпу из шести мышей, а при дозировке 20 мг/кг трех из шести мыщей.six died. At the same time, under similar conditions of the experiment, at 10 mg / kg dosage, one of six mice died, and three of six mice, at a dosage of 20 mg / kg, under the same experimental conditions.

Пример 1. S. candidus NRRL 5449 выращивали на скощенном агаре на среде, приготовленной по Беннетту, до получени  хорощо выраженных колоний. Выросшую культуру удал ли и готовили изExample 1. S. candidus NRRL 5449 was grown on agar on Bennett medium before obtaining well-defined colonies. The grown culture was removed and prepared from

нее суспензию на стерильной деиовизпрованной воде (10 мл). Эту суспензию разливали в четыре стекл нных сосуда дл  встр хивани , в которых содержалось 100 мл вегетативной среды следующего состава (г на 1,1 л): растворимые продукты, получаемые из зерна после винокурени  («Надризол, National Distillers Products Company), 25,0; лактоза 10,0; мальтоза 10,0, FeSO4-7H2O 0,01; MgSO4-7H2O 2,0; KH2P04 2,0; СаСОз 2,0; деионизированна it is suspended in sterile, deionized water (10 ml). This suspension was poured into four glass shaking vessels, which contained 100 ml of vegetative medium of the following composition (g per 1.1 l): soluble products obtained from the grain after the distillery (Nadrizol, National Distillers Products Company), 25, 0; lactose 10.0; maltose 10.0, FeSO4-7H2O 0.01; MgSO4-7H2O 2.0; KH2P04 2.0; CAS02; deionized

вода. Инкубирование проводили при 30°С на встр хивающем аппарате вращательного действи  при 250 об/мин в течение 24 час.water. Incubation was carried out at 30 ° C on a rotating rotary shaker at 250 rpm for 24 hours.

Эту культуральную среду примен ли дл  инокулировани  15 стекл нных сосудов объемом 500 мл, содержащих по 100 мл стерильной ферментационной среды следующего состава (г в 1 л): м сной гов жий экстракт 5,0; панкреатический гидролизат казеина 5,0; хлористый натрий 5,0; глицерин 15,0; углекислый кальций 2,0; деион зированна  вода до 1 л. рН среды 7,2. Инокулированнзю среду инкубировали в течение 72 час.This culture medium was used to inoculate 15 glass vessels with a volume of 500 ml, each containing 100 ml of sterile fermentation medium of the following composition (g per liter): meat extract 5.0; pancreatic hydrolyzate of casein 5.0; sodium chloride 5.0; glycerin 15.0; calcium carbonate 2.0; deionized water up to 1 l. pH of 7.2. Inoculated medium was incubated for 72 hours.

В ферментере объемом 40 л готовили 24 л производственной среды следующего состава,In a 40 L fermenter, 24 liters of a production medium of the following composition was prepared,

г: средство против вспенивани  в виде маслообразного полисилоксана 5,0, глицерин 375, декстроза 625, панкреатический гидролизат казеина 125, м сной экстракт 125, хлористый натрий 125, углекислый кальций 50; деионизированпа  вода.g: anti-foaming agent in the form of oily polysiloxane 5.0, glycerin 375, dextrose 625, pancreatic casein hydrolyzate 125, meat extract 125, sodium chloride 125, calcium carbonate 50; deionized water.

Начальное значение рН среды 7,0. Среду стерилизовали в автоклаве при 120°С в течение 30 мин под давлением 1,05-1,41 кг/см (15-20 ФУНТОВ на 1 кв. дюйм). После стерилизации рН среды 7,6.The initial pH value of 7.0. The medium was sterilized in an autoclave at 120 ° C for 30 minutes under a pressure of 1.05-1.41 kg / cm (15-20 LB per square inch). After sterilization, the pH of the medium is 7.6.

К стерильной среде добавл ли 25 г очищенного монензина, -оастворенного в 200 мл этанола и вводилИ 700 мл вегетативного прививочного материала, приготовленного, как описано .To a sterile medium, 25 g of purified monensin, ω-dissolved in 200 ml of ethanol were added and 700 ml of vegetative graft material prepared as described were added.

Фепментапионную среду аэрировали, пропуска  стерильный воздух со скоростью около I л (0,35 куб. фута), и перемешивали с помощью мешалки со скоростью 420 об/мин.The fermentation media was aerated, passing sterile air at a speed of about 1 liter (0.35 cubic feet), and stirred with a stirrer at 420 rpm.

Инкубировали при 30°С в течение приблизи9Incubated at 30 ° C for about 9

тельно 114,5 час. Процесс ферментации прослеживали с цомощью тонкослойной хроматографии на Силикагеле. Первоначально в ферментационной среде присутствовал лишь монензин. Постепенно по вилось второе п тно , указывающее на присутствие вещества А 27106. В конце ферментации присутствовало лишь п тно, свидетельствующее о наличии вещества А 27106.about 114.5 hours The fermentation process was followed up with a thin layer chromatography on silica gel. Initially, only monensin was present in the fermentation medium. A second spot gradually appeared, indicating the presence of substance A 27106. At the end of the fermentation, only a spot was present, indicating the presence of substance A 27106.

Пример 2. Культуру микроорганизма Streptomyces cinnamonensis АТСС 15413 выращивали в 55 мл среды, помещенной в кол-бу объемом 250 мл в течение 47 час. Этот вегетативный прививочный материал добавл ли к 220 мл среды в л«тровой колбе и инкубировали при встр хивании в течение 21 час. -Подготовленный прививочный матер-иал примен ли дл  посева в ферментер емкостью 40 л, содержащий 24 л стерильной среды следующего состава, г: .глюкоза 750,0; соева  мука 625,0; соевое масло 500,0; метилолеат 500; средство против вспенивани  в виде маслообразного полисилоксана 5,0; хлористый калий 2,5; двузамещенный фосфорнокислый калий 2,5; хлористый марганец, тетрагидрат 15,0; сернокислое железо, гидратированное 7,5; углекислый кальций 25,0; вода деионизированна  до объема 24 л. рН среды доводили до 8,0, добавл   16 мл 10 н. раствора гидрата окиси кали .Example 2. The culture of the microorganism Streptomyces cinnamonensis ATSS 15413 was grown in 55 ml of medium placed in a 250 ml volume for 47 hours. This vegetative graft was added to 220 ml of medium in a flask and incubated with shaking for 21 hours. - The prepared graft material was used for planting in a 40 L fermentor containing 24 liters of sterile medium of the following composition, g: glucose 750.0; soy flour 625.0; soybean oil 500.0; methyl oleate 500; anti-foaming agent in the form of an oily polysiloxane 5.0; potassium chloride 2.5; disubstituted potassium phosphate 2,5; manganese chloride, tetrahydrate 15.0; iron sulfate, hydrated 7.5; calcium carbonate 25.0; water is deionized to a volume of 24 liters. pH was adjusted to 8.0 by adding 16 ml of 10 n. potassium hydroxide solution.

Инокулированную среду инкубировали при 32°С в течение 234 час. Через 72 час после начала инкубировани  увеличивали количество продуваемого воздуха от 0,01 до 0,023 . (от 0,55 до 0,8 куб. фута в 1 мин) и скорость перемешивани  от 500 до 700 об/мин. Получение фактора А антибиотика А 3823 или монензина в основном заканчивалось через 210. час.The inoculated medium was incubated at 32 ° C for 234 hours. 72 hours after the start of incubation, the amount of blown air was increased from 0.01 to 0.023. (0.55 to 0.8 cubic feet per minute) and a stirring speed of 500 to 700 rpm. Obtaining factor A of antibiotic A 3823 or monensin generally ended after 210. hour.

Через 234 час содержимое ферментера пастеризовалИ дл  дезактивации S. cinnamonensis , после чего е ферментер добавл ли следующие количества питательных веществ, г: декстроза 750; соева  мука 625; хлористый марганец, тетрагидрат 155; углекислый кальций 12,5; сернокислое железо, гексагидрат 7,5 хлористый калий 2,5; двузамещенный фосфорнокислый кал-ий 2,5; метилолеат 250 мл; соевое масло 250 мл; вода деионизированна  до объема 24 л.After 234 hours, the contents of the pasteurized fermenter were used to deactivate S. cinnamonensis, after which the following nutrients were added to the fermentor, g: dextrose 750; soya flour 625; manganese chloride, tetrahydrate 155; calcium carbonate 12.5; iron sulfate, hexahydrate 7.5, potassium chloride 2.5; disubstituted phosphate cal-s 2.5; methyl oleate 250 ml; soybean oil 250 ml; water is deionized to a volume of 24 liters.

Значение показател  рН доводили до 8,0 путем добавлени  215мл 5 н. раствора гидрата окиси латри ,после чего среду стерилизовали. Cpe.Tv инокулировали вегетативной культурой. Streptomyces candidus NRRL 5449. Инкубипование проводили в течение 137 час при 30°С при аэрации со скоростью 0,01 (0,35 куб. фута iB 1 мин) перемешива  сначала при 120 об/мин, чепез 16 час при 420 об/мин; а через 40 час скорость перемешивани  повыщали до 500 об/мин. Декстрозу (400 г) добавл ли в следующие периоды инкубации, час: 44, 66,5, 89, 97, 113 и 127.The pH value was adjusted to 8.0 by adding 215 ml of 5N. solution of latry oxide hydrate, after which the medium was sterilized. Cpe.Tv was inoculated with a vegetative culture. Streptomyces candidus NRRL 5449. Incubation was carried out for 137 hours at 30 ° C with aeration at a rate of 0.01 (0.35 cubic feet iB 1 min), first stirring at 120 rpm, at 16 rpm at 420 rpm; and after 40 hours, the stirring speed increased to 500 rpm. Dextrose (400 g) was added to the following incubation periods, hours: 44, 66.5, 89, 97, 113, and 127.

Углекислый кальций (175 г) добавл ли к началу, на 72-й и 99-й час инкубации.Calcium carbonate (175 g) was added to the beginning, at the 72nd and 99th hour of incubation.

10ten

Контроль инкубации проводили, использу  метод тонкослойной хроматографии. Через 137 час производство вещества А 27106 по существу закапчивалось.The incubation controls were performed using thin layer chromatography. After 137 hours, the production of substance A 27106 was essentially pumped up.

Пример 3. Культуру микроорганизма S. candidus NRRL 5449 выращивали, как описано в примере 1. Клеточный материал отдел ли от ферментационной среды фильтрованием под вакуумом и раздел ли на равные части по 200 г, которые сохран ли в замороженном состо нии. Две из полученных частей оттаивали при комнатной температуре и суспендировали в 0,05 М фосфатном буфере (рН 5,8) до объема 600 мл. Эту клеточную суспензию обрабатывали ультразвуком е течении 30 мин, затем центрифугировали при 10000 об/мин 30 мин и остаток из «обломков клеточного материала суспендировали в 100 мл указанного буфера. Данную суспензию диализировали 18 час против указанного буфера . К 50 мл диализата добавл ли 120 мг глюкозы и 25 мг монензина в 2 мл этанола. Реакционную смесь перемещивали 72 час при 30°С, затем фильтровали; фильтрат экстрагировали хлороформом (100 мл). Полученный хлороформенный экстракт концентрировали в вакууме, хроматографировали на колонке с силикагелем (10 г). Отмывание адсорбента этилацетатом указывало на наличие лишь следов фактора А антибиотика А 3823. При отмывании адсорбента смесью этилацетата с метанолом (19:1) выдел лось вещество А 27106 (17 мг).Example 3. The culture of S. candidus NRRL 5449 microorganism was grown as described in Example 1. The cell material was separated from the fermentation medium by filtration under vacuum and divided into equal parts of 200 g each, which was stored in a frozen state. Two of the parts obtained were thawed at room temperature and suspended in 0.05 M phosphate buffer (pH 5.8) to a volume of 600 ml. This cell suspension was sonicated for 30 minutes, then centrifuged at 10,000 rpm for 30 minutes and the residue from the fragments of cellular material was suspended in 100 ml of the indicated buffer. This suspension was dialyzed for 18 h against the indicated buffer. 120 mg of glucose and 25 mg of monensin in 2 ml of ethanol were added to 50 ml of dialysate. The reaction mixture was moved 72 hours at 30 ° C, then filtered; the filtrate was extracted with chloroform (100 ml). The obtained chloroform extract was concentrated in vacuo, chromatographed on a column of silica gel (10 g). The washing of the adsorbent with ethyl acetate indicated the presence of only traces of factor A of the antibiotic A 3823. When the adsorbent was washed with a mixture of ethyl acetate and methanol (19: 1), substance A 27106 (17 mg) was released.

Полученный препарат А 27106  вл етс  эффективным средст1вом дл  лечени  и профилактики кокцидиоза домашней птицы. Количество лекарственного препарата, вводимого в корм птице, должно составл ть 0,005-0,05% от веса корма, предпочтительнее 0,01-0,04%.The resulting preparation A 27106 is an effective agent for the treatment and prevention of coccidiosis in poultry. The amount of drug administered to the feed for poultry should be 0.005-0.05% by weight of the feed, preferably 0.01-0.04%.

Вещество А 27106 также улучшает утилизацию корма жвачными животными, преимущественно взрослыми. Вводить его жвачным животным можно iB дозе 0,5-2,5 мг/кг в -сутки . Наилучшие результаты получают при даче его животным в количестве 0,1 -1,5 мг/кг в сутки.Substance A 27106 also improves feed utilization by ruminants, primarily adults. It can be administered to ruminants with a iB dose of 0.5-2.5 mg / kg per day. The best results are obtained when giving it to animals in an amount of 0.1-1.5 mg / kg per day.

Claims (4)

1.Способ получени  метаболита А 27106, включающий культивирование микроорганизмов вида Streptomyces candidus при аэрации в водной питательной среде, содержащей источники углерода, азота и минеральных веществ , отличающийс  тем, что, с целью получени  вещества, обладающего пониженной токсичностью, iB качестве микроорганизма берут Streptomvces candidus MRRL 5449, а в питательную среду дополнительно ввод т глюкозу и монензин, продуцируемый Streptomyces cinnamonensis.1. Method for the production of metabolite A 27106, including the cultivation of microorganisms of the type Streptomyces candidus with aeration in an aqueous nutrient medium containing sources of carbon, nitrogen and mineral substances, characterized in that, in order to obtain a substance with reduced toxicity, iB as a microorganism take Streptomvces candidus MRRL 5449, and glucose and monensin produced by Streptomyces cinnamonensis are added to the nutrient medium. 2.Способ по п. 1, отличающийс  тем, что в качестве источника монензина используют стерилизованную жидкую среду выращивани  Streptomyces cinnamonensis.2. A method according to claim 1, wherein a sterilized liquid growing medium of Streptomyces cinnamonensis is used as a source of monensin. 3.Способ по пп. 1 и 2, отличающийс  тем что питательную среду подвергают контактированию с отделенным от клеток и лиофилизпрованным культуральным бульоном среды предварительного выращивани  Streptomyces Candidas NRRL 5449. 3. Method according to paragraphs. 1 and 2, characterized in that the nutrient medium is contacted with the culture medium broth of Streptomyces Candidas NRRL 5449 pre-grown medium separated from the cells and lyophilized. 4. Способ по пи. 1 и 2, отличающийс  тем, что питательную среду подвергают контактированию с отделенными от среды предварительного ;выращивани  Streptomyces сапdidus NRRL 5449 клеточным материалом, очищенным посредством обработки ультразвуком , центрифугирОВани  и диализа.4. Method according to pi. 1 and 2, characterized in that the nutrient medium is contacted with cell material separated from the medium prior to Streptomyces sapdidus NRRL 5449 cultivation, purified by sonication, centrifugation and dialysis.
SU2002131A 1973-02-01 1974-02-01 Method for producing metabolite 2776 SU539538A3 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US32858673A 1973-02-01 1973-02-01

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU539538A3 true SU539538A3 (en) 1976-12-15

Family

ID=23281582

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU2002131A SU539538A3 (en) 1973-02-01 1974-02-01 Method for producing metabolite 2776

Country Status (27)

Country Link
JP (2) JPS5730477B2 (en)
AR (1) AR206509A1 (en)
AT (1) AT328083B (en)
BE (1) BE810416A (en)
BG (1) BG26953A3 (en)
CA (1) CA1016483A (en)
CH (1) CH589140A5 (en)
CS (1) CS193481B2 (en)
DD (1) DD112441A5 (en)
DE (1) DE2404958C2 (en)
DK (1) DK143036C (en)
EG (1) EG11287A (en)
ES (1) ES422834A1 (en)
FI (1) FI52993C (en)
FR (1) FR2215943B1 (en)
GB (1) GB1457796A (en)
HU (1) HU167276B (en)
IE (1) IE38780B1 (en)
IL (1) IL44065A (en)
IN (1) IN139462B (en)
NL (1) NL181367C (en)
NO (1) NO139788C (en)
PH (1) PH12449A (en)
SE (1) SE401930B (en)
SU (1) SU539538A3 (en)
YU (1) YU36990B (en)
ZA (1) ZA74464B (en)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS6384471U (en) * 1986-11-21 1988-06-02
JPH0483920U (en) * 1990-11-30 1992-07-21
JPH0512236U (en) * 1991-07-26 1993-02-19 東京ラヂエーター製造株式会社 Fuel tank backflow prevention structure

Also Published As

Publication number Publication date
YU36990B (en) 1984-08-31
IE38780B1 (en) 1978-05-24
PH12449A (en) 1979-03-08
FI52993C (en) 1978-01-10
NO740292L (en) 1974-08-02
CS193481B2 (en) 1979-10-31
IN139462B (en) 1976-06-19
NL7401311A (en) 1974-08-05
AR206509A1 (en) 1976-07-30
JPS49102888A (en) 1974-09-28
NO139788C (en) 1979-05-09
AU6473774A (en) 1975-07-24
IL44065A0 (en) 1974-05-16
FR2215943B1 (en) 1978-07-28
CH589140A5 (en) 1977-06-30
CA1016483A (en) 1977-08-30
ZA74464B (en) 1975-08-27
JPS5798211A (en) 1982-06-18
ATA76874A (en) 1975-05-15
SE401930B (en) 1978-06-05
JPS5730477B2 (en) 1982-06-29
DE2404958A1 (en) 1974-08-22
HU167276B (en) 1975-09-27
NL181367B (en) 1987-03-02
DE2404958C2 (en) 1985-04-18
DK143036C (en) 1981-10-26
FI52993B (en) 1977-09-30
BG26953A3 (en) 1979-07-12
DK143036B (en) 1981-03-16
FR2215943A1 (en) 1974-08-30
BE810416A (en) 1974-07-31
EG11287A (en) 1977-01-31
NO139788B (en) 1979-01-29
YU19074A (en) 1982-02-25
GB1457796A (en) 1976-12-08
JPS6026374B2 (en) 1985-06-24
NL181367C (en) 1987-08-03
AT328083B (en) 1976-03-10
DD112441A5 (en) 1975-04-12
ES422834A1 (en) 1976-09-16
IE38780L (en) 1974-08-01
IL44065A (en) 1977-03-31

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CA1338185C (en) Glycosidase inhibitor salbostatin, process for its preparation, and its use
US5294546A (en) Method for production of a growth factor for Bifidobacterium sp.
SU695565A3 (en) Method of preparing clavulic acid and its salts
JPH02257886A (en) Ws6049-b substance, its production and carcinostatic agent containing the substance as active component
US3085049A (en) Process for producing vitamin b12 and antibiotics
US2483892A (en) Process for the manufacture of chloramphenicol
US5902579A (en) Natamycin-containing streptomyces biomass and its use in animal feed
SU539538A3 (en) Method for producing metabolite 2776
US4229539A (en) β-Galactosidase and production thereof
US4770876A (en) Microbiological production of livestock growth-promoting agent
Kim et al. STUDIES ON MIKAMYCIN B LACTONASE I. DEGRADATION OF MIKAMYCIN B BY STREPTOMYCES MITAKAENSIS
SU517265A3 (en) The method of obtaining a nitrogen-containing antibiotic
CA1302927C (en) Efomycin g, its preparation and its use as a yield promoter in animals
JPH066061B2 (en) Method for producing ε-polylysine and ε-polylysine-producing bacterium
US3932619A (en) Metabolite A-27106 and processes for its preparation and use
US2996435A (en) Process for producing azaserine
US4262002A (en) Discovery of A73A, a new efrotomycin-like antibiotic in fermentation broth
US3230153A (en) Process for the production of regulin by aspergillus restrictus and resulting product
CA1334741C (en) Method for production of a growth factor for bifidobacterium sp
US2596969A (en) Fermentation process for producing grisein
US4197292A (en) Novel amylase inhibitors
JPS6391076A (en) Cultivation of three kinds of bacteria
US3849552A (en) Protease inhibitors and method for preparation
SU618053A3 (en) Method of obtaining antibacterial substance
US2647074A (en) Production of riboflavin by microbiological fermentation