[go: up one dir, main page]

SU212935A1 - METHOD OF MANUFACTURING THE FOOD MEDIUM FOR MICROORGANISMS - Google Patents

METHOD OF MANUFACTURING THE FOOD MEDIUM FOR MICROORGANISMS

Info

Publication number
SU212935A1
SU212935A1 SU1117102A SU1117102A SU212935A1 SU 212935 A1 SU212935 A1 SU 212935A1 SU 1117102 A SU1117102 A SU 1117102A SU 1117102 A SU1117102 A SU 1117102A SU 212935 A1 SU212935 A1 SU 212935A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
microorganisms
autolysis
biomass
medium
manufacturing
Prior art date
Application number
SU1117102A
Other languages
Russian (ru)
Original Assignee
Е. Г. Борисенко Кубанский рледицинский институт
Publication of SU212935A1 publication Critical patent/SU212935A1/en

Links

Description

Получение в нромышленности биомассы дрожжеподобных грибов Candida, растущих на парафинах нефги, известно. По основному авт. св. X 171827 известен способ производства биомассы,  вл ющейс  питательной средой дл  микроорганизмов, путем выращивапп  дрожжей на питательной среде, содержащей в качестве источника углерода углеводородные фракции нефти, например парафины, отделени  выращенных дрожжей от питательной среды, суспендировани  и стерилизации полученной биомассы.The production of biomass of yeast-like Candida fungi growing on paraffin nafgi in industry is well known. According to the main author. St. X 171827 discloses a method for producing biomass, which is a nutrient medium for microorganisms, by growing yeast on a nutrient medium containing hydrocarbon oil fractions, such as paraffins, separating grown yeast from the nutrient medium, suspending and sterilizing the biomass obtained as a carbon source.

Дл  использовани  биомассы в качестве питательной среды при выращивании микроорганизмов , высокотребовательных к составу сред, например патогенных, предложено суспензию биомассы перед стерилизацией разрушать автолизом при перемещивании всей массы , после чего отдел ть полученный автолизат от нерастворимых белковых веществ, не усваиваемых микроорганизмами, одним из известных способов, например фильтрацией.To use biomass as a nutrient medium for growing microorganisms that are highly demanding for the composition of media, such as pathogens, it is proposed to destroy the biomass suspension before sterilization by autolysis when moving the whole mass, then separate the obtained autolysate from insoluble protein substances that are not digested by microorganisms, one of the known methods eg filtering.

Автолиз следует вести в течение 24 час при 45-48° С, чтобы предотвратить развитие посторонней микрофлоры в процессе автолиза, в биомассу целесообразно вводить антисептик, например толуол.Autolysis should be carried out for 24 hours at 45-48 ° C. To prevent the development of extraneous microflora during autolysis, it is advisable to introduce an antiseptic into the biomass, for example, toluene.

ника углерода нефтепродукт), например парафины . Полученную биомассу отдел ют от питательной среды одним из известных способов , например сепарацией, и суспендируют.nickname carbon oil), for example paraffins. The resulting biomass is separated from the nutrient medium by one of the known methods, for example separation, and suspended.

Суспензию живых дрол;жей (с содержанием 350-400 г прессованных дрожей в 1 л) направл ют дл  автолиза в лабораторный ферментер емкостью 10 л. Серной кислотой активную реакцию среды довод т до рН 4,5, в дальнейшем этот показатель не регулируют. В ферментере поддерживают температуру 45- 48° С, а в качестве антисептика в него добавл ют толуол. Автолиз ведут 24 час, каждый ча.с автолизат подвергают легкому механическому перемешиванию. Процеес автолиза нрекран ают путем кип чени  автолизата в течение 1 час, затем автолизат освобождают от рыхлого осадка, например, сепарированием на лабораторной сенараторной центрифуге. Очищенный от осадка автолизат содержит следующие компоненты (з мг%):A suspension of living fruit; zhey (containing 350-400 g of pressed yeasts per liter) is sent for autolysis to a laboratory fermenter with a capacity of 10 liters. The active reaction of the medium is adjusted to pH 4.5 with sulfuric acid, and this index is not subsequently regulated. The temperature in the fermenter is maintained at 45-48 ° C, and toluene is added as an antiseptic. Autolysis is carried out for 24 hours, each autolysate tea is subjected to light mechanical mixing. The autolysis process is refined by boiling the autolysate for 1 hour, then the autolysate is freed from loose sediment, for example, by separation in a laboratory centrifuge. The autolysate purified from sediment contains the following components (s mg%):

общий азот около 500total nitrogen about 500

амминный азот 340-350ammine nitrogen 340-350

пеитон-следы, азот полипеитидов 210-220peiton-traces, polypetide nitrogen 210-220

азот аминокислот 190-200.amino acid nitrogen 190-200.

Автолизах развод т водопроводной водой до нужной концентрации питательных веществ, довод т до кипени , подщелачивают 40%-ным раствором NaOH до рН 7,6, затем внос т 0,1% двухзамещенного фосфорнокислого натри  () и 0,5Vo поваренной соли (NaCl). Полученную среду кип т т мин после чего фильтруют через полотно.The autolysis is diluted with tap water to the desired nutrient concentration, brought to a boil, alkalinized with 40% NaOH solution to a pH of 7.6, then 0.1% dibasic sodium phosphate () and 0.5 Vo sodium chloride (NaCl) are added . The resulting medium is boiled after which it is filtered through a web.

Плотную среду готов т из жидкой добавлением 2,5Vo агар-атара. Стерилизацию провод т в автоклаве 20 мин при 120° С.The dense medium is prepared from liquid by the addition of 2.5Vo agar-atar. Sterilization is carried out in an autoclave for 20 minutes at 120 ° C.

На основе такого автолизата можно получать и сухие агаровые среды путем упаривани  (концентрировани ) его в вакуум-выпаривателе до содержани  (в мг о/о): общего азота 1200-1500, амминного азота 850-1000; пропитывани  им агар-агара в соотношении 4 : 1 и последующего высущивани .On the basis of such an autolysate, dry agar media can also be obtained by evaporation (concentrating) it in a vacuum evaporator to a content (in mg v / o): total nitrogen 1200-1500, ammine nitrogen 850-1000; soak them agar-agar in the ratio of 4: 1 and subsequent drying.

При выращивании на жидких и плотных средах, приготовленных из автолизата, разведенного в два раза, в стационарных услови х некоторых представителей тифопаратифозной и дизентерийной групп и р да других микроорганизмов , интенсивность роста их не уступала таковой на общеприн тых м сных ередах .When grown in liquid and dense media prepared from autolysate, diluted two-fold, under stationary conditions of some representatives of typhoid paratyphoid and dysenteric groups and a number of other microorganisms, their growth rate was not inferior to that of common meat sources.

Пример. (Глубинное культивирование микроорганизмов с аэрацией). Выращивают щтамм Salmonella paratyphi В 50602 в 5-литровых бутыл х с матерчатыми барботерами, через которые продувают 2 л воздуха в течение 1 мин. Количество опытной и контрольной среды (бульон Хоттингера в бутыл х) 2 л.Example. (Deep cultivation of microorganisms with aeration). Salmonella paratyphi B 50602 are grown in 5-liter bottles with cloth bubblers through which 2 liters of air are blown for 1 minute. The number of experimental and control environment (Hottinger broth in bottles) 2 liters.

Перед высевом в питательные среды внос т 0,5|)/о глюкозы и аеногаситель (оксидированное персиковое масло 1 мл масла на 1 л питательной среды). Интенсивность роста олредел ют по оптическим стандартам контрольного института имени Тарасовича.Before sowing, 0.5 0,5 / глю of glucose and aero extinguisher (oxidized peach oil, 1 ml of oil per 1 l of nutrient medium) are introduced into nutrient media. Growth intensity is determined by the optical standards of the Tarasovich Control Institute.

После 14 час выращивани  в среде из автолизата содержалось в среднем 9 млрд, клеток в 1 мл, в бульоне Хоттингера-8 млрд, в 1 мл. При этом интенсивность роста на ней микроорганизмов не уступала интенсивности роста на бульоне Хоттиигера.After 14 hours of growth in the medium from autolysate, there were on average 9 billion cells per 1 ml, in Hottinger broth-8 billion per 1 ml. At the same time, the growth rate of microorganisms on it was not inferior to the growth rate on the Hottiiger broth.

Морфологические, культуральные, биохимические и антигенные свойства микроорганизмов , выращенных на средах из автолизата Candida, не отличались от таковых у микроорганизмов , выращенных на бульоне Хоттингера .The morphological, cultural, biochemical, and antigenic properties of microorganisms grown on media from Candida autolysate did not differ from those of micro organisms grown on Hottinger broth.

Предлагаема  среда может быть использована во многих микробиологических производствах , например ее можно использовать вместо кукурузного экстракта в производстве кормового витаминизированного биомицина и вместо гидролизата соевой муки при микробиологическом получении р-каротина.The proposed environment can be used in many microbiological industries, for example, it can be used instead of corn extract in the production of fodder fortified biomycin and instead of soy flour hydrolyzate in microbiological production of p-carotene.

Себестоимость такой среды значительно ниже себестоимости сред, изготавливаемых из других белковых субстратов (м са, рыбы, казеина и т. д.). Дл  промыщленности медицинской микробиологии можно использовать автолизаты Candida, выращенные на очищенных ларафинах, а дл  отраслей технической микробиологии, производ щих продукты, не идущие в пищу человеку и животным, рациональнее использовать автолизаты , выращенных на неочищенных парафинах.The cost of this medium is significantly lower than the cost of media made from other protein substrates (meat, fish, casein, etc.). For the medical microbiology industry, Candida autolysates grown on purified larafins can be used, and for technical microbiology industries producing products that cannot be eaten by humans and animals, it is more rational to use autolysates grown on crude wax.

Предмет изобретени Subject invention

Claims (3)

1.Способ производства питательной среды дл  микроорганизмов по авт. св. Af 171827 отличающийс  тем, что, с целью использовани  полученной среды дл  выращивани  микроорганизмов , высокотребовательных к составу сред, например патогенных, суспензию биомассы перед стерилизацией разрущают автолизом при перемещивании всей массы с последующе , очисткой полученного автолизата от нерастворимых белковых веществ одним из известных способов, например фильтрацией.1. Method of producing a nutrient medium for microorganisms according to ed. St. Af 171827 characterized in that, in order to use the obtained medium for growing microorganisms, highly demanding to the composition of media, for example pathogenic, prior to sterilization, biomass suspension is destroyed by autolysis by moving the whole mass, for example by filtration. 2.Способ по п. 1, отличающийс  &м, что автолиз провод т в течение 24 час при 45- 48° С.2. The method according to claim 1, characterized by the fact that autolysis is carried out for 24 hours at 45- 48 ° C. 3.Способ по пп. 1 и 2, отличающийс  тем, что, с целью предотвращени  развити  посторонней микроф)лоры в процессе автолиза, в биомассу ввод т антисептик,3. Method according to paragraphs. 1 and 2, characterized in that, in order to prevent the development of extraneous microflora during autolysis, an antiseptic is introduced into the biomass, толуол.toluene.
SU1117102A METHOD OF MANUFACTURING THE FOOD MEDIUM FOR MICROORGANISMS SU212935A1 (en)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU212935A1 true SU212935A1 (en)

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2887848B2 (en) Production of zeaxanthin and zeaxanthin-containing composition
Khanafari et al. Alginate biopolymer production by Azotobacter chroococcum from whey degradation
US5493015A (en) Method for reducing contaminative live bacteria in xanthan gum
SU212935A1 (en) METHOD OF MANUFACTURING THE FOOD MEDIUM FOR MICROORGANISMS
Mohammed et al. Local culture medium from the legumes mixture as a novel media for the growth and stimulation of prodigiosin pigment which production from Serratia marcescens that isolated environmentally
CN111925943B (en) Chlorella vulgaris, and its culture method and application
JPS58155085A (en) A microorganism belonging to the genus Hypomicrobium and a method for decomposing a methyl group-containing compound in an aqueous solution using the microorganism
CN1112124C (en) Process for prpearing marine active peptide as food additive
EP1276891B1 (en) A method for enhancing levels of polyunsaturated fatty acids in thraustochytrids
Sushma et al. Isolation, production and purification of lipase from Aspergillus niger using gingerly oil cake as substrate
WO2007046685A1 (en) Starter kit for the production of pure and high quality microalgae
CH666049A5 (en) BACTERIOLYTIC ENZYME AND PROCESS FOR PREPARING THE SAME.
RU2020155C1 (en) Strain of fungus hypomyces rosellus - a producer of lipids with simultaneous presence of organic pigment
Morlta Starvation-survival strategies in bacteria
CN119709513B (en) Siamese bacillus with grease degradation function and application thereof
CN112689669B (en) Method and related equipment for culturing target microorganisms
RU2534355C1 (en) Method of production of hydrolyzate from fruit and skin of bananas as growth stimulator for cultivation of leptospira
JPS63216490A (en) Production of eicosapentaenoic acid by microorganism and microorganism using therefor
RU2745504C9 (en) Liquid nutritional medium for cultivation and collection of biomass of vaccine strain of plague microbe (yersinia pestis ev)
RU2227806C1 (en) Method for preparing nutrient medium for culturing bifidobacteria
JP2007308432A (en) Method for producing astaxanthin
RU2125071C1 (en) Strain flavobacterium aquatile - producer of raspberry food pigment
JP2004089106A (en) A method for obtaining a microorganism or a microorganism gene.
SU1573024A1 (en) Nutrient medium for growing fungus oospora lactis - source of protein-vitamin biomass
RU2560598C2 (en) Nutrient medium for growing microorganisms deinococcus radiodurans