SU1654740A1 - Method for determining degree of biological infectiousness of vine materials - Google Patents
Method for determining degree of biological infectiousness of vine materials Download PDFInfo
- Publication number
- SU1654740A1 SU1654740A1 SU884611679A SU4611679A SU1654740A1 SU 1654740 A1 SU1654740 A1 SU 1654740A1 SU 884611679 A SU884611679 A SU 884611679A SU 4611679 A SU4611679 A SU 4611679A SU 1654740 A1 SU1654740 A1 SU 1654740A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- ornithine
- sample
- lactic acid
- juice
- acid bacteria
- Prior art date
Links
- 239000000463 material Substances 0.000 title claims abstract description 10
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 5
- JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-N lactic acid Chemical compound CC(O)C(O)=O JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 24
- AHLPHDHHMVZTML-BYPYZUCNSA-N L-Ornithine Chemical compound NCCC[C@H](N)C(O)=O AHLPHDHHMVZTML-BYPYZUCNSA-N 0.000 claims abstract description 21
- AHLPHDHHMVZTML-UHFFFAOYSA-N Orn-delta-NH2 Natural products NCCCC(N)C(O)=O AHLPHDHHMVZTML-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 21
- UTJLXEIPEHZYQJ-UHFFFAOYSA-N Ornithine Natural products OC(=O)C(C)CCCN UTJLXEIPEHZYQJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 21
- 229960003104 ornithine Drugs 0.000 claims abstract description 21
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 claims abstract description 13
- 235000014655 lactic acid Nutrition 0.000 claims abstract description 12
- 239000004310 lactic acid Substances 0.000 claims abstract description 12
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 claims description 16
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 claims 2
- 235000011389 fruit/vegetable juice Nutrition 0.000 abstract description 16
- 230000007547 defect Effects 0.000 abstract description 4
- 235000013305 food Nutrition 0.000 abstract description 2
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N Ammonia Chemical compound N QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 18
- 229910021529 ammonia Inorganic materials 0.000 description 9
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 7
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 6
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 241000186660 Lactobacillus Species 0.000 description 4
- 229940039696 lactobacillus Drugs 0.000 description 4
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 4
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 3
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 3
- 238000010828 elution Methods 0.000 description 3
- 238000001704 evaporation Methods 0.000 description 3
- 230000008020 evaporation Effects 0.000 description 3
- WJSIUCDMWSDDCE-UHFFFAOYSA-K lithium citrate (anhydrous) Chemical compound [Li+].[Li+].[Li+].[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O WJSIUCDMWSDDCE-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 3
- 238000000386 microscopy Methods 0.000 description 3
- 239000011347 resin Substances 0.000 description 3
- 229920005989 resin Polymers 0.000 description 3
- 241001529936 Murinae Species 0.000 description 2
- 241000219095 Vitis Species 0.000 description 2
- 235000009754 Vitis X bourquina Nutrition 0.000 description 2
- 235000012333 Vitis X labruscana Nutrition 0.000 description 2
- 235000014787 Vitis vinifera Nutrition 0.000 description 2
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 2
- 239000007979 citrate buffer Substances 0.000 description 2
- 239000012154 double-distilled water Substances 0.000 description 2
- 235000019441 ethanol Nutrition 0.000 description 2
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 2
- 229940071264 lithium citrate Drugs 0.000 description 2
- FEMOMIGRRWSMCU-UHFFFAOYSA-N ninhydrin Chemical compound C1=CC=C2C(=O)C(O)(O)C(=O)C2=C1 FEMOMIGRRWSMCU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 2
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 2
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 2
- 239000000047 product Substances 0.000 description 2
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-O Ammonium Chemical compound [NH4+] QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 1
- 241000219094 Vitaceae Species 0.000 description 1
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 244000052616 bacterial pathogen Species 0.000 description 1
- 229910000278 bentonite Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000000440 bentonite Substances 0.000 description 1
- SVPXDRXYRYOSEX-UHFFFAOYSA-N bentoquatam Chemical compound O.O=[Si]=O.O=[Al]O[Al]=O SVPXDRXYRYOSEX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000006065 biodegradation reaction Methods 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 239000007853 buffer solution Substances 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 239000003638 chemical reducing agent Substances 0.000 description 1
- 238000005352 clarification Methods 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 235000019674 grape juice Nutrition 0.000 description 1
- 235000021021 grapes Nutrition 0.000 description 1
- 230000005484 gravity Effects 0.000 description 1
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 238000009928 pasteurization Methods 0.000 description 1
- 244000052769 pathogen Species 0.000 description 1
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 1
- 238000006479 redox reaction Methods 0.000 description 1
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
- 230000035899 viability Effects 0.000 description 1
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к пищевой промышленности , в частности к винодельческой , и касаетс идентификации происхождени пороков и повышени достоверности определени поражени молочнокислыми бактери ми соков и виноматериалов по готовому продукту Цель изобретени - повышение точности определени биозараженности виноматериала молочнокислыми бактери ми рода Lactobaclllus. Это достигаетс тем, что оценку провод т по концентрации орнитина при ее превышении 12 ± 2 мг/дм в исследуемом продукте. 1 табл.The invention relates to the food industry, in particular to the wine industry, and relates to identifying the origin of defects and increasing the reliability of determining damage to lactic acid bacteria of juices and wine materials on the finished product. The purpose of the invention is to improve the accuracy of determination of the biofeatability of wine materials by the lactic acid bacteria of the genus Lactobaclllus. This is achieved by the fact that the assessment is carried out on the concentration of ornithine when it is exceeded 12 ± 2 mg / dm in the test product. 1 tab.
Description
слcl
СWITH
Изобретение относитс к пищевой промышленности , в частности к винодельческой , и касаетс идентификации происхождени пороков и повышени достоверности определени поражени молочнокислыми бактери ми рода Lactobacillus соков и вино- материалов по готовому продукту.The invention relates to the food industry, in particular to the wine industry, and concerns the identification of the origin of defects and an increase in the reliability of determining the damage to the lactic acid bacteria of the genus Lactobacillus juice and wine materials on the finished product.
Целью изобретени вл етс повышение точности определени биозараженности виноматериалов молочнокислыми бактери ми рода Lactobacillus.The aim of the invention is to improve the accuracy of determination of the biodegradation of wine materials by the lactic acid bacteria of the genus Lactobacillus.
Из средней пробы сока, виноматериала и вина с мышиным тоном выдел ют с последующим определением качественного и количественного состава свободные аминокислоты и по концентрации орнитина суд т о пути возникновени мышиного тона в результате жизнеде тельности молочнокислых бактерий рода Lactobacillus. Среднюю пробу образца в количестве 5 см нанос т на колонну с смолой КУ-2 в Н -форме. Ор- нитин элюируют градиентным растворомFrom the average sample of juice, wine material and wine with murine tone, free amino acids are determined followed by the qualitative and quantitative composition, and the ornithine concentration determines the origin of the murine tone as a result of the lactic acid bacteria of the genus Lactobacillus. An average sample of 5 cm is applied to a column with KU-2 resin in H-form. Ornithine is eluted with a gradient solution.
аммиака 2М 100 см3 и 4н 200см3 Объединенный элюат упаривают досуха, перераствор ют в бидистиллированной воде и вновь упаривают досуха.ammonia 2M 100 cm3 and 4N 200 cm3. The combined eluate is evaporated to dryness, redissolved in bidistilled water and again evaporated to dryness.
По концентрации орнитина суд т о причине возникновени порока: до 12 ± ± 2 мг/дм - окислительно-восстановительный , выше 12 ± 2 мг/дм3- микробиаль- ный путь образовани пороков.By the concentration of ornithine, the reason for the occurrence of the defect is judged: up to 12 ± 2 mg / dm - redox, above 12 ± 2 mg / dm3 - the microbial path of the formation of defects.
Пример 1. Виноград белых сортов перерабатывают на дробилке-гребнеотде- лителе, полученную мезгу прессуют. Отбирают сусло-самотек и первое давление. Сусло осветл ют отстаиванием, охлаждают и после сн ти с осадка спиртуют дл получени спиртованного сока крепостью 16 об.% спирта. Спиртованный сок хран т при 4-8°С в течение года. В соке при хранении образуетс мышиный тон. Отбирают среднюю пробу, которую раздел ют на две части. Одну часть пастеризуют и фильтруютExample 1. White grape varieties are processed in a crusher-crusher, and the resulting pulp is pressed. Select the wort drift and the first pressure. The wort is clarified by settling, cooled and, after removal from the precipitate, is alcoholized to produce alcoholized juice with a strength of 16% by volume of alcohol. The alcoholized juice is stored at 4-8 ° C for a year. A mouse tone is formed in the juice during storage. An average sample is taken which is divided into two parts. One part is pasteurized and filtered.
о слabout cl
N vjN vj
&&
через обеспложивающий фильтр, получают стерильную пробу образца. По 10 см3 исходной и стерильной пробы спиртованного сусла центрифугируют 15 мин при 3 тыс. об./мин. Центрифугат удал ют, а осадок микроскопируют. В исходном образце после центрифугировани определ ют в поле зрени скопление молочнокислых бактерий рода Lactobaclllus в виде тонких палочек, расположенных отдельно и в виде цепочек. В стерильной пробе не обнаруживают болезнетворные бактерии. Дл провоцировани роста бактерий провод т посев образца на питательную среду с последующим тер- мостатированием при 30°С в течение 4-6 сут. После микроскопировани стерильной пробы молочнокислые бактерии не обнаружены .through the filter filter, a sterile sample is obtained. 10 cm3 of the initial and sterile samples of the alcoholized wort are centrifuged for 15 minutes at 3 thousand rpm. The centrifugal was removed and the precipitate was microscopically. In the original sample after centrifugation, in the field of vision, the accumulation of lactic acid bacteria of the genus Lactobaclllus in the form of thin rods, arranged separately and in the form of chains, is determined. In the sterile sample does not detect the pathogenic bacteria. To induce the growth of bacteria, the sample is sown on a nutrient medium, followed by thermostatisation at 30 ° C for 4-6 days. After microscopy of the sterile sample, no lactic acid bacteria were detected.
По 5 см3 исходной и стерильной средней пробы спиртованного сока нанос т на колонки со смолой КУ-2 в Н -форме совместно с внутренним стандартом - норлейци- ном в количестве 0,5 см при концентрации 0,25 М и промывают дистиллированной водой объемом 300 см3 дл удалени редуци- рующих веществ. Орнитин в составе свободных аминокислот элюируют градиентным раствором аммиака в концентрации 2 н. 100 см3 и 4 н. 200 см3. Объединенный аммиачный элюат упаривают до сухого ос- татка, перераствор ют в 300 см3 бидистил- лированной воды и вновь упаривают до сухого остатка. Операцию перерастворени сухого остатка свободных аминокислот и упаривани в воде повтор ют дважды, а за- тем его развод т в 5 см3 цитратно-литиевого буферного раствора с рН 2,2.5 cm3 of the initial and sterile average sample of alcoholized juice are applied to the columns with KU-2 resin in H-form together with the internal standard - Norleucine in an amount of 0.5 cm at a concentration of 0.25 M and washed with distilled water of 300 cm3 to remove reducing agents. Ornithine in the composition of free amino acids elute with a gradient solution of ammonia at a concentration of 2 n. 100 cm3 and 4 n. 200 cm3. The combined ammonium eluate is evaporated to dryness, redissolved in 300 cm3 of double distilled water and again evaporated to dryness. The operation of reconstitution of the free amino acid solids and evaporation in water is repeated twice, and then diluted in 5 cm3 of lithium-citrate buffer solution with a pH of 2.2.
Трехкратное упаривание образца требуетс дл максимального удалени аммиака , который мешает определению орнитина. В пор дке разделени в режиме свободных аминокислот на аминокислотном анализаторе орнитин элюируют сразу же за аммиаком . Анализ свободных аминокислот провод т на аминокислотном анализаторе. Разделение свободных аминокислот осуществл ют на ионите Ostlon LGFA. Элюирова- ние орнитина провод т буферным раствором рН 5,0 при скорости буферного потока 14 смэ/ч и нингидринового реактива 12 см3/ч при температуре колонки 58°С. Определ ют орнитин на 152-й минуте анализа. Количественное определение орнитина провод т по величине оптической плотности при 520 нм, которую перевод т в соот- ветствующую концентрацию (мг/дм3) по калибровочному графику.Threefold evaporation of the sample is required to maximize the removal of ammonia, which interferes with the determination of ornithine. In the order of separation in the free amino acid regime on an amino acid analyzer, ornithine is eluted immediately after ammonia. Free amino acid analysis is performed on an amino acid analyzer. The separation of free amino acids is carried out on an Ostlon LGFA ion exchanger. The elution of ornithine was carried out with a buffer solution of pH 5.0 at a buffer flow rate of 14 cm / h and a ninhydrin reagent of 12 cm3 / h at a column temperature of 58 ° C. Ornithine is determined at 152 minutes of analysis. Quantitative determination of ornithine is carried out by the value of optical density at 520 nm, which is converted to the corresponding concentration (mg / dm3) according to the calibration graph.
Качественный и количественный состав свободных аминокислот исходного и стерильного спиртованного сока приведен в таблице.The qualitative and quantitative composition of free amino acids of the source and sterile alcoholized juice is given in the table.
Пастеризаци образца не вли ет на качественный и количественный состав свободных аминокислот. Концентраци орчи- тина в обоих вариантах опытов в пределах 40 мг/дм , что выше нормального содержани его в здоровом соке (12 ± 2 мг/дм. В этом соке были обнаружены молочнокислые бактерии рода Lactobacltlus. В результате их жизнеде тельности произошло увеличение орнитина ц образовалс мышиный тон. Стерильный образец не дал роста микроорганизмов .Sample pasteurisation does not affect the qualitative and quantitative composition of free amino acids. The concentration of orchitin in both variants of experiments within 40 mg / dm, which is higher than its normal content in healthy juice (12 ± 2 mg / dm. In this juice, lactic acid bacteria of the genus Lactobacltlus were detected. As a result of their vital activity, mouse tone formed. A sterile specimen prevented the growth of microorganisms.
П р и м е р 2. Виноград сорта Траминер перерабатывают на дробилке-гребнеотде- лителе, полученную мезгу прессуют и отбирают сусло-самотек и первое давление. Сусло осветл ют отстаиванием при охлаждении с добавлением 2 г/дал бентонитовой суспензии. Осветление провод т в течение 18-20 ч и снимают с осадка. Осветленный сок креп т до концентрации 16 об.% этиловым спиртом и хран т в течение года. В соке образовалс мышиный ток. Из образца отбирают среднюю пробу, которую дел т на две части. Одну часть пробы пастеризуют и фильтруют через обеспложивающий фильтр, получают стерильную пробу образца . Исходную и стерильную пробы образца готов т дл микроскопировани и микроскопируют . Болезнетворные микроорганизмы в обеих пробах образца не обнаружены. Дл провоцировани роста бактерий провод т посев проб на питательный раствор. Пробы выдерживают в термостате при 30°С в течение 4-6 сут. По истечении этого времени в пробах образца при микроскопиро- вании молочнокислые бактерии рода Lactobacillus не обнаружены. Они не размножились , т.е. образец здоровый.PRI mme R 2. Traminer grapes are processed in a crusher-crusher, the resulting pulp is compressed and the gravity wort is taken and the first pressure is taken. The wort is clarified by settling on cooling with the addition of 2 g / dal of the bentonite suspension. The clarification is carried out for 18-20 hours and removed from the sediment. The clarified juice is fixed to a concentration of 16 vol.% Ethyl alcohol and stored for a year. In the juice formed mouse current. An average sample is taken from the sample and divided into two parts. One part of the sample is pasteurized and filtered through a filter to provide a sterile sample. The initial and sterile specimens are prepared for microscopy and microscopically. Pathogens were not found in both samples. To induce bacterial growth, nutrient solution samples are seeded. Samples incubated in a thermostat at 30 ° C for 4-6 days. After this time, lactic acid bacteria of the genus Lactobacillus were not detected in samples of the sample during microscopy. They did not multiply, i.e. the sample is healthy.
Определение орнитина в исходном и пастеризованном спиртованном соке Траминер провод т следующим образом. По 5 см каждой пробы образца совместно с внутренним стандартом - 0,25 М раствором нор- лейцина в количестве 0,5 см нанос т на колонки со смолой КУ-2 в Н+-форме и промывают 300 см3 бидистиллированной воды дл удалени редуцирующих веществ. Элю- ирование орнитина в составе свободных аминокислот осуществл ют градиентным раствором: 100 см 2 н. и 200 см 4 н. амми- ка. Аммиачный элюат упаривают до сухого остатка, который перераствор ют в бидистиллированной воде и вновь упаривают. Операцию перерастворени сухого остатка в бидистиллированной воде и упаривани повтор ют дважды. Сухой остаток развод т в 5 см3 цитратно-литиевого буферного раствора при рН 2,2. Дл максимального удалени аммиака провод т трехкратное упаривание элюата. Аммиак мешает определению орнитина. Уменьшение содержани аммиака увеличивает степень его разделе- ни с орнитином. Количественное определение орнитина провод т на аминокислотном анализаторе. Разделение свободных аминокислот осуществл ют на ионите Ostion LGFA. Элюирование орнитина прохо- дит цитратно-литиевым буфером рН 5,0 при скорости буферного потока 14 см3/ч и нин- гидринового реактива 12 см /ч при температуре колонки 58°С. Элюируетс орнитин на 152-й минуте анализа. Концентрацию ор- нитина определ ют по величине оптической плотности при 520 нм, которую перевод т соответствующую концентрацию (мг/дм3) по калибровочному графику.The determination of ornithine in the original and pasteurized alcoholized Traminer juice is carried out as follows. Each sample of the sample, together with the internal standard — 0.25 M solution of norwayucine in an amount of 0.5 cm, is applied to the columns with KU-2 resin in H + form and washed with 300 cm3 of double distilled water to remove the reducing substances. The elution of ornithine in the composition of free amino acids is carried out with a gradient solution: 100 cm 2 n. and 200 cm 4 n. ammonia. The ammonia eluate is evaporated to a dry residue, which is redissolved in bidistilled water and again evaporated. The operation of reconstitution of the dry residue in bidistilled water and evaporation is repeated twice. The dry residue is diluted in 5 cm3 of lithium citrate buffer solution at pH 2.2. To maximize the removal of ammonia, the eluate was evaporated three times. Ammonia interferes with the determination of ornithine. A decrease in ammonia increases the degree of its separation with ornithine. Quantitative determination of ornithine is carried out on an amino acid analyzer. The separation of free amino acids is carried out on an Ostion LGFA ion exchanger. The elution of ornithine passes through a citrate-lithium buffer pH 5.0 at a buffer flow rate of 14 cm3 / h and a ninhydrin reagent at 12 cm / h at a column temperature of 58 ° C. Ornithine is eluted at 152 minutes of analysis. The concentration of ornithine is determined by the magnitude of the optical density at 520 nm, which is translated by the corresponding concentration (mg / dm3) according to the calibration graph.
По данным качественного и количест- венного состава свободных аминокислот исходной и стерильной пробы образца спиртованного сока сорта Траминер приведена концентраци орнитина в исходном и стерильном спиртованном соке практиче- ски одинакова и не превышает 10 мг/дм3. Это позвол ет сделать вывод: мышиный тон образовалс в этом случае, только в результате окислительно-восстановительных реакций . Концентраци орнитина в этом образце не превышает его критического содержани дл виноградной годы.According to the qualitative and quantitative composition of free amino acids of the initial and sterile sample of a sample of alcoholized Traminer variety juice, the concentration of ornithine in the initial and sterile alcoholized juice is almost the same and does not exceed 10 mg / dm3. This leads to the conclusion: the mouse tone was formed in this case, only as a result of redox reactions. The ornithine concentration in this sample does not exceed its critical content for the grape years.
Предлагаемый способ позвол ет установить наличие молочнокислых бактерий, образующих мышиный тон в результате своей жизнеде тельности, и обладает специфичностью определени , объективностью а оценке больших партий виноматериалов и виноградного сока, возможностью контролировани сока и виноматериалов на наличие продуктов жизнеде тельности болезнетворных молочнокислых бактерий. Благодар высокой достоверности способа его можно использовать в качестве арбитражного метода в случае необходимости четкой идентификации причин возникновени мышиного тона.The proposed method makes it possible to establish the presence of lactic acid bacteria forming the mouse tone as a result of its viability, and has the specificity of determination, objectivity in the assessment of large quantities of wine materials and grape juice, and the ability to control juice and wine materials for the presence of life products of pathogenic lactic acid bacteria. Due to the high reliability of the method, it can be used as an arbitration method if it is necessary to clearly identify the causes of the mouse tone.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU884611679A SU1654740A1 (en) | 1988-10-28 | 1988-10-28 | Method for determining degree of biological infectiousness of vine materials |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU884611679A SU1654740A1 (en) | 1988-10-28 | 1988-10-28 | Method for determining degree of biological infectiousness of vine materials |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| SU1654740A1 true SU1654740A1 (en) | 1991-06-07 |
Family
ID=21412157
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| SU884611679A SU1654740A1 (en) | 1988-10-28 | 1988-10-28 | Method for determining degree of biological infectiousness of vine materials |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| SU (1) | SU1654740A1 (en) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2608653C2 (en) * | 2011-07-18 | 2017-01-23 | Лукссел Байосайенсиз Лимитед | Method for detection and quantitative determination of heat-resistant microorganisms in products |
-
1988
- 1988-10-28 SU SU884611679A patent/SU1654740A1/en active
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Авторское свидетельство СССР Ms 1510527, кл. G 01 N 33/02. 1987. * |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2608653C2 (en) * | 2011-07-18 | 2017-01-23 | Лукссел Байосайенсиз Лимитед | Method for detection and quantitative determination of heat-resistant microorganisms in products |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JP3127064B2 (en) | Methods for detecting microorganisms in samples | |
| DE69122385T2 (en) | NEW AND IMPROVED METHOD FOR DETERMINING E. COLI IN WATER | |
| AU609794B2 (en) | A test set and a process for the determination of antibiotics in milk and a novel streptococcus thermophilus strain to be used therein | |
| FI57128B (en) | SAETT ATT IDENTIFIED MICROORGANISM | |
| Smit et al. | Evaluating the influence of malolactic fermentation inoculation practices and ageing on lees on biogenic amine production in wine | |
| Guzzo et al. | Induction of stress proteins in Leuconostoc oenos to perform direct inoculation of wine | |
| Stannard et al. | Rapid microbiology: Applications of bioluminescence in the food industry a review | |
| SU1654740A1 (en) | Method for determining degree of biological infectiousness of vine materials | |
| Smith | Quantitative measurement of the growth of pleuropneumonia-like organisms | |
| CN1367843A (en) | Culture medium for detection of Dekkera and Brettanomyces | |
| CA1060764A (en) | E. coli detection broth for clinical use with automated microbial analyzer | |
| US20180274005A1 (en) | Cord blood therapy to treat chronic disease caused by l-form bacteria | |
| US4217411A (en) | Novel enrichments for blood culture media | |
| Webb | Detection by Warburg manometry of compounds stimulatory to lactic acid bacteria | |
| Kralova et al. | Use of vitamin B12 radioassay in the analysis of biological materials, mainly of foods | |
| Green et al. | A differential procedure for bacteriological studies useful in the fermentation industry | |
| Buckley et al. | Proteolytic activity of Pseudomonas perolens and effects on porcine muscle | |
| Purko et al. | The liberation of water-insoluble acids in cream by Geotrichum candidum | |
| SU1635132A1 (en) | Method for determination of biological infection of grapes and wine materials | |
| US4952497A (en) | Simple and rapid method for detection of virulent Yersinia enterocolitica | |
| Thomas et al. | A selective medium for detecting yeasts capable of spoiling wine | |
| RU2243555C2 (en) | Method for evaluation of microbiological purity of fruit, vegetable and fruit or vegetable processing products | |
| Przybyt et al. | Application of biosensors in early detection of contamination with lactic acid bacteria during apple juice and concentrate production | |
| RU2329304C1 (en) | Method of determining decarboxylase activity of lactic acid bacteria | |
| Vo et al. | Safety assessment of β-fructofuranosidase |