[go: up one dir, main page]

SU1395673A1 - Method of producing immobilized luminescent bacteria photobacterium fischeri strain 6 - Google Patents

Method of producing immobilized luminescent bacteria photobacterium fischeri strain 6 Download PDF

Info

Publication number
SU1395673A1
SU1395673A1 SU864111207A SU4111207A SU1395673A1 SU 1395673 A1 SU1395673 A1 SU 1395673A1 SU 864111207 A SU864111207 A SU 864111207A SU 4111207 A SU4111207 A SU 4111207A SU 1395673 A1 SU1395673 A1 SU 1395673A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
cells
suspension
immobilized
polymer
luminescence
Prior art date
Application number
SU864111207A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Николай Альфредович Платэ
Владимир Владимирович Чупов
Александра Владиславовна Усова
Лев Иванович Валуев
Вадим Степанович Данилов
Виталий Яковлевич Кабанов
Игорь Александрович Часовников
Original Assignee
МГУ им.М.В.Ломоносова
Институт нефтехимического синтеза им.А.В.Топчиева
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by МГУ им.М.В.Ломоносова, Институт нефтехимического синтеза им.А.В.Топчиева filed Critical МГУ им.М.В.Ломоносова
Priority to SU864111207A priority Critical patent/SU1395673A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1395673A1 publication Critical patent/SU1395673A1/en

Links

Landscapes

  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Abstract

Изобрет.ение относитс  к области химии полимеров и биотехнологии и может быть использовано в аналитической химии дл  определени  примем сей органических соединений в растворах Цель изобретени  - увеличение длительности использ.ов ани  иммобилизованных клеток за счет повышени  времени их свечени „ Способ заключаетс  в обработке суспензии клеток морских люминесцентных бактерий Photo- bacterium fisheri штамм 6 привитым сополимером синтетического полимера и хлорангидрида (мет)акриловой кислоты , содержащим 50-170 маСа% привитого олигохлорангидрида с моЛоМ 1000- 1600, из расчета 1 мл суспензии, содержащей 10 - 10 клеток на 1-2 см привитого сополимерао Врем  свечени  целевого продукта составл ет 30-40 ч 1 табЛо i СЛThe invention relates to the field of polymer chemistry and biotechnology and can be used in analytical chemistry to determine the acceptance of organic compounds in solutions. The purpose of the invention is to increase the duration of use of ani immobilized cells by increasing the time of their luminescence. luminescent bacteria Photo-bacterium fisheri strain 6 grafted with a copolymer of a synthetic polymer and (meth) acrylic acid chloride containing 50-170 mCa% of grafted oligochlorine with molol 1000 1600, at the rate of 1 ml of suspension containing 10 to 10 cells per 1-2 cm of graft copolymera. The luminescence time of the target product is 30-40 h 1 tabLo i SL

Description

;ABOUT

сдsd

О5O5

||

0000

Изобретение относитс  к химии полимеров и биотехнологии, а именно к способу ковалентной иммобилизации клеток, и может быть использовано S технике, в частности дл  создани  Обладакицих повышенным временем деист- Ви  датчиков дл  определени  различны примесей в растворах, на основе иммобилизованных клеток морских люминес -. центиых бактерий PhotobacteriuM fishe ri (КМПБ)оThe invention relates to the chemistry of polymers and biotechnology, in particular, to the method of covalent immobilization of cells, and can be used in the S technique, in particular to create enhanced de-wipe sensors for determining various impurities in solutions based on immobilized marine luminescent cells. tsentih bacteria PhotobacteriuM fishe ri (CMPB) about

Цель изобретени  - увеличение длительности использовани  иммобилизован клеток за счет повьшени  времени ipx свечени  оThe purpose of the invention is to increase the duration of the use of immobilized cells by increasing the luminescence ipx time.

I Способ заключаетс  в ковалентной иммойшизации клеток путем обработки их водной суспензии ацилирующим аген- VOM, в качестве клеток используют клетки морских люминесцентных бактерий Photobacterium flsheri штамм б, в качестве ацилирун цего агента - лрквитой сополимер синтетического полмера и хлорангидрида (мет)акриловой кислоты, содержащий 50-170 мас,% привитого олигохлорангидрида с .мо лекул рной массой 1000-1600, и обра- iSoTKy суспензии клеток провод т из засчета 1 мл суспензии, содержащий 10 - 10 клеток, на 1-2 см поверх™ ости привитого сополимера ; Получение иммобилизованных кле- JTOK (люминесцирующего полимерного 1атериапа) провод т в две стадии о I The method consists in covalent immoisation of cells by treating their aqueous suspension with an acylating agent VOM; cells of marine luminescent bacteria Photobacterium flsheri strain b are used as cells; as an acylorrheic agent, an organic polymeric polymer and an acid (meth) acrylic acid acid copolymer (meth) acrylic acid copolymer is synthesized with a synthetic polymer and an acid (meth) acrylic acid acid copolymer (meth) acrylic acid; -170 wt.% Grafted oligochloride hydride with a molecular mass of 1000-1600 and the cell suspension formed from isoTKy are 1 ml of the suspension containing 10-10 cells 1-2 cm over the top of the graft copolymer; The preparation of immobilized JTOK (luminescent polymer material) is carried out in two stages:

На первой стадии получают приви- гой сополимер синтетического сополимера и хлорангидрида (мет)акриловой 1СИСЛОТЫ под действием у -облучени  из газовой фазы дозой 2,0-5,0 Мрадо In the first stage, a copolymer of a synthetic copolymer and an acid chloride of (meth) acrylic 1 DISK is obtained under the action of γ irradiation from the gas phase with a dose of 2.0-5.0 Mrado

На второй стадии провод т ое)работ- КУ привитого сополимера водной суспензией клеток с концентрацией 10-10 клеток/мл суспензии Выбор данного интервала концентраций клеточной сус- пензии обусловлен тем, что количество вводимых на поверхность клеток (и, как следствие, интенсивность люминесценции материала не измен етс  при более высокой их концентрации в сус- пензии, при концентрации суспензии клеток менее iO клеток/мп не достигаетс  насыщени  поверхности привитого сополимера иммобилизируемыми (слетками, In the second stage, a second) grafted copolymer is used: aqueous suspension of cells with a concentration of 10–10 cells / ml of suspension. The choice of this concentration range of cell suspension is due to the number of cells injected onto the surface (and, does not change at a higher concentration in the suspension; when the concentration of the cell suspension is less than iO cells / mp, the surface of the graft copolymer is not saturated with the immobilized (patches,

Обработку привитого сополимера суспензией КМПБ провод т путем погружени  привитого материала в суспензию клеток в 0,05 М фосфатном буфереThe grafting of the graft copolymer with CMPB suspension is carried out by immersing the graft material in a cell suspension in 0.05 M phosphate buffer.

0 50 5

00

5 Q 5 Q

5five

содержащем 0,3 М хлорида натри  (рН 7,8) при на 16-20 ч из расчета 1 мл суспензии клеток на 1т 2.containing 0.3 M sodium chloride (pH 7.8) at 16–20 h at the rate of 1 ml of cell suspension per 1 t 2.

z см привитого сополимера, так, чтобы вс  его поверхность была погружена в суспензию клетокz cm graft copolymer, so that its entire surface is immersed in a cell suspension

В качестве исходных полимеров возможно использование следующих классов полимеров: полиолефинов, полиэфиров , полиамидов , полиакрипатов и-пр При этом может быть использована люба  форма полимеров; пленки, волокна, гранулы, сложнопрофильные издели  и  блоков.полимеров, порошкиThe following classes of polymers can be used as starting polymers: polyolefins, polyesters, polyamides, polyacrylates, etc. Any form of polymers can be used; films, fibers, granules, complex profiles and polymer blocks, powders

Способ позвол ет увеличить длительность использовани  иммобилизованных клеток за счет повьш1ени  времени их свечени  до 30-40 ч (вместо 8 ч дл  интактных клеток и менее часа дл  иммобилизованных известным способом),The method allows to increase the duration of use of immobilized cells by increasing their luminescence time to 30-40 hours (instead of 8 hours for intact cells and less than an hour for immobilized in a known manner)

Пример 1о Обезжиренную этанолом пленку из полиэтилена (ПЭ) площадью 100 см помещают в специальную ампулу с перет жкой, в нижнюю часть которой заливают 1 мл хлорангидрида метакриповой кислоты (МАХ) так, чтобы жидкость не соприкасалась с полимером. Ампулу вакуумируют до остаточного давлени  торр, запаивают и облучают Jf-излучением (источник излучени  °Со, установка типа ГУРХ)мощностью дозы 0,5 Мрад/ч до общей дозы 2,5 Мрад Во врем  облучени  нижнюю часть ампулы экранируют свинцовой защитой дл  предотвращени  гомополимеризации хлорангидридаExample 1o A defatted ethanol film of polyethylene (PE) with an area of 100 cm is placed in a special vial with an overflow, in the lower part of which is poured 1 ml of methacrylic acid chloride (MAX) so that the liquid does not come into contact with the polymer. The ampoule is evacuated to a residual torr pressure, sealed and irradiated with Jf radiation (° C radiation source, GURH type installation) with a dose rate of 0.5 Mrad / h to a total dose of 2.5 Mrad During irradiation, the lower part of the ampoule is shielded with lead protection to prevent homopolymerization acid chloride

После облучени  ампулз вскрывают, пленку промывают абсолютированным эфиром дл  удалени  непрореагировавшего хпорангидрида и высушивают Количество привитого МАХ со средней длиной цепи 16 мономерных звеньев (молекул рной массой 1600)составл ет 4,40 10 г/см поверхности пленкиAfter irradiation, the ampules are opened, the film is washed with absolute ether to remove unreacted chporanhydride and dried. The amount of grafted MAX with an average chain length of 16 monomer units (molecular weight 1600) is 4.40 10 g / cm of the film surface

Привитой сополимер инкубируют в течение 20 ч при 4°С в суспензии КМПБ Photobacterium fisheri штамм 6 в 0,05 М фосфатном буфере, содержащем 0,3 М хлорида натри  (рН 7,8), концентрацией 10 клеток/мп суспензии На 1 см привитой пленки берут 1 мл суспензии клеток так, чтобы вс  поверхность пленки бьта покрыта жидкостьюThe graft copolymer is incubated for 20 hours at 4 ° C in a suspension of CMPP of Photobacterium fisheri strain 6 in 0.05 M phosphate buffer containing 0.3 M sodium chloride (pH 7.8) at a concentration of 10 cells / mp of suspension. Grafted 1 cm films take 1 ml of cell suspension so that the entire surface of the film is covered with liquid

привитую пленку после иммобилизации промьтают М фосфатным буфером , также содержащим 0,3 М хлорида натри  (рН 7,8), до прекращени  свечени  промывных вод, определ емого на фотометре по интенсивности люминесценции неиммобилизованных смытых клеток, помещают в термостатированную  чейку (24 С) с посто нным перемешиванием и измер ют интенсивность люминесценции на фотометре с ФЭУ, IQ откалиброванном в области длин волн 480-500 нМо Врем , за которое интенсивность люминесценции уменьшаетс  на 50% (врем  свечени  люминесцирующего материала), составл ет 38 ч. Врем  15 ,0 г привитого олигомера на 1 см свечени  контрольной суспензии интакт- (или 8,80 г на 2 см). Врем  жизниafter immobilization, the grafted film is washed with M phosphate buffer, also containing 0.3 M sodium chloride (pH 7.8), until the washings of the wash water stop, which is determined on the photometer by the luminescence intensity of non-immobilized washed cells, placed in a thermostatted cell (24 C) constant mixing and measuring the luminescence intensity on a photometer with a photomultiplier IQ calibrated in the wavelength range of 480-500 nMo The time for which the luminescence intensity decreases by 50% (the luminescence time of the luminescent material) was 38 hours. Time 15.0 grams of the grafted oligomer per cm of luminescence of the intact control suspension (or 8.80 g per 2 cm). Time of life

минесценции пленки мгновенно падает до О,film minescence instantly drops to oh

Пример 12о Все операции про д т как в примере 11, добавл   масо% акриламида. Интенсивность люминесценции мгновенно падает до ОExample 12о All operations were carried out as in Example 11, adding maso% acrylamide. The intensity of the luminescence instantly drops to O

Приме р13о Все операции про вод т как в примере 1, использу  су пензию клеток, содержащую 10 млн„ клеток/мл, вз тую в количестве 50 м на общую площадь пленки 100 см, составл ет 1 мл суспензии на 2 см поверхности пленки. Пленка содержитExample 13 All operations were carried out as in Example 1, using a cell suspension containing 10 million cells / ml, taken in an amount of 50 m for a total film area of 100 cm, is 1 ml of the suspension per 2 cm of the film surface. The film contains

чтwh

гg

,0 г привитого олигомера на 1 см (или 8,80 г на 2 см). Врем  жизни, 0 g grafted oligomer per cm (or 8.80 g per 2 cm). Time of life

минесценции пленки мгновенно падает до О,film minescence instantly drops to oh

Пример 12о Все операции провд т как в примере 11, добавл   масо% акриламида. Интенсивность люминесценции мгновенно падает до ОExample 12о All operations were carried out as in Example 11 by adding maso% acrylamide. The intensity of the luminescence instantly drops to O

Приме р13о Все операции провод т как в примере 1, использу  суспензию клеток, содержащую 10 млн„ клеток/мл, вз тую в количестве 50 мл на общую площадь пленки 100 см, составл ет 1 мл суспензии на 2 см поверхности пленки. Пленка содержитExample 13 All operations are carried out as in Example 1, using a cell suspension containing 10 ppm cells / ml, taken in an amount of 50 ml per 100 film total area, 1 ml of suspension per 2 cm film surface. The film contains

чтоwhat

гg

ных клеток в тех же услови х - 8 ч.cells under the same conditions - 8 h.

Примеры 2-8о Все операции осуществл ют аналогично примеру 1 оExamples 2-8 All operations are carried out analogously to Example 1 o.

Данные опытов по примерам приве- 20 дены в таблице.The data of the experiments on the examples are given in the table.

П р и м е р 9о ПЭ-пленку, не подвергнутую привитой сополимеризации с МАХ, выдерживают 20 ч при 4 С в суспензии КМЛБ (услови  аналогичны при- 25 меру 1) и определ ют врем  свечени  сорбированный клеток. Врем  свечени  составл ет 9ч, после чего практически все иммобилизованные некова- лентно (сорбированные) клетки вымы- 30 лись с поверхности полимерного материалаPRI me R 9o The PE film not subjected to the graft copolymerization with MAX was incubated for 20 hours at 4 ° C in suspension of MPCB (conditions are similar to Example 25) and the luminescence time of the sorbed cells is determined. The luminescence time is 9 hours, after which almost all of the immobilized cells, non-covalently (sorbed), were washed from the surface of the polymeric material.

Пример 10(сравнительный по прототипу). К суспензии 10 мл КМЛБExample 10 (comparative prototype). To suspension 10 ml KMLB

клеток 39 Чо39 Cho cells

Пример 14, Все операции провод т как в примере 1, использу  суспензию , содержащую 10 млн, клеток/мл, в количестве 50 мл на 100 см поверхности (или 1 мл на 2 см). Врем  жизни клеток 32 ч.Example 14. All operations were carried out as in Example 1, using a suspension containing 10 million cells / ml in an amount of 50 ml per 100 cm of surface (or 1 ml per 2 cm). Cell life time 32 hours

Пример 15 (контрольный)о Все операции провод т как в примере 1, использу  4 мл суспензии клеток с содержанием клеток 10 млн/мл на 2 см поверхности пленки. Врем  жизни клеток составл ет 40 ч, Тое, не увеличиваетс  при увеличении соотношени  объем суспензии клеток: i- 2 см поверхности.Example 15 (control) All operations were carried out as in example 1, using 4 ml of cell suspension with a cell content of 10 mln / ml per 2 cm of the film surface. The cell lifetime is 40 hours. Toe does not increase with an increase in the ratio of the volume of cell suspension: i - 2 cm of surface.

Пример 16 (контрольный), Все операции аналогичны операци м примераExample 16 (control). All operations are similar to those of the example.

в 0,05 М фосфатном буфере, содержащем 35 ° используют суспензию с концентрацией 10 млно клеток/ 2 см поверхности в количестве 1 мл. Врем  свече- 12ч,in 0.05 M phosphate buffer containing 35 °, a suspension with a concentration of 10 mln cells / 2 cm of surface in an amount of 1 ml is used. Candle time is 12 hours

0,03 м хлорида натри  (рН 7,8) содержащей 10 клеток/мл, добавл ют при посто нном перемешивании при 4 С 100 мкл (0,01 г) МАХ, довод т смесь до комнатной температуры, до- 40 бавл ют 1 г АА, 0,1 г БИС и полимери- зуют под действием системы персульфат кали  - метабисульфит кали  в течение 1 ч. Получают гель с кова- лентно иммобилизованными клетками 45 КМЛБ в виде пленки. Интенсивность люминесценции полимерного материала с ковалентно иммобилизованными данным способом КМЛБ составл ет О, Препарат не обладает свойствами люминесцирую- 50 щего полимерного материала, поэтому врем  свечени  его определить невозможно .0.03 m of sodium chloride (pH 7.8) containing 10 cells / ml was added with continuous stirring at 4 ° C with 100 µl (0.01 g) MAX, the mixture was brought to room temperature, added 1% g AA, 0.1 g BIS and polymerized under the action of the system potassium persulfate - potassium metabisulfite for 1 hour. A gel with 45 co-folded cells is obtained in the form of a covalently immobilized cell 45 KMLB in the form of a film. The intensity of the luminescence of a polymeric material with a covalently immobilized by this method KMLB is O, the Drug does not possess the properties of a luminescent polymeric material, therefore its luminescence time cannot be determined.

Пример 11, Пленку с иммобили- gg зованными КМЛБ помещают в термостатированную  чейку (температура 24 С) и к фосфатному буферу добавл ют 10 моль диоксана. Интенсивность люни  клетокExample 11, A film with immobilized gg of CMLP is placed in a thermostated cell (temperature 24 ° C) and 10 mol of dioxane is added to the phosphate buffer. Luni cell intensity

Пример 17 (контрольный), Все операции провод т как в примере 1, использу  соотношение 0,5 мл суспензии с концентрацией 10 млн/мл на 1 см поверхности Врем  свечени  40 ч, т,е, увеличение концентрации суспензии вьше 10 млн клеток/мл не приводит к увеличению времени жизни.Example 17 (control) All operations are carried out as in Example 1, using a ratio of 0.5 ml of suspension with a concentration of 10 mln / ml per 1 cm of surface. The luminescence time is 40 h, t, e, increasing the concentration of the suspension above 10 mln cells / ml does not lead to an increase in lifetime.

Среднее значение площади поверхности пленок измен етс  в пределах от 1 до 100 большие площади не удаетс  поместить в установку дл  облучени  типа ГУРХ, Площадь поверхности порошка полиамида в примере 6 - 10 .The average value of the surface area of the films varies from 1 to 100. Large areas cannot be placed in an irradiation unit of GURH type. The surface area of the polyamide powder in Example 6-10.

ПримPrim

е рe p

млml

суспензии бsuspensions b

18, К 118, K 1

с содержанием интактных клеток 10 на 1 мл добавл ют водный раствор изопропанола и регистрируют изменениеcontaining 10 in 1 ml of intact cells, an aqueous solution of isopropanol is added and the change in the

клеток 39 Чо39 Cho cells

Пример 14, Все операции провод т как в примере 1, использу  суспензию , содержащую 10 млн, клеток/мл, в количестве 50 мл на 100 см поверхности (или 1 мл на 2 см). Врем  жизни клеток 32 ч.Example 14. All operations were carried out as in Example 1, using a suspension containing 10 million cells / ml in an amount of 50 ml per 100 cm of surface (or 1 ml per 2 cm). Cell life time 32 hours

Пример 15 (контрольный)о Все операции провод т как в примере 1, использу  4 мл суспензии клеток с содержанием клеток 10 млн/мл на 2 см поверхности пленки. Врем  жизни клеток составл ет 40 ч, Тое, не увеличиваетс  при увеличении соотношени  объем суспензии клеток: i- 2 см поверхности.Example 15 (control) All operations were carried out as in example 1, using 4 ml of cell suspension with a cell content of 10 mln / ml per 2 cm of the film surface. The cell lifetime is 40 hours. Toe does not increase with an increase in the ratio of the volume of cell suspension: i - 2 cm of surface.

Пример 16 (контрольный), Все операции аналогичны операци м примераExample 16 (control). All operations are similar to those of the example.

° используют суспензию с концентрацией 10 млно клеток/ 2 см поверхности в количестве 1 мл. Врем  свече 12ч, ° using a suspension with a concentration of 10 mlno cells / 2 cm surface in an amount of 1 ml. Time candle 12h,

ни  клетокno cells

Пример 17 (контрольный), Все операции провод т как в примере 1, использу  соотношение 0,5 мл суспензии с концентрацией 10 млн/мл на 1 см поверхности Врем  свечени  40 ч, т,е, увеличение концентрации суспензии вьше 10 млн клеток/мл не приводит к увеличению времени жизни.Example 17 (control) All operations are carried out as in Example 1, using a ratio of 0.5 ml of suspension with a concentration of 10 mln / ml per 1 cm of surface. The luminescence time is 40 h, t, e, increasing the concentration of the suspension above 10 mln cells / ml does not lead to an increase in lifetime.

Среднее значение площади поверхности пленок измен етс  в пределах от 1 до 100 большие площади не удаетс  поместить в установку дл  облучени  типа ГУРХ, Площадь поверхности порошка полиамида в примере 6 10 .The average value of the surface area of the films varies from 1 to 100. Large areas cannot be placed in an irradiation unit of GURH type. The surface area of the polyamide powder in Example 6-10.

ПримPrim

е рe p

млml

суспензии бsuspensions b

18, К 118, K 1

с содержанием интактных клеток 10 на 1 мл добавл ют водный раствор изопропанола и регистрируют изменениcontaining 10 in 1 ml of intact cells, an aqueous solution of isopropanol is added and changes are recorded

интенсивности свечени  клеток в зависимости от концентрации спирта Полное тушение люминесценции наблюдаетс  при конечной концентрации ингибитора (159-0,1)10 моль/л еluminescence intensity of cells depending on alcohol concentration. Full luminescence quenching is observed at a final inhibitor concentration of (159-0.1) 10 mol / l

Пример 19. 1 см пленки (полученной по примеру 3), содержащей 10 иммобилизованных клеток, помещают в раствор, содержащий изопропанол и ю регистрируют свечение пленки в зависимости от концентрации спирта Полире тушение люминесценции наблюдаетс  конической концентрации ингиби- моль/л.Example 19. A 1 cm film (prepared according to Example 3) containing 10 immobilized cells was placed in a solution containing isopropanol and recorded a film glow depending on the alcohol concentration. A conical inhibition of luminescence was observed in the polymeric luminescence quenching / mol.

1395673613956736

билизованным КМЛБ, обладающие функциональной активностью .и порышенным временем свечени  клеток (до 30-40 ч), целевой продукт может быть использован дл  индикации органических примесей в растворах.bilized CMLB with functional activity and an increased cell luminescence time (up to 30-40 h), the target product can be used to indicate organic impurities in solutions.

Аналогичт ра (2,140,О- 10нрй чувствительностью обладают клетки , полученные по примерам 1-2, 4-8, следовательно, чувствительность ин- т ктных и ковалентно иммобилизованныхAnalogous (2,140, O-10Ny cells are sensitive, obtained in examples 1-2, 4-8, therefore, the sensitivity of int ct and covalently immobilized

1515

Claims (1)

Формула изобретени Invention Formula Способ получени  иммобилизованных люминесцентных бактерий Photobacteri- um fischeri щтамм 6, включающий обработку водной суспензии бактерий органическим ацилирующим реагентом, проведение иммобилизации с использованием органического полимера, отделение полученных клеток от реакционнойThe method of obtaining immobilized luminescent bacteria Photobacterium um fischeri step 6, including treating the aqueous suspension of bacteria with an organic acylating agent, carrying out the immobilization using an organic polymer, separating the obtained cells from the reaction тИчески одинаковаttichesically identical смеси, отличающийс  KJneTOK к гидрофобным молекулам прак- 20 тем, что, с целью увеличени  длительности использовани  иммобилизованных клеток за счет повышени  времени их свечени , иммобилизацию провод т путем обработки ацилирующим реагентом, в качестве которого используют пр ивитой сополимер синтетического полимера и хлорангидрида (мет)акриловой кислоты, содержащий 50 - 170 масД по массе привитогоmixtures that differ from KJneTOK to hydrophobic molecules of the practical 20 in order to increase the duration of use of immobilized cells by increasing the time of their luminescence, immobilization is carried out by treatment with an acylating reagent, which uses a synthetic polymer and acid chloride (meth) as a polymer acrylic acid containing 50-170 masd by mass of grafted ; Таким образом, как нативные, так И: иммобилизованные клетки оказываютс  о|цинаково чувствительными к гидрофоб- 25 rtiiM соединени м; Thus, both native and AND: immobilized cells are about | synakno sensitive to hydrophobic compounds Выход обладающих люминесцен.ций клеток цри иммобилизации предложенным сЬособом составл ет 60-70% от их ис- хЬдного количества, что определ етс  ЗО подсчетом клеток в исходной и конечной суспензи хоThe yield of luminescent cells from immabilization by the proposed method is 60-70% of their initial amount, which is determined by the DZ by counting the cells in the initial and final suspensions. i Таким образом, изобретение позвол - е|т получить люминесцирующие поли- М1ерные материалы с ковалентно иммоолигохлорангидрида с мол.м. 1000 - 1600 дйльтон, причем обработку суспензии клеток провод т из расчета 1 мл суспензии, содержащей от 10 до 10 клеток на 1-2 см поверхности привитого сополимераi Thus, the invention allows to obtain luminescent polymethyl materials with covalently immuno-oligochloride hydride, mol. 1000 - 1600 Dilton, and the processing of cell suspension is carried out at the rate of 1 ml of a suspension containing from 10 to 10 cells per 1-2 cm of the surface of the graft copolymer Полиэтилен, пленкаPolyethylene film Попиэтипентерефтапат , пленкаPopietipenterefapat, film Полипропилен, вопокноPP Найлон-Ъ,6-,Nylon-6, ЕОЛОККОEOLOKKO Полюшметип- сило са ,Polusmetip-force sa, МАХMAX АХOH КАХKah МАХMAX АХOH Полиеммл t граиулк д«иметром 0,1 МП АХPoliemml t graiulk d "with an meter 0.1 MP AH 2,54,40501616001,010382.54.40501616001,01038 3,04,93781311001,3.04.93781311001, 5,05,941701010001,01о 305.05.941701010001.01o 30 .3,05,02.831414000,.3.05,02.831414000, 2,54,26561515000,2.54.26561515000, 2,54,43611515000,2.54,43611515000, Формула изобретени Invention Formula Способ получени  иммобилизованных люминесцентных бактерий Photobacteri- um fischeri щтамм 6, включающий обработку водной суспензии бактерий органическим ацилирующим реагентом, проведение иммобилизации с использованием органического полимера, отделение полученных клеток от реакционнойThe method of obtaining immobilized luminescent bacteria Photobacterium um fischeri step 6, including treating the aqueous suspension of bacteria with an organic acylating agent, carrying out the immobilization using an organic polymer, separating the obtained cells from the reaction олигохлорангидрида с мол.м. 1000 - 1600 дйльтон, причем обработку суспензии клеток провод т из расчета 1 мл суспензии, содержащей от 10 до 10 клеток на 1-2 см поверхности привитого сополимераoligochloride with mol.m. 1000 - 1600 Dilton, and the processing of cell suspension is carried out at the rate of 1 ml of a suspension containing from 10 to 10 cells per 1-2 cm of the surface of the graft copolymer Физико-механические свойства нс- хо ньск полимеров и модифицированных практически одинаковыThe physicomechanical properties of ns-xo-nsk polymers and modified polymers are almost identical. АХOH М&ХM & X 2,0 2,93 Z52.0 2.93 Z5 6,0 7,352006.0 7.35200 Мала  эффективность имноб лиэашт. Деструкци  полимера. Полиа  (есорбци  клеток аа 9 чMala efficiency imnob leasht. Destruction of the polymer. Polia (aa 9 cells sorption) Продолжение таблнцьContinuation 1800 2,51800 2.5 8901,08901.0 О1,0O1,0 10ten 10 1о810 1-8 ,2-Jfr, 2-Jfr 99
SU864111207A 1986-06-13 1986-06-13 Method of producing immobilized luminescent bacteria photobacterium fischeri strain 6 SU1395673A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU864111207A SU1395673A1 (en) 1986-06-13 1986-06-13 Method of producing immobilized luminescent bacteria photobacterium fischeri strain 6

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU864111207A SU1395673A1 (en) 1986-06-13 1986-06-13 Method of producing immobilized luminescent bacteria photobacterium fischeri strain 6

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1395673A1 true SU1395673A1 (en) 1988-05-15

Family

ID=21254183

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU864111207A SU1395673A1 (en) 1986-06-13 1986-06-13 Method of producing immobilized luminescent bacteria photobacterium fischeri strain 6

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1395673A1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1999009201A3 (en) * 1997-08-15 1999-05-27 Iut Privates Inst Fuer Umweltt Biosensor with immobilized bioluminescent microorganisms

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Авторское свидетельство СССР № 761554, кло С 12 N 1/20, 1978„ Авторское свидетельство СССР № 1250571, кл. С 12 N 11/02, 1983„ *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1999009201A3 (en) * 1997-08-15 1999-05-27 Iut Privates Inst Fuer Umweltt Biosensor with immobilized bioluminescent microorganisms

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR890001703B1 (en) Preparation of latex
FI70233B (en) FOER FARING FRAMSTAELLNING AV NYA AKRYLKOPOLYMERER
EP0693508B1 (en) Temperature-sensitive water-absorbing/desorbing polymer composition
HK1007381B (en) Temperature-sensitive water-absorbing/desorbing polymer composition
ES2107128T3 (en) POLYMERIC OPHTHALMIC LENSES PREPARED FROM UNSATURATED POLYOXYETHYLENE MONOMERS.
Kurisawa et al. Modulated degradation of hydrogels with thermo‐responsive network in relation to their swelling behavior
SU1484295A3 (en) Method of producing aqueous composition forming polymeric gels
SU1395673A1 (en) Method of producing immobilized luminescent bacteria photobacterium fischeri strain 6
US3780006A (en) Removal of monomer from acrylamide polymers with sulfur dioxide
KR950011651A (en) Water treatment polymer containing water treatment agent and manufacturing method of the polymer
US5378784A (en) Fluorescent monomer and polymer
JP2888866B2 (en) Manufacturing method of water-absorbent resin with excellent heat resistance
JPH07500126A (en) polyacrylamide gel matrix
US4066522A (en) Process for the production of high molecular weight acrylamide polymers
JPS637785A (en) Immobilization of microorganism
JPS5911602B2 (en) Diagnostic particles
Nud'ga et al. Synthesis and microbiological stability of graft copolymers of N-vinylpyrrolidone and chitosan
JP2794592B2 (en) Method for concentrating polymer substances in biological fluids
EP0101300A2 (en) Hydrophilic copolymer compositions useful as contact lenses
SU608813A1 (en) Method of obtaining graft copolymers
Jansen et al. In vitro blood compatibility of glow discharge‐grafted silicone rubber tubings
Labský et al. Effect of spacer on the isomerization of bound azobenzene in soluble polymers
RU2309163C1 (en) Alpha-angelicalactone polymerization product
EP0216499A2 (en) Polymeric carrier materials
SU823386A1 (en) Network poly-1-vinyl-1,2,4-triazole as starting material for hydrophilic gel with increased stability to hydrolysis