[go: up one dir, main page]

SK16542001A3 - Spôsob fermentačnej prípravy L-aminokyselín pomocou zosilnenia génu gnd - Google Patents

Spôsob fermentačnej prípravy L-aminokyselín pomocou zosilnenia génu gnd Download PDF

Info

Publication number
SK16542001A3
SK16542001A3 SK1654-2001A SK16542001A SK16542001A3 SK 16542001 A3 SK16542001 A3 SK 16542001A3 SK 16542001 A SK16542001 A SK 16542001A SK 16542001 A3 SK16542001 A3 SK 16542001A3
Authority
SK
Slovakia
Prior art keywords
gene
gene encoding
bacteria
lysine
amino acid
Prior art date
Application number
SK1654-2001A
Other languages
English (en)
Inventor
L. Kieran - Dunican (Zosnul�)
Ashling Mccormack
Cliona Stapelton
Kevin Burke
Bettina M�Ckel
Original Assignee
Degussa Ag
National University Of Ireland
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=24116938&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=SK16542001(A3) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Degussa Ag, National University Of Ireland filed Critical Degussa Ag
Publication of SK16542001A3 publication Critical patent/SK16542001A3/sk

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04Alpha- or beta- amino acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0008Oxidoreductases (1.) acting on the aldehyde or oxo group of donors (1.2)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/74Vectors or expression systems specially adapted for prokaryotic hosts other than E. coli, e.g. Lactobacillus, Micromonospora
    • C12N15/77Vectors or expression systems specially adapted for prokaryotic hosts other than E. coli, e.g. Lactobacillus, Micromonospora for Corynebacterium; for Brevibacterium
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004Oxidoreductases (1.)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04Alpha- or beta- amino acids
    • C12P13/08Lysine; Diaminopimelic acid; Threonine; Valine

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Spôsob fermentačnej prípravy L-aminokyselín pomocou zosilnenia génu,gnd
Oblasť techniky
Vynález sa týka spôsobu fermentačnej prípravy L-aminokyselín, najmä L-lyzínu, L-treonínu, L-izoleucínu a L-tryptofánu, použitím koryneformných baktérií, v ktorých sa zosilňuje aspoň gén gnd.
Doterajší stav techniky
L-Aminokyseliny sa používajú vo výžive zvierat, v humánnej medicíne a vo farmaceutickom priemysle.
Je známe, že aminokyseliny sa pripravujú fermentáciou kmeňov koryneformných baktérií, najmä Corynebacterium glutamicum. Kvôli ich veľkému významu sa stále pracuje na zlepšení týchto preparačných spôsobov. Zlepšenia spôsobov sa môžu týkať fermentačno-technologických opatrení, ako napríklad miešania a zásobovania kyslíkom, alebo zloženia živných médií, ako napríklad koncentrácie cukru počas fermentácie, alebo spracovania na produktovú formu, napríklad ionexovou chromatografiou, alebo vlastných produkčných vlastností samotného mikroorganizmu.
Na zlepšenie produkčných vlastností týchto mikroorganizmov sa používajú metódy mutagenézy, selekcie a volby mutantov. Týmto spôsobom sa získavajú kmene, ktoré sú rezistentné voči antimetabolitom, ako je napríklad analóg treonínu kyselina aamino-p-hydroxyvalérová (AHV), alebo sú auxotrofné vzhľadom na regulačné významné metabolity a produkujú L-aminokyseliny, ako napríklad L-treonín.
Už niekolko rokov sa taktiež používajú metódy technológie rekombinantných DNA na zlepšenie kmeňa Corynebacterium glutamicum produkujúceho L-aminokyseliny.
Vynálezcovia si stanovili za úlohu poskytnúť nové zlepšené postupy fermentačnej prípravy L-aminokyselín pomocou koryneformných baktérií.
L-Aminokyseliny sa používajú v humánnej medicíne, vo farmaceutickom priemysle, v potravinárskom priemysle a najmä vo výžive zvierat. Existuje preto všeobecný záujem o poskytnutie nových, zlepšených spôsobov prípravy týchto aminokyselín.
Podstata vynálezu
Vynález poskytuje spôsob fermentačnej prípravy L-aminokyselín najmä L-lyzínu, L-treonínu, L-izoleucínu a L-tryptofánu, použitím koryneformných baktérií, v ktorých sa zosilňuje, najmä zvýšene exprimuje nukleotidová sekvencia kódujúca enzým 6-fosfoglukonátdehydrogenázu (EC 1.1.1.44) (gén gnd) .
Použité kmene prednostne už produkujú L-aminokyseliny pred zosilnením génu gnd.
Prednostné uskutočnenia sa nachádzajú v patentových nárokoch.
Pojem „zosilnenie opisuje v tejto súvislosti- zvýšenie intracelulárnej aktivity jedného alebo viacerých enzýmov v mikroorganizme, ktoré sú kódované príslušnou DNA, napríklad zvýšením počtu 'kópií génu alebo génov, použitím silného promótora alebo použitím génu, ktorý kóduje príslušný enzým s vysokou aktivitou a tieto opatrenia sa poprípade kombinujú.
Mikroorganizmy, ktoré sú predmetom predloženého vynálezu, môžu produkovať L-aminokyseliny z glukózy, sacharózy, laktózy, fruktózy, maltózy, melasy, škrobu, celulózy alebo z glycerolu a etanolu. Jedná sa o zástupcov koryneformných baktérií, najmä rodu Corynebacterium. Pri rode Corynebacterium treba uviesť najmä druh Corynebacterium glutamicum, ktorý je v odbornom svete známy pre svoju schopnosť produkovať L-aminokyseliny.
Vhodnými kmeňmi rodu Corynebacterium, najmä druhu Corynebacterium glutamicum, sú napríklad známe kmene divého typu
Corynebacterium glutamicum ATCC13032,
Corynebacterium acetoglutamicum ATCC15806,
Corynebacterium acetoacidophilum ATCC13870,
Corynebacterium thermoaminogenes FERM BP-1539,
Brevibacterium flavum ATCC14067,
Brevibacterium lactofermentum ATCC13869 a
Brevibacterium divaricatum ATCC14020 a z nich vytvorené mutanty produkujúce L-aminokyseliny, ako napríklad kmene produkujúce L-treonín
Corynebacterium glutamicum ATCC21649,
Brevibacterium flavum BB69,
Brevibacterium flavum DŠM5399,
Brevibacterium lactofermentum FERM-BP 269,
Brevibacterium lactofermentum TBB-10 a napríklad kmene produkujúce L-izoleucín
Corynebacterium glutamicum ATCC 14309,
Corynebacterium glutamicum ATCC 14310,
Corynebacterium glutamicum ATCC 14311,
Corynebacterium glutamicum ATCC 15168,
Corynebacterium ammoniagenes ATCC 6871 a napríklad kmene produkujúce L-tryptofán
Corynebacterium glutamicum ATCC21850 a
Corynebacterium glutamicum KY9218 (pKW9901), a napríklad kmene produkujúce L-lyzín
Corynebacterium glutamicum FERM-P 1709,
Brevibacterium flavum FERM-P 1708,
Brevibacterium lactofermentum FERM-P 1712,
Corynebacterium glutamicum FERM-P 6463,
Corynebacterium glutamicum FERM-P 6464,
Corynebacterium glutamicum DSM5715,
Corynebacterium glutamicum DM58-1,
Corynebacterium glutamicum DSM12866.
Zistilo sa, že koryneformné baktérie produkujú L-aminokyseliny, najmä L-lyzín, L-treonín, L-izoleucín a L-tryptofán, zlepšeným spôsobom po zvýšenej expresii génu gnd, ktorý kóduje 6-fosfoglukonátdehydrogenázu (EC 1.1.1.44).
Gén gnd kóduje enzým 6-fosfoglukonátdehydrogenázu, ktorá katalyzuje oxidačnú dekarboxyláciu kyseliny 6-fosfoglukónovej na ribulóza-6-fosfát. Nukleotidová sekvencia génu gnd je zverejnená v JP-A-9-224662. Gén gnd opísaný v uvedenom texte sa používa podlá predloženého vynálezu prvý raz. Ďalej sa môžu použiť alely génu gnd, ktoré sú výsledkom degenerácie genetického kódu alebo sú spôsobené mutáciou neutrálnej funkcie so zmyslom.
Na dosiahnutie zosilnenia (t.j. zvýšenej expresie) sa napríklad zvýši počet kópií príslušných génov alebo sa mutuje promótorová a regulačná oblasť alebo miesto pre naviazanie ribozómov, ktoré sa nachádza v protismere štruktúrneho génu. Rovnakým spôsobom pôsobia expresívne kazety, ktoré.sa vkladajú proti smeru štruktúrneho génu. Pomocou indukovatelných promótorov možno dodatočne zvýšiť expresiu v priebehu fermentačnej produkcie L-aminokyseliny. Opatreniami na predĺženie životnosti m-RNA sa expresia taktiež zlepšuje.
Ďalej sa enzýmová aktivita taktiež zvyšuje zabránením odbúravania enzýmového proteínu. Gény alebo génové konštrukty môžu buď existovať v plazmidoch s rozdielnym počtom kópií, alebo môžu byť v chromozóme integrované a amplifikované. Ďalej sa môže alternatívne dosiahnuť zvýšená expresia príslušných génov zmenou zloženia médií a zmenou postupu kultivácie.
Návody na to nájde odborník medzi iným v Martin et al. (Bio/Technology 5, 137-146 (1987)), v Guerrero et al. (Gene 138, 35-41 (1994)), Tsuchiya a Morinaga (Bio/Technology 6, 428-430 (1988)), v Eikmanns et al. (Gene 102, 93-98 (1991)), v európskom patentovom spise EPS 0 472 869, v U,S patente 4,601,893, v práci Schwárzer and Púhler (Bio/Technology 9, 8487 (1991)), Reinscheid et al. (Applied and Environmental Microbiology 60, 126-132 (1994)), v LaBarre et al. (Journal of Bacteriology 175, 1001-1007 (1993)), v patentovej prihláške WO 96/15246, v Malumbres et al. (Gene 134, 15 - 24 (1993)), v japonskom zverejnenom spise JP-A-10-229891, v práci Jensen a Hammer (Biotechnology and Bioengineering 58, 191-195 (1998)) a v známych učebniciach genetiky a molekulovej biológie.
6-Fosfoglukonátdehydrogenáza sa napríklad zvýšene exprimovala pomocou plazmidu. Na to sa použil kyvadlový vektor pEC-T18mob2 z E. coli - C. glutamicum znázornený na obrázku 1. Po vložení génu gnd do štiepneho miesta EcoRI vektora pECT18mob2 sa vytvoril plazmid pECgnd znázornený na obrázku 2.
Taktiež sa môžu použiť iné plazmidové vektory, ktoré sú schopné replikácie v C. glutamicum, ako je napríklad pEKExl (Eikmanns et al., Gene 102:93-98 (1991)) alebo pZ8-l (EP-B- 0 375 889).
Prídavné môže byť pre produkciu L-aminokyselín výhodné okrem génu gnd zosilniť jeden alebo viac enzýmov príslušnej biosyntetickej dráhy, glykolýzy, anaplerotiky, pentózafosfátovej dráhy alebo prenosu aminokyselín okrem zosilnenia génu gnd, ktorý kóduje 6-fosfoglukonátdehydrogenázu.
Teda napríklad sa môže na produkciu L-treonínu súčasne zosilniť, najmä zvýšene exprimovať jeden alebo viac génov zvolených zo skupiny zahŕňajúcej • gén hom kódujúci homoseríndehydrogenázu (Peoples et al., Molecular Microbiology 2, 63-72 (1988)) alebo alelu homdr kódujúcu homoseríndehydrogenázu rezistentnú na spätnú väzbu (Archer et al., Gene 107, 53-59 (1991), • gén gap kódujúci glyceraldehyd-3-fosfátdehydrogenázu (Eikmanns et al., Journal of Bacteriology 174:
6076-6086 (1992)), • gén pyc kódujúci pyruvátkarboxylázu (Peters-Wendish et al., Microbiology 144: 915-927 (1998)), • gén mqo kódujúci malát:chinónoxidoreduktázu (Molenaar et al., European Journal of, Biochemistry 254, 395-403 (1998)), •gén tkt kódujúci transketolázu (prírastkové číslo AB023377, European Molecular Biologies Laboratories databank (EMBL, Heidelberg, Nemecko), • gén zwf kódujúci glukóza-6-fosfátdehydrogenázu (JP-A09224661), • gén thrE kódujúci prenos treonínu (DE 199 41 478.5; DSM 12840), • gén zwal (DE 199 59 328.0; DSM 13115), • gén eno kódujúci enolázu (DE: 199 41 478.5).
Teda napríklad najmä na prípravu L-lyzínu sa môže súčasne zosilniť, prednostne zvýšene exprimovať jeden alebo viac génov zvolených zo skupiny zahŕňajúcej • gén dapA kódujúci dihydrodipikolinátsyntázu (EP-B 0 197 335), • gén lysC kódujúci aspartátkinázu rezistentnú na spätnú väzbu (Kalinowski et al., (1990), Molecular and General Genetics 224: 317-324), • gén gap kódujúci glyceraldehyd-3-fosfátdehydrogenázu (Eikmanns et al., (1992), Journal of Bacteriology 174: 6076-6086), • gén pyc kódujúci pyruvátkarboxylázu (Eikmanns et al., (1992), Journal of Bacteriology 174: 6076-6086), ‘ ' 1 • gén mqo kódujúci malát-chinónoxidoreduktázu (Molenaar et al., European Journal of Biochemistry 254, 395-403 (1998)), • gén tkt kódujúci transketolázu (prírastkové číslo AB023377, European Molecular Biologies Laboratories databank (EMBL, Heidelberg, Nemecko)) , • gén zwf kódujúci glukóza-6-fosfátdehydrogenázu (JP-A09224661), • gén lysE kódujúci prenos lyzínu (DE-A-195 48 222), • gén zwal (DE 199 59 328.0; DSM 13115), • gén eno kódujúci enolázu (DE: 199 47 791.4).
Ďalej môže byť výhodné pre produkciu L-aminokyselín navyše k zosilneniu génu gnd súčasne zoslabiť jeden alebo viac génov zvolených zo súboru zahŕňajúceho:
• gén pck kódujúci fosfoenolpyruvátkarboxykinázu (DE
199 50 409.1, DSM 13047), • gén pgi kódujúci glukóza-6-fosfátizomerázu (US 09/396,478, DSM 12969), • gén poxB kódujúci pyruvátoxidázu (DE 199 51 975.7, DSM 13114),
I • gén zwa2 (DE 199 59 327.2; DSM 13113).
Ďalej môže byť pre produkciu aminokyselín okrem zvýšenej expresie 6-fosfoglukonátdehydrogenázy výhodné vylúčiť nežiaduce vedľajšie reakcie (Nakayama: „Breeding of Amino Acid Produci'ng Micro-organisms, in: Overproduction of Microbial Products, Krumphanzl, Sikyta, Vanek (eds.), Academic Press, Londýn, Veľká Británia, 1982).
Mikroorganizmy vytvorené podlá vynálezu sa môžu na účely produkcie L-aminokyselín kultivovať kontinuálnym spôsobom alebo spôsobmi diskontinuálnymi, či už vsádzkovou (batch) kultiváciou alebo vsádzkovou kultiváciou s prítokom živín (fed batch) . alebo vsádzkovou kultiváciou s opakovaným prídavkom živín (repeated fed batch). Zhrnutie známych kultivačných metód je opísané v učebnici Chmiel: Bioprozesstechnik 1. Einfiihrung in die Bioverfahrenstechnik (Biotechnológia 1. Úvod do biotechnológie, nakladateľstvo Gustáv Fischer, Stuttgart, 1991) alebo v učebnici Storhas: Bioreaktoren und Periphere Einrichtungen (Bioreaktory a periférne zariadenia, nakladatelstvo Vieweg Verlag, Braunschweig/Wiesbaden, 1994)).
Použité kultivačné médium musí patričným spôsobom .vyhovovať nárokom príslušného mikroorganizmu. Opisy rôznych známych kultivačných médií pre mikroorganizmy sú uvedené príručke Manual of Methods for General Bacteriology (Metodický manuál pre všeobecnú baktériológiu) vydaný Americkou bakteriologickou spoločnosťou (American Society' for Bacteriology), Washington D.C., USA, 1981. Ako zdroje uhlíka sa môžu použiť sacharidy, ako napríklad glukóza, sacharóza, laktóza, fruktóza, maltóza, melasa, škrob a celulóza; oleje a tuky, ako napríklad sójový olej, slnečnicový olej, podzemnicový olej a kokosový tuk;
mastné kyseliny, ako napríklad kyselina palmitová, kyselina stearová a kyselina linolová, alkoholy, ako napríklad glycerol a etanol, a organické kyseliny, ako napríklad kyselina octová. Tieto látky sa môžu použiť buď jednotlivo, alebo v zmesi. Ako zdroje dusíka sa môžu použiť organické zlúčeniny obsahujúce dusík, ako napríklad peptóny, kvasnicový extrakt, mäsový extrakt, sladový extrakt, kukuričný extrakt, sójová múčka a močovina, alebo anorganické zlúčeniny, ako napríklad síran amónny, chlorid amónny, fosforečnan amónny, uhličitan amónny a dusičnan amónny. Tieto zdroje dusíka sa môžu použiť buď jednotlivo, alebo v zmesi. Ako zdroje fosforu možno použiť hydrogenfosforečnan alebo dihydrogenfosforečnan draselný alebo príslušné sodné soli. Kultivačné médium musí ďalej obsahovať soli kovov, ktoré sú nutné na rast, ako napríklad síran horečnatý alebo síran železnatý. A napokon môže byť kultivačné médium okrem vyššie uvedených látok obohatené o esenciálne rastové látky, ako napríklad aminokyseliny a vitamíny. Ku kultivačnému médiu sa môžu ešte pridať vhodné prekurzory. Uvedené východiskové látka sa môžu pridať do média jednorazovo na začiatku alebo vhodným spôsobom v priebehu kultivácie.
Na kontrolu pH v priebehu kultivácie sú vhodné zásadité zlúčeniny, ako napríklad hydroxid sodný, hydroxid draselný, amoniak, alebo kyslé zlúčeniny, ako napríklad kyselina fosforečná alebo kyselina sírová. Penenie kultivačnej zmesi možno kontrolovať prídavkom činidiel potláčajúcich tvorbu peny, ako sú napríklad polyglykolestery mastných kyselín. Stabilitu plazmidov možno udržiavať prostredníctvom vhodného selekčného činidla, napríklad antibiotika. Vhodné aeróbne podmienky možno udržiavať privádzaním kyslíka alebo zmesi plynov obsahujúcej kyslík, napríklad vzduchu, do kultivačného média. Vhodná teplota na pestovanie baktérií je zvyčajne od 20 °C do 45 °C a výhodne od 25 °C do 40 ’C. Čas kultivácie by'mal byť taký, aby sa dosiahlo maximum tvorby aminokyselín. Toto maximum sa obvykle dosiahne v priebehu 10 až 160 hodín.
Analýza L-aminokyselín sa môže uskutočňovať anexovou chromatografiou s následnou ninhydrínovou derivatizáciou tak·, ako sa opisuje v práci Spackman et al. (Analytical Chemistry,
30, (1958), 1190) alebo sa môže uskutočňovať HPLC s reverznou fázou, ako sa opisuje v práci Lindroth et al. (Analytical Chemistry, (1979) 51: 1167-1174).
Nasledujúce mikroorganizmy boli uložené v Deutsche Sammlung fur Mikroorganismen und Zellkulturen (DSMZ = Nemecká zbierka mikroorganizmov a bunkových kultúr, Braunschweig, Nemecko) podía Budapeštianskej zmluvy:
Escherichia coli K-12 DH5oc/pEC-T18mob2 ako DSM 13244.
Prehľad obrázkov na výkresoch
Priložené sú nasledovné obrázky:
Obrázok 1: Mapa plazmidu pEC-T18mob2
Obrázok 2: Mapa plazmidu pECgnd
Obrázok 3: Mapa plazmidu pBGNA
Obrázok 4: Mapa plazmidu pCR2.lpoxBint
Stanovené počty párov báz sú približné hodnoty získané v súvislosti s reprodukovatelnosťou.
Použité skratky majú nasledovný význam:
Obrázok 1:
Tet: gén pre rezistenciu na tetracyklín
OriV: plazmidom kódovaný počiatok replikácie E.coli
RP4mob: oblasť mob na mobilizáciu plazmidu rep:
per:
lacZ-alpha
Obrázok 2:
Tet:
rep:
per:
lacZ:
gnd:
Obrázok 3:
LacP:
CMV:
ColEl: TkpolyA: Kan r:
SV40 ori: gnd:
Obrázok 4: ColEl:
lacZ: fl ori: . KmR:
ApR:
poxBint:
plazmidom kódovaný počiatok replikácie z plazmidu pGAl z C. glutamicum gén na kontrolu počtu kópií z pGAl génový fragment lacZa (N-koniec) génu pre β-galaktozidázu gén pre rezistenciu na tetracyklín plazmidom kódovaný počiatok replikácie z plazmidu pGAl z C. glutamicum gén na kontrolu počtu kópií z pGAl klonovací relikt génového fragmentu LacZa z pEC-T18mob2 gén pre 6-fosfoglukonátdehydrogenázu promótor laktózového operónu E. coli promótor cytomegalovírusu počiatok replikácie plazmidu ColEl polyadenylačné miesto gén pre rezistenciu na kanamycín počiatok replikácie opičieho vírusu 40 gén pre 6-fosfoglukonátdehydrogenázu počiatok replikácie plazmidu ColEl klonovací relikt génového fragmentu lacZa počiatok replikácie fága fl rezistencia na kanamycín rezistencia na ampicilín vnútorný fragment génu poxB
Ďalej sa použili nasledovné skratky:
Accl: cieľové miesto reštrikčného enzýmu Accl
BamHI: cielové miesto reštrikčného enzýmu BamHI
EcoRI: cieľové miesto reštrikčného enzýmu EcoRI
HindlII: cieľové miesto reštrikčného enzýmu HindlII
KpnI: cielové miesto reštrikčného enzýmu KpnI
PstI: cielové miesto reštrikčného enzýmu PstI
Pvul: cielové miesto reštrikčného enzýmu Pvul
Sali: cielové miesto reštrikčného enzýmu Sali
Sací: cielové miesto reštrikčného enzýmu Sací
Smal: cielové miesto reštrikčného enzýmu Smal
Sphl: cielové miesto reštrikčného enzýmu Sphl
Xbal: cielové miesto reštrikčného enzýmu Xbal
Xhol: cielové miesto reštrikčného enzýmu Xhol
Príklady uskutočnenia vynálezu
Nasledovné príklady bližšie vysvetlujú tento vynález. Použili sa metódy molekulovej biológie, napríklad izolácia plazmidovej DNA, spracovanie reštrikčnými enzýmami, ligácie, štandardné transformácie Escherichia coli atď. (pokial nie je stanovené inak), opísané v práci Sambrook et al. (Molecular Cloning, A Laboratory Manual (1989), Cold Spring Harbor Laboratories, USA).
Príklad 1
Konštrukcia génovej banky kmeňa Corynebacterium glutamicum AS019
Génová banka kmeňa Corynebacterium glutamicum ASO19 (Yoshihama et al., Journal of Bacteriology 162, 591-597 (1985) ) sa skonštruovala použitím systému e Zap Express™ (Short et al., (1988) Nucleic Acids Research, 16: 7583-7600), ako opisuje O'Donohue (O'Donohue, M. (1997), The Cloning and Molecular Analysis of Four Common Aromatic Amino Acid Biosynthetic Genes from Corynebacterium glutamicum, Ph.D. Thesis, National University of Ireland, Galway). Kit é Zap Express™ sa zakúpil od firmy Stratagene (Stratagene,.11011 North Torrey Pines Rd., La Jolla, California 920037) a použil podlá návodu výrobcu. AS019-DNA sa rozštiepila reštrikčným enzýmom Sau3A a ligovala s vetvami é Zap Express™ spracovanými pomocou BamHI a defosforylovanými.
Príklad 2
Klonovanie a sekvenovanie génu gnd
1. Konštrukcia sondy gnd
Rádionukleotidom označený oligonukleotid, interný vzhľadom na gén gnd, sa použil na skúmanie knižnice (génovej banky) AS019 é Zap Express™ opísanej vyššie. Oligonukleotid sa pripravil použitím degenerovaných primérov PCR interných vzhľadom na gén gnd. Degenerované nukleotidové priméry určené na PCR amplifikáciu DNA-fragmentov gnd:
•gndl: 5’ ATG GTK CAC ACY GGY ATY GAR TA 3’ gnď2: 5’ RGT CCA YTT RCC RGT RCC YTT 3’ kde -R=A+G; Y=C+T; K=T+G.
Odhadnutá velkosť výsledného produktu PCR bola približne
252 bp.
Stanovené optimálne podmienky PCR:
cyklov °C počas 1 minúty °C počas 1 minúty °C počas 30 sekúnd
2,5 až 3,5 mM MgCl2
100 až 150 ng genómovej DNA AS019. '
Sekvenačná analýza výsledného produktu PCR povrdila, že produkt je vnútornou časťou génu gnd. Sekvenačná analýza sa uskutočnila použitím univerzálneho dopredného.a reverzného priméru a sekvenačného kitu T7 od firmy Pharmacia Biotech (St. Albans, Herts, UK) . Sekvencia produktu PCR je znázorená v SEQ ID No. 1.
2. Klonovanie
Skríning knižnice AS019 é Zap Express™ sa uskutočnil podľa systémového protokolu é Zap Express™ (Stratagene, 11011 North Torrey Pines Rd., La Jolla, California 920037). Potom sa uskutočnila na izolovaných klonoch analýza použitím
Southernovho prenosu. Southernov prenos DNA bol opísaný v manuále od Schleichera a Schuella využívajúcom Nytran™ ako membránu („Nytran, Modified Nylon-ββ Membráne Filters (March 1987), Schleicher and Schuell, Dassel, Nemecko). Dvojvláknové fragmenty DNA vytvorené použitím tých istých primérov a optimálnych podmienok ako vyššie sa rádioaktívne označili pomocou a-32P-dCTP použitím značkovacieho kitu DNA Multiprime™ od firmy Amersham Life Science (Amersham Pharmacia Biotech UK Limited, Little Chalfont, Buckinghamshire, UK) podlá návodu výrobcu. Podmienky prehybridizácie, hybridizácie a premývania boli také, ako sa opisujú manuále od Schleichera a Schuella. Autorádiografia sa uskutočnila podlá postupu navrhnutého v príručke od Sambrooka a ďalších použitím filmu AgFa Curix RPIL. Takto sa identifikovalo niekoľko klonov gnd. Plazmidová DNA sa izolovala z jedného klonu, označila ako pBGNA (obrázok 3) a vybrala na ďalšiu analýzu.
3. Sekvenovanie
Na sekvenovanie klonovaného inzertu pBGNA sa použila didéox'y-metóda ukončenia reťazca opísaná v práci Sanger et al. (Proceedings of the National Academy of Sciences USA 74, 54635467 (1977)). Táto mettóda sa aplikovala použitím sekvenačného kitu a-35S-dCTP od firmy Pharmacia Biotech (St. Albans, Herts, UK). Vzorky sa podrobili elektroforéze počas 3 až 8 hodín na 6% polyakrylamidovom a močovinovom géle v tlmivom roztoku TBE pri konštantnom prúde 50 mA, podľa inštrukcií manuálu na klonovanie a sekvenovanie („T7 Sequencing™ Kit, č. XY-010-0019, Pharmacia Biotech, 1994). Analýza sekvencii sa uskutočnila použitím interných primérov navrhnutých zo sekvencie známej z interného PCR-produktu gnd (SEQ ID NO 1) poskytujúcej celú sekvenciu génu gnd, ktorý sa má odvodiť.
Sekvencie interných primérov:
Interný primér 1: 5 ’ GGT GGA TGC TGA AAC CG 3’
Interný primér 2: t ! 5’· GCT GCA TGC CTG CTG CG 3’
Interný primér 3: 1. 5’ TTG TTG CTT ÁCG CAC AG 3’
Interný primér 4: 5’ TCG TAG. GAC TTT GCT GG. 3’
Získaná sekvencia sa potom analyzovala použitím programu DNA Strider (Marek (1988), Nucleic Acids Research 16: 18291836), verzia 1.0 na počítači Apple Macintosh. Tento program umožnil analýzy, ako je napríklad stanovenie použitím reštrikčného miesta, analýza otvoreného čítacieho rámca a stanovenie použitím kodónu. Vyhladávanie medzi získanou sekvenciou DNA a sekvenciami v databázach EMBL a Genbank sa dosiahlo použitím programu BLAST (Altschul et al., 1997, Nucleic Acids Research, 25:3389-3402). Sekvencie DNA a proteínu sa vyrovnali použitím programov Clustal V a Clustal W (Higgins and Sharp, 1988 Gene 73: 237-244).
Takto získaná sekvencia je znázornená v SEQ ID NO 2. Analýza získanej nukleotidovej sekvencie odhalila otvorený čítací rámec s 1377 pármi báz, ktorý sa označil ako gén gnd. Kóduje proteín so 459 aminokyselinami znázornený v SEQ ID NO 3.
Príklad 3
Príprava kyvadlového vektora pEC-Tl8mob2
Kyvadlový vektor pEC-T18mob2 z E. coli - C. glutamicum sa skonštruoval podlá doterajšieho stavu techniky.
Tento vektor obsahuje replikačnú oblasť rep plazmidu pGAl vrátane replikačného efektora per (US-A- 5,175, 108; Nesve.ra et al., Journal of Bacteriology 179, 1525-1532 (1997)), gén tetA(Z) plazmidu pAGl sprostredkovávajúci rezistenciu na tetracyklín (US-A- 5,158,891; zápis do génovej banky v National Center for Biotechnology Information (NCBI,
Bethesda, MD, USA) s prírastkovým číslom AF121000), replikačnú oblasť oriV plazmidu pMBl (Sutcliffe, Cold Spring Harbor Symposium on Quntitative Biology 43, 77-90 (1979)), génový fragment lacZ zahŕňajúci promótor lac a viacnásobné klonovacie miesto (multiple cloning site, mcs) (Norrander, J. M. et al., Gene 26, 101-106 (1983) a oblasť mob plazmidu RP4 (Šimon et al., (1983), Bio/Technology 1: 784-791).
Skonštruovaný vektor sa transformoval do kmeňa E. coli DH5a (Hanahan, In: DNA Cloning. A Practical Approach. Vol. I., IRL-Press, Oxford, Washington DC, USA, 1985). Bunky nesúce plazmid sa selektovali nanesením transformačnej zmesi na platne s agarom LB (Sambrook et al., Molecular cloning: a laboratory manual, 2nd Ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y.), ktorý bol doplnený 5 mg/1 tetracyklínu. Plazmidová DNA sa izolovala z jedného transformantu použitím kitu QIAprep Spin Miniprep Kit od firmy Qiagen a analyzovala reštrikciou reštrikčným enzýmom EcoRI a HindlII a potom elektroforézou v agarózovom géle (0/8%).
Plazmid sa nazval pEC-T18mob2 a je znázornený na obrázku 1. Je uložený vo forme kmeňa Escherichia coli K-12, kmeň DH5a/pEC-T18mob2 v Nemeckej zbierke mikroorganizmov a bunkových kultúr (DSMZ, Braunschweig, Nemecko) ako DSM 13244.
Príklad 4
Klonovanie génu gnd do kyvadlového vektora pEC-T18mob2 z E. coli - C. glutamicum
Na amplifikáciu fragmentov DNA obsahujúcich celý gén gnd z C. glutamicum a oblasti priliehajúce v jeho smere a v protismere sa použila PCR s použitím pBGNA ako templátu. PCR reakcie sa uskutočnili použitím olígonukleotidových primérov odvodených z SEQ ID NO 2. Použité priméry:
dopredný primér gnd: .5’ ACT CTA GTC GGC CTA AAA TGG'3' reverzný primér gnd:^ 5,’ CAC ACA GGA AAC AGA TAT GAC 3’
Parametre PCR:
cyklov °C počas '6 minút °C počas 1 minúty °C počas 1 minúty72 °C počas 45 sekúnd mM MgCl2 približne 150 až 200 ng pBGNA-DNA ako templátu.
Získaný produkt PCR sa klonoval do komerčne dostupného vektora pGEM-T zakúpeného od firmy Promega Corp. (pGEM-T Easy Vector System 1, katalógové číslo A1360, Promega UK,
Southampton) použitím kmeňa E. coli JM109 (Yanisch-Perron etal., Gene 33: 103-119 (1985)) ako hostiteľského mikroorganizmu. Celý gén gnd sa potom izoloval z vektora pGEM T vo fragmente EcoRI a klonoval do miesta lacZ EcoRI kyvadlového vektora pEC-T18mob2 z E. coli - C. glutamicum (obrázok 1) a ozhačil ako pECgnd (obrázok 2). Reštrikčná analýza použitím Accl (Boehringer Mannheim GmbH, Nemecko) odhalila správnu orientáciu (t.j. v smere promótora lac) génu gnd v géne lacZa vektora pEC-T18mob2.
Príklad 5
Príprava producenta aminokyseliny pomocou zosilnenej 6-fosfoglukonátdehydrogenázy
Vektor pECgnd z príkladu 3 sa elektroporoval do kmeňov Corynebacerium glutamicum DSM 5399 a DSM 5714 podlá elektroporačnej metódy od Taucha et al. (FEMS Microbiological Letters, 123:343-347 (1994)). Kmeň DSM 5399 je producent treonínu opísaný v EP-B-0358940. Kmeň DSM 5714 je producent lyzínu opísaný v EP-B-0435132. Selekcia transformantov sa uskutočnila nanesením elektroporačnej zmesi na agar. LB (Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd Ed.,'Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y., 1989), ktorý bol doplnený 25 mg/l kanamycínu. Týmto spôsobom sa vytvorili kmene DSM5399/pECgnd a DSM5714/pECgnd.
Príklad 6
Príprava L-treonínu
Kmeň C. glutamicum DSM5399/pECgnd získaný v príklade 5 sa kultivoval v živnom médiu vhodnom na produkciu treonínu a obsah treonínu sa stanovoval v kultivačnom supernatante.
Na tento účel sa kmeň najskôr inkuboval 24 hodín pri 33 °C na agarovej platni s vhodným antibiotikom (mozgovo-srdcový agar s tetracyklínom (5 mg/l)). Vychádzajúc z kultúry z tejto agarovej platne sa naočkovala predpestovaná kultúra (10 ml média v 100 ml Erlenmeyerovej banke). Ako médium pre predpestovanú kultúru sa použil mozgovo-srdcový bujón (Merck, Darmstadt, Nemecko). K tomu sa pridal tetracyklín (5 mg/l). Predpestovaná kultúra sa inkubovala 24 hodín pri 33 °C pri 240 ot./min v pretrepávačke. Hlavná kultúra sa naočkovala touto predkultúrou tak, aby začiatočná optická hustota (660 nm) hlavnej kultúry bola 0,1. Pre hlavnú kultúru sa použilo médium MM pre treonín.
Médium MM:
CSL
MOPS
Glukóza (oddelene autoklávovaná) Soli:
(NH4)2SO4
KH2PO4
MgSO4.7H2O
CaCl2.2H2O
FeSO4.7H2O
MnSO4.H2O
Biotín (sterilné filtrovaný) Tramín.HCI (sterilné filtrovaný) L-Leucín (sterilné filtrovaný) CaCO3 g/1 20 g/1 50 g/1 g/1 0,1 g/1 1,0 g/1 10 mg/l 10 mg/l 5,0 mg/l 0,3 mg/l 0,2 mg/l 0,1 g/1 25 g/1
CSL (kukuričná maceračná tekutina), MOPS (kyselina morfolinopropánsulfónová) a roztok solí sa vodným roztokom amoniaku nastavili na pH 7 a autoklávovali. Potom sa pridali roztoky sterilného substrátu a roztoky vitamínov, ako aj za sucha autoklávovaný CaCC>3.
Kultivácia sa uskutočňovala v 10 ml objeme v 100 ml Erlenmeyerovej banke s priehradkami. Pridal sa tetracyklín (5 mg/1). Kultivácia sa uskutočňovala pri 33 °C a 80% vlhkosti vzduchu.
Po 48 hodinách sa určila optická hustota (OD) pri meracej vlnovej dĺžke 660 nm pomocou Biomek 1000 (Beckmann Instruments GmbH, Mníchov). Koncentrácia treonínu sa stanovila pomocou analyzátora aminokyselín od firmy Eppendórf-BioTronik (Hamburg, Nemecko) ionexovou chromatografiou a derivatizáciou na prídavnom stĺpci s ninhydrínovou detekciou.
Výsledok pokusu je uvedený v tabulke 1
Tabulka 1
Kmeň Optická hustota L-Treonín.HCI
(660) g/1
DSM5399/pECgnd 11, 9 1,29
DSM5399 11,8 0,33
Príklad 7
Príprava L-lyzínu
Kmeň Corynebacterium glutamicum DSM5714/pECgnd získaný v príklade 5 sa kultivoval v živnom médiu vhodnom na produkciu lyzínu a obsah lyzínu sa stanovoval v kultivačnom supernatante.
Na tento účel sa kmeň najskôr inkuboval 24 hodín pri 33 °C na agarovej platni s vhodným antibiotikom (mozgovo-srdcový agar s tetracyklínom (5 mg/1)). Vychádzajúc z kultúry z tejto agarovej platne sa naočkovala predpestovaná kultúra (10 ml média v 100 ml Erlenmeyerovej banke). Médiom použitým pre predpestovanú kultúru bolo úplné médium CglII.
Médium Cg III
NaCl
Bacto-peptón
Bacto-kvasnicový extrakt Glukóza (oddelene autoklávovaná) Hodnota pH sa nastavila na 7,4.
2,5 g/l g/l g/l % (hmotnosť/objem)
K tomu sa pridal tetracyklín (5 mg/1). Predpestovaná kultúra sa inkubovala 24 hodín pri 33 °C pri 240 ot./min v pretrepávačke. Hlavná kultúra sa naočkovala touto predpestovanou kultúrou tak, aby začiatočná optická hustota (660 nm) hlavnej kultúry bola 0,05. Pre hlavnú kultúru sa použilo médium MM.
Médium MM:
CSL (kukuričná maceračná tekutina) MOPS (kyselina morfolinopropán- sulfónová) Glukóza (oddelene autoklávovaná) 5 g/l 20 g/l 50 g/l
(NH4)2SO4
kh2po4 25 g/l
MgSO4.7H2O 0,1 g/l
CaCl2.2H2O 1,0 mg/1
FeSO4.7H2O 10 mg/1
MnSO4 .H2O 10 mg/1
Biotín (sterilné filtrovaný) 0,3 mg/1
Tramín.HCI (sterilné filtrovaný) 0,2 mg/1
L-Leucín (sterilné filtrovaný) 0,1 g/1
CaCO3 25’g/1
CSL, MOPS a roztok solí sa vodným roztokom amoniaku nastavili na pH 7 a autoklávovali. Potom sa pridali roztoky sterilného substrátu a roztoky vitamínov, ako aj za sucha autoklávovaný CaCO3.
Kultivácia sa uskutočňovala v 10 ml objeme v 100 ml Erlenmeyerovej banke s priehradkami. Pridal sa tetracyklín (5 mg/1). Kultivácia sa uskutočňovala pri 33 ’C a 80% vlhkosti vzduchu.
Po 48 hodinách sa určila optická hustota (OD) pri meracej vlnovej dĺžke 660 nm pomocou Biomek 1000 (Beckmann Instruments GmbH, Mníchov). Vytvorené množstvo lyzínu sa stanovilo pomocou analyzátora aminokyselín od firmy Eppendorf-BioTronik (Hamburg, Nemecko) ionexovou chromatografiou a derivatizáciou na prídavnom stĺpci s ninhydrínovou detekciou.
Výsledok pokusu je uvedený v tabuľke 2.
Tabulka 2
Kmeň Optická hustota L-Lyzín.HCI
(660) g/i
DSM5715/pECgnd 7,7 14,7
DSM5715 7,1 13,7
Príklad 8
Vytvorenie kozmidovej genómovej knižnice baktérie Corynebacterium glutamicum ATCC 13032 ( , I
Chromozómová DNA baktérie Corynebacterium glutamicum ATCC 13032 sa izolovala a čiastočne naštiepila (viď Tauch et al., (1995), Plasmid 33: 168 - 179) reštrikčným enzýmom Sau3AI (Amersham Pharmacia, Freiburg, Nemecko, katalógové č. 27-091302). Izolované fragmenty DNA sa defosforylovali pomocou alkalickej fosfatázy z morských garnátov (shrimp alkaline phosphatase, Roche Molecular Biochemicals, Mannheim, Nemecko, katalógové číslo 1758250). DNA kozmidového vektora SuperCosl (Wahl et al., (1987) Proceedings of the National Academy of Sciences USA 84: 2160 - 2164), získaného od firmy Stratagene (La Jolla, USA, SuperCosl Cosmid Vektor Kit, katalógové č. 251301), sa naštiepila reštrikčným enzýmom Xbal (Amersham Pharmacia, Freiburg, Nemecko, katalógové č. 27-0948-02) a taktiež defosforylovala alkalickou fosfatázou.
Následne sa kozmidová DNA naštiepila reštrikčným enzýmom BamHI (Amersham Pharmacia, Freiburg, Nemecko, katalógové č. 27-0868-04). Týmto spôsobom získané fragmenty kozmidovej DNA sa zmiešali s DNA ATCC13032 a potom spojili pomocou T4-DNAligázy (Amersham Pharmacia, Freiburg, Nemecko, katalógové č. 27-0870-04).
Ligačná zmes sa potom pomocou, baliaceho extraktu Gigapack II XL Packing (Stratagene, La Jolla, USA, Gigapack II XL Packing Extract, katalógové č. 200217) zabalila do fágových častíc. Tieto fágové častice sa použili na infekciu kmeňa E. coli NM554 (Raleigh et al., 1988, Nucleic Acid Research 16:
1563 - 1575) . Bunky sa resuspendovali v lOmM MgSO4 a zmiešali s alikvótom suspenzie fágov. Infekcia a titrácia kozmidovej knižnice sa uskutočnila tak, ako sa opisuje v knihe Sambrook et al., (1989, Molecular Cloning: A laboratory Manual, Cold Spring Harbor), pričom sa bunky naniesli na agar LB (Lennox,
1955, Virology, 1:190) so 100 μς/ml ampicilínu. Po inkubácii cez noc pri 37 °C sa selektovali jednotlivé rekombinantné klony.
Príklad 9
Izolácia a sekvenovanie génu poxB
Kozmidová DNA jednej kolónie (príklad 8) sa izolovala pomocou kitu Qiaprep Spin Miniprep Kit (katalógové č.. 27106, Qiagen, Hilden, Nemecko) podlá návodov výrobcu a čiastočne rozštiepila reštrikčným enzýmom Sau3AI (Amersham Pharmacia, Freiburg, Nemecko, katalógové č. 27-0913-02). Získané fragmenty DNA sa defosforylovali pomocou alkalickej fosfatázy z morských garnátov (Roche Molecular Biochemicals, Mannheim, Nemecko, katalógové č. 1758250). Po separácii gélovou elektroforézou sa uskutočnila izolácia fragmentov kozmidu s rozsahom velkostí 1 500 až 2 000 bp pomocou kitu QiaExII gel Extraction Kit (katalógové č. 20021, Qiagen, Hilden, Nemecko). DNA sekvenačného vektora pZero-1, získaného od firmy Invitrogen (Groningen, Holandsko, katalógové č. K2500-01), sa štiepila reštrikčným enzýmom BamHI (Amersham Pharmacia, Freiburg, Nemecko, katalógové č. 27-0868-04). Ligácia kozmidových fragmentov do sekvenačného vektora pZero-1 sa uskutočnila tak, ako sa opisuje v príručke Sambrook et al., (1989, Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor), pričom zmes DNA s T4-ligázou (Pharmacia Biotech, Freiburg, Nemecko) sa inkubovala cez noc. Táto ligačná zmes sč následne elektroporovala (Tauch et al., 1994, FEMS Microbiol Letters, 123:343 - 347) do kmeňa E. coli DH5aMCR (Grant, 1990, Proceedings of the National Academy of Sciences U.S.A., 87: 4645 - 4649) a naniesli na agar LB (Lennox, 1955, Virology, 1:190) s prídavkom 50 pg/ml zeocínu.
Izolácia plazmidov z rekombinantných klonov sa uskutočňo vala pomocou zariadenia Biorobot 9600 (katalógové č. 900200,
Qiagen, Hilden, Nemecko). Sekvenovanie sa uskutočňovalo dideoxymetódou ukončenia reťazca (Sanger et al., 1997, Proceedings of the National Academies of Sciences U.S.A., 74: 5463 - 5467) s modifikáciami podlá Zimmermänna et al., (1990, Nucleic Acids Research, 18:1067). Pritom sa použil sekvenačný kit „RR dRhodamin Terminátor Cycle Sequencing Kit od firmy PE Applied Biosystems (katalógové č. 403044, Weiterstadt,
Nemecko). Separácia gélovou elektroforézou a analýza sekvenačnej reakcie sa uskutočňovala v géle „Rotiphoresis NF Acrylamid/Bisacrylamid (29:1) (katalógové č. A124.1, Roth, Karslruhe, Nemecko) pomocou prístroja „ABI Prism 377 od firmy PE Applied Biosystems (Weiterstadt, Nemecko).
Získané nespracované údaje o sekvenciách sa následne spracovali použitím programového balíka Staden (1986, Nucleic Acids Research, 14: 217 - 231), verzia 97-0. Jednotlivé sekvencie derivátov plazmidu pZerol sa zostavili do jedného súvislého celku. Počítačová analýza kódujúcich oblastí sa uskutočnila pomocou programu XNIP (Staden, 1986, Nucleic Acids Research, 14:217 - 231). Ďalšie analýzy sa uskutočnili pomocou programu „BLAST (Altschul et al., 1997, Nucleic Acids Research, 25: 3389 - 3402) proti neredundantnej databáze NCBI „National Center for Biotechnology Information (NCBI, Bethesda, MD, USA).
Výsledná nukleotidová sekvencia je znázornená v SEQ ID No. 4. Analýza tejto nukleotidovej sekvencie odhalila otvorený čítací rámec s velkosťou 1737 párov báz, ktorý sa označil ako gén poxB. Gén poxB kóduje polypeptid s velkosťou 579 aminokyselín (SEQ ID NO. 5).
Príklad 10
Príprava integračného vektora na integračnú mutagenézu génu poxB
Z kmeňa ATCC 13032 sa metódou podľa Eikmannsa et al.
(Microbiology 140: 1817-1828 (1994)) izolovala chromózomová
DNA. Na základe sekvencie génu poxB známej z príkladu 9 pre Ci glutamicum sa selektovali nasledovné oligonukleotidy pre polymerázovú reťazovú reakciu:
poxBintl:
5' TGC GAG ATG. GTG AAT GGT GG 3' poxBint2: __ ___ _______
5' GCA TGA GGC AAC GCA TTA GC 3'
Znázornené priméry syntetizovala firma MWG Biotech (Ebersberg, Nemecko) a PCR reakcia sa uskutočnila podlá štandardnej metódy PCR od Innisa et al. (PCR protocols. A Guide to Methods and Applications, 1990, Academic Press) s polymerázou Pwo od firmy Boehringer. Pomocou tejto polymerázovej reťazovej reakcie sa izoloval fragment DNA s veľkosťou približne 0,9 kb, ktorý nesie interný fragment génu poxB a je znázornený v SEQ ID No. 6.
Amplifikovaný fragment DNA sa ligoval pomocou klonovacieho kitu TOPO TA od firmy Invitrogen Corporation. (Carlsbad, CA, USA; katalógové číslo K4500-01) do vektora pCR2.1-TOPO (Mead et al., (1991), Bio/Technology 9:657-663). Kmeň E. coli DH5a sa potom elektroporoval s ligačnou zmesou (Hanahan, In: DŇA Cloning. A Practical Approach. Vol. I., IRLPress, Oxford, Washington DC, USA, 1985). Selekcia buniek nesúcich plazmid sa uskutočnila nanesením transformačnej zmesi na agar LB (Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd Ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y., 1989), ktorý bol doplnený 25 mg/1 kanamycínu. Plazmidová DNA sa izolovala z jedného transformantu použitím kitu QIAprep Spin Miniprep Kit od firmy
Qiagen a analyzovala reštrikciou reštrikčným enzýmom EcoRI a následnou elektroforézou v agarózovom géle (0,8%). Plazmid sa nazval pCR2.IpoxBint (obrázok 4).
Plazmid pCR2.IpoxBint sa uložil vo forme kmeňa Escherichia coli DH5a/pCR2.IpoxBint ako DSM 13114 v Nemeckej zbierke mikroorganizmov a bunkových kultúr (DSMZ,
Braunschweig, Nemecko) podlá Budapeštianskej zmluvy.
Príklad 11
Integračná mutagenéza génu poxB v kmeni DSM 5715 produkujúcom lyzín
Vektor pCR2.IpoxBint uvedený v príklade 10 sa elektroporoval do Corynebacterium glutamicum DSM 5715 podlá elektroporačnej metódy Taucha et al. (FEMS Microbiological Letters, 123:343347 (1994)). Pri kmeni DSM 5715 sa jedná o producenta lyzínu rezistentného na AEC. Vektor pCR2.IpoxBint sa nemôže samostatne replikovať v DSM5715 a zachováva sa v bunke len vtedy, ak sa integroval do chromozómu DSM 5715. Selekcia klonov pomocou pCR2.IpoxBint integrovaného v chromozóme sa uskutočnila nanesením elektroporačnej zmesi na agar LB (Sambrook et al., Molecular cloning: a laboratory manual, 2nd Ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y.), ktorý bol doplnený 15 mg/1 kanamycínu. Na dôkaz integrácie sa fragment poxBint označil pomocou hybridizačného kitu Dig od firmy Boehringer metódou „The DIG Systems Users Guide for Filter Hybridization od firmy Boehringer Mannheim GmbH (Mannheim, Nemecko, 1993). Chromozómová DNA potenciálneho integrantu sa izolovala metódou od Eikmanns et ál.
(Microbiology 140: 1817 - 1828 (1994)) a štiepila reštrikčným enzýmom Sali, Sací a HindlII. Vzniknuté fragmenty sa separovali pomocou elektroforézy v agarózovom géle a hybridizovali pomocou hybridizačného kitu Dig od firmy
Boehringer pri 68 °C. Plazmid pCR2.lpoxBint uvedený v príklade 9 sa vnútri chromozómového génu poxB vložil do chromozómu DSM5715. Kmeň sa označil DSM5715::pCR2.lpoxBint.
Príklad 12 - .
Účinok zvýšenej expresie génu gnd so súčasnou elimináciou génu poxB na produkciu lyzínu
12.1 Príprava kmeňa DSM5715::pCR2.lpoxBint/pECgnd
Kmeň DSM5715::pCR2.lpoxBint sa transformoval plazmidom pECgnd použitím elektroporačnej metódy opísanej v práci Liebl et al. (FEMS Microbiology Letters 53: 299-303 (1989)).
Selekcia transformantov sa uskutočňovala na agare LBHIS zloženom z 18,5 g/1 mozgovo-srdcového infúzneho bujónu, 0,5 M sorbitolu, 5 g/1 Bacto-tryptónu, 2,5 g/1 Bacto-kvasnicového extraktu, 5 g/1 NaCl a 18 g/1 Bacto-agaru, ktorý bol doplnený 5 mg/1 tetracyklínu a 25 mg/1 kanamycínu. Inkubácia sa uskutočňovala 2 dni pri 33 °C.
Plazmidová DNA sa izolovala vo všetkých prípadoch z transformantu obvyklou metódou (Peters-Wendisch et al., 1998, Microbiology, 144, 915-927), štiepila reštrikčnou endonukleáou Accl a plazmid sa analyzoval následnou elektroforézou v agarózovom géle. Získaný kmeň sa nazval
DSM5715::pCR2.lpoxBint/pECgnd.
12.2 Príprava L-lyzínu
Kmeň C. glutamicum DSM5715::pCR2.IpoxBint/pECgnd získaný v príklade 12.1 sa kultivoval v živnom médiu vhodnom na produkciu lyzínu a obsah lyzínu sa stanovoval v kultivačnom supernatante.
Na tento účel sa kmeň najskôr inkuboval 24 hodín pri 33 °C na agarovej platni s vhodným antibiotikom (mozgovo-srdcový agar s tetracyklínom (5 mg/1) a kanamycínom (25 mg/1)).
I
Kultúry porovnávacích kmeňov boli doplnené podľa ich rezistencie na antibiotiká. Vychádzajúc z kultúry z tejto agarovej platne sa naočkovala predpestovaná kultúra (10 ml média v 100 ml Erlenmeyerovej banke). Médiom použitým pre predpestovanú kultúru bolo úplné médium CglII.
Médium Cg III
NaCI
Bacto-peptón
Bacto-kvasnicový extrakt Glukóza (oddelene autoklávovaná) Hodnota pH sa nastavila na 7,4.
2,5 g/1 g/1 g/1 % (hmotnosť/objem)
K tomu sa pridal tetracyklín (5 mg/1) a kanamycín (25 mg/1)). Predpestovaná kultúra sa inkubovala 16 hodín pri 33 °C pri 240 ot./min v pretrepávačke. Hlavná kultúra sä naočkovala touto predpestovanou kultúrou tak, aby začiatočná optická hustota (660 nm) hlavnej kultúry bola 0,1. Pre hlavnú kultúru sa použilo médium MM.
Médium MM:
CSL (kukuričná maceračná tekutina) MOPS (kyselina morfolinopropánsulfónová)
Glukóza (oddelene autoklávovaná) (NH4)2SO4 KH2PO4 MgSO4.7H2O
5 g /1
20 g/i
58 g/i
25 g/i
0,1 g/i
1,0 g/i
CaCl2.2H2O
FeSO4.7H2O
MnSO4.H2O
Biotín (sterilné filtrovaný) Tiamín.HCl (sterilné filtrovaný) L-Leucín (sterilné filtrovaný) CaCO3 mg/1 10 mg/1 5,0 mg/1 0,3 mg/1 0,2 mg/1 0,1 g/1 25 g/1
CSL, MOPS a roztok solí sa vodným roztokom amoniaku nastavili na pH 7 a autoklávovali. Potom sa pridali roztoky sterilného substrátu a roztoky vitamínov, ako aj za sucha autoklávovaný CaCO3.
Kultivácia sa uskutočňovala v 10 ml objemoch v 100 ml Erlenmeyerovej banke s priehradkami. Pridal sa tetracyklín (5 mg/1) a kanamycín (25 mg/1). Kultivácia sa uskutočňovala pri 33 °C a 80% vlhkosti vzduchu.
Po 72 hodinách sa určila optická hustota (OD) pri meracej vlnovej dĺžke 660 nm pomocou Biomek 1000 (Beckmann Instruments GmbH, Mníchov). Vytvorené množstvo lyzínu sa stanovilo pomocou analyzátora aminokyselín od firmy Eppendorf-Bioľronik (Hamburg, Nemecko) ionexovou chromatografiou a derivatizáciou na prídavnom stĺpci s ninhydrínovou detekciou.
Výsledok pokusu je uvedený v tabuľke 3.
Tabulka 3
Kmeň Optická hustota L-Lyzín.HCI g/i
DSM5715 10,8 16,0
DSM5715/pECgnd 7,6 16,5
DSM5715::pCR2.lpoxBint 7,1 16, 7
DSM5715::pCR2.lpoxBint/ 7,2 17,1
pECgnd

Claims (10)

1. Spôsob prípravy L-aminokyselín fermentáciou koryneformných baktérií, vyznačujúci sa tým, že zahŕňa uskutočnenie nasledovných stupňov:
a) fermentácia baktérií produkujúcich žiadanú
L-aminokyselinu, v ktorých sa zosilňuje aspoň gén gnd,
b) koncentrovanie L-aminokyseliny v médiu alebo v bunkách baktérií a
c) izolácia produkovanej L-aminokyseliny.
2. Spôsob podľa nároku 1,vyznačujúci sa tým, že sa používajú baktérie, v ktorých sa prídavné zosilňujú, najmä zvýšene exprimujú, ďalšie gény pre biosyntetickú dráhu žiadanej L-aminokyseliny.
3. Spôsob podľa nároku 1, vyznačujúci sa tým, že sa používajú baktérie, ktoré produkujú L-treonín, L-lyzín, L-izoleucín alebo L-tryptofán.
4. Spôsob podľa nároku 3,vyznačujúci sa tým, že sa používajú baktérie, ktoré produkujú L-lyzín.
5. Spôsob fermentačnej prípravy L-lyzínu podľa nároku 2, vyznačujúci sa tým, že v koryneformných mikroorganizmoch, ktoré najmä už produkujú L-lyzín, sa súčasne zosilňuje alebo zvýšene exprimuje jeden alebo viac génov zvolených zo skupiny zahŕňajúcej
5.1 gén dapA kódujúci dihydrodipikolinátsyntázu,
5.2 gén lysC kódujúci aspartátkinázu rezistentnú na spätnú väzbu,
5.3 gén gap kódujúci glyceraldehyd-3-fosfátdehydrogenázu,
5.4 gén pyc kódujúci pyruvátkarboxylázu, 1 · I
5.5 gén tkt kódujúci transketolázu,
5.6 gén zwf kódujúci glukóza-6-fosfátdehydrogená.zu,
5.7 gén lysE kódujúci prenos lyzínu,
5.8 gén zwal,
5.9 gén eno kódujúci enolázu.
6. Spôsob fermentačnej prípravy L-treonínu podía nároku 2,vyznačujúci sa tým, že v koryneformných mikroorganizmoch, ktoré najmä už produkujú L-treonín, sa súčasne zosilňuje, najmä zvýšene exprimuje jeden alebo viac génov zvolených zo skupiny zahŕňajúcej
6.1 gén hom kódujúci homoseríndehydrogenázu alebo alelu homdr kódujúcu homoseríndehydrogenázu rezistentnú na spätnú väzbu,
6.2 gén gap kódujúci glyceraldehyd-3-fosfátdehydrogenázu,
6.3 gén pyc kódujúci pyruvátkarboxylázu,
6.4 gén mqo kódujúci malát:chinónoxidoreduktázu,
6.5 gén tkt kódujúci transketolázu,
6.6 gén zwf kódujúci glukóza-6-fosfátdehydrogenázu,
6.7 gén thrE kódujúci prenos treonínu,
6.8 gén zwal,
6.9 gén eno kódujúci enolázu.
7. Spôsob podlá nároku 2, vyznačujúci sa tým, že na prípravu L-aminokyselín, najmä L-lyzínu alebo L-treonínu sa fermentujú baktérie, v ktorých sa súčasne zoslabuje jeden alebo viac génov zvolených zo skupiny zahŕňajúcej
7.1 gén pck kódujúci fosfoenolpyruvátkarboxykinázu,
7.2 gén pgi kódujúci glukóza-6-fosfátizomerázu,
7.3 gén poxB kódujúci pyruvátoxidázu,
7.4 gén zwa2.
8. Spôsob podlá nárokov 2 až 6, vyznačuj úci sa t ý m , že na dosiahnutie zosilnenia sa pomocou transformácie mikroorganizmov plazmidovými vektormi nesúcimi tieto gény alebo nukleotidové sekvencie zvýši počet kópií génov alebo nukleotidových sekvencií.
9. Plazmidový vektor pEC-T18mob2 uložený pod označením DSM 13244 v E. coli K-12 DH5a, znázornený na obrázku 2.
10. Koryneformný mikroorganizmus, najmä rodu Corynebacterium transformovaný pomocou vloženia plazmidového vektora podlá nároku 9, ktorý prídavné obsahuje gén gnd.
Obrázokι i; Mapa plazmidu pEC-T18mob2
SK1654-2001A 2000-03-20 2000-07-05 Spôsob fermentačnej prípravy L-aminokyselín pomocou zosilnenia génu gnd SK16542001A3 (sk)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US53126500A 2000-03-20 2000-03-20
PCT/EP2000/006299 WO2001071012A1 (en) 2000-03-20 2000-07-05 Process for the fermentative preparation of l-amino acids with amplification of the gnd gene

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SK16542001A3 true SK16542001A3 (sk) 2002-07-02

Family

ID=24116938

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SK1654-2001A SK16542001A3 (sk) 2000-03-20 2000-07-05 Spôsob fermentačnej prípravy L-aminokyselín pomocou zosilnenia génu gnd

Country Status (14)

Country Link
US (2) US20030119154A1 (sk)
EP (1) EP1179076B9 (sk)
KR (1) KR100826815B1 (sk)
CN (1) CN1350586A (sk)
AT (1) ATE292687T1 (sk)
AU (1) AU6431600A (sk)
BR (1) BR0010817A (sk)
CA (1) CA2374265A1 (sk)
DE (1) DE60019280T2 (sk)
ES (1) ES2240135T3 (sk)
MX (1) MXPA01011643A (sk)
PL (1) PL358912A1 (sk)
SK (1) SK16542001A3 (sk)
WO (1) WO2001071012A1 (sk)

Families Citing this family (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1330526B1 (en) * 2000-11-04 2010-04-21 Evonik Degussa GmbH Process for the fermentative preparation of l-amino acids using strains of the enterobacteriaceae family
US20030017554A1 (en) * 2000-11-15 2003-01-23 Mechthild Rieping Process for the fermentative preparation of L-amino acids using strains of the enterobacteriaceae family
DE10210527A1 (de) 2002-03-09 2003-09-18 Degussa Allele des aceA-Gens aus coryneformen Bakterien
JP5572279B2 (ja) * 2004-05-20 2014-08-13 味の素株式会社 コハク酸生産菌及びコハク酸の製造方法
DE102005032426A1 (de) 2004-12-18 2006-06-22 Degussa Ag Allele des gnd-Gens aus coryneformen Bakterien
US8647642B2 (en) 2008-09-18 2014-02-11 Aviex Technologies, Llc Live bacterial vaccines resistant to carbon dioxide (CO2), acidic PH and/or osmolarity for viral infection prophylaxis or treatment
KR101335853B1 (ko) 2011-12-01 2013-12-02 씨제이제일제당 (주) L-아미노산 및 리보플라빈을 동시에 생산하는 미생물 및 이를 이용한 l-아미노산 및 리보플라빈을 생산하는 방법
US10676723B2 (en) 2015-05-11 2020-06-09 David Gordon Bermudes Chimeric protein toxins for expression by therapeutic bacteria
CN105602966B (zh) * 2016-01-08 2019-03-15 广西大学 一种编码6-磷酸葡萄糖酸脱氢酶的基因及其应用
US11129906B1 (en) 2016-12-07 2021-09-28 David Gordon Bermudes Chimeric protein toxins for expression by therapeutic bacteria
US11180535B1 (en) 2016-12-07 2021-11-23 David Gordon Bermudes Saccharide binding, tumor penetration, and cytotoxic antitumor chimeric peptides from therapeutic bacteria
CN114729339B (zh) * 2021-01-29 2023-01-03 Cj第一制糖株式会社 新真菌硫酮还原酶变体及使用其生产l-赖氨酸的方法

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB2165546B (en) * 1984-08-21 1989-05-17 Asahi Chemical Ind A plasmid containing a gene for tetracycline resistance and dna fragments derived therefrom
GB2223754B (en) * 1988-09-12 1992-07-22 Degussa Dna encoding phosphoenolpyruvate carboxylase
DE3943117A1 (de) * 1989-12-27 1991-07-04 Forschungszentrum Juelich Gmbh Verfahren zur fermentativen herstellung von aminosaeure, insbesondere l-lysin, dafuer geeignete mikroorganismen und rekombinante dna
DE4027453A1 (de) * 1990-08-30 1992-03-05 Degussa Neue plasmide aus corynebacterium glutamicum und davon abgeleitete plasmidvektoren
JP2817400B2 (ja) * 1993-10-28 1998-10-30 味の素株式会社 物質の製造法
JPH09224662A (ja) * 1996-02-23 1997-09-02 Mitsubishi Chem Corp 6−ホスホグルコン酸デヒドロゲナーゼおよびそれをコードするdna
ID29569A (id) * 1999-07-09 2001-09-06 Degussa Ag Cs Urutan nucleotida yang menyandi gen opca
PT1208205E (pt) * 1999-07-23 2006-12-29 Archer Daniels Midland Co Métodos para produzir l-aminoácidos por aumento do nadph celular

Also Published As

Publication number Publication date
EP1179076B1 (en) 2005-04-06
MXPA01011643A (es) 2003-02-27
CA2374265A1 (en) 2001-09-27
DE60019280D1 (de) 2005-05-12
PL358912A1 (en) 2004-08-23
WO2001071012A1 (en) 2001-09-27
EP1179076A1 (en) 2002-02-13
KR100826815B1 (ko) 2008-05-02
US20030119154A1 (en) 2003-06-26
EP1179076B9 (en) 2005-11-30
US20040063181A1 (en) 2004-04-01
AU6431600A (en) 2001-10-03
ATE292687T1 (de) 2005-04-15
ES2240135T3 (es) 2005-10-16
BR0010817A (pt) 2002-03-05
KR20010113832A (ko) 2001-12-28
CN1350586A (zh) 2002-05-22
DE60019280T2 (de) 2006-05-11

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US7504242B2 (en) Process for the fermentative production of amino acids using coryneform bacteria in which OpcA gene expression is amplified
US20040214219A1 (en) Nucleotide sequences which code for the tal gene
US20060014259A9 (en) Process for the preparation of L-amino acids with amplification of the zwf gene
US6872553B2 (en) Nucleotide sequences which code for the pck gene
EP1179073B1 (en) Process for the fermentative preparation of l-amino acids with amplification of the zwf gene
US20030175911A1 (en) Process for the preparation of L-amino acids with amplification of the zwf gene
EP1179076B9 (en) Process for the fermentative preparation of l-amino acids with amplification of the gnd gene
US7759056B2 (en) Nucleotide sequence encoding the dapC gene and process for the production of L-lysine
EP1179084B1 (en) Process for the fermentative preparation of l-amino acids with amplification of the tkt gene
US20050112733A1 (en) Process for the preparation of L-amino acids with amplification of the zwf gene
US20030109014A1 (en) Process for the fermentative preparation of L-amino acids with amplification of the tkt gene
US20020168732A1 (en) Process for the fermentative preparation of L-amino acids using coryneform bacteria
EP1709166A1 (en) Process for the preparation of l-amino acids with amplification of the zwf gene
US20020034794A1 (en) Nucleotide sequences which encode the gpsA gene
SK17952000A3 (sk) Nukleotidové sekvencie kódujúce gén gpm a spôsob fermentatívnej výroby L-aminokyselín
US20020042106A1 (en) Nucleotide sequences which code for the cma gene