[go: up one dir, main page]

SI9620059A - Virusni vektorji in njihova uporaba za zdravljenje hiperproliferativnih motenj, zlasti restenoze - Google Patents

Virusni vektorji in njihova uporaba za zdravljenje hiperproliferativnih motenj, zlasti restenoze Download PDF

Info

Publication number
SI9620059A
SI9620059A SI9620059A SI9620059A SI9620059A SI 9620059 A SI9620059 A SI 9620059A SI 9620059 A SI9620059 A SI 9620059A SI 9620059 A SI9620059 A SI 9620059A SI 9620059 A SI9620059 A SI 9620059A
Authority
SI
Slovenia
Prior art keywords
adenovirus
virus
gax
gene
virus according
Prior art date
Application number
SI9620059A
Other languages
English (en)
Inventor
Didier Branellec
Kenneth Walsh
Jeffrey M. Isner
Patrice Denefle
Original Assignee
Case Western Reserve University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Case Western Reserve University filed Critical Case Western Reserve University
Publication of SI9620059A publication Critical patent/SI9620059A/sl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/46Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates
    • C07K14/47Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals
    • C07K14/4701Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals not used
    • C07K14/4702Regulators; Modulating activity
    • C07K14/4703Inhibitors; Suppressors
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K48/00Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2799/00Uses of viruses
    • C12N2799/02Uses of viruses as vector
    • C12N2799/021Uses of viruses as vector for the expression of a heterologous nucleic acid
    • C12N2799/022Uses of viruses as vector for the expression of a heterologous nucleic acid where the vector is derived from an adenovirus

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)

Abstract

Predloženi izum se nanaša na nepopolne rekombinantne viruse, ki vsebujejo vsaj en inseriran gen, ki kodira celoto ali del proteina GAX ali varianto tega proteina, in na njihovo terapevtsko uporabo, zlasti za zdravljenje post-angioplastične restenoze.ŕ

Description

ČASE WESTERN RESERVE UNIVERSITY
Virusni vektoiji in njihova uporaba za zdravljenje hiperproliferativnih motenj, zlasti restenoze
Predloženi izum se nanaša na nov posebno učinkovit postopek za zdravljenje patologij, ki so povezane s hiperproliferativnimi motnjami, z gensko terapijo. Postopek v smislu izuma zlasti predstavlja specifično blokiranje proliferacije celic vaskularnih gladkih mišic (VSMC) s prenosom gena gax in vivo. Postopek v smislu izuma je prav posebno prikladen za zdravljenje postangioplastične restenoze s prekomerno ekspresijo gena gax v vaskularni steni. V skladu s predloženim izumom se gen gax lahko prenese z virusnimi vektorji. Ti vektorji so prednostno adenovirusni vektorji.
Izolirani so bili različni geni, povezani z ustavitvijo celične delitve. Tako so geni gas (specifični za ustavitev rasti: gas 1-6) in gadd (za ustavitev rasti in inducibilni za poškodbo DNA : gadd34; gadd45 in gaddl53) močno eksprimirani v mirnih celicah, to je tistih, ki so blokirane v fazi GO celičnega ciklusa (Schneider et al., Celi 1988,54; 787-793, Del Sal et al., Celi 1992, 12: 3514-3521; Cowled et al., Exp.Cell.Res. 1994, 211 : 197-202; Brancolini in Schneider, J.Cell.Biol. 1994; 124 : 743-756; Zhan et al., Mol.Cell.Biol. 1993, 13 : 4242-4250; Jackman et al., Cancer Res. 54 : 5656-5662, 1994). V skladu s temi ugotovitvami glede ekspresije gena, mikroinjiciranje proteina gas-1 blokira sintezo DNA (Del Sal et al., Celi, 1992, 70 : 595-607). Obratno dodatek rastnih faktorjev, kot so PDGF (rastni faktorji, ki izhajajo iz trombocitov), ali fetalnega telečjega seruma zmanjša ekspresijo teh genov v modelih in vitro (Coccia et al. Mol.Cell.Biol. 1992, 12 : 3514-3521). Ta specifičnost ekspresije v zvezi s stanjem celične proliferacije tudi navaja k temu, da ima svojega dvojnika in vivo. Tako je gen gas-1 močno eksprimiran v podganjem uterusu po ovariektomiji (Ferrero in Cairo, Cell.Biol.Int. 1993, 17, 857-862). V enakem živalskem modelu je posledica zdravljenja z estrogeni celična proliferacija, ki se izraža v uterusu z zvečanjem ekspresije proto-onkogena c-myc in z zmanjšanjem ekspresije gena gas-1. Podobno je v hepatičnem modelu proliferacije/regeneracije ekspresija gena gas-6 močno zmanjšana 4 ure po parcialni heptatektomiji, tj. v obdobju tranzicije GO v Gl; ta ekspresija se vrne na normalno verjetno potem, ko je injicirana delitev hepatocitov (Ferrero et al., Cell.Biol.Int 1994,158:263-269).
Prijavitelj se je zanimal za nov gen, tj. gax (homeoboks, specifičen za ustavitev rasti) in s predloženo prijavo prikazuje, da ima ta gen lastnosti, ki so posebno prednostne za uporabo v genski terapiji hiperproliferativnih motenj, posebno restenoze. Gen gax je bil na začetku identificiran v knjižnici cDNA, pripravljeni iz podganje aorte. Kodira protein s 303 amino kislinami. Njegova sekvenca je bila označena in njegova cDNA klonirana (Gorski et al., Mol.Cell.Biol. 1993, 6, 3722-3733). Gen gax ima določene lastnosti, ki so podobne tistim od genov gas in gadd, ker kaže, da tudi on regulira tranzicijo G0/G1 v celičnem ciklusu. Na enak način se nivoji gax mRNA znižajo v podganjih VSMC za faktor 10 po dveh urah izpostavitve PDGF (Gorski et al., Mol.Cell.biol. 1993, 6, 3722-3733). Ekspresija gena gax je zato zatrta med mitogenskim odzivom VSMC.
Ena prednost postopka v smislu izuma je načeloma specifičnost ekspresije gena gax. Tako je v odrasli podgani gen gax pretežno eksprimiran v kardiovaskularnem (aorta in srce) sistemu. Po drugi strani manjka Northern blotting, da bi prikazali prisotnost gax MRNA v jetrih, možganih, želodcu ali skeletnih mišicah. Post-angioplastična restenoza je lokalizirana hiperproliferativna motnja, ki se razvije po nekirurški intervenciji v regiji aterosklerotičnega plaka. Tako je posledica zdravljenja aterosklerotične lezije z angioplastijo zelo pogosto (do 50% primerov v določenih študijah) restenoza po mehanični poškodbi arterijske stene. Ključni dogodek tega mehanizma je proliferacija in migracija celic vaskularnih gladkih mišic (VSMC) tunike medije proti tuniki intimi, posebno zaradi odsotnosti zaščite in/ali povratne zveze, izvedene z endotelijskimi celicami tunike intime. Sposobnost selektivne ekspresije antiproliferativnega gena v smislu izuma v celicah VSMC pomeni zares bistveno prednost.
Druga prednost postopka v smislu izuma je v tem, da gen gax spada v družino homeotičnih genov. Ti geni kodirajo transkripcijske faktorje, ki vsebujejo konsenzne sekvence (ali homeodomene), ki spoznajo specifične regije DNA (ali homeobokse) (pregled : Gehring et al. Celi, 78 : 211-223, 1994). Homeodomena podganjega proteina gax je vsebovana med amino kislinami 185 in 245. Zanimivo je, da so homeotični geni, ki so bili identificirani do sedaj, vključeni v kontrolo celične diferenciacije/rasti med embriogenezo, tako pa se okrepi terapevtska zmožnost postopka v smislu izuma (pregled : Lawrence and Morata Celi 78 : 181-189,1994; Krumlauf, Celi 78:191-201,1994).
Predloženi izum se tako na začetku nanaša na nepopolni rekombinantni virus, ki vsebuje vsaj en inseriran gen, ki kodira celoten protein GAX ali del le-tega ali varianto tega proteina. Predloženi izum se prav tako nanaša na uporabo takega virusa za zdravljenje hiperproliferativnih bolezni.
V virusih v smislu izuma je inserirani gen lahko fragment komplementarne DNA (cDNA) ali genomske DNA (gDNA) ali hibridni konstrukt, ki je sestavljen npr. iz cDNA, v katero je inseriran eden ali več intronov. Gen je prav tako lahko sestavljen iz sintetičnih ali semisintetičnih sekvenc. Kot je označeno zgoraj, je gen lahko tisti, ki kodira celoten protein GAX ali del le-tega ali je varianta tega proteina. V predloženem izumu izraz varianta pomeni katerikoli mutant, fragment ali peptid, ki ima vsaj eno biološko lastnost GAX-a, kot tudi katerikoli homolog GAX-a, ki ga dobimo iz druge vrste. Te fragmente in variante lahko dobimo s katerokoli tehniko, znano strokovnjaku, posebno z genetskimi in/ali kemijskimi in/ali encimskimi modifikacijami ali s hibridizacijo ali z ekspresijskim kloniranjem, ki omogoča variantam, da jih izberemo v skladu z njihovo biološko aktivnostjo. Genetske modifikacije vključujejo supresije, delecije, mutacije itd.
V smislu izuma je inserirani gen prednostno tisti, ki kodira celoten podganji protein gax ali del le-tega ali je od njegovega humanega homologa. Bolj prednostno je cDNA ali gDNA.
Na splošno inserirani gen vključuje tudi sekvence, ki omogočajo, da se le-ta eksprimira v inficirani celici. Te sekvence so lahko tiste, ki so naravno odgovorne za ekspresijo navedenega gena, če so te sekvence sposobne delovanja v inficirani celici. Sekvence so prav tako lahko tudi tiste iz različnih izvorov (odgovorne za ekspresijo različnih proteinov ali celo sintetičnih proteinov). Posebno so lahko sekvence evkariotskih ali virusnih genov ali izvedene sekvence, ki stimulirajo ali zatirajo transkripcijo gena na specifičen ali nespecifičen način in na inducibilen ali neinducibilen način. Lahko so npr. promotorske sekvence, ki so izvedene iz genoma celice, za katero je želeno, da jo inficirajo, ali iz genoma virusa, posebno promotorji adenovirusnih genov E1A in MLP, CMV ali LTR-RSV promotorji itd. Evkariotski promotorji, ki jih prav tako lahko navedemo, so ubikvitarni promotorji (HPRT, vimentin, aktin, tubulin itd.), intermediatni filamentni promotorji (dezmin, nevrofilamenti, keratin, GFAP, itd.), terapevtski genski promotorji (tip MDR, CFTR, faktor VIII, itd.), tkivno specifični promotorji (promotor aktin v celicah gladkih mišic), promotogi, ki so prednostno aktivirani v deljivih celicah, ali drugi promotorji, ki se odzivajo stimulusu (stereoidni hormonski receptor, receptor retinojska kislina itd.). Poleg tega te ekspresijske sekvence lahko modificiramo z dodajanjem aktivacijskih sekvenc, regulatornih sekvenc itd. Kadar pa inserirani gen ne vključuje nobene ekspresijske sekvence, ga lahko inseriramo v genom nepopolnega virusa navzdol od take sekvence.
Poleg tega inserirani gen na splošno vključuje navzgor od kodirne sekvence signalno sekvenco, ki usmerja sintetizirani polipeptid v sekretorne poti ciljne celice. Čeprav je signalna sekvenca lahko signalna sekvenca naravnega GAX-a, pa je prav tako lahko katerakoli druga funkcionalna signalna sekvenca (npr. tista od gena za timidin kinazo) ali umetna signalna sekvenca.
Virusi v smislu predloženega izuma so nepopolni, tj. niso sposobni, da se avtonomno replicirajo v ciljni celici. Na splošno genomom nepopolnih virusov, ki se uporabljajo v obsegu predloženega izuma, tako manjkajo vsaj sekvence, ki so potrebne za replikacijo navedenega virusa v inficirani celici. Te regije so lahko bodisi eliminirane (v celoti ali del), narejene nefunkcionalne ali so substituirane z drugimi sekvencami, zlasti z inseriranim genom. Prednostno nepopolni virus ohrani sekvence svojega genoma, ki so potrebne za enkapsidacijo virusnih delcev.
Virus v smislu izuma lahko izvedemo iz adenovirusa, adeno-povezanega! virusa (AAV) ali retrovirusa. V skladu s prednostno izvedbo je virus adenovirus.
Obstajajo različni sero tipi adenovirusa, katerih struktura in lastnosti se nekako razlikujejo. Od teh sero tipov je v obsegu predloženega izuma prednostno, da uporabimo tip 2 ali tip 5 humanega adenovirusa (Ad 2 ali Ad 5) ali adenoviruse živalskega izvora (prijava WO94/26914). Adenovirusi živalskega izvora, ki jih lahko uporabimo v obsegu predloženega izuma in ki jih lahko navedemo, so adenovirusi pasjega, govejega, murinega (primer: Mavi, Beard et al., Virology 75 (1990) 81), ovčjega, prašičjega, ptičjega ali opičjega (primer : SAV) izvora. Prednostno je adenovirus živalskega izvora pasji, bolj prednostno CAV2 (Manhattan ali A26/61 sev (ATCC VR-800)). Prednostno uporabimo v obsegu predloženega izuma adenoviruse humanega ali pasjega izvora ali mešane.
Prednostno nepopolni adenovirusi v smislu izuma obsegajo ITR, enkapsidacijsko sekvenco in ustrezno nukleinsko kislino. Še bolj prednostno je v genomu adenovirusov v smislu izuma vsaj regija El nefunkcionalna. Virusni gen, ki ga preučujemo, lahko naredimo nefunkcionalen s katerokoli znano tehniko, posebno s popolno odstranitvijo, substitucijo, delno delecijo ali adicijo ene ali več baz na gen(e), ki ga (jih) preučujemo. Take modifikacije lahko dosežemo in vitro (na izolirani DNA) ali in situ, npr. z uporabo tehnik genetske manipulacije ali z obdelovanjem z mutagenimi sredstvi. Tudi druge regije lahko modificiramo s posebno regijo E3 (WO95/02697), regijo E2 (WO94/28938), regijo E4 (WO94/28152, WO94/12649 in WO95/02697) in regijo E5 (WO95/02697). V skladu s prednostno izvedbo vsebuje adenovirus v smislu izuma delecijo v regijah El in E4. V skladu z drugo prednostno izvedbo vsebuje delecijo v regiji El, v katero sta inserirani regija E4 in sekvenca, ki kodira gax (prim. FR94 13355). V virusih v smislu izuma se delecija v regiji El prednostno razširja od nukleotidov 455 do 3329 v sekvenci adenovirusa Ad5.
Nepopolne rekombinantne adenoviruse v smislu izuma lahko pripravimo s katerokoli znano tehniko (Levrero et al., Gene 101 (1991) 195, EP 185 573; Graham, EMBO J. 3 (1984) 2917). Posebno jih lahko pripravimo s homologno rekombinacijo med adenovirusom in plazmidom, ki nosi med drugim ustrezno sekvenco DNA. Homologno rekombinacijo povzročimo po kotransfekciji navedenega adenovirusa in plazmida v ustrezno celično linijo. Celična linija, ki jo uporabimo, naj bi bila prednostno (i) transformabilna z navedenimi elementi in (ii) naj bi vsebovala sekvence, ki so sposobne, da komplementirajo del genoma nepopolnega adenovirusa, prednostno v integrirani obliki, zato da se izognemo tveganju rekombinacije. Primeri celičnih linij, ki jih lahko omenimo, so humana embrionalna ledvična celična linija 293 (Graham et al., J. Gen. Virol. 36 (1977) 59), ki vsebuje zlasti, integriran v svoj genom, levji del genoma adenovirusa Ad5 (12%), ali celične linije, ki so sposobne komplementiranja funkcij El in E4, kot je opisano zlasti v prijavah št. WO 94/26914 in WO 95/02697.
Nato adenoviruse, ki so se pomnožili, rekuperiramo in očistimo s standardnimi tehnikami molekularne biologije, kot je ponazorjeno v primerih.
Adeno-povezani virusi (AAV) so DNA-virusi z relativno zmanjšano velikostjo, ki se integrirajo na stabilen in položajno specifičen način v genom celic, ki jih inficirajo.
Sposobni so, da inficirajo širok spekter celic, ne da bi inducirali druge učinke na celično rast, morfologijo ali diferenciacijo. Poleg tega ne kažejo, da bi bili vključeni v humane patologije. Genom AAV je bil kloniran, sekvenciran in označen. Obsega približno 4700 baz in vsebuje invertirano terminalno ponovljivo (ITR) regijo približno 145 baz na vsakem koncu, kije namenjena kot izvor replikacije za virus. Ostanek genoma je razdeljen v dve bistveni regiji, ki nosita enkapsidacijske funkcije: levi del genoma, ki vsebuje gen rep, vključen v virusno replikacijo in ekspresijo virusnih genov, in desni del genoma, ki vsebuje gen cap, ki kodira kapsidne proteine virusa.
Uporaba vektorjev, izvedenih iz AAV, za transferiranje genov in vitro ter in vivo je opisana v literaturi (posebno v: WO 91/18088, WO 93/09239; US 4,797,368, US 5,139,941, EP 488 528). Te prijave opisujejo različne konstrukte, izvedene iz AAV, v katerih so deletirani geni rep in/ali cap in so nadomeščeni z ustreznimi geni, in uporabo teh konstruktov za transferiranje navedenega ustreznega gena in vitro (v kultivirane celice) ali in vivo (direktno v organizem). Nepopolne rekombinantne AAV v smislu izuma lahko pripravimo s kotransfekcijo plazmida, ki vsebuje ustrezno sekvenco nukleinske kisline, ki ima bočno dve AAV-invertirani terminalni ponovljivi (ITR) regiji in plazmid, ki nosi enkapsidacijske gene AAV (geni rep in cap), v celično linijo, ki je inficirana s humanim pomočniškim virusom (npr. adenovirus). Rekombinante AAV, ki jih proizvedemo, nato očistimo s standardnimi tehnikami. Predloženi izum se nanaša tudi na rekombinantni virus, izveden iz AAV, katerega genom obsega sekvenco, ki kodira GAX, ki ima bočno AAV ITR. Izum se prav tako nanaša na plazmid, ki obsega sekvenco, ki kodira GAX, ki ima bočno dva ITR iz AAV. Tak plazmid lahko uporabimo, kot je, za transferiranje sekvence GAX s plazmidom, kjer je primerno, kije vgrajen v liposomski vektor (pseudovirus).
Konstrukcija rekombinantnih retrovirusnih vektorjev je na široko opisana v literaturi: posebno v EP 453242, EP178220, Bernstein et al. Genet. Eng. 7 (1985) 235; McCormick, BioTechnology 3 (1985) 689, itd. Posebno so retrovirusi integrirni virusi, ki inficirajo deljive celice. Retrovirusni genom večinoma obsega dva LTR, enkapsidacijsko sekvenco in tri kodirne regije (gag, pol in env). V rekombinantnih vektorjih, izvedenih iz retrovirusa, so na splošno geni gag, pol in env deletirani v celoti ali delno in nadomeščeni s sekvencami ustreznih heterolognih nukleinskih kislin. Te vektorje lahko konstruiramo iz različnih tipov retrovirusa, kot zlasti MoMuLV (virus murine Moloney levkemije, tudi označen MoMLV), MSV (virus murinega Moloney sarkoma), HaSV (virus Harvey sarkoma), SNV (virus vranične nekroze), RSV (virus Rous sarkoma) ali drugačen Friendov virus.
Na splošno, zato da konstruiramo rekombinantne retroviruse, ki vsebujejo sekvenco, ki kodira GAX v skladu s predloženim izumom, konstruiramo plazmid, ki vsebuje zlasti LTR, enkapsidacijsko sekvenco in navedeno kodirno sekvenco, in ga nato uporabimo za transfekcijo tako imenovane enkapsidacijske celične linije, pri čemer je celična linija sposobna, da dovede v trans retrovirusne funkcije, ki manjkajo v plazmidu. Na splošno so enkapsidacijske celične linije tiste, ki so sposobne, da eksprimirajo gene gag, pol in env. Take enkapsidacijske celične linije so opisane v stanju tehnike, zlasti celična linija PA317 (US 4, 861,719), celična linija PsiCRIP W090/02806) in celična linija GP+envAm-12 (W089/07150). Poleg tega rekombinantni retrovirusi lahko vsebujejo modifikacije znotraj LTR za supresijo transkripcijske aktivnosti kot tudi ekstenzivne enkapsidacijske sekvence, ki vključujejo del gena gag (Bender et al., J. Virol. 61 (1987) 1639). Rekombinantne retroviruse, kijih proizvedemo, nato očistimo s standardnimi tehnikami.
Posebno prednostno je, da uporabimo nepopolni rekombinantni adenovirus za zdravljenje restenoze.
Na ta način imajo adenovirusi veliko zmogljivost za inficiranje proliferacijskih vaskularnih gladkih mišic. To dopušča, da je potrebno uporabiti relativno majhne količine aktivne sestavine (rekombinantni adenovirus), poleg tega pa je posledica tudi učinkovito in zelo hitro delovanje na mestih, ki jih je potrebno obdelati. Adenovirusi v smislu izuma so tudi sposobni ekspresije uvedenega gena gax na visokih nivojih, pri čemer jim dajo zelo učinkovito terapevtsko delovanje. Nadalje adenovirusi v smislu izuma zaradi svoje episomalne narave delujejo le omejen čas v proliferativnih celicah in imajo zato prehodni učinek, ki je odlično usklajen z želenim terapevtskim učinkom.
Predloženi izum se tudi nanaša na farmacevtski sestavek, ki obsega enega ali več nepopolnih rekombinantnih virusov, kot so prej opisani. Take sestavke lahko formuliramo glede na način dajanja, ki je lahko: lokalno, oralno, parenteralno, intranazalno, intravensko, intramuskularno, subkutano, intraokularno itd.
Prednostno sestavek v smislu izuma obsega polnila, ki so farmacevtsko sprejemljiva za injekcijsko formulacijo, posebno za injekcijo v vaskularno steno. Ta polnila so lahko zlasti sterilne izotonične fiziološke raztopine soli (mononatrijev ali dinatrijev fosfat, natrijev, kalijev, kalcijev ali magnezijev klorid itd., ali zmesi takih soli), ali suhi, zlasti liofilizirani sestavki, kijih lahko z dodatkom sterilizirane vode ali fiziološke raztopine soli konstituiramo v injekcijske raztopine. Polnilo je prav tako lahko hidrogel, ki ga pripravimo iz kakega biokompatibilnega ali necitotoksičnega (homo ali hetero) polimera. Taki polimeri so opisani npr. v prijavi WO 93/08845. Nekateri od njih, kot zlasti tisti, kijih dobimo iz etilenskih in/ali propilenskih oksidov, so tržno dosegljivi.
Nepopolne rekombinantne adenoviruse v smislu izuma lahko damo pri njihovi uporabi za zdravljenje bolezni, ki so povezane s hiperproliferativnimi motnjami, na različne načine, posebno z injekcijo. Prednostno damo adenoviruse v smislu izuma za zdravljenje restenoze direktno v steno krvne žile z angioplastičnim balonom, ki je prevlečen s hidrofilnim filmom (npr. hidrogel), ki je nasičen z adenovirusi, ali z nekim drugim katetrom, ki vsebuje infuzijsko komoro za adenovirusno raztopino, ki jo lahko nato apliciramo natančno na mesto, ki ga je potrebno obdelati, in pustimo, da se adenovirusi sprostijo lokalno in učinkovito na nivoju celic, ki jih je potrebno obdelati. Tak postopek dajanja prednostno omogoči, da inficiramo visok odstotek (nad 9,6%) celic tunike medie, ki sestavlja prednosten cilj za zdravljenje restenoze, medtem ko standardni postopki za dajanje (intravenozna injekcija) ne omogočajo, da bi se te celice inficirale do neke zelo značilne stopnje.
Postopek obdelave v smislu izuma je prednostno sestavljen iz vnašanja sestavka, ki obsega hidrogel, nasičen z rekombinantnimi adenovirusi na mesto, ki gaje potrebno obdelati. Hidrogel lahko nanesemo direktno na površino tkiva, ki ga je potrebno obdelati, npr. med kirurško intervencijo. Prednostno hidrogel vnesemo na mesto, ki ga je potrebno obdelati, s katetrom, npr. z balonskim katetrom, posebno v času angioplastije. Na posebno prednosten način vnesemo nasičen hidrogel na mesto, ki ga je potrebno obdelati, z balonskim katetrom.
Doze virusa, ki jih uporabimo za injekcijo, lahko prilagodimo glede na različne parametre, zlasti v skladu z načinom dajanja, ki ga uporabimo, in želenim trajanjem obdelovanja. Na splošno rekombinantne viruse v smislu izuma formuliramo in damo v obliki doz med 104 in 1014 pfu/ml. V primeru AAV in adenovirusov lahko uporabimo tudi doze od 106 do IO10 pfu/ml. Izraz pfu (enota, ki tvori plak) ustreza infektivni moči suspenzije virionov in je določen z inficiranjem ustrezne celične kulture in merjenjem števila plakov inficiranih celic, navadno po 48 urah. Tehnike za ugotavljanje titra pfu virusne raztopine so dobro dokumentirane v literaturi.
Predloženi izum daje na razpolago nov in zelo učinkovit način za zdravljenje ali preprečevanje bolezni, povezanih s hiperproliferativnimi motnjami, kot je npr. restenoza.
Nadalje lahko to zdravljenje uporabimo enako dobro pri ljudeh kot tudi pri živalih, kot so ovce, govedo, domače živali (psi, mačke, itd.), konji, ribe itd.
Predloženi izum je bolj popolno opisan z naslednjimi primeri, ki so namenjeni za njegovo ponazoritev, ne pa omejevanje.
Legenda slik:
Slika 1: Prikaz plazmida pCOl
Slika 2: Prikaz plazmida pXL-CMV-GaxHA
Slika 3: Nuklearna lokacija proteina GAX-HA v VSMC, transfektiranih s pXLCMV-GaxHA
Slika 3A: VSMC, transfektirane z vektorjem pCGN (v odsotnosti inserta GAX)
Slika 3B: VSMC, transfektirane z vektorjem pXL-CMV-GaxHA
Slika 4: Nuklearna lokacija proteina GAX-HA v VSMC, obdelanih z Ad-CMV-Gax
Slika 5: Učinek Ad-CMV-GAX na proliferacijo VSMC (t=24 ur)
VSMC preštejemo 24 ur po tem, ko jih obdelamo z Ad-CMV-Gax (1000 pfu/celico) ali s kontrolnim adenovirusom (Ad-RSV-jSGal, 1000 pfu/celico). Rast celic je blokirana (0,5% FCS) ali stimulirana (FCS 20%).
Slika 6: Učinek Ad-CMV-GAX na proliferacijo VSMC (t=48 ur)
VSMC preštejemo 48 ur po tem, ko jih obdelamo z Ad-CMV-Gax (1000 pfu/celico) ali s kontrolnim adenovirusom (Ad-RSV-jSGal, 1000 pfu/celico). Rast celic je blokirana (0,5% FCS) ali stimulirana (FCS 20%).
Slika 7: Učinek Ad-CMV-Gax na viabilnosti VSMC, ki so inkubirane v prisotnosti fetalnega telečjega seruma (FCS 20%)
- eksperimentalni pogoji, prim. slika 6
Slika 7A: Celice, ki niso obdelane z adenovirusom
Slika 7B: Celice, ki so obdelane z Ad-RSV-/3Gal
Slika 7C: Celice, ki so obdelane z Ad-CMV-Gax
Slika 8: Učinki Ad-CMV-Gax in Ad-RSV-jSGal na podganje karotidne arterije po poškodbi z balonskim katetrom
Slika 8A: Meritev intimalne specifične površine
Slika 8B: Meritev razmerja intima proti media
Slika 8C: Meritev luminalne zožitve
Slika 9: Prečni prerez arterijskih kontrolnih in obdelanih žil
Slika 9A: Kontrolne žile, obdelane z Ad-RSV-jSGal
Slika 9B: Žile, obdelane z Ad-CMV-Gax
Splošne tehnike molekularne biologije
Standardni postopki, ki se uporabljajo v molekularni biologiji, kot so preparativne ekstrakcije plazmidne DNA, centrifugiranje plazmidne DNA v gradientu cezijevega klorida, elektroforeza na agaroznih ali akrilamidnih gelih, čiščenje fragmentov DNA z elektroeluiranejm, ekstrakcijo proteinov s fenolom ali s fenolom/kloroformom, obarjanje DNA v mediju fiziološke raztopine z uporabo etanola ali izopropanola, transformacija v Eschericia coli itd., so dobro znani strokovnjakom in obsežno opisani v literaturi [Maniatis T. et al., Molecular Cloning, A Laboratory manual, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, Ν.Υ., 1982; Ausubel F.M. et al. (izd.), Current protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, New York, 1987].
Plazmide tipov pBR322 in pUC in fage vrste M13 dobimo na tržišču (Bethesda Research Laboratories).
Za ligacije lahko fragmente DNA ločimo v skladu z njihovo velikostjo z elektroforezo na agaroznih ali akrilamidnih gelih, ekstrahiramo s fenolom ali z zmesjo fenola/kloroforma, oborimo z etanolom in nato inkubiramo v prisotnosti T4 DNAligaze (Biolabs) v skladu s predpisi dobavitelja.
5’ štrleče konce lahko zapolnimo z uporabo Klenovvega fragmenta E. Coli DNApolimeraze I (Biolabs) v skladu s predpisi dobavitelja. 3’ štrleče konce uničimo v prisotnosti T4 DNA-polimeraze (Biolabs), ki jo uporabimo v skladu s predpisi izdelovalca. 5’ štrleče konce uničimo s previdno obdelavo z nukleazo Sl.
Položajno usmerjeno mutagenezo in vitro z uporabo sintetičnih oligodeoksinukπ leotidov lahko izvedemo v skladu s postopkom, ki so ga razvili Taylor et al. [Nucleic Acids Res. 13 (1985) 8749-8764] z uporabo kompleta, ki ga prodaja Amersham.
Encimsko pomnoževanje fragmentov DNA s tehniko, imenovano PCR [verižna reakcija, katalizirana s polimerazo, Saiki R.K. et al., Science 230 (1985) 1350-1354; Mullis K.B. in Faloona F.A., Meth. Enzym. 155 (1987) 335-350], lahko povzročimo z uporabo toplotnega ciklizatorja DNA (Perkin Elmer Cetus) v skladu s predpisi izdelovalca.
Nukleotidne sekvence lahko določimo s postopkom, ki so ga razvili Sanger et al. [proč. Natl. Acad. Sci. USA, 74, (1977) 5463-5467] z uporabo kompleta, ki ga prodaja Amersham.
Primer 1: Konstrukcija vektorja pXL-CMV-GaxHA, ki nosi gen, ki kodira podganji protein gax ob kontroli promotorja CMV
Ta primer opisuje konstrukcijo vektorja, ki vsebuje cDNA, ki kodira protein gax (vrsta : podgana) in adenovirusne sekvence, ki omogočajo rekombinacijo. Epitop hemaglutinina virusa influence (epitop HA1), ki obsega 18 amino kislin dodamo N-terminalnemu koncu proteina gax (Field et al., Mol.Cell.Biol. 8 : 2159-2165,1988). Dodajanje epitopa na ta način omogoča ekspresijo gax, ki jo nadzorujemo zlasti z imunofluorescenčnimi tehnikami z uporabo protiteles, ki so usmerjena proti epitopu HA1. Poleg svoje občutljivosti ta postopek istočasno omogoča tudi eliminacijo tako in vitro kot tudi in vivo šumov ozadja, ki ustrezajo ekspresiji endogenih proteinov gax.
1.1. Konstrukcija plazmida pCOl
A - Konstrukcija plazmida pCE
Fragment EcoRl/XbaI, ki ustreza levemu koncu genoma adenovirusa Ad5, najprej kloniramo med položaja EcoR in Xba vektorja pIC19H. Tako proizvedemo plazmid pCA. Plazmid pCA nato prerežemo s HinfI in njegove 5’ štrleče konce zapolnimo s Klenowim fragmentom E.coli DNA-polimeraze I; to nato prerežemo z EcoRI. Fragment plazmida pCA, ki ga tako proizvedemo in ki vsebuje levi konec genoma adenovirusa Ad5, nato kloniramo med položaja EcoRI in Smal vektorja pIC20H (Marsh et al., Gene 32 (1984) 481). Tako proizvedemo plazmid pCB. Plazmid pCB nato prerežemo z EcoRI in njegove 5’ štrleče konce zapolnimo s Klenovvim fragmen12 tom E.coli DNA-polimeraze I; to nato prerežemo z BamHI. Fragment plazmida pCB, ki ga tako proizvedemo in ki vsebuje levi konec genoma adenovirusa Ad5, nato kloniramo med položaja Nrul in Bglll vektorja pIC20H. Tako proizvedemo plazmid pCE, katerega prednostna lastnost je, da ima prvih 382 baznih parov adenovirusa Ad5, temu pa sledi mnogoterno klonimo mesto.
B - Konstrukcija plazmida pCD’
Fragmenta Sau3A (3346)/SstI (3645) in Sstl (3645)/NarI (5519) iz genoma adenovirusa Ad5 najprej ligiramo skupaj in kloniramo med položaja Clal in BamHI vektoija pIC20H, pri čemer proizvedemo plazmid pPY53. Fragment Sall/Taql plazmida pPy53 (pripravljen iz dam-ozadja), ki vsebuje del genoma adenovirusa Ad5 med položajema Sau3A (3346) in Taql (5207), nato kloniramo med položaja Šali in Clal vektorja pIC20H, pri čemer proizvedemo plazmid pCA. Fragment Taql (5207)/NarI (5519) genoma adenovirusa Ad5, pripravljen iz dam-ozadja in fragment Sall-Taql iz plazmida pCA’ nato ligiramo skupaj in kloniramo med položaja Šali in Narl vektorja pIC20H. Tako proizvedemo plazmid pCC’. Fragment Narl (5519)/NruI (6316) genoma adenovirusa Ad5, pripravljen iz dam-ozadja, in fragment Sall/Narl plazmida pCC’ nato ligiramo skupaj in kloniramo med položaja Šali in Nrul vektorja pIC20R. Tako proizvedemo plazmid pCD’.
C - Konstrukcija plazmida pCOl
Z delno digestijo plazmida pCD’ s Hhol in nato popolno digestijo le-tega z Šali proizvedemo restrikcijski fragment, ki vsebuje sekvenco adenovirusa Ad5 od položaja Sau3A (3446) do Nrul (6316). Ta fragment kloniramo v položaj Šali plazmida pCE. Tako proizvedemo plazmid pCOl (sl. 1), ki vsebuje levi del adenovirusa Ad5 do položaja HinfI (382), mnogoterni klonirni položaj in fragment Sau3A (3446)/NruI (6316) adenovirusa Ad5.
1.2. Konstrukcija vektorja pXL-CMV-GaxHA (prim. sl. 2)
Gax cDNA kloniramo med položaja Xbal in BamHI vektorja pCGN (Tanaka in Herr, Celi 60 : 375-386, 1990). Nastali vektor pGCN-Gax vsebuje zgodnjo promotorsko in spodbujevalno sekvenco citomegalo virusa (CMV) (-522, +72; Boshart et al, Celi, 41: 521-530,1985), vodilno sekvenco timidin kinaze virusa herpes simpleks, ki vključuje iniciacijski kodon AUG kot tudi prve tri amino kisline (+55, +104; Rusconi in Yamamoto, EMBO J., 6 : 1309-1315, 1987), sekvenco, ki kodira epitop HA1 [YPYDVPDYASLGGP (SEQ ID št. 1)], podganjo gax cDNA in končno poliadenilacijsko sekvenco kunčjega gena β-globina (Pabo et al, Celi, 35 : 445-453,1983).
Vektor pCGN-Gax nato prerežemo z Xmnl in Sfil in vnesemo nastali fragment, ki vsebuje promotor, cDNA in poliadenilacijsko sekvenco, potem ko ga najprej obdelamo s Klenowim fragmentom, v položaj EcoRV dvojnega (shuttle) vektorja pCOl, ki vsebuje adenovirusne sekvence, potrebne za rekombinacijo. Plazmid, ki ga dobimo, označimo pXL-CMV-GaxHA (prim. sl. 2).
Primer 2: Prikaz proliferacijsko inhibirnih lastnosti plazmida pXL-CMV-gax-HA
Ta primer opisuje operativne postopke, ki jih lahko uporabimo, da istočasno prikažemo in vitro kvaliteto homologne rekombinacije vektorjev (prim. Primer 1) tako glede ekspresije (detekcija proteina gax in epitopa HA) kot tudi glede aktivnosti (učinek na celično proliferacijo).
Celice vaskularnih gladkih mišic (VSMC) kultiviramo z encimsko digestijo kunčje aorte NZW, pri čemer uporabimo prilagojen postopek od Chamley et al. (Celi Tissue Res. 177 : 503-522, 1977). Na kratko, potem ko kunčjo aorto odstranimo, jo inkubiramo pri 37°C 45 minut v prisotnosti kolagenaze (kolagenaza II, Cooper Biomedical). Drugo digestijo izvedemo v približno 2 urah v prisotnosti kolagenaze in elastaze (Biosys), pri čemer nastane celična suspenzija. Celice vzdržujemo v prisotnosti 20% fetalnega telečjega seruma in jih uporabimo za vse preskuse (prim. spodaj) pred desetim prehodom. V vseh teh poskusih celice gladkih mišic označimo z imunooznačevanjem s protitelesi aktina anti-aSM (F-3777, sigma).
Zato da potrdimo kvaliteto ekspresijskih vektorjev (prim. Primer 1), nadzorujemo prisotnost in lokacijo proteina gax z imunofluorescenco za vsak konstrukt. Da to naredimo, transfektiramo celice gladkih mišic ali celice 3T3 s plazmidi pXL-CMVGaxHA in pCGNgax v prisotnosti zmesi DOSPA/DOPE (Lipofectamine, Gibco BRL). Celice inkubiramo v prisotnosti kompleksa DNA/liposom v mediju kulture, ki ne vsebuje fetalnega telečjega seruma, 4 do 8 ur (optimalno trajanje : 8 ur za SMC). Po 24 urnem inkubiranju v prisotnosti fetalnega telečjega seruma celice kultiviramo na mikroskopski plošči (Titertek) glede na imunofluorescenco nadaljnjih 24 ur. Celice nato fiksiramo v prisotnosti 4% paraformaldehida in nato permeabiliziramo z dodajanjem 0,1% tritona. Po nasičenju celic v prisotnosti albumina govejega seruma (BSA, Sigma) zaporedoma dodamo protitelo anti-HA (12CA5, Boehringer Mannheim) in nato protitelo konjugiramo s fluoresceinom.
Iz imunofluorescenčnih poskusov, izvedenih simultano na celicah NIH3T3 in primarni kulturi kunčjih VSMC, je razvidno, da tako plazmid pCGNgax in dvojni plazmid pXL-CMV-GaxHA resnično kodirata protein, ki je lociran v nukleusu (prim. sl. 3A : kontrolni plazmid; 3B : plazmid pXL-CMV-GaxHA). Nadalje,lahko prikažemo po ekstrakciji nuklearnih proteinov iz celic, transfektiranih s pXL-CMVGaxHA z Western blotting-om, protein, ki ga detektiramo s protitelesi, usmerjenimi proti epitopu HA.
Nato ugotovimo učinek zgornjih vektorjev na celično proliferacijo. Da to lahko naredimo, uporabimo indirektni postopek, ki temelji na merjenju tvorbe kolonije. Na kratko, uporabimo mišje embrionalne celice NIH3T3, da izvedemo preskuse tvorbe kolonije z uporabo prilagojenega postopka od Schweighofferja et al. (Mol.Cell.Biol. 1993,13 : 39-43). Na kratko, celice kotransfektiramo s plazmidom, ki nosi gen za odpornost proti neomicinu in s prebitkom ustreznega vektorja (pCGNgax ali pXLCMV-GaxHA). Po obdobju selekcije v G418 kolonije obarvamo z raztopino karbol fuksina (Diagnostica, Merck) in preštejemo. Iz rezultatov reprezentativnega poskusa, ki so navedeni v tabeli 1, je razviden padec števila kolonij v primeru celic, transfektiranih s pCGNgax.
TABELA 1
Pogoji transfekcije celic 3T3
Število kolonij po selekciji v G 418 pCGN (5 jLtg) + pSV2neo 183 ±28 (’) (lMg)(§) pCGNgax (5 /ig) + pS V2neo 93 ± 11 (iMg) (§ kontrolni vektor pCGN: odsotnost inserta gax) Op<o,oi
Primer 3 : Konstrukcija rekombinantnega adenovirusa Ad-CMVgax
Vektor pXL-CMV-GaxHA, pripravljen v primeru 1, nato lineariziramo in kotransfektiramo za rekombinacijo z nepopolnim adenovirusnim vektorjem v pomočniške celice (celična linija 293), ki dovede v trans funkcije, kodirane z regijami adenovirusa El (ElAinElB).
Adenovirus Ad-CMVgax dobimo s homologno rekombinacijo in vivo med adenovirusom Ad.RSVjSgal (Stratford Perricaudet et al., J. Ciin. Invest 90 (1992) 626) in vektorjem pXL-CMV-GaxHA v skladu z naslednjim predpisom: vektor pXLCMV-GaxHA, lineariziran z encimom HmnI in adenovirus Ad.RSV/3gal, lineariziran s Clal, kotransfektiramo v celično linijo 293 v prisotnosti kalcijevega fosfata, zato da omogočimo homologno rekombinacijo. Rekombinantne adenoviruse, ki jih tako proizvedemo, selekcioniramo s čiščenjem plakov. Po izolaciji rekombinantni adenovirus pomnožimo v celični liniji 293, pri čemer dobimo supernatant kulture, ki vsebuje neočiščen rekombinantni nepopolni adenovirus s titrom približno IO10 pfu/ml.
Virusne delce očistimo s centrifugiranjem v gradientu cezijevega klorida v skladu z znanimi tehnikami, posebno od Grahama et al., Virology 52 (1973) 456). Adenovirus Ad-CMVgax shranimo pri -80°C v 20% glicerolu.
Primer 4: Prikaz proliferacijsko inhibirnih lastnosti adenovirusa Ad.CMVgax
Ta primer opisuje eksperimentalne postopke, ki jih lahko uporabimo, da istočasno prikažemo kvaliteto rekombinantnega adenovirusa tako kot produkcijo proteina gax in kot biološko aktivnost (učinek na celično proliferacijo).
VSMC kunčje aorte inkubiramo v prisotnosti adenovirusa Ad.CMVgaxHA in kontrolnega adenovirusa (Ad-RSVj8Gal : rekombinantni adenovirus, ki eksprimira β-galaktozidazo ob kontroli promotorja RSV), razredčenih v mediju kulture (DMEM, 0,5% FCS). Po približno 1 uri pri 37°C v vlažni atmosferi medij, ki vsebuje adenovirusno raztopino, odsesamo stran in nadomestimo z medijem kulture (DMEM, 0,5% FCS) za obdobje 18 do 24 ur. Nato dodamo medij, bogat s FCS (končna koncentracija FCS : 20%), zato da stimuliramo celično proliferacijo, in celice preštejemo 24 ur in 48 ur kasneje.
Poleg tega 24 ur po dodatku adenovirusne raztopine nadzorujemo ekspresijo proteina gax z VSMC s tehnikami, opisanimi v primeru 2, z nuklearnim označevanjem z imunofluorescenco (lokalizacija proteina) pa tudi z Western blotting-om. Protein, proizveden z rekombinantnim adenovirusom, učinkovito detektiramo s protitelesi, ki spoznajo epitop HA in imajo enako elektroforetsko mobilnost kot protein gax, ki ga detektiramo v nukleusih. VSMC, ki jih transfektiramo s pCGNgax ali pXL-CMV-GaxHA. Slika 4 ponazorjuje lokacijo proteina Gax v VSMC, inkubiranih v prisotnosti Ad-CMVgaxHa.
Iz rezultatov reprezentativnega eksperimenta, ki so prikazani na sl. 4, je razviden očiten padec števila celic po dodatku virusa Ad.CMVgaxHA. Po drugi strani pa tega zmanjšanja števila celic ne opazimo po obdelavi s kontrolnim adenovirusom, uporabljenim v enaki koncentraciji (M.O.L 1000). Paralelno smo potrdili z imunofluorescenco, da to visoko multipliciteto infekcije omogoča bodisi markerski gen /3-gal (uporaba protitelesa anti- E.Coli. /3-gal, Monosan) ali protein gax (uporaba protitelesa anti-HA, prim. Primer 2), ki mora biti eksprimiran v več od 90% populacije kunčjih VSMC.
Dodatek virusa Ad-RSV-/3gal je povezan s šibkim citostatičnim učinkom (-13%) po kultiviranju 24 ur v prisotnosti fetalnega telečjega seruma (20%). Pri enakih eksperimentalnih pogojih vodi obdelava z Ad-CMVgaxHA do 57% znižanja števila celic (prim. sl. 5). Biološka učinkovitost virusa Ad-CMVgaxHa je zelo očitno poudarjena po 48 urah kultiviranja in je lahko celo povezana s smrtjo celic (prim.: sl. 6 in 7).
Torej je blokiranje proliferacije, ki je povzročena z Ad-CMVgaxHA, povezano z izrazitim znižanjem števila celic, ki ga lahko detektiramo po kultiviranju 24 ur (prim sl. 5). Zanimivo je, da opazimo ta učinek Ad-CMVgaxHA v celicah, ki so stimulirane z visoko koncentracijo FCS (20%), ne pa v tistih, ki so osiromašene s FCS (0,5%) (prim. sl. 6). Ta primer tako prikazuje, da lahko rekombinantni adenovirus, ki kodira protein gax, učinkovito blokira celično delitev, ne da bi imel kakršenkoli znaten učinek na viabilnost celic, ki so blokirane v fazi GO svojega cikla.
Učinek adenovirusa Ad-CMVgaxHA na viabilnost VSMC v kulturi je prav tako prikazan na sl. 7.
Inhibitorne lastnosti Ad-CMVgaxHA na sintezo DNA potrdimo s poskusi vgradnje bromodeoksiuridina (BrdU). Na kratko, 24 ur po dodatku adenovirusa VSMC in17 kubiramo v prisotnosti FCS (10 do 20%) in BrdU (10 μΜ), ki ga vgradimo namesto timina v celice v fazi sinteze DNA in ga lahko detektiramo s specifičnimi protitelesi. Vgradnjo BrdU kvantitativno določimo s pretočno citometrijo.
Isto metodologijo za pretočno citometrijo lahko uporabimo za vizualiziranje napredka, povzročenega s kunčjimi VSMC, obdelanimi z Ad-CMVgaxHA v njihovem celičnem ciklusu. Obdelava z Ad-CMVgaxHA je združena z blokiranjem celičnega cikla v fazi G0/G1.
Primer 5 : Inhibicija intimalne hiperplazije z uporabo adenovirusa-gax in vivo
Ta primer prikazuje učinkovitost rekombinantnih adenovirusov v modelu vaskularne patologije.
V modelu arterijske lezije so uporabljeni ostanki po abraziji podganje karotide (Clows et al., Lab Inverst 49 (1983) 327-333). V tem modelu VSMC dediferencirajo, proliferirajo in migrirajo, da se tvori neointima, ki lahko delno zapre arterijo po dveh tednih po poškodbi.
Podgane Sprague-Dawley anesteziramo z intraperitonealno injekcijo pentobarbitala (45 mg/kg). Po eksterni karotidni arteriotomiji podganje karotidne arterije ogulimo z balonskim katetrom in izpostavimo lxl09 pfu Ad-CMVgaxHa ali Ad-RSV/3-Gal. Adenovirus uporabimo v raztopini, ki vsebuje 15% poloksamera 407, ki omogoča prenos gena adenovirusa. Po inkubaciji 20 minut raztopino virusa umaknemo in ligature odstranimo, da se obnovi cirkulacija. Podgane usmrtimo dva tedna kasneje in izvedemo kvantitativne morfometrične analize na prečnih prerezih obdelanih žil. Rezultati so prikazani na sl. 8 in 9.
Iz dobljenih rezultatov je razvidno, da ima vseh devet karotidnih arterij, transfektiranih z Ad-RSV/J-Gal, močno proliferacijo VSMC in razvito znatno neointimalno odebelitev. Površina neointime je 0,186 +/- 0,02 mm2 (SEM) s področjem 0,10 do 0,28. Luminalna razširitev je ustrezno zožena s 40 +/- 4% (območje 21 do 63), sl. 8C. Razmerje intima:media je 1,51 +/- 0,1 (območje 0,87 do 2,17). Ti rezultati so podobni tistim, ki smo jih dobili predhodno za kontrolne žile, obdelane s fiziološko raztopino soli. Nasprotno pa obdelava z Ad-CMVgaxHA izrazito zmanjša patološki odziv na poškodbo z balonom. Za žile, obdelane z Ad-CMVgaxHA, je povprečna površina neointimalnih lezij 0,076 +/- 0,02 mm2 (območje 0 do 0,19), luminalna zožitev pa je zmanjšana na 17,5 +/- 5%. Statistična analiza potrjuje, da obdelava z Ad-CMVgaxHA znatno inhibira razvoj intimalne odebelitve glede na Ad-RSVj3Gal-kontrole. Specifično, obdelava z Ad-CMVgaxHA zmanjša razmerje intimamedia za 69%, intimalno površino za 59% in luminalno zožitev za 56% (sl. 8A in 8B). Izreden učinek na intimalno hiperplazijo nadalje poudarjajo rezultati, ki jih dobimo s prečnimi preprezi kontrolnih (sl. 9A) ali obdelanih (sl. 9B) živali.
Ta primer prikazuje zelo učinkovito aktivnost zaustavitve rasti in vivo konstrukta Ad-CMVgaxHA. Ta aktivnost je zelo specifična in jo ne opazimo pri kontrolnih živalih. Predloženi rezultati jasno prikazujejo terapevtsko aktivnost Ad-CMVgaxHA na vaskularno morfologijo in posebno na hiperplazijo, ki je povezana s postangioplastično restenozo. Uporaba virusa, kot je adenovirus, za prenos gena gax in vivo je posebno učinkovita. Ta postopek je nadalje prednosten, ker temelji na načinu nadomestitve gena. Ta postopek je edinstven v tem, ker združuje tako učinkovitost dajanja in terapevtski gen, ki prikazuje dve terapevtski lastnosti: zaustavitev rasti in konstitutivno ekspresijo v vaskularnem sistemu. Prenos gena Gax v skladu s predloženim izumom inducira specifično regresijo hiperproliferativne motnje v žilah in tako normalizira arterijske funkcije. Lokalni prenos gena Gax v smislu izuma je prav tako posebno prednosten v tem, da ne interferira z reendotelizacijskim postopkom po leziji arterij. Nadalje pa poleg direktnega vpliva na celično proliferacijo in vaskularno morfologijo prenos gena gax v smislu predloženega izuma lahko izraža ugoden indirekten učinek na sintezo ekstracelične matrice in na remodeliranje. Iz teh rezultatov je jasno razvidno, da je prenos gena Gax v smislu izuma močan nov način za zdravljenje vaskularnih lezij po angioplastiji.
Za
ČASE WESTERN RESERVE UNIVERSITY:
PATENTNA PISARNA, d.o.o.
LJUBLJANA,
Lista sekvenc (1) Splošne informacije:
(i) Prijavitelj:
Ime: ČASE WESTERN RESERVE UNIVERSITY
Ulica:
Mesto: Cleveland, Ohio
Država: ZDA
Poštna št.: 44106 (i) Prijavitelj:
Ime: BRANELLEC, Didier
Ulica: 1, Rue Saint-Benoit
Mesto: 94210 La Varenne-Saint Hilaire
Država: Francija
Poštna št.:
(i) Prijavitelj:
Ime: WALSH, Kenneth
Ulica: 207 Judy Farm Road
Mesto: Carlisle, Massachusetts
Država: ZDA
Poštna št.: 01741 (i) Prijavitelj:
Ime: ISNER, Jeffr ey M.
Ulica: 34Brenton Road
Mesto: Weston, Massachusetts
Država: ZDA
Poštna št.: 02193 (ii) Naziv izuma: Virusni vektorji in njihova uporaba za zdravljenje hiperproliferativnih motenj, zlasti restenoze (iii) Število sekvenc: 1 (iv) Naslov za dopisovanje:
(A) Naslov: Rhone-Poulenc Rorer Inc.
(B) Ulica: 500 Arcola Rd. 3C43 (C) Mesto: Collegeville, PA (D) Država: ZDA (E) Poštna št.:19426 (v) Računalniško berljiva oblika:
(A) Tip medija: Gibki disk (B) Računalnik: IBM PC-kompatibilen (C) Operacijski sistem: PC-DOS/MS-DOS (D) Programska oprema: Patentln Release št. 1.0, verzija št. 1.30 (vi) Podatki za sedanjo prijavo:
(A) Številka prijave: PCT (B) Datum vložitve:
(C) Klasifikacija:
(vii) Podatki za prioritetno prijavo:
(A) Številka prijave: FR 95-04234 (B) Datum vložitve: 31-Mar-1995 (viii) Informacije o zastopniku/agentu:
(A) Ime: Savitzky, Martin F.
(B) Registracijska št.: 29,699 (C) Referenčna/seznamska št.: ST95022-US (ix) Telekomunikacijske informacije:
(A) Telefon: (610) 454-3816 (B) Telefaks: (610) 454-3808 (2) Informacije za sekvenco ident. št. 1:
(i) Značilnosti sekvence:
(A) Dolžina:
(B) Tip:
(C) Verižnost:
(D) Topologija:
(ii) Tip molekule:
(v) Tip fragmenta:
(xi) Opis sekvence: sekvenca ident. št. 1:
amino kislin amino kislina linearna peptid interni
Tyr Pro Tyr Asp Val Pro Asp Tyr Ala Ser Leu Gly Gly Pro
Cu:
d.o.o. >GVA 14
Za
ČASE WESTERN RESERVE UNIVERSITY:
; tv:
LJUB··

Claims (19)

  1. PATENTNI ZAHTEVKI
    1. Nepopolni rekombinantni virus, označen s tem, da vsebuje vsaj en inseriran gen, ki kodira celoten protein GAX ali del le-tega ali varianto tega proteina.
  2. 2. Virus po zahtevku 1, označen s tem, da nima regij svojega genoma, ki so potrebne za njegovo replikacijo v inficirani celici.
  3. 3. Virus po zahtevku 1 ali 2, označen s tem, da je adenovirus, prednostno tipa Ad 5 ali Ad 2.
  4. 4. Virus po zahtevku 1 ali 2, označen s tem, da je adenovirus živalskega, prednostno pasjega izvora.
  5. 5. Virus po enem od zahtevkov 1 ali 2, označen s tem, da inserirani gen kodira celoto ali del podganjega proteina GAX ali varianto tega proteina.
  6. 6. Virus po zahtevku 5, označen s tem, da inserirani gen kodira podganji protein GAX ali njegov humani homolog.
  7. 7. Virus po enem od zahtevkov 1 ali 2, označen s tem, daje inserirani gen cDNA.
  8. 8. Virus po enem od zahtevkov 1 ali 2, označen s tem, daje inserirani gen gDNA.
  9. 9. Virus po enem od zahtevkov 1 ali 2, označen s tem, da inserirani gen vključuje sekvence, ki omogočajo, da se eksprimira v inficirani celici.
  10. 10. Virus po enem od zahtevkov 1 ali 2, označen s tem, da inserirani gen vključuje signalno sekvenco, ki usmerja sintetizirani polipeptid v sekretorne poti ciljne celice.
  11. 11. Adenovirus po zahtevku 3, označen s tem, da vsebuje delecijo celotne ali dela regije El.
  12. 12. Adenovirus po zahtevku 11, označen s tem, da dodatno vsebuje delecijo celotne ali dela regije E4.
  13. 13. Virus po zahtevku 1 ali 2, označen s tem, daje adeno-povezan virus (AAV).
  14. 14. Virus po zahtevku 1 ali 2, označen s tem, da je retrovirus.
  15. 15. Uporaba virusa po zahtevkih 1 ali 2 za pripravo farmacevtskega sestavka, ki je namenjen za zdravljenje ali preprečevanje patologij, ki so povezane s hiperproliferativnimi motnjami.
  16. 16. Uporaba po zahtevku 15 za pripravo farmacevtskega sestavka, ki je namenjen za zdravljenje restenoze.
  17. 17. Farmacevtski sestavek, ki obsega enega ali več nepopolnih virusov po enem od zahtevkov 1 ali 2.
  18. 18. Farmacevtski sestavek po zahtevku 17, označen s tem, da je v injekcijski obliki in obsega od 104 do 1014 pfu adenovirusa/ml.
  19. 19. Farmacevtski sestavek po zahtevku 18, označen s tem, da obsega rekombinantni adenovirus, ki je nasičen v hidrogelu.
    26089-x-97-mn Za
SI9620059A 1995-03-31 1996-03-28 Virusni vektorji in njihova uporaba za zdravljenje hiperproliferativnih motenj, zlasti restenoze SI9620059A (sl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR9504234A FR2732357B1 (fr) 1995-03-31 1995-03-31 Vecteurs viraux et utilisation pour le traitement des desordres hyperproliferatifs, notamment de la restenose
PCT/US1996/004493 WO1996030385A1 (en) 1995-03-31 1996-03-28 Viral vectors and their use for treating hyperproliferative disorders, in particular restenosis

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SI9620059A true SI9620059A (sl) 1998-06-30

Family

ID=9477928

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SI9620059A SI9620059A (sl) 1995-03-31 1996-03-28 Virusni vektorji in njihova uporaba za zdravljenje hiperproliferativnih motenj, zlasti restenoze

Country Status (16)

Country Link
US (2) US5851521A (sl)
EP (1) EP0817791A4 (sl)
JP (1) JPH11503314A (sl)
KR (1) KR19980703454A (sl)
CN (1) CN1190402A (sl)
AP (1) AP1011A (sl)
AU (1) AU701345B2 (sl)
BR (1) BR9608449A (sl)
CA (1) CA2216878A1 (sl)
CZ (1) CZ308897A3 (sl)
FR (1) FR2732357B1 (sl)
HU (1) HUP9801767A3 (sl)
OA (1) OA10516A (sl)
SI (1) SI9620059A (sl)
SK (1) SK132797A3 (sl)
WO (1) WO1996030385A1 (sl)

Families Citing this family (54)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5856121A (en) * 1994-02-24 1999-01-05 Case Western Reserve University Growth arrest homebox gene
US7727761B2 (en) 1995-08-01 2010-06-01 Vegenics Limited Vascular endothelial growth factor C (VEGF-C) protein and gene, mutants thereof, and uses thereof
FR2740344B1 (fr) * 1995-10-31 1997-11-21 Rhone Poulenc Rorer Sa Application de la proteine gax au traitement de cancers
FR2754822B1 (fr) * 1996-10-18 1998-11-27 Rhone Poulenc Rorer Sa Polypeptides comprenant des domaines de la proteine gax, impliques dans la repression de transcription et/ou interagissant avec d'autres proteines, acides nucleiques correspondants et leurs utilisations
US6335010B1 (en) * 1996-11-08 2002-01-01 University Of California At San Diego Gene therapy in coronary angioplasty and bypass
WO2000041732A1 (en) 1999-01-19 2000-07-20 The Children's Hospital Of Philadelphia Hydrogel compositions for controlled delivery of virus vectors and methods of use thereof
CA2396628A1 (en) * 2000-01-25 2001-08-02 Edwards Lifesciences Corporation Delivery systems for treatment of restenosis and anastomotic intimal hyperplasia
US6965010B2 (en) * 2000-02-25 2005-11-15 Licentia, Ltd. Materials and methods involving hybrid vascular endothelial growth factor DNAs and proteins
US20030100889A1 (en) * 2001-07-05 2003-05-29 Nicolas Duverger Method of administration of a gene of interest to a vascular tissue
US20030180936A1 (en) * 2002-03-15 2003-09-25 Memarzadeh Bahram Eric Method for the purification, production and formulation of oncolytic adenoviruses
US20080215137A1 (en) * 2003-04-30 2008-09-04 Boston Scientific Scimed, Inc. Therapeutic driving layer for a medical device
US20040220656A1 (en) * 2003-04-30 2004-11-04 Epstein Samuel J. Coated medical devices and methods of making the same
JP2007505603A (ja) * 2003-09-12 2007-03-15 ヴァーテックス ファーマシューティカルズ、 インコーポレイテッド プロテアーゼ活性および肝障害のための動物モデル
ATE507240T1 (de) 2004-03-05 2011-05-15 Vegenics Pty Ltd Materialien und verfahren für wachstumsfaktorbindende konstrukte
US7319015B2 (en) * 2004-03-16 2008-01-15 The Regents Of The University Of Michigan Methods and compositions for using alveolar macrophage phospholipase A2
US7582442B2 (en) * 2004-03-16 2009-09-01 The Regents Of The University Of Michigan Methods and compositions for using aleveolar macrophage phospholipase A2
GB0416487D0 (en) 2004-07-23 2004-08-25 Isis Innovation Modified virus
US20090233986A1 (en) * 2004-07-27 2009-09-17 Mount Sinai School Of Medicine Methods and compositions for using sax2
FI20050753L (fi) 2004-09-03 2006-03-04 Licentia Oy Uudet peptidit
US7531523B2 (en) * 2005-02-17 2009-05-12 Vertex Pharmaceuticals Incorporated Sodium channel protein type III alpha-subunit splice variant
KR100747646B1 (ko) 2005-02-25 2007-08-08 연세대학교 산학협력단 데코린 유전자를 포함하는 유전자 전달 시스템 및 이를 포함하는 약제학적 항종양 조성물
ATE502956T1 (de) 2005-08-15 2011-04-15 Vegenics Pty Ltd Modifizierte vegf und pdgf mit verbesserten angiogenen eigenschaften
US20080200408A1 (en) * 2005-09-30 2008-08-21 Mccormack Kenneth Deletion mutants of tetrodotoxin-resistant sodium channel alpha subunit
US7972813B2 (en) * 2005-09-30 2011-07-05 Vertex Pharmaceuticals Incorporated Tetrodotoxin-resistant sodium channel alpha subunit
DK1969003T3 (da) 2005-12-14 2010-12-13 Hermo Pharma Ltd Anvendelser af et neurotrofisk faktor-protein
US20090214496A1 (en) * 2006-01-30 2009-08-27 Licentia Ltd. Bmx/etk tyrosine kinase gene therapy materials and methods
EP2548578B1 (en) 2006-05-17 2014-08-20 The Ludwig Institute for Cancer Research Targeting VEGF-B regulation of fatty acid transporters to modulate human diseases
FI20070808A0 (fi) 2007-10-25 2007-10-25 Mart Saarma GDNF:n silmukointivariantit ja niiden käytöt
WO2009088256A2 (ko) 2008-01-09 2009-07-16 Konkuk University Industrial Cooperation Corp 배큘로바이러스-기반 백신
US20090196854A1 (en) * 2008-02-04 2009-08-06 Kytos Biosystems S.A. Methods and compositions for use of crl 5803 cells for expression of biotherapeutics and encapsulated cell-based delivery
FI20080326A0 (fi) 2008-04-30 2008-04-30 Licentia Oy Neurotroofinen tekijä MANF ja sen käytöt
JP2011526916A (ja) 2008-06-30 2011-10-20 ザ リージェンツ オブ ザ ユニバーシティ オブ ミシガン 全身性紅斑性狼瘡を同定および処置するための診断標的および治療標的としてのリソソームホスホリパーゼa2(lpla2)活性
KR101230913B1 (ko) 2009-11-06 2013-02-07 중앙대학교 산학협력단 나노입자-기반된 유전자 운반체
KR101232123B1 (ko) 2010-10-08 2013-02-12 연세대학교 산학협력단 재조합된 유전자발현 조절서열을 가지는 종양 특이적 발현이 개선된 유전자 전달체
AU2012255143A1 (en) 2011-05-19 2014-02-20 The Regents Of The University Of Michigan Integrin alpha-2 binding agents and use thereof to inhibit cancer cell proliferation
US9404090B2 (en) 2011-11-24 2016-08-02 Viromed Co., Ltd. Adenovirus producing novel cell line and the use thereof
DK2785683T3 (da) 2011-11-30 2020-04-14 Ludwig Inst For Cancer Res Ltd Inkt-cellemodulatorer og fremgangsmåder til anvendelse heraf
GB201120860D0 (en) 2011-12-05 2012-01-18 Cambridge Entpr Ltd Cancer immunotherapy
WO2013184209A1 (en) 2012-06-04 2013-12-12 Ludwig Institute For Cancer Research Ltd. Mif for use in methods of treating subjects with a neurodegenerative disorder
ES2878650T3 (es) 2012-09-06 2021-11-19 Univ Chicago Polinucleótidos antisentido para inducir la omisión de exón y procedimientos de tratamiento de distrofias
KR101429696B1 (ko) 2012-11-21 2014-08-13 국립암센터 안전성 및 항암활성이 증가된 재조합 아데노바이러스 및 이의 용도
SI2956476T1 (sl) 2013-02-18 2020-03-31 Vegenics Pty Limited Molekule za vezavo na ligande in uporabe le-teh
WO2014191630A2 (en) 2013-05-28 2014-12-04 Helsingin Yliopisto Non-human animal model encoding a non-functional manf gene
LT3283500T (lt) 2015-04-08 2020-12-10 The University Of Chicago Kompozicijos ir būdai, skirti 2c tipo dubens-žasto raumenų distrofijos korekcijai, panaudojant egzono peršokimą
KR102106619B1 (ko) 2015-10-12 2020-05-06 진메디신 주식회사 유전자 전달 및 유전자 치료를 위한 아데노바이러스 복합체
EA201990718A1 (ru) 2016-09-20 2019-10-31 Векторы аденовируса собачьих
HUE072083T2 (hu) 2016-09-20 2025-10-28 Boehringer Ingelheim Vetmedica Gmbh Új promóterek
MY199743A (en) 2016-09-20 2023-11-21 Boehringer Ingelheim Vetmedica Gmbh Ehv insertion site orf70
TW201823465A (zh) 2016-09-20 2018-07-01 德商百靈佳殷格翰維美迪加股份有限公司 新穎豬流感疫苗
EP3725875A4 (en) 2017-12-13 2021-10-06 Genemedicine Co., Ltd. RECOMBINANT ADENOVIRUS AND STEM CELLS INCLUDING THEM
CN112351996A (zh) 2018-06-11 2021-02-09 佛罗里达大学研究基金会股份有限公司 用于治疗应激相关病症和癌症的材料和方法
WO2024228167A1 (en) 2023-05-03 2024-11-07 Iox Therapeutics Inc. Inkt cell modulator liposomal compositions and methods of use
WO2025113643A1 (en) 2023-12-01 2025-06-05 Gilead Sciences Inc. Anti-fap-light fusion protein and use thereof
WO2025259871A1 (en) 2024-06-14 2025-12-18 Gilead Sciences, Inc. Anti-ccr8 antibodies and uses thereof

Family Cites Families (17)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB8424757D0 (en) * 1984-10-01 1984-11-07 Pasteur Institut Retroviral vector
FR2573436B1 (fr) * 1984-11-20 1989-02-17 Pasteur Institut Adn recombinant comportant une sequence nucleotidique codant pour un polypeptide determine sous le controle d'un promoteur d'adenovirus, vecteurs contenant cet adn recombinant, cellules eucaryotes transformees par cet adn recombinant, produits d'excretion de ces cellules transformees et leurs applications, notamment a la constitution de vaccins
US4797368A (en) * 1985-03-15 1989-01-10 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Adeno-associated virus as eukaryotic expression vector
US5139941A (en) * 1985-10-31 1992-08-18 University Of Florida Research Foundation, Inc. AAV transduction vectors
US4861719A (en) * 1986-04-25 1989-08-29 Fred Hutchinson Cancer Research Center DNA constructs for retrovirus packaging cell lines
JP3082204B2 (ja) * 1988-09-01 2000-08-28 ホワイトヘッド・インスティチュート・フォー・バイオメディカル・リサーチ 両栄養性および環境栄養性宿主域を持つ組換え体レトロウイルス
US5585362A (en) * 1989-08-22 1996-12-17 The Regents Of The University Of Michigan Adenovirus vectors for gene therapy
CA2039921A1 (en) * 1990-04-16 1991-10-17 Xandra O. Breakefield Transfer and expression of gene sequences into central nervous system cells using herpes simplex virus mutants with deletions in genes for viral replication
WO1991018088A1 (en) * 1990-05-23 1991-11-28 The United States Of America, Represented By The Secretary, United States Department Of Commerce Adeno-associated virus (aav)-based eucaryotic vectors
US5173414A (en) * 1990-10-30 1992-12-22 Applied Immune Sciences, Inc. Production of recombinant adeno-associated virus vectors
US5252479A (en) * 1991-11-08 1993-10-12 Research Corporation Technologies, Inc. Safe vector for gene therapy
CA2149771A1 (en) * 1992-11-18 1994-05-26 Jeffrey M. Leiden Adenovirus-mediated gene transfer to cardiac and vascular smooth muscle
EP1024198A3 (en) * 1992-12-03 2002-05-29 Genzyme Corporation Pseudo-adenoviral vectors for the gene therapy of haemophiliae
FR2705361B1 (fr) * 1993-05-18 1995-08-04 Centre Nat Rech Scient Vecteurs viraux et utilisation en thérapie génique.
FR2705686B1 (fr) * 1993-05-28 1995-08-18 Transgene Sa Nouveaux adénovirus défectifs et lignées de complémentation correspondantes.
KR100356615B1 (ko) * 1993-07-13 2003-04-03 아방티 파르마 소시에테 아노님 결함아데노바이러스벡터및유전자치료에서그의사용
US5856121A (en) * 1994-02-24 1999-01-05 Case Western Reserve University Growth arrest homebox gene

Also Published As

Publication number Publication date
EP0817791A4 (en) 1998-07-15
AP1011A (en) 2001-09-22
CZ308897A3 (cs) 1998-03-18
FR2732357A1 (fr) 1996-10-04
HUP9801767A3 (en) 1999-04-28
AP9701117A0 (en) 1996-03-28
AU701345B2 (en) 1999-01-28
FR2732357B1 (fr) 1997-04-30
KR19980703454A (ko) 1998-11-05
MX9707549A (es) 1998-07-31
AU5531596A (en) 1996-10-16
USRE37933E1 (en) 2002-12-10
JPH11503314A (ja) 1999-03-26
HUP9801767A2 (hu) 1998-10-28
EP0817791A1 (en) 1998-01-14
OA10516A (en) 2002-04-22
BR9608449A (pt) 1999-11-30
SK132797A3 (en) 1998-07-08
WO1996030385A1 (en) 1996-10-03
CA2216878A1 (en) 1996-10-03
US5851521A (en) 1998-12-22
CN1190402A (zh) 1998-08-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
SI9620059A (sl) Virusni vektorji in njihova uporaba za zdravljenje hiperproliferativnih motenj, zlasti restenoze
PT1792997E (pt) Adn triplex lentiviral, vetores e células recombiantes contendo adn triplex lentiviral
PL186151B1 (pl) Zrekombinowane adenowirusy, kompozycje zawierające zrekombinowane adenowirusy, komórka gospodarza zainfekowana zrekombinowanym adenowirusem oraz sposób otrzymywania biologicznie aktywnego białka p53 typu dzikiego
JP2001510028A (ja) p27およびその融合物で血管増殖性疾患を処置する方法
CN100357433C (zh) 可用于基因治疗和治疗性筛选的eNOS突变
JP2005504010A (ja) 成長ホルモンおよびfoxm1bを用いた肝臓疾患および肝臓損傷の処置方法
EP1115877B1 (en) Polynucleotide constructs and uses thereof
EP1307582B1 (en) Nucleic acid constructs, vascular cells transformed therewith, pharmaceutical compositions and methods utilizing same for inducing angiogenesis
KR19990067174A (ko) 암 치료를 위한 지에이엑스 단백질의 용도
JPH11506325A (ja) Δp62、その変異体、核酸配列及びこれらの使用
MXPA97007549A (en) Viral vectors and their use to treat disordershiperproliferativos, in particular resteno
KR100720201B1 (ko) 트랜스진의 신경-특이성 발현을 위한 음성 조절요소의 용도
SK51199A3 (en) Polypeptides comprising gax protein domains, involved in repressing transcription and/or interacting with other proteins, corresponding nucleic acids and their use
KR20010092800A (ko) 펩타이드
US7541343B2 (en) Inhibiting cellular proliferation by expressing yin yang-1
AU2002308413B2 (en) Yin yang 1
US6982148B2 (en) Progressive elevated gene-3 (PEG-3) induces aggressive cancer phenotype and regulates angiogenesis
JPH10500859A (ja) 組換えウイルス、製造方法および遺伝子治療での使用
HK1018066A (en) Viral vectors and their use for treating hyperproliferative disorders, in particular restenosis
AU2002308413A1 (en) Yin yang 1
ZA200101494B (en) Polynucleotide contructs and uses therof.

Legal Events

Date Code Title Description
IF Valid on the event date
KO00 Lapse of patent

Effective date: 20061218