RU2624869C1 - Method for nervous structures identification in dentistry system - Google Patents
Method for nervous structures identification in dentistry system Download PDFInfo
- Publication number
- RU2624869C1 RU2624869C1 RU2016113989A RU2016113989A RU2624869C1 RU 2624869 C1 RU2624869 C1 RU 2624869C1 RU 2016113989 A RU2016113989 A RU 2016113989A RU 2016113989 A RU2016113989 A RU 2016113989A RU 2624869 C1 RU2624869 C1 RU 2624869C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- distilled water
- minutes
- days
- solution
- mixture
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract 3
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract 7
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N Ammonia Chemical compound N QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract 6
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 claims abstract 6
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract 4
- BDAGIHXWWSANSR-UHFFFAOYSA-N methanoic acid Natural products OC=O BDAGIHXWWSANSR-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract 4
- SQGYOTSLMSWVJD-UHFFFAOYSA-N silver(1+) nitrate Chemical compound [Ag+].[O-]N(=O)=O SQGYOTSLMSWVJD-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract 4
- 238000005406 washing Methods 0.000 claims abstract 4
- 229910021529 ammonia Inorganic materials 0.000 claims abstract 3
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims abstract 3
- OSWFIVFLDKOXQC-UHFFFAOYSA-N 4-(3-methoxyphenyl)aniline Chemical compound COC1=CC=CC(C=2C=CC(N)=CC=2)=C1 OSWFIVFLDKOXQC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract 2
- RNFNDJAIBTYOQL-UHFFFAOYSA-N chloral hydrate Chemical compound OC(O)C(Cl)(Cl)Cl RNFNDJAIBTYOQL-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract 2
- 229960002327 chloral hydrate Drugs 0.000 claims abstract 2
- 235000019253 formic acid Nutrition 0.000 claims abstract 2
- 238000005470 impregnation Methods 0.000 claims abstract 2
- 229910001961 silver nitrate Inorganic materials 0.000 claims abstract 2
- 210000005036 nerve Anatomy 0.000 claims 1
- 238000011084 recovery Methods 0.000 claims 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 abstract 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract 1
- 238000011835 investigation Methods 0.000 abstract 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N1/00—Sampling; Preparing specimens for investigation
- G01N1/28—Preparing specimens for investigation including physical details of (bio-)chemical methods covered elsewhere, e.g. G01N33/50, C12Q
- G01N1/30—Staining; Impregnating ; Fixation; Dehydration; Multistep processes for preparing samples of tissue, cell or nucleic acid material and the like for analysis
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области медицины, в частности к стоматологии, и может быть использовано в нейростоматологии для выявления нервных структур в зубочелюстной системе на нейрогистологическом уровне.The invention relates to medicine, in particular to dentistry, and can be used in neurostomatology to identify nerve structures in the dentofacial system at a neurohistological level.
В распоряжении нейроморфологов имеется широкий выбор методик для выявления нервных структур в тканях [Рассказова Е.И. Методы импрегнации нейроплазмы разных периферических нервных волокон и окончаний / Е.И. Рассказова // Вопросы психиатрии. В кн. Научные работы института психиатрии. М., Медицина, - 1956. - С. 349-353].At the disposal of neuromorphologists there is a wide selection of techniques for detecting nerve structures in tissues [Rasskazova E.I. Methods of impregnation of the neuroplasm of various peripheral nerve fibers and endings / E.I. Rasskazova // Questions of psychiatry. In the book. Scientific work of the Institute of Psychiatry. M., Medicine, - 1956. - S. 349-353].
Однако использование рекомендуемых прописей и условий на практике нередко не позволяют получить желаемого результата. Не является исключением выявление нервных компонентов в костных образованиях челюстно-лицевой области. Неполное выявление компонентов нервного аппарата частично объясняется биохимической индивидуальностью органов и тканей [Рассказова Е.И. Методы импрегнации нейроплазмы разных периферических нервных волокон и окончаний / Е.И. Рассказова // Вопросы психиатрии. В кн. Научные работы института психиатрии. М., Медицина, - 1956. - С. 349-353].However, the use of recommended prescriptions and conditions in practice often does not allow to obtain the desired result. The detection of nerve components in the bones of the maxillofacial region is no exception. Incomplete identification of the components of the nervous apparatus is partially explained by the biochemical identity of organs and tissues [Rasskazova E.I. Methods of impregnation of the neuroplasm of various peripheral nerve fibers and endings / E.I. Rasskazova // Questions of psychiatry. In the book. Scientific work of the Institute of Psychiatry. M., Medicine, - 1956. - S. 349-353].
Одним из отрицательных моментов выявления нервных элементов в костной ткани является декальцинация во время фиксации изучаемых объектов и сам способ фиксации в конечном счете сводит на нет выявление нервных структур в зубах и челюстях из-за аутолиза их кислотами [Жаботинский Ю.М. Нормальная и патологическая морфология нейрона. Л.: Медицина, 1965. - 328 с.]. Декальцинации должна предшествовать хорошая, основательная фиксация. Для этих целей существуют различные смеси на основе формалина - жидкости Гели, Гейденгайна, Штиве, Флеминга, Делоне (1936), Шафера (1902), Эбнера и ряда других, в которых в качестве декальцинации используют различные кислоты, диапазон концентрации которых весьма вариабелен. Используют: трихлоруксусную, пикриновую, азотную, серную кислоты и их смеси в разных объемных сочетаниях. При этом многие авторы, предлагавшие свои методики, единодушны во мнении, что соляная и азотная кислоты как таковые для декальцинации не пригодны, так как полностью растворяют основные структурные компоненты костной ткани [Рассказова Е.И. Методы импрегнации нейроплазмы разных периферических нервных волокон и окончаний / Е.И. Рассказова // Вопросы психиатрии. В кн. Научные работы института психиатрии. М., Медицина, - 1956. - С.349-353].One of the negative aspects of detecting nerve elements in bone tissue is decalcification during fixation of the studied objects and the fixation method itself ultimately negates the detection of nerve structures in the teeth and jaws due to their autolysis with acids [Zhabotinsky Yu.M. Normal and pathological morphology of a neuron. L .: Medicine, 1965. - 328 p.]. Decalcifications should be preceded by a good, thorough fixation. For these purposes, there are various mixtures based on formalin - Gels, Heidengain, Stive, Fleming, Delaunay liquids (1936), Schafer (1902), Ebner and several others, in which various acids are used as decalcification, the concentration range of which is very variable. Use: trichloroacetic, picric, nitric, sulfuric acids and their mixtures in different volume combinations. Moreover, many authors who proposed their methods are unanimous in the opinion that hydrochloric and nitric acids as such are not suitable for decalcification, since they completely dissolve the basic structural components of bone tissue [Rasskazova E.I. Methods of impregnation of the neuroplasm of various peripheral nerve fibers and endings / E.I. Rasskazova // Questions of psychiatry. In the book. Scientific work of the Institute of Psychiatry. M., Medicine, - 1956. - S. 349-353].
Наиболее оптимальным вариантом для декальцинации является муравьиная кислота, которая особо рекомендуется для декальцинации зубов, так как она слабо влияет на окрашиваемость (Мураяма, 1937; Ричмен, Гельфанд и Хилл. 1946) [Пирс Э. Гистохимия. Теоретическая и прикладная. М., 1962; Лойд З., Госсрау Р., Шиблер Т. Гистохимия ферментов. Лабораторные методы. М., «Мир», - 1982].The best option for decalcification is formic acid, which is especially recommended for decalcification of teeth, since it weakly affects staining (Murayama, 1937; Richman, Gelfand and Hill. 1946) [Pierce E. Histochemistry. Theoretical and applied. M., 1962; Lloyd Z., Gossrau R., Schiebler T. Histochemistry of enzymes. Laboratory methods. M., "World" - 1982].
Однако эти методики дают в основном положительные результаты на предмет окраски структур костной ткани различными общегистологическими способами. Так, наиболее оптимальной окраской срезов декальцинированных зубов является метод Шморля: срезы окрашивают в течение 10-12 мин раствором тионина, затем споласкивают водой и переносят в концентрированный водный раствор пикриновой кислоты на 1,5-2 мин. Снова споласкивают в дистиллированной воде, затем дифференцируют в 70% спирте до прекращения отделения из срезов красителя (обычно 5-10 мин), обезвоживают в 96% спирте, карбол-ксилоле и монтируют на предметном стекле с заключением в бальзам. В результате окрашиваются одонтобласты с отростками и дентинные трубочки. [Р.П. Самусев / Основы клинической морфологии зубов // Самусев Р.П., Дмитриенко С.В., Краюшкин А.И. - М.: ООО «Издательский дом «Оникс 21 век»: ООО «Мир и Образование», 2002. - 268 с. (С. 30)].However, these methods give mainly positive results on the subject of staining of bone tissue structures with various general histological methods. Thus, the Schmorl method is the most optimal color for sections of decalcified teeth: the sections are stained with a thionine solution for 10-12 minutes, then rinsed with water and transferred to a concentrated aqueous solution of picric acid for 1.5-2 minutes. Rinse again in distilled water, then differentiate in 70% alcohol until the separation of the dye from the sections has ceased (usually 5-10 minutes), dehydrate in 96% alcohol, carbol-xylene and mount on a glass slide with a balsam. As a result, odontoblasts with processes and dentinal tubules are stained. [R.P. Samusev / Fundamentals of the clinical morphology of teeth // Samusev R.P., Dmitrienko S.V., Krajushkin A.I. - M .: Onix 21 Century Publishing House LLC: Mir and Education LLC, 2002. - 268 p. (S. 30)].
В качестве же метода выявления нервных образований данный способ фиксации мало пригоден из-за высокой концентрации входящих в состав фиксирующих жидкостей кислот, которые растворяют миелированные и немиелированные компоненты нервных элементов. Так, согласно методике Мираяма (1937) необходимо применять концентрированную муравьиную кислоту, разбавляя в равном количестве 70° спирта, а по методу Ричмена, Гельфанда и Хила (1946) используют 100 мл муравьиной и 80 мл соляной кислоты на 1 литр дистиллированной воды [Пирс Э. Гистохимия. Теоретическая и прикладная. М., 1962; Лойд З., Госсрау Р., Шиблер Т. Гистохимия ферментов. Лабораторные методы. М., «Мир», - 1982].As a method for detecting nerve formations, this method of fixation is of little use because of the high concentration of acids that make up the fixing fluids, which dissolve the myelinated and non-myelinated components of nerve elements. Thus, according to the method of Mirayama (1937), it is necessary to use concentrated formic acid, diluting in equal amounts of 70 ° alcohol, and according to the method of Richman, Gelfand and Khil (1946), 100 ml of formic and 80 ml of hydrochloric acid per 1 liter of distilled water are used [Pierce E Histochemistry. Theoretical and applied. M., 1962; Lloyd Z., Gossrau R., Schiebler T. Histochemistry of enzymes. Laboratory methods. M., "World" - 1982].
Данные методики пригодны только для общегистологической окраски, но не для выявления нервных структур из-за побочного действия соляной кислоты.These methods are suitable only for general histological staining, but not for the detection of nerve structures due to the side effects of hydrochloric acid.
Согласно методике деКастро, в качестве фиксации и декальцинации используется азотная кислота [К.Г. Таюшев Руководство по лабораторной нейрогистологической технике / Таюшев К.Г. - СПб, 2005. - С. 68]. По данной методике приводится:According to the deCastro method, nitric acid is used as fixation and decalcification [K.G. Tayushev Guide to Laboratory Neurohistological Technique / Tayushev K.G. - St. Petersburg, 2005. - S. 68]. According to this technique, the following is given:
1. Фиксация и одновременная декальцинация: абсолютный этанол - 50 мл, хлоралгидрат - 5,0 г, дистиллированная вода 50 мл, азотная кислота - 2-4 мл (в зависимости от плотности костной ткани от 4 до 10 суток). Если ткань очень плотная, количество азотной кислоты можно увеличить от 4 до 7 мл, окончание фиксации определяется по цвету объекта: он становится полупрозрачным, молочным.1. Fixation and simultaneous decalcification: absolute ethanol - 50 ml, chloral hydrate - 5.0 g, distilled water 50 ml, nitric acid - 2-4 ml (depending on bone density from 4 to 10 days). If the tissue is very dense, the amount of nitric acid can be increased from 4 to 7 ml, the end of fixation is determined by the color of the object: it becomes translucent, milky.
2. Промывание в проточной воде - 1 сут.2. Rinsing in running water - 1 day.
3. 96% этанол - 50 мл, аммиак - 1 сут.3. 96% ethanol - 50 ml, ammonia - 1 day.
4. 1,5% раствор нитрата серебра (можно прибавить пиридина по 1 капле на 1 мл раствора) - 7-10 сут. В термостате при температуре 37°С.4. 1.5% silver nitrate solution (you can add pyridine 1 drop per 1 ml of solution) - 7-10 days. In the thermostat at a temperature of 37 ° C.
5. Восстановление: пирогаллол - 1 мл, нейтральный формалин - 10 мл, дистиллированная вода - 90 мл на сут.5. Recovery: pyrogallol - 1 ml, neutral formalin - 10 ml, distilled water - 90 ml per day.
6. Быстрое проведение через спирты, проводка и заливка в целлоидин.6. Fast passage through alcohols, wiring and pouring into celloidin.
7. Приготовление срезов и гистологических препаратов.7. Preparation of sections and histological preparations.
Однако данным способом затруднительно выявление в полном объеме нервных структур в костной ткани челюстей, особенно в зубах.However, this method is difficult to fully identify the nerve structures in the bone tissue of the jaw, especially in the teeth.
Техническим результатом изобретения является определение оптимальной концентрации декальцинирующе-фиксирующей смеси для более полного выявления структуры нервного аппарата в зубочелюстной системе человека и животных.The technical result of the invention is to determine the optimal concentration of decalcifying-fixing mixture to more fully identify the structure of the nervous system in the dentofacial system of humans and animals.
Технический результат достигается составом и концентрацией фиксирующей смеси на основе муравьиной кислоты и хлоралгидрата, и концентрацией азотнокислого серебра.The technical result is achieved by the composition and concentration of the fixing mixture based on formic acid and chloral hydrate, and the concentration of silver nitrate.
Предлагаемый способ заключается в следующем.The proposed method is as follows.
Объект зубной или челюстной ткани фиксируют в течение 3-5 суток в смеси следующего состава: концентрированная муравьиная кислота - 3,5 мл, хлоралгидрат - 3,5 г, 96% этиловый спирт - 50 мл, дистиллированная вода - 100 мл. Смесь меняют в течение суток 2-3 раза.An object of dental or jaw tissue is fixed for 3-5 days in a mixture of the following composition: concentrated formic acid - 3.5 ml, chloral hydrate - 3.5 g, 96% ethyl alcohol - 50 ml, distilled water - 100 ml. The mixture is changed during the day 2-3 times.
Далее объект промывают в водопроводной воде - 24 часа и помещают в смесь следующего состава: 50 мл 96° спирта с аммиаком (50 мл спирта и 5-6 капель аммиачного спирта) на 30-60 мин в зависимости от величины объекта.Next, the object is washed in tap water for 24 hours and placed in a mixture of the following composition: 50 ml of 96 ° alcohol with ammonia (50 ml of alcohol and 5-6 drops of ammonia alcohol) for 30-60 minutes, depending on the size of the object.
Затем объект промывают в дистиллированной воде 20-30 минут и осуществляют импрегнацию в 5% растворе нитрата серебра в термостате при температуре 37° в течение 5-7 суток, пока кусочки не приобретут светло-коричневый оттенок.Then the object is washed in distilled water for 20-30 minutes and impregnated in a 5% solution of silver nitrate in a thermostat at a temperature of 37 ° for 5-7 days, until the pieces acquire a light brown tint.
После термостата объект промывают в дистиллированной воде 10 минут с последующим восстановлением в течении 24 часов в смеси состава: пирогалловая кислота - 1 гр, формалин - 10 мл, дистиллированная вода - 90 мл.After the thermostat, the object is washed in distilled water for 10 minutes, followed by recovery for 24 hours in a mixture of composition: pyrogallic acid - 1 g, formalin - 10 ml, distilled water - 90 ml.
Далее проводят промывку дистиллированной водой 10-15 минут и традиционную проводку через спирты, ксилол, заливку в целлоидин, резку на микротоме и бальзамирование.Next, washing with distilled water for 10-15 minutes and traditional wiring through alcohols, xylene, pouring into celloidin, cutting on a microtome and embalming are carried out.
Применение в качестве декальцинирующего компонента муравьиной кислоты в составе фиксирующей смеси на фоне хлоралгидрата явилось новым решением, способствующим упрощению порядка проводки исследуемого объекта через нейрохимические реактивы, повышению качества получаемых нейрогистологических препаратов, определенных сегментов зубочелюстной системы на светооптическом уровне.The use of formic acid as a decalcifying component in the composition of the fixing mixture against the background of chloral hydrate was a new solution that facilitates the simplification of the procedure for conducting the test object through neurochemical reagents, improving the quality of the resulting neurohistological preparations, certain segments of the dentofacial system at the light-optical level.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2016113989A RU2624869C1 (en) | 2016-04-11 | 2016-04-11 | Method for nervous structures identification in dentistry system |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2016113989A RU2624869C1 (en) | 2016-04-11 | 2016-04-11 | Method for nervous structures identification in dentistry system |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2624869C1 true RU2624869C1 (en) | 2017-07-07 |
Family
ID=59312605
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2016113989A RU2624869C1 (en) | 2016-04-11 | 2016-04-11 | Method for nervous structures identification in dentistry system |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2624869C1 (en) |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2241994C1 (en) * | 2003-09-30 | 2004-12-10 | ГОУ ВПО Красноярская государственная медицинская академия | Method for preparing bone samples to morphological diagnostic analysis |
| US20110195052A1 (en) * | 2003-12-31 | 2011-08-11 | Keyvan Behnam | Bone matrix compositions and methods |
| RU2500104C2 (en) * | 2012-03-05 | 2013-12-10 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Научный центр реконструктивной и восстановительной хирургии" Сибирского отделения Российской академии медицинских наук (ФГБУ "НЦРВХ" СО РАМН) | Method of preparing bone tissue preparation and set for its realisation |
-
2016
- 2016-04-11 RU RU2016113989A patent/RU2624869C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2241994C1 (en) * | 2003-09-30 | 2004-12-10 | ГОУ ВПО Красноярская государственная медицинская академия | Method for preparing bone samples to morphological diagnostic analysis |
| US20110195052A1 (en) * | 2003-12-31 | 2011-08-11 | Keyvan Behnam | Bone matrix compositions and methods |
| RU2500104C2 (en) * | 2012-03-05 | 2013-12-10 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Научный центр реконструктивной и восстановительной хирургии" Сибирского отделения Российской академии медицинских наук (ФГБУ "НЦРВХ" СО РАМН) | Method of preparing bone tissue preparation and set for its realisation |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Некачалов В.В. Патология костей и суставов. Руководство. — СПб.: Сотис, 2000, С.29-35. * |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Brodie et al. | The estimation of quinine in human plasma with a note on the estimation of quinidine | |
| Neuhaus et al. | Assessment of the cytotoxic and immunomodulatory effects of substances in human precision-cut lung slices | |
| La Cour | Improvements in plant cytological technique | |
| EP3035026A1 (en) | Composition for preparing biomaterial with excellent light-transmitting property, and use thereof | |
| Al-Mahmood | Improving light microscopic detection of collagen by trichrome stain modification | |
| Narayanan et al. | Determining factors for optimal neuronal and glial Golgi-Cox staining | |
| CN107328723B (en) | rapid detection reagent for heavy metal lead and preparation method thereof | |
| RU2624869C1 (en) | Method for nervous structures identification in dentistry system | |
| CN103994913A (en) | Fixed-decalcifying fluid for bone marrow biopsy and paraffin section method of bone marrow biopsy tissue | |
| RU2530612C1 (en) | Method for nematode preparation for morphological and histological examination | |
| Tolstoouhov | The effect of preliminary treatment (fixing fluids) on staining properties of the tissues | |
| CN111272894A (en) | A kind of construction method and application of Dilong 1H NMR fingerprint | |
| RU2612018C1 (en) | Method for blood smears preparation for reticulocytes counting | |
| Hult et al. | The measurement of elastin in human skin and its quantity in relation to age | |
| Krogh | The use of isotopes as indicators in biological research | |
| Ramos-Payán et al. | Recent advances in sample pre-treatment for emerging methods in proteomic analysis | |
| CN107907623B (en) | A rapid judgment method of "fried charcoal storage property" processed by oriental cypress leaves | |
| JP2011133371A (en) | Method for specifying degree of hair glycosylation and evaluation method using the same | |
| CN113848102A (en) | A kind of methamphetamine extract and preparation method thereof | |
| Herbyananda | Use of a Hotplate at 80 C for 3 minutes to help Fixation of Histological Preparations | |
| Shue et al. | Improvement in Vitamin D Line Test | |
| Turello et al. | A modification the osmium tetroxide post-fixation technique for the demonstration of extracellular lipid in paraffin-embedded tissue sections | |
| JP2016191707A (en) | Method for measuring indoxyl sulfate | |
| Patle et al. | Comparative analysis of wild and domestic carnivore animal hairs. | |
| RU2782761C1 (en) | Method for determining acid number |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20210412 |