RU2238105C1 - Recombinant vaccine for preventing viral hepatitis b (variants) - Google Patents
Recombinant vaccine for preventing viral hepatitis b (variants) Download PDFInfo
- Publication number
- RU2238105C1 RU2238105C1 RU2003106840/13A RU2003106840A RU2238105C1 RU 2238105 C1 RU2238105 C1 RU 2238105C1 RU 2003106840/13 A RU2003106840/13 A RU 2003106840/13A RU 2003106840 A RU2003106840 A RU 2003106840A RU 2238105 C1 RU2238105 C1 RU 2238105C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- hbsag
- hepatitis
- ayw
- recombinant vaccine
- antigen
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к биотехнологии, а именно к генной инженерии и касается рекомбинантных вакцин для профилактики вирусного гепатита В, содержащих в своем составе в качестве активного компонента HBs-антигены серотипов adw и / или ayw, выделенные из штаммов дрожжей Pichia angusta (Hansenula polymorpha) VKPM Y - 2412 и VKM Y-2924D.The invention relates to biotechnology, namely to genetic engineering, and relates to recombinant vaccines for the prevention of viral hepatitis B containing in their composition as an active component HBs antigens of serotypes adw and / or ayw isolated from strains of the yeast Pichia angusta (Hansenula polymorpha) VKPM Y - 2412 and VKM Y-2924D.
Известна вакцина для иммунизации против гепатита В, включающая поверхностный антиген вируса гепатита В, содержащий пре S2, в эффективном количестве, и, по крайней мере, один из физиологически приемлемых компонентов, выбранных из группы носитель, разбавитель или адъювант. Продуцентом поверхностного антигена вируса гепатита В является штамм дрожжей S. cerevisia КСТС 0098 ВР.A vaccine is known for immunization against hepatitis B, comprising a surface antigen of hepatitis B virus containing pre S2 in an effective amount and at least one of physiologically acceptable components selected from the group of carrier, diluent or adjuvant. The producer of the hepatitis B virus surface antigen is the S. cerevisia yeast strain CCC 0098 BP.
RU, Патент №2122430, 1995, C 12 N 15/51, А 61 К 39/29.RU, Patent No. 2122430, 1995, C 12 N 15/51, A 61 K 39/29.
При реализации известного технического решения не обеспечивается достаточно высокий уровень синтеза антигена, являющегося активной частью получаемой вакцины.When implementing the known technical solution is not provided a sufficiently high level of synthesis of antigen, which is an active part of the resulting vaccine.
Известна рекомбинантная вакцина для профилактики вирусного гепатита В, содержащая эффективное количество поверхностного антигена вируса гепатита В, полученного путем культивирования штамма дрожжей S.cerevisiae ВКПМ Y-2203, адъювант, консервант и физиологически приемлемый носитель.Known recombinant vaccine for the prevention of viral hepatitis B, containing an effective amount of the surface antigen of hepatitis B virus, obtained by cultivating the yeast strain S. cerevisiae VKPM Y-2203, adjuvant, preservative and a physiologically acceptable carrier.
Патент РФ №2088664, 1996 г., А 61 К 39/29RF patent No. 2088664, 1996, A 61 K 39/29
При осуществлении изобретения в соответствии с указанным патентом при использовании штамма дрожжей S. cerevisiae невозможно добиться высоких уровней синтеза антигена. Описанные до сих пор способы достижения высокого уровня синтеза HBsAg в клетках дрожжей предполагали введение в клетки большого числа копий гена, его кодирующего. Проблема заключается в том, что некоторые из копий могут получать мутации, что, в свою очередь, может менять свойства получаемого белка. При этом контроль за возникновением мутаций на фоне высокой копийности гена практически невозможен. Более того, очень высокий уровень синтеза чужеродной РНК может приводить к истощению в клетке некоторых тРНК, в результате чего соответствующие им кодоны транслируются при помощи других тРНК. Это приводит к появлению в конечном продукте примеси мутантных форм полипептида, содержащих аминокислотные замены.When implementing the invention in accordance with the specified patent when using a strain of yeast S. cerevisiae it is impossible to achieve high levels of synthesis of antigen. The methods described so far to achieve a high level of synthesis of HBsAg in yeast cells have suggested the introduction of a large number of copies of the gene encoding it into the cells. The problem is that some of the copies can get mutations, which, in turn, can change the properties of the resulting protein. At the same time, monitoring the occurrence of mutations against the background of a high copy number of the gene is almost impossible. Moreover, a very high level of synthesis of foreign RNA can lead to depletion of some tRNAs in the cell, as a result of which the corresponding codons are translated using other tRNAs. This leads to the appearance in the final product of an impurity of mutant forms of the polypeptide containing amino acid substitutions.
Все вышеизложенное в свою очередь может повлиять на качество получаемых вакцин.All of the above, in turn, may affect the quality of vaccines received.
Задачей изобретения является расширение арсенала средств для профилактики вирусного гепатита В, путем создания высокоиммуногенных, нетоксичных, не обладающих побочными эффектами вакцин.The objective of the invention is to expand the arsenal of tools for the prevention of viral hepatitis B, by creating highly immunogenic, non-toxic, non-side-effect vaccines.
Поставленная задача решена за счет введения в состав вакцин в качестве основных активных компонентов поверхностных антигенов вируса гепатита В серотипов ad и/или ау, полученных культивированием штаммов дрожжей Pichia angusta (Hansenula Polymorpha) VKPM Y-2412 и VKM Y-2924D.The problem was solved by introducing the serotypes ad and / or au serotypes obtained by culturing the Pichia angusta (Hansenula Polymorpha) VKPM Y-2412 and VKM Y-2924D yeast strains as the main active components of the surface antigens of hepatitis B virus.
Используемые для выделения антигенов дрожжевые продуценты должны обладать следующими свойствами: 1) способ получения продуцента должен позволять контролировать отсутствие мутаций в экспрессируемом чужеродном гене; 2) уровень экспрессии не должен быть очень высоким, чтобы увеличить точность трансляции чужеродной мРНК и при этом выход целевого белка должен быть достаточно высоким, чтобы обеспечить экономическую целесообразность использования продуцентов.The yeast producers used for the selection of antigens should possess the following properties: 1) the method for producing the producer should make it possible to control the absence of mutations in the expressed foreign gene; 2) the expression level should not be very high in order to increase the accuracy of translation of foreign mRNA, while the yield of the target protein should be high enough to ensure the economic feasibility of using producers.
Согласно изобретению одна копия синтетической последовательности ДНК, кодирующей HBsAg/ayw или HBsAg/adw, интегрирована в геном штамма Pichia angusta (Hansenula polymorpha). Для увеличения доли антигена во фракции растворимых клеточных белков используется штамм с нарушенным геном МОХ, кодирующем алкогольоксидазу. Отсутствие мутаций, которые могли образоваться в гене, кодирующем HBsAg/ayw или HBsAg/adw, в процессе его введения в геном дрожжей или при культивировании штамма-продуцента, может быть выявлено определением нуклеотидной последовательности продукта полимеразной цепной реакции с праймерами к этому гену.According to the invention, one copy of the synthetic DNA sequence encoding HBsAg / ayw or HBsAg / adw is integrated into the genome of the Pichia angusta strain (Hansenula polymorpha). To increase the proportion of antigen in the fraction of soluble cellular proteins, a strain with an impaired MOX gene encoding alcohol oxidase is used. The absence of mutations that could have formed in the gene encoding HBsAg / ayw or HBsAg / adw during its introduction into the yeast genome or during cultivation of the producer strain can be detected by determining the nucleotide sequence of the product of the polymerase chain reaction with primers for this gene.
Дрожжи Pichia angusta (H. polymorpha) являются предпочтительными по сравнению с S. cerevisiae, поскольку позволяют добиваться более высоких уровней синтеза антигена при более простых способах получения культур высокой плотности.Yeast Pichia angusta (H. polymorpha) is preferred over S. cerevisiae because it allows higher levels of antigen synthesis to be achieved with simpler methods for producing high density cultures.
Штаммы дрожжей Pichia angusta (H. polymorpha), являющиеся продуцентами поверхностного антигена вируса гепатита В серотипов ad и ау и вакцины против гепатита В, являются новыми и ни в патентной, ни в научно - технической литературе не описаны.The strains of the yeast Pichia angusta (H. polymorpha), which are producers of the hepatitis B virus surface antigen of serotypes ad and ay and vaccines against hepatitis B, are new and are not described in the patent or in the scientific and technical literature.
Изобретение может быть проиллюстрировано следующими примерами. При этом все рутинные генно-инженерные операции осуществляют согласно стандартным методикам (маниатис) и инструкциям компаний производителей ферментов и наборов для манипуляций с ДНК in vitro. Для ПЦР во всех случаях использовали полимеразу Vent (NEB). Синтез олигонуклеотидов производился ЗАО “Синтол” г. Москва. В работе для получения антигена серотипа ayw использовали следующие олигонуклеотиды:The invention can be illustrated by the following examples. Moreover, all routine genetic engineering operations are carried out according to standard methods (maniatis) and instructions of companies producing enzymes and kits for manipulating DNA in vitro. For PCR, Vent polymerase (NEB) was used in all cases. Synthesis of oligonucleotides was carried out by Syntol CJSC in Moscow. The following oligonucleotides were used to obtain the ayw serotype antigen:
В соответствии с изменениями, внесенными в классификацию дрожжей, Н. Polymorpha обозначается и как Pichia angusta.In accordance with the changes made to the classification of yeast, N. Polymorpha is also designated as Pichia angusta.
Пример 1. Получение фрагмента ДНК, кодирующего HBsAg/ayw (фрагмент А). Реакционную смесь, содержащую олигонуклеотиды lu и 8L по 1 мкМ, олигонуклеотиды со 2u по 8u; с 1L по 7L по 10 пМ, ThermoPol буфер (10 mМ KCI, 20 mM tris-HCI рН 8.8, 10 mМ (NH4)2SO4 2 mМ MgSO4, 0,1% Triton X-100, 250 uM dNTP) и 5 единиц активности Vent полимеразы инкубируют в течение 30 циклов изменения температуры. Каждый цикл включает инкубацию при 95°С в течение 30 сек, при 50°С 30 сек, при 72°С 90 сек. После этого продукты реакции разделяют электрофоретически в 1% агарозном геле, и изолируют фрагмент размером 730 пар оснований. Соответствие выделенного фрагмента нужному размеру определяют также путем электрофореза в 1% агарозном геле, сравнивая его подвижность с подвижностью полос маркеров молекулярного веса.Example 1. Obtaining a DNA fragment encoding HBsAg / ayw (fragment A). The reaction mixture containing 1 μM oligonucleotides lu and 8L, oligonucleotides 2u to 8u; 1L to 7L to 10 pM, ThermoPol buffer (10 mM KCI, 20 mM tris-HCI pH 8.8, 10 mM (NH 4 ) 2 SO 4 2 mM MgSO 4 , 0.1% Triton X-100, 250 uM dNTP) and 5 units of Vent polymerase activity are incubated for 30 cycles of temperature change. Each cycle includes incubation at 95 ° C for 30 sec, at 50 ° C 30 sec, at 72 ° C 90 sec. After this, the reaction products are separated electrophoretically in a 1% agarose gel, and a fragment of 730 base pairs is isolated. The correspondence of the selected fragment to the desired size is also determined by electrophoresis in 1% agarose gel, comparing its mobility with the mobility of the molecular weight marker bands.
Пример 2. Получение фрагмента геномной ДНК Pichia angusta (H. polymorpha), содержащего промотор гена МОХ (фрагмент Б).Example 2. Obtaining a fragment of genomic DNA of Pichia angusta (H. polymorpha) containing the promoter of the MOX gene (fragment B).
Суспендируют 2-3 мкг клеток штамма Pichia angusta (Hansenula polymorpha) BKM 4-2559 (получен из почвы СС4 38-22-2 Институт биохимии и физиологии микроорганизмов РАН) в 0,1 мл 0,25% раствора додецилсульфата натрия и инкубируют на кипящей водяной бане в течение 5 мин. Клетки осаждают центрифугированием при 10000 g 5 мин. 1мкл полученного супернатанта добавляют к 25 мкл смеси, содержащей олигонуклеотиды moxU5 и moxL3 по 1 мкМ, ThermoPol буфер (10 mM KCI, 20 mM tris-HCI рН 8.8, 10 mM (NH4)2SO4, 2 mM MgSO4, 0,1% Triton X-100, 250 uM dNTP) и 5 единиц активности Vent полимеразы. Реакционную смесь инкубируют в течение 30 циклов изменения температуры. Каждый цикл включает инкубацию при 95°С в течение 30 сек, при 50°С 30 сек, при 72°С 90 сек. После этого продукты реакции разделяют электрофоретически в 1% агарозном геле и изолируют фрагмент размером 850 пар оснований. Соответствие выделенного фрагмента нужному размеру определяют также путем электрофореза в 1% агарозном геле, сравнивая его подвижность с подвижностью полос маркеров молекулярного веса.2-3 μg of cells of the strain Pichia angusta (Hansenula polymorpha) BKM 4-2559 (obtained from soil CC4 38-22-2 Institute of Biochemistry and Physiology of Microorganisms RAS) are suspended in 0.1 ml of a 0.25% sodium dodecyl sulfate solution and incubated in boiling water bath for 5 minutes Cells are pelleted by centrifugation at 10,000 g for 5 minutes. 1 μl of the obtained supernatant is added to 25 μl of a mixture containing 1 μM moxU5 and moxL3 oligonucleotides, ThermoPol buffer (10 mM KCI, 20 mM tris-HCI pH 8.8, 10 mM (NH 4 ) 2 SO 4 , 2 mM MgSO 4 , 0, 1% Triton X-100, 250 uM dNTP) and 5 units of Vent polymerase activity. The reaction mixture is incubated for 30 cycles of temperature change. Each cycle includes incubation at 95 ° C for 30 sec, at 50 ° C 30 sec, at 72 ° C 90 sec. After this, the reaction products are separated electrophoretically in a 1% agarose gel and a fragment of 850 base pairs is isolated. The correspondence of the selected fragment to the desired size is also determined by electrophoresis in 1% agarose gel, comparing its mobility with the mobility of the molecular weight marker bands.
Пример 3. Получение фрагмента геномной ДНК Pichia angusta (H. polymorpha), содержащего часть гена TRP 3 (фрагмент В).Example 3. Obtaining a fragment of genomic DNA of Pichia angusta (H. polymorpha) containing a portion of the TRP 3 gene (fragment B).
Суспендируют 2-3 мкг клеток штамма Pichia angusta (H. polymorpha) ВКМ 4-2559 в 0,1 мл 0,25% раствора додецилсульфата натрия и инкубируют на кипящей водяной бане в течение 5 мин. Клетки осаждают центрифугированием при 10000 g 5 мин. 1 мкл полученного супернатанта добавляют к смеси содержащей олигонуклеотиды trpU5 и trpL3 по 1 мкМ, ThermoPol буфер (10 mM KCI, 20 mМ tris-HCI pH 8.8, 10 mМ (NH4)2SO4, 2 mМ MgSO4, 0,1% Triton X-100, 250 uM dNTP) и 5 единиц активности Vent полимеразы. Реакционную смесь инкубируют в течение 30 циклов изменения температуры. Каждый цикл включает инкубацию при 95°С в течение 30 сек, при 50°С 30 сек, при 72°С 120 сек, при 50°С 30 сек, при 72°С 120 сек. После этого продукты реакции разделяют электрофоретически в 1% агарозном геле и изолируют фрагмент размером 1360 пар оснований. Соответствие выделенного фрагмента нужному размеру определяют также путем электрофореза в 1% агарозном геле, сравнивая его подвижность с подвижностью полос маркеров молекулярного веса.Suspend 2-3 μg of cells of the strain Pichia angusta (H. polymorpha) VKM 4-2559 in 0.1 ml of a 0.25% solution of sodium dodecyl sulfate and incubate in a boiling water bath for 5 minutes. Cells are pelleted by centrifugation at 10,000 g for 5 minutes. 1 μl of the obtained supernatant is added to a mixture of oligonucleotides trpU5 and trpL3, 1 μM each, ThermoPol buffer (10 mM KCI, 20 mM tris-HCI pH 8.8, 10 mM (NH 4 ) 2 SO 4 , 2 mM MgSO 4 , 0.1% Triton X-100, 250 uM dNTP) and 5 units of Vent polymerase activity. The reaction mixture is incubated for 30 cycles of temperature change. Each cycle includes incubation at 95 ° C for 30 sec, at 50 ° C 30 sec, at 72 ° C 120 sec, at 50 ° C 30 sec, at 72 ° C 120 sec. After this, the reaction products are separated electrophoretically in a 1% agarose gel and a fragment of 1360 base pairs is isolated. The correspondence of the selected fragment to the desired size is also determined by electrophoresis in 1% agarose gel, comparing its mobility with the mobility of the molecular weight marker bands.
Пример 4. Получение фрагмента ДНК Pichia angusta (H. polymorpha), содержащего последовательность, кодирующую HBsAg/ayw, слитую с промотором МОХ и геном TRP 3 (фрагмент Г).Example 4. Obtaining a DNA fragment of Pichia angusta (H. polymorpha) containing the sequence encoding HBsAg / ayw, fused with the MOX promoter and the TRP 3 gene (fragment D).
Реакционную смесь (0.05 мл), содержащую олигонуклеотиды moxU5 и trpL3 по 1 мкМ, фрагменты А, Б и В по 1 пг, ThermoPol буфер (10 mM KCI, 20 mM tris-HCI pH 8.8, 10 mM (NH4)2SO4, 2 mM MgSO4 0,1% Triton X-100, 250 uM dNTP) и 5 единиц активности Vent полимеразы инкубируют в течение 30 циклов изменения температуры. Каждый цикл включает инкубацию при 95°С в течение 30 сек, при 50°С 30 сек, при 72°С 3 мин. После этого продукты реакции разделяют электрофоретически в 1% агарозном геле и изолируют фрагмент размером 2,9 тысяч пар оснований. Соответствие выделенного фрагмента нужному размеру определяют также путем электрофореза в 1% агарозном геле, сравнивая его подвижность с подвижностью полос маркеров молекулярного веса.The reaction mixture (0.05 ml) containing 1 μM moxU5 and trpL3 oligonucleotides, 1 pg fragments A, B and C, ThermoPol buffer (10 mM KCI, 20 mM tris-HCI pH 8.8, 10 mM (NH 4 ) 2 SO 4 , 2 mM MgSO 4 0.1% Triton X-100, 250 uM dNTP) and 5 units of Vent polymerase activity are incubated for 30 cycles of temperature change. Each cycle includes incubation at 95 ° C for 30 seconds, at 50 ° C for 30 seconds, at 72 ° C for 3 minutes. After this, the reaction products are separated electrophoretically in a 1% agarose gel and a fragment of 2.9 thousand base pairs is isolated. The correspondence of the selected fragment to the desired size is also determined by electrophoresis in 1% agarose gel, comparing its mobility with the mobility of the molecular weight marker bands.
Пример 5. Интеграция последовательности, кодирующей HBsAg/ayw, в геном Pichia angusta (H. polymorpha).Example 5. Integration of the sequence encoding HBsAg / ayw in the genome of Pichia angusta (H. polymorpha).
Штамм Pichia angusta (H. polymorpha) DLT (Agaphonov et al., 2002; коллекция штаммов лаборатории молекулярной генетики РКН ПК МЗ РФ) выращивают в течение 15-20 часов в среде YNB-D, содержащей триптофан 20 мг/л, при 37°С в условиях интенсивной аэрации. 0,5 мл культуры добавляют к 30 мл такой же среды и инкубируют в тех же условиях в течение 4-х часов. Клетки собирают центрифугированием при 3000 g 5 мин и суспендируют в 15 мл буфера Т (10 mМ tris-HCI pH 7.4; 100 mМ СН3СООLi; 0.5 mМ EDTA). После инкубации в течение 30 мин при 30°С клетки вновь осаждают и суспендируют в 200 мкл буфера Т. К 0,05 мл суспензии добавляют 1 мкг фрагмента Г, перемешивают, добавляют 120 мкл 70% раствора ПЭГ 4000, вновь перемешивают и инкубируют 1 час при 30°С.The strain Pichia angusta (H. polymorpha) DLT (Agaphonov et al., 2002; a collection of strains of the laboratory of molecular genetics of ILV PK MH RF) was grown for 15-20 hours in YNB-D medium containing tryptophan 20 mg / l at 37 ° C in conditions of intensive aeration. 0.5 ml of culture is added to 30 ml of the same medium and incubated under the same conditions for 4 hours. Cells were harvested by centrifugation at 3000 g for 5 min and suspended in 15 ml of T buffer (10 mM tris-HCI pH 7.4; 100 mM CH 3 COOLi; 0.5 mM EDTA). After incubation for 30 min at 30 ° C, the cells are again pelleted and suspended in 200 μl of buffer T. To 0.05 ml of suspension add 1 μg of fragment G, mix, add 120 μl of 70% PEG 4000 solution, mix again and incubate for 1 hour at 30 ° C.
Трансформационную смесь инкубируют при 45°С 15 мин, охлаждают до комнатной температуры и высевают на чашки Петри со средой, содержащей 50 мг/мл лейцина. Выросшие колонии трансформантов проверяют на способность расти на среде, содержащей метанол в качестве единственного источника углерода. Отбирают клоны, неспособные расти на такой среде и проверяют их на способность синтезировать HBsAg/ayw. Полученный штамм дрожжей Pichia angusta (H. polymorpha) является продуцентом поверхностного антигена вируса гепатита В (HBsAg/ayw). Штамм имеет регистрационный номер VKM Y-2924D, 25.02.2003 и депонирован в Институте биохимии и физиологии микроорганизмов РАН им. Г.К.Скрябина.The transformation mixture is incubated at 45 ° C for 15 minutes, cooled to room temperature and plated on Petri dishes with medium containing 50 mg / ml leucine. The grown colonies of transformants are tested for their ability to grow on a medium containing methanol as the sole carbon source. Clones that are unable to grow on such a medium are selected and tested for their ability to synthesize HBsAg / ayw. The resulting strain of Pichia angusta yeast (H. polymorpha) is a producer of hepatitis B virus surface antigen (HBsAg / ayw). The strain has a registration number VKM Y-2924D, 02/25/2003 and deposited at the Institute of Biochemistry and Physiology of Microorganisms RAS named after G.K.Skryabin.
Пример 6. Анализ способности штамма синтезировать HBsAg/ayw. Тестируемый штамм засевают в среду YPD (1% дрожжевого экстракта, 2% пептона и 2% глюкозы) и инкубируют при 37°С в течение 15-20 часов в условиях высокой аэрации. Полученную культуру разводят в пять раз средой YPM (1% дрожжевого экстракта, 2% пептона и 2% метанола) и инкубируют в тех же условиях в течение 30-50 часов. Клетки из 0,5 мл культуры собирают центрифугированием, суспендируют в 0,2 мл дистиллированной воды, добавляют 0,2 мл 0,2 М NaOH и инкубируют на кипящей водяной бане 8 мин. Суспензию центрифугируют 10 мин при 10000 g, после чего супернатант анализируют методом электрофореза и иммуноблоттинга с использованием антител к HBsAg/ayw. В качестве стандарта используют очищенный белок HBsAg/ayw. В дорожках соответствующих штаммам, которые синтезируют HBsAg/ayw, выявляется полоса на уровне 24-27 кДа такая же, как и в случае очищенного белка.Example 6. Analysis of the ability of the strain to synthesize HBsAg / ayw. The test strain is seeded in YPD medium (1% yeast extract, 2% peptone and 2% glucose) and incubated at 37 ° C for 15-20 hours under high aeration conditions. The resulting culture was diluted five times with YPM medium (1% yeast extract, 2% peptone and 2% methanol) and incubated under the same conditions for 30-50 hours. Cells from 0.5 ml of culture are collected by centrifugation, suspended in 0.2 ml of distilled water, 0.2 ml of 0.2 M NaOH are added and incubated in a boiling water bath for 8 minutes. The suspension is centrifuged for 10 min at 10,000 g, after which the supernatant is analyzed by electrophoresis and immunoblotting using antibodies to HBsAg / ayw. As a standard, purified HBsAg / ayw protein is used. In the paths corresponding to the strains that synthesize HBsAg / ayw, the band at 24-27 kDa is the same as in the case of purified protein.
Пример 7. Определение последовательности гена HBsAg/ayw в геноме дрожжей.Example 7. Determination of the sequence of the HBsAg / ayw gene in the yeast genome.
Суспендируют 2-3 мкг клеток анализируемого штамма в 0,1 мл 0,25% раствора додецилсульфата натрия и инкубируют на кипящей водяной бане в течение 5 мин. Клетки осаждают центрифугированием при 10000 g 5 мин. 1 мкл полученного супернатанта добавляют к смеси, содержащей олигонуклеотиды МОХ и TRP по 1 мкМ, ThermoPol буфер (10 mM KCI, 20 mМ tris-HCI рН 8.8, 10 mM (NH4)2SO4, 2 mM MgSO4, 0,1% Triton X-100, 250 uM dNTP) и 5 единиц активности Vent полимеразы. Реакционную смесь инкубируют в течение 30 циклов изменения температуры. Каждый цикл включает инкубацию при 95°С в течение 30 сек, при 50°С 30 сек, при 72°С 2 мин. После этого продукты реакции разделяют электрофоретически в 1% агарозном геле и изолируют фрагмент размером 800 пар оснований. Фрагмент секвенируют с использованием праймеров МОХ и TRP. Совпадение результатов секвенирования с исходной последовательностью показывает отсутствие мутаций в интегрированном в геном дрожжей гене HBsAg/ayw.2-3 μg of the cells of the analyzed strain are suspended in 0.1 ml of a 0.25% sodium dodecyl sulfate solution and incubated in a boiling water bath for 5 minutes. Cells are pelleted by centrifugation at 10,000 g for 5 minutes. 1 μl of the obtained supernatant is added to a mixture containing 1 μM MOX and TRP oligonucleotides, ThermoPol buffer (10 mM KCI, 20 mM tris-HCI pH 8.8, 10 mM (NH 4 ) 2 SO 4 , 2 mM MgSO 4 , 0.1 % Triton X-100, 250 uM dNTP) and 5 units of Vent polymerase activity. The reaction mixture is incubated for 30 cycles of temperature change. Each cycle includes incubation at 95 ° C for 30 seconds, at 50 ° C for 30 seconds, at 72 ° C for 2 minutes. After this, the reaction products are separated electrophoretically in a 1% agarose gel and a fragment of 800 base pairs is isolated. The fragment is sequenced using primers MOX and TRP. The coincidence of the sequencing results with the original sequence shows the absence of mutations in the HBsAg / ayw gene integrated into the yeast genome.
Пример 8. Выделение HBsAg(ayw) из клеток Pichia angusta (H. polymorpha).Example 8. Isolation of HBsAg (ayw) from Pichia angusta (H. polymorpha) cells.
После ферментации исходного штамма дрожжей Pichia angusta (H. polymorpha) HBsAg выделяют согласно общепринятой методике по следующей схеме. Клетки из культуральной жидкости осаждают центрифугированием при 4000 g на центрифуге Beckman. Осажденную биомассу ресуспендируют до концентрации 250 г влажных клеток на 1 литр в буфере экстракции PBS рН 6.8 с добавлением EDTA, PMSF и Tween-20. Далее клетки разрушают в мельнице Dyno-Mill типа KDL, используя стеклянные шары диаметра 0.5-0.7 мм. Основную массу нецелевых белков из полученного гомогенизата осаждают добавлением полиэтиленгликоля (PEG) до концентрации 4.5%. Осажденные белки отделяют центрифугированием. Полученный супернатант фильтруют на ультрафильтрах (500 кДа) Pellicon. При этом отделяются белки с мол. массой меньше 500 килоДальтон, а также удаляется PEG и раствор HBs антигена переводится в буфер PBS рН 6.7. Одновременно происходит концентрированно раствора, что существенно для следующей стадии абсорбции на стекло. Посадку HBsAg на макропористое стекло (МПС) осуществляют в колонках системы StreamLine, разработанной фирмой Pharmacia (Sweden). Для удаления неспецифически связанных белков колонку промывают тем же буфером PBS. Антиген элюируют карбонатным буфером (КБ) рН 9.5. Элюат концентрируют ультрафильтрацией и разделяют при помощи ультрацентрифугирования на зональном роторе (Beckman) в градиенте глицерин / сахароза. Полученные фракции анализируют на содержание HBsAg, используя РОПГА набор и фракции, содержащие антиген, объединяют и очищают гельфильтрацией на сорбенте Toyopearl HW-65 (ToyoSoda Corp., Japan). Чистоту полученного таким образом HBs антигена определяют методом SDS-PAGE. Если чистота продукта недостаточна (<95%), производят дополнительную очистку при помощи ионообменной хроматографии на сорбенте TSK-DEAE (ToyoSoda Corp., Japan). Выход антигена 25-30 мг с 1 л культуральной жидкости.After fermentation of the original strain of yeast Pichia angusta (H. polymorpha) HBsAg is isolated according to the standard method according to the following scheme. Cells from the culture fluid are pelleted by centrifugation at 4000 g in a Beckman centrifuge. The precipitated biomass is resuspended to a concentration of 250 g of wet cells per liter in PBS extraction buffer pH 6.8 with the addition of EDTA, PMSF and Tween-20. Next, the cells are destroyed in a Dyno-Mill mill of the KDL type using glass balls with a diameter of 0.5-0.7 mm. Most of the non-target proteins from the resulting homogenizate are precipitated by the addition of polyethylene glycol (PEG) to a concentration of 4.5%. The precipitated proteins are separated by centrifugation. The resulting supernatant was filtered on Pellicon ultrafilters (500 kDa). In this case, proteins are separated from the pier. weighing less than 500 kiloDaltons, PEG is also removed and the HBs antigen solution is transferred to PBS buffer pH 6.7. At the same time, a concentrated solution occurs, which is essential for the next stage of absorption onto the glass. Planting of HBsAg on macroporous glass (MPS) is carried out in columns of the StreamLine system developed by Pharmacia (Sweden). To remove non-specifically bound proteins, the column is washed with the same PBS buffer. The antigen is eluted with carbonate buffer (KB) pH 9.5. The eluate is concentrated by ultrafiltration and separated by ultracentrifugation on a zonal rotor (Beckman) in a glycerol / sucrose gradient. The obtained fractions were analyzed for HBsAg content using a ROPHA kit and the fractions containing antigen were combined and purified by gel filtration on a Toyopearl HW-65 sorbent (ToyoSoda Corp., Japan). The purity of the thus obtained HBs antigen is determined by SDS-PAGE. If the purity of the product is insufficient (<95%), additional purification is carried out using ion exchange chromatography on a TSK-DEAE sorbent (ToyoSoda Corp., Japan). The output of antigen 25-30 mg with 1 liter of culture fluid.
Полученный раствор HBsAg (ayw) анализируют рядом методов.The resulting HBsAg (ayw) solution was analyzed by a number of methods.
1. Антигенную активность измеряют наборами РОПГА (реакция обратной пассивной гемагглютинации эритроцитов) по методике производителя (НПО “Диагностические Системы”, Нижний Новгород) с использованием в качестве стандарта отраслевого стандартного образца активности HBsAg (ОСО 42-28-153-88), выпускаемого ГИСК им. Л.А.Тарасевича.1. Antigenic activity is measured by ROPGA sets (reverse passive hemagglutination test of red blood cells) according to the manufacturer’s methodology (NPO Diagnostic Systems, Nizhny Novgorod) using the industry standard HBsAg activity standard (OSO 42-28-153-88) manufactured by GISK them. L.A. Tarasevich.
2. Чистота рекомбинантного HBsAg определяется электрофорезом в полиакриламидном геле в восстанавливающих условиях (SDS-PAGE) с окрашиванием серебром и Coomassie Brilliant Blue R-250. Чистота выделенного антигена не <95%.2. The purity of recombinant HBsAg is determined by polyacrylamide gel electrophoresis under reducing conditions (SDS-PAGE) stained with silver and Coomassie Brilliant Blue R-250. The purity of the isolated antigen is not <95%.
3. Иммуноспецифичность антигена определяют методом иммуноблотинга. Первичные антитела для этой цели получали иммунизацией кролей рекомбинантным HBsAg (производства Комбиотех), восстановленным в присутствии 2% SDS и 5% меркаптоэтанола. Иммунными антисыворотками окрашивали иммуноблот с последующей визуализацией при помощи специфических антител к иммуноглобулинам кролей, коньюгированных с пероксидазой хрена, по методике улучшенной хемилюминисценции (ECL) (Amersham, UK). Рекомбинантный HBs антиген (ayw) представлен в виде полосы мономера 24-27 кДа и слабых полос димера и тримера.3. The immunospecificity of the antigen is determined by immunoblotting. Primary antibodies for this purpose were obtained by immunizing rabbits with recombinant HBsAg (manufactured by Combiotech) reconstituted in the presence of 2% SDS and 5% mercaptoethanol. Immunoblot was stained with immune antisera, followed by visualization with specific antibodies to rabbit immunoglobulins conjugated to horseradish peroxidase according to the improved chemiluminescence (ECL) technique (Amersham, UK). Recombinant HBs antigen (ayw) is presented as a 24-27 kDa monomer band and weak dimer and trimer bands.
Получение штамма дрожжей Pichia angusta (H. polymorpha) VKPM Y - 2412, (депонирован в ГНИИ Генетики. - продуцента поверхностного антигена вируса гепатита В (HBsAg/adw) проводят аналогично примерам 1-5 с той лишь разницей, что в работе используют следующие олигонуклеотиды:Obtaining a yeast strain Pichia angusta (H. polymorpha) VKPM Y - 2412, (deposited at the State Research Institute of Genetics. - producer of hepatitis B virus surface antigen (HBsAg / adw) is carried out similarly to examples 1-5 with the only difference that the following oligonucleotides are used in the work :
Выделение HBsAg/adw осуществляют аналогично примеру 8. Анализ выделенного HBsAg/adw проводят методами, описанными для антигена HBsAg/ayw.Isolation of HBsAg / adw is carried out analogously to example 8. Analysis of the isolated HBsAg / adw is carried out by the methods described for the HBsAg / ayw antigen.
Пример 9. Анализ способности штамма синтезировать HBsAg/adw. Тестируемый штамм засевают в среду YPD (1% дрожжевого экстракта, 2% пептона и 2% глюкозы) и инкубируют при 37°С в течение 15-20 часов в условиях высокой аэрации. Полученную культуру разводят в пять раз средой YPM (1% дрожжевого экстракта, 2% пептона и 2% метанола) и инкубируют в тех же условиях в течение 30-50 часов. Клетки из 0,5 мл культуры собирают центрифугированием, суспендируют в 0,2 мл дистиллированной воды, добавляют 0,2 мл 0,2 М NaOH и инкубируют 3-4 мин. Затем клетки осаждают, ресуспендируют в сэмплбуфере и инкубируют на кипящей водяной бане 8 мин. Суспензию центрифугируют 10 мин при 10000 g, после чего супернатант анализируют методом иммуноблоттинга с использованием антител к HBsAg/adw. В качестве стандарта используют очищенный белок HBsAg/adw.Example 9. Analysis of the ability of the strain to synthesize HBsAg / adw. The test strain is seeded in YPD medium (1% yeast extract, 2% peptone and 2% glucose) and incubated at 37 ° C for 15-20 hours under high aeration conditions. The resulting culture was diluted five times with YPM medium (1% yeast extract, 2% peptone and 2% methanol) and incubated under the same conditions for 30-50 hours. Cells from 0.5 ml of culture are collected by centrifugation, suspended in 0.2 ml of distilled water, 0.2 ml of 0.2 M NaOH are added and incubated for 3-4 minutes. The cells are then precipitated, resuspended in a sample buffer and incubated in a boiling water bath for 8 minutes. The suspension is centrifuged for 10 min at 10,000 g, after which the supernatant is analyzed by immunoblotting using antibodies to HBsAg / adw. As a standard, purified HBsAg / adw protein is used.
Пример 10. Определение последовательности гена HBsAg/adw в геноме дрожжей.Example 10. Sequence determination of the HBsAg / adw gene in the yeast genome.
Суспендируют 2-3 мкг клеток анализируемого штамма в 0,1 мл 0,25% раствора додецилсульфата натрия и инкубируют на кипящей водяной бане в течение 5 мин. Клетки осаждают центрифугированием при 10000 g 5 мин. 1 мкл полученного супернатанта добавляют к смеси содержащей олигонуклеотиды МОХ и TRP по 1 мкМ, ThermoPol буфер (10 mM KCI, 20 mМ tris-HCI рН 8.8, 10 mM (NH4)2SO4, 2 mM MgSO4, 0,1% Triton X-100, 250 uM dNTP) и 5 единиц активности Vent полимеразы. Реакционную смесь инкубируют в течение 30 циклов изменения температуры. Каждый цикл включает инкубацию при 95°С в течение 30 сек, при 50°С 30 сек, при 72°С 2 мин. После этого продукты реакции разделяют электрофоретически в 1% агарозном геле и изолируют фрагмент размером 800 пар оснований. Фрагмент секвенируют с использованием праймеров МОХ и TRP и определяют отсутствие мутаций путем сравнения результатов с исходной последовательностью.2-3 μg of the cells of the analyzed strain are suspended in 0.1 ml of a 0.25% sodium dodecyl sulfate solution and incubated in a boiling water bath for 5 minutes. Cells are pelleted by centrifugation at 10,000 g for 5 minutes. 1 μl of the obtained supernatant is added to a mixture of 1 μM MOX and TRP oligonucleotides, ThermoPol buffer (10 mM KCI, 20 mM tris-HCI pH 8.8, 10 mM (NH 4 ) 2 SO 4 , 2 mM MgSO 4 , 0.1% Triton X-100, 250 uM dNTP) and 5 units of Vent polymerase activity. The reaction mixture is incubated for 30 cycles of temperature change. Each cycle includes incubation at 95 ° C for 30 seconds, at 50 ° C for 30 seconds, at 72 ° C for 2 minutes. After this, the reaction products are separated electrophoretically in a 1% agarose gel and a fragment of 800 base pairs is isolated. The fragment is sequenced using primers MOX and TRP and determine the absence of mutations by comparing the results with the original sequence.
Полученные штаммы имеют видовые названия Pichia angusta (Hansenula polymorpha), наименование штаммов VKPM Y - 2412 (HBsAg/adw) и VKM Y-2924D (HBsAg/ayw).The resulting strains have the species names Pichia angusta (Hansenula polymorpha), the names of the strains VKPM Y - 2412 (HBsAg / adw) and VKM Y-2924D (HBsAg / ayw).
Культурально-морфологические особенности штаммов:Cultural and morphological features of the strains:
клетки округлой формы, небольшие по размеру;rounded cells, small in size;
на агаризованной среде YPD образуют крупные круглые колонии с выраженной выпуклой серединой.on agar medium YPD form large round colonies with a pronounced convex middle.
Активность штаммов - не менее 30 мг/л культуральной жидкости.The activity of the strains is not less than 30 mg / l of culture fluid.
Хранение при - 70°С в виде суспензии клеток в стерильном (30-50)%-ном растворе глицерина.Storage at - 70 ° C in the form of a suspension of cells in a sterile (30-50)% glycerol solution.
Генетические особенности:Genetic features:
ауксотроф по лейцину, фаги у дрожжей не обнаружены.auxotroph on leucine, no phages in yeast.
Штаммы не являются зоопатогенными или фитопатогенными.Strains are not zoopathogenic or phytopathogenic.
Способ определения активности: в осветленном гомогенизате клеток методом иммуноферментного анализа.The method for determining the activity: in the clarified cell homogenizate by enzyme immunoassay.
Способ, условия и состав сред для размножения штаммов:The method, conditions and composition of the media for the propagation of strains:
инкубирование прокачиванием при 30°С в питательной среде состава: 2% пептона, 1% дрожжевого экстракта, 2% глюкозы.incubation by pumping at 30 ° C in a nutrient medium composition: 2% peptone, 1% yeast extract, 2% glucose.
Условия и состав среды для ферментации: прокачивание при 29±1°С и рН 5,0-5,5 в среде, содержащей до 10-15% глицерина и соли.Conditions and composition of the fermentation medium: pumping at 29 ± 1 ° С and pH 5.0-5.5 in a medium containing up to 10-15% glycerol and salt.
Выделенные антигены вируса гепатита В серотипов ayw и adw используют для создания на их основе вакцин против гепатита В.Isolated hepatitis B virus antigens of serotypes ayw and adw are used to create hepatitis B vaccines based on them.
При этом получены вакцины в нескольких вариантах:In this case, vaccines were obtained in several versions:
1) в составе композиции содержится антиген серотипа ayw и отсутствует консервант;1) the composition contains the ayw serotype antigen and there is no preservative;
2) в составе композиции содержится антиген серотипа adw и отсутствует консервант;2) the composition contains an adw serotype antigen and there is no preservative;
3) в составе композиции содержится смесь антигенов двух серотипов ayw и adw в равных долях и отсутствует консервант;3) the composition contains a mixture of antigens of two serotypes ayw and adw in equal proportions and there is no preservative;
4) получены варианты композиций, в составе которых могут присутствовать антигены различных серотипов или их смесь с дополнительным включением в составы консерванта - мертиолята.4) received variants of compositions, in the composition of which antigens of various serotypes or their mixture may be present with the additional inclusion of preservative - merthiolate in the compositions.
Конкретные примеры композиций, полученных на основе выделенных антигенов.Specific examples of compositions derived from isolated antigens.
1. Композиция для профилактики вирусного гепатита В содержит:1. The composition for the prevention of viral hepatitis B contains:
20 мкг HBsAg/ayw, полученного путем культивирования штамма дрожжей Pichia angusta (H. Polymorpha) VKM Y-2924D,20 μg of HBsAg / ayw obtained by culturing a strain of the yeast Pichia angusta (H. Polymorpha) VKM Y-2924D,
0,5 мг геля гидроокиси алюминия (в пересчете на Al3+),0.5 mg of aluminum hydroxide gel (in terms of Al 3+ ),
до 1 мл фосфатно-солевого буфера (ФСБ),up to 1 ml of phosphate-buffered saline (FSB),
представленного 50 mM Na - фосфатного буфера, рН 6,8 и 0,13 М NaCl.represented by 50 mM Na - phosphate buffer, pH 6.8 and 0.13 M NaCl.
2. Композиция для профилактики вирусного гепатита В содержит:2. The composition for the prevention of viral hepatitis B contains:
15 мкг HBsAg/adw, полученного путем культивирования штамма дрожжей15 μg HBsAg / adw obtained by culturing a yeast strain
Pichia angusta (H. Polymorpha) VKPM Y - 2412,Pichia angusta (H. Polymorpha) VKPM Y - 2412,
0,3 мг геля гидроокиси алюминия (в пересчете на Al3+),0.3 mg of aluminum hydroxide gel (in terms of Al 3+ ),
до 1 мл - ФСБ (50 mM Na - фосфатный буфер, рН 6,8 и 0.13 М NaCl).up to 1 ml - FSB (50 mM Na - phosphate buffer, pH 6.8 and 0.13 M NaCl).
3. Композиция для профилактики вирусного гепатита В содержит:3. The composition for the prevention of viral hepatitis B contains:
10 мкг HBsAg/ayw, полученного путем культивирования штамма дрожжей10 μg HBsAg / ayw obtained by culturing a yeast strain
Pichia angusta (H. Polymorpha) VKM Y-2924D,Pichia angusta (H. Polymorpha) VKM Y-2924D,
0,5 мг геля гидроокиси алюминия (в пересчете на Al3+),0.5 mg of aluminum hydroxide gel (in terms of Al 3+ ),
до 1 мл - ФСБ (50 mM Na - фосфатный буфер рН 6,8 и 0,13 М NaCl).up to 1 ml - FSB (50 mM Na - phosphate buffer pH 6.8 and 0.13 M NaCl).
4. Композиция для профилактики вирусного гепатита В содержит:4. The composition for the prevention of viral hepatitis B contains:
25 мкг HBsAg/ayw, полученного путем культивирования штамма дрожжей Pichia angusta (H. Polymorpha) VKM Y-2924D,25 μg of HBsAg / ayw obtained by culturing a strain of the yeast Pichia angusta (H. Polymorpha) VKM Y-2924D,
0,6 мг геля гидроокиси алюминия (в пересчете на Al3+),0.6 mg of aluminum hydroxide gel (in terms of Al 3+ ),
70 мкг мертиолята, до 1 мл ФСБ (50 mM Na - фосфатный буфер, рН 6,8 и 0,13 M NaCl).70 μg of merthiolate, up to 1 ml of FSB (50 mM Na - phosphate buffer, pH 6.8 and 0.13 M NaCl).
5. Композиция для профилактики вирусного гепатита В содержит:5. The composition for the prevention of viral hepatitis B contains:
8 мкг HBsAg/adw, полученного путем культивирования штамма дрожжей Pichia angusta (H. polymorpha) VKPM Y - 2412,8 μg of HBsAg / adw obtained by culturing a strain of the yeast Pichia angusta (H. polymorpha) VKPM Y - 2412,
8 мкг HBsAg/ayw, полученного путем культивирования штамма дрожжей8 μg HBsAg / ayw obtained by culturing a yeast strain
Pichia angusta (H. polymorpha) VKM Y-2924D,Pichia angusta (H. polymorpha) VKM Y-2924D,
35 мкг мертиолята,35 mcg thiol,
0,5 мг геля гидроокиси алюминия (в пересчете на Al3+), до 1 мл ФСБ (50 mM Na - фосфатный буфер, рН 6,8 и 0,13 М NaCl)0.5 mg of aluminum hydroxide gel (in terms of Al 3+ ), up to 1 ml of FSB (50 mM Na - phosphate buffer, pH 6.8 and 0.13 M NaCl)
Согласно изобретению композиции на основе выделенных антигенов можно получать как с введением в их состав консерванта - мертиолята, так и без него.According to the invention, compositions based on the isolated antigens can be obtained both with the introduction of the preservative merthiolate and without it.
Отсутствие в составах консерванта не сказывается на качестве получаемых вакцин.The absence of a preservative in the formulations does not affect the quality of the resulting vaccines.
Установлено, что отсутствие в вакцинах химического реагента делает композиции более предпочтительными для введения детскому контингенту, снижая риск возникновения отдельных аллергических реакций.It was established that the absence of a chemical reagent in vaccines makes the compositions more preferable for administration to the children's contingent, reducing the risk of individual allergic reactions.
Для детей готовят вакцины в прививочной дозе 0,5 мл. Содержание ингредиентов в готовых вакцинах может варьировать в следующих пределах (в 1 мл продукта):A vaccine dose of 0.5 ml is prepared for children. The content of ingredients in the finished vaccines can vary within the following limits (in 1 ml of product):
HBsAg 20±5 мкгHBsAg 20 ± 5 mcg
Гидроокись алюминия 0,3-0,6 мг (в пересчете на Al3+)Aluminum hydroxide 0.3-0.6 mg (in terms of Al 3+ )
Мертиолят 30-70 мкгMertiolate 30-70 mcg
Содержание HBsAg в готовых вакцинах определяют методом иммуноферментного анализа с использованием наборов AUSZYME MONOCLONAL (Abbot Diagnostics, Иллинойс, США).The content of HBsAg in the finished vaccines was determined by enzyme-linked immunosorbent assay using AUSZYME MONOCLONAL kits (Abbot Diagnostics, Illinois, USA).
Иммуногенность вакцин в тесте на мышах линии Balb/c с массой 12-14 г составляет 0,05 - 0,1 мкг в расчете на ED 50 (доза вакцины, вызывающая сероконверсию у 50% мышей).The immunogenicity of the vaccines in the test on Balb / c mice weighing 12-14 g is 0.05 - 0.1 μg per ED 50 (the dose of the vaccine that causes seroconversion in 50% of mice).
Известно, что медицинский персонал лечебно-профилактических учреждений относится к категории особого риска заражения, для которой вирусный гепатит В является профессиональным заболеванием, в связи с чем специфическая иммунопрофилактика является необходимой мерой.It is known that medical personnel of medical institutions belong to the category of special risk of infection, for which viral hepatitis B is an occupational disease, and therefore specific immunoprophylaxis is a necessary measure.
По результатам предварительного скрининга маркеры инфицирования вирусом гепатита В отмечаются у значительной части сотрудников стационара, работающих с пациентами, больными гепатитом В: HBsAg - 7,4%; Anti-HBs - 22,6%; Anti-HBc - 37,8%.According to the results of preliminary screening, markers of hepatitis B virus infection are observed in a significant part of hospital staff working with patients with hepatitis B: HBsAg - 7.4%; Anti-HBs - 22.6%; Anti-HBc - 37.8%.
В стационаре за несколько лет иммунизировано 2872 сотрудника, вакцинацию которых вакциной, полученной согласно изобретению, проводили по результатам предварительного скрининга при отсутствии у них маркеров инфицирования вирусом гепатита В в сыворотке крови. Иммунизацию проводили по известной стандартной схеме. (0-1-6 мес). Уровень anti-HBs в сыворотках крови после вакцинации определяли индивидуально методом количественного иммуноферментного анализа, используя наборы “Anti-HBsEIA”, фирмы “Hoffman - La Roche Ltd” (Швейцария) и отраслевой стандартный образец anti-HBs антигена вируса гепатита В (anti-HBsAg) (OCO-42-2815488).In the hospital, for several years, 2872 employees were immunized, the vaccination of which with the vaccine obtained according to the invention was carried out according to the results of preliminary screening in the absence of serum hepatitis B virus infection markers. Immunization was carried out according to the known standard scheme. (0-1-6 months). The level of anti-HBs in blood serum after vaccination was determined individually by the method of quantitative enzyme-linked immunosorbent assay using Anti-HBsEIA kits, manufactured by Hoffman - La Roche Ltd (Switzerland) and an industry standard sample of anti-HBs hepatitis B virus antigen (anti-HBsAg ) (OCO-42-2815488).
По результатам исследований, проведенных через 3 месяца в группе вакцинированных по стандартней схеме, средняя геометрическая титров составила - 1783,5±73,5 ME, т.е. отмечена высокая иммунологическая эффективность.According to the results of studies conducted after 3 months in the group vaccinated according to the standard scheme, the geometric mean titers amounted to 1783.5 ± 73.5 ME, i.e. marked high immunological efficacy.
Частота сероконверсий составляла от 93,8 до 98,5%.The frequency of seroconversions ranged from 93.8 to 98.5%.
Результаты исследований также свидетельствуют, что при анализе поствакцинального ответа подавляющая часть иммунизированных имели уровни специфического иммунитета более 500 МЕ/л - 75,5%.The research results also indicate that in the analysis of the post-vaccination response, the vast majority of the immunized had specific immunity levels of more than 500 IU / L - 75.5%.
В результате проведенной иммунопрофилактики не выявлено в дальнейшем ни одного вновь зарегистрированного случая заболевания или инфицирования вирусом гепатита В сотрудников, получивших курс вакцинации.As a result of the immunization, no further newly registered cases of the disease or infection with hepatitis B virus were detected in the staff who received the vaccination course.
Claims (6)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2003106840/13A RU2238105C1 (en) | 2003-03-14 | 2003-03-14 | Recombinant vaccine for preventing viral hepatitis b (variants) |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2003106840/13A RU2238105C1 (en) | 2003-03-14 | 2003-03-14 | Recombinant vaccine for preventing viral hepatitis b (variants) |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2238105C1 true RU2238105C1 (en) | 2004-10-20 |
| RU2003106840A RU2003106840A (en) | 2004-12-27 |
Family
ID=33537712
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2003106840/13A RU2238105C1 (en) | 2003-03-14 | 2003-03-14 | Recombinant vaccine for preventing viral hepatitis b (variants) |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2238105C1 (en) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2603729C2 (en) * | 2015-04-24 | 2016-11-27 | Закрытое акционерное общество научно-производственная компания "Комбиотех" | Recombinant vaccine for prophylaxis of hepatitis b (versions) |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2080876C1 (en) * | 1989-02-07 | 1997-06-10 | Био-Текнолоджи Дженерал Корп. | Method of preparing hepatitis b surface antigen purified particles, purified particle of human hepatitis b surface antigen and vaccine against hepatitis b |
| RU2088664C1 (en) * | 1996-01-26 | 1997-08-27 | Акционерное общество закрытого типа Научно-производственная компания "Комбиотех Лтд." | Recombinant plasmid dna pdes 20 encoding the surface antigen of hepatitis b virus (hbsag/ayw), the yeast strain saccharomyces cerevisiae containing the recombinant plasmid dna pdes 20 - a producer of the surface antigen of hepatitis b virus (hbsag/ayw) |
| RU2160120C2 (en) * | 1992-05-23 | 2000-12-10 | Смитклайн Бичам Байолоджикалс С.А. | Combined vaccine based on surface hepatitis b virus antigen, method of preparation thereof, and method for preventing hepatitis b infection in man |
-
2003
- 2003-03-14 RU RU2003106840/13A patent/RU2238105C1/en active
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2080876C1 (en) * | 1989-02-07 | 1997-06-10 | Био-Текнолоджи Дженерал Корп. | Method of preparing hepatitis b surface antigen purified particles, purified particle of human hepatitis b surface antigen and vaccine against hepatitis b |
| RU2160120C2 (en) * | 1992-05-23 | 2000-12-10 | Смитклайн Бичам Байолоджикалс С.А. | Combined vaccine based on surface hepatitis b virus antigen, method of preparation thereof, and method for preventing hepatitis b infection in man |
| RU2088664C1 (en) * | 1996-01-26 | 1997-08-27 | Акционерное общество закрытого типа Научно-производственная компания "Комбиотех Лтд." | Recombinant plasmid dna pdes 20 encoding the surface antigen of hepatitis b virus (hbsag/ayw), the yeast strain saccharomyces cerevisiae containing the recombinant plasmid dna pdes 20 - a producer of the surface antigen of hepatitis b virus (hbsag/ayw) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2603729C2 (en) * | 2015-04-24 | 2016-11-27 | Закрытое акционерное общество научно-производственная компания "Комбиотех" | Recombinant vaccine for prophylaxis of hepatitis b (versions) |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN1041326C (en) | Chicken anemia virus vaccine and diagnostic | |
| CN113845576B (en) | Recombinant feline herpesvirus type 1 gB-gD protein and application thereof | |
| CN86102090A (en) | Method for preparing DNA, RNA, peptide, polypeptide or protein by using recombinant DNA technology | |
| CN108329379B (en) | General type/mosaic type virus-like particle of H7 subtype influenza virus H7N9, preparation method, application and vaccine | |
| JPH07501210A (en) | Methods and compositions for useful antigens of Moraxella catarrhalis | |
| CN111925452B (en) | Mycoplasma hyopneumoniae genetic engineering subunit vaccine, and preparation method and application thereof | |
| CN111675758B (en) | Genetic engineering subunit vaccine for resisting sheep echinococcosis infection | |
| CN116199774B (en) | Monoclonal antibody for hepatitis B virus surface antigen mutant strain | |
| RU2238105C1 (en) | Recombinant vaccine for preventing viral hepatitis b (variants) | |
| CN102680699A (en) | ELISA (enzyme-linked immunosorbent assay) detection method for identifying fowl adenovirus group I (FAVI) infection | |
| CN111925424B (en) | Japanese B encephalitis virus genetic engineering subunit vaccine, preparation method and application thereof | |
| RU2445357C1 (en) | Pichia angusta recombinant yeast strain - producer of capsid protein l1 of human papillomavirus type 16 | |
| CN116162141B (en) | A Mycobacterium tuberculosis antigen EPCRA013 and its application | |
| RU2233672C1 (en) | Mixed vaccine for immunoprophylaxis of viral hepatitis b and d, tetanus and diphtheria | |
| RU2230782C1 (en) | Transformed yeast strain pichia angusta as producer of recombinant surface antigen hbsag/ayw of hepatitis b virus | |
| CN112094354B (en) | Acinetobacter paragallinarum genetic engineering subunit vaccine, preparation method and application thereof | |
| CN102286089B (en) | Plasmodium falciparum pfs25 protein mutant and yeast expressing method thereof | |
| RU2235768C1 (en) | Transformed strain of yeast hansenula polymorpha as producer of recombinant surface antigen of hepatitis virus b-hbsag/adw | |
| RU2233673C1 (en) | Mixed vaccine for immunoprophylaxis of whooping cough, diphtheria, tetanus and viral hepatitis b and d | |
| RU2501568C1 (en) | Recombinant vaccine for prevention of viral hepatitis e in animals | |
| RU2603729C2 (en) | Recombinant vaccine for prophylaxis of hepatitis b (versions) | |
| RU2501809C1 (en) | Method for obtaining recombinant core protein of hepatitis e virus and recombinant vaccine for prophylaxis of hepatitis e virus | |
| RU2469741C1 (en) | Polyepitopic anti-hepatitis b vaccine of 4-th generation and method of obtaining it | |
| RU2832292C1 (en) | METHOD FOR PRODUCTION OF SECRETORY RECOMBINANT PROTEIN ORF2 OF PORCINE CIRCOVIRUS OF SECOND TYPE IN YEAST KOMAGATAELLA PHAFFII BG11/pPIC-CV2-7 IN FORM OF VIRUS-LIKE PARTICLES | |
| RU2586511C1 (en) | RECOMBINANT Hansenula polymorpha YEAST STRAIN - PRODUCER OF HEPATITIS B VIRUS SURFACE ANTIGEN SEROTYPE "ayw" |