RU2017121367A - Способы и композиции для нацеленной генетической модификации с использованием парных гидовых рнк - Google Patents
Способы и композиции для нацеленной генетической модификации с использованием парных гидовых рнк Download PDFInfo
- Publication number
- RU2017121367A RU2017121367A RU2017121367A RU2017121367A RU2017121367A RU 2017121367 A RU2017121367 A RU 2017121367A RU 2017121367 A RU2017121367 A RU 2017121367A RU 2017121367 A RU2017121367 A RU 2017121367A RU 2017121367 A RU2017121367 A RU 2017121367A
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- tpn
- cell
- crispr rna
- million
- sequence
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/87—Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation
- C12N15/90—Stable introduction of foreign DNA into chromosome
- C12N15/902—Stable introduction of foreign DNA into chromosome using homologous recombination
- C12N15/907—Stable introduction of foreign DNA into chromosome using homologous recombination in mammalian cells
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K67/00—Rearing or breeding animals, not otherwise provided for; New or modified breeds of animals
- A01K67/027—New or modified breeds of vertebrates
- A01K67/0275—Genetically modified vertebrates, e.g. transgenic
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/10—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
- C12N15/102—Mutagenizing nucleic acids
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
- C12N15/113—Non-coding nucleic acids modulating the expression of genes, e.g. antisense oligonucleotides; Antisense DNA or RNA; Triplex- forming oligonucleotides; Catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes; Nucleic acids used in co-suppression or gene silencing
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
- C12N15/85—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
- C12N15/8509—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells for producing genetically modified animals, e.g. transgenic
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/16—Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1)
- C12N9/22—Ribonucleases [RNase]; Deoxyribonucleases [DNase]
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6813—Hybridisation assays
- C12Q1/6827—Hybridisation assays for detection of mutation or polymorphism
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
- C12Q1/6888—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K2217/00—Genetically modified animals
- A01K2217/07—Animals genetically altered by homologous recombination
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K2227/00—Animals characterised by species
- A01K2227/10—Mammal
- A01K2227/105—Murine
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2310/00—Structure or type of the nucleic acid
- C12N2310/10—Type of nucleic acid
- C12N2310/20—Type of nucleic acid involving clustered regularly interspaced short palindromic repeats [CRISPR]
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2537/00—Reactions characterised by the reaction format or use of a specific feature
- C12Q2537/10—Reactions characterised by the reaction format or use of a specific feature the purpose or use of
- C12Q2537/16—Assays for determining copy number or wherein the copy number is of special importance
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Animal Husbandry (AREA)
- Biodiversity & Conservation Biology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
Claims (179)
1. Способ введения биаллельной модификации в геном в клетке, включающий в себя приведение генома в контакт с:
(a) первым белком Cas;
(b) первой РНК CRISPR, которая гибридизуется с первой последовательностью распознавания РНК CRISPR в пределах целевого геномного локуса;
(c) второй РНК CRISPR, которая гибридизуется со второй последовательностью распознавания РНК CRISPR в пределах целевого геномного локуса;
(d) тракрРНК; и
(e) нацеливающим вектором, содержащим полинуклеотидную вставку, фланкированную 5' гомологичным плечом, гибридизующимся с целевой 5'-последовательностью, и 3' гомологичным плечом,- гибридизующимся с целевой 3'-последовательностью, при условии, что если клетка представляет собой эмбрион на стадии единственной клетки, то нацеливающий вектор имеет длину не более 5 т.п.н.;
причем геном содержит пару из первой и второй гомологичных хромосом, содержащих целевой геномный локус; и
при этом первый белок Cas расщепляет по меньшей мере одну из первой и второй последовательностей распознавания РНК CRISPR с получением по меньшей мере одного двухцепочечного разрыва в по меньшей мере одной из первой и второй гомологичных хромосом.
2. Способ по п. 1, дополнительно включающий в себя идентификацию клетки, содержащей модифицированный геном.
3. Способ по п. 2, в котором полинуклеотидная вставка содержит кассету селекции, примыкающую к первому гомологичному плечу, которое гибридизуется с первой целевой последовательностью,
причем первое гомологичное плечо представляет собой 5' гомологичное плечо, а первая целевая последовательность представляет собой целевую 5'-последовательность, или причем первое гомологичное плечо представляет собой 3' гомологичное плечо, а первая целевая последовательность представляет собой целевую 3'-последовательность,
при этом идентификация включает в себя:
(a) получение ДНК из клетки;
(b) воздействие на ДНК клетки зондом, связывающимся в пределах первой целевой последовательности, зондом, связывающимся в пределах полинуклеотидной вставки, и зондом, связывающимся в пределах эталонного гена, имеющего известное число копий, при этом каждый зонд генерирует обнаруживаемый сигнал при связывании;
(c) обнаружение сигналов, обусловленных связыванием каждого из зондов; и
(d) сравнение сигнала от зонда эталонного гена с сигналом от зонда первой целевой последовательности для определения числа копий первой целевой последовательности и сравнение сигнала от зонда эталонного гена с сигналом от зонда полинуклеотидной вставки для определения числа копий полинуклеотидной вставки,
при этом число копий полинуклеотидной вставки, равное одной или двум, и число копий первой целевой последовательности, равное двум, указывает на нацеленную вставку полинуклеотидной вставки в целевой геномный локус, и
при этом число копий полинуклеотидной вставки, равное одной или более, и число копий первой целевой последовательности, равное трем или более, указывает на случайную вставку полинуклеотидной вставки в геномный локус, отличный от целевого геномного локуса.
4. Способ по любому предшествующему пункту, в котором первый белок Cas расщепляет по меньшей мере одну из первой и второй последовательностей распознавания РНК CRISPR в каждой из первой и второй гомологичных хромосом с получением по меньшей мере одного двухцепочечного разрыва в каждой из первой и второй гомологичных хромосом.
5. Способ по любому предшествующему пункту, в котором первый белок Cas расщепляет первую и вторую последовательности распознавания РНК CRISPR в по меньшей мере одной из первой и второй гомологичных хромосом с получением по меньшей мере двух двухцепочечных разрывов в по меньшей мере одной из первой и второй гомологичных хромосом.
6. Способ по любому предшествующему пункту, дополнительно включающий в себя приведение генома в контакт с:
(f) третьей РНК CRISPR, которая гибридизуется с третьей последовательностью распознавания РНК CRISPR в пределах целевого геномного локуса; и
(g) четвертой РНК CRISPR, которая гибридизуется с четвертой последовательностью распознавания РНК CRISPR в пределах целевого геномного локуса.
7. Способ по п. 6, в котором:
(a) первая последовательность распознавания РНК CRISPR и третья последовательность распознавания РНК CRISPR разделены на расстояние от приблизительно 25 до приблизительно 50 п.н., от приблизительно 50 до приблизительно 100 п.н., от приблизительно 100 до приблизительно 150 п.н., от приблизительно 150 до приблизительно 200 п.н., от приблизительно 200 до приблизительно 250 п.н., от приблизительно 250 до приблизительно 300 п.н., от приблизительно 300 до приблизительно 350 п.н., от приблизительно 350 до приблизительно 400 п.н., от приблизительно 400 до приблизительно 450 п.н., от приблизительно 450 до приблизительно 500 п.н., от приблизительно 500 до приблизительно 600 п.н., от приблизительно 600 до приблизительно 700 п.н., от приблизительно 700 до приблизительно 800 п.н., от приблизительно 800 до приблизительно 900 п.н., от приблизительно 900 п.н. до приблизительно 1 т.п.н., от приблизительно 1 до приблизительно 2 т.п.н., от приблизительно 2 до приблизительно 3 т.п.н., от приблизительно 3 до приблизительно 4 т.п.н., от приблизительно 4 до приблизительно 5 т.п.н., от приблизительно 5 до приблизительно 6 т.п.н., от приблизительно 6 до приблизительно 7 т.п.н., от приблизительно 7 до приблизительно 8 т.п.н., от приблизительно 8 до приблизительно 9 т.п.н., от приблизительно 9 до приблизительно 10 т.п.н., от приблизительно 10 до приблизительно 20 т.п.н., от приблизительно 20 до приблизительно 30 т.п.н., от приблизительно 30 до приблизительно 40 т.п.н., от приблизительно 40 до приблизительно 50 т.п.н., от приблизительно 50 до приблизительно 60 т.п.н., от приблизительно 60 до приблизительно 70 т.п.н., от приблизительно 70 до приблизительно 80 т.п.н., от приблизительно 80 до приблизительно 90 т.п.н. или от приблизительно 90 до приблизительно 100 т.п.н.; и/или
(b) вторая последовательность распознавания РНК CRISPR и четвертая последовательность распознавания РНК CRISPR разделены на расстояние от приблизительно 25 до приблизительно 50 п.н., от приблизительно 50 до приблизительно 100 п.н., от приблизительно 100 до приблизительно 150 п.н., от приблизительно 150 до приблизительно 200 п.н., от приблизительно 200 до приблизительно 250 п.н., от приблизительно 250 до приблизительно 300 п.н., от приблизительно 300 до приблизительно 350 п.н., от приблизительно 350 до приблизительно 400 п.н., от приблизительно 400 до приблизительно 450 п.н., от приблизительно 450 до приблизительно 500 п.н., от приблизительно 500 до приблизительно 600 п.н., от приблизительно 600 до приблизительно 700 п.н., от приблизительно 700 до приблизительно 800 п.н., от приблизительно 800 до приблизительно 900 п.н., от приблизительно 900 п.н. до приблизительно 1 т.п.н., от приблизительно 1 до приблизительно 2 т.п.н., от приблизительно 2 до приблизительно 3 т.п.н., от приблизительно 3 до приблизительно 4 т.п.н., от приблизительно 4 до приблизительно 5 т.п.н., от приблизительно 5 до приблизительно 6 т.п.н., от приблизительно 6 до приблизительно 7 т.п.н., от приблизительно 7 до приблизительно 8 т.п.н., от приблизительно 8 до приблизительно 9 т.п.н., от приблизительно 9 до приблизительно 10 т.п.н., от приблизительно 10 до приблизительно 20 т.п.н., от приблизительно 20 до приблизительно 30 т.п.н., от приблизительно 30 до приблизительно 40 т.п.н., от приблизительно 40 до приблизительно 50 т.п.н., от приблизительно 50 до приблизительно 60 т.п.н., от приблизительно 60 до приблизительно 70 т.п.н., от приблизительно 70 до приблизительно 80 т.п.н., от приблизительно 80 до приблизительно 90 т.п.н. или от приблизительно 90 до приблизительно 100 т.п.н.
8. Способ по п. 6 или 7, в котором первая иФ третья последовательности распознавания РНК CRISPR представляют собой первую пару последовательностей распознавания РНК CRISPR, а вторая и четвертая последовательности распознавания РНК CRISPR представляют собой вторую пару последовательностей распознавания РНК CRISPR, причем первая пара и вторая пара разделены на расстояние от приблизительно 25 до приблизительно 50 п.н., от приблизительно 50 до приблизительно 100 п.н., от приблизительно 100 до приблизительно 150 п.н., от приблизительно 150 до приблизительно 200 п.н., от приблизительно 200 до приблизительно 250 п.н., от приблизительно 250 до приблизительно 300 п.н., от приблизительно 300 до приблизительно 350 п.н., от приблизительно 350 до приблизительно 400 п.н., от приблизительно 400 до приблизительно 450 п.н., от приблизительно 450 до приблизительно 500 п.н., от приблизительно 500 до приблизительно 600 п.н., от приблизительно 600 до приблизительно 700 п.н., от приблизительно 700 до приблизительно 800 п.н., от приблизительно 800 до приблизительно 900 п.н., от приблизительно 900 п.н. до приблизительно 1 т.п.н., от приблизительно 1 до приблизительно 5 т.п.н., от приблизительно 5 до приблизительно 10 т.п.н., от приблизительно 10 до приблизительно 20 т.п.н., от приблизительно 20 до приблизительно 40 т.п.н., от приблизительно 40 до приблизительно 60 т.п.н., от приблизительно 60 до приблизительно 80 т.п.н., от приблизительно 80 до приблизительно 100 т.п.н., от приблизительно 100 до приблизительно 150 т.п.н., от приблизительно 150 до приблизительно 200 т.п.н., от приблизительно 200 до приблизительно 300 т.п.н., от приблизительно 300 до приблизительно 400 т.п.н., от приблизительно 400 до приблизительно 500 т.п.н., от приблизительно 500 т.п.н. до приблизительно 1 млн п.н., от приблизительно 1 до приблизительно 1,5 млн п.н., от приблизительно 1,5 до приблизительно 2 млн п.н., от приблизительно 2 до приблизительно 2,5 млн п.н., от приблизительно 2,5 до приблизительно 3 млн п.н., от приблизительно 3 до приблизительно 4 млн п.н., от приблизительно 4 до приблизительно 5 млн п.н., от приблизительно 5 до приблизительно 10 млн п.н., от приблизительно 10 до приблизительно 20 млн п.н., от приблизительно 20 до приблизительно 30 млн п.н., от приблизительно 30 до приблизительно 40 млн п.н., от приблизительно 40 до приблизительно 50 млн п.н., от приблизительно 50 до приблизительно 60 млн п.н., от приблизительно 60 до приблизительно 70 млн п.н., от приблизительно 70 до приблизительно 80 млн п.н., от приблизительно 80 до приблизительно 90 млн п.н. или от приблизительно 90 до приблизительно 100 млн п.н.
9. Способ по п. 8, в котором первый белок Cas расщепляет по меньшей мере две из первой, второй, третьей и четвертой последовательностей распознавания РНК CRISPR с получением по меньшей мере двух двухцепочечных разрывов в по меньшей мере одной из первой и второй гомологичных хромосом.
10. Способ по п. 9, в котором первый белок Cas расщепляет по меньшей мере две из первой, второй, третьей и четвертой последовательностей распознавания РНК CRISPR с получением по меньшей мере двух двухцепочечных разрывов как в первой, так и во второй гомологичных хромосомах.
11. Способ по любому предшествующему пункту, в котором приведение генома в контакт как с первой, так и со второй РНК CRISPR приводит к повышенной эффективности биаллельной модификации по сравнению с приведением генома в контакт или только с первой РНК CRISPR, или только со второй РНК CRISPR.
12. Способ по любому предшествующему пункту, в котором полинуклеотидную вставку вставляют между целевыми 5'- и 3'-последовательностями.
13. Способ по любому предшествующему пункту, в котором клетка является диплоидной, а биаллельная модификация приводит к гомозиготности, компаунд-гетерозиготности или гемизиготности в целевом геномном локусе.
14. Способ по любому предшествующему пункту, в котором биаллельная модификация включает в себя делецию между первой и второй последовательностями распознавания РНК CRISPR в первой гомологичной хромосоме.
15. Способ по п. 14, в котором биаллельная модификация включает в себя делецию между первой и второй последовательностями распознавания РНК CRISPR как в первой, так и во второй гомологичных хромосомах.
16. Способ по п. 15, в котором биаллельная модификация дополнительно включает в себя вставку полинуклеотидной вставки между целевыми 5'- и 3'-последовательностями как в первой, так и во второй гомологичных хромосомах.
17. Способ по п. 14, в котором биаллельная модификация включает в себя:
(а) делецию между первой и второй последовательностями распознавания РНК CRISPR как в первой, так и во второй гомологичных хромосомах, и вставку полинуклеотидной вставки между целевыми 5'- и 3'-последовательностями в первой гомологичной хромосоме, но не во второй гомологичной хромосоме;
(b) делецию между первой и второй последовательностями распознавания РНК CRISPR в первой гомологичной хромосоме и нарушение локуса между первой и второй последовательностями распознавания РНК CRISPR во второй гомологичной хромосоме;
(c) делецию между первой и второй последовательностями распознавания РНК CRISPR в первой гомологичной хромосоме, вставку полинуклеотидной вставки между целевыми 5'- и 3'-последовательностями в первой гомологичной хромосоме и нарушение локуса между целевыми 5'- и 3'-последовательностями во второй гомологичной хромосоме; или
(d) делецию между первой и второй последовательностями распознавания РНК CRISPR в первой гомологичной хромосоме и вставку полинуклеотидной вставки между целевыми 5'- и 3'-последовательностями в первой гомологичной хромосоме, причем последовательность полинуклеотидной вставки гомологична или ортологична удаленной последовательности.
18. Способ по любому предшествующему пункту, в котором:
(a) каждая из первой и второй последовательностей распознавания РНК CRISPR расположена на расстоянии по меньшей мере 50 п.н., по меньшей мере 100 п.н., по меньшей мере 200 п.н., по меньшей мере 300 п.н., по меньшей мере 400 п.н., по меньшей мере 500 п.н., по меньшей мере 600 п.н., по меньшей мере 700 п.н., по меньшей мере 800 п.н., по меньшей мере 900 п.н., по меньшей мере 1 т.п.н., по меньшей мере 2 т.п.н., по меньшей мере 3 т.п.н., по меньшей мере 4 т.п.н., по меньшей мере 5 т.п.н., по меньшей мере 6 т.п.н., по меньшей мере 7 т.п.н., по меньшей мере 8 т.п.н., по меньшей мере 9 т.п.н., по меньшей мере 10 т.п.н., по меньшей мере 20 т.п.н., по меньшей мере 30 т.п.н., по меньшей мере 40 т.п.н., по меньшей мере 50 т.п.н., по меньшей мере 60 т.п.н., по меньшей мере 70 т.п.н., по меньшей мере 80 т.п.н., по меньшей мере 90 т.п.н. или по меньшей мере 100 т.п.н. как от целевой 5'-последовательности, так и от целевой 3'-последовательности;
(b) каждая из первой и второй последовательностей распознавания РНК CRISPR расположена на расстоянии более, чем 50 п.н., более, чем 100 п.н., более, чем 200 п.н., более, чем 300 п.н., более, чем 400 п.н., более, чем 500 п.н., более, чем 600 п.н., более, чем 700 п.н., более, чем 800 п.н., более, чем 900 п.н., более, чем 1 т.п.н., более, чем 2 т.п.н., более, чем 3 т.п.н., более, чем 4 т.п.н., более, чем 5 т.п.н., более, чем 6 т.п.н., более, чем 7 т.п.н., более, чем 8 т.п.н., более, чем 9 т.п.н., более, чем 10 т.п.н., более, чем 20 т.п.н., более, чем 30 т.п.н., более, чем 40 т.п.н., более, чем 50 т.п.н., более, чем 60 т.п.н., более, чем 70 т.п.н., более, чем 80 т.п.н., более, чем 90 т.п.н. или более, чем 100 т.п.н. как от целевой 5'-последовательности, так и от целевой 3'-последовательности; или
(с) каждая из первой и второй последовательностей распознавания РНК CRISPR расположена на расстоянии от приблизительно 50 до приблизительно 100 п.н., от приблизительно 200 до приблизительно 300 п.н., от приблизительно 300 до приблизительно 400 п.н., от приблизительно 400 до приблизительно 500 п.н., от приблизительно 500 до приблизительно 600 п.н., от приблизительно 600 до приблизительно 700 п.н., от приблизительно 700 до приблизительно 800 п.н., от приблизительно 800 до приблизительно 900 п.н., от приблизительно 900 п.н. до приблизительно 1 т.п.н., от приблизительно 1 до приблизительно 2 т.п.н., от приблизительно 2 до приблизительно 3 т.п.н., от приблизительно 3 до приблизительно 4 т.п.н., от приблизительно 4 до приблизительно 5 т.п.н., от приблизительно 5 до приблизительно 10 т.п.н., от приблизительно 10 до приблизительно 20 т.п.н., от приблизительно 20 до приблизительно 30 т.п.н., от приблизительно 30 до приблизительно 40 т.п.н., от приблизительно 40 до приблизительно 50 т.п.н. или от приблизительно 50 до приблизительно 100 т.п.н. как от целевой 5'-последовательности, так и от целевой 3'-последовательности.
19. Способ по любому предшествующему пункту, в котором:
(а) первая и вторая последовательности распознавания РНК CRISPR разделены на расстояние от приблизительно 1 до приблизительно 5 т.п.н., от приблизительно 5 до приблизительно 10 т.п.н., от приблизительно 10 до приблизительно 20 т.п.н., от приблизительно 20 до приблизительно 40 т.п.н., от приблизительно 40 до приблизительно 60 т.п.н., от приблизительно 60 до приблизительно 80 т.п.н., от приблизительно 80 до приблизительно 100 т.п.н., от приблизительно 100 до приблизительно 150 т.п.н. или от приблизительно 150 до приблизительно 200 т.п.н., от приблизительно 200 до приблизительно 300 т.п.н., от приблизительно 300 до приблизительно 400 т.п.н., от приблизительно 400 до приблизительно 500 т.п.н., от приблизительно 500 т.п.н. до приблизительно 1 млн п.н., от приблизительно 1 до приблизительно 1,5 млн п.н., от приблизительно 1,5 до приблизительно 2 млн п.н., от приблизительно 2 до приблизительно 2,5 млн п.н. или от приблизительно 2,5 до приблизительно 3 млн п.н.;
(b) первая и вторая последовательности распознавания РНК CRISPR разделены на расстояние по меньшей мере 1 т.п.н., по меньшей мере 2 т.п.н., по меньшей мере 3 т.п.н., по меньшей мере 4 т.п.н., по меньшей мере 5 т.п.н., по меньшей мере 10 т.п.н., по меньшей мере 20 т.п.н., по меньшей мере 30 т.п.н., по меньшей мере 40 т.п.н., по меньшей мере 50 т.п.н., по меньшей мере 60 т.п.н., по меньшей мере 70 т.п.н., по меньшей мере 80 т.п.н., по меньшей мере 90 т.п.н., по меньшей мере 100 т.п.н., по меньшей мере 110 т.п.н., по меньшей мере 120 т.п.н., по меньшей мере 130 т.п.н., по меньшей мере 140 т.п.н., по меньшей мере 150 т.п.н., по меньшей мере 160 т.п.н., по меньшей мере 170 т.п.н., по меньшей мере 180 т.п.н., по меньшей мере 190 т.п.н., по меньшей мере 200 т.п.н., по меньшей мере 250 т.п.н., по меньшей мере 300 т.п.н., по меньшей мере 350 т.п.н., по меньшей мере 400 т.п.н., по меньшей мере 450 т.п.н. или по меньшей мере 500 т.п.н.;
(c) первая и вторая последовательности распознавания РНК CRISPR разделены на расстояние от приблизительно 25 до приблизительно 50 п.н., от приблизительно 50 до приблизительно 100 п.н., от приблизительно 100 до приблизительно 150 п.н., от приблизительно 150 до приблизительно 200 п.н., от приблизительно 200 до приблизительно 250 п.н., от приблизительно 250 до приблизительно 300 п.н., от приблизительно 300 до приблизительно 350 п.н., от приблизительно 350 до приблизительно 400 п.н., от приблизительно 400 до приблизительно 450 п.н., от приблизительно 450 до приблизительно 500 п.н., от приблизительно 500 до приблизительно 600 п.н., от приблизительно 600 до приблизительно 700 п.н., от приблизительно 700 до приблизительно 800 п.н., от приблизительно 800 до приблизительно 900 п.н. или от приблизительно 900 п.н. до приблизительно 1 т.п.н.; или
(d) первая и вторая последовательности распознавания РНК CRISPR разделены на расстояние менее, чем 25 п.н., менее, чем 50 п.н., менее, чем 100 п.н., менее, чем 150 п.н., менее, чем 200 п.н., менее, чем 250 п.н., менее, чем 300 п.н., менее, чем 350 п.н., менее, чем 400 п.н., менее, чем 450 п.н., менее, чем 500 п.н., менее, чем 600 п.н., менее, чем 700 п.н., менее, чем 800 п.н., менее, чем 900 п.н., менее, чем 1 т.п.н., менее, чем 2 т.п.н., менее, чем 3 т.п.н., менее, чем 4 т.п.н., менее, чем 5 т.п.н. или менее, чем 10 т.п.н.
20. Способ по любому одному из пп. 14-19, в котором:
(a) удаленная нуклеиновая кислота составляет от приблизительно 5 до приблизительно 10 т.п.н., от приблизительно 10 до приблизительно 20 т.п.н., от приблизительно 20 до приблизительно 40 т.п.н., от приблизительно 40 до приблизительно 60 т.п.н., от приблизительно 60 до приблизительно 80 т.п.н., от приблизительно 80 до приблизительно 100 т.п.н., от приблизительно 100 до приблизительно 150 т.п.н., от приблизительно 150 до приблизительно 200 т.п.н., от приблизительно 200 до приблизительно 300 т.п.н., от приблизительно 300 до приблизительно 400 т.п.н., от приблизительно 400 до приблизительно 500 т.п.н., от приблизительно 500 т.п.н. до приблизительно 1 млн п.н., от приблизительно 1 до приблизительно 1,5 млн п.н., от приблизительно 1,5 до приблизительно 2 млн п.н., от приблизительно 2 до приблизительно 2,5 млн п.н. или от приблизительно 2,5 до приблизительно 3 млн п.н.; или
(b) удаленная нуклеиновая кислота составляет по меньшей мере 20 т.п.н., по меньшей мере 30 т.п.н., по меньшей мере 40 т.п.н., по меньшей мере 50 т.п.н., по меньшей мере 60 т.п.н., по меньшей мере 70 т.п.н., по меньшей мере 80 т.п.н., по меньшей мере 90 т.п.н., по меньшей мере 100 т.п.н., по меньшей мере 110 т.п.н., по меньшей мере 120 т.п.н., по меньшей мере 130 т.п.н., по меньшей мере 140 т.п.н., по меньшей мере 150 т.п.н., по меньшей мере 160 т.п.н., по меньшей мере 170 т.п.н., по меньшей мере 180 т.п.н., по меньшей мере 190 т.п.н., по меньшей мере 200 т.п.н., по меньшей мере 250 т.п.н., по меньшей мере 300 т.п.н., по меньшей мере 350 т.п.н., по меньшей мере 400 т.п.н., по меньшей мере 450 т.п.н. или по меньшей мере 500 т.п.н.; или
(c) удаленная нуклеиновая кислота составляет по меньшей мере 550 т.п.н., по меньшей мере 600 т.п.н., по меньшей мере 650 т.п.н., по меньшей мере 700 т.п.н., по меньшей мере 750 т.п.н., по меньшей мере 800 т.п.н., по меньшей мере 850 т.п.н., по меньшей мере 900 т.п.н., по меньшей мере 950 т.п.н., по меньшей мере 1 млн п.н., по меньшей мере 1,5 млн п.н. или по меньшей мере 2 млн п.н.
21. Способ по любому предшествующему пункту, в котором целевые 5'- и 3'-последовательности находятся в пределах целевого геномного локуса.
22. Способ по любому предшествующему пункту, в котором нацеливающий вектор имеет линейную форму.
23. Способ по любому предшествующему пункту, в котором нацеливающий вектор является одноцепочечным или двухцепочечным.
24. Способ по любому предшествующему пункту, в котором клетка представляет собой эукариотическую клетку.
25. Способ по п. 24, в котором эукариотическая клетка представляет собой клетку млекопитающего, человеческую клетку, нечеловеческую клетку, клетку грызуна, мышиную клетку, крысиную клетку, плюрипотентную клетку, неплюрипотентную клетку, нечеловеческую плюрипотентную клетку, человеческую плюрипотентную клетку, плюрипотентную клетку грызуна, мышиную плюрипотентную клетку, крысиную плюрипотентную клетку, мышиную эмбриональную стволовую (ЭС) клетку, крысиную ЭС-клетку, человеческую ЭС-клетку, стволовую клетку взрослого человека, ограниченную в развитии человеческую клетку-предшественник, человеческую индуцированную плюрипотентную стволовую клетку (ИПС) или эмбрион на стадии единственной клетки.
26. Способ по п. 25, в котором клетка представляет собой эмбрион на стадии единственной клетки и в котором:
(a) нацеливающий вектор имеет длину от приблизительно 50 нуклеотидов до приблизительно 5 т.п.н.; или
(b) нацеливающий вектор представляет собой одноцепочечную ДНК и имеет длину от приблизительно 60 до приблизительно 200 нуклеотидов.
27. Способ по п. 25, в котором клетка не является эмбрионом на стадии единственной клетки и в котором:
(а) нацеливающий вектор представляет собой большой нацеливающий вектор (LTVEC) длиной по меньшей мере 10 т.п.н.; или
(b) нацеливающий вектор представляет собой большой нацеливающий вектор (LTVEC), в котором общая длина 5' и 3' гомологичных плеч LTVEC составляет по меньшей мере 10 т.п.н.
28. Способ по п. 27, в котором:
(a) LTVEC составляет от приблизительно 50 до приблизительно 300 т.п.н., от приблизительно 50 до приблизительно 75 т.п.н., от приблизительно 75 до приблизительно 100 т.п.н., от приблизительно 100 до приблизительно 125 т.п.н., от приблизительно 125 до приблизительно 150 т.п.н., от приблизительно 150 до приблизительно 175 т.п.н., от приблизительно 175 до приблизительно 200 т.п.н., от приблизительно 200 до приблизительно 225 т.п.н., от приблизительно 225 до приблизительно 250 т.п.н., от приблизительно 250 до приблизительно 275 т.п.н. или от приблизительно 275 до приблизительно 300 т.п.н.; или
(b) общая длина 5' и 3' гомологичных плеч LTVEC составляет от приблизительно 10 до приблизительно 20 т.п.н., от приблизительно 20 до приблизительно 30 т.п.н., от приблизительно 30 до приблизительно 40 т.п.н., от приблизительно 40 до приблизительно 50 т.п.н., от приблизительно 50 до приблизительно 60 т.п.н., от приблизительно 60 до приблизительно 70 т.п.н., от приблизительно 70 до приблизительно 80 т.п.н., от приблизительно 80 до приблизительно 90 т.п.н., от приблизительно 90 до приблизительно 100 т.п.н., от приблизительно 100 до приблизительно 110 т.п.н., от приблизительно 110 до приблизительно 120 т.п.н., от приблизительно 120 до приблизительно 130 т.п.н., от приблизительно 130 до приблизительно 140 т.п.н., от приблизительно 140 до приблизительно 150 т.п.н., от приблизительно 150 до приблизительно 160 т.п.н., от приблизительно 160 до приблизительно 170 т.п.н., от приблизительно 170 до приблизительно 180 т.п.н., от приблизительно 180 до приблизительно 190 т.п.н. или от приблизительно 190 до приблизительно 200 т.п.н.
29. Способ по любому одному из пп. 1-3, в котором клетка не является эмбрионом на стадии единственной клетки,
причем нацеливающий вектор представляет собой большой нацеливающий вектор (LTVEC), при этом общая сумма длин 5' и 3' гомологичных плеч составляет по меньшей мере 10 т.п.н.;
при этом каждая из первой и второй последовательностей распознавания РНК CRISPR расположена на расстоянии более, чем 200 п.н., более, чем 300 п.н., более, чем 400 п.н., более, чем 500 п.н., более, чем 600 п.н., более, чем 700 п.н., более, чем 800 п.н., более, чем 900 п.н., более, чем 1 т.п.н., более, чем 2 т.п.н., более, чем 3 т.п.н., более, чем 4 т.п.н., более, чем 5 т.п.н., более, чем 6 т.п.н., более, чем 7 т.п.н., более, чем 8 т.п.н., более, чем 9 т.п.н., более, чем 10 т.п.н., более, чем 20 т.п.н., более, чем 30 т.п.н., более, чем 40 т.п.н., более, чем 50 т.п.н., более, чем 60 т.п.н., более, чем 70 т.п.н., более, чем 80 т.п.н., более, чем 90 т.п.н. или более, чем 100 т.п.н. как от целевой 5'-последовательности, так и от целевой 3'-последовательности;
при этом первый белок Cas расщепляет первую и вторую последовательности распознавания РНК CRISPR в по меньшей мере одной из первой и второй гомологичных хромосом с получением по меньшей мере двух двухцепочечных разрывов в по меньшей мере одной из первой и второй гомологичных хромосом; и
при этом биаллельная модификация включает в себя делецию между первой и второй последовательностями распознавания РНК CRISPR в первой гомологичной хромосоме и вставку полинуклеотидной вставки между целевыми 5'- и 3'-последовательностями в первой гомологичной хромосоме, при этом последовательность полинуклеотидной вставки гомологична или ортологична удаленной последовательности.
30. Способ модификации генома в клетке, являющейся гетерозиготной по первому аллелю, включающий в себя приведение генома в контакт с:
(a) первым белком Cas;
(b) тракрРНК; и
(c) первой РНК CRISPR, которая гибридизуется с первой не аллель-специфической последовательностью распознавания РНК CRISPR, причем первый аллель находится на первой гомологичной хромосоме, а последовательность распознавания РНК CRISPR расположена в центромерном направлении от локуса, соответствующего первому аллелю на второй гомологичной хромосоме; и
при этом первый белок Cas расщепляет первую последовательность распознавания РНК CRISPR с получением двухцепочечного разрыва, а клетку модифицируют так, чтобы она стала гомозиготной по первому аллелю.
31. Способ по п. 30, дополнительно включающий в себя приведение генома в контакт со второй РНК CRISPR, гибридизующейся со второй не аллель-специфической последовательностью распознавания РНК CRISPR в центромерном направлении от локуса, соответствующего первому аллелю на второй гомологичной хромосоме,
при этом первый белок Cas расщепляет по меньшей мере одну из первой и второй последовательностей распознавания РНК CRISPR с получением по меньшей мере одного двухцепочечного разрыва.
32. Способ по п. 31, в котором первый белок Cas расщепляет первую последовательность распознавания РНК CRISPR и вторую последовательность распознавания РНК CRISPR.
33. Способ по любому одному из пп. 30-32, в котором потеря гетерозиготности происходит в теломерном направлении от двухцепочечного разрыва.
34. Способ по любому одному из пп. 31-33, в котором первая и вторая последовательности распознавания РНК CRISPR расположены на второй гомологичной хромосоме, но не на первой гомологичной хромосоме.
35. Способ по любому одному из пп. 30-34, в котором первый сайт распознавания РНК CRISPR находится на расстоянии от приблизительно 100 п.н. до приблизительно 1 т.п.н., от приблизительно 1 до приблизительно 10 т.п.н., от приблизительно 10 до приблизительно 100 т.п.н., от приблизительно 100 т.п.н. до приблизительно 1 млн п.н., от приблизительно 1 до приблизительно 10 млн п.н., от приблизительно 10 до приблизительно 20 млн п.н., от приблизительно 20 до приблизительно 30 млн п.н., от приблизительно 30 до приблизительно 40 млн п.н., от приблизительно 40 до приблизительно 50 млн п.н., от приблизительно 50 до приблизительно 60 млн п.н., от приблизительно 60 до приблизительно 70 млн п.н., от приблизительно 70 до приблизительно 80 млн п.н., от приблизительно 80 до приблизительно 90 млн п.н. или от приблизительно 90 до приблизительно 100 млн п.н. от центромеры.
36. Способ по любому одному из пп. 30-35, в котором первый аллель находится на расстоянии от приблизительно 100 п.н. до приблизительно 1 т.п.н., от приблизительно 1 до приблизительно 10 т.п.н., от приблизительно 10 до приблизительно 100 т.п.н., от приблизительно 100 т.п.н. до приблизительно 1 млн п.н., от приблизительно 1 до приблизительно 10 млн п.н., от приблизительно 10 до приблизительно 20 млн п.н., от приблизительно 20 до приблизительно 30 млн п.н., от приблизительно 30 до приблизительно 40 млн п.н., от приблизительно 40 до приблизительно 50 млн п.н., от приблизительно 50 до приблизительно 60 млн п.н., от приблизительно 60 до приблизительно 70 млн п.н., от приблизительно 70 до приблизительно 80 млн п.н., от приблизительно 80 до приблизительно 90 млн п.н. или от приблизительно 90 до приблизительно 100 млн п.н. от первого сайта распознавания РНК CRISPR.
37. Способ по любому одному из пп. 30-36, в котором область второй гомологичной хромосомы, заменяемая при потере гетерозиготности, составляет от приблизительно 100 п.н. до приблизительно 1 т.п.н., от приблизительно 1 до приблизительно 10 т.п.н., от приблизительно 10 до приблизительно 100 т.п.н., от приблизительно 100 т.п.н. до приблизительно 1 млн п.н., от приблизительно 1 до приблизительно 10 млн п.н., от приблизительно 10 до приблизительно 20 млн п.н., от приблизительно 20 до приблизительно 30 млн п.н., от приблизительно 30 до приблизительно 40 млн п.н., от приблизительно 40 до приблизительно 50 млн п.н., от приблизительно 50 до приблизительно 60 млн п.н., от приблизительно 60 до приблизительно 70 млн п.н., от приблизительно 70 до приблизительно 80 млн п.н., от приблизительно 80 до приблизительно 90 млн п.н. или от приблизительно 90 до приблизительно 100 млн п.н.
38. Способ по любому одному из пп. 30-37, в котором:
(a) первый аллель содержит мутацию; или
(b) первый аллель представляет собой аллель дикого типа, а соответствующий локус на второй гомологичной хромосоме содержит мутацию.
39. Способ по п. 38, в котором первый аллель содержит мутацию, причем мутация представляет собой нацеленную модификацию.
40. Способ модификации генома в клетке, являющейся гетерозиготной по первому аллелю, включающий в себя приведение генома в контакт с:
(a) первым белком Cas;
(b) тракрРНК;
(c) первой РНК CRISPR, которая гибридизуется с первой последовательностью распознавания РНК CRISPR в пределах второго аллеля, причем первый аллель находится на первой гомологичной хромосоме, а второй аллель находится в соответствующем локусе на второй гомологичной хромосоме; и
(d) второй РНК CRISPR, которая гибридизуется со второй последовательностью распознавания РНК CRISPR в пределах второго аллеля;
при этом первый белок Cas расщепляет по меньшей мере одну из первой и второй последовательностей распознавания РНК CRISPR с получением по меньшей мере одного двухцепочечного разрыва и концевых последовательностей, подвергающихся рекомбинации, при этом рекомбинация осуществляется между первым и вторым аллелями с получением модифицированного генома, гомозиготного по первому аллелю.
41. Способ по п. 40, в котором первый белок Cas расщепляет первую последовательность распознавания РНК CRISPR и вторую последовательность распознавания РНК CRISPR.
42. Способ по п. 40 или 41, в котором первая и вторая последовательности распознавания РНК CRISPR расположены в пределах второго аллеля, но не первого аллеля.
43. Способ по любому одному из пп. 40-42, в котором:
(а) первая и вторая последовательности распознавания РНК CRISPR разделены на расстояние от приблизительно 1 до приблизительно 5 т.п.н., от приблизительно 5 до приблизительно 10 т.п.н., от приблизительно 10 до приблизительно 20 т.п.н., от приблизительно 20 до приблизительно 40 т.п.н., от приблизительно 40 до приблизительно 60 т.п.н., от приблизительно 60 до приблизительно 80 т.п.н., от приблизительно 80 до приблизительно 100 т.п.н., от приблизительно 100 до приблизительно 150 т.п.н. или от приблизительно 150 до приблизительно 200 т.п.н., от приблизительно 200 до приблизительно 300 т.п.н., от приблизительно 300 до приблизительно 400 т.п.н., от приблизительно 400 до приблизительно 500 т.п.н., от приблизительно 500 т.п.н. до приблизительно 1 млн п.н., от приблизительно 1 до приблизительно 1,5 млн п.н., от приблизительно 1,5 до приблизительно 2 млн п.н., от приблизительно 2 до приблизительно 2,5 млн п.н. или от приблизительно 2,5 до приблизительно 3 млн п.н.; или
(b) первая и вторая последовательности распознавания РНК CRISPR разделены на расстояние по меньшей мере 1 т.п.н., по меньшей мере 2 т.п.н., по меньшей мере 3 т.п.н., по меньшей мере 4 т.п.н., по меньшей мере 5 т.п.н., по меньшей мере 10 т.п.н., по меньшей мере 20 т.п.н., по меньшей мере 30 т.п.н., по меньшей мере 40 т.п.н., по меньшей мере 50 т.п.н., по меньшей мере 60 т.п.н., по меньшей мере 70 т.п.н., по меньшей мере 80 т.п.н., по меньшей мере 90 т.п.н., по меньшей мере 100 т.п.н., по меньшей мере 110 т.п.н., по меньшей мере 120 т.п.н., по меньшей мере 130 т.п.н., по меньшей мере 140 т.п.н., по меньшей мере 150 т.п.н., по меньшей мере 160 т.п.н., по меньшей мере 170 т.п.н., по меньшей мере 180 т.п.н., по меньшей мере 190 т.п.н., по меньшей мере 200 т.п.н., по меньшей мере 250 т.п.н., по меньшей мере 300 т.п.н., по меньшей мере 350 т.п.н., по меньшей мере 400 т.п.н., по меньшей мере 450 т.п.н. или по меньшей мере 500 т.п.н.
44. Способ по любому одному из пп. 40-43, в котором:
(а) различия в последовательностях между первым аллелем и вторым аллелем охватывают от приблизительно 100 до приблизительно 200 п.н., от приблизительно 200 до приблизительно 400 п.н., от приблизительно 400 до приблизительно 600 п.н., от приблизительно 600 до приблизительно 800 п.н., от приблизительно 800 п.н. до приблизительно 1 т.п.н., от приблизительно 1 до приблизительно 2 т.п.н., от приблизительно 2 до приблизительно 3 т.п.н., от приблизительно 4 до приблизительно 5 т.п.н., от приблизительно 5 до приблизительно 10 т.п.н., от приблизительно 10 до приблизительно 20 т.п.н., от приблизительно 20 до приблизительно 40 т.п.н., от приблизительно 40 до приблизительно 60 т.п.н., от приблизительно 60 до приблизительно 80 т.п.н., от приблизительно 80 до приблизительно 100 т.п.н., от приблизительно 100 до приблизительно 150 т.п.н., от приблизительно 150 до приблизительно 200 т.п.н., от приблизительно 200 до приблизительно 300 т.п.н., от приблизительно 300 до приблизительно 400 т.п.н., от приблизительно 400 до приблизительно 500 т.п.н., от приблизительно 500 т.п.н. до приблизительно 1 млн п.н., от приблизительно 1 до приблизительно 1,5 млн п.н., от приблизительно 1,5 до приблизительно 2 млн п.н., от приблизительно 2 до приблизительно 2,5 млн п.н. или от приблизительно 2,5 до приблизительно 3 млн п.н; или
(b) различия в последовательностях между первым аллелем и вторым аллелем охватывают по меньшей мере 100 п.н., по меньшей мере 200 п.н., по меньшей мере 300 п.н., по меньшей мере 400 п.н., по меньшей мере 500 п.н., по меньшей мере 600 п.н., по меньшей мере 700 п.н., по меньшей мере 800 п.н., по меньшей мере 800 п.н., по меньшей мере 1 т.п.н., по меньшей мере 2 т.п.н., по меньшей мере 3 т.п.н., по меньшей мере 4 т.п.н., по меньшей мере 5 т.п.н., по меньшей мере 6 т.п.н., по меньшей мере 7 т.п.н., по меньшей мере 8 т.п.н., по меньшей мере 9 т.п.н., по меньшей мере 10 т.п.н., 20 т.п.н., по меньшей мере 30 т.п.н., по меньшей мере 40 т.п.н., по меньшей мере 50 т.п.н., по меньшей мере 60 т.п.н., по меньшей мере 70 т.п.н., по меньшей мере 80 т.п.н., по меньшей мере 90 т.п.н., по меньшей мере 100 т.п.н., по меньшей мере 110 т.п.н., по меньшей мере 120 т.п.н., по меньшей мере 130 т.п.н., по меньшей мере 140 т.п.н., по меньшей мере 150 т.п.н., по меньшей мере 160 т.п.н., по меньшей мере 170 т.п.н., по меньшей мере 180 т.п.н., по меньшей мере 190 т.п.н., по меньшей мере 200 т.п.н., по меньшей мере 250 т.п.н., по меньшей мере 300 т.п.н., по меньшей мере 350 т.п.н., по меньшей мере 400 т.п.н., по меньшей мере 450 т.п.н. или по меньшей мере 500 т.п.н.
45. Способ по любому одному из пп. 40-44, в котором:
(a) первый аллель содержит нацеленную модификацию, а второй аллель представляет собой аллель дикого типа; или
(b) первый аллель представляет собой аллель дикого типа, а второй аллель содержит вызывающую заболевание мутацию.
46. Способ по любому одному из пп. 40-45, в котором рекомбинация включает в себя генную конверсию или потерю гетерозиготности (LOH).
47. Способ по любому одному из пп. 30-46, дополнительно включающий в себя идентификацию клетки, гомозиготной по первому аллелю.
48. Способ по любому одному из пп. 30-47, в котором белок Cas и первая РНК CRISPR в природе вместе не встречаются.
49. Способ по любому одному из пп. 30-48, в котором клетка представляет собой эукариотическую клетку.
50. Способ по п. 49, в котором эукариотическая клетка представляет собой клетку млекопитающего, человеческую клетку, нечеловеческую клетку, клетку грызуна, мышиную клетку, крысиную клетку, плюрипотентную клетку, неплюрипотентную клетку, нечеловеческую плюрипотентную клетку, человеческую плюрипотентную клетку, плюрипотентную клетку грызуна, мышиную плюрипотентную клетку, крысиную плюрипотентную клетку, мышиную эмбриональную стволовую (ЭС) клетку, крысиную ЭС-клетку, человеческую ЭС-клетку, стволовую клетку взрослого человека, ограниченную в развитии человеческую клетку-предшественник, человеческую индуцированную плюрипотентную стволовую клетку (ИПС) или эмбрион на стадии единственной клетки.
51. Способ по любому предшествующему пункту, в котором первый белок Cas представляет собой Cas9.
52. Способ по любому предшествующему пункту, в котором первый белок Cas имеет нуклеазную активность в отношении обеих цепей двухцепочечной ДНК.
53. Способ по любому одному из пп. 1-51, в котором первый белок Cas представляет собой никазу.
54. Способ по любому одному из пп. 1-39 и 41-53, в котором первый белок Cas представляет собой никазу, и причем способ дополнительно включает в себя приведение генома в контакт с:
(f) вторым белком Cas, представляющим собой никазу;
(g) третьей РНК CRISPR, гибридизующейся с третьей последовательностью распознавания РНК CRISPR; и
(h) четвертой РНК CRISPR, гибридизующейся с четвертой последовательностью распознавания РНК CRISPR;
при этом первый белок Cas расщепляет первую цепь геномной ДНК в пределах первой последовательности распознавания РНК CRISPR и в пределах второй последовательности распознавания РНК CRISPR, а второй белок Cas расщепляет вторую цепь геномной ДНК в пределах третьей последовательности распознавания РНК CRISPR и в пределах четвертой последовательности распознавания РНК CRISPR.
55. Способ по любому одному из пп. 1-29 и 31-54, в котором:
(a) первая РНК CRISPR и тракрРНК слиты вместе в первую гидовую РНК (гРНК) и/или вторая РНК CRISPR и тракрРНК слиты вместе во вторую гРНК; или
(b) первая РНК CRISPR и тракрРНК представляют собой отдельные молекулы РНК и/или вторая РНК CRISPR и тракрРНК представляют собой отдельные молекулы РНК.
56. Способ по любому предшествующему пункту, в котором приведение в контакт включает в себя введение первого белка Cas, первой и второй РНК CRISP и тракрРНК в клетку.
57. Способ по п. 56, в котором:
(a) первый белок Cas вводят в клетку в виде белка, матричной РНК (мРНК), кодирующей первый белок Cas, или ДНК, кодирующей первый белок Cas;
(b) первую РНК CRISPR вводят в клетку в виде РНК или в виде ДНК, кодирующей первую РНК CRISPR;
(c) вторую РНК CRISPR вводят в клетку в виде РНК или в виде ДНК, кодирующей вторую РНК CRISPR; и/или
(d) тракрРНК вводят в клетку в виде РНК или в виде ДНК, кодирующей тракрРНК.
58. Способ по п. 57, в котором первый белок Cas, первую РНК CRISPR и тракрРНК вводят в клетку в виде первого комплекса белок-РНК и/или первый белок Cas, вторую РНК CRISPR и тракрРНК вводят в клетку в виде второго комплекса белок-РНК.
59. Способ по п. 57, в котором:
(а) ДНК, кодирующая первый белок Cas, функционально связана с первым промотором в первом экспрессионном конструкте;
(b) ДНК, кодирующая первую РНК CRISPR, функционально связана со вторым промотором во втором экспрессионном конструкте;
(c) ДНК, кодирующая вторую РНК CRISPR, функционально связана с третьим промотором в третьем экспрессионном конструкте; и/или
(d) ДНК, кодирующая тракрРНК, функционально связана с четвертым промотором в четвертом экспрессионном конструкте;
причем первый, второй, третий и четвертый промоторы активны в клетке.
60. Способ по п. 59, в котором первый, второй, третий и/или четвертый экспрессионные конструкты являются компонентами одной молекулы нуклеиновой кислоты.
61. Способ по п. 57, в котором:
(a) ДНК, кодирующая первый белок Cas, функционально связана с первым промотором в первом экспрессионном конструкте;
(b) молекулы ДНК, кодирующие первую РНК CRISPR и тракрРНК, слиты вместе в ДНК, кодирующую первую гидовую РНК (гРНК), и функционально связаны со вторым промотором во втором экспрессионном конструкте; и/или
(c) молекулы ДНК, кодирующие вторую РНК CRISPR и тракрРНК, слиты вместе в ДНК, кодирующую вторую гРНК, и функционально связаны с третьим промотором в третьем экспрессионном конструкте;
причем первый, второй и третий промоторы активны в клетке.
62. Способ по п. 61, в котором первый, второй и/или третий экспрессионные конструкты являются компонентами одной молекулы нуклеиновой кислоты.
63. Способ по любому предшествующему пункту, в котором клетка модифицирована для снижения негомологичного соединения концов (NHEJ) и/или для повышения генной конверсии или направляемой гомологией репарации (HDR).
64. Способ по п. 63, в котором клетка модифицирована для снижения экспрессии или активности одной или более из следующего: DNA-PK, PARP1 и лигазы IV.
65. Способ по п. 64, в котором снижение экспрессии или активности является индуцируемым, обратимым, время-специфическим и/или пространственно-специфическим.
66. Способ получения не относящихся к человеку животных поколения F0, включающий в себя:
(a) введение нечеловеческой ЭС-клетки в нечеловеческий эмбрион-хозяин, причем нечеловеческая ЭС-клетка получена способом по любому одному из пп. 1-25 и 27-65; и
(b) вынашивание нечеловеческого эмбриона-хозяина в теле суррогатной матери;
при этом суррогатная мать дает потомство не относящегося к человеку животного поколения F0, имеющее биаллельную модификацию.
67. Способ получения не относящегося к человеку животного поколения F0, включающий в себя имплантацию генетически модифицированного эмбриона на стадии единственной клетки, полученного способом по любому одному из пп. 1-26 и 30-65, в тело суррогатной матери;
при этом суррогатная мать дает потомство не относящегося к человеку животного поколения F0, имеющее биаллельную модификацию.
68. Способ по п. 66 или 67, в котором не относящееся к человеку животное представляет собой мышь или крысу.
69. Способ идентификации нацеленной вставки полинуклеотидной вставки в целевой геномный локус в диплоидной клетке, не являющейся эмбрионом на стадии единственной клетки, включающий в себя:
(a) получение ДНК из клетки, причем клетку приводили в контакт с большим нацеливающим вектором (LTVEC), содержащим полинуклеотидную вставку, фланкированную первым гомологичным плечом, гибридизующимся с первой целевой последовательностью, и вторым гомологичным плечом, гибридизующимся со второй целевой последовательностью, при этом полинуклеотидная вставка содержит кассету селекции, прилегающую к первому гомологичному плечу;
(b) воздействие на ДНК клетки зондом, связывающимся в пределах первой целевой последовательности, зондом, связывающимся в пределах полинуклеотидной вставки, и зондом, связывающимся в пределах эталонного гена, имеющего известное число копий, при этом каждый зонд генерирует обнаруживаемый сигнал при связывании;
(c) обнаружение сигналов, обусловленных связыванием каждого из зондов; и
(d) сравнение сигнала от зонда эталонного гена с сигналом от зонда первой целевой последовательности для определения числа копий первой целевой последовательности и сравнение сигнала от зонда эталонного гена с сигналом от зонда полинуклеотидной вставки для определения числа копий полинуклеотидной вставки,
при этом число копий полинуклеотидной вставки, равное одной или двум, и число копий первой целевой последовательности, равное двум, указывает на нацеленную вставку полинуклеотидной вставки в целевой геномный локус, и
при этом число копий полинуклеотидной вставки, равное одной или более, и число копий первой целевой последовательности, равное трем или более, указывает на случайную вставку полинуклеотидной вставки в геномный локус, отличный от целевого геномного локуса.
70. Способ по п. 69, в котором сигнал, обусловленный связыванием зонда первой целевой последовательности, используют для определения значения порогового цикла (Ct) для первой целевой последовательности, а сигнал, обусловленный связыванием зонда эталонного гена, используют для определения значения порогового цикла (Ct) для эталонного гена, и число копий первой целевой последовательности определяют путем сравнения значения Ct первой целевой последовательности и значения Ct эталонного гена, и
при этом сигнал, обусловленный связыванием зонда полинуклеотидной вставки, используют для определения значения порогового цикла (Ct) для полинуклеотидной вставки, и число копий полинуклеотидной вставки определяют путем сравнения значения Ct первой целевой последовательности и значения Ct эталонного гена.
71. Способ по п. 69 или 70, в котором кассета селекции содержит ген резистентности к лекарственному средству.
72. Способ по любому одному из пп. 69-71, в котором полинуклеотидная вставка составляет по меньшей мере 5 т.п.н., по меньшей мере 10 т.п.н., по меньшей мере 20 т.п.н., по меньшей мере 30 т.п.н., по меньшей мере 40 т.п.н., по меньшей мере 50 т.п.н., по меньшей мере 60 т.п.н., по меньшей мере 70 т.п.н., по меньшей мере 80 т.п.н., по меньшей мере 90 т.п.н., по меньшей мере 100 т.п.н., по меньшей мере 150 т.п.н., по меньшей мере 200 т.п.н., по меньшей мере 250 т.п.н., по меньшей мере 300 т.п.н., по меньшей мере 350 т.п.н., по меньшей мере 400 т.п.н., по меньшей мере 450 т.п.н. или по меньшей мере 500 т.п.н.
73. Способ по любому одному из пп. 69-72, в котором расстояние между последовательностями, с которыми связываются зонды в первой целевой последовательности, и кассетой селекции составляет не более, чем 100 нуклеотидов, 200 нуклеотидов, 300 нуклеотидов, 400 нуклеотидов, 500 нуклеотидов, 600 нуклеотидов, 700 нуклеотидов, 800 нуклеотидов, 900 нуклеотидов, 1 т.п.н., 1,5 т.п.н., 2 т.п.н., 2,5 т.п.н., 3 т.п.н., 3,5 т.п.н., 4 т.п.н., 4,5 т.п.н. или 5 т.п.н.
74. Способ по любому одному из пп. 69-73, дополнительно включающий в себя определение числа копий второй целевой последовательности.
75. Способ по п. 74, в котором этап (b) дополнительно включает в себя воздействие на ДНК клетки зондом, связывающимся со второй целевой последовательностью, и
причем этап (с) дополнительно включает в себя обнаружение сигнала, обусловленного связыванием зонда второй целевой последовательности, и
при этом этап (d) дополнительно включает в себя сравнение сигнала от зонда эталонного гена с сигналом от зонда второй целевой последовательности для определения числа копий второй целевой последовательности.
76. Способ по любому одному из пп. 69-75, дополнительно содержащий определение числа копий одной или более дополнительных последовательностей в пределах полинуклеотидной вставки.
77. Способ по п. 76, в котором этап (b) дополнительно включает в себя воздействие на ДНК клетки одним или более дополнительными зондами, связывающимися с полинуклеотидной вставкой, и
причем этап (с) дополнительно включает в себя обнаружение сигнала, обусловленного связыванием одного или более дополнительных зондов, и
при этом этап (d) дополнительно включает в себя сравнение сигнала от зонда эталонного гена с сигналом от одного или более дополнительных зондов полинуклеотидной вставки для определения числа копий одной или более дополнительных последовательностей в пределах полинуклеотидной вставки.
78. Способ по п. 76 или 77, в котором одна или более дополнительных последовательностей в пределах полинуклеотидной вставки содержит последовательность, примыкающую ко второй целевой последовательности.
79. Способ по любому одному из пп. 69-78, в котором LTVEC выполнен с возможностью удаления эндогенной последовательности из целевого геномного локуса, или
в котором клетку дополнительно приводили в контакт с белком Cas, первой РНК CRISPR, которая гибридизуется с первой последовательностью распознавания РНК CRISPR в пределах целевого геномного локуса, второй РНК CRISPR, которая гибридизуется со второй последовательностью распознавания РНК CRISPR в пределах целевого геномного локуса, и тракрРНК.
80. Способ по п. 79, дополнительно включающий в себя определение числа копий эндогенных последовательностей в целевом геномном локусе.
81. Способ по п. 80, в котором этап (b) дополнительно включает в себя воздействие на ДНК клетки зондом, связывающимся с эндогенной последовательностью в целевом геномном локусе, и
причем этап (с) дополнительно включает в себя обнаружение сигнала, обусловленного связыванием зонда эндогенной последовательности, и
при этом этап (d) дополнительно включает в себя сравнение сигнала от зонда эталонного гена с сигналом от зонда эндогенной последовательности для определения числа копий эндогенной последовательности.
Applications Claiming Priority (7)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US201462083005P | 2014-11-21 | 2014-11-21 | |
| US62/083,005 | 2014-11-21 | ||
| US201562182314P | 2015-06-19 | 2015-06-19 | |
| US62/182,314 | 2015-06-19 | ||
| US201562211421P | 2015-08-28 | 2015-08-28 | |
| US62/211,421 | 2015-08-28 | ||
| PCT/US2015/062023 WO2016081923A2 (en) | 2014-11-21 | 2015-11-20 | METHODS AND COMPOSITIONS FOR TARGETED GENETIC MODIFICATION USING PAIRED GUIDE RNAs |
Related Child Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2020134412A Division RU2020134412A (ru) | 2014-11-21 | 2015-11-20 | Способы и композиции для нацеленной генетической модификации с использованием парных гидовых рнк |
Publications (3)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2017121367A true RU2017121367A (ru) | 2018-12-21 |
| RU2017121367A3 RU2017121367A3 (ru) | 2019-11-05 |
| RU2734770C2 RU2734770C2 (ru) | 2020-10-23 |
Family
ID=54771219
Family Applications (2)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2020134412A RU2020134412A (ru) | 2014-11-21 | 2015-11-20 | Способы и композиции для нацеленной генетической модификации с использованием парных гидовых рнк |
| RU2017121367A RU2734770C2 (ru) | 2014-11-21 | 2015-11-20 | Способы и композиции для нацеленной генетической модификации с использованием парных гидовых рнк |
Family Applications Before (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2020134412A RU2020134412A (ru) | 2014-11-21 | 2015-11-20 | Способы и композиции для нацеленной генетической модификации с использованием парных гидовых рнк |
Country Status (25)
| Country | Link |
|---|---|
| US (4) | US10457960B2 (ru) |
| EP (2) | EP3521437B1 (ru) |
| JP (2) | JP6727199B2 (ru) |
| KR (3) | KR102683423B1 (ru) |
| CN (2) | CN113444747B (ru) |
| AU (2) | AU2015349692B2 (ru) |
| BR (1) | BR112017010547A2 (ru) |
| CA (2) | CA2968440A1 (ru) |
| CY (1) | CY1121738T1 (ru) |
| DK (1) | DK3221457T3 (ru) |
| ES (2) | ES2731437T3 (ru) |
| HR (1) | HRP20190949T1 (ru) |
| HU (1) | HUE044907T2 (ru) |
| IL (3) | IL283585B2 (ru) |
| LT (1) | LT3221457T (ru) |
| MX (2) | MX389266B (ru) |
| NZ (1) | NZ731962A (ru) |
| PL (1) | PL3221457T3 (ru) |
| PT (1) | PT3221457T (ru) |
| RS (1) | RS58893B1 (ru) |
| RU (2) | RU2020134412A (ru) |
| SG (2) | SG11201703747RA (ru) |
| SI (1) | SI3221457T1 (ru) |
| SM (1) | SMT201900354T1 (ru) |
| WO (1) | WO2016081923A2 (ru) |
Families Citing this family (138)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US20050144655A1 (en) | 2000-10-31 | 2005-06-30 | Economides Aris N. | Methods of modifying eukaryotic cells |
| US6596541B2 (en) | 2000-10-31 | 2003-07-22 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Methods of modifying eukaryotic cells |
| US20100069614A1 (en) | 2008-06-27 | 2010-03-18 | Merus B.V. | Antibody producing non-human mammals |
| AU2004242614B2 (en) | 2003-05-30 | 2011-09-22 | Merus N.V. | Fab library for the preparation of anti vegf and anti rabies virus fabs |
| US10323236B2 (en) | 2011-07-22 | 2019-06-18 | President And Fellows Of Harvard College | Evaluation and improvement of nuclease cleavage specificity |
| WO2013163628A2 (en) | 2012-04-27 | 2013-10-31 | Duke University | Genetic correction of mutated genes |
| AU2014218931C1 (en) | 2013-02-20 | 2020-05-14 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Genetic modification of rats |
| US9828582B2 (en) | 2013-03-19 | 2017-11-28 | Duke University | Compositions and methods for the induction and tuning of gene expression |
| HRP20181648T1 (hr) | 2013-04-16 | 2019-01-25 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Ciljana modifikacija genoma štakora |
| US9163284B2 (en) | 2013-08-09 | 2015-10-20 | President And Fellows Of Harvard College | Methods for identifying a target site of a Cas9 nuclease |
| US9359599B2 (en) | 2013-08-22 | 2016-06-07 | President And Fellows Of Harvard College | Engineered transcription activator-like effector (TALE) domains and uses thereof |
| US9340799B2 (en) | 2013-09-06 | 2016-05-17 | President And Fellows Of Harvard College | MRNA-sensing switchable gRNAs |
| US9526784B2 (en) | 2013-09-06 | 2016-12-27 | President And Fellows Of Harvard College | Delivery system for functional nucleases |
| US9322037B2 (en) | 2013-09-06 | 2016-04-26 | President And Fellows Of Harvard College | Cas9-FokI fusion proteins and uses thereof |
| WO2015070083A1 (en) | 2013-11-07 | 2015-05-14 | Editas Medicine,Inc. | CRISPR-RELATED METHODS AND COMPOSITIONS WITH GOVERNING gRNAS |
| MX388127B (es) | 2013-12-11 | 2025-03-19 | Regeneron Pharma | Metodos y composiciones para la modificacion dirigida de un genoma. |
| US20150165054A1 (en) | 2013-12-12 | 2015-06-18 | President And Fellows Of Harvard College | Methods for correcting caspase-9 point mutations |
| CA2950173C (en) | 2014-06-06 | 2023-10-10 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Methods and compositions for modifying a targeted locus |
| KR102386101B1 (ko) | 2014-06-26 | 2022-04-14 | 리제너론 파마슈티칼스 인코포레이티드 | 표적화된 유전자 변형을 위한 방법 및 그 조성물, 및 사용 방법 |
| US10077453B2 (en) | 2014-07-30 | 2018-09-18 | President And Fellows Of Harvard College | CAS9 proteins including ligand-dependent inteins |
| EP3204496A1 (en) | 2014-10-10 | 2017-08-16 | Editas Medicine, Inc. | Compositions and methods for promoting homology directed repair |
| PL3207124T3 (pl) | 2014-10-15 | 2019-11-29 | Regeneron Pharma | Sposoby i kompozycje do wytwarzania lub utrzymywania komórek pluripotencjalnych |
| WO2016073990A2 (en) | 2014-11-07 | 2016-05-12 | Editas Medicine, Inc. | Methods for improving crispr/cas-mediated genome-editing |
| ES2731437T3 (es) | 2014-11-21 | 2019-11-15 | Regeneron Pharma | Métodos y composiciones para la modificación genética dirigida mediante el uso de pares de ARN guías |
| CN107208113A (zh) | 2014-12-19 | 2017-09-26 | 瑞泽恩制药公司 | 用于通过单步多重靶向进行靶向遗传修饰的方法和组合物 |
| US10676726B2 (en) | 2015-02-09 | 2020-06-09 | Duke University | Compositions and methods for epigenome editing |
| US11390884B2 (en) | 2015-05-11 | 2022-07-19 | Editas Medicine, Inc. | Optimized CRISPR/cas9 systems and methods for gene editing in stem cells |
| CN107920498A (zh) | 2015-05-29 | 2018-04-17 | 瑞泽恩制药公司 | 具有c9orf72基因座破坏的非人类动物 |
| JP7396783B2 (ja) | 2015-06-09 | 2023-12-12 | エディタス・メディシン、インコーポレイテッド | 移植を改善するためのcrispr/cas関連方法および組成物 |
| CA3168241A1 (en) | 2015-07-15 | 2017-01-19 | Rutgers. The State University of New Jersey | Nuclease-independent targeted gene editing platform and uses thereof |
| US11667911B2 (en) | 2015-09-24 | 2023-06-06 | Editas Medicine, Inc. | Use of exonucleases to improve CRISPR/CAS-mediated genome editing |
| EP4089175A1 (en) | 2015-10-13 | 2022-11-16 | Duke University | Genome engineering with type i crispr systems in eukaryotic cells |
| US10167457B2 (en) | 2015-10-23 | 2019-01-01 | President And Fellows Of Harvard College | Nucleobase editors and uses thereof |
| CA3004497A1 (en) * | 2015-11-06 | 2017-05-11 | The Jackson Laboratory | Large genomic dna knock-in and uses thereof |
| EA201891317A3 (ru) | 2015-11-30 | 2019-04-30 | Дьюк Юниверсити | Терапевтические мишени для коррекции гена дистрофина человека с помощью редактирования генов и способы их применения |
| EP4257599A3 (en) | 2016-01-13 | 2024-01-17 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Rodents having an engineered heavy chain diversity region |
| US11666666B2 (en) * | 2016-02-11 | 2023-06-06 | The Regents Of The University Of California | Methods and compositions for modifying a mutant dystrophin gene in a cell's genome |
| EP3433363A1 (en) | 2016-03-25 | 2019-01-30 | Editas Medicine, Inc. | Genome editing systems comprising repair-modulating enzyme molecules and methods of their use |
| WO2017180694A1 (en) | 2016-04-13 | 2017-10-19 | Editas Medicine, Inc. | Cas9 fusion molecules gene editing systems, and methods of use thereof |
| US20190127713A1 (en) | 2016-04-13 | 2019-05-02 | Duke University | Crispr/cas9-based repressors for silencing gene targets in vivo and methods of use |
| CN113831407B (zh) | 2016-05-20 | 2024-06-11 | 瑞泽恩制药公司 | 用于使用多个引导rna来破坏免疫耐受性的方法 |
| WO2017203275A1 (en) * | 2016-05-27 | 2017-11-30 | Cambridge Enterprise Limited | Novel nucleic acid construct |
| WO2017219033A1 (en) * | 2016-06-17 | 2017-12-21 | Montana State University | Bidirectional targeting for genome editing |
| ES2982085T3 (es) | 2016-06-20 | 2024-10-14 | Octapharma Ag | Medios y métodos para modificar alelos múltiples |
| US10912287B2 (en) * | 2016-06-28 | 2021-02-09 | Biocytogen Pharmaceuticals (Beijing) Co., Ltd | Genetically modified mice expressing humanized PD-1 |
| JP7033583B2 (ja) * | 2016-07-13 | 2022-03-10 | バーテックス ファーマシューティカルズ インコーポレイテッド | ゲノム編集効率を高めるための方法、組成物及びキット |
| JP7490211B2 (ja) | 2016-07-19 | 2024-05-27 | デューク ユニバーシティ | Cpf1に基づくゲノム編集の治療適用 |
| EP3491130B1 (en) * | 2016-07-28 | 2022-07-27 | DSM IP Assets B.V. | An assembly system for a eukaryotic cell |
| MX2019001211A (es) | 2016-07-29 | 2019-09-16 | Regeneron Pharma | Ratones que comprenden mutaciones que dan lugar a la expresión de la fibrilina-1 truncada en c. |
| KR20250103795A (ko) | 2016-08-03 | 2025-07-07 | 프레지던트 앤드 펠로우즈 오브 하바드 칼리지 | 아데노신 핵염기 편집제 및 그의 용도 |
| EP3497214B1 (en) | 2016-08-09 | 2023-06-28 | President and Fellows of Harvard College | Programmable cas9-recombinase fusion proteins and uses thereof |
| WO2018039438A1 (en) | 2016-08-24 | 2018-03-01 | President And Fellows Of Harvard College | Incorporation of unnatural amino acids into proteins using base editing |
| MX381216B (es) | 2016-09-30 | 2025-03-12 | Regeneron Pharma | Animales no humanos que tienen una expansion de repeticiones de hexanucleotidos en un locus c9orf72. |
| AU2017342543B2 (en) | 2016-10-14 | 2024-06-27 | President And Fellows Of Harvard College | AAV delivery of nucleobase editors |
| RS66884B1 (sr) | 2016-11-04 | 2025-07-31 | Regeneron Pharma | Ne-humane životinje koje imaju konstruisani lokus imunoglobulinskog lambda lakog lanca |
| CN106520831B (zh) * | 2016-11-18 | 2020-05-26 | 青岛市畜牧兽医研究所 | 一种哺乳动物基因组修饰方法 |
| EP3555297A1 (en) | 2016-12-19 | 2019-10-23 | Editas Medicine, Inc. | Assessing nuclease cleavage |
| US10745677B2 (en) | 2016-12-23 | 2020-08-18 | President And Fellows Of Harvard College | Editing of CCR5 receptor gene to protect against HIV infection |
| WO2018129129A1 (en) * | 2017-01-05 | 2018-07-12 | Rutgers, The State University Of New Jersey | Targeted gene editing platform independent of dna double strand break and uses thereof |
| WO2018129368A2 (en) | 2017-01-06 | 2018-07-12 | Editas Medicine, Inc. | Methods of assessing nuclease cleavage |
| DK3583203T5 (da) | 2017-02-15 | 2024-09-02 | 2Seventy Bio Inc | Donorreparationstemplates multiplex-genomeditering |
| US12390514B2 (en) | 2017-03-09 | 2025-08-19 | President And Fellows Of Harvard College | Cancer vaccine |
| EP3592853A1 (en) | 2017-03-09 | 2020-01-15 | President and Fellows of Harvard College | Suppression of pain by gene editing |
| US11542496B2 (en) | 2017-03-10 | 2023-01-03 | President And Fellows Of Harvard College | Cytosine to guanine base editor |
| BR112019019655A2 (pt) | 2017-03-23 | 2020-04-22 | Harvard College | editores de nucleobase que compreendem proteínas de ligação a dna programáveis por ácido nucleico |
| US11499151B2 (en) | 2017-04-28 | 2022-11-15 | Editas Medicine, Inc. | Methods and systems for analyzing guide RNA molecules |
| WO2018209320A1 (en) | 2017-05-12 | 2018-11-15 | President And Fellows Of Harvard College | Aptazyme-embedded guide rnas for use with crispr-cas9 in genome editing and transcriptional activation |
| WO2018213081A1 (en) * | 2017-05-16 | 2018-11-22 | Generos Biopharma Ltd. | Compositions and methods for treating alzheimer's disease |
| KR102746733B1 (ko) | 2017-06-09 | 2024-12-24 | 에디타스 메디신, 인코포레이티드 | 조작된 cas9 뉴클레아제 |
| KR102701443B1 (ko) | 2017-06-27 | 2024-09-04 | 리제너론 파마슈티칼스 인코포레이티드 | 인간화 asgr1 유전자좌를 포함하는 비인간 동물 |
| US11866726B2 (en) | 2017-07-14 | 2024-01-09 | Editas Medicine, Inc. | Systems and methods for targeted integration and genome editing and detection thereof using integrated priming sites |
| US11732274B2 (en) | 2017-07-28 | 2023-08-22 | President And Fellows Of Harvard College | Methods and compositions for evolving base editors using phage-assisted continuous evolution (PACE) |
| KR20200033259A (ko) | 2017-07-31 | 2020-03-27 | 리제너론 파마슈티칼스 인코포레이티드 | 생체내에서 CRISPR/Cas-매개된 파괴 또는 삭제 및 외인성 도너 핵산과의 CRISPR/Cas-유도된 재조합을 평가하기 위한 방법 및 조성물 |
| US11130999B2 (en) | 2017-07-31 | 2021-09-28 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Cas-ready mouse embryonic stem cells and mice and uses thereof |
| US11319532B2 (en) | 2017-08-30 | 2022-05-03 | President And Fellows Of Harvard College | High efficiency base editors comprising Gam |
| EP3585162B1 (en) | 2017-09-29 | 2023-08-30 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Rodents comprising a humanized ttr locus and methods of use |
| WO2019072241A1 (en) | 2017-10-13 | 2019-04-18 | Beijing Biocytogen Co., Ltd | NON-HUMAN ANIMAL GENETICALLY MODIFIED WITH PD-1 HUMAN OR CHIMERIC |
| AU2018352592C1 (en) | 2017-10-16 | 2025-09-25 | Beam Therapeutics, Inc. | Uses of adenosine base editors |
| AU2018366290B2 (en) | 2017-11-10 | 2022-01-27 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Non-human animals comprising Slc30a8 mutation and methods of use |
| SG11202002456WA (en) | 2017-11-30 | 2020-04-29 | Regeneron Pharma | Non-human animals comprising a humanized trkb locus |
| PT3720279T (pt) | 2017-12-05 | 2022-10-06 | Regeneron Pharma | Ratinhos tendo uma cadeia leve lambda de imunoglobulina manipulada e seus usos |
| US12406749B2 (en) | 2017-12-15 | 2025-09-02 | The Broad Institute, Inc. | Systems and methods for predicting repair outcomes in genetic engineering |
| US12121524B2 (en) * | 2018-01-17 | 2024-10-22 | Vertex Pharmaceuticals Incorporated | DNA-PK inhibitors |
| ES2980444T3 (es) | 2018-01-17 | 2024-10-01 | Vertex Pharma | Inhibidores de ADN-PK |
| KR20200110687A (ko) | 2018-01-17 | 2020-09-24 | 버텍스 파마슈티칼스 인코포레이티드 | 유전체 편집 효율을 증가시키기 위한 퀴녹살리논 화합물, 조성물, 방법 및 키트 |
| EP3740580A4 (en) | 2018-01-19 | 2021-10-20 | Duke University | GENOME ENGINEERING WITH CRISPR-CAS SYSTEMS IN EUKARYONTS |
| US11643670B2 (en) | 2018-01-29 | 2023-05-09 | Massachusetts Institute Of Technology | Methods of enhancing chromosomal homologous recombination |
| WO2019183123A1 (en) | 2018-03-19 | 2019-09-26 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Transcription modulation in animals using crispr/cas systems |
| US20210071202A1 (en) | 2018-03-29 | 2021-03-11 | Jichi Medical University | Genome editing method, composition, cell, cell preparation, and method for producing cell preparation |
| WO2019213183A1 (en) * | 2018-04-30 | 2019-11-07 | The Trustees Of The University Of Pennsylvania | In utero crispr-mediated therapeutic editing of genes |
| WO2019216338A1 (ja) * | 2018-05-08 | 2019-11-14 | 国立大学法人大阪大学 | ホモ接合型細胞の作製方法 |
| WO2019222545A1 (en) | 2018-05-16 | 2019-11-21 | Synthego Corporation | Methods and systems for guide rna design and use |
| US12157760B2 (en) | 2018-05-23 | 2024-12-03 | The Broad Institute, Inc. | Base editors and uses thereof |
| IL318469A (en) | 2018-06-14 | 2025-03-01 | Regeneron Pharma | Non-human animals capable of reorganizing transgenic DH-DH, and their uses |
| WO2020006423A1 (en) | 2018-06-29 | 2020-01-02 | Editas Medicine, Inc. | Synthetic guide molecules, compositions and methods relating thereto |
| US12522807B2 (en) | 2018-07-09 | 2026-01-13 | The Broad Institute, Inc. | RNA programmable epigenetic RNA modifiers and uses thereof |
| AU2019327449A1 (en) | 2018-08-28 | 2021-03-11 | Flagship Pioneering Innovations Vi, Llc | Methods and compositions for modulating a genome |
| JPWO2020050294A1 (ja) * | 2018-09-05 | 2021-08-30 | 学校法人慶應義塾 | 相同組換え効率上昇剤及びその使用 |
| US11845958B2 (en) * | 2018-09-05 | 2023-12-19 | Wisconsin Alumni Research Foundation | Genetically modified genes and cells, and methods of using same for silencing virus gene expression |
| CN112969367B (zh) | 2018-09-13 | 2023-04-07 | 瑞泽恩制药公司 | 作为c3肾小球病模型的补体因子h基因敲除大鼠 |
| JP7250031B2 (ja) * | 2018-09-25 | 2023-03-31 | 公益財団法人微生物化学研究会 | 新規ウイルスベクターおよびその製造方法と使用方法 |
| WO2020092453A1 (en) | 2018-10-29 | 2020-05-07 | The Broad Institute, Inc. | Nucleobase editors comprising geocas9 and uses thereof |
| AU2019403015B2 (en) | 2018-12-20 | 2024-01-18 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Nuclease-mediated repeat expansion |
| US12351837B2 (en) | 2019-01-23 | 2025-07-08 | The Broad Institute, Inc. | Supernegatively charged proteins and uses thereof |
| CN114127285B (zh) | 2019-03-19 | 2024-09-10 | 布罗德研究所股份有限公司 | 编辑核苷酸序列的方法和组合物 |
| ES2966625T3 (es) * | 2019-04-04 | 2024-04-23 | Regeneron Pharma | Roedores que comprenden un locus del factor de coagulación 12 humanizado |
| EP3956349A1 (en) | 2019-04-17 | 2022-02-23 | The Broad Institute, Inc. | Adenine base editors with reduced off-target effects |
| JP7610339B2 (ja) | 2019-06-04 | 2025-01-08 | リジェネロン・ファーマシューティカルズ・インコーポレイテッド | ベータスリップ変異を有するヒト化ttr遺伝子座を含む非ヒト動物と使用方法 |
| AU2020289554A1 (en) | 2019-06-05 | 2021-11-18 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Non-human animals having a limited lambda light chain repertoire expressed from the kappa locus and uses thereof |
| CA3137764A1 (en) | 2019-06-07 | 2020-12-10 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Non-human animals comprising a humanized albumin locus |
| US12435330B2 (en) | 2019-10-10 | 2025-10-07 | The Broad Institute, Inc. | Methods and compositions for prime editing RNA |
| WO2021108363A1 (en) | 2019-11-25 | 2021-06-03 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Crispr/cas-mediated upregulation of humanized ttr allele |
| AU2021212668A1 (en) | 2020-01-28 | 2022-08-18 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Non-human animals comprising a humanized PNPLA3 locus and methods of use |
| EP4099821A1 (en) | 2020-02-07 | 2022-12-14 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | <smallcaps/>? ? ?klkb1? ? ? ? ?non-human animals comprising a humanizedlocus and methods of use |
| US20210292754A1 (en) * | 2020-03-16 | 2021-09-23 | Pairwise Plants Services, Inc. | Natural guide architectures and methods of making and using the same |
| US20230102342A1 (en) | 2020-03-23 | 2023-03-30 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Non-human animals comprising a humanized ttr locus comprising a v30m mutation and methods of use |
| JP6867635B1 (ja) * | 2020-04-06 | 2021-04-28 | 株式会社Logomix | ゲノム改変方法及びゲノム改変キット |
| JP2023515710A (ja) * | 2020-04-27 | 2023-04-13 | デューク ユニバーシティ | CRISPR媒介式エクソン欠失用の最適なgRNA対を発見するためのハイスループットスクリーニング法 |
| DE112021002672T5 (de) | 2020-05-08 | 2023-04-13 | President And Fellows Of Harvard College | Vefahren und zusammensetzungen zum gleichzeitigen editieren beider stränge einer doppelsträngigen nukleotid-zielsequenz |
| EP4171215A2 (en) | 2020-06-26 | 2023-05-03 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Non-human animals comprising a humanized ace2 locus |
| CN112481297A (zh) * | 2020-11-02 | 2021-03-12 | 深圳先进技术研究院 | 一种制造染色体结构变异的方法 |
| KR20220064170A (ko) | 2020-11-11 | 2022-05-18 | 삼성전자주식회사 | 이미지 센서를 포함하는 전자 장치 및 그 동작 방법 |
| CN112382339B (zh) * | 2020-11-17 | 2024-08-13 | 中国人民解放军军事科学院军事医学研究院 | 一种识别合子型基因激活zga基因的方法及装置 |
| US20240317849A1 (en) | 2020-12-23 | 2024-09-26 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Nucleic acids encoding anchor modified antibodies and uses thereof |
| US20220389461A1 (en) * | 2021-05-26 | 2022-12-08 | Inscripta, Inc. | Crispr editing in diploid genomes |
| CN113832189B (zh) * | 2021-09-06 | 2022-10-21 | 中国人民解放军军事科学院军事医学研究院 | 一种用于敲除猪免疫球蛋白重链IGHG区的gRNA及其应用 |
| KR20240069672A (ko) * | 2021-09-24 | 2024-05-20 | 이뮤노칸 바이오테크 코포레이션 엘티디. | 대규모 염색체 전달 방법 및 이를 이용한 변형 염색체 및 유기체 |
| WO2023054573A1 (ja) * | 2021-09-30 | 2023-04-06 | 国立大学法人大阪大学 | 相同染色体の一方に特異的なdna欠失を有する細胞を製造する方法 |
| EP4423271A2 (en) | 2021-10-28 | 2024-09-04 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Crispr/cas-related methods and compositions for knocking out c5 |
| WO2023108047A1 (en) | 2021-12-08 | 2023-06-15 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Mutant myocilin disease model and uses thereof |
| EP4451863A1 (en) | 2021-12-20 | 2024-10-30 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Non-human animals comprising humanized ace2 and tmprss loci |
| US20250194571A1 (en) | 2022-02-07 | 2025-06-19 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Compositions and methods for defining optimal treatment timeframes in lysosomal disease |
| IL314673A (en) | 2022-02-11 | 2024-10-01 | Regeneron Pharma | Compositions and methods for screening 4r tau targeting agents |
| IL317874A (en) | 2022-06-24 | 2025-02-01 | Tune Therapeutics Inc | Compounds, systems and methods for reducing low density lipoproteins through targeted gene suppression |
| EP4593590A1 (en) | 2022-09-29 | 2025-08-06 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Correction of hepatosteatosis in humanized liver animals through restoration of il6/il6r/gp130 signaling in human hepatocytes |
| KR20250027489A (ko) * | 2023-08-16 | 2025-02-26 | 기초과학연구원 | 단일가닥 절단 활성을 가지는 CRISPR/Cas 시스템과 PARP 억제제를 이용하는 세포 사멸 방법 |
| WO2025250495A1 (en) | 2024-05-28 | 2025-12-04 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Acceleration of human hepatocyte engraftment in humanized liver animals by supplementing paracrine ligands or agonists that activate human liver regeneration signals |
| WO2026005012A1 (ja) * | 2024-06-28 | 2026-01-02 | 学校法人自治医科大学 | インビトロ及びインビボのゲノム編集における相同組換えの効率を高める方法 |
Family Cites Families (181)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4516228A (en) | 1983-08-25 | 1985-05-07 | Mobil Oil Corporation | Acoustic well logging device for detecting compressional and shear waves |
| US5830729A (en) | 1996-04-18 | 1998-11-03 | Institut Pasteur | I Sce I-induced gene replacement and gene conversion in embryonic stem cells |
| AU8587598A (en) | 1997-07-26 | 1999-02-16 | Wisconsin Alumni Research Foundation | Trans-species nuclear transfer |
| US6372956B1 (en) | 1998-12-31 | 2002-04-16 | The J. David Gladstone Institutes | Transgenic rats and rat cell lines expressing human CD4 and a human chemokine receptor |
| JP2002535995A (ja) | 1999-02-03 | 2002-10-29 | ザ チルドレンズ メディカル センター コーポレイション | 染色体標的部位での二本鎖dna切断の誘導を含む遺伝子修復 |
| CA2394850C (en) | 1999-12-06 | 2012-02-07 | Sangamo Biosciences, Inc. | Methods of using randomized libraries of zinc finger proteins for the identification of gene function |
| ATE387909T1 (de) | 2000-05-31 | 2008-03-15 | Novartis Vaccines & Diagnostic | Verfahren und zusammensetzungen zur behandlung von neoplastischen erkrankungen mittels chemotherapie und strahlungssensibilisatoren |
| US6596541B2 (en) | 2000-10-31 | 2003-07-22 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Methods of modifying eukaryotic cells |
| US20050144655A1 (en) | 2000-10-31 | 2005-06-30 | Economides Aris N. | Methods of modifying eukaryotic cells |
| US7105348B2 (en) | 2000-10-31 | 2006-09-12 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Methods of modifying eukaryotic cells |
| US6586251B2 (en) | 2000-10-31 | 2003-07-01 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Methods of modifying eukaryotic cells |
| AUPR451401A0 (en) | 2001-04-20 | 2001-05-24 | Monash University | A method of nuclear transfer |
| US8106255B2 (en) | 2002-01-23 | 2012-01-31 | Dana Carroll | Targeted chromosomal mutagenasis using zinc finger nucleases |
| US7612250B2 (en) | 2002-07-29 | 2009-11-03 | Trustees Of Tufts College | Nuclear transfer embryo formation method |
| US20030175968A1 (en) | 2002-10-30 | 2003-09-18 | Golic Kent G. | Gene targeting method |
| EP1587545A2 (en) | 2003-01-13 | 2005-10-26 | Mahendra S. Rao | Persistent expression of candidate molecule in proliferating stem and progenitor cells for delivery of therapeutic products |
| NZ547984A (en) | 2003-12-01 | 2009-03-31 | Kudos Pharm Ltd | DNA damage repair inhibitors for treatment of cancer |
| DK1802193T3 (da) | 2004-10-19 | 2014-06-10 | Regeneron Pharma | Fremgangsmåde til frembringelse af en homozygot mus til genetisk modifikation |
| FR2879622B1 (fr) | 2004-12-17 | 2008-02-01 | Agronomique Inst Nat Rech | Procede in vitro de production d'ovocytes ou d'oeufs presentant une modification genomique ciblee |
| GB0615327D0 (en) | 2006-03-30 | 2006-09-13 | Univ Edinburgh | Culture medium containing kinase inhibitors and uses thereof |
| AU2007235496B2 (en) | 2006-03-31 | 2013-11-21 | E. R. Squibb & Sons, L.L.C. | Transgenic animals expressing chimeric antibodies for use in preparing human antibodies |
| CN101117633B (zh) | 2006-08-03 | 2011-07-20 | 上海交通大学附属儿童医院 | 一种细胞核移植方法 |
| US7771967B2 (en) | 2006-12-22 | 2010-08-10 | The J. David Gladstone Institutes | Nucleic acid encoding apolipoprotein E-I3 |
| AU2008244473B2 (en) | 2007-04-26 | 2013-06-20 | Sangamo Therapeutics, Inc. | Targeted integration into the PPP1R12C locus |
| EP3382022A1 (en) | 2007-06-01 | 2018-10-03 | Open Monoclonal Technology, Inc. | Compositions and methods for inhibiting endogenous immunoglobulin genes and producing transgenic human idiotype antibodies |
| US8703489B2 (en) | 2008-08-22 | 2014-04-22 | Sangamo Biosciences, Inc. | Methods and compositions for targeted single-stranded cleavage and targeted integration |
| CN102625655B (zh) | 2008-12-04 | 2016-07-06 | 桑格摩生物科学股份有限公司 | 使用锌指核酸酶在大鼠中进行基因组编辑 |
| NZ619886A (en) * | 2009-08-11 | 2015-03-27 | Sangamo Biosciences Inc | Organisms homozygous for targeted modification |
| US8518392B2 (en) | 2009-08-14 | 2013-08-27 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Promoter-regulated differentiation-dependent self-deleting cassette |
| CA2779337A1 (en) | 2009-10-28 | 2011-05-05 | Helmholtz Zentrum Muenchen Deutsches Forschungszentrum Fuer Gesundheit U Nd Umwelt (Gmbh) | Homologous recombination in the oocyte |
| US20110104799A1 (en) | 2009-10-29 | 2011-05-05 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Multifunctional Alleles |
| WO2011053957A2 (en) | 2009-11-02 | 2011-05-05 | Gen9, Inc. | Compositions and methods for the regulation of multiple genes of interest in a cell |
| JP5807862B2 (ja) | 2009-12-01 | 2015-11-10 | 国立研究開発法人国立がん研究センター | ラット胚性幹細胞を用いたキメララットの作製法 |
| JP5924773B2 (ja) | 2009-12-21 | 2016-05-25 | キージーン・エン・フェー | プロトプラストを形質移入するための改善された技術 |
| AU2011207387B2 (en) | 2010-01-22 | 2015-02-26 | Corteva Agriscience Llc | Excision of transgenes in genetically modified organisms |
| CA2788850C (en) | 2010-02-09 | 2019-06-25 | Sangamo Biosciences, Inc. | Targeted genomic modification with partially single-stranded donor molecules |
| EP2571512B1 (en) | 2010-05-17 | 2017-08-23 | Sangamo BioSciences, Inc. | Novel dna-binding proteins and uses thereof |
| GB201009732D0 (en) | 2010-06-10 | 2010-07-21 | Gene Bridges Gmbh | Direct cloning |
| WO2011156723A1 (en) | 2010-06-11 | 2011-12-15 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Production of fertile xy female animals from xy es cells |
| EP2596011B1 (en) | 2010-07-21 | 2018-10-03 | Sangamo Therapeutics, Inc. | Methods and compositions for modification of a hla locus |
| WO2012018726A1 (en) | 2010-08-02 | 2012-02-09 | Cellectis Sa | Method for increasing double-strand break-induced gene targeting |
| WO2012129198A1 (en) | 2011-03-23 | 2012-09-27 | Transposagen Biopharmaceuticals, Inc. | Genetically modified rat models for obesity and diabetes |
| EP2718446A2 (en) | 2011-06-07 | 2014-04-16 | Helmholtz Zentrum München Deutsches Forschungszentrum für Gesundheit und Umwelt (GmbH) | Improved recombination efficiency by inhibition of nhej dna repair |
| LT3424947T (lt) | 2011-10-28 | 2021-03-10 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Genetiškai modifikuotos t ląstelių receptorių pelės |
| US9637739B2 (en) | 2012-03-20 | 2017-05-02 | Vilnius University | RNA-directed DNA cleavage by the Cas9-crRNA complex |
| WO2013141680A1 (en) | 2012-03-20 | 2013-09-26 | Vilnius University | RNA-DIRECTED DNA CLEAVAGE BY THE Cas9-crRNA COMPLEX |
| AU2013251558B2 (en) | 2012-04-25 | 2019-01-03 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Nuclease-mediated targeting with large targeting vectors |
| EP2847338B1 (en) | 2012-05-07 | 2018-09-19 | Sangamo Therapeutics, Inc. | Methods and compositions for nuclease-mediated targeted integration of transgenes |
| PT3241902T (pt) | 2012-05-25 | 2018-05-28 | Univ California | Métodos e composições para modificação de adn alvo dirigida por arn e para modulação dirigida por arn de transcrição |
| JP6279562B2 (ja) | 2012-06-12 | 2018-02-14 | ジェネンテック, インコーポレイテッド | 条件付きノックアウト対立遺伝子を生成するための方法および組成物 |
| KR102530118B1 (ko) | 2012-07-25 | 2023-05-08 | 더 브로드 인스티튜트, 인코퍼레이티드 | 유도 dna 결합 단백질 및 게놈 교란 도구 및 이의 적용 |
| JP5952141B2 (ja) * | 2012-08-31 | 2016-07-13 | 京セラメディカル株式会社 | 人工心肺ポンプ用駆動装置 |
| WO2014065596A1 (en) | 2012-10-23 | 2014-05-01 | Toolgen Incorporated | Composition for cleaving a target dna comprising a guide rna specific for the target dna and cas protein-encoding nucleic acid or cas protein, and use thereof |
| CN108715602A (zh) | 2012-12-06 | 2018-10-30 | 西格马-奥尔德里奇有限责任公司 | 基于crispr的基因组修饰和调控 |
| SG10201707569YA (en) | 2012-12-12 | 2017-10-30 | Broad Inst Inc | Delivery, Engineering and Optimization of Systems, Methods and Compositions for Sequence Manipulation and Therapeutic Applications |
| WO2014093655A2 (en) | 2012-12-12 | 2014-06-19 | The Broad Institute, Inc. | Engineering and optimization of systems, methods and compositions for sequence manipulation with functional domains |
| EP4234696A3 (en) | 2012-12-12 | 2023-09-06 | The Broad Institute Inc. | Crispr-cas component systems, methods and compositions for sequence manipulation |
| KR20150105634A (ko) | 2012-12-12 | 2015-09-17 | 더 브로드 인스티튜트, 인코퍼레이티드 | 서열 조작을 위한 개선된 시스템, 방법 및 효소 조성물의 유전자 조작 및 최적화 |
| WO2014093694A1 (en) | 2012-12-12 | 2014-06-19 | The Broad Institute, Inc. | Crispr-cas nickase systems, methods and compositions for sequence manipulation in eukaryotes |
| US8697359B1 (en) | 2012-12-12 | 2014-04-15 | The Broad Institute, Inc. | CRISPR-Cas systems and methods for altering expression of gene products |
| DK3553174T3 (da) | 2012-12-17 | 2025-08-04 | Harvard College | Rna-guided modificering af humant genom |
| DK3491915T5 (da) | 2012-12-27 | 2024-09-02 | Keygene Nv | Fremgangsmåde til at inducere en målrettet translokation i en plante |
| WO2014127287A1 (en) | 2013-02-14 | 2014-08-21 | Massachusetts Institute Of Technology | Method for in vivo tergated mutagenesis |
| AU2014218931C1 (en) | 2013-02-20 | 2020-05-14 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Genetic modification of rats |
| JP6491113B2 (ja) | 2013-02-25 | 2019-03-27 | サンガモ セラピューティクス, インコーポレイテッド | ヌクレアーゼ媒介性遺伝子破壊を増強するための方法および組成物 |
| EP2922393B2 (en) | 2013-02-27 | 2022-12-28 | Helmholtz Zentrum München - Deutsches Forschungszentrum für Gesundheit und Umwelt (GmbH) | Gene editing in the oocyte by cas9 nucleases |
| US10612043B2 (en) * | 2013-03-09 | 2020-04-07 | Agilent Technologies, Inc. | Methods of in vivo engineering of large sequences using multiple CRISPR/cas selections of recombineering events |
| NZ712727A (en) | 2013-03-14 | 2017-05-26 | Caribou Biosciences Inc | Compositions and methods of nucleic acid-targeting nucleic acids |
| US9234213B2 (en) | 2013-03-15 | 2016-01-12 | System Biosciences, Llc | Compositions and methods directed to CRISPR/Cas genomic engineering systems |
| US20140273230A1 (en) | 2013-03-15 | 2014-09-18 | Sigma-Aldrich Co., Llc | Crispr-based genome modification and regulation |
| AU2014235968B2 (en) | 2013-03-21 | 2018-05-24 | Ospedale San Raffaele Srl | Targeted disruption of T cell receptor genes using engineered zinc finger protein nucleases |
| CN115261411A (zh) | 2013-04-04 | 2022-11-01 | 哈佛学院校长同事会 | 利用CRISPR/Cas系统的基因组编辑的治疗性用途 |
| HRP20181648T1 (hr) * | 2013-04-16 | 2019-01-25 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Ciljana modifikacija genoma štakora |
| US20160040155A1 (en) | 2013-04-16 | 2016-02-11 | University Of Washington Through Its Center For Commercialization | Activating an alternative pathway for homology-directed repair to stimulate targeted gene correction and genome engineering |
| WO2014172470A2 (en) | 2013-04-16 | 2014-10-23 | Whitehead Institute For Biomedical Research | Methods of mutating, modifying or modulating nucleic acid in a cell or nonhuman mammal |
| EP2796558A1 (en) | 2013-04-23 | 2014-10-29 | Rheinische Friedrich-Wilhelms-Universität Bonn | Improved gene targeting and nucleic acid carrier molecule, in particular for use in plants |
| CA2910427C (en) | 2013-05-10 | 2024-02-20 | Sangamo Biosciences, Inc. | Delivery methods and compositions for nuclease-mediated genome engineering |
| WO2014191518A1 (en) | 2013-05-29 | 2014-12-04 | Cellectis | A method for producing precise dna cleavage using cas9 nickase activity |
| US20140359795A1 (en) | 2013-05-31 | 2014-12-04 | Recombinetics, Inc. | Genetic techniques for making animals with sortable sperm |
| US9982277B2 (en) | 2013-06-11 | 2018-05-29 | The Regents Of The University Of California | Methods and compositions for target DNA modification |
| WO2014204725A1 (en) | 2013-06-17 | 2014-12-24 | The Broad Institute Inc. | Optimized crispr-cas double nickase systems, methods and compositions for sequence manipulation |
| JP6738728B2 (ja) | 2013-06-17 | 2020-08-19 | ザ・ブロード・インスティテュート・インコーポレイテッド | 肝臓ターゲティングおよび治療のためのCRISPR−Cas系、ベクターおよび組成物の送達および使用 |
| WO2014204724A1 (en) | 2013-06-17 | 2014-12-24 | The Broad Institute Inc. | Delivery, engineering and optimization of tandem guide systems, methods and compositions for sequence manipulation |
| BR112015031611A2 (pt) | 2013-06-17 | 2017-12-12 | Massachusetts Inst Technology | aplicação, manipulação e otimização de sistemas, métodos e composições para direcionamento e modelação de doenças e distúrbios de células pós-mitóticas |
| AU2014281031B2 (en) | 2013-06-17 | 2020-05-21 | Massachusetts Institute Of Technology | Delivery, use and therapeutic applications of the CRISPR-Cas systems and compositions for targeting disorders and diseases using viral components |
| WO2014204723A1 (en) | 2013-06-17 | 2014-12-24 | The Broad Institute Inc. | Oncogenic models based on delivery and use of the crispr-cas systems, vectors and compositions |
| WO2014205192A2 (en) | 2013-06-19 | 2014-12-24 | Sigma-Aldrich Co. Llc | Targeted integration |
| US10011850B2 (en) | 2013-06-21 | 2018-07-03 | The General Hospital Corporation | Using RNA-guided FokI Nucleases (RFNs) to increase specificity for RNA-Guided Genome Editing |
| WO2015006498A2 (en) | 2013-07-09 | 2015-01-15 | President And Fellows Of Harvard College | Therapeutic uses of genome editing with crispr/cas systems |
| US11060083B2 (en) | 2013-07-19 | 2021-07-13 | Larix Bioscience Llc | Methods and compositions for producing double allele knock outs |
| US9663782B2 (en) | 2013-07-19 | 2017-05-30 | Larix Bioscience Llc | Methods and compositions for producing double allele knock outs |
| CN105705188A (zh) | 2013-07-24 | 2016-06-22 | 梅迪克艾克提乌销售有限公司 | 可更换盒 |
| US10563225B2 (en) | 2013-07-26 | 2020-02-18 | President And Fellows Of Harvard College | Genome engineering |
| MX2016002118A (es) * | 2013-08-22 | 2016-06-28 | Du Pont | Modificacion del genoma de plantas por medio del uso de sistemas de ácido ribonucléico (arn) guía/ endonucleasa cas y metodos de uso. |
| CA2922428A1 (en) | 2013-08-29 | 2015-03-05 | Temple University Of The Commonwealth System Of Higher Education | Methods and compositions for rna-guided treatment of hiv infection |
| EP3842528A1 (en) | 2013-09-18 | 2021-06-30 | Kymab Limited | Methods, cells and organisms |
| WO2015048690A1 (en) | 2013-09-27 | 2015-04-02 | The Regents Of The University Of California | Optimized small guide rnas and methods of use |
| WO2015048577A2 (en) | 2013-09-27 | 2015-04-02 | Editas Medicine, Inc. | Crispr-related methods and compositions |
| WO2015052231A2 (en) | 2013-10-08 | 2015-04-16 | Technical University Of Denmark | Multiplex editing system |
| CN116836957A (zh) | 2013-10-17 | 2023-10-03 | 桑格摩生物科学股份有限公司 | 用于核酸酶介导的基因组工程改造的递送方法和组合物 |
| US20160264995A1 (en) | 2013-11-06 | 2016-09-15 | Hiroshima University | Vector for Nucleic Acid Insertion |
| WO2015070083A1 (en) | 2013-11-07 | 2015-05-14 | Editas Medicine,Inc. | CRISPR-RELATED METHODS AND COMPOSITIONS WITH GOVERNING gRNAS |
| US10787684B2 (en) | 2013-11-19 | 2020-09-29 | President And Fellows Of Harvard College | Large gene excision and insertion |
| EP3074515B1 (en) | 2013-11-28 | 2018-11-14 | Horizon Discovery Limited | Somatic haploid human cell line |
| MX388127B (es) | 2013-12-11 | 2025-03-19 | Regeneron Pharma | Metodos y composiciones para la modificacion dirigida de un genoma. |
| WO2015089473A1 (en) | 2013-12-12 | 2015-06-18 | The Broad Institute Inc. | Engineering of systems, methods and optimized guide compositions with new architectures for sequence manipulation |
| JP2017527256A (ja) | 2013-12-12 | 2017-09-21 | ザ・ブロード・インスティテュート・インコーポレイテッド | HBV及びウイルス性疾患及び障害のためのCRISPR−Cas系及び組成物の送達、使用及び治療適用 |
| JP2017501149A (ja) | 2013-12-12 | 2017-01-12 | ザ・ブロード・インスティテュート・インコーポレイテッド | 粒子送達構成成分を用いた障害及び疾患の標的化のためのcrispr−cas系及び組成物の送達、使用及び治療適用 |
| KR20160097327A (ko) | 2013-12-12 | 2016-08-17 | 더 브로드 인스티튜트, 인코퍼레이티드 | 유전자 산물, 구조 정보 및 유도성 모듈형 cas 효소의 발현의 변경을 위한 crispr-cas 시스템 및 방법 |
| MX2016007325A (es) | 2013-12-12 | 2017-07-19 | Broad Inst Inc | Composiciones y metodos de uso de sistemas crispr-cas en desordenes debidos a repeticion de nucleotidos. |
| MX374529B (es) | 2013-12-12 | 2025-03-06 | Broad Inst Inc | Suministro, uso y aplicaciones terapeuticas de sistemas y composiciones crispr-cas para edicion del genoma. |
| AU2014368982B2 (en) | 2013-12-19 | 2021-03-25 | Amyris, Inc. | Methods for genomic integration |
| JP6747974B2 (ja) | 2014-01-08 | 2020-08-26 | プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ | Rna誘導型遺伝子ドライブ |
| US10034463B2 (en) | 2014-01-24 | 2018-07-31 | Children's Medical Center Corporation | High-throughput mouse model for optimizing antibody affinities |
| US10233456B2 (en) | 2014-01-30 | 2019-03-19 | The Board Of Trustees Of The University Of Arkansas | Method, vectors, cells, seeds and kits for stacking genes into a single genomic site |
| US20150291969A1 (en) | 2014-01-30 | 2015-10-15 | Chromatin, Inc. | Compositions for reduced lignin content in sorghum and improving cell wall digestibility, and methods of making the same |
| EP3114227B1 (en) | 2014-03-05 | 2021-07-21 | Editas Medicine, Inc. | Crispr/cas-related methods and compositions for treating usher syndrome and retinitis pigmentosa |
| US9938521B2 (en) | 2014-03-10 | 2018-04-10 | Editas Medicine, Inc. | CRISPR/CAS-related methods and compositions for treating leber's congenital amaurosis 10 (LCA10) |
| ES2821149T3 (es) | 2014-03-12 | 2021-04-23 | Prec Biosciences Inc | Eliminación del exón del gen de la distrofina mediante nucleasas modificadas genéticamente |
| HRP20240186T1 (hr) | 2014-03-14 | 2024-05-10 | Cibus Us Llc | Postupci i kompozicije za povećanje efikasnosti ciljane modifikacije gena korištenjem reparacije gena posredovane oligonukleotidima |
| CA2943794C (en) | 2014-03-26 | 2023-01-24 | University Of Maryland, College Park | Targeted genome editing in zygotes of domestic large animals |
| GB201406968D0 (en) | 2014-04-17 | 2014-06-04 | Green Biologics Ltd | Deletion mutants |
| KR101823661B1 (ko) | 2014-04-24 | 2018-01-30 | 기초과학연구원 | 마이크로 상동 기반의 유전자 녹아웃을 위한 뉴클레아제 표적 서열을 확인하는 방법 |
| GB201407852D0 (en) | 2014-05-02 | 2014-06-18 | Iontas Ltd | Preparation of libraries od protein variants expressed in eukaryotic cells and use for selecting binding molecules |
| US20170088819A1 (en) | 2014-05-16 | 2017-03-30 | Vrije Universiteit Brussel | Genetic correction of myotonic dystrophy type 1 |
| KR20170005494A (ko) | 2014-05-30 | 2017-01-13 | 더 보드 어브 트러스티스 어브 더 리랜드 스탠포드 주니어 유니버시티 | 잠복 바이러스 감염에 대한 치료제를 전달하는 조성물 및 방법 |
| CA2950173C (en) | 2014-06-06 | 2023-10-10 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Methods and compositions for modifying a targeted locus |
| BR112016029178A2 (pt) | 2014-06-16 | 2017-10-17 | Univ Johns Hopkins | composições e métodos para a expressão de rnas guia de crispr usando o promotor h1 |
| KR102386101B1 (ko) | 2014-06-26 | 2022-04-14 | 리제너론 파마슈티칼스 인코포레이티드 | 표적화된 유전자 변형을 위한 방법 및 그 조성물, 및 사용 방법 |
| CA2954414A1 (en) | 2014-07-15 | 2016-01-21 | Juno Therapeutics, Inc. | Engineered cells for adoptive cell therapy |
| EP3193944B1 (en) | 2014-07-17 | 2021-04-07 | University of Pittsburgh - Of the Commonwealth System of Higher Education | Methods of treating cells containing fusion genes |
| US9944933B2 (en) | 2014-07-17 | 2018-04-17 | Georgia Tech Research Corporation | Aptamer-guided gene targeting |
| SG11201701245QA (en) | 2014-08-27 | 2017-03-30 | Caribou Biosciences Inc | Methods for increasing cas9-mediated engineering efficiency |
| WO2016036754A1 (en) | 2014-09-02 | 2016-03-10 | The Regents Of The University Of California | Methods and compositions for rna-directed target dna modification |
| WO2016049024A2 (en) | 2014-09-24 | 2016-03-31 | The Broad Institute Inc. | Delivery, use and therapeutic applications of the crispr-cas systems and compositions for modeling competition of multiple cancer mutations in vivo |
| WO2016049163A2 (en) | 2014-09-24 | 2016-03-31 | The Broad Institute Inc. | Use and production of chd8+/- transgenic animals with behavioral phenotypes characteristic of autism spectrum disorder |
| WO2016049258A2 (en) | 2014-09-25 | 2016-03-31 | The Broad Institute Inc. | Functional screening with optimized functional crispr-cas systems |
| JP2017534295A (ja) | 2014-09-29 | 2017-11-24 | ザ ジャクソン ラボラトリー | エレクトロポレーションによる遺伝子改変哺乳動物の高効率ハイスループット生成 |
| IL287561B2 (en) | 2014-10-01 | 2024-03-01 | Massachusetts Gen Hospital | Methods for increasing efficiency of nuclease-induced homology-directed repair |
| EP3204496A1 (en) | 2014-10-10 | 2017-08-16 | Editas Medicine, Inc. | Compositions and methods for promoting homology directed repair |
| WO2016061073A1 (en) | 2014-10-14 | 2016-04-21 | Memorial Sloan-Kettering Cancer Center | Composition and method for in vivo engineering of chromosomal rearrangements |
| PL3207124T3 (pl) | 2014-10-15 | 2019-11-29 | Regeneron Pharma | Sposoby i kompozycje do wytwarzania lub utrzymywania komórek pluripotencjalnych |
| WO2016061481A1 (en) | 2014-10-17 | 2016-04-21 | The Penn State Research Foundation | Methods and compositions for multiplex rna guided genome editing and other rna technologies |
| WO2016065364A1 (en) | 2014-10-24 | 2016-04-28 | Life Technologies Corporation | Compositions and methods for enhancing homologous recombination |
| US12180263B2 (en) | 2014-11-06 | 2024-12-31 | President And Fellows Of Harvard College | Cells lacking B2M surface expression and methods for allogeneic administration of such cells |
| WO2016073990A2 (en) | 2014-11-07 | 2016-05-12 | Editas Medicine, Inc. | Methods for improving crispr/cas-mediated genome-editing |
| ES2731437T3 (es) | 2014-11-21 | 2019-11-15 | Regeneron Pharma | Métodos y composiciones para la modificación genética dirigida mediante el uso de pares de ARN guías |
| KR20170081268A (ko) | 2014-11-27 | 2017-07-11 | 단지거 이노베이션즈 엘티디. | 게놈 편집용 핵산 구조체 |
| WO2016089866A1 (en) | 2014-12-01 | 2016-06-09 | President And Fellows Of Harvard College | Rna-guided systems for in vivo gene editing |
| WO2016094880A1 (en) | 2014-12-12 | 2016-06-16 | The Broad Institute Inc. | Delivery, use and therapeutic applications of crispr systems and compositions for genome editing as to hematopoietic stem cells (hscs) |
| EP3230452B1 (en) | 2014-12-12 | 2025-06-11 | The Broad Institute, Inc. | Dead guides for crispr transcription factors |
| WO2016094874A1 (en) | 2014-12-12 | 2016-06-16 | The Broad Institute Inc. | Escorted and functionalized guides for crispr-cas systems |
| WO2016097751A1 (en) | 2014-12-18 | 2016-06-23 | The University Of Bath | Method of cas9 mediated genome engineering |
| CN107208113A (zh) | 2014-12-19 | 2017-09-26 | 瑞泽恩制药公司 | 用于通过单步多重靶向进行靶向遗传修饰的方法和组合物 |
| JPWO2016104716A1 (ja) | 2014-12-26 | 2017-10-05 | 国立研究開発法人理化学研究所 | 遺伝子のノックアウト方法 |
| WO2016112242A1 (en) | 2015-01-08 | 2016-07-14 | President And Fellows Of Harvard College | Split cas9 proteins |
| WO2016112351A1 (en) | 2015-01-09 | 2016-07-14 | Bio-Rad Laboratories, Inc. | Detection of genome editing |
| CN107429263A (zh) | 2015-01-15 | 2017-12-01 | 斯坦福大学托管董事会 | 调控基因组编辑的方法 |
| WO2016130697A1 (en) | 2015-02-11 | 2016-08-18 | Memorial Sloan Kettering Cancer Center | Methods and kits for generating vectors that co-express multiple target molecules |
| SG11201706766WA (en) | 2015-02-23 | 2017-09-28 | Crispr Therapeutics Ag | Materials and methods for treatment of hemoglobinopathies |
| WO2016135559A2 (en) | 2015-02-23 | 2016-09-01 | Crispr Therapeutics Ag | Materials and methods for treatment of human genetic diseases including hemoglobinopathies |
| GB2535532B (en) | 2015-02-23 | 2021-05-12 | Knorr Bremse Systeme Fuer Nutzfahrzeuge Gmbh | Brake valve arrangement |
| EP3265560B1 (en) | 2015-03-02 | 2021-12-08 | Sinai Health System | Homologous recombination factors |
| GB201504223D0 (en) | 2015-03-12 | 2015-04-29 | Genome Res Ltd | Biallelic genetic modification |
| EP3274453B1 (en) | 2015-03-26 | 2021-01-27 | Editas Medicine, Inc. | Crispr/cas-mediated gene conversion |
| JP2018510657A (ja) | 2015-03-27 | 2018-04-19 | プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ | 改変t細胞ならびにそれを作製および使用する方法 |
| EP3277816B1 (en) | 2015-04-01 | 2020-06-17 | Editas Medicine, Inc. | Crispr/cas-related methods and compositions for treating duchenne muscular dystrophy and becker muscular dystrophy |
| US10155938B2 (en) | 2015-04-14 | 2018-12-18 | City Of Hope | Coexpression of CAS9 and TREX2 for targeted mutagenesis |
| CN107709545A (zh) | 2015-04-22 | 2018-02-16 | 吉纳知识产权控股私人有限公司 | 从干细胞生成肌肉谱系细胞 |
| EP3289081B1 (en) | 2015-04-27 | 2019-03-27 | Genethon | Compositions and methods for the treatment of nucleotide repeat expansion disorders |
| EP3289080B1 (en) | 2015-04-30 | 2021-08-25 | The Trustees of Columbia University in the City of New York | Gene therapy for autosomal dominant diseases |
| CN118879692A (zh) | 2015-05-16 | 2024-11-01 | 建新公司 | 深内含子突变的基因编辑 |
| US9790490B2 (en) | 2015-06-18 | 2017-10-17 | The Broad Institute Inc. | CRISPR enzymes and systems |
| EP4491732A3 (en) | 2015-10-08 | 2025-03-26 | President and Fellows of Harvard College | Multiplexed genome editing |
| JP2018531024A (ja) | 2015-10-20 | 2018-10-25 | パイオニア ハイ−ブレッド インターナショナル, イン | マーカーフリーゲノム改変のための方法および組成物 |
| CA3004497A1 (en) | 2015-11-06 | 2017-05-11 | The Jackson Laboratory | Large genomic dna knock-in and uses thereof |
| EP3433363A1 (en) | 2016-03-25 | 2019-01-30 | Editas Medicine, Inc. | Genome editing systems comprising repair-modulating enzyme molecules and methods of their use |
| WO2017173004A1 (en) | 2016-03-30 | 2017-10-05 | Mikuni Takayasu | A method for in vivo precise genome editing |
| EP3443080B1 (en) | 2016-04-13 | 2021-08-11 | University of Massachusetts | Repairing compound heterozygous recessive mutations by allele exchange |
| CN113831407B (zh) | 2016-05-20 | 2024-06-11 | 瑞泽恩制药公司 | 用于使用多个引导rna来破坏免疫耐受性的方法 |
| US11643670B2 (en) | 2018-01-29 | 2023-05-09 | Massachusetts Institute Of Technology | Methods of enhancing chromosomal homologous recombination |
-
2015
- 2015-11-20 ES ES15804289T patent/ES2731437T3/es active Active
- 2015-11-20 KR KR1020237015378A patent/KR102683423B1/ko active Active
- 2015-11-20 SG SG11201703747RA patent/SG11201703747RA/en unknown
- 2015-11-20 RU RU2020134412A patent/RU2020134412A/ru unknown
- 2015-11-20 IL IL283585A patent/IL283585B2/en unknown
- 2015-11-20 US US14/948,221 patent/US10457960B2/en active Active
- 2015-11-20 RU RU2017121367A patent/RU2734770C2/ru active
- 2015-11-20 KR KR1020177016481A patent/KR102415093B1/ko active Active
- 2015-11-20 LT LTEP15804289.5T patent/LT3221457T/lt unknown
- 2015-11-20 KR KR1020227021859A patent/KR102531016B1/ko active Active
- 2015-11-20 IL IL301900A patent/IL301900A/en unknown
- 2015-11-20 EP EP19161085.6A patent/EP3521437B1/en active Active
- 2015-11-20 PT PT15804289T patent/PT3221457T/pt unknown
- 2015-11-20 RS RS20190760A patent/RS58893B1/sr unknown
- 2015-11-20 WO PCT/US2015/062023 patent/WO2016081923A2/en not_active Ceased
- 2015-11-20 SG SG10201913829YA patent/SG10201913829YA/en unknown
- 2015-11-20 DK DK15804289.5T patent/DK3221457T3/da active
- 2015-11-20 NZ NZ731962A patent/NZ731962A/en unknown
- 2015-11-20 HR HRP20190949TT patent/HRP20190949T1/hr unknown
- 2015-11-20 MX MX2017006670A patent/MX389266B/es unknown
- 2015-11-20 CA CA2968440A patent/CA2968440A1/en active Pending
- 2015-11-20 SM SM20190354T patent/SMT201900354T1/it unknown
- 2015-11-20 EP EP15804289.5A patent/EP3221457B1/en active Active
- 2015-11-20 PL PL15804289T patent/PL3221457T3/pl unknown
- 2015-11-20 ES ES19161085T patent/ES3013183T3/es active Active
- 2015-11-20 CA CA3176380A patent/CA3176380A1/en active Pending
- 2015-11-20 JP JP2017527267A patent/JP6727199B2/ja active Active
- 2015-11-20 CN CN202110716022.8A patent/CN113444747B/zh active Active
- 2015-11-20 CN CN201580063428.3A patent/CN107208078B/zh active Active
- 2015-11-20 AU AU2015349692A patent/AU2015349692B2/en active Active
- 2015-11-20 BR BR112017010547A patent/BR112017010547A2/pt not_active Application Discontinuation
- 2015-11-20 HU HUE15804289 patent/HUE044907T2/hu unknown
- 2015-11-20 SI SI201530759T patent/SI3221457T1/sl unknown
-
2017
- 2017-05-09 IL IL252181A patent/IL252181B/en active IP Right Grant
- 2017-05-19 MX MX2022000378A patent/MX2022000378A/es unknown
-
2019
- 2019-06-20 CY CY20191100640T patent/CY1121738T1/el unknown
- 2019-09-16 US US16/572,124 patent/US11697828B2/en active Active
- 2019-09-16 US US16/572,137 patent/US20200002731A1/en not_active Abandoned
-
2020
- 2020-06-30 JP JP2020112438A patent/JP7101211B2/ja active Active
-
2021
- 2021-12-22 AU AU2021290301A patent/AU2021290301B2/en active Active
-
2023
- 2023-05-15 US US18/317,465 patent/US20230332185A1/en active Pending
Also Published As
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| RU2017121367A (ru) | Способы и композиции для нацеленной генетической модификации с использованием парных гидовых рнк | |
| JP2017535271A5 (ru) | ||
| JP6840077B2 (ja) | 単一ステップの複数標的化を通じた標的化された遺伝子修飾のための方法及び組成物 | |
| RU2016126989A (ru) | Способы и композиции для направленной модификации генома | |
| JP2017538428A5 (ru) | ||
| JP2022522019A (ja) | 単一塩基編集による非標的な単一ヌクレオチド変異及び当該変異を避ける高特異性オフターゲットのない単一塩基遺伝子編集ツール | |
| Terol et al. | Involvement of a citrus meiotic recombination TTC-repeat motif in the formation of gross deletions generated by ionizing radiation and MULE activation | |
| CN114747541B (zh) | 一种psgl-1人源化非人类动物模型的构建方法及应用 | |
| CA3171406A1 (en) | Optimised methods for cleavage of target sequences | |
| JP7672012B2 (ja) | 相同染色体の一方に特異的なdna欠失を有する細胞を製造する方法 | |
| US20190218544A1 (en) | Gene editing, identifying edited cells, and kits for use therein | |
| EP3374510B1 (en) | Tissue selective transgene expression | |
| WO2024204215A1 (ja) | 相同染色体の一方のCol7a遺伝子に特異的なDNA欠失を有する細胞を製造する方法 | |
| Prykhozhij et al. | Successful optimization of CRISPR/Cas9-mediated defined point mutation knock-in using allele-specific PCR assays in zebrafish | |
| HK40009103A (en) | Methods for targeted genetic modification using paired guide rnas | |
| Sumiyama et al. | For Mol. Biol. Evol. Letters Loss-of–function mutation in a repressor module of human-specifically activated enhancer HACNS1 | |
| EP3243906A1 (en) | Tissue selective transgene expression | |
| RU2019132992A (ru) | Способы и композиции для модификации целевого локуса |