RU1839183C - Method of solid-phase cultivation of mycelial fungi - Google Patents
Method of solid-phase cultivation of mycelial fungiInfo
- Publication number
- RU1839183C RU1839183C SU4841529A RU1839183C RU 1839183 C RU1839183 C RU 1839183C SU 4841529 A SU4841529 A SU 4841529A RU 1839183 C RU1839183 C RU 1839183C
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- hours
- bran
- growing
- seed
- mpa
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 18
- 241000233866 Fungi Species 0.000 title claims description 5
- 239000007790 solid phase Substances 0.000 title claims description 4
- 235000015099 wheat brans Nutrition 0.000 claims description 16
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N Ammonia Chemical compound N QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 8
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 claims description 8
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 8
- 230000008569 process Effects 0.000 claims description 8
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 6
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 claims description 5
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 claims description 5
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 claims description 5
- 229910021529 ammonia Inorganic materials 0.000 claims description 4
- 238000002156 mixing Methods 0.000 claims description 2
- 101100279436 Caenorhabditis elegans egg-2 gene Proteins 0.000 claims 1
- 238000010129 solution processing Methods 0.000 claims 1
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 12
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 7
- 238000005273 aeration Methods 0.000 description 5
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 4
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 4
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 4
- 230000035784 germination Effects 0.000 description 4
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 4
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 4
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 3
- 235000001674 Agaricus brunnescens Nutrition 0.000 description 2
- 108010073178 Glucan 1,4-alpha-Glucosidase Proteins 0.000 description 2
- 102100022624 Glucoamylase Human genes 0.000 description 2
- 240000005384 Rhizopus oryzae Species 0.000 description 2
- 235000013752 Rhizopus oryzae Nutrition 0.000 description 2
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 2
- 230000032683 aging Effects 0.000 description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 2
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 2
- 238000000227 grinding Methods 0.000 description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 description 2
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 2
- 239000008399 tap water Substances 0.000 description 2
- 235000020679 tap water Nutrition 0.000 description 2
- 102000035195 Peptidases Human genes 0.000 description 1
- 108091005804 Peptidases Proteins 0.000 description 1
- 229920002472 Starch Polymers 0.000 description 1
- 241000209140 Triticum Species 0.000 description 1
- 235000021307 Triticum Nutrition 0.000 description 1
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 1
- 230000004663 cell proliferation Effects 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 238000012512 characterization method Methods 0.000 description 1
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 description 1
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 1
- 229940079919 digestives enzyme preparation Drugs 0.000 description 1
- 230000002538 fungal effect Effects 0.000 description 1
- 230000036571 hydration Effects 0.000 description 1
- 238000006703 hydration reaction Methods 0.000 description 1
- 239000000411 inducer Substances 0.000 description 1
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 description 1
- 230000002906 microbiologic effect Effects 0.000 description 1
- 239000012071 phase Substances 0.000 description 1
- 230000001766 physiological effect Effects 0.000 description 1
- 230000035790 physiological processes and functions Effects 0.000 description 1
- 230000002797 proteolythic effect Effects 0.000 description 1
- 229940024999 proteolytic enzymes for treatment of wounds and ulcers Drugs 0.000 description 1
- 238000010926 purge Methods 0.000 description 1
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 1
- 235000019698 starch Nutrition 0.000 description 1
- 239000008107 starch Substances 0.000 description 1
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
Изобретение относитс к биотехнологии и может найти применение при получе- нии целевых ферментов в процессе выращивани на твердой питательной среде .5The invention relates to biotechnology and may find application in the preparation of target enzymes in the process of growing on a solid nutrient medium. 5
Известны способы поверхностного выращивани микромицетов на твердой питательной среде, включающей пшеничные отруби с добавлением добавок - индукторов биосинтеза и добавок-рыхлителей дл по- IP вышени выхода целевых продуктов 1.Known methods for surface cultivation of micromycetes on a solid nutrient medium, including wheat bran, with the addition of biosynthesis inducers and ripper additives to increase the yield of target products 1.
Недостатком этого способа вл етс невозможность .значительно увеличить выход ферментов из-за ограниченности высоты , питательного сло , затрудн ющего 15 аэриррвание культур. The disadvantage of this method is the inability to significantly increase the yield of enzymes due to the limited height of the nutrient layer, which makes it difficult to 15 airlift crops.
Наиболее близким по технической сущности к изобретению вл етс кювётный способ твердофазного культивировани целиальных грибов, включающий стерили- 20 зацию увлажненных до 58-68% пшеничных отрубей (возможно добавление 5-20 % до- бавок-рыхлителей), инокулирование посевным материалом с содержанием спор не менееО,7млрд;в1 г, тщательное перемеши- 25 вание компонентов, раскладывание в кюветы высотой сло 2-2,5 см и выращиваниеClosest to the technical nature of the invention is a cuvette method for solid-phase cultivation of fungal mushrooms, including sterilization of moistened wheat bran to 58-68% (it is possible to add 5-20% additives of cultivators), inoculation with seed material containing no spores less than O, 7bn; c1 g, thoroughly mixing the components, folding them into cuvettes 2–2.5 cm high and growing
культур в течение 32-48 ч (в зависимости от индивидуальных особенностей микроорга низма) при температуре 30-35°С (в зависи- 30 мости от термофил ьности культуры), при периодической продувке стерильным воздухом с целью аэрировани , уборку камеры, обработку ее формалином, аммиаком, паром .35cultures for 32-48 hours (depending on the individual characteristics of the microorganism) at a temperature of 30-35 ° C (depending on the thermophilicity of the culture), periodically purging with sterile air for aeration, cleaning the chamber, processing it with formalin , ammonia, steam .35
Основным недостатком такого способа вл етс недостаточно высокий выход продукта .The main disadvantage of this method is the insufficiently high yield of the product.
Целью изобретени вл етс повышение выхода биомассы.40The aim of the invention is to increase the yield of biomass.
Это достигаетс тем, что в способе, предусматривающем стерилизацию увлажненных пшеничных отрубей, инокул цию их посевным материалом, перемешивание, раскладывание полученной смеси в кюветы 45 и выращивание, в качестве посевного материала используют грибы рода Rhlzopus, а в процессе выращивани периодически через каждые 20-22 ч наслаивают свежие увлажненные пшеничные отруби толщиной в 1,5- 50 2,0 см до достижени конечной толщины слоев 7-8 см и процесс выращивани ведут в течение 120-124 ч.This is achieved by the fact that in the method involving sterilization of moistened wheat bran, inoculation with seed, stirring, folding the resulting mixture into cuvettes 45 and growing, fungi of the genus Rhlzopus are used as seed, and periodically every 20-22 h. Fresh moistened wheat bran with a thickness of 1.5-50.0 cm is layered until a final layer thickness of 7-8 cm is reached and the growing process is carried out for 120-124 hours.
Способ заключаетс в следующем.The method is as follows.
Кюветы дл поверхностного выращива- 55 ни микроорганизмов размером 40x75 см с высотой бортов 12 см и отверсти ми дл аэрировани культуры моют, обрабатывают формалином, аммиаком и паром. Пшеничные отруби увлажн ют до 58-65 %, стерилизуют в течение 1-1,5 ч при 0,15 МПа. охлаждают и при температуре 40-45°С внос т посевной материал (например, культуры микромицетов Rhlzopus pygmaues pi-e и Rhizopus oryzae 1384-262 на пшеничных отруб х с содержанием спор не менее 0,7 млрд. на 1 г) в количестве 1-2% к объему питательной среды. Смесь тщательно и быстро перемешивают, при этом конечна температура смеси должна быть 30-32°С. Полученную смесь раскладывают в кюветы слоем 2-2,5 см. При использовании более тонкого сло происходит быстрое подсыха- ниетвердофазной питательной среды, а при толщине сло более 2,5 см наблюдаютс недостаточно равномерное прорастание спор в процессе роста, снижение аэрации культуры.Cells for surface cultivation of 55 microorganisms measuring 40x75 cm with a side height of 12 cm and holes for aeration of the culture are washed, treated with formalin, ammonia and steam. Wheat bran is moistened to 58-65%, sterilized for 1-1.5 hours at 0.15 MPa. they are cooled and seed at a temperature of 40-45 ° С is introduced (for example, micromycete cultures Rhlzopus pygmaues pi-e and Rhizopus oryzae 1384-262 on wheat cuts with a spore content of at least 0.7 billion per 1 g) in an amount of 1 -2% to the volume of the nutrient medium. The mixture is thoroughly and quickly mixed, while the final temperature of the mixture should be 30-32 ° C. The resulting mixture is laid out in cuvettes with a layer of 2-2.5 cm. When using a thinner layer, the solid-phase nutrient medium dries quickly, and with a layer thickness of more than 2.5 cm, the spores are not uniformly growing during growth, and the aeration of the culture is reduced.
Проращивание культуры ведут при температуре 30-32РС (наиболее характерные услови дл микромицетов) в течение 20-22 ч. Врем проращивани 20-22 ч характеризуетс особым физиологическим состо нием культуры. К этому времени она находитс в экспоненциальной фазе развити , котора характеризуетс высокой скоростью размножени и началом формировани комплекса экзогенных ферментов, которые вл ютс целевыми продуктами. Врем менее 20 ч недостаточно дл вызревани , достижени наибольшей скорости размножени и развити продуцентов.Germination of the culture is carried out at a temperature of 30-32RS (the most typical conditions for micromycetes) for 20-22 hours. Germination time 20-22 hours is characterized by a special physiological state of the culture. By this time, it is in an exponential phase of development, which is characterized by a high rate of reproduction and the beginning of the formation of a complex of exogenous enzymes, which are the target products. A time of less than 20 hours is not enough to ripen, achieve the highest rate of reproduction and development of producers.
Врем выращивани более 22 ч приводит к резкому снижению скорости размножени клеток на фоне роста их биохимической активности.A growing time of more than 22 hours leads to a sharp decrease in the rate of cell proliferation against the background of an increase in their biochemical activity.
Через 20-22 ч проращивани на твердую поверхность среды наслаивают новый питательный слой - отстерилизованные увлажненные пшеничные отруби высотой 1,5- 2,0 см, поддержива температуру культивировани посто нной (30-32°С). Операцию аналогично повтор ют несколько раз до достижени общей высоты питательного сло 7-8 см. Использование высоты питательного сло менее 743 см не вполне отвечает поставленной цели из-за экономических соображений, а высота сло более см нежелательна в св зи с превалированием старени культуры, снижением ее аэрации, значительным накоплением продуктов биохимической де тельности продуцентов .After 20-22 hours of germination, a new nutrient layer is layered on the solid surface of the medium - sterilized moistened wheat bran 1.5-2.0 cm high, keeping the cultivation temperature constant (30-32 ° C). The operation is similarly repeated several times until a total height of the nutrient layer of 7-8 cm is reached. Using a height of the nutrient layer of less than 743 cm does not quite meet the intended goal due to economic considerations, and a layer height of more than cm is undesirable due to the prevalence of crop aging, reduction its aeration, a significant accumulation of products of biochemical activity of producers.
Рекомендуема обща продолжительность выращивани 120-124 ч установлена экспериментально и св зана также с изменением физиологической активности культуры и снижением возможности к аэрации. При меньшей продолжиюльности оыращи- аани при использоп нии нлол..-инлии невозможно достичь нужной высоты сло , а следовательно, значительно повысить выход продукта с единицы рабочей поверхности . При этом культура не имеет нужного уровн активности ферментов. Врем выращивани более 124 ч нецелесообразно в св зи со старением культуры и снижением выхода активной биомассы.The recommended total growing time of 120-124 hours has been experimentally determined and is also associated with a change in the physiological activity of the culture and a decrease in the possibility of aeration. With a shorter duration of production when using nlol ..- inli, it is impossible to achieve the desired layer height, and therefore, significantly increase the yield of a product from a unit of the working surface. Moreover, the culture does not have the desired level of enzyme activity. A growing time of more than 124 hours is impractical due to the aging of the crop and a decrease in the yield of active biomass.
Пример 1. 1 кг пшеничных отрубей среднего помола с крахмалистостью 18 % увлажн ют водопроводной водой до конечной влажности 63%, стерилизуют в автоклаве при 0,15 МПа в течение 1 ч. Подготовленные отруби охлаждают до 40- 45°С, инокулируют посевным материалом мицелиальных грибов Rhlzopus (2% к массе увлажненных отрубей с содержанием спор 0,7 млрд на 1 г), тщательно перемешивают и раскладывают в кюветы (размером 20x40x12 см) высотой 2 см. Накрывают крышкой и ведут выращивание в течение 20 ч при 30°С. Затем наслаивают на проросшую в питательной среде новую партию аналогично подготовленных отрубей высотой 1,5 см, поддержива температуру посто нной (30°С). Операцию повтор ют через 40, 60 и 80 ч от начала выращивани . Культивирование продолжают до достижени общей продолжительности 120ч, затем поверхностную культуру на пшеничных отруб х извлекают из кюветы и определ ют качество биомассы по уровню глюкоамилаз- ной (ГлА) и протеолитической (ПА) активности , а кювету обрабатывают.Example 1. 1 kg of wheat bran medium grinding with a starchiness of 18% is moistened with tap water to a final moisture content of 63%, sterilized in an autoclave at 0.15 MPa for 1 h. Prepared bran is cooled to 40-45 ° C, inoculated with inoculum mycelial Rhlzopus mushrooms (2% by weight of moistened bran with a spore content of 0.7 billion per g) are thoroughly mixed and placed in cuvettes (20x40x12 cm in size) 2 cm high. Cover and grow for 20 hours at 30 ° C. Then, a new batch of similarly prepared bran 1.5 cm high is layered onto a germinated nutrient medium, keeping the temperature constant (30 ° С). The operation is repeated after 40, 60 and 80 hours from the start of cultivation. Cultivation is continued until a total duration of 120 hours is reached, then the surface culture on the wheat bran is removed from the cuvette and the quality of the biomass is determined by the level of glucoamylase (HLA) and proteolytic (PA) activity, and the cuvette is treated.
Пример 2. 1 кг пшеничных отрубей среднего помола, крахмалистостью 18 % увлажн ют водопроводной водой до конечной влажности 63%, стерилизуют в автоклаве приО,15 МПа втечение 1 ч. Отстерилизован- ные отруби охлаждают и внос т посевной материал. Смесь тщательно перемешивают и раскладывают в кюветы высотой сло 2,5 см. Накрывают крышкой и ведут выращивание 20 ч. Затем новый питательный слой 1,5 см наслаивают на проросшую культуру. Операцию повтор ют через 40, 60.80 ч (при общей продолжительности культивирова-- ни 120 ч. Затем культуру извлекают, определ ют качество биомассы и используют по назначению. Кюветы обрабатывают.Example 2. 1 kg of wheat bran of medium grinding, 18% starch, is moistened with tap water to a final moisture content of 63%, sterilized in an autoclave at 0, 15 MPa for 1 hour. The sterilized bran is cooled and seed is introduced. The mixture is thoroughly mixed and laid out in cuvettes with a layer height of 2.5 cm. Cover and grow for 20 hours. Then a new nutrient layer of 1.5 cm is layered on the sprouted culture. The operation is repeated after 40, 60.80 hours (with a total cultivation time of not 120 hours. Then the culture is removed, the quality of the biomass is determined and used as intended. The cuvettes are processed.
Пример 3. Пшеничные отруби предварительно готов т аналогично примерам 1, 2, раскладывают в кюветы высотой сло 3,0 см. Накрывают крышкой и ведут выращивание в течение 20 ч. Операцию повтор ют через 40, 60, 80 ч от начала выращивани , наслаива сверху пшеничные отруби высотой 1,5 см. По истечении общего времени выращивани 120ч культуру снимают, определ ют качество биомассы и используют, а кюветы обрабатывают.Example 3. Wheat bran is preliminarily prepared in the same way as in examples 1, 2, it is laid out in cuvettes 3.0 cm high. They are covered with a lid and grown for 20 hours. The operation is repeated after 40, 60, 80 hours from the start of growing, layering on top wheat bran 1.5 cm high. After a total cultivation time of 120 hours, the culture is removed, the quality of the biomass is determined and used, and the cuvettes are processed.
Пример 4. Пшеничные отруби (по примерам 1, 2) раскладывают в кюветы вы- 5 сотой сло 2,2 см. Проращивание ведут в течение 21 ч, а затем операцию повтор ют через 42, 63, 84 ч от начала выращивани . выдержива каждый раз высоту сло 1.3 см. По истечении 124 ч от начала процесса куль- 10 туру снимают, определ ют качество биомассы и используют. 4,EXAMPLE 4 Wheat bran (according to Examples 1, 2) is laid out in cuvettes of a 5th hundredth layer of 2.2 cm. Germination is carried out for 21 hours, and then the operation is repeated after 42, 63, 84 hours from the start of cultivation. each time the layer was kept at a height of 1.3 cm. After 124 hours from the beginning of the process, the culture was removed, the quality of biomass was determined and used. 4,
Пример 5. Инокулированные пшеничные отруби (по примерам 1,2) раскладывают в кюветы высотой сло 2 см и проращиваютExample 5. Inoculated wheat bran (according to examples 1,2) are laid out in cuvettes with a layer height of 2 cm and germinated
5 в течение 22 ч. Операцию повтор ют через 44,66 и 88 ч при высоте каждого сло 1,5 см и после последнего наслаивани ведут до- ращивание до общей продолжительности 128 ч, затем поверхностную культуру извле0 кают из кюветы, определ ют активность биомассы и используют.5 for 22 hours. The operation is repeated after 44.66 and 88 hours at a height of each layer of 1.5 cm and after the last layering, growth is continued to a total duration of 128 hours, then the surface culture is removed from the cuvette, the biomass activity is determined and use.
Пример 6. Инокулированные пшеничные отруби (по примерам 1,2) раскладывают в кюветы высотой сло 2 см и проращиваютExample 6. Inoculated wheat bran (according to examples 1,2) are laid out in cuvettes with a layer height of 2 cm and germinated
5 в течение 22 ч. Операцию повтор ют через 44, 66 и 88 ч при высоте каждого сло 1 см. Затем культуру доращивают до общей продолжительности процесса 124 ч. Далее поступают , как в вышеприведенных примерах.5 for 22 hours. The operation is repeated after 44, 66 and 88 hours at a height of each layer of 1 cm. Then, the culture is grown to a total process time of 124 hours. Then proceed as in the above examples.
0 Экспериментальные данные по примерам 1-6 приведены в табл. 1. Опытные данные приведены дл Rhlzopus pygmaues pi-e - продуцента глюкоамилазы и протеолити- ческих ферментов. Аналогична эависи5 мость,отмечена и дл Rhizopus oryzae 1362-284.0 Experimental data for examples 1-6 are shown in table. 1. Experimental data are presented for Rhlzopus pygmaues pi-e, a producer of glucoamylase and proteolytic enzymes. A similar dependence was noted for Rhizopus oryzae 1362-284.
Предлагаемое техническое решение имеет следующие преимущества по сравнению с прототипом:The proposed solution has the following advantages compared to the prototype:
0 снижение трудоемкости за счет сн ти операций по обработке кювет, подготовке посевного материала и ручного труда по раскладыванию инокулированной питательной среды. Дл получени одного и того0 decrease in labor intensity due to removal of operations on processing the ditches, preparation of seed material and manual labor on laying out the inoculated nutrient medium. To get the same
5 же количества культуры по прототипу при рекомендуемой высоте сло 2-2,5 см произ водственный цикл необходимо повторить 3- 4 раза со всеми операци ми по подготовке кювет, помещений, посевного материала,5 the same amount of culture according to the prototype at a recommended layer height of 2-2.5 cm, the production cycle must be repeated 3-4 times with all operations for the preparation of cuvettes, rooms, seed,
0 основного выращивани ;0 basic cultivation;
экономи посевного материала в 4-5 раза, так как дл осуществлени способа по прототипу каждый производственный цикл потребует расход посевного материала 1-2save seed by 4-5 times, since for the implementation of the prototype method, each production cycle will require seed consumption of 1-2
5 % к массе увлажненных отрубей, по предлагаемому техническому решению посевной материал используетс один раз лишь на первой стадии;5% by weight of moistened bran, according to the proposed technical solution, the seed is used only once in the first stage;
увеличение выхода готового продукта (поверхностной культуры) в 2,5-3,0 раза сincrease in the yield of the finished product (surface culture) 2.5-3.0 times
единицы растильной площади при практически одинаковом уровне биохимической активности мицелиальных грибов.units of the growing area with almost the same level of biochemical activity of mycelial fungi.
(56) Жеребцов Н. А.. Щеблыкина Л. В. Культивирование плесневого гриба Rhlzopus pygmaues pi-e на твердых питательных средах . Микробиологическа промьшлен- Обща сравнительна характери- 5 ность, -1972, вып. 2, с. 31.(56) Stallions N.A. Shcheblykina L.V. Cultivation of the mold fungus Rhlzopus pygmaues pi-e on solid nutrient media. Microbiological Industry - General comparative characterization 5, -1972, vol. 2, p. 31.
Грачева И. М. Технологи ферментных препаратов. М.: ВО Агропромиздат, 1987.Gracheva I. M. Technologists of enzyme preparations. M .: VO Agropromizdat, 1987.
стика обоих способов представлена в табл.2.The statistics of both methods are presented in Table 2.
44
1010
ТаблицаTable
ПоказателиIndicators
1. Перечень технологических операций процесса дл получени аналогичного количества поверхностной культуры: подготовка кювет, стерилизаци и увлажнение отрубей1. The list of technological operations of the process to obtain a similar amount of surface culture: preparation of ditches, sterilization and humidification of bran
2. Инокулирование посевным материалом2. Inoculation with seed
3. Выращивание, ч3. Growing, h
4. Съем культуры 5. Обработка, мойка кювет 6. Стерилизаци и увлажнение отрубей4. Culture removal 5. Processing, washing the cuvette 6. Sterilization and hydration of bran
7. Инокулирование посевным материалом7. Inoculation with seed
8. Выращивание, ч 9. Далее процессы повтор ютс 3 раза8. Growing, h 9. Next, the processes are repeated 3 times
10. Высота сло , см 11. Выход продукта (поверхностной культуры с единицы расти л ьной площади), кг/см2 12. Биохимическа активность, ед/г: ГлА ПС 10. The height of the layer, cm 11. The yield of the product (surface culture from a unit to grow ln area), kg / cm2 12. Biochemical activity, units / g: HLA PS
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU4841529 RU1839183C (en) | 1990-06-19 | 1990-06-19 | Method of solid-phase cultivation of mycelial fungi |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU4841529 RU1839183C (en) | 1990-06-19 | 1990-06-19 | Method of solid-phase cultivation of mycelial fungi |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU1839183C true RU1839183C (en) | 1993-12-30 |
Family
ID=21522178
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| SU4841529 RU1839183C (en) | 1990-06-19 | 1990-06-19 | Method of solid-phase cultivation of mycelial fungi |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU1839183C (en) |
-
1990
- 1990-06-19 RU SU4841529 patent/RU1839183C/en active
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Soccol et al. | Breeding and growth of Rhizopus in raw cassava by solid state fermentation | |
| Postma et al. | Competition for glucose between the yeasts Saccharomyces cerevisiae and Candida utilis | |
| Wiegant | Growth characteristics of the thermophilic fungus Scytalidium thermophilum in relation to production of mushroom compost | |
| CN105505786A (en) | Culture method for tricholoma matsutake liquid strain | |
| CN109197381B (en) | Method for planting hypsizygus marmoreus by liquefying solid strains | |
| CN110301291A (en) | A kind of breeding method of hickory chick strain | |
| RU1839183C (en) | Method of solid-phase cultivation of mycelial fungi | |
| RU2409019C2 (en) | Method of bacillar thermoanaerobic preparation of high-quality straw substrate for intense non-sterile cultivation of oyster mushroom | |
| JPH05192036A (en) | Culture of mushroom | |
| US2505360A (en) | Fungus enzyme production | |
| RU2354135C2 (en) | Method of processing plant raw material wastes | |
| CN107574074B (en) | Method for making starter of fen-flavor liquor | |
| JP3277640B2 (en) | Koji making method of puffing brewing raw material | |
| De Reu et al. | Effect of oxygen and carbon dioxide on germination and growth of Rhizopus oligosporus on model media and soya beans | |
| RU2097979C1 (en) | Method for producing biologically active feed additive | |
| CN113412760A (en) | Hypsizigus marmoreus culture medium and hypsizigus marmoreus cultivation process | |
| Trakarnpaiboon et al. | Simultaneous saccharification and fermentation of L-(+)-lactic acid production from liquefied cassava starch by immobilized Rhizopus oryzae in a 3 L airlift fermenter | |
| CN115286440B (en) | Fish peptide microbial fertilizer and preparation method thereof | |
| CN111920002A (en) | Preparation method of red yeast rice | |
| JP3417001B2 (en) | Koji making method of puffed brewing raw material | |
| CN115232754B (en) | Preparation method of soy sauce daqu | |
| SU1701240A1 (en) | Method for processing grapevine into feed product | |
| KR880001878B1 (en) | A process for soya sauce | |
| SU1742320A1 (en) | Strain of yeast saccharomyces cerevisiae - a biomass producer on starch, used in baking of bread | |
| RU2127755C1 (en) | Method of culturing fungi of genus monascus |