[go: up one dir, main page]

RU1814065C - Способ определени концентрации сульфидов в физических средах - Google Patents

Способ определени концентрации сульфидов в физических средах

Info

Publication number
RU1814065C
RU1814065C SU4689469A RU1814065C RU 1814065 C RU1814065 C RU 1814065C SU 4689469 A SU4689469 A SU 4689469A RU 1814065 C RU1814065 C RU 1814065C
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
activity
enzyme
concentration
determination
buffer
Prior art date
Application number
Other languages
English (en)
Inventor
Даце Юльевна Балцере
Беата Андреевна Гринберг
Андрей Петрович Гринберг
Елена Борисовна Никольская
Марина Михайловна Дианова
Original Assignee
Научно-производственное объединение "Биолар"
Латвийский Государственный Университет Им.П.Стучки
Институт Микробиологии Им.А.Кирхенштейна
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Научно-производственное объединение "Биолар", Латвийский Государственный Университет Им.П.Стучки, Институт Микробиологии Им.А.Кирхенштейна filed Critical Научно-производственное объединение "Биолар"
Priority to SU4689469 priority Critical patent/RU1814065C/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU1814065C publication Critical patent/RU1814065C/ru

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к ферментному анализу и может примен тьс  в химическом анализе, химико-технологическом анализе, дл  контрол  загр знени  природных вод, почвы и атмосферы. Целью изобретени   вл етс  повышение точности определени . В экспериментальную  чейку внос т биокатализатор с моноаминооксидаэной активностью , растворенный в буфере с рН 7-9, добавл ют тирамин или серотонин, выдерживают полученную смесь, определ ют активность фермента, внос т анализируемую пробу в смесь и повторно определ ют активность фермента. После этого рассчитывают соотношение полученных величин активностей фермента и определ ют концентрацию сульфидов в пробе по калибровочному графику . ел с Поставленна  цель достигаетс  тем, что в качестве ферментного препарата используют бмокатализатор с моноаминоксидаз- ной активностью, рН буферного раствора составл ет от 7 до 9, а в качестве субстрата используют тирамин или серотоник. Повышение точности определени  предложенным способом оказалось воз00 I о ел

Description

можным с применением биокатализатора с МАО активностью. Ингибирующее действие сульфидов на МАО оказалось сильнее, чем на другие ферменты, в том числе на перок- сидазу. Уже при концентрации HzS и сульфидов 1 -КГ5 М их ингибирующее действие вызывает заметное изменение ферментативной активности МАО. Применение фермента в иммобилизованной форме позвол ет определить ферментативную активность препарата при повышенной температуре, обеспечивающей про влени  наименьших изменений ферментативной активности.
Среда буфера с рН 7,0-9,0 оказалась- оптимальной дл  взаимодействи  сульфидов с МАО. Данна  область рН также обеспечивает смещение равновеси  в процессе диссоциации Й25 в сторону образовани  ибна сульфида. Последний  вл етс  ингиби- р.дрм фермента МАО. Степень ингибирова- нЙ1 МАО зависит от концентраций иона сульфида, следовательн.о, и от концентрации сероводорода. О степени инги- бировани  МАО суд т по изменению ферментативной активности в реакции окислительного дезаминироёани  моноаминов , например шрамина, серЬтонйна.
Применение двух субстратов позвол ет определить сульфиды при любой концентрации их в исследуемой среде. Это особенно важно дл  контрол  высоких содержаний анализируемого вещества, например, в промышленных сточных водах, илах и т.д. МАО активность препарата можно измер ть любым методом определени  активности этого фермента (по Конвею, электродом с газовым зазором и др.).
Использование предложенного способа не требует предварительной обработки мутных или окрашенных сточных вод. Коллоидный состав анализируемой пробы не вли ет на точность результата анализа. Отсутствие предварительной обработки анализируемой пробы исключает ошибку из-за возможного св зывани  присутствующего сульфида.
В случае измерени  активности МАО с помощью электрода с газовым зазором ошибка составл ет ± 1%, В предлагаемом способе объем анализа не вли ет на точность результата. В случае высоких концентраций HaS анализируют меньший объем исследуемой пробы. Это особенно важно при анализе воздуха в зонах очистных сооружений , при метановом брожении активного ила и в биотазах при анаэробном сбраживании сельскохоз йственных отходов , где концентраци  сероводорода может достигать 1.
Способ заключаетс  в следующем. Определ етс  МАО активность иммобилизованного препарата по субстрату тирамину или серотонину. Ферментный
препарат инкубируетс  с пробой, содержащей N28 или растворенный сульфид при заданном рН 7,0-9,0 в буфере После инкубации определ етс  остаточна  активность иммобилизованной МАО тем же способом определени  активности. Наход т соотношение ферментативных активностей Oo/Q и далее Ig вь/ft. По калибровочному графику соответствующего субстрата при данной температуре инкубации наход т
концентрацию сульфида в анализируемой . пробе. .:.- . V . ; .-..- .. Л ри м е р 1. Определение исходной МАО активно стй .. .;/ :/:- - . ,.. : -- :.:V;-
0,4 г биокатализатора с МАО актйвио- стью согласно авт. свйд.№1146322 помещают в  чейку, которую на 10 мин помещают в 0,0f M фосфатный буфер с рН 7,0. Затем  чейку с ферментным препаратом перенос т в тёрмбстатируемый сосуд электрода с газовым зазором. Туда же забивают реакционную смесь: 0,1 М фосфатного буфера 3 Мл (рН 7,0) и I мл субстрата - серотонина с концентрацией 4-10 М (концентраци  в
пробе 1 М). В течение 10 мин через раствор пропускают кислород при посто нном перемешивании. Далее поток перекрывают и Терметически закрытый сосуд выдерживают 50 мин при 20°С с йнтенсивным перемешиванием. После инкубации ферментсодёржащую  чейку вынимают, в сосуд добавл ют 1,4 г HCI, закрывают пробкой с рН стекл нным электродом, на поверхность которого помещена капл  0,2%-ного
раствора тритона Х-305 в. бидистиллиро- ванной воде, снова пропускают 02 без С02 и затем через капилл р ввод т в реакционную смесь 0,2 мл 1 М NaOH () дл  полного освобождени  аммиака. После установлени  посто нного потенциала (рН) на электроде ( 20 мин) записывают показани  потенциометра (рН-метра).
Взаимодействие ферментного препарата с сульфидом и определение остаточной
ферментной активности.
, Ячейку с ферментным препаратом пере- нос т из буферного раствора в анализируемый раствор следующего состава: 5 мл раствора NaaS с концентрацией 4,6-10 М
и 5 мл 0,01 М фосфатного буфера с рН 7,0. Инкубируют при перемешивании.
Затем  чейку с ферментом перенос т в буфер дл  промывани  и определ ют остаточную МАО активность.
Дл  анализа используют тот же метод и те же услови , что дл  анализа исходной МАО активности.
Наход т соотношение показаний потенциометра при анализе исходной и оста- точной активности, что  вл етс  величиной во/ft, равной 1 33. Потом наход т д во/ft, равный 0,12. По калибровочной кривой в координатах Ig во/ft -l(t) с использованием серотонина в качестве субстрата наход т концентрацию сульфида (Г3 моль/л 1.0 мин, Разделением данной величины на 10 наход т концентрацию сульфида в анализируемой пробе, т.е. 2, М.
Пример 2.
Определение исходной МАО активности аналогично примеру 1.
Взаимодействие ферментного препарата с сульфидом.
Ячейку с 0,4 г ферментного препарата перенос т из буферного раствора с рН 8,0 в анализируемый раствор следующего состава: 5 мл раствора сул ьфида натри  с концентрацией 4, и 5 мл 0,01 М фосфатного буфера с рН 8,0 Инкубируют при переме- шИвании. . ....;/;. // /,////.
Определение остаточной МАО активности аналогично исходной МАО активности. Наход т соотношение #о/$, равной 3,9, и далее Ig во/ft 0,59.
По калибровочной кривой с использованием серотонина в качестве субстрата наход т концентрацию сульфида 2, М. // .Пример 3. ... / . ;;/
Определение исходной МАО активно- сти аналогично примеру 1.
Взаимодействие ферментного препарата с сульфидом.
Ячейку с 0,4 г ферментного препарата перенос т из буферного раствора с рН 9,0 в анализируемый раствор следующего состава: 5 мл раствора NaaS с концентрацией 4, и 5 мл 0,01 М фосфатного буфера с рН 9,0. Инкубируют в пробе при перемешивании . Затем  чейку с ферментным препаратом перенос т в буфер дл  промывани  и определ ют остаточную МАО активность аналогично определению исходной МАО активности . Наход т соотношение во/ft, рав- ное 12,1, и далее Ig во/ft, равный 1,08.
По калибровочной кривой с использованием серотонина в качестве субстрата нахо
I - - г- хд т концентрацию сульфида 2,3-10 М.
П р и м е р 4.Определение исходной МАО активности аналогично примеру 1.
Ячейку с ферментсодержащим препаратом перенос т из буферного раствора с рН 9,0 в анализируемый состав: 5 мл раствора Na2$ с концентрацией 4. М и 5 мл буфера с рН 9,0. Инкубируют с ферментным препаратом при перемешивании. Определ ют остаточную МАО активность и наход т соотношение во/ft, равное 11,8, и далее определ ют д во/ft, равный 1,07. -.; i
По калибровочной кривой с использованием -тирамина в качестве субстрата наход т концентрацию сульфида 2 -10 М.
П риме р 5.
Определение сульфидов в сточных во
дах. .: ; ....; / ;/ Определение исходной МАО активности аналогично примеру 1. ./
Анализируемый состав: 5 мл сточных вод, 5 мл буфера с рН 8,0. Инкубированйё с ферментным препаратом провод т при перемешивании в течение 60 мин при 20°С, Соотношение во/ft равно 1,1. Далее определ ют Ig &/$, равный 0,04,
По калибровочной кривой с использованием тирамина определ ют концентрацию сульфидов, равную М.
Ф ормула изоб рете н и  
Способ определени  концентрации сульфидов в физических средах, предусматривающий отбор пробы среды, внесение ферментного препарата, растворённого в буфере в экспериментальную  чейку, добавление субстрата, выдерживание получен ной смеси, определение активности ферментного препарата, последующее внесение анализируемой пробы в реакционную смесь и повторное определение активности ферментного препарата, расчет соотношени  полученных величин активностей ферментного препарата и определение концентрации сульфидов по калибровочному графику, о т л и ч а ю щ ий с   тем, что, с целью повышени  точности определени , в качестве ферментного препарата используют биокатализатор с моноаминооксидазной активностью, рН буферного раствора составл ет от 7 до 9, а в качестве субстрата используют тирании или серотонин.
SU4689469 1989-05-03 1989-05-03 Способ определени концентрации сульфидов в физических средах RU1814065C (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU4689469 RU1814065C (ru) 1989-05-03 1989-05-03 Способ определени концентрации сульфидов в физических средах

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU4689469 RU1814065C (ru) 1989-05-03 1989-05-03 Способ определени концентрации сульфидов в физических средах

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU1814065C true RU1814065C (ru) 1993-05-07

Family

ID=21446694

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU4689469 RU1814065C (ru) 1989-05-03 1989-05-03 Способ определени концентрации сульфидов в физических средах

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU1814065C (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8642344B2 (en) 2007-09-18 2014-02-04 Bioengineering Laboratories, Llc Method for measuring substrate concentration

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Химический анализ воздуха промышленных предпри тий, Хими , Ленинград, 1973, с. 398. 2. Гершкович Е.Э., Методы определени вредных веществ в воздухе. Под ред. проф. Перегуд Е.А., Л., 1968, с. 95. 3. Лакшминара найах. Н. Мембранные электроды, Л.; Хими , 1979, с. 317. .4. Бебешко Г.И., Олешко О.Н., ЖАХ, 1982, 37 №4, 640-644. 5. Горностаева Т.Д.. Пронин В.А., Семенов В.Я., Заводска лаборатори , 1983. 49 №7. с. 14-16. 6. Gulens ., Herristorr H.D., Anal. Chem. Acta, 1982, 138, p. 55-83. 7. Gullbault G.G., Enrymatlc methods of analyses, Oxford, Pergamon Press, 1970, p. 362. 8. Gullbault G.G., Brignac P., Zlmnuer M., Anal. Chem., 1968,40, p. 190. Изобретение относитс к ферментному анализу и может примен тьс в химическом анализе, химико-технологическом анализе, дл контрол загр знени природных вод, почвы и атмосферы. Целью изобретени вл етс повышение точности определени концентрации сульфидов. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8642344B2 (en) 2007-09-18 2014-02-04 Bioengineering Laboratories, Llc Method for measuring substrate concentration
US8641972B2 (en) 2007-09-18 2014-02-04 Bioengineering Laboratories, Llc Device for measuring substrate concentration

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Hu Degradation of azo dye RP2B by Pseudomonas luteola
Dönmez Bioaccumulation of the reactive textile dyes by Candida tropicalis growing in molasses medium
Patil et al. The use of protocatechuate dioxygenase for maintaining anaerobic conditions in biochemical experiments
González-Sánchez et al. The effect of chemical oxidation on the biological sulfide oxidation by an alkaliphilic sulfoxidizing bacterial consortium
Conrad et al. Production and consumption of hydrogen in a eutrophic lake
Dong et al. Reduction of Fe (III) EDTA in a NOx scrubber liquor by a denitrifying bacterium and the effects of inorganic sulfur compounds on this process
JPH0533997B2 (ru)
Stefess et al. Quantitative measurement of sulphur formation by steady-state and transient-state continuous cultures of autotrophic Thiobacillus species
Lapierre et al. Developing a fluorometric urease activity microplate assay suitable for automated microbioreactor experiments
US5403488A (en) Process for the regulation of an activated sludge clarification plan
RU1814065C (ru) Способ определени концентрации сульфидов в физических средах
Tran et al. An enzyme electrode for specific determination of l‐lysine: A real‐time control sensor
Lewis et al. Multiphasic kinetics for transformation of methyl parathion by Flavobacterium species
Kobos et al. Application of microbial cells as multistep catalysts in potentiometric biosensing electrodes
US4329425A (en) Method for determination of transaminases and relative diagnostic kit
Ingols et al. Study of chromium toxicity by several oxygen demand tests
FI91645C (fi) Vetyperoksidia (H202) muodostava sarkosinoksidaasi, sen valmistaminen ja käyttö
JPH1014596A (ja) 体液中の成分の測定法およびその試薬
Simonian et al. A tryptophan-2-monooxygenase based amperometric biosensor for L-tryptophan determination: use of a competitive inhibitor as a tool for selectivity increase
Verstraete et al. Evaluation of some enzymatic methods to measure the bio-activity of aquatic environments
Corcoran et al. Selectivity enhancement of a bacterial arginine electrode
Yamaguchi et al. Enzyme activity for monitoring the stability in a thermophilic anaerobic digestion of wastewater containing methanol
Sohn et al. Rapid estimation of biochemical oxygen demand using a microbial multi-staged bioreactor
Liu et al. Nitrogen removal performance of sulfur autotrophic denitrification under different S2O32− additions using isotopic fractionation of nitrogen and oxygen
PANKHURST The biological oxidation of spent gas liquor