PL219076B1 - Sposób wytwarzania resorbowalnej membrany do sterowanej regeneracji tkanek - Google Patents
Sposób wytwarzania resorbowalnej membrany do sterowanej regeneracji tkanekInfo
- Publication number
- PL219076B1 PL219076B1 PL391519A PL39151910A PL219076B1 PL 219076 B1 PL219076 B1 PL 219076B1 PL 391519 A PL391519 A PL 391519A PL 39151910 A PL39151910 A PL 39151910A PL 219076 B1 PL219076 B1 PL 219076B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- membrane
- polyethylene glycol
- mixture
- resorbable
- tissue regeneration
- Prior art date
Links
- 239000012528 membrane Substances 0.000 title claims description 51
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 16
- 230000017423 tissue regeneration Effects 0.000 title claims description 10
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title description 8
- YMWUJEATGCHHMB-UHFFFAOYSA-N Dichloromethane Chemical compound ClCCl YMWUJEATGCHHMB-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 24
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 17
- 239000002202 Polyethylene glycol Substances 0.000 claims description 14
- 229920001223 polyethylene glycol Polymers 0.000 claims description 14
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 claims description 13
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 12
- 229920001577 copolymer Polymers 0.000 claims description 8
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 claims description 7
- 239000007943 implant Substances 0.000 claims description 6
- 239000002904 solvent Substances 0.000 claims description 6
- 238000001035 drying Methods 0.000 claims description 5
- 239000012634 fragment Substances 0.000 claims description 5
- 238000002513 implantation Methods 0.000 claims description 5
- 230000005855 radiation Effects 0.000 claims description 5
- MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N Hydrogen peroxide Chemical compound OO MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- DNIAPMSPPWPWGF-UHFFFAOYSA-N Propylene glycol Chemical compound CC(O)CO DNIAPMSPPWPWGF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 9
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 description 9
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 7
- 229920001661 Chitosan Polymers 0.000 description 6
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 230000004888 barrier function Effects 0.000 description 6
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 5
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 description 4
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 description 4
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 description 4
- 230000000875 corresponding effect Effects 0.000 description 4
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 4
- 239000000041 non-steroidal anti-inflammatory agent Substances 0.000 description 4
- 229940021182 non-steroidal anti-inflammatory drug Drugs 0.000 description 4
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 4
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 description 4
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 4
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 3
- 239000000017 hydrogel Substances 0.000 description 3
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 3
- 229920000609 methyl cellulose Polymers 0.000 description 3
- 239000001923 methylcellulose Substances 0.000 description 3
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 3
- 230000035515 penetration Effects 0.000 description 3
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 description 3
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 3
- RKDVKSZUMVYZHH-UHFFFAOYSA-N 1,4-dioxane-2,5-dione Chemical compound O=C1COC(=O)CO1 RKDVKSZUMVYZHH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- UFHFLCQGNIYNRP-UHFFFAOYSA-N Hydrogen Chemical compound [H][H] UFHFLCQGNIYNRP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920003232 aliphatic polyester Polymers 0.000 description 2
- 230000010478 bone regeneration Effects 0.000 description 2
- 210000000845 cartilage Anatomy 0.000 description 2
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 2
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 2
- 239000001257 hydrogen Substances 0.000 description 2
- 229910052739 hydrogen Inorganic materials 0.000 description 2
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 description 2
- 230000003239 periodontal effect Effects 0.000 description 2
- 150000002978 peroxides Chemical class 0.000 description 2
- 229920000747 poly(lactic acid) Polymers 0.000 description 2
- 102000000503 Collagen Type II Human genes 0.000 description 1
- 108010041390 Collagen Type II Proteins 0.000 description 1
- 229920001634 Copolyester Polymers 0.000 description 1
- MYMOFIZGZYHOMD-UHFFFAOYSA-N Dioxygen Chemical compound O=O MYMOFIZGZYHOMD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- VGGSQFUCUMXWEO-UHFFFAOYSA-N Ethene Chemical compound C=C VGGSQFUCUMXWEO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000005977 Ethylene Substances 0.000 description 1
- 206010020751 Hypersensitivity Diseases 0.000 description 1
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 1
- 206010042618 Surgical procedure repeated Diseases 0.000 description 1
- 238000001994 activation Methods 0.000 description 1
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000012620 biological material Substances 0.000 description 1
- 239000001506 calcium phosphate Substances 0.000 description 1
- 235000011010 calcium phosphates Nutrition 0.000 description 1
- 238000003763 carbonization Methods 0.000 description 1
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 1
- 239000004568 cement Substances 0.000 description 1
- 230000009920 chelation Effects 0.000 description 1
- 239000002131 composite material Substances 0.000 description 1
- 230000002596 correlated effect Effects 0.000 description 1
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 description 1
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 1
- 210000000981 epithelium Anatomy 0.000 description 1
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 1
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 1
- 210000001648 gingival epithelial cell Anatomy 0.000 description 1
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 1
- JJTUDXZGHPGLLC-UHFFFAOYSA-N lactide Chemical compound CC1OC(=O)C(C)OC1=O JJTUDXZGHPGLLC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 1
- 239000012567 medical material Substances 0.000 description 1
- 239000004745 nonwoven fabric Substances 0.000 description 1
- 230000003647 oxidation Effects 0.000 description 1
- 238000007254 oxidation reaction Methods 0.000 description 1
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 1
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 1
- 244000052769 pathogen Species 0.000 description 1
- 238000005191 phase separation Methods 0.000 description 1
- 229920000151 polyglycol Polymers 0.000 description 1
- 239000010695 polyglycol Substances 0.000 description 1
- 239000004626 polylactic acid Substances 0.000 description 1
- 229920002959 polymer blend Polymers 0.000 description 1
- 239000002685 polymerization catalyst Substances 0.000 description 1
- -1 polytetrafluoroethylene Polymers 0.000 description 1
- 229920001343 polytetrafluoroethylene Polymers 0.000 description 1
- 239000004810 polytetrafluoroethylene Substances 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 230000001172 regenerating effect Effects 0.000 description 1
- 229920006395 saturated elastomer Polymers 0.000 description 1
- 210000004872 soft tissue Anatomy 0.000 description 1
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
- QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H tricalcium bis(phosphate) Chemical class [Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H 0.000 description 1
- YFHICDDUDORKJB-UHFFFAOYSA-N trimethylene carbonate Chemical compound O=C1OCCCO1 YFHICDDUDORKJB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- PAPBSGBWRJIAAV-UHFFFAOYSA-N ε-Caprolactone Chemical compound O=C1CCCCCO1 PAPBSGBWRJIAAV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2430/00—Materials or treatment for tissue regeneration
- A61L2430/02—Materials or treatment for tissue regeneration for reconstruction of bones; weight-bearing implants
Landscapes
- Materials For Medical Uses (AREA)
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania resorbowalnej membrany do sterowanej regeneracji tkanek, znajdującej zastosowanie zwłaszcza do leczenia ubytków tkanek przyzębia lub kości wyrostka zębodołowego za pomocą metody sterowanej regeneracji tkanek. Membrana taka ma za zadanie z jednej strony niedopuszczenie komórek nabłonkowych dziąsła do wnętrza ubytku kostnego i na powierzchnię korzenia, a z drugiej strony powinna stymulować regenerację tkanki kostnej w miejscu ubytku, tj. zarówno cementu korzeniowego jak i kości wyrostka zębodołowego.
W praktyce medycznej najczęściej wykorzystuje się membrany nieresorbowalne, wykonane z politetrafluoroetylenu, oraz membrany resorbowalne wykonane z kolagenu bądź z poliestrów alifatycznych (kopolimery glikolidu, węglanu trimetylenu lub polilaktydów).
Z polskiego opisu patentowego PL 168669 znany jest sposób wytwarzania kolagenowych materiałów medycznych w postaci cienkościennych błon o cechach spełniających wymagania stawiane biomateriałom przeznaczonym do kontaktu z tkankami.
Z opisu patentowego US 5837278 znana jest metoda wytwarzania włóknistej resorbowalnej membrany kolagenowej do sterowanej regeneracji tkanek, w której jedna powierzchnia jest gładsza i mniej porowata, przez co zapobiega wnikaniu niepożądanych komórek, zaś druga strona membrany jest bardziej porowata, przez co ułatwia pożądanym komórkom wnikanie do wnętrza membrany.
Z opisu patentowego US 6169046 znany jest sposób wytwarzania resorbowanej membrany zaporowej przeznaczonej do sterowanej regeneracji tkanek u zwierząt i ludzi wytworzonej z kopoliestru laktydowego, z którego usunięto katalizator polimeryzacji na drodze chelatowania. Membrana ta może również zawierać fosforany wapnia.
Z polskiego opisu patentowego 191497 znana jest wielowarstwowa membrana użyteczna do stosowania w rekonstrukcji kości lub tkanki chrzestnej in vivo, sposób jej wytwarzania oraz jej zastosowanie. Wynalazek dotyczy wielowarstwowej membrany obejmującej warstwę macierzową zbudowaną zasadniczo z kolagenu typu II i posiadającą budowę otwartą podobną do gąbki i co najmniej jedną warstwę posiadającą budowę zamkniętą stosunkowo nieprzepuszczalną. Membrana taka jest szczególnie użyteczna do prowadzenia ukierunkowanej regeneracji tkanki, w szczególności do rekonstrukcji in vivo tkanki kostnej lub chrzęstnej. Z polskiego zgłoszenia P-350948 znany jest sposób wykonywania membran barierowych. Sposób wykonywania membran barierowych ma zastosowanie w produkcji błon, przeznaczonych dla sterowanej regeneracji tkanek i sterowanej regeneracji kości w chirurgii stomatologicznej, chirurgii szczękowotwarzowej, periodontologii, a zwłaszcza w implantologii stomatologicznej. Sposób wykonywania membran charakteryzuje się tym, że tworzy się mieszaninę składającą się z mikrokrystalicznego chitozanu w ilości 2 g w postaci 3% żelowej zawiesiny, około 0,03 g glicerolu lub glikolu propylenowego oraz 4 ml wody destylowanej, którą po wymieszaniu wylewa się na nie przywierającą płytkę i następnie suszy się w temperaturze nie przekraczającej 25°C do osiągnięcia makroskopowo suchej membrany. W czasie mieszania składników, zależnie od potrzeb wprowadza się dodatkowo niesteroidowy lek przeciwzapalny. Membranę stanowi sucha pozostałość składników, w której wagowo chitozan występuje w około 100% zawartości. Membrana może zawierać niesteroidowy lek przeciwzapalny.
Z polskiego opisu patentowego nr 198542 znana jest trójwarstwowa membrana barierowa. Sposób wykonywania trójwarstwowych membran barierowych, przeznaczonych dla sterowanej regeneracji tkanek i sterowanej regeneracji kości, mających zastosowanie w chirurgii stomatologicznej, chirurgii szczękowotwarzowej i periodontologii, zwłaszcza w implantologii stomatologicznej, charakteryzuje się tym, że mieszaninę składającą się z mikrokrystalicznego chitozanu w ilości 1,5 g w postaci 3% hydrożelu, około 0,03 glicerolu lub glikolu propylenowego oraz 4 ml wody destylowanej, po wymieszaniu wylewa się na nieprzywierającą płytkę. Następnie suszy się w temperaturze nie przekraczającej 25°C do osiągnięcia prawie suchej powierzchni, na którą wylewa się drugą warstwę składającą się z 1 g hydrożelu metylocelulozy. Ponownie suszy się do osiągnięcia prawie suchej powierzchni, na którą wylewa się mieszaninę z 1,5 g hydrożelu mikrokrystalicznego chitozanu oraz 0,03 g glikolu propylenowego, po czym suszy się w temperaturze nie przekraczającej 25°C do osiągnięcia makroskopowo suchej membrany. W czasie mieszania składników sposób przewiduje wprowadzenie do co najmniej jednej warstwy niesteroidowego leku przeciwzapalnego. Trójwarstwowa membrana barierowa ma zewnętrzne warstwy (1, 3) z chitozanu i środkową warstwę (2) wykonaną z metylocelulozy, przy czym udział wagowy warstw z chitozanu do warstwy z metylocelulozy jest równy 3:1 i może zawierać niesteroidowy lek przeciwzapalny w co najmniej jednej warstwie.
Z polskiego opisu patentowego nr 191004 znany jest sposób wytwarzania warstwowych implantów chirurgicznych polegający na tym, że włókna organiczne, korzystnie w postaci włókniny lub krótkiego,
PL 219 076 B1 ciętego włókna, poddaje się wstępnemu procesowi utleniania w temperaturze 200 - 280°C w czasie 0,5 - 4 godzin, do uzyskania koncentracji tlenu w strukturze włókna elementarnego od 10 - 50% wagowych, po czym poddaje się je procesowi karbonizacji w atmosferze beztlenowej w temperaturze 900 - 1200°C, a następnie otrzymaną włókninę chłodzi się i poddaje procesowi aktywacji w atmosferze czystego tlenu przez 5-60 minut w temperaturze 300 - 350°C i nasyca roztworem polimeru, korzystnie polikwasu mlekowego i chlorku metylenu o stężeniu 5 - 40% wagowych, w warunkach naprężeń ściskających, uzyskany laminat kompozytowy suszy się w warunkach podciśnienia od 0,8 - 0,1 atm przez 10 minut do 15 godzin, a następnie nakłada się drugą warstwę postaci błonki o grubości do 0,7 mm, wytworzonej z polimeru resorbowalnego, o stężeniu w rozpuszczalniku 5 - 40% wagowych, łącząc ją z laminatem w warunkach podciśnienia 0,1 - 0,8 atm. w temperaturze 40 - 50°C przez 10 minut do 2 godzin.
Wadą dotychczas stosowanych membran nieresorbowanych jest to, że istnieje konieczność ich usunięcia podczas powtórnego zabiegu chirurgicznego (po ok. 4 - 6 tyg.), co często sprzyja infekcjom i może spowodować uszkodzenie nowopowstałej niedojrzałej tkanki kostnej. Błony resorbowalne z kolagenu nie wymagają usunięcia, jednakże ich wadą jest możliwość wystąpienia reakcji alergicznych na obcogatunkowe białko a także możliwość przeniesienia patogenów. Błony resorbowalne z poliestrów alifatycznych mają budowę włóknistą w której zarówno wielkość porów jak i ich udział objętościowy są trudne do kontrolowania. Celem wynalazku jest otrzymanie resorbowalnej membrany o takiej mikrostrukturze, która stwarzałaby korzystne warunki do odbudowy tkanki kostnej.
Sposób wytwarzania resorbowalnej membrany do sterowanej regeneracji tkanek, według wynalazku polega na tym, że przygotowuje się 1 - 5% roztwór biozgodnego resorbowalnego polimeru, korzystnie kopolimeru glikolidu z laktydem lub kopolimeru glikolidu z ε-kaprolaktonem, w chlorku metylenu, do którego następnie wprowadza się poliglikol etylenowy o masach cząsteczkowych od 100 Da do 5000 Da, przy czym ilość wprowadzanego poliglikolu etylenowego jest taka, aby jego udział objętościowy w mieszaninie z polimerem resorbowalnym wynosił od 10 do 70%. Mieszaninę polimerów w chlorku metylenu homogenizuje się w temperaturze pokojowej. Dochodzi wówczas do separacji faz w mieszaninie polimeru resorbowalnego i poliglikolu etylenowego z wytworzeniem kulistych wydzieleń o średnicy kilku mikrometrów. Średnica wydzieleń zależy od masy cząsteczk owej poliglikolu etylenowego, stąd możliwe jest sterowanie wielkością wydzieleń poliglikolu etylenowego w mieszaninie polimerowej. Następnie mieszaninę odlewa się na gładką powierzchnię, np. szklaną suszy się w temperaturze 20-40°C do odparowania rozpuszczalnika przez 24 - 48 h.
W wyniku różnic w gęstości obu rozpuszczonych składników na tym etapie dochodzi do zjawiska sedymentacji wydzieleń polimeru o większej gęstości i nagromadzenia się ich przy powierzchni szklanej, co w konsekwencji umożliwia uzyskanie membrany asymetrycznej o anizotropowym rozkładzie porów. Zestaloną folię umieszcza się w wodzie destylowanej w temperaturze 25°C przez czas potrzebny do wypłukania poliglikolu etylenowego (24 - 72 h), wymieniając wodę co najmniej 15 razy aż do uzyskania porowatej membrany o założonej wielkości porów i ich rozmieszczeniu. Następnie membranę suszy się na powietrzu i w suszarce próżniowej w warunkach podciśnienia 0,01 - 0,08 MPa w temperaturze 20 - 40°C przez 12 - 24 h. Z membrany po wysuszeniu wycina się fragmenty o kształcie i wymiarach odpowiadających miejscu implantacji, po czym uzyskane implanty wyjaławia się za pomocą plazmy nadtlenku wodoru lub metodą radiacyjną.
Materiał otrzymany sposobem według wynalazku posiada wiele zalet: jest biozgodny, poręczny chirurgicznie, nie wymaga powtórnej operacji w celu jego usunięcia, jego czas degradacji jest skor e lowany z czasem regeneracji tkanek, można go łatwo formować poprzez wycinanie nożyczkami lub za pomocą stempla i przez to dopasowywać do miejsca ubytku. Ponadto dzięki swojej budowie anizotropowej stanowi idealne podłoże do regeneracji tkanek przyzębia i wyrostka zębodołowego przeciwdziałając wnikaniu nabłonka i tkanki miękkiej do miejsca regenerującej się kości. W odróżnieniu od dotychczasowych rozwiązań opierających się na materiałach resorbowalnych w formie włóknistej, proponowane rozwiązanie umożliwia otrzymanie anizotropowych membran o zdefiniowanej budowie mikro-strukturalnej, o założonej wielkości porów i ich rozmieszczeniu.
P r z y k ł a d 1
Kopolimer glikolidu z laktydem o stosunku molowym komonomerów równym 15:85 rozpuszcza się w chlorku metylenu przygotowując roztwór 2%. Następnie dodaje się taką ilość poliglikolu etylenowego o masie cząsteczkowej 400 Da, aby jego udział objętościowy w mieszaninie z polimerem resorbowalnym wynosił 60% i homogenizuje się mieszaninę na mieszadle magnetycznym przez 12 h w temperaturze 25°C. Następnie mieszaninę odlewa się na gładką powierzchnię, np. szklaną suszy się w temperaturze 40°C do odparowania rozpuszczalnika przez 24 h, po czym zestaloną folię
PL 219 076 B1 umieszcza się w wodzie destylowanej w temperaturze 25°C przez czas 48 h potrzebny do wypłukania poliglikolu etylenowego, wymieniając wodę co najmniej 15 razy aż do uzyskania porowatej membrany. Następnie membranę suszy się na powietrzu i w suszarce próżniowej w warunkach podciśnienia 0,06 MPa w temperaturze 40°C przez 24 h. Z membrany po wysuszeniu wycina się fragmenty o kształcie i wymiarach odpowiadających miejscu implantacji, po czym uzyskane implanty wyjaławia się za pomocą plazmy nadtlenku wodoru lub metodą radiacyjną.
Membrana cechuje się budową anizotropową jedna jej powierzchnia jest gładsza a druga bardziej chropowata. Wielkość porów w membranie wynosi do 2 μm na górnej powierzchni i do 10 μm na powierzchni dolnej.
P r z y k ł a d 2
Kopolimer glikolidu z laktydem o stosunku molowym komonomerów równym 15:85 rozpuszcza się w chlorku metylenu przygotowując roztwór 2%. Następnie dodaje się taką ilość poliglikolu etylenowego o masie cząsteczkowej 1000 Da, aby jego udział objętościowy w mieszaninie z polimerem resorbowalnym wynosił 60% i homogenizuje się mieszaninę na mieszadle magnetycznym przez 12 h w temperaturze 25°C. Następnie mieszaninę odlewa się na gładką powierzchnię, np. szklaną suszy się w temperaturze 40°C do odparowania rozpuszczalnika przez 24 h, po czym zestaloną folię umieszcza się w wodzie destylowanej w temperaturze 25°C przez czas 48 h potrzebny do wypłukania poliglikolu etylenowego, wymieniając wodę co najmniej 15 razy aż do uzyskania porowatej membrany. Następnie membranę suszy się na powietrzu i w suszarce próżniowej w warunkach podciśnienia 0,06 MPa w temperaturze 40°C przez 24 h. Z membrany po wysuszeniu wycina się fragmenty o kształcie i wymiarach odpowiadających miejscu implantacji, po czym uzyskane implanty wyjaławia się za pomocą plazmy nadtlenku wodoru lub metodą radiacyjną.
Membrana cechuje się budową anizotropową jedna jej powierzchnia jest gładka i praktycznie nieporowata zaś druga strona jest chropowata o porach o średnicy do 20 μm.
P r z y k ł a d 3
Kopolimer glikolidu i ε-kaprolaktonu o stosunku molowym komonomerów równym 90:10 rozpuszcza się w chlorku metylenu przygotowując roztwór 3%. Następnie dodaje się taką ilość poliglikolu etylenowego o masie cząsteczkowej 1000 Da, aby jego udział objętościowy w mieszaninie z polimerem resorbowalnym wynosił 40% i homogenizuje się na mieszadle magnetycznym przez 24 h w temperaturze 25°C. Potem mieszaninę odlewa się na gładką powierzchnię, np. szklaną suszy się w temperaturze 30°C do odparowania rozpuszczalnika przez 48 h, po czym zestaloną folię umieszcza się w wodzie destylowanej w temperaturze 25°C przez czas 72 h potrzebny do wypłukania poliglikolu etylenowego, wymieniając wodę co najmniej 20 razy aż do uzyskania porowatej membrany. Następnie membranę suszy się na powietrzu i w suszarce próżniowej w warunkach podciśnienia 0,08 MPa w temperaturze 20°C przez 24 h. Z membrany po wysuszeniu wycina się fragmenty o kształcie i wymiarach odpowiadających miejscu implantacji, po czym uzyskane implanty wyjaławia się metodą radiacyjną.
Membrana cechuje się budową anizotropową, jedna jej powierzchnia jest gładsza a druga bardziej chropowata. Wielkość porów w membranie wynosi od 2 do 5 μm.
Claims (1)
- Zastrzeżenie patentoweSposób wytwarzania resorbowalnej membrany do sterowanej regeneracji tkanek, znamienny tym, że przygotowuje się 1 - 5% roztwór biozgodnego resorbowalnego polimeru, korzystnie kopolimeru glikolidu z laktydem lub kopolimeru glikolidu z ε-kaprolaktonem, w chlorku metylenu, do którego następnie wprowadza się poliglikol etylenowy o masach cząsteczkowych od 100 Da do 5000 Da, przy czym ilość wprowadzanego poliglikolu etylenowego jest taka, aby jego udział objętościowy w mieszaninie z polimerem resorbowalnym wynosił od 10 do 70%, mieszaninę polimerów w chlorku metylenu homogenizuje się w temperaturze pokojowej, a następnie odlewa się na gładką powierzchnię i suszy się w temperaturze 20 - 40°C do odparowania rozpuszczalnika przez 24 - 48 h, zestaloną folię umieszcza się w wodzie destylowanej w temperaturze 25°C przez czas potrzebny do wypłukania poliglikolu etylenowego 24 - 72 h, wymieniając wodę co najmniej 15 razy aż do uzyskania porowatej membrany, po czym uzyskaną membranę suszy się na powietrzu i w suszarce próżniowej w warunkach podciśnienia 0,01 - 0,08 MPa w temperaturze 20 - 40°C przez 12 - 24 h, z membrany po wysuszeniu wycina się fragmenty o kształcie i wymiarach odpowiadających miejscu implantacji, a uzyskane implanty wyjaławia się za pomocą plazmy nadtlenku wodoru lub metodą radiacyjną.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL391519A PL219076B1 (pl) | 2010-06-15 | 2010-06-15 | Sposób wytwarzania resorbowalnej membrany do sterowanej regeneracji tkanek |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL391519A PL219076B1 (pl) | 2010-06-15 | 2010-06-15 | Sposób wytwarzania resorbowalnej membrany do sterowanej regeneracji tkanek |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL391519A1 PL391519A1 (pl) | 2011-12-19 |
| PL219076B1 true PL219076B1 (pl) | 2015-03-31 |
Family
ID=45374282
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL391519A PL219076B1 (pl) | 2010-06-15 | 2010-06-15 | Sposób wytwarzania resorbowalnej membrany do sterowanej regeneracji tkanek |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL219076B1 (pl) |
-
2010
- 2010-06-15 PL PL391519A patent/PL219076B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL391519A1 (pl) | 2011-12-19 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Rajzer et al. | Layered gelatin/PLLA scaffolds fabricated by electrospinning and 3D printing-for nasal cartilages and subchondral bone reconstruction | |
| Huang et al. | The long-term behaviors and differences in bone reconstruction of three polymer-based scaffolds with different degradability | |
| EP2590694B1 (en) | Bone regeneration membrane and method for forming a bone regeneration membrane | |
| EP2289569B1 (en) | Collagen device and method of preparing the same | |
| US20210008505A1 (en) | Novel electrospun synthetic dental barrier membranes for guided tissue regeneration and guided bone regeneration applications | |
| JP3676374B2 (ja) | 移植用生体内分解性遮蔽膜および製造方法 | |
| KR102205051B1 (ko) | 골접합술용 복합재 | |
| US11154638B2 (en) | Methods for forming scaffolds | |
| CN101474430A (zh) | 一种生物活性组织再生膜及其制备方法 | |
| EP3870133B1 (en) | Biological barrier membrane | |
| WO2024025978A2 (en) | Novel electrospun synthetic membranes for soft tissue repair applications | |
| Thuaksuban et al. | Biodegradable polycaprolactone-chitosan three-dimensional scaffolds fabricated by melt stretching and multilayer deposition for bone tissue engineering: assessment of the physical properties and cellular response | |
| US20110065890A1 (en) | Calcium phosphate/biodegradable polymer hybrid material, method for producing same and implant using the hybrid material | |
| US20140027939A1 (en) | Porous bioceramic composition for bone repair | |
| US12232963B2 (en) | Bioactive soft tissue implant and methods of manufacture and use thereof | |
| PL219076B1 (pl) | Sposób wytwarzania resorbowalnej membrany do sterowanej regeneracji tkanek | |
| EP3124057A1 (en) | Calcium phosphate-based biodegradable micro-screw and manufacturing method therefor | |
| US20250161530A1 (en) | Novel electrospun synthetic membranes for soft tissue repair applications | |
| CN118526647B (zh) | 一种个性化可吸收组织隔离系统及其制备方法和应用 | |
| Sa et al. | Fabrication of hybrid scaffolds by polymer deposition system and its in-vivo evaluation with a rat tibial defect model | |
| Budnicka et al. | Manufacturing of substitutes for spongy bone with increased absorbability | |
| TWI912675B (zh) | 牙科用隔離膜及其製造方法 | |
| Kwon et al. | Histological behavior of HDPE scaffolds fabricated by the “Press-and-Baking” method | |
| JP7220852B2 (ja) | Gbr用メンブレン | |
| TW202525260A (zh) | 牙科用隔離膜及其製造方法 |