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LU83094A1 - Procede pour la fabrication de l'enzyme alpha-galactoxydase et procede pour l'hydrolyse du raffinose par utilisation de cet enzume - Google Patents

Procede pour la fabrication de l'enzyme alpha-galactoxydase et procede pour l'hydrolyse du raffinose par utilisation de cet enzume Download PDF

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Publication number
LU83094A1
LU83094A1 LU83094A LU83094A LU83094A1 LU 83094 A1 LU83094 A1 LU 83094A1 LU 83094 A LU83094 A LU 83094A LU 83094 A LU83094 A LU 83094A LU 83094 A1 LU83094 A1 LU 83094A1
Authority
LU
Luxembourg
Prior art keywords
enzyme
hydrolysis
alpha
cells
raffinose
Prior art date
Application number
LU83094A
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English (en)
Inventor
V Vitobello
N Cimini
P Branduzzi
Original Assignee
Eni Ente Naz Idrocarb
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Eni Ente Naz Idrocarb filed Critical Eni Ente Naz Idrocarb
Publication of LU83094A1 publication Critical patent/LU83094A1/fr

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    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12N9/2465Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1) acting on alpha-galactose-glycoside bonds, e.g. alpha-galactosidase (3.2.1.22)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/12Disaccharides
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/911Microorganisms using fungi
    • Y10S435/94Saccharomyces
    • Y10S435/942Saccharomyces cerevisiae

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  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

Frocédé poux’ la fabrication de 1'*<-.-vir® -, 1 -1 oy v-'i'j?ô et procédé pour 1'hydrolyse du rafflnuse par utilisatien de cet enzyme.
La présente Invention concerne un procédé pour la ;| 5 fabrication de l’enzyme alpha-galaetoxydase (E.C. :.5.1.2.2 ) il par la culture des micro-organismes du genre yaecharcmyces et Ιηυΐ concerne également l'hydrolyse du raffinose par utilisation de cet enzyme. i
Le raffinose, un trlsaecharide oui se produit en 10 quantités importantes dans les betteraves sucrières, retarde la cristallisation du saccharose et par conséouent les rendements d extraction sont diminués. Ce fait pose un sérieux pro-jj blême économique pour les sucreries de sorte que l'hydrolyse |j du raffinose devient une nécessité afin d'améliorer à la fois jj 15 la qualité et le rendement du procédé de cristallisation du ! sucre extrait.
Beaucoup d articles décrivent des procédés enzymatiques pour hydrolyser le raffinose qui utilisent des enzvmes extraites d'un certain nombre d'espèces de micrc-oreanismes i 20 du genre Absldia, Aspergillus, Bacillus, Clrcinej.iaj Escnerichia,
Micro- coccus Sortieren a , Pénicillium etc.
- Toutefois, en cultivant un grand nombre de miero- ί organismes, l'extrait cellulaire contient non seulement \ 1'3-*ph a-gala et oxyda se mais également contient i ' invertase, de ii :‘S s°rte, que dans le traitement des mélasses de betteraves su- ericres, l'hydrolyse du raffinose s,acc0®Pagne d'un* fa-or non désirable de l'hydrolyse du saccharose.
j; L'avantage extraordinaire de la présente invention I] ’ est au fait que les micro-organismes choisis par qes aupeurs I * A‘° de la présente invention, et qui appartiennent au genre | Raççharomyces combinent d'une façon heureuse le bénéfice d'une j - durée de culture nettement réduite par rapport à celle des | moisissures avec la propriété de posséder une grand* i - enzymatique de l'alpha-galaero/vd-^e mais non g '"'-J **- -owiVitt: ; 35 enzymatloue de 1'Invertase.
; Ces micro-organismes, qui ont été isolés à partir | des e»ux résiduaires des broyeurs d'olives dans la réeiGn ae | Monterotondo (Rome, Italie) ont été classés sous les nûfns £ul.
! // I 'r *“ % * vants : Caeeharomyoes cereylsi ae, va r, oiea ce nus et Paccha-romyces cerevlslae, va r, ol&aglncgug et ont été dûmvnt dé posé s au Northern Regional c'.rter du U3 Repartirent of Agriculture, Peoria, Illinois, où ils ont reçu respectlvement les déslgna-5 tions HRRL Y 12056 et NRRL Y 12057.
Leurs caractéristiques de culture, et leurs propriétés morphologiques et physiologiques sont indiquées ei-iegsus.
A.- Caractérlstlques de culture , 1. Millau solide (3 jours) : agar et malt 10 Les colonies sont butyreuses, de couleur crème et brillante 2. Milieu liquide (3 jours) : extrait de malt.
j · Un dépôt s'est formé (dans le S. Cerevlslae, var oleaglnosus, on observe un léger anneau).
15 B.- Propriétés morphologiques ί 1. Caractéristiques des cellules végétatives :
Les cellules sont ellipsoïdales, cylindrioues et j auelauefols allongées.
?. Formation de pseudomycélium ou de mycélium vrai : ; 20 Un pseudomvcélium rudimentaire est présent dans les t j conditions anaéroYdes.
j 0,- Caractéristiques sexuelles :
Les cellules végétatives sont directement transfer-ί rr.ées en asel qui contiennent, de une à quatre spo-eg ·: ·'. sphéroïdales.
r>. - Propriétés ohvsi ologieues 1. Utilisation des sources de carbone I a) Fermentation : S , ct:j y vi sj_ae S . cer cvLoi au
-J Q
var . oly-ooeu·.. y <jr . ai caq i no su a I Glucose ·* -r (idldCtoaC *· t I l il .1 L U S C - -r ; ntc.
1 l»rt*«i 1 ose H éi i 1) i ose -s + i Itaffinose - + if if.
// b ) As 5 î Ια i ! .1 t i 'II. : S , π ίτν i s i .-r ί . I L'I.'.'liü.
\ .1 r . u 1 ï'*it'' us r· v · u 1 LiiiÎ.-iî-.' -ii'' i| r Glucose ' 1 Gülue 1 ose 1 1 j Maltose j 1 I, r e d 1 u s e 2 - 10 M é 1 i b i o s e 4 "* .
! Hat f i no se + - I . > ! D-mannltol + , D - (j 1 uc i t ο 1 2 ! -..-.thanol i i dlycérol y i 2 c i ijé 1 s e 1.1 ; uc ; . * — les iU^res ·_·· mp..':-:és currenés ne sont pas assimilés. r.c. ?. .-ssimi lat i or. ue composés azotés : Π trait .i*.r ρο·. assinr. : néoali:' o. ('roissancc à *”°·· : pcsiti v*. tour la dass! i'ieation, le pi *r. décrit par ·.?.
'an der ''ait dans "Tse Veasts", ."a;.-· éaition, éditeur I d . L:ode r, a été soi vi .
; Les cul tu sers ne s s-:u.s r.,i appartiennent à la p-esente invention peuvent être p; v.pare-es uans a en eondl ti <. r.e aéroi les par un nuel eor.uue je:, pr.i-r-.ié;? '-onnus, par exemple , et. ouiti va nt en su r ta , >·η i>_- pr- , a::- en cultures immer :-0- utilisant des appareils de rerrreutari c;. équipés d * d.-:i taten: r·.
lin milieu de culture roi peut être solide eu lieu: se contient une source de carncn« arr i mi la r-> e et une source cl a 7 te et ne sels r un *1 a» λ y., -’om.ne sources ue car ton-.:, pe^t utiliser le glucose, le méllhiooe, le raffln.se et tous les autres sucres, le jtlycerol et l'acétate de soàiur;:.
Comme sources ci'azot-, ·'r. peut utiliser des composés azotés minéraux et des composés ar. .-tés rvani aies tels nue ff if ! ) t , extrait de viande, extra 1 fc -.je le vu ;-e , peptones, tri ptone, | amlnoaeides, hydrolysats de es seine, farine ie soja et sels ammoniacaux.
Un autre avantage dominant provenant de l'utilisa-5 tlon des micro-organismes en question est le fait qu'ils fabriquent l'enzyme quand ils sont cultivés sur le glucose (l’enzyme est le constituant).
Un milieu de culture approprié a par exemple la composition suivante :
Extrait de levure 5-20 g/1
•l \J
\ (grammes par litre)
Glucose 10 g/1
Traces de UaHpPC/,, 1 ' MgSO^, (NHjpUO, 1 g/1 15 j La gamme du pH pour la culture va de ü a 7 et est de
; préférence de 5,0 à 5,5, la température est comprise entre 20°C
et êG°C, de préférence entre 05°C et ?o°C.
La production d’enzome peut être augmentée par l'addition de petites quantités de ir.élibicse, oui, comme on le ' ü sait, est le disaccharide provenant de l'hydrolyse partielle du raffinose. Le méiibicse peut être ajouté directement au milieu ue culture avant: 11 inoeulum, ou quand le stase de eroissar. logarithmique est terminé, dette durée d'induction peut varier ne 3Λ heures à heures et de oréférence est eornorise entre ''if.
-.0 heures et kk heures.
• Les cellules recueillies pendant la fermentation ou à la fin de celle-ci peuvent être utilisées telles quelles on sous forme de poudre sèche.
L'une autre façon, en peut utiliser les extraits de : _ x{> .. * ; ’ ces cellules bruts ou purifiés.
j ; pour cela, les cellules sont broyées par un quel- i j con :ue des procédés connus et on utilise l'extrait brut ou ; purifié contenant 1‘ensyme.
! | Récemment, un autre perfeeti or.r.e oent technique et j "55 ^ ’ , | economique a pu être réalisé en îmmo'*-irisant 1 ’enzyme par con> ; 3; in al son avec des composés maeromcléoulaires, en formant des
I liaisons chimiques avec 1s matrice, ou par des liaisons lor.ica.rS
| ou également par Immobil iss tien physique de 1’enzyme ou ses j // ! il . » ο ce]Iules.
Les ce!lu]es ainsi obtenues sont ajoutées, telles quelles ou Immobilisées, au mélange réactionnel qui contient les mélasses a un pH allant de ·’* à. 7 et à. une température ; I 5 âe 30°C à 60°C. Le raffino.se contenu dans les mélasses est b ainsi hydrolyse en galactose et saccharose, le rendement de / celui-ci est ainsi amélioré.
ij La présente invention est illustrée par les exerr- j pies descriptifs et non limitatifs ci-après.
J 10 EXEMPLE 1 î I - On prépare un bouillon de culture ayant la compcsi- I tion suivante : ! ! - ' (NH^ ) 2S0^ 3 cj/1 I m M(jS0..7H,0 3 g /1
I ~ ^ L
I Nü-HPO, . 12}lo0 li, 6g/J
;j C H l.
KH,PO. 3 y /1
L H
I Ha C 1 U, J y / i I ?0 CaCl 0 0.03 cj/1 !
Extrait de levure 20 q/1
S
i· i I ! e i i Li i 0 s e J 0 g / 1 f I r-£. On dissout ce s composés dans l’eau désionisée et or.
‘j; jj ael.itnaà pH 7,5 avec l’acide enî ornyari que .
ji* f 1 Le milieu ae culture ainsi préparé est reparti dans 1 des flacons L rien ma ver· de F,00 crrr à large col ? 10v ml ae I * ' I bouillon par flacon, stérilisation à llccr pendant 30 minutes ! , tO Les flacons .sont ensemencés avec 1 ml d’une culture ae 1s I souche du Saccharomyces cerevislae varJ oleaceus dans des . ballons de 050 ml contenant qü ml au même bouillon et la 1 croissance est amorcée à ?5°r pensant 16 heures tout eu agl- 1 tant flBO tours/mlnute..
135 Les flacons de fermentation sont mis en Incubation sous agitation (IRQ tours/mlnute) à ?5°0.
I i*G heures après l’ensemencement, les cellules ae = I cultures du bouillon srut recueillies par centrifugation et I lavées avec un tampon cnosphate (G, 1 ’-j pH 5,o}. Λ partir ce ! if ï i / κ i ; 100 ml de bouillon de culture, on obtient 0,ô5 g de \ cellules sèches.
r . Les cellules humides recueillies des 100 ml de I bouillon sont remises en suspension dans 100 ml de tampon ! 5 phosphate (0,1 K, pH 5,6) et l'activité enzymatique est 7 | examinée. 1 g de cellules sèches contient environ 1.10 I unités enzyme. L'activité enzymatique est mesurée par le | procédé suivant. * jj A 1 ml d'une suspension de cellules temponnée, on 110 ajoute ^ ml de tampon phosphate (0,1 M, pH 5,6) et quelques . - gouttes de toluène pour rompre les parois des cellules.
Après 15 minutes d'incubation sous agitation à A0°C, la suspension est additionnée de 10 ml d'une solution à 1 ^ (poids/volume) de mélibiose dans le tampon phosphate 15 (0,1 M, pH 5,6).
I La réaction est soumise à l'incubation à 40°c pendant ? heures dans un bain-marie agité et est arrêtée ; en faisant bouilli·- pendant I5 minutes les échantillons prélevés du mélange réactionnel.
?0 La concentration du glucose telle qu'obtenue p&r l'hydrolyse ce mélibiose pendant la réaction est déterminée i avec le procédé colcrirnélrique GCL-Perid par r-.oeh ringer
Mannheim GmbH.
La densité optique des échantillons colorés est 05 mesurée à la température ordinaire avec un spect r opho t on-gt r -"noieman", de Perkin-Elmer, le trajet optique de la cuvette, est de 0,1 dm à la longueur d'onde de -.-6 miilimicrons.
Pi l'or, prend comme unité la quantité d’enzyme oui produit un microgramme de glucose en G heures dans 50 conditions -d'essai établies ci-dessus, les unités d'enzvrr-Par gramme de cellules séchées peuvent être calculées I * la formule suivante : I __ u fEPn“E0n; · 10:· : 35 grammes de cellules séchées E référence . 6 I où : ! // i /r' \ 17
! -V
• ·«* , i j E est la densité optique de l'échantillon prélevé cil A · apres 2 heures; E est la densité optiaue de l'échantillon prélevé à Oh zéro heure; 5 Ξ est la densité optique d'une solution de reference .; glucose de référence qui contient 18,2 microgrammes l| de glucose par millilitre; il G est la auantité en grammes de cellules séchées dans j 1 100 ml de bouillon de culture.
\ v EXEMPLE 2 fi .........
i t On prépare un bouillon de culture ayant la composition s , · suivante : I; 1 (nV2sî\ 5 g /1 i :! 15 L; HgS04.7H20 0,5 g /1 i 1 ; Na2HP04.12H?0 A, 6 g/] h'H-PO. 3 g /1
2 A
PQ NaCl 0. 1 cj/1
Cad 2 0,05 g/1 I Extrait de levure 10 g/3 I Glucose 10g/] t p5 Les composés indiqués ci-dessus sont dissous dans j. l'eau désionisée et le pH est réglé à 5,3 avec de l'acide i- | chlorhvdrioue.
f Les cultures dans ce bouillon de la souche I , Paceharomyces eerevisiae, var, oleaceus, préparées comme 1 ;*0 indiqué aans· l'exemple I, sont mises en incubation sous agita tion orbitale {lBü tours/minute) à 27°C.
. ‘ 39 heures après l'ensemencement, les cellules du j bouillon de culture sont recueillies par centrifugation et ,! lavées avec un tampon phosphate (0,1 K pH 5,6).
• 35 A partir de 100 ml de bouillon de culture, on 1 obtient 0,5Ao g de cellules séchées. Les cellules recueillies a ; partir des 100 ml de bouillon sont remises en suspension dans j 100 ml de tampon phosphate (0,1 K, pH 5,6) et essayées pour t / lr: il . · 6 déterminer l'activité enzymatique. 1 g de cellules séchées £ contient 9,4.10 unités enzyme.
* EXEMPLE 5
On prépare un milieu de culture ayant la composition 5 suivante : ()£ SO^ 3,00 g/1
MgSU^. 70^0 . 0,3 g/1 lla-HPO. . 1?H,0 if,6 a/1 10 KH2P0^ 3,00 g /1
NaCl 0,1 g /1 . / CaCl, 005 g/1
Extrait de levure 10 g/1 I5 Glucose 10 g/1 Méllblûse 1 g/1
Les composés mentionnes ci-dessus sont dissous dans l'eau dés i anisée et le pH est réglé à avec de l'acide 20 chlorhydrique.
Les cultures de la souche Gaccharorr.yces cerevlsiae, var. oleaceus, préparées comme dans l'exemple 1, sont mises en incubation avec agitation orhi taie (180 tours/minute j a C’7cu. i*;· heures après 1 1 ensemencement, les cellules provenant des cultures du bouillon sont recueillies par centrifugation et lavées avec le tampon phosphate (0,1 F., pH 5,6). A partir ces 10G ml de culture du bouillon, on obtient 0,59½ g de cellules séchées.
* . Les cellules recueillies à partir des IGG ml de du bouillon de culture sont remises en suspension dans 10G mi de tampon phosphate (0,1 M,pH 5,6) et essayées pour déterminer l'activité enzymatique : 1 g Je cellules séchées contient 1,6.10' unités enzyme.
EXEMPLE 7 65
On prépare un milieu de culture ayant la composition suivante : // A'· // * '.j I (NH.KSO, · no y /1 A c 4 IUjSO. . 7H,ü Ü, Oi> tj/1 H x i j HaHPÜ. . 1211,0 A, 6 y/1 : J, H l.
| 5 K11, P 0 . 3,0 y/1
j jj! Λ H
'j (la Cl 0,1 y/1 ;j CaCl, °,°5 I ^ f Extrait de levure 10( 0 y/1 I 10 j . C1 u ο o i. e 5,0 g/1
! - - : s > A
| Les composés mentionnés ci-dessus sont dissous dans i l'eau désionlsée et le pH est réglé à 5,3 avec de l'acide f 15 1 chlorhydriaue.
nés cultures de Saccharoir.vces cerevisiae, var.
i ’j ----t-- l oleaceus dans un bouillon de ce genre, préparées comme dans j: l'exemple 1, sont mises en incubation sous agitation orbitale | (180 tours/minute ) a 2QcC. heures après l'ensemencement du ’ ' bouillon de culture, les cellules sont recueillies par centri- | fugation et lavées avec le tampon phosphate (0,1 K, pH 5,6).
f I A partir des 100 ml de bouillon de culture, on obtient 0,355g I de cellules séchées.
' 6 ml du bouillon de culture sont ajoutés à 50 ml ijri O , v I de mêlasse à io° Prix contenant 1,6 en poids de raffinose
II
I par rapport aux matières solides totales, et sont réglés à ur.
| PH de 5,2 avec H?S0)t. Le traitement est effectué à Â0°C sous r agitation pendant lo heures. La concentration de galactose, I * I . un produit de l'hydrolyse du raffinose pendant la réaction, " est déterminée avec le procédé d'essai U7 Lactose/galactcse | _ de fioenringer Manhenim Ot;.bH. Dans les conditions mentionnées ! ci-dessus, on obtient 153 mi croir.de s de galactose, équivalent | - à l’hydrolyse des 30 % du raffincse présent en totalité.
/ ; r /

Claims (2)

1ύ »,* r, 1 CA TI Ο!! S
1. Procédé pour la faPricati on de l'enzyme alpha-galactoxydase consistant ,à provoquer une ferm&îLation de levures du genre Paccharomyces cerevlslae qui a lieu dans une gamme 5 de pH de à 7 et à une température comprise entre pO°C et 40°C.
2. Procédé pour l'hydrolyse enzymatique du raffinc-se, caractér'isé par le fait que la -réaction a lieu en présence de cellules, d'extraits enzymatiques, d 'extraitsenzymatiquesenri - 10 chis provenant de levures du genre Paecharomyees cerevlslae, ou en présence d'enzymes ou de cellules immobilisées. Â'^f 'f / * 4 /f r/ // " L
LU83094A 1980-02-01 1981-01-27 Procede pour la fabrication de l'enzyme alpha-galactoxydase et procede pour l'hydrolyse du raffinose par utilisation de cet enzume LU83094A1 (fr)

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