JPH1175839A - Monoclonal antibody, cell strain and measurement of n1,n12-diacetylspermine - Google Patents
Monoclonal antibody, cell strain and measurement of n1,n12-diacetylspermineInfo
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- JPH1175839A JPH1175839A JP10174361A JP17436198A JPH1175839A JP H1175839 A JPH1175839 A JP H1175839A JP 10174361 A JP10174361 A JP 10174361A JP 17436198 A JP17436198 A JP 17436198A JP H1175839 A JPH1175839 A JP H1175839A
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Abstract
Description
【0001】[0001]
【発明の属する技術分野】本発明は、抗N1,N12−ジア
セチルスペルミンモノクローナル抗体、抗N1,N 12−ジ
アセチルスペルミンモノクローナル抗体産生細胞株およ
び該抗体を用いるN1,N12−ジアセチルスペルミンの測
定法に関するものである。TECHNICAL FIELD The present invention relates to an anti-N1, N12-Zia
Cetyl spermine monoclonal antibody, anti-N1, N 12−
Acetylspermine monoclonal antibody producing cell line and
And N using the antibody1, N12-Measurement of diacetylspermine
It is about a statute.
【0002】[0002]
【従来の技術】ポリアミンは、プトレッシン(Pu
t)、カダベリン(Cad)、スペルミジン(Sp
d)、スペルミン(Spm)及びそれら誘導体等の総称
で、生体内に広く分布する生理活性物質である。癌細胞
を含む増殖の盛んな細胞でかなりの量が合成され、これ
らの細胞に局在し、細胞の増殖を促進する因子として作
用することから注目されている(Annu.Rev.B
iochem.53 p749−790(198
4))。2. Description of the Related Art Polyamines are putrescine (Pu).
t), cadaverine (Cad), spermidine (Sp
It is a general term for d), spermine (Spm) and their derivatives, and is a physiologically active substance widely distributed in a living body. Considerable amounts are synthesized in proliferating cells, including cancer cells, and are localized in these cells and act as factors that promote cell proliferation (Annu. Rev. B).
iochem. 53 p749-790 (198
4)).
【0003】1971年、Russell等は、癌患者
の尿中にポリアミンが増加することを見出し(Canc
er Res.31 p1555(1971))、尿中
ポリアミンは、現在、腫瘍マーカーとして用いられてい
る。しかしながら、これまでの「ポリアミン全体」を測
定することの意義に対して、限界も見えてきた(Pro
g.Drug Res.39 p9−33(199
2))。In 1971, Russell et al. Found that polyamines increased in urine of cancer patients (Canc).
er Res. 31 p1555 (1971)), urinary polyamines are currently used as tumor markers. However, there have been some limitations to the significance of measuring "total polyamines" so far (Pro).
g. Drug Res. 39 p9-33 (199
2)).
【0004】ポリアミンは、そのまま遊離型として存在
する他、アセチル化されたり、結合型としても存在して
いる。Abdel−Monem等は、尿中に排泄される
ポリアミンは、主としてモノアセチル体のN1−アセチ
ルスペルミジン(N1−Ac−Spd)、アセチルプト
レッシン(Ac−Put)、N8−アセチルスペルミジ
ン(N8−Ac−Spd)として存在しており、これら
成分の増加や成分比の変動がさらによい腫瘍マーカーと
なることを報告している(J.Pharm.Sci.6
7 p1671−1673(1978),Cancer
Res.42p2097−2098(1982))
が、これには異論もある(J.Biochem.118
p1211−1215(1995))。[0004] Polyamines exist as free forms as they are, as well as as acetylated or bound forms. The like Abdel-Monem, polyamines excreted in the urine mainly N 1 mono acetyl form - acetyl spermidine (N 1 -Ac-Spd), acetyl putrescine (Ac-Put), N 8 - acetyl spermidine ( N 8 -Ac-Spd), and it has been reported that an increase in these components or a change in the component ratio is a better tumor marker (J. Pharm. Sci. 6).
7 p 1671-1673 (1978), Cancer
Res. 42p2097-2098 (1982))
However, there are objections to this (J. Biochem. 118).
p1211-1215 (1995)).
【0005】最近、平松等は、尿中にポリアミンのジア
セチル体のN1,N8−ジアセチルスペルミジン(N1,N8
−2Ac−Spd)、N1,N12−ジアセチルスペルミン
(N1,N12−2Ac−Spm)が存在することを見出し
(J.Biochem.117 p107−112(1
995))、これらが、泌尿器系の腫瘍で著しく増加
し、従来のポリアミンやポリアミンのモノアセチル体の
変動を凌いでいたことから、新しい腫瘍マーカーとして
期待されている(J.Cancer Res.Cli
n.Oncol.121 p317−319(199
5))。[0005] Recently, Hitoshi Hiramatsu, N 1 of diacetyl of polyamines in urine, N 8 - diacetyl spermidine (N 1, N 8
-2Ac-Spd), N 1, N 12 - found that Diacetylspermine (N 1, N 12 -2Ac- Spm) are present (J.Biochem.117 p107-112 (1
995)), which are expected to be new tumor markers because they significantly increased in urinary tumors and surpassed the fluctuations of conventional polyamines and monoacetylated polyamines (J. Cancer Res. Cli).
n. Oncol. 121 p317-319 (199
5)).
【0006】従来、これらジアセチル体のN1,N8−2
Ac−Spd、N1,N12−2Ac−Spmの測定は、キ
ャピラリー・ガスクロマトグラフィ法(Clin.Ch
em.32 p1930−1937(1986))や液
体クロマトグラフィ法(J.Biochem.117
p107−112(1995))で行われてきた。Conventionally, N 1 , N 8 -2 of these diacetyl forms
Ac-Spd, N 1 , N 12 -2 Ac-Spm were measured by capillary gas chromatography (Clin. Ch.
em. 32 p1930-1937 (1986)) and liquid chromatography (J. Biochem. 117).
pp. 107-112 (1995)).
【0007】[0007]
【発明が解決しようとする課題】しかしながら、ジアセ
チル体のN1,N12−2Ac−Spmを測定するキャピラ
リー・ガスクロマトグラフィ法や液体クロマトグラフィ
法では、煩雑な検体の前処理操作や、装置のメンテナン
ス技術を必要とするなど、かなりの熟練が要求される。
また、煩雑さのため、測定には時間がかかり、臨床的な
測定法としては、とても受け入れられるものではない。
そこで、臨床的に使用し得る簡便な測定法の開発を目指
し、抗体を用いる免疫的な測定法が検討された。藤原等
は、Spmのアルブミン複合体を免疫してN1,N12−2
Ac−Spmに反応するモノクローナル抗体を作成した
が、モノアセチル体のN1−Ac−SpdとN1−アセチ
ルスペルミン(N1−Ac−Spm)とも強く反応し、
結果的には、これら3成分の中で最も尿中での存在量の
多い、N 1−Ac−Spdを反映する測定法しかできな
かった(J.Biochem.118 p1211−1
215(1995))。従って、N1,N12−2Ac−S
pmを測定できる免疫測定法は、今だに完成していな
い。SUMMARY OF THE INVENTION
Chill N1, N12Capillary for measuring -2Ac-Spm
Lee gas chromatography and liquid chromatography
Method requires complicated sample pre-processing operations and equipment maintenance.
It requires considerable skill, such as the need for technical skills.
In addition, the measurement is time-consuming due to the complexity,
As a measurement method, it is not very acceptable.
Therefore, we aim to develop a simple measurement method that can be used clinically.
Then, an immunoassay using an antibody was examined. Fujiwara et al.
Immunized the albumin complex of Spm with N1, N12-2
A monoclonal antibody reactive with Ac-Spm was prepared.
Is the monoacetyl form of N1-Ac-Spd and N1−Aceti
Ruspermine (N1-Ac-Spm).
As a result, the most abundant of these three components in urine
Many, N 1-Can only measure Ac-Spd
(J. Biochem. 118 p1211-1)
215 (1995)). Therefore, N1, N12-2Ac-S
An immunoassay that can measure pm has not been completed yet.
No.
【0008】[0008]
【課題を解決するための手段】本発明者らは、前記した
ような問題点を解決すべく鋭意研究を重ねた結果、N 1
−Ac−Spmのアルブミン複合体で免疫し、実質的に
尿中N1,N12−2Ac−Spmの測定に使用し得るモノ
クローナル抗体を作成し、その抗体を用いる測定法を見
いだして本発明に至ったものである。Means for Solving the Problems The present inventors have described the above-mentioned.
As a result of intensive research to solve such problems, N 1
Immunization with an albumin complex of Ac-Spm, substantially
Urine N1, N12-2 Items that can be used for measuring Ac-Spm
Create a clonal antibody and check the assay using that antibody.
This has led to the present invention.
【0009】即ち、本発明は、(1)固相化若しくは標
識化N1,N12−ジアセチルスペルミン(N1,N12−2A
c−Spm)又は固相化若しくは標識化N1−アセチル
スペルミン(N1−Ac−Spm)と抗N1,N12−ジア
セチルスペルミンモノクローナル抗体の免疫反応を利用
した検体中のN1,N12−ジアセチルスペルミンの測定系
を組んだ場合に、N 1,N12−ジアセチルスペルミンによ
る該免疫反応の阻害活性がN1−アセチルスペルミジン
(N1−Ac−Spd)による該免疫反応の阻害活性の
20倍以上、好ましくは30倍以上、より好ましくは4
0倍以上となる測定条件を選択することが可能になる抗
N1,N12−ジアセチルスペルミンモノクローナル抗体、
(2)固相化若しくは標識化N1,N12−ジアセチルスペ
ルミン又は固相化若しくは標識化N1−アセチルスペル
ミンとの免疫反応が50%阻害されるN1,N12−ジアセ
チルスペルミンの濃度が20μM以下、好ましくは15
μM以下、より好ましくは1μM以下となる測定条件を
選択することが可能になる上記(1)記載のモノクロー
ナル抗体、(3)検体が尿検体である上記(1)又は
(2)記載のモノクローナル抗体、(4)モノクローナ
ル抗体0520,4914又は8624、(5)上記
(1)、(2)、(3)又は(4)記載のモノクローナ
ル抗体を産生する細胞株、(6)固相化若しくは標識化
N1,N12−ジアセチルスペルミン又は固相化若しくは標
識化N1−アセチルスペルミンと抗N1,N12−ジアセチ
ルスペルミンモノクローナル抗体の免疫反応を利用して
検体中のN1,N12−ジアセチルスペルミンを測定する際
に、その測定条件におけるN1,N12−ジアセチルスペル
ミンによる該免疫反応の阻害活性がN1−アセチルスペ
ルミジンによる該免疫反応の阻害活性の20倍以上、好
ましくは30倍以上、より好ましくは40倍以上となる
抗N1,N12−ジアセチルスペルミンモノクローナル抗体
を用いることを特徴とするN1,N12−ジアセチルスペル
ミンの測定法、(7)抗N1,N12−ジアセチルスペルミ
ンモノクローナル抗体が、測定条件において固相化若し
くは標識化N1,N12−ジアセチルスペルミン又は固相化
若しくは標識化N1−アセチルスペルミンとの免疫反応
が50%阻害するN1,N12−ジアセチルスペルミンの濃
度が20μM以下、好ましくは15μM以下、より好ま
しくは1μM以下となる抗N1,N12−ジアセチルスペル
ミンモノクローナル抗体である上記(6)記載の測定
法、(8)抗N1,N12−ジアセチルスペルミンモノクロ
ーナル抗体がモノクローナル抗体0520,4914又
は8624である上記(7)記載の測定法、(9)検体
が尿検体である上記(6)、(7)又は(8)記載の測
定法、に関する。That is, the present invention relates to (1) immobilization or
Intellectualization N1, N12-Diacetylspermine (N1, N12-2A
c-Spm) or immobilized or labeled N1-Acetyl
Spermine (N1-Ac-Spm) and anti-N1, N12-Zia
Utilizes immune response of cetylspermine monoclonal antibody
N in the sample1, N12-Measurement system for diacetylspermine
, N 1, N12-By diacetylspermine
The inhibitory activity of the immune response is N1-Acetyl spermidine
(N1-Ac-Spd)
20 times or more, preferably 30 times or more, more preferably 4 times or more.
It is possible to select measurement conditions that are 0 times or more.
N1, N12A diacetylspermine monoclonal antibody,
(2) Immobilized or labeled N1, N12-Diacetylspec
Lumin or immobilized or labeled N1-Acetyl spelling
50% inhibition of immune response with Min1, N12−Diase
The concentration of tilspermine is 20 μM or less, preferably 15 μM.
μM or less, more preferably 1 μM or less
Monochrome as described in (1) above, which can be selected
Null antibody, (3) above, wherein the sample is a urine sample or
(2) the monoclonal antibody according to the above, (4) the monoclonal antibody
0520, 4914 or 8624, (5) above
The monochromator according to (1), (2), (3) or (4)
Cell line producing antibody, (6) immobilized or labeled
N1, N12-Diacetylspermine or immobilized or labeled
Intellectualization N1-Acetyl spermine and anti-N1, N12-Diaceti
Utilizing the immune response of Ruspermine monoclonal antibody
N in the sample1, N12-When measuring diacetylspermine
And N under the measurement conditions1, N12-Diacetyl spelling
The activity of inhibiting the immune response by1-Acetyl spec
More than 20 times the activity of inhibiting the immune response by lumidine.
Preferably it is 30 times or more, more preferably 40 times or more.
Anti-N1, N12-Diacetylspermine monoclonal antibody
N characterized by using1, N12-Diacetyl spelling
Method for measuring min, (7) anti-N1, N12-Diacetyl sperm
Monoclonal antibody is immobilized under measurement conditions
Or labeled N1, N12-Diacetyl spermine or solid phase
Or labeled N1-Immune reaction with acetylspermine
Inhibits 50% of N1, N12-Concentration of diacetylspermine
Degree is 20 μM or less, preferably 15 μM or less, more preferably
Or less than 1 μM anti-N1, N12-Diacetyl spelling
The measurement according to (6) above, which is a min monoclonal antibody.
Law, (8) Anti-N1, N12-Diacetyl spermine monochrome
Monoclonal antibody 0520, 4914 or
Is 8624, (9) Sample
Is the urine sample, the measurement according to (6), (7) or (8) above.
Related to the law.
【0010】[0010]
【発明の実施の形態】以下、本発明を詳細に説明する。
固相化N1,N12−2Ac−Spm又は固相化N1−Ac
−Spmとしては、N1,N12−2Ac−Spm又はN1
−Ac−Spmを、スペーサーを介して、不溶性物質の
表面上に繋ぎ止めたものが挙げられる。スペーサーの結
合位置は、N1,N12−2Ac−Spmの場合はその末端
であってもその両末端の間のいずれの位置であってもよ
いが、N1−Ac−Spmの場合はその末端アミノ基に
結合させるのが望ましい。スペーサーの種類と導入方法
については多くの方法が知られているが、これらのいず
れであっても良い。例えば、N1,N12−2Ac−Spm
のいずれかの位置に、末端に反応基を有するスペーサー
を導入し(N1,N12−2Ac−Spmのアセチル基から
スペーサーを誘導する場合は、N1−Ac−SpmのN
12−アミノ基に導入したアシル基がスペーサーとな
る)、この反応基を介して蛋白質や合成高分子などに結
合し、生成したN1,N12−2Ac−Spmと蛋白質や合
成高分子の複合体を、免疫反応の場となる固相担体上に
吸着させる方法、予め化学的に活性化されたスペーサー
を持つ固相担体上に、N1,N12−2Ac−Spmそのも
の、もしくは、N1−Ac−Spmの末端アミノ基を反
応させる方法などがあるが、これらに限定されるもので
はない。N1,N12−2Ac−Spm又はN1−Ac−S
pmのいずれの位置に、どのようなスペーサーを導入す
るかは、用いる抗体の性質によって適宜選択すればよ
い。DESCRIPTION OF THE PREFERRED EMBODIMENTS The present invention will be described below in detail.
Immobilized N 1, N 12 -2Ac-Spm or immobilized N 1 -Ac
The -Spm, N 1, N 12 -2Ac -Spm or N 1
-Ac-Spm bound to the surface of an insoluble substance through a spacer. The bonding position of the spacer may be at its end in the case of N 1 , N 12 -2Ac-Spm or at any position between both ends, but in the case of N 1 -Ac-Spm, It is desirable to attach to the terminal amino group. Many methods are known for the type and introduction method of the spacer, and any of these methods may be used. For example, N 1, N 12 -2Ac- Spm
Is introduced into any position of ( 1) , when the spacer is derived from the acetyl group of N 1 , N 12 -2Ac-Spm, the N 1 -Ac-Spm N
The acyl group introduced into the 12 -amino group serves as a spacer), and binds to a protein or a synthetic polymer via this reactive group to form a complex of the formed N 1 , N 12 -2Ac-Spm with the protein or the synthetic polymer. A method of adsorbing a body on a solid support that serves as a site for an immune reaction, and a method in which N 1 , N 12 -2Ac-Spm itself, or N 1 There is a method of reacting the terminal amino group of -Ac-Spm, but the method is not limited thereto. N 1, N 12 -2Ac-Spm or N 1 -Ac-S
What kind of spacer should be introduced at which position in pm may be appropriately selected depending on the properties of the antibody to be used.
【0011】スペーサーとしては、例えばグルタルアル
デヒド(GA)を用いた場合はホルミルブチリル鎖が、
N−(4−マレイミドブチルオキシ)コハク酸イミド
(GMBS)を用いた場合はマレイミドブチリル鎖が、
無水コハク酸を用いた場合は、カルボキシプロピオニル
鎖等が挙げられるが、公知のものはいずれも使用でき
る。又、蛋白質や合成高分子としては、例えば、アルブ
ミンやポリリジン等が挙げられるが、これらに限定され
るものでなはい。固相担体としては、例えば、96穴等
のマイクロタイタープレート、ポリスチレンビーズ、各
種ラテックス粒子、ニトロセルロース膜等が挙げられる
が、これらに限定されるものではない。As a spacer, for example, when glutaraldehyde (GA) is used, a formylbutyryl chain is used.
When N- (4-maleimidobutyloxy) succinimide (GMBS) is used, the maleimidobutyryl chain is
When succinic anhydride is used, a carboxypropionyl chain and the like can be mentioned, and any known one can be used. Examples of the protein and the synthetic polymer include albumin and polylysine, but are not limited thereto. Examples of the solid phase carrier include, but are not limited to, a microtiter plate having 96 holes or the like, polystyrene beads, various latex particles, a nitrocellulose membrane, and the like.
【0012】また、標識化N1,N12−2Ac−Spm又
は標識化N1−Ac−Spmとしては、放射性同位元素
を導入してN1,N12−2Ac−Spm又はN1−Ac−
Spmそのものを標識したり、N1,N12−2Ac−Sp
m又はN1−Ac−Spmに、放射性元素の入った化合
物、ユーロピウム等の遅延蛍光性のある元素を保持でき
る化合物、ルテニウム等の電気化学発光の触媒となる元
素を保持できる化合物、蛍光物質等を結合させて標識し
たり、N1,N12−2Ac−Spm又はN1−Ac−Sp
mに、前記のようなスペーサーを介して酵素標識した
り、N1,N12−2Ac−Spm又はN1−Ac−Spm
をビオチンで標識し、免疫反応後にアビジンの酵素標識
体と反応させ、ビオチン−アビジン複合体として間接的
に検出できるようにしたもの等が挙げられる。As the labeled N 1 , N 12 -2Ac-Spm or the labeled N 1 -Ac-Spm, N 1 , N 12 -2Ac-Spm or N 1 -Ac-
Spm itself can be labeled, N 1 , N 12 -2Ac-Sp
m or N 1 -Ac-Spm, a compound containing a radioactive element, a compound capable of holding an element having delayed fluorescence such as europium, a compound capable of holding an element serving as a catalyst for electrochemical luminescence such as ruthenium, a fluorescent substance, etc. And N 1 , N 12 -2Ac-Spm or N 1 -Ac-Sp
m is labeled with an enzyme via a spacer as described above, or N 1 , N 12 -2Ac-Spm or N 1 -Ac-Spm
Are labeled with biotin, reacted with an avidin enzyme-labeled substance after an immunoreaction, and indirectly detected as a biotin-avidin complex.
【0013】本発明のモノクローナル抗体は、クローン
化されたイムノグロブリン抗体であれば何であってもよ
く、抗体の由来する動物種、イムノグロブリンのタイプ
やサブタイプ、抗体の産生方法は問わない。また、抗体
を断片化して免疫反応部位を残したもの、それら断片の
修飾物、抗体そのものの修飾物、2種類の抗体を結合さ
せたキメラ抗体等も包含する。本発明のモノクローナル
抗体は、抗体産生株の組織培養法や、抗体のアミノ酸配
列から予想されるDNAを用いて、遺伝子工学を用いる
製造法等によって製造することができる。The monoclonal antibody of the present invention may be any cloned immunoglobulin antibody, regardless of the animal species from which the antibody is derived, the type and subtype of the immunoglobulin, and the method of producing the antibody. Also included are those obtained by fragmenting an antibody to leave an immunoreactive site, modified products of these fragments, modified products of the antibody itself, and chimeric antibodies in which two types of antibodies are bound. The monoclonal antibody of the present invention can be produced by a tissue culture method of an antibody-producing strain, a production method using genetic engineering using DNA predicted from the amino acid sequence of the antibody, or the like, using genetic engineering.
【0014】本発明のモノクローナル抗体を産生する抗
体産生株は、公知の方法に準じた方法、即ち、マウス、
ラット等の動物を免疫原で免疫し、次いで免疫した動物
のB細胞とミエローマ細胞を融合し、得られたハイブリ
ドーマの中から本発明のモノクローナル抗体を産生する
細胞株を選択することにより得ることができる。The antibody-producing strain producing the monoclonal antibody of the present invention can be prepared by a method according to a known method, that is, mouse,
It can be obtained by immunizing an animal such as a rat with an immunogen, fusing B cells of the immunized animal with myeloma cells, and selecting a cell line that produces the monoclonal antibody of the present invention from the obtained hybridomas. it can.
【0015】免疫原には、ハプテン(N1,N12−2Ac
−Spm又はN1−Ac−Spm)とキャリア物質(蛋
白質又は合成高分子)の複合体が使用でき、これは、固
相化N1,N12−2Ac−Spm又は固相化N1−Ac−
Spmの作成法で述べた方法と同様にして製造すること
ができる。本発明のモノクローナル抗体としては、例え
ばモノクローナル抗体0520,4914及び8624
が挙げられ、これらはそれぞれACSPM−1(工業技
術院生命工学工業技術研究所寄託番号、FERM P−
16297)、ACSPM−2(工業技術院生命工学工
業技術研究所寄託番号、FERM P−16298)及
びACSPM−3(工業技術院生命工学工業技術研究所
寄託番号、FERMP−16299)と名付けられた細
胞株を培養することにより得ることができる。The immunogens include haptens (N 1 , N 12 -2Ac)
-Spm or N 1 -Ac-Spm) and a carrier substance (protein or synthetic polymer) can be used, which can be immobilized on N 1 , N 12 -2Ac-Spm or N 1 -Ac. −
It can be manufactured in the same manner as the method described in the method of producing Spm. The monoclonal antibodies of the present invention include, for example, monoclonal antibodies 0520, 4914 and 8624.
These are respectively ACSPM-1 (Deposited by the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, Biotechnology and Industrial Technology Research Institute, FERM P-
16297), ACSPM-2 (Deposited by the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, FERM P-16298) and ACSPM-3 (Deposited by the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, FERMP-16299) It can be obtained by culturing the strain.
【0016】本発明の測定法は、ハプテンの免疫測定法
として知らている方法のいずれの方法によっても行なう
ことができ、特に制限されない。例えば、結合阻害法の
場合、例えば、実験例2のように、N1,N12−2Ac−
Spmによる抗体と固相化ハプテンとの免疫反応の阻害
を、固相化ハプテンに結合した抗体量の減少として、色
々な手段で検出する方法、固相担体としてラテックスを
用いる例としては、ハプテンを固相化したラテックス試
薬の抗体による凝集反応をN1,N12−2Ac−Spmに
よる阻害として検出する方法、逆に、抗体を固相化した
ラテックス試薬を用い、多エピトープ化したポリハプテ
ンの添加によるラテックス凝集反応を、N1,N12−2A
c−Spmによって阻害させる方法等がある。また、競
合法の場合、固相化した抗体に対して、N1,N12−2A
c−Spmと標識化N1,N12−2Ac−Spm又は標識
化N1−Ac−Spmとを競合反応させ、BF分離後
に、固相化した抗体に結合した標識化N1,N12−2Ac
−Spm又は標識化N1−Ac−Spmの標識を、それ
ぞれの方法で適宜に検出すればよい。The assay of the present invention can be performed by any method known as a hapten immunoassay, and is not particularly limited. For example, if the binding inhibition method, for example, as in Experimental Example 2, N 1, N 12 -2Ac-
A method for detecting the inhibition of an immune reaction between an antibody and an immobilized hapten by Spm by various means as a decrease in the amount of antibody bound to the immobilized hapten, and an example of using latex as a solid phase carrier is hapten. A method for detecting the agglutination reaction of an immobilized latex reagent by an antibody as inhibition by N 1 , N 12 -2Ac-Spm, and conversely, by using a latex reagent immobilized with an antibody and adding a polyepitopic polymorphized to a multi-epitope. Latex agglutination reaction was performed using N 1 , N 12 -2A
There is a method of inhibiting with c-Spm. In the case of the competitive method, N 1 , N 12 -2A
After a c-Spm and a labeled N 1 , N 12 -2Ac-Spm or a labeled N 1 -Ac-Spm are subjected to a competitive reaction, after BF separation, the labeled N 1 , N 12 − 2Ac
The label of -Spm or labeled N 1 -Ac-Spm may be appropriately detected by each method.
【0017】本発明の測定法を実施する測定条件は特に
限定されないが、従来知られている免疫反応を利用した
測定条件が使用できる。例えば、検体と試薬(固相化若
しくは標識化N1,N12−2Ac−Spm又は固相化若し
くは標識化N1−Ac−Spm及び抗N1,N12−2Ac
−Spmモノクローナル抗体)を混合して行なう免疫反
応は通常0〜45℃、好ましくは10〜40℃で行な
う。本発明の測定を実施するにあたり、抗N1,N12−2
Ac−Spmモノクローナル抗体は必要により固相化又
は標識化して使用する。The measurement conditions for carrying out the measurement method of the present invention are not particularly limited, but conventionally known measurement conditions utilizing an immune reaction can be used. For example, a sample and a reagent (solid or labeled N 1 , N 12 -2Ac-Spm or solid or labeled N 1 -Ac-Spm and anti-N 1 , N 12 -2Ac)
-Spm monoclonal antibody) is usually performed at 0 to 45 ° C, preferably 10 to 40 ° C. In performing the measurement of the present invention, anti-N 1 , N 12 -2
The Ac-Spm monoclonal antibody is used after being immobilized or labeled as necessary.
【0018】本発明の測定法を実施するにあたり、固相
化若しくは標識化N1,N12−2Ac−Spm又は固相化
若しくは標識化N1−Ac−Spmとしては、抗N1,N
12−2Ac−Spmモノクロナール抗体を作成する際に
用いた免疫原を作成する際に使用したスペーサーの種
類、N1,N12−2Ac−Spm若しくはN1−Ac−S
pmへの結合位置又は化学結合方法のひとつ以上を変え
て作成したものが望ましい。In carrying out the measurement method of the present invention, the immobilized or labeled N 1 , N 12 -2Ac-Spm or the immobilized or labeled N 1 -Ac-Spm includes anti-N 1 , N
Types of spacers were used to create the immunogen used to create a 12 -2Ac-Spm monoclonal antibodies, N 1, N 12 -2Ac- Spm or N 1 -Ac-S
It is desirable to use one prepared by changing at least one of the bonding position to pm or the chemical bonding method.
【0019】なお、本発明において、固相化若しくは標
識化N1,N12−2Ac−Spm又は固相化若しくは標識
化N1−Ac−Spmと抗N1,N12−2Ac−Spmモ
ノクローナル抗体との免疫反応が50%阻害されるN1,
N12−2Ac−Spmの濃度は、測定条件下で両者を反
応させて得られるシグナルを半減させるN1,N12−2A
c−Spmの濃度を求めることにより得ることができ、
これは、反応系の検出感度の尺度となり得る。In the present invention, immobilized or labeled N 1 , N 12 -2Ac-Spm or immobilized or labeled N 1 -Ac-Spm and an anti-N 1 , N 12 -2Ac-Spm monoclonal antibody N 1 , where the immune reaction with
The concentration of N 12 -2Ac-Spm is such that N 1 and N 12 -2A reduce the signal obtained by reacting both under measurement conditions by half.
can be obtained by determining the concentration of c-Spm,
This can be a measure of the sensitivity of the reaction system.
【0020】本発明において、検体としては尿、血清、
血漿等各種のものが使用できるが、特に尿が好ましい。In the present invention, the specimens include urine, serum,
Although various substances such as plasma can be used, urine is particularly preferable.
【0021】[0021]
【実施例】以下に、実験例及び実施例により本発明をよ
り具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるも
のではない。EXAMPLES The present invention will be described more specifically with reference to Experimental Examples and Examples, but the present invention is not limited to these.
【0022】実験例1 抗体のスクリーニング法 96穴マイクロタイタープレート(ヌンク社製 Nunc Im
munoplate II) の各ウェルに、抗原としてN1−アセ
チルスペルミンのヒト血清アルブミン複合体(N1−A
c−Spm−GMBS−HSA)15μg/mLを含む
10mMトリス・塩酸緩衝液(pH8.5)100μL
を入れ、40℃で20分間放置してコーティングした。
次に、コーティング液を捨てて0.1%のツウィーン2
0を含む10mMリン酸で緩衝化された生食液(PBS
T)で洗浄後、スキムミルク1%を含む50mMトリス
・塩酸で緩衝化された生食液(pH7.3)200μL
でブロッキング処理した。ブロッキング液を捨ててPB
STで洗浄後、各ウェルにハイブリドーマの培養上清6
0μLと、BSA20mg/mLを含む10mMリン酸
で緩衝化された生食液20μLを加え、4℃で一晩反応
させた。ウェルを、PBSTで洗浄後、PBSTで20
00倍に希釈した西洋わさびペルオキシダーゼ(HR
P)標識−ヤギ抗マウスIgG溶液(カッペル社)50
μLを加え、37℃、40分間反応させた。結合した酵
素の活性は、PBSTで洗浄した各ウェルに、o−フェ
ニレンジアミン0.5mg/mLと過酸化水素0.01
2%を含む0.1Mクエン酸リン酸緩衝液(pH5.
3)100μLを加え、室温下に9分間発色反応させ、
ELISAプレートリーダー(SLT-Lab Instruments
社)を用い、492nmにおける吸光度の増加として測
定した。Experimental Example 1 Antibody Screening Method 96-well microtiter plate (Nunc Im
To each well of munoplate II), N 1 as an antigen - human serum albumin conjugate of spermine (N 1 -A
c-Spm-GMBS-HSA) 100 μL of 10 mM Tris / HCl buffer (pH 8.5) containing 15 μg / mL
And left at 40 ° C. for 20 minutes to coat.
Next, the coating solution is discarded, and 0.1% Tween 2 is added.
Saline buffered with 10 mM phosphoric acid (PBS
After washing with T), 200 μL of a saline solution (pH 7.3) buffered with 50 mM Tris-hydrochloric acid containing 1% of skim milk
Was subjected to a blocking treatment. Discard the blocking solution and PB
After washing with ST, the culture supernatant of hybridoma 6 was added to each well.
0 μL and 20 μL of a saline solution buffered with 10 mM phosphoric acid containing 20 mg / mL of BSA were added and allowed to react at 4 ° C. overnight. After washing the wells with PBST, the wells were washed with PBST for 20 minutes.
Horseradish peroxidase (HR
P) Label-Goat anti-mouse IgG solution (Kappel) 50
μL was added and reacted at 37 ° C. for 40 minutes. The activity of the bound enzyme was determined by adding o-phenylenediamine 0.5 mg / mL and hydrogen peroxide 0.01 to each well washed with PBST.
0.1 M citrate phosphate buffer containing 2% (pH 5.
3) 100 μL was added, and a color reaction was performed at room temperature for 9 minutes.
ELISA plate reader (SLT-Lab Instruments
Was measured as an increase in absorbance at 492 nm.
【0023】実験例2 ELISA結合阻害法 [N1,N12−ジアセチルスペルミンのヒト血清アルブミ
ン複合体(N1,N12−2Ac−Spm−GA−HSA)
の調製]6.5mgのN1,N12−ジアセチルスペルミン
(N1,N12−2Ac−Spm)を含む1M酢酸ナトリウ
ム溶液0.5mLに、0.083Mグルタルアルデヒド
溶液1mLを加えて攪拌し、30秒間放置した。さら
に、10.5mgのヒト血清アルブミン(HSA)を含
む1M酢酸ナトリウム溶液0.5mLを加えて攪拌し、
室温で30分間反応させた。さらに、この反応液に水素
化ホウ素ナトリウム5mgを加えて室温下に10分間反
応させた後、10mM酢酸ナトリウム溶液300mL
で、4回液を交換しながら、3時間45分透析した。 [N1−アセチルスペルミジンのヒト血清アルブミン複
合体(N1−Ac−Spd−GA−HSA)の調製]3
mgのN1−アセチルスペルミジン(N1−Ac−Sp
d)を含む1M酢酸ナトリウム溶液0.5mLに、0.
021Mグルタルアルデヒド溶液1mLを加えて攪拌
し、30秒間放置した。さらに、6mgのHSAを含む
1M酢酸ナトリウム溶液0.5mLを加えて攪拌し、室
温で30分間反応させた。さらに、この反応液に水素化
ホウ素ナトリウム2.5mgを加えて室温下に10分間
反応させた後、10mM酢酸ナトリウム溶液300mL
で、4回液を交換しながら、3時間透析した。[0023] Experimental Example 2 ELISA binding inhibition method [N 1, N 12 - Diacetylspermine human serum albumin conjugate (N 1, N 12 -2Ac- Spm-GA-HSA)
Preparation of 1 mL of 0.083 M glutaraldehyde solution was added to 0.5 mL of a 1 M sodium acetate solution containing 6.5 mg of N 1 , N 12 -diacetylspermine (N 1 , N 12 -2Ac-Spm), and the mixture was stirred. It was left for 30 seconds. Further, 0.5 mL of a 1 M sodium acetate solution containing 10.5 mg of human serum albumin (HSA) was added and stirred,
The reaction was performed at room temperature for 30 minutes. Furthermore, after adding 5 mg of sodium borohydride to this reaction solution and reacting at room temperature for 10 minutes, 300 mL of a 10 mM sodium acetate solution was added.
Then, dialysis was performed for 3 hours and 45 minutes while exchanging the solution four times. [N 1 - Preparation of human serum albumin complex of acetyl spermidine (N 1 -Ac-Spd-GA -HSA)] 3
mg of N 1 -acetylspermidine (N 1 -Ac-Sp
0.5 ml of a 1 M sodium acetate solution containing d).
1 mL of a 021 M glutaraldehyde solution was added, stirred, and left for 30 seconds. Further, 0.5 mL of a 1 M sodium acetate solution containing 6 mg of HSA was added, stirred, and reacted at room temperature for 30 minutes. Further, 2.5 mg of sodium borohydride was added to the reaction solution, and the mixture was reacted at room temperature for 10 minutes. Then, 300 mL of a 10 mM sodium acetate solution was added.
Then, dialysis was performed for 3 hours while exchanging the solution four times.
【0024】[測定法]96穴マイクロタイタープレー
ト(ヌンク社製 Nunc Immunoplate II)の各ウェル
に、抗原としてN1−アセチルスペルミンのヒト血清ア
ルブミン複合体(N1−2Ac−Spm−GMBS−H
SA)、N1−アセチルスペルミジンのヒト血清アルブ
ミン複合体(N1−Ac−Spd−GA−HSA)、又
は、N1,N12−ジアセチルスペルミンのヒト血清アルブ
ミン複合体(N1,N12−Ac−Spm−GA−HSA)
を15μg/mL含む10mMトリス・塩酸緩衝液(p
H8.5)200μLを入れ、40℃で20分間放置し
てコーティングした。次に、コーティング液を捨ててP
BSTで洗浄後、スキムミルク1%を含む50mMトリ
ス・塩酸緩衝液(pH7.3)200μLでブロッキン
グ処理した。ブロッキング液を捨ててPBSTで洗浄
後、各ウェルに、ハイブリドーマ3株のそれぞれの培養
上清をPBSTで100倍希釈した液50μLと、測定
対象物のスペルミン(Spm)、N1−アセチルスペル
ミジン(N1−Ac−Spd)、N1−アセチルスペルミ
ン(N1−Ac−Spm)、N1,N12−ジアセチルスペ
ルミン(N1,N12−2Ac−Spm)等を、PBSTで
各種濃度に希釈した液50μLを加え、37℃で1.5
時間反応させた。ウェルを、PBSTで洗浄後、PBS
Tで2000倍に希釈した西洋わさびペルオキシダーゼ
標識−ヤギ抗マウスIgG溶液50μLを加え、37
℃、40分間反応させた。結合した酵素の活性は、PB
STで洗浄した各ウェルに、o−フェニレンジアミン
0.5mg/mLと過酸化水素0.012%を含む0.
1Mクエン酸リン酸緩衝液(pH5.3)100μLを
加え、室温下に5分間発色反応させ、ELISAプレー
トリーダー(SLT-Lab Instruments 社)を用い、492
nmにおける吸光度の増加として測定した。[0024] To each well of the Measurement Method] 96-well microtiter plates (Nunc Nunc Immunoplate II), N 1 as an antigen - human serum albumin conjugate of spermine (N 1 -2Ac-Spm-GMBS -H
SA), N 1 - human serum albumin conjugate of acetyl spermidine (N 1 -Ac-Spd-GA -HSA), or, N 1, N 12 - human serum albumin conjugate of Diacetylspermine (N 1, N 12 - Ac-Spm-GA-HSA)
10 mM Tris / HCl buffer containing 15 μg / mL (p
H8.5) 200 μL was added and left at 40 ° C. for 20 minutes for coating. Next, discard the coating liquid and
After washing with BST, blocking treatment was performed with 200 μL of 50 mM Tris / HCl buffer (pH 7.3) containing skim milk 1%. After discarding the blocking solution and washing with PBST, 50 μL of the culture supernatant of each of the three hybridoma strains diluted 100-fold with PBST, spermine (Spm), N 1 -acetylspermidine (N 1 -Ac-Spd), N 1 - spermine (N 1 -Ac-Spm), N 1, N 12 - diacetylspermine (N 1, N 12 -2Ac- Spm) or the like, and diluted to various concentrations with PBST 50 μL of the solution, and
Allowed to react for hours. After washing the wells with PBST,
50 μL of horseradish peroxidase-labeled goat anti-mouse IgG solution diluted 2000-fold with T
The reaction was performed at 40 ° C. for 40 minutes. The activity of the bound enzyme is PB
Each well washed with ST contains 0.5 mg / mL of o-phenylenediamine and 0.012% of hydrogen peroxide.
100 μL of 1M citrate phosphate buffer (pH 5.3) was added, and a color reaction was performed at room temperature for 5 minutes, and 492 was performed using an ELISA plate reader (SLT-Lab Instruments).
Measured as increase in absorbance in nm.
【0025】実施例1 N1,N12−ジアセチルスペルミ
ンに対するモノクローナル抗体の作成[N1−アセチル
スペルミンのBSA複合体(抗原)の調製] 50mgのS−アセチルメルカプトコハク酸無水物(A
MS)を含むテトラヒドロフラン溶液1mLを、200
mgのウシ血清アルブミン(BSA)を含む0.1Mリ
ン酸緩衝液(pH7.0)5mLに加えて攪拌し、1N
水酸化ナトリウム溶液でpHを7.0に保ちながら、室
温下に1時間反応させた。この反応液を、5mMリン酸
緩衝液(pH6.8)で膨潤化したセファデックスG−
75のカラム(2cm×100cm)にかけ、5mMリ
ン酸緩衝液(pH6.8)で溶出した。誘導体化された
BSA画分を集めて凍結乾燥し、AMS化されたBSA
(AMS−BSA)180mgを得た。BSAへのSH
基の導入数は17±0.5であった。次に、10.4m
gのN1−アセチルスペルミン・3塩酸塩を含む0.1
Mリン酸緩衝液(pH6.9)1mLに、1mgのN−
(4−マレイミドブチルオキシ)コハク酸イミド(GMB
S)を含むテトラヒドロフラン溶液0.5mLを加え、
pHを7付近に保ちながら、室温で100分間反応さ
せ、GMBS化N1−アセチルスペルミン溶液を調製し
た。[0025] Example 1 N 1, N 12 - Creating a monoclonal antibody against Diacetylspermine [N 1 - Preparation of BSA conjugates of spermine (antigen)] S- acetyl mercaptosuccinic anhydride 50 mg (A
MS) in 1 mL of tetrahydrofuran solution
mg of bovine serum albumin (BSA) in 5 mL of a 0.1 M phosphate buffer (pH 7.0), and stirred.
The reaction was carried out at room temperature for 1 hour while maintaining the pH at 7.0 with a sodium hydroxide solution. This reaction solution was prepared by swelling with 5 mM phosphate buffer (pH 6.8).
The mixture was applied to 75 columns (2 cm × 100 cm) and eluted with 5 mM phosphate buffer (pH 6.8). The derivatized BSA fractions were collected and lyophilized to give AMS-converted BSA.
(AMS-BSA) 180 mg was obtained. SH to BSA
The number of introduced groups was 17 ± 0.5. Next, 10.4m
0.1 g of N 1 -acetylspermine trihydrochloride
M phosphate buffer (pH 6.9)
(4-maleimidobutyloxy) succinimide (GMB
0.5 mL of a tetrahydrofuran solution containing S) is added,
The reaction was carried out at room temperature for 100 minutes while maintaining the pH at around 7, to prepare a GMBS-modified N 1 -acetylspermine solution.
【0026】一方、17.3mgのAMS−BSAを含
む0.1Mリン酸緩衝液(pH6.9)0.2mLに、
0.5Mヒドロキシルアミン溶液(pH7.0)50μ
Lを加えて室温下に10分間放置後、さらに、0.1M
リン酸緩衝液(pH6.9)2mLを加えた。この溶液
と、先に調製したGMBS化N1−アセチルスペルミン
溶液を混合してボルテックスミキサー攪拌後、10mM
トリス・塩酸緩衝液(pH7.5)で平衡化したセファ
デックスG−100のカラム(2.2cm×43cm)
にかけ、同緩衝液で溶出した。280nmにおける蛋白
質吸収画分を集め、N1−アセチルスペルミンのBSA
複合体(N1−Ac−Spm−GMBS−BSA)を得
た。また、同様の方法で、ヒト血清アルブミン(HS
A)に対応するN1−アセチルスペルミンのHSA複合
体(N1−Ac−Spm−GMBS−HSA)も調製し
た。On the other hand, to 0.2 mL of a 0.1 M phosphate buffer (pH 6.9) containing 17.3 mg of AMS-BSA,
0.5μ hydroxylamine solution (pH 7.0) 50μ
L, and allowed to stand at room temperature for 10 minutes.
2 mL of phosphate buffer (pH 6.9) was added. This solution was mixed with the GMBS-modified N 1 -acetylspermine solution prepared above and stirred with a vortex mixer.
Sephadex G-100 column (2.2 cm x 43 cm) equilibrated with Tris / hydrochloric acid buffer (pH 7.5)
And eluted with the same buffer. Collected protein fraction absorbed at 280 nm, N 1 - acetyl spermine BSA
A complex (N 1 -Ac-Spm-GMBS-BSA) was obtained. In a similar manner, human serum albumin (HS
N 1 corresponding to A) - HSA complex of spermine (N 1 -Ac-Spm-GMBS -HSA) were also prepared.
【0027】[免疫]雌性BALB/cマウスに、コンプ
リート・フロイント・アジュバントで乳化したN1−A
c−Spm−GMBS−BSA抗原100μgを腹腔内
投与した。さらに、100μgのN1−Ac−Spm−
GMBS−BSA抗原を10mMリン酸で緩衝化された
生食液(PBS)で希釈したもので、2週間毎に、4回
追加免疫を行った。 [細胞融合]5回目の最終感作を行ってから4日後に、
マウスの脾細胞を取り出し、これとミエローマ細胞P3
/NS−1/1Ag4−1とを、40%ポリエチレング
リコール1500(ベーリンガー社)存在下に、Shu
lmanらの方法に従って細胞融合した。次いで、融合
細胞は、96穴培養プレート(コーニング社)を用い
て、ウェル当たり105 個の細胞密度で、HAT培地中
で培養した。細胞融合後10〜20日目に、960ウェ
ル中708ウェル(74%)に、細胞の増殖が認められ
た。[Immunity] N 1 -A emulsified with Complete Freund's adjuvant was injected into female BALB / c mice.
100 μg of c-Spm-GMBS-BSA antigen was administered intraperitoneally. Further, 100 μg of N 1 -Ac-Spm-
The GMBS-BSA antigen was diluted with a saline solution (PBS) buffered with 10 mM phosphoric acid, and boosted four times every two weeks. [Cell fusion] Four days after the fifth final sensitization,
The mouse spleen cells were removed, and this and myeloma cell P3
/ NS-1 / Ag4-1 in the presence of 40% polyethylene glycol 1500 (Boehringer) in the presence of Shu.
Cell fusion was performed according to the method of Iman et al. The fused cells were then cultured in HAT medium using a 96-well culture plate (Corning) at a cell density of 10 5 cells per well. Ten to twenty days after cell fusion, cell growth was observed in 708 of 960 wells (74%).
【0028】[細胞の選択]各ウェルの培養上清中の抗
体価を、実験例1の「抗体のスクリーニング法」で検索
し、免疫反応陽性の細胞3個を得た。これらを限界希釈
法でクローン化し、継続的に抗体を産生する細胞、AC
SPM−1、ACSPM−2、ACSPM−3の3株を
樹立した。さらに、これら3株の抗原部位への反応性を
確認するため、抗原作成時に副生する可能性のあるGM
BA−HSA(AMS−HSAにスペーサーのGMBA
を導入したもの)も調製し、実験例1の抗原N1−Ac
−Spm−GMBS−HSAの代わりに、GMBA−H
SA、AMS−HSA(HSAにSH基を導入したも
の)やキャリア蛋白そのもののHSAをコーティングし
たプレートも調製し、倍々希釈したACSPM−1株、
ACSPM−2株、ACSPM−3株の培養上清との反
応性を確認した。結果を、それぞれ図1〜図3に示し
た。いずれの培養上清も、N1−Ac−Spm−GMB
S−HSAにのみ反応し、GMBA−HSA、AMS−
HSAやHSAとは、全く反応しなかった。 [クローン細胞のサブタイプ]各クローン細胞が産生す
る免疫グロブリンのサブタイプは、マウスモノクローナ
ルSub-isotyping キット(Zymed 社コードNo.97−
6550)を用いて決定した。その結果、0520抗体
(ACSPM−1株)と4914抗体(ACSPM−2
株)はIgG1、8624抗体(ACSPM−3株)が
IgG2bであった。[Selection of Cells] The antibody titer in the culture supernatant of each well was searched by the "antibody screening method" of Experimental Example 1 to obtain three cells positive for immunoreactivity. These are cloned by the limiting dilution method, and cells that continuously produce antibodies, AC
Three strains of SPM-1, ACSPM-2 and ACSPM-3 were established. Furthermore, in order to confirm the reactivity of these three strains to the antigen site, GM which may be a by-product during antigen production
BA-HSA (GMSA with spacer on AMS-HSA)
Into which the antigen N 1 -Ac of Experimental Example 1 was prepared.
-Instead of Spm-GMBS-HSA, GMBA-H
SA, AMS-HSA (in which an SH group is introduced into HSA) or a plate coated with HSA of the carrier protein itself was also prepared, and the ACSPM-1 strain, which was diluted twice, was prepared.
The reactivity of the ACSPM-2 strain and the ACSPM-3 strain with the culture supernatant was confirmed. The results are shown in FIGS. All culture supernatants were N 1 -Ac-Spm-GMB
Reacts only with S-HSA, GMBA-HSA, AMS-
It did not react with HSA or HSA at all. [Clone Cell Subtype] The subtype of the immunoglobulin produced by each clone cell was determined using a mouse monoclonal Sub-isotyping kit (Zymed Code No. 97-
6550). As a result, the 0520 antibody (ACSPM-1 strain) and the 4914 antibody (ACSPM-2
Strain) was IgG 1 , and the 8624 antibody (ACSPM-3 strain) was IgG 2b .
【0029】実施例2 モノクローナル抗体の特異性 作成したモノクローナル抗体の特異性は、抗体の固相化
抗原への結合を、測定対象物質がどの程度阻害するかを
検出する系、「ELISA結合阻害法」で評価した。即
ち、実験例2の方法に従い、3つの抗原、N1−Ac−
Spm−GMBS−HSA、N1−Ac−Spd−GA
−HSA、N1,N12−2Ac−Spm−GA−HSA
を、それぞれ固相化したプレートを用いて、各濃度のポ
リアミン類が、抗体と固相化抗原との反応を、どの程度
阻害するかを評価した。免疫原に相当するN1−Ac−
Spm−GMBS−HSAを固相化した系では、検討し
たポリアミン類の何れによっても全く阻害されず、測定
系としては不適切であった。一方、N1−Ac−Spd
−GA−HSA、又は、N1,N12−2Ac−Spm−G
A−HSAを固相化した系では、検討した各成分、Sp
m、N1−Ac−Spd、N1−Ac−Spm、N1,N12
−2Ac−Spmによって、図4〜9に示した結合阻害
曲線(検量線)が得られた。0520、4914、86
24のいずれの抗体も、N1−Ac−SpmとN1,N12
−2Ac−Spmに強く、N1−Ac−Spdと極めて
弱く反応(阻害)し、Spmとは全く反応(阻害)しな
かった。図から、これらの抗体を用いてポリアミン類を
測定した場合の測定感度を50%結合阻害濃度(EC50
値)として求め、結果を表1に示した。Example 2 Specificity of Monoclonal Antibody The specificity of the prepared monoclonal antibody was measured by a system for detecting the extent to which the substance to be measured inhibits the binding of the antibody to the immobilized antigen. Was evaluated. That is, according to the method of Experimental Example 2, three antigens, N 1 -Ac-
Spm-GMBS-HSA, N 1 -Ac-Spd-GA
-HSA, N 1, N 12 -2Ac -Spm-GA-HSA
Was evaluated using a plate on which each was immobilized, to what extent each concentration of polyamines inhibited the reaction between the antibody and the immobilized antigen. N 1 -Ac- corresponding to immunogen
The system in which Spm-GMBS-HSA was immobilized was not inhibited at all by any of the polyamines examined, and was unsuitable as a measurement system. On the other hand, N 1 -Ac-Spd
-GA-HSA, or, N 1, N 12 -2Ac- Spm-G
In the system in which A-HSA was immobilized, each component examined, Sp
m, N 1 -Ac-Spd, N 1 -Ac-Spm, N 1 , N 12
The binding inhibition curves (calibration curves) shown in FIGS. 4 to 9 were obtained by -2Ac-Spm. 0520, 4914, 86
Each of the 24 antibodies had N 1 -Ac-Spm and N 1 , N 12
Strongly reacted with -2Ac-Spm, very weakly reacted (inhibited) with N 1 -Ac-Spd, and did not react (inhibited) with Spm at all. From the figure, the measurement sensitivity when polyamines were measured using these antibodies was determined to be 50% binding inhibition concentration (EC 50
Value), and the results are shown in Table 1.
【0030】なお、図4はN1,N12−2Ac−Spm−
GA−HSA固相化ELISA結合阻害法での0520
抗体の特異性を、図5は、N1,N12−2Ac−Spm−
GA−HSA固相化ELISA結合阻害法での4914
抗体の特異性を、図6は、N 1,N12−2Ac−Spm−
GA−HSA固相化ELISA結合阻害法での8624
抗体の特異性を、図7は、N1−Ac−Spd−GA−
HSA固相化ELISA結合阻害法での0520抗体の
特異性を、図8は、N1−Ac−Spd−GA−HSA
固相化ELISA結合阻害法での4914抗体の特異性
を、図9は、N 1−Ac−Spd−GA−HSA固相化
ELISA結合阻害法での8624抗体の特異性を示し
たものである。FIG. 4 shows N1, N12-2Ac-Spm-
0520 by GA-HSA immobilized ELISA binding inhibition method
FIG. 5 shows the specificity of the antibody.1, N12-2Ac-Spm-
4914 in GA-HSA immobilized ELISA binding inhibition method
FIG. 6 shows the specificity of the antibody. 1, N12-2Ac-Spm-
8624 by GA-HSA immobilized ELISA binding inhibition method
FIG. 7 shows the specificity of the antibody.1-Ac-Spd-GA-
0520 Antibody by HSA Immobilized ELISA Binding Inhibition Method
The specificity is shown in FIG.1-Ac-Spd-GA-HSA
Specificity of 4914 antibody in solid-phase ELISA binding inhibition method
And FIG. 1-Ac-Spd-GA-HSA immobilization
Shows the specificity of the 8624 antibody in ELISA binding inhibition
It is a thing.
【0031】0520、4914、8624のいずれの
抗体も、N1−Ac−SpmとN1,N12−2Ac−Sp
mに特異的であった。平松ら(J.Biochem.1
17p107−112(1995))やG.A.van
den Bergら(Clin.Chem.32(1
0) p1930−1937(1986))によると、
尿中のN1−Ac−Spm濃度は、N1,N12−2Ac−
Spmより著しく低いことから、この測定法で、実質的
に尿中のN1,N12−2Ac−Spm濃度を反映する測定
値を得ることができる。All of the antibodies 0520, 4914 and 8624 were made of N 1 -Ac-Spm and N 1 , N 12 -2Ac-Sp.
m specific. Hiramatsu et al. (J. Biochem. 1)
17p107-112 (1995)) and G. et al. A. van
den Berg et al. (Clin. Chem. 32 (1
0) p1930-1937 (1986))
The concentration of N 1 -Ac-Spm in urine is N 1 , N 12 -2Ac-
From significantly lower than Spm, in this measuring method, it is possible to obtain a measurement that reflects the substantially N 1, N 12 -2Ac-Spm concentration in urine.
【0032】[0032]
【表1】 [Table 1]
【0033】実施例3 96穴マイクロタイタープレート(ヌンク社製 Nunc Im
munoplate)の各wellに抗原としてN1,N12−2A
c−Spm−GA−HSAを16.1μg/mL含む1
0mMトリス・塩酸緩衝液(pH8.5)150μLを
入れ、40℃で30分間放置してコーティングした。次
にPBST300μLで洗浄後、スキムミルク1%を含
む50mMトリス・塩酸緩衝液(pH7.2)300μ
lでブロッキング処理した。PBSTで洗浄後、各we
llにACSPM−1の培養上清をPBSTで25倍希
釈した液50μLと、測定対象物のPut(プトレッシ
ン)、Ac−Put、Orn(オルニチン)、Cad
(カダベリン)、Spd、N1−Ac−Spd、N8−A
c−Spd、N1,N8−2Ac−Spd、Spm、N1−
Ac−Spm、N1,N12−2Ac−SpmをPBSTで
各種濃度に希釈した液50μLを加え、4℃で一晩反応
させた。各ウェルをPBSTで洗浄後、PBSTで20
00倍に希釈したヤギ抗マウスIgG(H&L)−ビオ
チン(AMERICAN QUALEX社)100μL
を加え、室温で1.5時間反応し、PBSTで洗浄後、
PBSTで3000倍希釈したHRP−ストレプトアビ
ジン(フナコシ社)100μLを加え、室温で30分反
応させた。結合した酵素の活性は、PBSTで洗浄した
各wellに、o−フェニレンジアミン0.5mg/m
Lと過酸化水素0.012%を含む0.1Mクエン酸・
リン酸緩衝液(pH5.3)100μLを加え、室温下
に6分間反応させ、ELISAプレートリーダー(SLT-
Lab Instruments 社)を用い、492nmにおける吸光
度の増加として測定した。結果を図10に示した。図1
0から明らかなようにこの反応系によれば、N1,N12
−2Ac−Spmに対する特異性が向上していることが
判る。Example 3 96-well microtiter plate (Nunc Im manufactured by Nunc)
munoplate) as antigens N 1 , N 12 -2A
1 containing 16.1 μg / mL of c-Spm-GA-HSA
150 μL of 0 mM Tris / hydrochloric acid buffer (pH 8.5) was added thereto, and left at 40 ° C. for 30 minutes to perform coating. Then, after washing with 300 μL of PBST, 300 μM of 50 mM Tris / HCl buffer (pH 7.2) containing 1% of skim milk
1 to perform a blocking treatment. After washing with PBST,
50 μL of a 25-fold dilution of the culture supernatant of ACSPM-1 in PBST, and Put (putrescine), Ac-Put, Orn (ornithine), Cad
(Cadaverine), Spd, N 1 -Ac-Spd, N 8 -A
c-Spd, N 1, N 8 -2Ac-Spd, Spm, N 1 -
50 μL of a solution obtained by diluting Ac-Spm, N 1 , N 12 -2Ac-Spm to various concentrations with PBST was added, and reacted at 4 ° C. overnight. After each well was washed with PBST, the well was washed with PBST for 20 minutes.
100 μL of goat anti-mouse IgG (H & L) -biotin (AMERICA QUALEX) diluted 1:00
, And reacted at room temperature for 1.5 hours. After washing with PBST,
100 μL of HRP-streptavidin (Funakoshi) diluted 3000 times with PBST was added, and reacted at room temperature for 30 minutes. The activity of the bound enzyme was determined by adding 0.5 mg / m o-phenylenediamine to each well washed with PBST.
0.1M citric acid containing L and 0.012% of hydrogen peroxide
100 μL of a phosphate buffer (pH 5.3) was added, and the mixture was reacted at room temperature for 6 minutes. An ELISA plate reader (SLT-
Lab Instruments) as an increase in absorbance at 492 nm. The results are shown in FIG. FIG.
As apparent from FIG. 0, according to this reaction system, N 1 , N 12
It can be seen that the specificity for -2Ac-Spm has been improved.
【0034】実施例4 最適化されたELISA結合阻
害法でのモノクローナル抗体の特異性 実験例2の測定法を改良し、再度、抗体の特異性と測定
感度を確認した。96穴マイクロタイタープレート(ヌ
ンク社製 Nunc Immunoplate II)の各ウェルに、抗原と
してN1−アセチルスペルミンのヒト血清アルブミン複
合体(N1−Ac−Spm−GA−HSA)、又は、
N1,N12−ジアセチルスペルミンのヒト血清アルブミン
複合体(N1,N12−2Ac−Spm−GA−HSA)1
5μg/mLを含む10mMトリス・塩酸緩衝液(pH
8.5)150μLを入れ、40℃で30分間放置して
コーティングした。次に、コーティング液を捨ててPB
STで洗浄後、スキムミルク1%を含む50mMトリス
・塩酸で緩衝液(pH7.4)300μL加え、37℃
で1時間ブロッキング処理した。Example 4 Specificity of Monoclonal Antibody in Optimized ELISA Binding Inhibition Method The measurement method of Experimental Example 2 was improved, and the antibody specificity and measurement sensitivity were confirmed again. To each well of a 96-well microtiter plates (Nunc Nunc Immunoplate II), N 1 as an antigen - human serum albumin conjugate of spermine (N 1 -Ac-Spm-GA -HSA), or,
N 1, N 12 - human serum albumin conjugate of Diacetylspermine (N 1, N 12 -2Ac- Spm-GA-HSA) 1
10 mM Tris / HCl buffer containing 5 μg / mL (pH
8.5) 150 μL was added and left at 40 ° C. for 30 minutes to perform coating. Next, discard the coating liquid and
After washing with ST, add 300 μL of a buffer (pH 7.4) with 50 mM Tris / hydrochloric acid containing skim milk 1%, and add 37 ° C.
For 1 hour.
【0035】ブロッキング液を捨ててPBSTで洗浄
後、各ウェルに、ハイブリドーマ3株のそれぞれの培養
上清液を表2に示した倍率(200〜20,000倍)
にPBSTで希釈した液25μLと、測定対象物のスペ
ルミン(Spm)、N1,N8−ジアセチルスペルミジン
(N1,N8−2Ac−Spd)、N1−アセチルスペルミ
ジン(N1−Ac−Spd)、N1−アセチルスペルミン
(N1−Ac−Spm)、N1,N12−ジアセチルスペル
ミン(N1,N12−2Ac−Spm)をPBSTで各濃度
に希釈した液75μLを加え、室温下に3時間反応させ
た。ウェルをPBSTで洗浄後、PBSTで2000倍
に希釈したビオチン標識ヤギ抗マウスIgG抗体溶液5
0μLを加え、室温下に1時間反応させた。ウェルを再
びPBSTで洗浄後、PBSTで3000倍に希釈した
西洋わさびペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジン溶
液50μLを加え、室温下に30分間反応させた。After discarding the blocking solution and washing with PBST, the culture supernatant of each of the three hybridoma strains was added to each well at the magnification shown in Table 2 (200 to 20,000 times).
A liquid 25μL diluted in PBST to, spermine of the measuring object (Spm), N 1, N 8 - diacetyl spermidine (N 1, N 8 -2Ac- Spd), N 1 - acetyl spermidine (N 1 -Ac-Spd ), N 1 - spermine (N 1 -Ac-Spm), N 1, N 12 - diacetylspermine (N 1, N 12 -2Ac- Spm) was added a solution 75μL diluted to each concentration with PBST, room temperature For 3 hours. After washing the wells with PBST, a biotin-labeled goat anti-mouse IgG antibody solution 5
0 μL was added, and the mixture was reacted at room temperature for 1 hour. After the wells were washed again with PBST, 50 μL of a horseradish peroxidase-labeled streptavidin solution diluted 3000-fold with PBST was added, and reacted at room temperature for 30 minutes.
【0036】結合した酵素の活性は、PBSTで洗浄し
た各ウェルに、o−フェニレンジアミン0.5mg/m
Lと過酸化水素0.012%を含む0.1Mクエン酸リ
ン酸緩衝液(pH5.3)100μLを加え、室温下に
5分間発色反応させ、ELISAプレートリーダー(SL
T-Lab Instruments社)を用い、492nmにおける吸
光度の増加として測定した。結果を表2にまとめた。測
定系を改良し、抗体の希釈倍率を上げることにより、N
1,N12−Ac−Spm−GA−HSAを固相化した系の
測定感度と特異性は、大幅に向上した。即ち、N1,N12
−Ac−Spmの測定感度は、0520抗体が8倍、4
914抗体が22倍、8624抗体が70倍に向上し、
50%結合阻害濃度で比較した感度は、0.06〜0.
2μMになった。また、特異性をN1,N12−Ac−Sp
mによる50%結合阻害活性とN1−Ac−Spdによ
る50%結合阻害活性との比として表現した場合、05
20抗体が48倍、4914抗体が117倍、8624
抗体が45倍となり、何れも改良前より向上した。The activity of the bound enzyme was determined by adding 0.5 mg / m o-phenylenediamine to each well washed with PBST.
L and 100 μL of 0.1 M citrate phosphate buffer (pH 5.3) containing 0.012% of hydrogen peroxide, and allowed to undergo a color development reaction at room temperature for 5 minutes, followed by an ELISA plate reader (SL
(T-Lab Instruments) as an increase in absorbance at 492 nm. The results are summarized in Table 2. By improving the measurement system and increasing the dilution ratio of the antibody, N
1, N 12 measuring sensitivity and specificity of the immobilized system -Ac-Spm-GA-HSA was significantly improved. That is, N 1 , N 12
The measurement sensitivity of -Ac-Spm was as follows:
914 antibody is improved by 22 times, 8624 antibody is improved by 70 times,
The sensitivity compared at the 50% binding inhibitory concentration was 0.06 to 0.
2 μM. In addition, the specificity was determined as N 1 , N 12 -Ac-Sp
When expressed as the ratio of the 50% binding inhibitory activity by m to the 50% binding inhibitory activity by N 1 -Ac-Spd, 05
20 antibodies 48-fold, 4914 antibodies 117-fold, 8624
The antibody was 45-fold, all of which improved from before the improvement.
【0037】[0037]
【表2】 [Table 2]
【0038】実施例5 4914モノクローナル抗体の
特異性 実施例4で最も測定感度と特異性の高かった4914モ
ノクローナル抗体を用い、実施例3の方法でプトレッシ
ン(Put)、アセチルプトレッシン(Ac−Pu
t)、L−オルニチン(Orn)、カダベリン(Ca
d)、スペルミジン(Spd)、N8−アセチルスペル
ミジン(N8−Ac−Spd)、N1−アセチルスペルミ
ジン(N1−Ac−Spd)、N1,N8−ジアセチルスペ
ルミジン(N1,N8−2Ac−Spd)、スペルミン
(Spm)、N1−アセチルスペルミン(N 1−Ac−S
pm)やN1,N12−ジアセチルスペルミン(N1,N12−
2Ac−Spm)の希釈系列を測定し、4914モノク
ローナル抗体の特異性検討した。図11のように、この
測定系は、N1,N12−2Ac−Spmに特異的で、N1
−Ac−SpmとはN1,N12−2Ac−Spmの24
%、N1−Ac−Spdとは0.85%、N1,N8−2A
c−Spdとは0.6%、Spmとは0.1%、その他
のポリアミン類とはほとんど反応しなかった。Example 5 4914 Monoclonal Antibody
Specificity The 4914 model with the highest measurement sensitivity and specificity in Example 4
Using a noclonal antibody, putressi by the method of Example 3
(Put), acetyl putrescine (Ac-Pu)
t), L-ornithine (Orn), cadaverine (Ca
d), spermidine (Spd), N8-Acetyl spelling
Midin (N8-Ac-Spd), N1-Acetyl spermi
Gin (N1-Ac-Spd), N1, N8-Diacetylspec
Lumidine (N1, N8-2Ac-Spd), spermine
(Spm), N1-Acetyl spermine (N 1-Ac-S
pm) or N1, N12-Diacetylspermine (N1, N12−
2Ac-Spm) was measured and 4914 monoclonal
The specificity of the nal antibody was examined. As shown in FIG.
The measurement system is N1, N12-2Ac-Spm specific, N1
What is -Ac-Spm?1, N12-2Ac-Spm of 24
%, N1-Ac-Spd is 0.85%, N1, N8-2A
0.6% for c-Spd, 0.1% for Spm, and others
Hardly reacted with the polyamines.
【0039】実施例6 健常者の尿中N1,N12−2Ac
−Spmの測定 実施例5の方法で、健常者の尿検体16例(男性8例、
女性8例)の希釈系列を測定し、尿中のN1,N12−2A
c−Spm濃度を求めた。測定例の一部を図12に示し
た。男子及び女子8例ずつの平均値±SDは、それぞれ
0.34±0.16、0.39±0.14μM/g−ク
レアチニンで、全体の平均値は0.36μM/g−クレ
アチニンであった。平松らの報告(J.Bioche
m.117p107−112(1995))によると、
尿中におけるN1,N12−2Ac−Spm:N1−Ac−
Spm:N1−Ac−Spd:N1,N8−2Ac−Spd
の存在比は、3.2%:1.0%:86.2%:9.6
%であることが報告されている。この測定系の特異性か
らすれば、N1,N12−2Ac−Spm以外のポリアミン
成分の影響は軽微と考えられ、尿中のN1,N12−2Ac
−Spmは、ほぼ正確に測定されているものと考えられ
る。Example 6 N 1 and N 12 -2Ac in urine of healthy subjects
-Measurement of Spm According to the method of Example 5, 16 urine samples from healthy subjects (8 males,
The dilution series of 8 females) were measured, and N 1 , N 12 -2A in urine was measured.
The c-Spm concentration was determined. A part of the measurement example is shown in FIG. The average values ± SD for each of 8 male and 8 female cases were 0.34 ± 0.16 and 0.39 ± 0.14 μM / g-creatinine, respectively, and the overall average value was 0.36 μM / g-creatinine. . Hiramatsu et al.'S report (J. Bioche
m. 117p107-112 (1995))
N 1 , N 12 -2Ac-Spm in urine: N 1 -Ac-
Spm: N 1 -Ac-Spd: N 1 , N 8 -2Ac-Spd
Is 3.2%: 1.0%: 86.2%: 9.6.
% Is reported. According to the specificity of this measurement system, the influence of polyamine components other than N 1 , N 12 -2Ac-Spm is considered to be minor, and N 1 , N 12 -2Ac in urine is considered to be minor.
-Spm is considered to be measured almost exactly.
【0040】[0040]
【発明の効果】本発明のN1,N12−ジアセチルスペルミ
ンと反応するモノクローナル抗体は、尿等の検体中のN
1,N12−ジアセチルスペルミンを測定することができ、
癌の診断に有用である。The monoclonal antibody which reacts with N 1 , N 12 -diacetylspermine according to the present invention can be used for detecting N 2 in a sample such as urine.
1 , N 12 -diacetylspermine can be measured,
Useful for diagnosing cancer.
【図1】ACSPM−1株培養上清液の免疫原への特異
性FIG. 1 Specificity of the culture supernatant of the ACSPM-1 strain for immunogen
【図2】ACSPM−2株培養上清液の免疫原への特異
性FIG. 2 Specificity of the culture supernatant of ACSPM-2 strain for immunogen
【図3】ACSPM−3株培養上清液の免疫原への特異
性FIG. 3 Specificity of ACSPM-3 strain culture supernatant for immunogen
【図4】N1,N12−2Ac−Spm−GA−HSA固相
化ELISA結合阻害法での0520抗体の特異性[4] N 1, the specificity of the 0520 antibody with N 12 -2Ac-Spm-GA- HSA immobilized ELISA binding inhibition method
【図5】N1,N12−2Ac−Spm−GA−HSA固相
化ELISA結合阻害法での4914抗体の特異性[5] N 1, the specificity of the 4914 antibody with N 12 -2Ac-Spm-GA- HSA immobilized ELISA binding inhibition method
【図6】N1,N12−2Ac−Spm−GA−HSA固相
化ELISA結合阻害法での8624抗体の特異性[6] N 1, the specificity of the 8624 antibody with N 12 -2Ac-Spm-GA- HSA immobilized ELISA binding inhibition method
【図7】N1−Ac−Spd−GA−HSA固相化EL
ISA結合阻害法での0520抗体の特異性FIG. 7: N 1 -Ac-Spd-GA-HSA immobilized EL
Specificity of 0520 antibody in ISA binding inhibition method
【図8】N1−Ac−Spd−GA−HSA固相化EL
ISA結合阻害法での4914抗体の特異性FIG. 8: N 1 -Ac-Spd-GA-HSA immobilized EL
Specificity of 4914 antibody in ISA binding inhibition method
【図9】N1−Ac−Spd−GA−HSA固相化EL
ISA結合阻害法での8624抗体の特異性FIG. 9: N 1 -Ac-Spd-GA-HSA immobilized EL
Specificity of 8624 antibody in ISA binding inhibition method
【図10】N1,N12−2Ac−Spm−GA−HSA固
相化ELISA結合阻害法での0520抗体の特異性[10] N 1, the specificity of the 0520 antibody with N 12 -2Ac-Spm-GA- HSA immobilized ELISA binding inhibition method
【図11】N1,N12−2Ac−Spm−GA−HSA固
相化ELISA結合阻害法での4914抗体の特異性FIG. 11: Specificity of antibody 4914 by N 1 , N 12 -2Ac-Spm-GA-HSA immobilized ELISA binding inhibition method
【図12】N1,N12−2Ac−Spmの検量線及び尿検
体中のN1,N12−2Ac−Spmの濃度The concentration of N 1, N 12 -2Ac-Spm in FIG. 12 N 1, a calibration curve of the N 12 -2Ac-Spm and urine specimens
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 FI //(C12P 21/08 C12R 1:91) ──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (51) Int.Cl. 6 Identification symbol FI // (C12P 21/08 C12R 1:91)
Claims (9)
ルスペルミン又は固相化若しくは標識化N1−アセチル
スペルミンと抗N1,N12−ジアセチルスペルミンモノク
ローナル抗体の免疫反応を利用した検体中のN1,N12−
ジアセチルスペルミンの測定系を組んだ場合に、N1,N
12−ジアセチルスペルミンによる該免疫反応の阻害活性
がN1−アセチルスペルミジンによる該免疫反応の阻害
活性の20倍以上となる測定条件を選択することが可能
になる抗N1,N12−ジアセチルスペルミンモノクロナー
ル抗体。1. A sample using an immunoreaction between immobilized or labeled N 1 , N 12 -diacetylspermine or immobilized or labeled N 1 -acetylspermine and an anti-N 1 , N 12 -diacetylspermine monoclonal antibody. N 1 , N 12 −
When a measurement system for diacetylspermine is set up, N 1 , N
12 - diacetylspermine inhibitory activity by the immune response N 1 - anti N 1 of the measurement conditions is 20 times more inhibitory activity it is possible to select of the immune response by acetyl spermidine, N 12 - diacetylspermine monochrome Nal antibody.
ルスペルミン又は固相化若しくは標識化N1−アセチル
スペルミンとの免疫反応が50%阻害されるN1,N12−
ジアセチルスペルミンの濃度が20μM以下となる測定
条件を選択することが可能になる請求項1記載のモノク
ローナル抗体。Wherein immobilized or labeled N 1, N 12 - Diacetylspermine or immobilized or labeled N 1 - N 1, N 12 where immunoreaction with spermine is inhibited 50% -
2. The monoclonal antibody according to claim 1, wherein measurement conditions under which the concentration of diacetylspermine is 20 μM or less can be selected.
モノクローナル抗体。3. The monoclonal antibody according to claim 1, wherein the sample is a urine sample.
は8624。4. The monoclonal antibody 0520, 4914 or 8624.
ナル抗体を産生する細胞株。5. A cell line that produces the monoclonal antibody according to claim 1, 2, 3, or 4.
ルスペルミン又は固相化若しくは標識化N1−アセチル
スペルミンと抗N1,N12−ジアセチルスペルミンモノク
ローナル抗体の免疫反応を利用して検体中のN1,N12−
ジアセチルスペルミンを測定する際に、その測定条件に
おけるN1,N12−ジアセチルスペルミンによる該免疫反
応の阻害活性がN1−アセチルスペルミジンによる該免
疫反応の阻害活性の20倍以上となる抗N1,N12−ジア
セチルスペルミンモノクローナル抗体を用いることを特
徴とするN1,N12−ジアセチルスペルミンの測定法。6. An immunoreaction between immobilized or labeled N 1 , N 12 -diacetylspermine or immobilized or labeled N 1 -acetylspermine and an anti-N 1 , N 12 -diacetylspermine monoclonal antibody. N 1 , N 12 − in the sample
When diacetylspermine is measured, anti-N 1 , in which the inhibitory activity of the immune response by N 1 , N 12 -diacetylspermine under the measurement conditions is at least 20 times the inhibitory activity of the immune response by N 1 -acetylspermidine, A method for measuring N 1 , N 12 -diacetylspermine, comprising using an N 12 -diacetylspermine monoclonal antibody.
ローナル抗体が、測定条件において固相化若しくは標識
化N1,N12−ジアセチルスペルミン又は固相化若しくは
標識化N1−アセチルスペルミンとの免疫反応を50%
阻害するN1,N12−ジアセチルスペルミンの濃度が20
μM以下となる抗N1,N12−ジアセチルスペルミンモノ
クローナル抗体である請求項6記載の測定法。7. Immunization of an anti-N 1 , N 12 -diacetylspermine monoclonal antibody with immobilized or labeled N 1 , N 12 -diacetylspermine or immobilized or labeled N 1 -acetylspermine under measurement conditions. 50% reaction
When the inhibitory N 1 , N 12 -diacetylspermine concentration is 20
Anti N 1 serving as μM or less, N 12 - Measurement of claim 6 wherein the diacetylspermine monoclonal antibodies.
ローナル抗体がモノクローナル抗体0520,4914
又は8624である請求項7記載の測定法。8. An anti-N 1 , N 12 -diacetylspermine monoclonal antibody which is a monoclonal antibody 0520,4914.
Or the measuring method according to claim 7, which is 8624.
載の測定法。9. The method according to claim 6, wherein the sample is a urine sample.
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