JPH0253491A - ベクター及びその利用方法 - Google Patents
ベクター及びその利用方法Info
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- JPH0253491A JPH0253491A JP63203119A JP20311988A JPH0253491A JP H0253491 A JPH0253491 A JP H0253491A JP 63203119 A JP63203119 A JP 63203119A JP 20311988 A JP20311988 A JP 20311988A JP H0253491 A JPH0253491 A JP H0253491A
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
本発明は、ベクター及びその利用方法に関する。
[従来の技術]
植物ウィルスの分野でサテライトと称されるものは、分
子量が0.1〜0.5X10’ダルトンの比較的低分子
で、ヘルパーウィルス(親ウィルス)のゲノムRNAと
ほとんどホモロジーがないことが知られている。
子量が0.1〜0.5X10’ダルトンの比較的低分子
で、ヘルパーウィルス(親ウィルス)のゲノムRNAと
ほとんどホモロジーがないことが知られている。
このような植物ウィルスのサテライトと称されるものは
、2種類ある。
、2種類ある。
1つは、サテライトRNAが自らコードする外被タンパ
クによってコートされているサテライトウィルスで、例
えば、タバコネクロシスサテライトウイルス(STNV
) 、バニカムモザイクサテライトウイルス(SPMV
) 、タバコモザイクサテライトウィルス(STMV)
がこれに属する。
クによってコートされているサテライトウィルスで、例
えば、タバコネクロシスサテライトウイルス(STNV
) 、バニカムモザイクサテライトウイルス(SPMV
) 、タバコモザイクサテライトウィルス(STMV)
がこれに属する。
もう1つは、ヘルパーウィルス粒子中に含有されている
サテライトRNAで、数多くの低分子RNAがこれに属
し、代表的なものにはキュウリモザイクウィルス(CM
V)サテライトRNAやタバコ軸点ウィルス(STob
RV)サテライトRNA等があり、分子レベルの研究が
盛んに行なわれている。
サテライトRNAで、数多くの低分子RNAがこれに属
し、代表的なものにはキュウリモザイクウィルス(CM
V)サテライトRNAやタバコ軸点ウィルス(STob
RV)サテライトRNA等があり、分子レベルの研究が
盛んに行なわれている。
特に、CMVサテライトRNAでは、いくつかの系統の
塩基配列が決定され、報告されている[例えば、Hid
aka et al、 : FEBS Letters
174.p38−42(1984); Garcia
−Arenal et al、: Virology1
58、ρ339−347(1987)] 。
塩基配列が決定され、報告されている[例えば、Hid
aka et al、 : FEBS Letters
174.p38−42(1984); Garcia
−Arenal et al、: Virology1
58、ρ339−347(1987)] 。
また、CMVサテライトRNAの完全長cDNAをDN
A転写ベクターに挿入し、RNAポリメラーゼによって
試験管内で感染性のある転写産物を作出することに成功
している[Col1mer&Kaper:BBRC13
5,p290−296(1986); Masuta
et al、 :Nucl。
A転写ベクターに挿入し、RNAポリメラーゼによって
試験管内で感染性のある転写産物を作出することに成功
している[Col1mer&Kaper:BBRC13
5,p290−296(1986); Masuta
et al、 :Nucl。
^cids、Res、15.p1048(1987);
Kurath&PalukaitisViro1og
y 159.p199−208(1987)コ 。
Kurath&PalukaitisViro1og
y 159.p199−208(1987)コ 。
[発明が解決しようとする課題]
ところで、植物RNAウィルスをベクターとして改変す
ることによって植物細胞中に外来RNA断片を導入しよ
うとする実際的な試みには、これまでブロモモザイクウ
ィルス(BMV)RNA3[French et al
、 :5cience 231. p1294−129
7(1986> ]と、タバコモザイクウィルス(TM
V)RNA [Takamatsu et al、 :
EMBOJ、 6. P2O3−31,1<1987)
]の2例があり、いずれも、コートタンパク遺伝子領
域をクロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ
(CAT)遺伝子で置換した組換え転写ベクターを作出
している。
ることによって植物細胞中に外来RNA断片を導入しよ
うとする実際的な試みには、これまでブロモモザイクウ
ィルス(BMV)RNA3[French et al
、 :5cience 231. p1294−129
7(1986> ]と、タバコモザイクウィルス(TM
V)RNA [Takamatsu et al、 :
EMBOJ、 6. P2O3−31,1<1987)
]の2例があり、いずれも、コートタンパク遺伝子領
域をクロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ
(CAT)遺伝子で置換した組換え転写ベクターを作出
している。
しかし、前者の場合には、プロトプラストへの接種にと
どまり、宿主である大麦を感染させるまでにはいたらな
かった。
どまり、宿主である大麦を感染させるまでにはいたらな
かった。
また、後者においては、タバコに接種することには成功
したが、接種葉から全身移行しないことが判明している
。
したが、接種葉から全身移行しないことが判明している
。
さらに、どちらの場合にも複製能が天然のものに比べ1
0−2〜10づに低下していた。
0−2〜10づに低下していた。
上述したような問題点は、実際上、RNAベクターを利
用して植物の形質転換をしたり有用タンパクを生産した
りする場合には致命的な欠点となる。
用して植物の形質転換をしたり有用タンパクを生産した
りする場合には致命的な欠点となる。
すなわち、植物RNAウィルスをベクターとして用いる
ためには、次の点を満足させる必要がある。
ためには、次の点を満足させる必要がある。
■ 植物細胞において複製能が高い。
■ ウィルス核酸に外来DNA断片を挿入しても生物活
性を維持できる。
性を維持できる。
■ 全身感染することが望ましい。
■ なるべく広く宿主範囲をもつ2
本発明の目的は、ベクターとして要求される条件を満足
し、形質転換や有用タンパクの生産を有効に行なうこと
ができるものを提供することにある。
し、形質転換や有用タンパクの生産を有効に行なうこと
ができるものを提供することにある。
[課題を解決するための手段]
本発明は、植物ウィルスのサテライトRNAからなるベ
クターに関するものである。
クターに関するものである。
ベクターの横築は、サテライトの複製能をなるべく保持
したまま外来RNA断片を挿入して、キメリックなRN
A分子に改変することであり、具体的にはサテライトの
5′末端配列と3°末端配列との間に外来RNAをメツ
センジャーセンスで複製されるように接続することによ
って達成される。
したまま外来RNA断片を挿入して、キメリックなRN
A分子に改変することであり、具体的にはサテライトの
5′末端配列と3°末端配列との間に外来RNAをメツ
センジャーセンスで複製されるように接続することによ
って達成される。
次に、本発明を宿主範囲の極めて広いCM’Vのサテラ
イトRNA (Y系統)の改変を例に挙げて説明する。
イトRNA (Y系統)の改変を例に挙げて説明する。
第4図に塩基配列を、それぞれ示す。
CMVサテライトRN A 4! CM Vの存在下旺
盛に複製し、CMVゲノムRNAと複製酵素を競合して
ゲノムRNAの増殖に拮抗し、多くの場合、CMVの磨
機を軽い方向に導く。
盛に複製し、CMVゲノムRNAと複製酵素を競合して
ゲノムRNAの増殖に拮抗し、多くの場合、CMVの磨
機を軽い方向に導く。
その塩基配列の解析からいくつかオーブンリーディング
フレーム(ORF>が推定されるが、これまで植物体か
ら実際にそれらORFからの産物〈タンパク)が検出さ
れたという実証例はない。
フレーム(ORF>が推定されるが、これまで植物体か
ら実際にそれらORFからの産物〈タンパク)が検出さ
れたという実証例はない。
もし、CMVサテライトRNAが機能タンパクを何もコ
ードしていないのであれば、外来RNA断片の挿入によ
って破壊されるORFは存在しないことになり、ベクタ
ーとして改変するのに好都合といえる。
ードしていないのであれば、外来RNA断片の挿入によ
って破壊されるORFは存在しないことになり、ベクタ
ーとして改変するのに好都合といえる。
本発明のベクターは、CMVサテライトRNAの複製能
をなるべく損なわないように外来RNA断片を組み込む
ことによって作出できる。
をなるべく損なわないように外来RNA断片を組み込む
ことによって作出できる。
以下、具体的工程を示す。
(1)CMVサテライトFLNAの完全長cDNAを合
成する。
成する。
(2)そのcDNAをDNA転写ベクターに組み込む。
(3)試験管内転写によって感染性のあるRNAを再生
する。
する。
(4)cDNAの中央部の配列を制限酵素で切除し、外
来DNA断片を挿入する。
来DNA断片を挿入する。
(5)FtNAポリメラーゼによって試験管内転写反応
を行なう。
を行なう。
(6)上記転写産物とCMVを植物葉に同時接種する。
CMVサテライトRNAとcDNAから試験管内で感染
性転写産物を合成するには、天然サテライトが5′末端
に有しているキャップ構造を付加する必要はない。
性転写産物を合成するには、天然サテライトが5′末端
に有しているキャップ構造を付加する必要はない。
しかし、転写産物の5′末端あるいは3′末端に転写ベ
クター由来の非ウィルス配列が付加された場合、転写産
物の感染性は著しく減少する。
クター由来の非ウィルス配列が付加された場合、転写産
物の感染性は著しく減少する。
5°末端になるべく余分な配列を付加しないために、転
写ベクターとしてpUT118やpUT118GGを使
用することができる[薬用ら:昭和63年度日本植物病
理学会大会講演要旨集(1988年4月)]。
写ベクターとしてpUT118やpUT118GGを使
用することができる[薬用ら:昭和63年度日本植物病
理学会大会講演要旨集(1988年4月)]。
pUT118は、挿入されたサテライトの5゜末端に2
個の塩基を付加する。
個の塩基を付加する。
また、市販の転写ベクターを使用するなど、長い余分な
塩基が付加された場合であっても、その非ウィルス配列
部分に相補的なデオキシオリゴヌクレオチドを合成し、
転写RNAとアニールさせた後、RNaseHによって
感染性サテライトを得ることができる[Masuta
et a+、 :Nucl、Ac1ds。
塩基が付加された場合であっても、その非ウィルス配列
部分に相補的なデオキシオリゴヌクレオチドを合成し、
転写RNAとアニールさせた後、RNaseHによって
感染性サテライトを得ることができる[Masuta
et a+、 :Nucl、Ac1ds。
Res、15.p10048(1987)コ 。
また、RNAの3′末端については、CMVサテライト
RNAが−CCCOHで終了することから転写ベクター
のSma1部位に挿入すると、SmaIの認識配列が保
存される。
RNAが−CCCOHで終了することから転写ベクター
のSma1部位に挿入すると、SmaIの認識配列が保
存される。
したがって、Smalで線状化された組換転写ベクター
からのランオフ転写産物の3′末端には余分なヌクレチ
ドが全く付加されない。
からのランオフ転写産物の3′末端には余分なヌクレチ
ドが全く付加されない。
他のサテライトを使用した場合でも、なるべく3°末端
に多くの非ウィルス塩基を付加し、ないようにcDNA
の3′末端の直後に適当な制限酵素部位を設けるなどの
工夫をすることが望ましい。
に多くの非ウィルス塩基を付加し、ないようにcDNA
の3′末端の直後に適当な制限酵素部位を設けるなどの
工夫をすることが望ましい。
本発明においてベクターとして使用するウィルスがサテ
ライトであるためヘルパーウィルスとの同時接種が必須
である。
ライトであるためヘルパーウィルスとの同時接種が必須
である。
植物に対して激しい磨機が生じないよう弱毒系を用いる
ことが望ましい。
ことが望ましい。
CMVサテライトRNAの完全長cDNAは、(+)鎖
及び(−)鎖の3°末端に相補的なオリゴヌクレオチド
プライマーを使用し、常法によって容易に合成すること
ができる。
及び(−)鎖の3°末端に相補的なオリゴヌクレオチド
プライマーを使用し、常法によって容易に合成すること
ができる。
このcDNAを例えば、市販の転写ベクターpIBI3
1 (商品名: IBI社製)のSma I部位に第1
図に示すようにクローニングした後、T3RNAポリメ
ラーゼで試験管内転写サテライトRNAを合成すると5
゛末端に24個の余分な塩基が付加される。
1 (商品名: IBI社製)のSma I部位に第1
図に示すようにクローニングした後、T3RNAポリメ
ラーゼで試験管内転写サテライトRNAを合成すると5
゛末端に24個の余分な塩基が付加される。
なお、第1図中、T3はTファージのプロモータを表す
。
。
この非ウィルス配列部分をDNA−RNAハイブリッド
のみを認識するR N aseHによって特異的に切除
し、感染性RN A分子を得ることができる。
のみを認識するR N aseHによって特異的に切除
し、感染性RN A分子を得ることができる。
さらに、第2図に示ずように適当な制限酵素を使用して
サテライトRNAのcDNAの中央部を除去し、この部
分に所望の外来DNA断片を転写RNAがメツセンジャ
ーセンスを持つような方向あるいはアンチセンスを持つ
ような方向に挿入する。
サテライトRNAのcDNAの中央部を除去し、この部
分に所望の外来DNA断片を転写RNAがメツセンジャ
ーセンスを持つような方向あるいはアンチセンスを持つ
ような方向に挿入する。
上述の組換ベクターの構築は、制限酵素による切断、ク
レノーフラグメントによる平滑末端化そしてライゲーシ
ョン反応という一連の操作によって容易に達成される。
レノーフラグメントによる平滑末端化そしてライゲーシ
ョン反応という一連の操作によって容易に達成される。
本発明のベクターにより植物細胞中に外来DNA断片を
導入し、増殖させることが可能である。
導入し、増殖させることが可能である。
本発明のベクターは、ヘルパーウィルスの殻の中にサテ
ライトが組み込まれているという他のRNAウィルスに
はないサテライトRNAの特殊性を利用することで、植
物体全身に移行できる。
ライトが組み込まれているという他のRNAウィルスに
はないサテライトRNAの特殊性を利用することで、植
物体全身に移行できる。
なお、CMVの場合の宿主範囲は広く、双子葉及び単子
葉の草本木本45科 190種以上の植物が感染するの
で、本発明のベクターは極めて広範囲の植物において利
用できる。
葉の草本木本45科 190種以上の植物が感染するの
で、本発明のベクターは極めて広範囲の植物において利
用できる。
次に、本発明のベクターの使用例について説明する。
ベクターを、ヘルパーウィルスと同時接種し、植物細胞
に外来遺伝子を組み込み、植物の形質転換を行なうこと
ができる。
に外来遺伝子を組み込み、植物の形質転換を行なうこと
ができる。
例えば、植物ウィルスのアンチセンス配列を導入するこ
とで、植物の形質転換を行い、ウィルス抵抗性植物を作
出することができる。
とで、植物の形質転換を行い、ウィルス抵抗性植物を作
出することができる。
また、ベクターを、ヘルパーウィルスと同時接種し、植
物細胞に外来遺伝子を組み込み、該遺伝子に基づく有用
遺伝子産物を生産することもできる。
物細胞に外来遺伝子を組み込み、該遺伝子に基づく有用
遺伝子産物を生産することもできる。
例えば、生理活性ペプチドなど有用タンパクの遺伝子を
組み込むことで、植物体または培養細胞をそれらタンパ
クの生産の場として利用することができる。
組み込むことで、植物体または培養細胞をそれらタンパ
クの生産の場として利用することができる。
なお、本発明のベクターは、従来のベクターが染色体上
の基本遺伝子に組み込んでいたのに対し、核外遺伝子に
作用するので、植物に悪影響を与えることかない。
の基本遺伝子に組み込んでいたのに対し、核外遺伝子に
作用するので、植物に悪影響を与えることかない。
また、本発明のベクターは、外来RNA断片の挿入部位
を工夫さえすればかなり効率良く複製することが可能で
あり、しかもサテライトRNAを改変した場合には、ヘ
ルパーウィルスの粒子中に含有されて、植物体全身への
移行が期待できる。
を工夫さえすればかなり効率良く複製することが可能で
あり、しかもサテライトRNAを改変した場合には、ヘ
ルパーウィルスの粒子中に含有されて、植物体全身への
移行が期待できる。
このことは、ウィルスその他に対するアンチセンスRN
Aの植物体全身への分布ならびにベクターを組み込んだ
有用タンパク、ペプチドの遺伝情報に基づくそれらの生
産が植物体全身で行なわれることを意味する。
Aの植物体全身への分布ならびにベクターを組み込んだ
有用タンパク、ペプチドの遺伝情報に基づくそれらの生
産が植物体全身で行なわれることを意味する。
[実施例]
・p I B I 31−MCの横築
CMVサテライトRNA (Y系統)の全長鎖CDNA
をpUC13のSmaI部位にクローニングし、組換え
プラスミドpC3を選択した。
をpUC13のSmaI部位にクローニングし、組換え
プラスミドpC3を選択した。
このpC3の390bXba I/Suc Iフラグメ
ントの5′末端と3′末端をそれぞれクレノ−フラグメ
ントとT4DNAポリメラーゼによって平滑化した。
ントの5′末端と3′末端をそれぞれクレノ−フラグメ
ントとT4DNAポリメラーゼによって平滑化した。
一方、DNA転写ベクターpIBI31のポリリンカ一
部位をEcoRIとHi ndlIによって除去し、ク
レノーフラグメントによって平滑化し、上記のXbaI
/5acIフラグメントとT4DNAリガーゼによって
結合しp I B I 31−MCを構築した。
部位をEcoRIとHi ndlIによって除去し、ク
レノーフラグメントによって平滑化し、上記のXbaI
/5acIフラグメントとT4DNAリガーゼによって
結合しp I B I 31−MCを構築した。
・感染性転写産物の生産
上記p I B I 3 l−MCをSma Iで切断
することによって線状化し、T3RNAポリメラーゼの
鋳型として転写反応を行なわせると、転写産物の5′末
端に24個の余分な塩基が付加され、感染性の極めて低
いものが得られた(天然サテライトの101〜10−’
)。
することによって線状化し、T3RNAポリメラーゼの
鋳型として転写反応を行なわせると、転写産物の5′末
端に24個の余分な塩基が付加され、感染性の極めて低
いものが得られた(天然サテライトの101〜10−’
)。
5°末端の非ウィルス配列を切除するために、その部分
に相補的な24マーのデオキシオリゴヌクレオチドを合
成し、転写RNAにアニールさせた後、RNaseHに
よって特異的にDNA−RNAハイブリット部位を切除
した(50mMTris−HC1,pH7,5,75m
MKCL、3mMMgC12,100mMDTT、RN
A/オリゴヌクレオチド=1/10(モル比)、IUF
tNaseHを含む反応液中、室温で40分間反応)。
に相補的な24マーのデオキシオリゴヌクレオチドを合
成し、転写RNAにアニールさせた後、RNaseHに
よって特異的にDNA−RNAハイブリット部位を切除
した(50mMTris−HC1,pH7,5,75m
MKCL、3mMMgC12,100mMDTT、RN
A/オリゴヌクレオチド=1/10(モル比)、IUF
tNaseHを含む反応液中、室温で40分間反応)。
このRN aseH処理で得られた産物は天然のものと
同程度の感染性を示した。
同程度の感染性を示した。
・pSC4の構築
上記p I B I 3 l−MCから90bStyI
/Asul[フラグメントを切除し、プラスミドの末端
をクレノーフラグメントによって平滑化した。
/Asul[フラグメントを切除し、プラスミドの末端
をクレノーフラグメントによって平滑化した。
この部分にCMVRNA4の3°末端部分の120bD
NA断片を、T4DNAリガーゼでシスに連結した。
NA断片を、T4DNAリガーゼでシスに連結した。
この組換プラスミドpS04を鋳型とした時の転写産物
を播種後40日経過したタバコCMVと同時接種した。
を播種後40日経過したタバコCMVと同時接種した。
1週間後に上葉から核酸を抽出し、ニトロセルロースメ
ンブランに固定してドツトプロットハイブリダイゼーシ
ョンを行なったところ〜10ngRN A / g生葉
の収量でこのベクターの複製が確認された。
ンブランに固定してドツトプロットハイブリダイゼーシ
ョンを行なったところ〜10ngRN A / g生葉
の収量でこのベクターの複製が確認された。
PSY−Tの構築
psc4と同様に上記p I B I 31−MCの5
tyI/AsulI領域にポテトウィルスY(T系統>
(PVY−T)の120bcDNA断片を転写された時
に(−)センスを持つような方向で組み込み、psy−
’rを構築した。
tyI/AsulI領域にポテトウィルスY(T系統>
(PVY−T)の120bcDNA断片を転写された時
に(−)センスを持つような方向で組み込み、psy−
’rを構築した。
このpSY−Tからの転写産物と弱毒系のCMVをタバ
コに同時接種し、1週間後にドツトプロットハイブリダ
イゼーションによって〜1ngRNA/g生葉の収量で
ベクターを検出した。
コに同時接種し、1週間後にドツトプロットハイブリダ
イゼーションによって〜1ngRNA/g生葉の収量で
ベクターを検出した。
次にこのタバコにPVY−Tを接種して3週間磨機の変
化を観察した結果、ベクターの増殖が確認されたタバコ
において、PVY−Tによるえそ病状が軽減された。
化を観察した結果、ベクターの増殖が確認されたタバコ
において、PVY−Tによるえそ病状が軽減された。
[発明の効果]
本発明によれば、ベクターとして必要とされる条件を満
足でき、植物の形質転換やタンパク質の合成等を有効に
行なうことができる。
足でき、植物の形質転換やタンパク質の合成等を有効に
行なうことができる。
第1図は、感染性サテライトRNAを試験管内で再生す
るための組換え転写ベクターpIBI31−MCの構築
と、RN aseH処理による非ウィルス配列除去の概
略説明図を示す。 第2図は、転写ベクターの一例のpSC4構築の概略説
明図を示す。 第4図は、CMVのサテライトRNA (Y系統)の塩
基配列を示す。 特許出願人 日本たばこ産業株式会社 第 図 1in vi+ro転写反応 1 階旬seH処理 感染性転写産物 第 図 2′70 4拍 よ迫 第 図 第 図 ACAGGACCC
るための組換え転写ベクターpIBI31−MCの構築
と、RN aseH処理による非ウィルス配列除去の概
略説明図を示す。 第2図は、転写ベクターの一例のpSC4構築の概略説
明図を示す。 第4図は、CMVのサテライトRNA (Y系統)の塩
基配列を示す。 特許出願人 日本たばこ産業株式会社 第 図 1in vi+ro転写反応 1 階旬seH処理 感染性転写産物 第 図 2′70 4拍 よ迫 第 図 第 図 ACAGGACCC
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 植物ウィルスのサテライトRNAからなるベクター
。 2 上記サテライトRNAがキュウリモザイクウィルス
のサテライトRNAである請求項1記載のベクター。 3 上記キュウリモザイクウイルスのサテライトRNA
(7)cDNAが、第3図に示す制限酵素地図であり、
369bpである請求項2記載のベクター。 4 植物ウィルスのサテライトRNAに外来遺伝子を組
み込んだ組換ベクターをヘルパーウィルスと同時接種し
、植物細胞に外来遺伝子を組み込むことを特徴とする植
物形質転換方法。 5 植物ウィルスのサテライトRNAに外来遺伝子を組
み込んだ組換えベクターをヘルパーウィルスと同時接種
し、植物細胞に外来遺伝子を組み込み、該遺伝子に基づ
く産物を生産せしめることを特徴とする有用遺伝子産物
の生産方法。 6 第4図に示される塩基配列を有する遺伝子。
Priority Applications (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP63203119A JPH0253491A (ja) | 1988-08-17 | 1988-08-17 | ベクター及びその利用方法 |
| US07/944,710 US5304731A (en) | 1988-08-17 | 1992-09-11 | Vector |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP63203119A JPH0253491A (ja) | 1988-08-17 | 1988-08-17 | ベクター及びその利用方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0253491A true JPH0253491A (ja) | 1990-02-22 |
Family
ID=16468716
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP63203119A Pending JPH0253491A (ja) | 1988-08-17 | 1988-08-17 | ベクター及びその利用方法 |
Country Status (2)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US5304731A (ja) |
| JP (1) | JPH0253491A (ja) |
Families Citing this family (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US7148400B1 (en) * | 1999-04-20 | 2006-12-12 | Bayer Bioscience N.V. | Methods and means for delivering inhibitory RNA to plants and applications thereof |
| AU775188B2 (en) * | 1999-04-20 | 2004-07-22 | Bayer Cropscience Nv | Methods and means for delivering inhibitory RNA to plants and applications thereof |
| WO2003052108A2 (en) * | 2001-12-18 | 2003-06-26 | Bayer Bioscience N.V. | Improved methods and means for delivering inhibitory rna to plants and applications thereof |
| BR112022009127A2 (pt) * | 2019-11-12 | 2022-08-16 | Univ Maryland | Vetor de ácido ribonucleico, planta compreendendo um porta-enxerto de laranja azeda e um vetor baseado em irna, método para introdução de um segmento heterólogo em uma planta hospedeira, método de fabricação de um vetor de ácido ribonucleico, e vetor baseado em irna |
| KR20240110818A (ko) | 2021-11-01 | 2024-07-16 | 플래그쉽 파이어니어링 이노베이션스 Vii, 엘엘씨 | 유기체를 변형하기 위한 폴리뉴클레오티드 |
Family Cites Families (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4885248A (en) * | 1984-02-15 | 1989-12-05 | Lubrizol Genetics, Inc. | Transfer vector |
| GB8613481D0 (en) * | 1986-06-04 | 1986-07-09 | Diatech Ltd | Translation of mrna |
| DE68929521T2 (de) * | 1988-02-26 | 2006-02-23 | Large Scale Biology Corp., Vacaville | Nicht-nukleare chromosomale Transformation |
| CA1339841C (en) * | 1988-07-15 | 1998-04-28 | Robert L. Erwing | Synthesis of stereospecific enzyme by non-chromosomal transformation a host |
| WO1990012107A1 (en) * | 1989-03-31 | 1990-10-18 | The Salk Institute Biotechnology/Industrial Associates, Inc. | Recombinant expression system based on satellite tobacco mosaic virus |
| AU5664090A (en) * | 1989-05-05 | 1990-11-29 | Biosource Genetics Corporation | Male sterility in plants |
-
1988
- 1988-08-17 JP JP63203119A patent/JPH0253491A/ja active Pending
-
1992
- 1992-09-11 US US07/944,710 patent/US5304731A/en not_active Expired - Fee Related
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| US5304731A (en) | 1994-04-19 |
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