JPH022935A - Angiotensin measuring method - Google Patents
Angiotensin measuring methodInfo
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- JPH022935A JPH022935A JP15020388A JP15020388A JPH022935A JP H022935 A JPH022935 A JP H022935A JP 15020388 A JP15020388 A JP 15020388A JP 15020388 A JP15020388 A JP 15020388A JP H022935 A JPH022935 A JP H022935A
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Abstract
Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
本発明は、アンジオテンシン(angloLensin
)に対するモノクローナル抗体を利用した、試料中の
アンジオテンシンの測定に関するものである。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION [Industrial Field of Application] The present invention relates to the use of angiotensin (angloLensin).
) is related to the measurement of angiotensin in a sample using a monoclonal antibody against it.
[従来の技術]
血圧調整には、様々な因子が関与しているが、体液性の
因子として主要な役割を演じているのがレニン−アンジ
オテンシン系(以下、R−A系とする)と腎カリクレイ
ンーキニン系である。[Prior art] Various factors are involved in blood pressure regulation, but the two that play a major role as humoral factors are the renin-angiotensin system (hereinafter referred to as the R-A system) and the renal system. It is kallikrein-kinin.
R−A系は、循環調節や体液および電解質バランスの維
持など多くの作用を持っている。R−A系が直接昇圧機
序に関与している高血圧としては、レニン産生腫瘍によ
る高血圧、腎血管性高血圧。The R-A system has many functions such as circulatory regulation and maintenance of body fluid and electrolyte balance. Hypertension in which the R-A system is directly involved in the pressor mechanism includes hypertension caused by renin-producing tumors and renovascular hypertension.
悪性高血圧などがある。一方、原発性アルドステロン症
ではR−A系は抑制される。This includes malignant hypertension. On the other hand, the R-A system is suppressed in primary hyperaldosteronism.
アンジオテンシンにはI、n、mの3種あり、下図の様
な構造ををするペプチド性ホルモンで、特にアンジオテ
ンシン■(以下、AIIとする)は、R−A系の終局的
活性物質であり、生体内の最も強力な昇圧物質として知
られている。There are three types of angiotensin, I, n, and m, and they are peptide hormones with the structure shown in the diagram below. In particular, angiotensin (hereinafter referred to as AII) is the final active substance of the R-A system. Known as the most powerful pressor substance in the body.
アンジオテンシンの?+W造
アンジオテンシンI(以下、AIとする)Nll、、−
Asp−^rg−Vat−Tyr−I Ic−111s
−Pro−Phe−111s−I、cu−COOII
U
Nll、、−As p−A rg−Va I −Ty
r−I I e−111s−P ro−Phe−COO
IIアンジオテンシン■
N112− Arg−Vat−Tyr−l Ic−11
1s−Pro−Pltc−COOIIAIIはAIから
、主として肺に存在するアンジオテンシン変換酵素によ
って、以下に示す反応により加水分解され産生ずる。Angiotensin? +W-produced angiotensin I (hereinafter referred to as AI) Nll, -
Asp-^rg-Vat-Tyr-I Ic-111s
-Pro-Phe-111s-I, cu-COOII U Nll, -As p-A rg-Va I -Ty
r-I I e-111s-Pro ro-Phe-COO
II Angiotensin ■ N112- Arg-Vat-Tyr-l Ic-11
1s-Pro-Pltc-COOIIIAII is produced by hydrolysis from AI by angiotensin converting enzyme present mainly in the lungs through the reaction shown below.
高血圧をはじめ、水、電解質代謝に異常をきたす各種疾
ツー4でR−A系の変化がみられるが、この変化を知る
事は臨床診断上正要であるだけでなく、病態の解明、治
療予後の面からも参考となると考えられる。Changes in the R-A system are seen in various diseases that cause abnormalities in water and electrolyte metabolism, including hypertension, and knowing these changes is not only important for clinical diagnosis, but also for elucidation of pathological conditions and treatment. It is also considered to be helpful from the perspective of prognosis.
なお、AIIの増加を示す病態としては、腎血管性高血
圧症、傍系球体細胞腫、甲状腺機能亢進症などがあり、
AIIの減少を示す病態としては、原発性アルドステロ
ン症、DOC産生腫瘍、クツシング症1iN J!$な
どがあげられる(日本臨床1985年秋季増刊、広範囲
血液・尿化学検査 免疫学的検査 和歌山医大 上野
雄二)。In addition, pathological conditions that show an increase in AII include renovascular hypertension, paraspherocytoma, and hyperthyroidism.
Pathological conditions that show a decrease in AII include primary hyperaldosteronism, DOC-producing tumors, Cushing's disease 1iN J! (Yuji Ueno, Wakayama Medical University)
R−A系活性の指標として、現在、血漿レニン活性の測
定が広く行われており、これは、通常血漿を一定時間イ
ンキュベートシた後、産生されるAIの量で測定される
。R−A系に最も影響を与えるA■の産生には、レニン
基質、アンジオテンシン分解酵素が影響を与える。その
ためR−A系の最終段階での活性を知るには血漿中のA
IIa度をAll!定する方が、より直接的であると考
えられる。Plasma renin activity is currently widely used as an indicator of R-A system activity, and is usually measured by the amount of AI produced after incubating plasma for a certain period of time. The renin substrate and angiotensin-degrading enzyme influence the production of A, which has the greatest effect on the RA system. Therefore, in order to understand the final stage activity of the R-A system, plasma A
All IIa degrees! It is considered more direct to define
血漿中のアンジオテンシン濃度測定については、最近、
放射性免疫測定法(以下、RIA)が用いられている。Regarding the measurement of angiotensin concentration in plasma,
Radioimmunoassay (hereinafter referred to as RIA) is used.
しかしこのRIAにおいても、競合法を利用したもので
、モノクローナル抗体によるサンドイッチ法はいまだ確
立されていない。However, this RIA also utilizes a competitive method, and a sandwich method using monoclonal antibodies has not yet been established.
[発明が解決しようとする課題]
本発明は、上述したような従来方法の諸問題を解決し、
簡便なdll+定法を提供することにある。すなわち本
発明は、困難または不可能とされてきたアミノ酸7〜1
0残基のペプチドであるアンジオテンシンに対するサン
ドウィッチ系を確立し、上記問題を解決することにある
。[Problems to be solved by the invention] The present invention solves the problems of the conventional methods as described above,
The purpose is to provide a simple dll + standard method. That is, the present invention provides amino acids 7 to 1, which have been considered difficult or impossible.
The purpose of this invention is to establish a sandwich system for angiotensin, which is a peptide with 0 residues, and to solve the above problems.
[課題を解決するための手段及び作用]本発明者らは、
上記問題点について鋭意検討した結果、本発明に到達し
た。即ち本発明は、試料中のアンジオテンシンを71P
I定する方法において、アンジオテンシンを認識し、認
識部位の相異なる2種類のモノクローナル抗体を用いて
、サンドイッチ法により免疫−III定法を行うことを
特徴とするアンジオテンシンの測定方法である。[Means and effects for solving the problem] The present inventors
As a result of intensive study on the above-mentioned problems, we have arrived at the present invention. That is, the present invention converts angiotensin in a sample into 71P
This is a method for measuring angiotensin, which recognizes angiotensin and is characterized by performing the immuno-III standard method by a sandwich method using two types of monoclonal antibodies with different recognition sites.
本発明におけるモノクローナル抗体は、好ましくは、ア
ンジオテンシンで免疫された動物の抗体産生細胞と、ミ
エローマ細胞とを融合させることによって、該アンジオ
テンシンを認識するモノクローナル抗体を産生ずるハイ
ブリドーマを得、次いで、該ハイブリドーマ及び、又は
それに由来する細胞株を培j9シ、培徨物からアンジオ
テンシンを認識するモノクローナル抗体を採取すること
によって得られる。アンジオテンシンを認識するモノク
ローナル抗体を産生ずるハイブリドーマは、手法それ自
体は公知である細胞融合法[G、ケーラー(Kol+1
cr)とC,ミルスタイン(旧1stein) 。The monoclonal antibody of the present invention is preferably obtained by fusing antibody-producing cells of an animal immunized with angiotensin with myeloma cells to obtain a hybridoma that produces a monoclonal antibody that recognizes the angiotensin, and then or by culturing a cell line derived therefrom and collecting a monoclonal antibody that recognizes angiotensin from the culture medium. Hybridomas producing monoclonal antibodies that recognize angiotensin can be obtained by cell fusion method [G, Köhler (Kol+1
cr) and C. Milstein (formerly 1stein).
ネイチャー (Nature) 、 25(i巻、49
5頁、 1975年1によって製造することができる
。Nature, 25 (vol. i, 49
5, 1975, 1.
アンジオテンシンの認識部位の相異なる2種類のモノク
ローナル抗体を得る方法としては、例えば、アンジオテ
ンシンのアミノ末端(以下、N末端)側のペプチド部分
を認識するモノクローナル抗体と、カルボキシ末端(C
末端)側のペプチド部分を認識するモノクローナル抗体
とを作製すればよい。具体的には、N末端側のペプチド
部分を認識するモノクローナル抗体を得るには、例えば
アンジオテンシンのN末端側のペプチド部分と同じアミ
ノ酸配列をもつペプチド鎖又はアンジオテンシンの全長
を用い、そのC末端を担体の蛋白質などに結合し、動物
に感作させ、その抗体産生細胞を融合に用いればよい。As a method for obtaining two types of monoclonal antibodies with different recognition sites for angiotensin, for example, a monoclonal antibody that recognizes the peptide portion at the amino terminal (hereinafter referred to as N-terminus) side of angiotensin, and a monoclonal antibody that recognizes the peptide portion at the amino terminal (hereinafter referred to as N-terminus) side of angiotensin, and a monoclonal antibody that recognizes the peptide portion at the amino terminal (hereinafter referred to as N-terminus) of angiotensin, and
A monoclonal antibody that recognizes the peptide portion on the terminal) side may be prepared. Specifically, in order to obtain a monoclonal antibody that recognizes the N-terminal peptide portion, for example, a peptide chain having the same amino acid sequence as the N-terminal peptide portion of angiotensin or the entire length of angiotensin is used, and the C-terminus is used as a carrier. Antibody-producing cells may be used for fusion by binding to a protein, etc., sensitizing an animal, and using the antibody-producing cells for fusion.
N末端を担体に結合させても、1」的の抗体を得ること
が可能であるが、C末端を結合させる方かより効果的で
ある。そして最終的に、アンジオテンシンのN末端側の
ペプチド部分を認識するモノクローナル抗体を産生ずる
ハイブリドーマを、スクリーニングすればよい。Although it is possible to obtain a 1'' antibody by binding the N-terminus to a carrier, binding the C-terminus is more effective. Finally, hybridomas that produce a monoclonal antibody that recognizes the N-terminal peptide portion of angiotensin may be screened.
C末端側のペプチド部分を認識するモノクローナル抗体
を得るにも、同様の考え方で、アンジオテンシンのC末
端側のペプチド部分と同じアミノ酸配列をもつペプチド
鎖又はアンジオテンシンの全長を用い、そのN末端を担
体の蛋白質などに結合し、同様に処理すればよい。C末
端を担体に結合させても、目的の抗体を得ることが可能
であるが、N末端を結合させる方がより効果的である。To obtain a monoclonal antibody that recognizes the C-terminal peptide portion, a similar idea is used, using a peptide chain having the same amino acid sequence as the C-terminal peptide portion of angiotensin or the entire length of angiotensin, and attaching the N-terminus to a carrier. It can be bound to proteins and treated in the same way. Although it is possible to obtain the antibody of interest by binding the C-terminus to a carrier, binding the N-terminus is more effective.
そして、最終的にアンジオテンシンのC末端側のペプチ
ド部分を認識するモノクローナル抗体を産生ずるハイブ
リドーマを、スクリーニングすればよい。Finally, hybridomas that produce a monoclonal antibody that recognizes the C-terminal peptide portion of angiotensin may be screened.
本発明は、一方の抗体を担体に固定化するのが望ましい
が、固定化の方法は公知の方法を採用でき、担体として
はポリスチレン、ポリエチレン。In the present invention, it is desirable to immobilize one of the antibodies on a carrier, but known methods can be used for immobilization, and the carrier may be polystyrene or polyethylene.
ポリ塩化ビニル、ラテックス、アガロース、セルロース
、ガラスなどを用いたビーズやマイクロプレート笠が用
いられる。Beads and microplate caps made of polyvinyl chloride, latex, agarose, cellulose, glass, etc. are used.
また、他方の抗体の標識化の方法や手段、その検出方法
などは何ら限定されるものではなく、公知の方法でd1
j定することができる。標識剤としては、パーオキシダ
ーゼ、アルカリホスファターゼ等の酵素が通常用いられ
る。その酵素活性を7111定するための基質として、
西洋ワサビパーオキシダゼの基質としては、2,2°−
アジノジ−(3−エチルベンズチアゾリンスルホン酸)
ニアンモニウム塩−H202,5−アミノサリチル酸−
H202などが、アルカリホスファターゼの基質として
は、p−二トロフェニルホスフエート等が用いられる。Furthermore, the method and means for labeling the other antibody, the detection method thereof, etc. are not limited in any way, and d1
can be determined. Enzymes such as peroxidase and alkaline phosphatase are commonly used as labeling agents. As a substrate for determining the enzyme activity,
As a substrate for horseradish peroxidase, 2,2°-
Azinodi-(3-ethylbenzthiazolinesulfonic acid)
Niammonium salt-H202,5-aminosalicylic acid-
H202 and the like are used as substrates for alkaline phosphatase, such as p-nitrophenyl phosphate.
また、標識剤として、放射性物質を用いる方法では、
I、 Hなどを、蛍光物質を用いる方法ではフル
オレッセイン・インチオシアネートなどを使用してもよ
い。In addition, in methods using radioactive substances as labeling agents,
I, H, etc. may be used, and in a method using a fluorescent substance, fluorescein inthiocyanate or the like may be used.
測定のためには、これら試薬以外にも溶解剤。In addition to these reagents, a lysis agent is also required for measurement.
洗浄剤1反応停止剤などの公知の坏薬が使用される。Known suppositories such as detergent 1 reaction terminators are used.
[発明の効果]
本発明においては、前記方法によってアンジオテンシン
に対し、認識部位の相異なる二種類のモノクローナル抗
体を得、そしてこれらの抗体を使用することにより、サ
ンドウィッチ法による免疫測定法が可能となった。[Effects of the Invention] In the present invention, two types of monoclonal antibodies with different recognition sites are obtained for angiotensin by the above method, and by using these antibodies, an immunoassay method using a sandwich method becomes possible. Ta.
サンドイッチ法により、従来よりも高感度、簡便、迅速
、安価にアンジオテンシンを測定することかできる。The sandwich method allows angiotensin to be measured more sensitively, more easily, more quickly, and less expensively than conventional methods.
[実施例]
本発明を実施例にて更に詳細に説明するが、本発明はこ
れら実施例にのみ限定されるものではない。[Examples] The present invention will be explained in more detail with reference to Examples, but the present invention is not limited only to these Examples.
(a)AIIのC末端側ペプチド部分認識モノクロナル
抗体の作製
(イ)ウシ血清アルブミン(以下、BSAとする)SH
の調製
BSA(i、l3mgをバイアル瓶にとリ ロ、LM
NaC1含f−T O,1Mリン酸緩衝液(pH7,5
) 1mlに溶解させ、20IIIM N−サクシン
イミジルー3−(2−ピリジルジチオ)プロピオネート
(以下、5PDPとする)エタノール溶液10oμgを
添加し、室温−(’30分間攪拌した。ソノ後0.1M
NaC1含有0.1M酢酸緩衝液(pH4,5)に透
析した後、バイアル瓶に移し0.5Mジチオスレイトー
ル水溶液を加え、室温に20分間放置し、次いで0.1
mM EDTA含有0.1M!J >酸緩衝液(p
H[i、O) l:、4℃で、−晩i!i+I?を行い
、BSAにSH基を導入した。(a) Preparation of a monoclonal antibody that recognizes the C-terminal peptide portion of AII (b) Bovine serum albumin (hereinafter referred to as BSA) SH
Preparation of BSA (1, 3 mg into a vial), Lilo, LM
NaCl-containing f-T O, 1M phosphate buffer (pH 7.5
), 10 μg of 20IIIM N-succinimidyl-3-(2-pyridyldithio)propionate (hereinafter referred to as 5PDP) ethanol solution was added, and the mixture was stirred at room temperature for 30 minutes.
After dialysis against 0.1M acetate buffer (pH 4, 5) containing NaCl, the mixture was transferred to a vial, 0.5M dithiothreitol aqueous solution was added thereto, left at room temperature for 20 minutes, and then 0.1
Contains 0.1M mM EDTA! J>Acid buffer (p
H[i, O) l:, at 4°C, - night i! i+I? was carried out to introduce an SH group into BSA.
(ロ)AIIへのマレイミド基の導入
A II 1 ragをバイアル瓶にとり、0.1Mリ
ン酸緩衝1tJt (pH8,0) 1mlに溶解さ
せた液にm−マレイミドヘンシイルーN−ヒドロキシザ
クシンイミドエステル(以下、MBSとする)のジメチ
ルホルムアミド溶液(25,3mg/ m+ ) 62
.5μIIを加え、室温で30分間撹拌後、0.3ml
ジクロロメタンを添加し、3000rn 5分間遠心後
、上清をとり、AIIにマレイミド基を導入した。(b) Introduction of maleimide group into AII Take 1 rag of A II in a vial and dissolve it in 1 ml of 0.1M phosphate buffer 1tJt (pH 8,0). (hereinafter referred to as MBS) in dimethylformamide solution (25.3 mg/m+) 62
.. Add 5 μII and stir at room temperature for 30 minutes, then 0.3 ml
After adding dichloromethane and centrifuging at 3000 rn for 5 minutes, the supernatant was taken and a maleimide group was introduced into AII.
(ハ)AID−BSAの調製 (イ)、(ロ)で調製した二つの溶液を4℃。(c) Preparation of AID-BSA The two solutions prepared in (a) and (b) were heated at 4°C.
−晩でカップリングさせAn−BSA結合体を作製した
。- An-BSA conjugate was prepared by coupling overnight.
(ニ)感作
A ff −B S A 1008gと等量のフロイン
ト完全アジュバントとを乳化させた後、BALB/c系
マウス腹腔に投与した。(d) Sensitization After emulsifying 1008 g of Aff-BSA and an equal amount of Freund's complete adjuvant, the emulsified emulsification was administered into the abdominal cavity of a BALB/c strain mouse.
4週間後An−BSAIOμgを1回目と同様に乳化さ
せたものを腹腔に投与した。2回目投与後4週間のちに
、今度はAn−BSA50μgを等量のフロイント不完
全アジュバントに乳化させた物を2週問おきに2回投与
し、4回目投与後3日後にA n −B S A 10
0μgをリン酸緩衝生理食塩水(以下、PBSとする)
に溶解したものを最終的に段!7. した。Four weeks later, An-BSAIO μg was emulsified in the same manner as the first time and administered intraperitoneally. Four weeks after the second administration, 50 μg of An-BSA emulsified in an equal volume of Freund's incomplete adjuvant was administered twice every two weeks, and three days after the fourth administration, An-BSA was administered twice. A 10
0 μg in phosphate buffered saline (hereinafter referred to as PBS)
What is dissolved in the final step! 7. did.
(ホ)ハイブリドーマの作製
上記で免疫化したマウスのII!l!臓細胞とマウス骨
髄肝細胞5P210をG、ケーラー(G、Kohler
)とC。(e) Preparation of hybridoma II! of the mouse immunized above! l! G, Kohler (G, Kohler)
) and C.
ミルスタイン(C,旧1sLcin)の方法(N az
ure256巻 495頁 1975年)により細胞融
合させ、AIIのC末端側ペプチド部分を認識するモノ
クロナル抗体を産生ずるハイブリドーマを得た。Milstein (C, formerly 1sLcin) method (N az
ure, Vol. 256, p. 495, 1975) to obtain a hybridoma that produced a monoclonal antibody that recognized the C-terminal peptide portion of AII.
なお、ハイブリドーマを得るためのスクリーニングは住
友ベークライトから市販されているアミノプレートを2
%グルタルアルデヒド/PBSによって室温、2時間で
活性化させた後、An (5μg/ml)を100 μ
Ω/wet 1分注し、0.2%ゼラチン/PB320
0μgによってブロッキング後、細胞融合後のハイブリ
ドーマの培養液を用いてスクリーニングし、Anに対す
る抗体を産生ずるノ\イブリドーマを得た。For screening to obtain hybridomas, two amino plates commercially available from Sumitomo Bakelite were used.
After activation with % glutaraldehyde/PBS for 2 hours at room temperature, 100 μg of An (5 μg/ml) was added.
Dispense 1 Ω/wet, 0.2% gelatin/PB320
After blocking with 0 μg, screening was performed using the hybridoma culture medium after cell fusion to obtain hybridomas producing antibodies against An.
(b)AllのN末端側ペプチド部分認識モノクロナル
抗体の作製
(イ)An−オボアルブミン(以下、OVAとする)の
調製
All−OVA結合体については公知の混酸無水物法に
よって作製した。(b) Preparation of a monoclonal antibody that recognizes the N-terminal peptide portion of All (a) Preparation of An-ovalbumin (hereinafter referred to as OVA) The All-OVA conjugate was prepared by the known mixed acid anhydride method.
即ちAIIを、過酸化物を除去し水分を含まないジオキ
サン2 mlに溶解し、AIIと等モルのトリエチルア
ミンを加え8℃の氷水中につけて冷却し、更にAIIと
笠モルのイソブチルクロロカーボネートを加えて攪拌し
、10〜20分間低温におき混酸無水物の生成を促進さ
せた。That is, AII was dissolved in 2 ml of water-free dioxane after removing peroxides, and equimolar amount of triethylamine was added to the solution, cooled by placing it in ice water at 8°C, and then AII and Kasamole of isobutyl chlorocarbonate were added. The mixture was stirred at a low temperature for 10 to 20 minutes to promote the formation of mixed acid anhydride.
OVAを10m1の蒸留水に溶解し、NaOHを加えて
pH9〜9.5にしてから8℃で8 mlのジオキサン
を攪拌しながら加えた。先に調製した混酸無水物溶液を
BSA溶液に少量ずつ滴下しながら加えた。この間、絶
えず攪拌を続けNaOHを加えpHを9以上に保った。OVA was dissolved in 10 ml of distilled water, NaOH was added to bring the pH to 9-9.5, and then 8 ml of dioxane was added with stirring at 8°C. The previously prepared mixed acid anhydride solution was added dropwise little by little to the BSA solution. During this time, stirring was continued and NaOH was added to maintain the pH at 9 or higher.
混酸無水物溶液を加え終わったら30分間攪拌を続け、
反応液を4℃で一晩放置し、その後、反応液を50%ジ
オキサン溶液で透析し、更に蒸留水で透析し、未反応の
AIIを除去しAID−OVAを作製した。After adding the mixed acid anhydride solution, continue stirring for 30 minutes.
The reaction solution was left at 4° C. overnight, and then dialyzed against a 50% dioxane solution and further dialyzed against distilled water to remove unreacted AII to produce AID-OVA.
(ロ)感作
An−OVAを使用しBALB/c系マウスに免疫をお
こなった。方法としてAローOV A too μgと
等量のフロイント完全アジュバントとを乳化させたもの
を腹腔に投与し、4週間後All−0VA50μgと等
量のフロイント不完全アジュバントとを乳化させたもの
を投与し、1週間後、今度はAn−OV A 50μg
をPBSに溶解させたものを投与してから30後、細胞
融合に使用した。(b) BALB/c mice were immunized using sensitized An-OVA. As a method, an emulsified mixture of Alow OV A too μg and an equal amount of Freund's complete adjuvant was administered intraperitoneally, and 4 weeks later, an emulsified mixture of 50 μg of All-0VA and an equal amount of Freund's incomplete adjuvant was administered. , 1 week later, this time 50 μg of An-OV A
was dissolved in PBS and used for cell fusion 30 days after administration.
(ハ)ハイブリドーマの調製
前述したのと同様な方法で細胞W合を行い、ノーイブリ
ドーマを11)た。(c) Preparation of hybridomas Cells were combined in the same manner as described above to obtain no hybridomas (11).
(ニ)スクリーニング
AIIのN末端側のアミノ酸4残基にカップリング用と
してシスティンを1残基結合させた5残基Nl+、、−
八sp−Arg−Vat−Tyr−Cys−COOII
3+1
をペプチド合成によって作製し、これをBSAとカップ
リングさせてスクリーニングに用いた。(d) 5 residues Nl+, -, in which one cysteine residue was bonded to the four amino acid residues on the N-terminal side of screening AII for coupling.
8sp-Arg-Vat-Tyr-Cys-COOII
3+1 was produced by peptide synthesis, coupled with BSA, and used for screening.
詳細はBSAG、G印gを0.1Mリン酸緩衝液(pH
6,5)に溶解し、MBSのジオキサン溶液(25,3
mg/m1)を02.5μg加え室温30分間攪拌後、
T S KゲルG −3000S W (内径7,5x
長さGOOmm) (東ソー沖製)により精製しBSA
画分を分取した。こイ1に先にペプチド合成したアミノ
酸5残基よりなるペプチド(10IIIM EDTA含
# 0. [4リン酸緩衝液に溶Jl/+1させたもの
)を加え、4°Cで一晩カツブリングさせ更にT S
KゲルG −3000S W (内径7.5x長さ(i
ool)にて精製を行い、スクリーニングに用いた。For details, refer to BSAG, G mark g in 0.1M phosphate buffer (pH
6,5) and a dioxane solution of MBS (25,3).
After adding 02.5 μg of mg/ml) and stirring at room temperature for 30 minutes,
T SK Gel G-3000S W (inner diameter 7.5x
BSA purified by Length GOOmm) (manufactured by Tosoh Oki)
Fractions were collected. Add the previously synthesized peptide consisting of 5 amino acid residues (10IIIM EDTA-containing #0. [dissolved in Jl/+1 in 4 phosphate buffer]) to this 1, and let it cumulate overnight at 4°C. T.S.
K Gel G-3000S W (inner diameter 7.5 x length (i
ool) and used for screening.
なお、AIIおよびAS+)−Arg−Vat−Tyr
はポリスチレンプレートに物理的成骨はしない。In addition, AII and AS+)-Arg-Vat-Tyr
does not physically form on the polystyrene plate.
(c)不溶化抗体の調製
未処理96ウエルーマイクロタイタープレート(ヌンク
イムノプレ−1・、インターメッド社製)の各ウェルに
、0.1M炭酸ナトリウム緩衝液(pH9,6)に溶解
した5μg/ mlのマウス抗アンジオテンシンモノク
ローナル抗体((b)で作製したAIIのN末端側ペプ
チド部分を認識するもの)250ItΩを加えて4℃で
一晩インキユベートした。次に、各ウェルの溶液を除き
0.04%Tween−20を含有するPBS溶液で3
回洗浄後、0.2%ゼラチン/PB3300μgでブロ
ッキング処理を行い、4℃で保存した。(c) Preparation of insolubilized antibodies 5 μg/ml dissolved in 0.1 M sodium carbonate buffer (pH 9,6) was added to each well of an untreated 96-well microtiter plate (Nunqui Immunopre-1, manufactured by Intermed). 250 ItΩ of a mouse anti-angiotensin monoclonal antibody (one that recognizes the N-terminal peptide portion of AII prepared in (b)) was added and incubated overnight at 4°C. Next, remove the solution from each well and add 3 mL of PBS solution containing 0.04% Tween-20.
After washing twice, blocking treatment was performed with 3300 μg of 0.2% gelatin/PB and stored at 4°C.
(d)アルカリホスファターゼ標識抗体の作製アルカリ
ホスファターゼ4.3mgをO,15Mリン酸緩衝液(
pH7,5) 1mlに溶解し、これにエタノール中
(f、4mg11になる様にS PDPを溶解した溶液
100tt I)を加え4℃で一晩反応させた。その後
、0.1Mリン酸緩衝液(pH7,5)に透析し、5p
DPとアルカリホスファターゼとの反応物(以下、PD
P−アルカリホスファターゼとする)を得た。(d) Preparation of alkaline phosphatase-labeled antibody 4.3 mg of alkaline phosphatase was added to O, 15M phosphate buffer (
(pH 7,5) was dissolved in 1 ml, and to this was added ethanol (f, 100 tt I of a solution in which SPDP was dissolved to a concentration of 4 mg 11), and the mixture was reacted at 4° C. overnight. After that, it was dialyzed against 0.1M phosphate buffer (pH 7.5), and 5p
The reaction product of DP and alkaline phosphatase (hereinafter referred to as PD
P-alkaline phosphatase) was obtained.
続いて、0.15Mリン酸緩衝液(pH7,5)に溶解
したI m g / mlのアンジオテンシンモノクロ
ーナル抗体((a)で作製したAUのC末端側ペプチド
部分を認識するもの) l+nlに、ジオキサンに溶解
した8、7mg/ml S−アセチルメルカプト無水コ
ハク酸50μgを加え30℃1時間反応させた。更に、
これをO,1Mリン酸緩衝液(pH7,0)で−晩透析
し、S−アセチルメルカプトサクシニル化抗アンジオテ
ンシン抗体を得た。Next, Img/ml of angiotensin monoclonal antibody (one that recognizes the C-terminal peptide portion of AU prepared in (a)) dissolved in 0.15M phosphate buffer (pH 7,5) was added to l+nl with dioxane. 50 μg of S-acetylmercaptosuccinic anhydride dissolved in 8.7 mg/ml was added and reacted at 30° C. for 1 hour. Furthermore,
This was dialyzed overnight against O.1M phosphate buffer (pH 7.0) to obtain an S-acetylmercaptosuccinylated anti-angiotensin antibody.
そして、FDP−アルカリホスファターゼとS−アセチ
ルメルカプトサクシニル化抗アンジオテンシン抗体を3
:1の割合でまぜ、これに0.1Mリン酸緩衝液に溶解
した1Mヒドロキシルアミンを全体口の 1150加え
、4℃にて一晩放置した。これを、T S Kゲル G
−3000S Wでゲル濾過し精製アルカリホスファ
ターゼ標識マウス抗アンジオテンシンモノクローナル抗
体を得た。Then, FDP-alkaline phosphatase and S-acetylmercaptosuccinylated anti-angiotensin antibody were
The mixture was mixed at a ratio of 1:1, 1,150 molar volume of 1M hydroxylamine dissolved in 0.1M phosphate buffer was added, and the mixture was left at 4°C overnight. Add this to TSK Gel G
Purified alkaline phosphatase-labeled mouse anti-angiotensin monoclonal antibody was obtained by gel filtration using -3000SW.
(e)酵素免疫測定法による血清中のアンジオテンシン
の測定
本実施例中の(e)で述べた方法で作製した抗体を固定
化したマイクロタイタープレートを室温に戻し、PBS
−Tween溶液で3回洗浄した後、O1旧〜20μg
/ mlの精製したアンジオテンシン■を含有する正
常人血清を標準物質として各ウェルに10μΩずつ加え
た。次いで各ウェルに、アルカノホスファターゼ標識抗
体の1%ウシ血清アルブミンを含むPBS溶液(5D/
ml )を100.czNずつ添加し37℃で2時間、
インキュベートした後、溶rl&を除去してからPBS
−tween溶液で3回洗浄した。更に、5mM p−
ニトロフェニルホスフェトを基質として、各ウェルに添
加し、室温で30分間反応させた後1. N N a
OH溶液100μgを加えて反応を停止させた。(e) Measurement of angiotensin in serum by enzyme-linked immunosorbent assay The microtiter plate on which the antibody prepared by the method described in (e) of this example was immobilized was returned to room temperature, and then added to PBS.
- After washing 3 times with Tween solution, O1 old ~ 20 μg
/ml of normal human serum containing purified angiotensin ■ was added to each well in an amount of 10 μΩ as a standard substance. Each well was then injected with an alkanophosphatase-labeled antibody in PBS containing 1% bovine serum albumin (5D/
ml) to 100. czN was added at 37°C for 2 hours.
After incubation, remove the lysate and then add PBS.
- Washed three times with tween solution. Additionally, 5mM p-
Nitrophenylphosphate was added as a substrate to each well, and after reacting for 30 minutes at room temperature, 1. NNa
The reaction was stopped by adding 100 μg of OH solution.
反応停止後、各ウェルについて波長40511111%
対照波長130Or+mの吸収強度を自動マイクロタイ
タープレートリーダ(東ソー(株)製MPR−A4)て
1llll定し、標弗物質の濃度及び吸収強度をプロッ
トして検量線を作製した。同様のΔIll定を2回行い
、結果を第1図に示した。After stopping the reaction, wavelength 40511111% for each well.
The absorption intensity at a reference wavelength of 130 Or+m was determined using an automatic microtiter plate reader (MPR-A4 manufactured by Tosoh Corporation), and a calibration curve was prepared by plotting the concentration and absorption intensity of the standard substance. Similar ΔIll determination was performed twice and the results are shown in FIG.
第1図は、実施例におけるAn濃度と吸光度との関係を
示す図である。
Ct +i’l出願人
東ソー株式会社FIG. 1 is a diagram showing the relationship between An concentration and absorbance in Examples. Ct +i'l Applicant Tosoh Corporation
Claims (1)
て、アンジオテンシンを認識し、認識部位の相異なる2
種類のモノクローナル抗体を用いて、サンドイッチ法に
より免疫測定法を行うことを特徴とするアンジオテンシ
ンの測定法。(1) In the method of measuring angiotensin in a sample, angiotensin is recognized and two different recognition sites are used.
A method for measuring angiotensin, which is characterized in that an immunoassay is performed by a sandwich method using different types of monoclonal antibodies.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP15020388A JPH022935A (en) | 1988-06-20 | 1988-06-20 | Angiotensin measuring method |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP15020388A JPH022935A (en) | 1988-06-20 | 1988-06-20 | Angiotensin measuring method |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH022935A true JPH022935A (en) | 1990-01-08 |
Family
ID=15491777
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP15020388A Pending JPH022935A (en) | 1988-06-20 | 1988-06-20 | Angiotensin measuring method |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH022935A (en) |
Cited By (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH03277297A (en) * | 1990-03-28 | 1991-12-09 | Saitetsuku Res:Kk | Determination of recombinant-type human angiotensinogen |
| WO1992006377A1 (en) * | 1990-10-04 | 1992-04-16 | Teijin Limited | Method and kit for immunoassay of propeptide of osteocalcin and proosteocalcin |
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| JP2022031783A (en) * | 2018-02-27 | 2022-02-22 | 株式会社島津製作所 | Antibodies that specifically recognize the N-terminus of APP669-x, and immunoassays |
-
1988
- 1988-06-20 JP JP15020388A patent/JPH022935A/en active Pending
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