JPH0583235B2 - - Google Patents
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- JPH0583235B2 JPH0583235B2 JP60175607A JP17560785A JPH0583235B2 JP H0583235 B2 JPH0583235 B2 JP H0583235B2 JP 60175607 A JP60175607 A JP 60175607A JP 17560785 A JP17560785 A JP 17560785A JP H0583235 B2 JPH0583235 B2 JP H0583235B2
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- Japan
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- enzyme
- gelatin
- immobilized
- activity
- radiation
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- Peptides Or Proteins (AREA)
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
Description
〔産業上の利用分野〕
本発明は、マトリツクスとしてゼラチンを用い
た酵素の固定化に関するものである。
〔従来の技術〕
酵素の利用性を向上させるために種々のマトリ
ツクスを用いて酵素を固定化する方法が行なわれ
ている。例えば、セルロース、ポリアクリルアミ
ド、コラーゲンなどを用い、これらの中に酵素を
固定化する方法などである。しかしながら、これ
らの方法で固定化された酵素は酵素活性が不十分
であつたり、製造コストが高いという問題があ
り、これらとは別のマトリツクスを用いた種々の
技術が開発されている。このうち、酵素固定化用
担体としてのゼラチンのすぐれた特性に着目し、
特開昭52−57390号公報には、ゲル化されたゼラ
チン中に酵素を固定化する技術が開示されてい
る。具体的には、ゼラチン溶液に酵素を添加した
後、該溶液をチタン板などの適当な板状体上に流
延し、風乾して薄膜をつくり、次にこの薄膜をホ
ルムアルデヒドやグルタルアルデヒドなどのアル
デヒド中に浸漬してゲル化させて固定化酵素を得
るものである。又、特公昭52−18794号公報には、
ゼラチンなどのゲル化タンパク質の水溶液にタン
パク質非分解酵素を添加後、ゲル化させ、次いで
2又は多−官能性タンパク質試薬と反応させてゲ
ル化タンパク質の分子を架橋させて、酵素を固定
化する技術が開示されている。たしかに、ゼラチ
ンは酵素の固定化用のすぐれたマトリツクスでは
あるが、上記の方法では、各種試薬を用いるので
酵素の失活が大きくなつたり、又、該試薬使用後
に雑菌が混入するという問題点があつた。
さらに、バツクマン(S.Bachman et.al.)ら
の報文スターチ(Starch/Sta¨rke)33(1981)
Nr.2.S.63−66には、ゼラチン溶液に放射線を照
射させて、ゼラチンを不溶性にした後、酵素を添
加し、次いでグルタルアルデヒドを用いて架橋さ
せて固定化酵素を得る方法が記載されている。し
かしながら、これとて酵素の固定化は不十分であ
り、上記公報記載の技術と同様の問題があつた。
〔発明が解決すべき問題点〕
従つて本発明はグルタルアルデヒドやホルムア
ルデヒド等の試薬を用いずに簡易な操作で酵素を
固定化できる方法を提供することを目的とする。
又、本発明は無菌状態で酵素を固定化できる方法
を提供することを目的とする。
〔問題点を解決するための手段〕
本発明は、酵素含有ゼラチン水溶液をゲル化
後、これに放射線をを照射してゼラチンを不溶化
させるとゼラチンマトリツクス中に酵素が有効に
固定され、同時にゼラチン中の雑菌が殺菌される
との知見に基づいてなされたのである。
すなわち、本発明は、酵素含有ゼラチン水溶液
をゲル化させた後、放射線を照射してゼラチンを
不溶化させてゼラチンゲル内に酵素を固定化する
ことを特徴とする固定化酵素の製造方法を提供す
る。
本発明においては、先づ酵素含有ゼラチン水溶
液を調製する。この際ゼラチンを2〜10重量%
(以下%と略称する。)、好ましくは5〜10%と酵
素を0.01〜10%、好ましくは0.1〜2%で残部が
水の溶液とするのが望ましい。つまり、ゼラチン
の濃度が2%未満であると放射線照射によるゼラ
チンゲルの収縮が大きくなつて、固定化の際に酵
素がゼラチンマトリツクスから離脱しやすくなる
からである。一方、ゼラチンの濃度が10%を越え
ると、ゼラチン強度の向上が望めない上にゼラチ
ンゲルの結合が密となり酵素の活性収率が低下す
るからである。
本発明で用いる酵素としては、タンパク質非分
解酵素であれば任意のものを用いることができ
る。具体的には、インベルターゼ、スクラーゼ、
サツカラーゼ、β−グリコシターゼ、カタラー
ゼ、リゾチーム、アミログリコシダーゼ、ラクタ
ーゼ、マルターゼ、アミラーゼ、ウレアーゼ、リ
パーゼ、エステラーゼ、グルコースイソメラー
ゼ、グルコースオキシダーゼ、デハイドロジエナ
ーゼ、ペニシリナーゼ、フラクトシルトランスフ
エラーゼ、α−グルコシルトランスフエラーゼ、
メリビアーゼ、ナリンギナーゼ及びペクチナーゼ
の群から選ばれる一種の酵素又は2種以上の酵素
混合物が例示される。これらのうち特にインベル
ターゼなどの加水分解酵素又はグルコースイソメ
ラーゼなどの異性化酵素が好ましい。又、酵素と
しては、酵素自体を当然用いることができるが、
リン酸塩等の安定剤により増粒したものでもよ
く、酵素を含有し菌体、例えば酵母、放線菌など
の微生物菌体、それらの混合物などを用いてもよ
い。尚、上記酵素含有ゼラチン水溶液を調製する
に際しては、酵素とゼラチンとの含有比を1/1
(重量比)以下、好ましくは1/50〜1/5とす
るのが好ましい。つまり、ゼラチンの含有量が酵
素量よりも少なくなると、ゼラチンのゲル形成能
が低下し、放射線照射後においても酵素の抜け落
ちが生ずるからである。
上記の酵素含有ゼラチン水溶液の調製は任意の
方法で行なうことができるが、先づ、40〜60℃程
度に加熱した水にゼラチンを所定量溶解した後、
冷却して液温を15〜20℃にし、これに酵素を添加
するのが望ましい。つまり液温が低い方が酵素の
失活が抑制されるからである。
本発明では、次に上記酵素含有ゼラチン水溶液
をゲル化させる。このゲル化は種々の方法で行な
うことができるが、上記水溶液を0〜10℃に冷却
することによつてゼラチンをゲル化させるのが好
ましい。つまり、この温度で冷却によりゲル化さ
せると酵素の活性低下を少なくできるという効果
が得られるからである。
本発明においては、ゲル化により所望の形状、
例えば粒状、膜状、板状、繊維状等種々の形状と
することができるが、特にこの後行なわれる放射
線による殺菌効果を考慮すると、ゲル化の時点で
最終形状にしておくことが望ましい。
次に本発明においては、酵素を含有したゼラチ
ンゲルに対して放射線を照射する。ここで用いる
放射線としてはα線、β線、γ線、X線、電子線
のいずれをも用いることができるが、X線及びγ
線を用いるのが好ましい。又、電子線、β線を用
いる場合には、前記ゲルを薄膜状とし、もしくは
粒子状、繊維状とする場合には極力厚さを薄くし
これに電子線、β線を照射するのがよい。
本発明においては、上記放射線の照射によつ
て、ゼラチンを不溶化させると同時に酵素をゼラ
チンマトリツクス中に強固に保持させるためのも
の、あるいは酵素を固定化したゼラチンゲルを殺
菌処理するためのものである。従つて、放射線の
照射量を2〜30キロGy、好ましくは5〜20キロ
Gyとするのがよい。つまり、照射量が2キロGy
未満ではゼラチンの不溶化が不十分であり、又殺
菌効果も小さい。一方30キロGyを越えて照射す
ると、酵素の失活が大きくなるからである。尚、
放射線を照射する際のゲルの温度は、ゲルが溶解
するのを防ぐために10〜20℃とするのが望まし
い。
又、放射線の照射によつて生じる過剰のラジカ
ルを捕捉して酵素への影響を防止するために、ト
コフエロール、BHT、BHA、アスコルビン酸な
どの抗酸化剤をラジカル捕捉剤として添加するこ
ともでき、一方放射線に対する混入微生物の感受
性を向上させ、照射線量を低下させるために臭化
カリウム、ヨウ化カリウムなどのハロゲン化アル
カリ、ビタミンK5、N−エチルマレイド、酢酸
ソーダの増感剤を添加することができる。
上記の方法により最終的に得られる固定化酵素
は、ゼラチンをマトリツクスとするものであり、
85〜95%程度の水分を含有するものである。従つ
て、本発明の固定化方法は、前記酵素の中でも水
分の存在によつて失活しにくいインベルターゼ等
の加水分解酵素、グルコースイソメラーゼ等の異
性化酵素の固定化に特に有用である。
本発明は、上記構成を基本とするものである
が、上記成分のほかに、各種殺菌剤、防腐剤、リ
ン酸塩等の酵素の安定化剤、酵素作用を向上させ
る薬剤等種々の添加剤を加えることができる。
〔発明の効果〕
本発明の方法により酵素の固定化を行なうとゼ
ラチンによる酵素の保持力が大きいので、酵素の
溶出がほとんどなく、連続使用が可能となるとい
う利点が発揮される。又、放射線照射によりゲル
強度が向上するので長期使用してもゲルが破れに
くく、かつ装置への粘着性が向上するので取扱上
も有利である。さらに放射線照射により酵素含有
ゲルの殺菌が行なわれるので無菌状態の固定化酵
素が得られ、無菌状態の基質などを処理した場合
に無菌の生成物が得られるといつた利点も得られ
る。
従つて、本発明の方法により得られた固定化酵
素、例えばインベルターゼ(β−フルクトフラノ
シターゼ)を固定化し、シヨ糖をブドウ糖と果糖
に分解するなどの転化糖の製造に用いたり、グル
コースイソメラーゼを固定化して、グルコースか
ら異性化糖(グルコースとフラクトースの混合
糖)の製造に広く用いられる。
次に実施例により本発明を説明する。
〔実施例〕
実施例 1
ゼラチン5gに、60℃の0.05M酢酸緩衝液(PH
5.0)100mlを加え、5%のゼラチン溶液を調製
し、この溶液を20℃に冷却した後、濃度1.0mg/
mlになるようにインベルターゼ(東洋紡(株)製)を
100mg添加し混合した。次に、上記混合液を5℃
に冷却してゲル化させ粒状に成形した後、コバル
ト60照射プールにて10キロGyのγ線を15℃のゼ
ラチンに照射し、ゼラチンで固定化された酵素を
得た。
このようにして得た固定化酵素の性能を次のよ
うにして測定した。
Γ 酵素反応
0.05M酢酸緩衝液でPH5.0に調製した1%シ
ヨ糖液を基質とし、この溶液50mlに0.5mgの酵
素(酵素単体又は上記の方法で製造した固定化
酵素)を添加して30℃で酵素反応を行わせて生
成した還元糖量から酵素活性を求めた。
ここで1ユニツト(活性の単位)は、30℃で
1分間に基質1μmolを分解する酵素量とした。
この結果、上記方法により固定化したインベ
ルターゼの活性は、43.0ユニツト/mgであり、
放射線未照射インベルターゼの活性は152.6ユ
ニツト/mgであつた。従つて、上記の方法によ
り固定化した酵素の活性、つまり活性収率は、
100×43.0/152.6=28.2%であつた。
Γ 繰り返し使用による酵素活性
基質溶液(シヨ糖濃度1%、PH5.0)50mlに
0.5mgのインベルターゼを含む固定化酵素を添
加し10分後の生成還元糖量から活性を求めた。
次に固定化酵素を別し蒸留水を用いて洗浄を
行なつた後、前と同様にして基質溶液に洗浄ず
みの固定化インベルターゼを添加して活性を求
めた。この操作を10回くり返し、各回ごとの活
性を1回目の活性を100%とした時の相対値と
して求めた。結果を表−1に示す。
[Industrial Application Field] The present invention relates to the immobilization of enzymes using gelatin as a matrix. [Prior Art] In order to improve the usability of enzymes, various matrices have been used to immobilize enzymes. For example, there is a method in which enzymes are immobilized in cellulose, polyacrylamide, collagen, or the like. However, enzymes immobilized by these methods have problems such as insufficient enzymatic activity and high manufacturing costs, and various techniques using matrices other than these have been developed. Among these, we focused on the excellent properties of gelatin as a carrier for enzyme immobilization.
JP-A-52-57390 discloses a technique for immobilizing enzymes in gelatin. Specifically, after adding an enzyme to a gelatin solution, the solution is cast onto a suitable plate-like material such as a titanium plate, air-dried to form a thin film, and then this thin film is treated with formaldehyde, glutaraldehyde, etc. The immobilized enzyme is obtained by immersing it in aldehyde and gelling it. Also, in Special Publication No. 52-18794,
A technique in which a non-proteolytic enzyme is added to an aqueous solution of a gelatinized protein such as gelatin, gelled, and then reacted with a bi- or polyfunctional protein reagent to crosslink the molecules of the gelled protein to immobilize the enzyme. is disclosed. It is true that gelatin is an excellent matrix for immobilizing enzymes, but the above methods have problems such as the use of various reagents, which increases the deactivation of the enzyme, and the contamination of bacteria after the reagents are used. It was hot. Furthermore, S. Bachman et.al.'s paper Starch/Sta¨rke 33 (1981)
Nr.2.S.63-66 describes a method for obtaining an immobilized enzyme by irradiating a gelatin solution with radiation to make gelatin insoluble, adding an enzyme, and then crosslinking using glutaraldehyde. has been done. However, the immobilization of the enzyme was insufficient in this method, and there were problems similar to those of the technique described in the above-mentioned publication. [Problems to be Solved by the Invention] Therefore, an object of the present invention is to provide a method for immobilizing enzymes by simple operations without using reagents such as glutaraldehyde or formaldehyde.
Another object of the present invention is to provide a method for immobilizing enzymes under sterile conditions. [Means for Solving the Problems] The present invention provides that, after gelatinizing an enzyme-containing gelatin aqueous solution, the gelatin is insolubilized by irradiating the gelatin with radiation to effectively immobilize the enzyme in the gelatin matrix, and at the same time, the gelatin This was done based on the knowledge that germs inside were sterilized. That is, the present invention provides a method for producing an immobilized enzyme, which comprises gelatinizing an enzyme-containing aqueous gelatin solution and then irradiating the gelatin with radiation to insolubilize the gelatin to immobilize the enzyme within the gelatin gel. . In the present invention, an enzyme-containing gelatin aqueous solution is first prepared. At this time, add 2 to 10% gelatin by weight.
(hereinafter abbreviated as %), preferably from 5 to 10%, and the enzyme from 0.01 to 10%, preferably from 0.1 to 2%, with the balance being water. In other words, if the gelatin concentration is less than 2%, the contraction of the gelatin gel due to radiation irradiation will increase, making it easier for the enzyme to separate from the gelatin matrix during immobilization. On the other hand, if the gelatin concentration exceeds 10%, no improvement in gelatin strength can be expected, and the gelatin gel will be tightly bonded, resulting in a decrease in enzyme activity yield. As the enzyme used in the present invention, any non-proteolytic enzyme can be used. Specifically, invertase, sucrase,
Satucarase, β-glycosidase, catalase, lysozyme, amyloglucosidase, lactase, maltase, amylase, urease, lipase, esterase, glucose isomerase, glucose oxidase, dehydrogenase, penicillinase, fructosyltransferase, α-glucosyltransferase ,
Examples include one enzyme selected from the group of melibiase, naringinase, and pectinase, or a mixture of two or more enzymes. Among these, hydrolases such as invertase and isomerases such as glucose isomerase are particularly preferred. Furthermore, as the enzyme, the enzyme itself can of course be used, but
The particles may be enlarged with a stabilizer such as a phosphate, or microbial cells containing enzymes, such as yeast and actinomycetes, or mixtures thereof may be used. In addition, when preparing the above-mentioned enzyme-containing gelatin aqueous solution, the content ratio of enzyme and gelatin is adjusted to 1/1.
(Weight ratio) below, preferably 1/50 to 1/5. In other words, if the content of gelatin is less than the amount of enzyme, the gel-forming ability of gelatin will decrease, and the enzyme will fall off even after radiation irradiation. The above enzyme-containing gelatin aqueous solution can be prepared by any method, but first, after dissolving a predetermined amount of gelatin in water heated to about 40 to 60°C,
It is desirable to cool the solution to a temperature of 15-20°C and then add the enzyme. In other words, the lower the liquid temperature, the more inhibited the deactivation of the enzyme. In the present invention, the enzyme-containing gelatin aqueous solution is then gelled. Although this gelation can be carried out by various methods, it is preferable to gelatin by cooling the aqueous solution to 0 to 10°C. In other words, gelling by cooling at this temperature has the effect of reducing the decrease in enzyme activity. In the present invention, desired shape,
For example, it can be formed into various shapes such as granules, membranes, plates, and fibers, but it is desirable to have the final shape at the time of gelation, especially considering the sterilizing effect of radiation that will be performed afterwards. Next, in the present invention, the gelatin gel containing the enzyme is irradiated with radiation. As the radiation used here, any of α rays, β rays, γ rays, X rays, and electron beams can be used, but
Preferably, a line is used. In addition, when electron beams or β-rays are used, it is preferable to make the gel into a thin film, or when it is in the form of particles or fibers, reduce the thickness as much as possible and irradiate the gel with electron beams or β-rays. . In the present invention, the above-mentioned radiation irradiation is used to insolubilize gelatin and at the same time firmly retain the enzyme in the gelatin matrix, or to sterilize the gelatin gel on which the enzyme is immobilized. be. Therefore, the radiation dose should be 2 to 30 kg Gy, preferably 5 to 20 kg.
It is better to use Gy. In other words, the radiation dose is 2 kg Gy.
If it is less than that, the insolubilization of gelatin is insufficient and the bactericidal effect is also small. On the other hand, if irradiation exceeds 30 kgy, enzyme deactivation will increase. still,
The temperature of the gel during irradiation with radiation is preferably 10 to 20°C to prevent the gel from dissolving. In addition, in order to scavenge excess radicals generated by radiation irradiation and prevent their effects on enzymes, antioxidants such as tocopherol, BHT, BHA, and ascorbic acid can be added as radical scavengers. On the other hand, sensitizers such as alkali halides such as potassium bromide and potassium iodide, vitamin K 5 , N-ethylmaleide, and sodium acetate may be added to improve the sensitivity of contaminated microorganisms to radiation and reduce the irradiation dose. can. The immobilized enzyme finally obtained by the above method uses gelatin as a matrix,
It contains about 85 to 95% water. Therefore, the immobilization method of the present invention is particularly useful for immobilizing hydrolytic enzymes such as invertase and isomerizing enzymes such as glucose isomerase, which are difficult to deactivate in the presence of water, among the enzymes mentioned above. The present invention is based on the above-mentioned structure, but in addition to the above-mentioned components, various additives such as various fungicides, preservatives, enzyme stabilizers such as phosphates, and agents that improve enzyme action are used. can be added. [Effects of the Invention] When enzymes are immobilized by the method of the present invention, gelatin has a large ability to retain enzymes, so there is almost no elution of enzymes, and there is an advantage that continuous use is possible. Furthermore, since the gel strength is improved by radiation irradiation, the gel is less likely to break even after long-term use, and the adhesion to the device is improved, which is advantageous in terms of handling. Furthermore, since the enzyme-containing gel is sterilized by radiation irradiation, a sterile immobilized enzyme can be obtained, and there is also the advantage that a sterile product can be obtained when a sterile substrate or the like is treated. Therefore, the immobilized enzyme obtained by the method of the present invention, such as invertase (β-fructofuranosidase), can be immobilized and used to produce invert sugar, such as decomposing sucrose into glucose and fructose, or It is widely used to immobilize isomerase and produce isomerized sugar (mixed sugar of glucose and fructose) from glucose. Next, the present invention will be explained with reference to examples. [Example] Example 1 Add 0.05M acetate buffer (PH
5.0) Add 100ml to prepare a 5% gelatin solution, cool this solution to 20℃, and then add
ml of invertase (manufactured by Toyobo Co., Ltd.)
100 mg was added and mixed. Next, mix the above mixture at 5°C.
After cooling to gelatin and shaping into particles, the gelatin was irradiated with 10 kiloGy of gamma rays in a cobalt-60 irradiation pool at 15°C to obtain an enzyme immobilized in gelatin. The performance of the immobilized enzyme thus obtained was measured as follows. Γ Enzyme reaction Using 1% sucrose solution adjusted to pH 5.0 with 0.05M acetate buffer as a substrate, add 0.5mg of enzyme (enzyme alone or immobilized enzyme produced by the above method) to 50ml of this solution. The enzyme activity was determined from the amount of reducing sugar produced by carrying out the enzymatic reaction at 30°C. Here, 1 unit (unit of activity) is the amount of enzyme that decomposes 1 μmol of substrate in 1 minute at 30°C. As a result, the activity of invertase immobilized by the above method was 43.0 units/mg.
The activity of unirradiated invertase was 152.6 units/mg. Therefore, the activity of the enzyme immobilized by the above method, that is, the activity yield, was 100×43.0/152.6=28.2%. Γ Enzyme activity due to repeated use Substrate solution (sucrose concentration 1%, pH 5.0) in 50ml
The activity was determined from the amount of reducing sugar produced 10 minutes after adding immobilized enzyme containing 0.5 mg of invertase.
Next, the immobilized enzyme was separated and washed with distilled water, and the washed immobilized invertase was added to the substrate solution in the same manner as before to determine the activity. This operation was repeated 10 times, and the activity for each time was determined as a relative value when the first time activity was taken as 100%. The results are shown in Table-1.
【表】
表−1よりくり返し使用しても酵素活性は十分
保持されていることがわかる。
Γ 連続使用による酵素活性
インベルターゼを20mg含む固定化酵素(ゼラ
チン5%、酵素初濃度2mg/ml、照射線量10キ
ロGy)をカラムに充填し、5%シヨ糖溶液
(PH5.0)をS.V=5.0で流し、保持酵素活性(シ
ヨ糖分解%)を求めた。尚、S.Vは、space
velocity(空間速度)の意であり、1時間に酵
素カラムを通過した液量を固定化酵素の容量で
割つた値である。結果を表−2に示す。[Table] Table 1 shows that the enzyme activity is sufficiently maintained even after repeated use. Γ Enzyme activity due to continuous use A column was filled with immobilized enzyme containing 20 mg of invertase (5% gelatin, initial enzyme concentration 2 mg/ml, irradiation dose 10 kg Gy), and a 5% sucrose solution (PH5.0) was added to the column at SV= 5.0, and the retained enzyme activity (% sucrose decomposition) was determined. In addition, SV is space
Velocity (space velocity) is the value obtained by dividing the volume of liquid that passes through an enzyme column in one hour by the volume of immobilized enzyme. The results are shown in Table-2.
【表】
表−2より168時間においてもシヨ糖分解能力
が96.5%と高いので、本発明の方法によれば酵
素の溶出が少なくしつかりと固定されているこ
とがわかる。
比較例
濃度4%のゼラチン水溶液にコバルト60γ線
(15キロGy)で照射してゼラチンを不溶化させた
後50℃で乾燥した。次に乾燥ゼラチンを粉砕し、
直径0.4mm以下のゼラチン粒子を選別し、このゼ
ラチン500mgに対してインベルターゼ(東洋紡(株)
製)10mgを混合し、これらを水4mlに添加して湿
潤させた。この後、アセトンで洗浄し、グルタル
アルデヒド(10%)に1分間浸漬して固定化させ
た後、水で洗浄し固定化酵素を得た。
実施例1と同様な方法でこの固定化酵素の活性
収率を求めたところ、13.9%であつた。
実施例 2
ゼラチン濃度と放射線量を変化させた以外は実
施例1と同様にして固定化酵素を調製し、活性収
率を求めた。結果を表−3に示す。[Table] Table 2 shows that even after 168 hours, the sucrose decomposition ability was as high as 96.5%, indicating that the method of the present invention resulted in less elution of the enzyme and firm immobilization. Comparative Example A gelatin aqueous solution with a concentration of 4% was irradiated with cobalt 60 gamma rays (15 kiloGy) to insolubilize the gelatin, and then dried at 50°C. Next, grind the dried gelatin,
Select gelatin particles with a diameter of 0.4 mm or less, and apply invertase (Toyobo Co., Ltd.) to 500 mg of gelatin.
10 mg (manufactured by M.D.) were mixed and added to 4 ml of water to moisten the mixture. Thereafter, the enzyme was washed with acetone, immersed in glutaraldehyde (10%) for 1 minute for immobilization, and then washed with water to obtain an immobilized enzyme. The activity yield of this immobilized enzyme was determined in the same manner as in Example 1, and was found to be 13.9%. Example 2 An immobilized enzyme was prepared in the same manner as in Example 1 except that the gelatin concentration and radiation dose were changed, and the activity yield was determined. The results are shown in Table-3.
【表】
表−3より、ゼラチン濃度が低い(1%)場合
には、活性収率は低いが2%以上になると活性収
率はほぼ一定となり、又照射線量が多くなると活
性収率が低下することがわかる。
実施例 4
酵素として、インベルターゼ以外の酵素を用
い、表−4に示した条件以外は例1と同様にして
固定化酵素を調製し、活性収率を求めた。結果を
次に示す。[Table] From Table 3, when the gelatin concentration is low (1%), the activity yield is low, but when it exceeds 2%, the activity yield becomes almost constant, and as the irradiation dose increases, the activity yield decreases. I understand that. Example 4 Using an enzyme other than invertase as the enzyme, an immobilized enzyme was prepared in the same manner as in Example 1 except for the conditions shown in Table 4, and the activity yield was determined. The results are shown below.
Claims (1)
放射線を照射してゼラチンを不溶化させてゼラチ
ンゲル内に酵素を固定化することを特徴とする固
定化酵素の製造方法。 2 該ゼラチン水溶液がゼラチンを2〜10重量%
含有する特許請求の範囲第1項記載の製造方法。 3 ゲル化を冷却により行なう特許請求の範囲第
1項記載の製造方法。 4 放射線の照射量が2〜30キロGyである特許
請求の範囲第1項記載の製造方法。 5 酵素が、タンパク非分解酵素である特許請求
の範囲第1項記載の製造方法。 6 酵素がインベルターゼ、β−グルコシター
ゼ、カタラーゼ、リゾチーム、アミログリコシダ
ーゼ、ラクターゼ、マルターゼ、アミラーゼ、ウ
レアーゼ、リパーゼ、エステラーゼ、グルコース
イソメラーゼ、グルコースオキシダーゼ、デハイ
ドロジエナーゼ及びペニシリナーゼの群から選ば
れる少なくとも1種の酵素である特許請求の範囲
第5項記載の製造方法。[Claims] 1. After gelatinizing an enzyme-containing gelatin aqueous solution,
A method for producing an immobilized enzyme, which comprises immobilizing the enzyme within a gelatin gel by insolubilizing gelatin by irradiating the gelatin with radiation. 2 The gelatin aqueous solution contains 2 to 10% gelatin by weight.
A manufacturing method according to claim 1 containing: 3. The manufacturing method according to claim 1, wherein gelation is performed by cooling. 4. The manufacturing method according to claim 1, wherein the radiation dose is 2 to 30 kiloGy. 5. The manufacturing method according to claim 1, wherein the enzyme is a non-proteolytic enzyme. 6. At least one enzyme selected from the group of invertase, β-glucosidase, catalase, lysozyme, amyloglucosidase, lactase, maltase, amylase, urease, lipase, esterase, glucose isomerase, glucose oxidase, dehydrogenase, and penicillinase. The manufacturing method according to claim 5.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP17560785A JPS6236191A (en) | 1985-08-09 | 1985-08-09 | Production of immobilized enzyme |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP17560785A JPS6236191A (en) | 1985-08-09 | 1985-08-09 | Production of immobilized enzyme |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6236191A JPS6236191A (en) | 1987-02-17 |
| JPH0583235B2 true JPH0583235B2 (en) | 1993-11-25 |
Family
ID=15999049
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP17560785A Granted JPS6236191A (en) | 1985-08-09 | 1985-08-09 | Production of immobilized enzyme |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6236191A (en) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP3318271A1 (en) * | 2005-11-16 | 2018-05-09 | Pro Natura Gesellschaft für Gesunde Ernährung mbH | Agent for use in the case of fructose intolerance |
Family Cites Families (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5934112B2 (en) * | 1976-05-15 | 1984-08-20 | 株式会社ニツピ | Immobilized enzyme and its production method |
-
1985
- 1985-08-09 JP JP17560785A patent/JPS6236191A/en active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS6236191A (en) | 1987-02-17 |
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