JP7668012B2 - エキソソームを含む毛髪再生用組成物の製造方法 - Google Patents
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Description
毛髪再生効果を有するエキソソームを得るために、1×106個のHDF(ヒト真皮線維芽細胞)にUltraRepro 1001(ステムオンインコーポレーテッド(STEMON Inc.)、大韓民国・ソウル市)を用いて、20KHz、1.0W/cm2の超音波刺激を5秒間直接加えた。2×105個のUHDFを、35-mmペトリ皿で、超音波処理された(20KHz、5.0W/cm2、10分)毛乳頭細胞培養培地(Dermal Papilla cell medium、PromoCell社)と共に1日間培養した。前記UHDFを培養した培養培地から、次のようにエキソソームを分離した。培養培地を3,000×gで20分間遠心分離することで細胞デブリ及び死細胞を除去した後、上澄み液を0.22-mmのフィルタ(Minisart(登録商標)Syringe Filter、ザルトリウス社、ドイツ・ゲッティンゲン)に通過させた。通過した培地をAmicon(登録商標)Ultra-15 100,000kDa device(ミリポア社、アメリカ合衆国・マサチューセッツ州・ビレリカ)に入れ、14,000×gで20分間遠心分離することで、エキソソーム(iExo)を濃縮した。
実施例1における毛髪再生効果を有するエキソソームの誘導方法により培養したUHDFを、エキソソームマーカーのCD63に対する免疫蛍光染色により分析した結果(このとき、対照染色は、核染色剤であるDAPI(4’,6-diamidino-2-phenylindole:4’,6-ジアミジノ-2-フェニルインドール)により行う)、多量のエキソソームが生成され(図2a)、前記マーカーと毛髪の再生に重要なマーカーであるShh(Sonic hedgehog)の免疫蛍光染色の結果、分泌されるエキソソームにおいてShhが発現していることが確認された(図2b)。実施例1における毛髪再生効果を有するエキソソームの製造方法により得られたエキソソームの形を、Nanosight(ナノサイト)及びTEM(transmission electron microscopy:透過型電子顕微鏡)を用いて分析した結果、正常な形態のエキソソームの形が観察された(図1a-b)。実施例1により製造されたエキソソームは、略50nm~250nmの直径を有することが明らかになり(図1c)、前記製造方法を経ていない同数の細胞から分泌されたエキソソームに比べて、その数が4倍以上高いことが明らかになった(図1d)。前記エキソソームに対するRNA-Seq分析の結果、毛髪の再生と関連した毛髪組織の発生、毛髪の再生、メラニン形成、Jak-Stat信号伝達体系、及びWnt信号伝達体系のmRNA及びマイクロRNAが、対照群に比べて、大いに増加したことが明らかになった(図3)。前記エキソソームmRNAをリアルタイムPCRで分析した結果、β-カテニン、Shh、KRT25、Lef1、Versican、Ptc1、TCF3、Mitf、Tyr、Gli1、及びTyrp1が対照群に比べて増加したことがわかり(図4a-b)、これは、これらに対するRNA-seqを介した読み取りカウント分析からも確認された(図4c)。まとめると、実施例1のエキソソームの製造方法により、HDFから毛髪再生能を有するエキソソームが成功的に誘導されたことが確認された。
実施例1における毛髪再生効果を有するエキソソームの製造方法により得られたエキソソームを、D-PBS培養液に希釈して、背側(dorsal side)を剃毛したC57マウス及びヌードマウスの皮膚に、1×109、1×1010、1×1011個/mlの濃度で、それぞれ週1回塗布し、1週間及び2週間後、それぞれの効果を確認した結果、C57マウスは、対照群に比べて、多数の毛が長く伸びたことが確認され(図5)、ヌードマウスの場合、エキソソームを処理しなかった群では、目視で毛が観察されなかったのに対して、エキソソームを処理した群では、1週間目から毛が多数伸びたことが確認され(図6)、前記エキソソームを2週間処理したマウス群は、対照群に比べて、毛が3倍以上長く伸びた(データ未掲載)。これは、前記エキソソームが毛髪再生効果を有することを証明するとともに、もともと毛のないヌードマウスにおいて、週1回の塗布により、毛髪の再生を誘導することができたことから、塗布を1日2回行ってこそ効果が得られるFDA承認薬物に比べて、高い持続性を有することを示す。
超音波刺激を与えなかったHDF(NHDF)を、繊維芽細胞培地(10% fetal bovine serum(Gibco)及び1% penicillin/streptomycin(Gibco)が含まれたDMEM(Gibco))で培養した。前記NHDFを培養した培養培地からエキソソーム(HDF-Exo)を分離するときは、実施例1におけるエキソソームの分離方法と同じ過程を経た。
D-PBS培養液(マウスの皮膚に塗布するとき、エキソソームの希釈に用いた溶媒)を、エキソソーム無しに、背側(dorsal side)を剃毛したC57マウス及びヌードマウスの皮膚に塗布した。
Claims (7)
- エキソソームを含む毛髪再生用組成物の製造方法であって、
細胞に直接的に超音波刺激を提供する段階と、
前記直接的に超音波刺激を提供された細胞および超音波刺激が提供された培地の混合物を一定時間培養する段階と、
前記混合物からエキソソームを分離する段階と、
を含み、
前記直接的に超音波刺激を提供された細胞および超音波刺激が提供された培地の混合物は、細胞を含まない培地に超音波刺激を加えた後、前記培地と前記超音波刺激が提供された細胞を混合することにより得られたものであり
前記細胞はヒト真皮線維芽細胞(HDF)であり、
前記直接的な超音波刺激は、強度が0.5~2W/cm2であり、周波数が20kHz~20MHzであり、持続時間が0.1秒~10分であり、
前記細胞を含まない培地に対する超音波刺激は、強度が2~10W/cm2であり、周波数が20kHz~20MHzであり、持続時間が1秒~15分であり、
前記混合物から分離されたエキソソーム内の毛髪再生を促進する遺伝子のRNAは、前記超音波刺激を提供される前の細胞から分泌されるエキソソーム内の毛髪再生を促進する遺伝子のRNAより増加されており、
前記毛髪の再生を促進する遺伝子は、β-カテニン、Shh、KRT25、Lef1、VCAN、Ptc1、Tcf3、Mitf、Tyr、Tyrp1、Gli1、及びDctのうちの少なくともいずれか一つであり、
前記混合物から分離されたエキソソームは、前記超音波刺激を提供される前の細胞から分泌されるエキソソームに比べて、皮膚への塗布時、皮膚における毛髪の再生を促進する遺伝子のRNA発現をさらに増加させ、毛髪の再生を阻害する遺伝子のRNA発現をさらに減少させ、
前記毛髪の再生を促進する遺伝子は、Shh、β-カテニン、KRT25、VCAN、Gli1、Lef1、Ptc1、Tyrp1、Tyr、Mitf、及びDctのうちの少なくともいずれか一つであり、
前記毛髪の再生を抑制する遺伝子は、Sfrp4及びDKKのうちの少なくともいずれか一つである
ことを特徴とするエキソソームを含む毛髪再生用組成物の製造方法。 - 前記培養時の培地は、胚性幹細胞培地、毛乳頭細胞培地、または毛包幹細胞培地のいずれかである
請求項1に記載のエキソソームを含む毛髪再生用組成物の製造方法。 - 前記混合物の培養は、1時間~10日間行われる
請求項1に記載のエキソソームを含む毛髪再生用組成物の製造方法。 - 前記エキソソームを分離する段階は、超遠心分離、密度勾配、ろ過、サイズ排除クロマトグラフィー、免疫親和性分離、沈殿、及びマイクロ流体による分離の方法のうちの少なくとも一つを用いる
請求項1に記載のエキソソームを含む毛髪再生用組成物の製造方法。 - 前記エキソソームを分離する段階は、
前記培養後の混合物を遠心分離して上澄み液を得る段階と、
前記上澄み液をフィルタでろ過してろ液を得る段階と、
前記ろ液を濃縮する段階と、を含む
請求項1に記載のエキソソームを含む毛髪再生用組成物の製造方法。 - 前記エキソソームを分離する段階は、
前記上澄み液をフィルタでろ過する前に、4℃以下で、7日~1ヶ月間保管する段階をさらに含む
請求項5に記載のエキソソームを含む毛髪再生用組成物の製造方法。 - 前記分離されたエキソソームは、直径が50~200nmである
請求項1に記載のエキソソームを含む毛髪再生用組成物の製造方法。
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