JP6964191B2 - 新規な乳酸菌およびその使用 - Google Patents
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Description
具体的には、本発明の薬学組成物に含まれるラクトバチルス・プランタラムNK3は、その生菌体、その死菌体、その培養物、その破砕物またはその抽出物であってもよいが、炎症疾患の予防または治療の効果を達成できるラクトバチルス・プランタラムNK3の形態であれば、特に制限されない。
具体的には、本発明の薬学組成物に含まれるビフィドバクテリウム・ロンガムNK49は、その生菌体、その死菌体、その培養物、その破砕物またはその抽出物であってもよいが、炎症疾患の予防または治療の効果を達成できるラクトバチルス・プランタラムNK3の形態であれば、特に制限されない。
具体的には、前記炎症疾患は膣炎であってもよい。
具体的には、前記炎症疾患は大腸炎であってもよい。
ヒトの糞便をGAM液体培地(GAM broth;Nissui Pharmaceutical、Japan)に入れて懸濁した。その後、上澄みを取ってBL寒天培地(BL agar medium;Nissui Pharmaceutical、Japan)に移植し、37℃で約48時間嫌気的に培養した後、コロニー(colony)を形成した菌株を分離した。
白菜キムチ、大根キムチまたはネギギムチを各々破砕し、破砕上澄みを取ってMRS寒天培地(MRS agar medium;Difco、USA)に移植し、37℃で約48時間嫌気的に培養した後、コロニー(colony)を形成した菌株を分離した。
ヒトの糞便またはキムチから分離した菌株の生理学的特性および16S rDNA配列を分析して菌株の種を確定し、菌株名を付与した。付与された乳酸菌の菌株名は下記表1の通りである。具体的には、キムチから分離した乳酸菌は、5種のラクトバチルス・プランタラム(Lactobacillus plantarum)(表1の管理番号1〜5)、5種のラクトバチルス・ブレビス(Lactobacillus brevis)(表1の管理番号6〜10)、5種のラクトバチルス・サケイ(Lactobacillus sakei)(表1の管理番号11〜15)、および5種のラクトバチルス・カルバタス(Lactobacillus curvatus)(表1の管理番号16〜20)であった。ヒトの糞便から分離した乳酸菌は、5種のラクトバチルス・ラムノサス(Lactobacillus rhamnosus)(表1の管理番号21〜25)、5種のラクトバチルス・プランタラム(Lactobacillus plantarum)(表1の管理番号26〜30)、5種のラクトバチルス・ロイテリ(Lactobacillus reuteri)(表1の管理番号31〜35)、4種のラクトバチルス・ジョンソニー(Lactobacillus johnsonii)(表1の管理番号36〜39)、3種のラクトバチルス・ムコサエ(Lactobacillus mucosae)(表1の管理番号40〜42)、3種のビフィドバクテリウム・アドレセンティス(Bifidobacterium adolescentis)(表1の管理番号43〜45)、および5種のビフィドバクテリウム・ロンガム(Bifidobacterium longum)(表1の管理番号46〜50)であった。
前記表1に記載された菌株のうちラクトバチルス・プランタラム(Lactobacillus plantarum)NK3(受託番号KCCM12089P)は、グラム陽性桿菌であることが確認された。また、ラクトバチルス・プランタラム(Lactobacillus plantarum)NK3の16S rDNAは、配列番号1の塩基配列を有することが明らかになった。ラクトバチルス・プランタラム(Lactobacillus plantarum)NK3の16S rDNA塩基配列をBLAST検索で比較した結果、同一な16S rDNA塩基配列を有するラクトバチルス・プランタラム(Lactobacillus plantarum)菌株は検索されず、公知のラクトバチルス・プランタラム(Lactobacillus plantarum)菌株の16S rDNA配列と99%の相同性を示すことを確認した。
前記表1に記載された菌株のうちビフィドバクテリウム・ロンガム(Bifidobacterium longum)NK49(受託番号KCCM12088P)は、グラム陽性桿菌であることが確認された。また、ビフィドバクテリウム・ロンガム(Bifidobacterium longum)NK49の16S rDNAは、配列番号2の塩基配列を有することが明らかになった。ビフィドバクテリウム・ロンガム(Bifidobacterium longum)NK49の16S rDNA塩基配列をBLAST検索で比較した結果、同一な16S rDNA塩基配列を有するビフィドバクテリウム・ロンガム(Bifidobacterium longum)菌株は検索されず、公知のビフィドバクテリウム・ロンガム(Bifidobacterium longum)菌株の16S rDNA配列と99%の相同性を示すことを確認した。
DPPH(2,2−Diphenyl−1−picrylhydrazyl)を0.2mM濃度になるようにエタノールに溶かしてDPPH溶液を製造した。前記DPPH溶液0.1mLに乳酸菌の懸濁液(1×106CFU/mL)またはビタミンC溶液(1g/mL)を入れて20分間37℃で培養した。培養液を3000rpmで5分間遠心分離して上澄みを得た。その後、517nmで上澄みの吸光度を測定して、分離した乳酸菌の抗酸化活性を計算した。各乳酸菌別の抗酸化活性は下記表4の通りである。
C57BL/6マウス(male、6週齢、20〜23g)の腹腔に滅菌された4%チオグリコレート(thioglycolate)2mLを投与した。96時間の経過後にマウスを麻酔し、マウスの腹腔にRPMI 1640培地8mLを投与した。5〜10分後にマウスの腹腔内のRPMI培地(マクロファージ)を抜き取り、1000gで10分間遠心分離し、さらにRPMI 1640培地で2回洗浄した。前記マクロファージを各ウェル当たりに0.5×106の数で24−ウェルプレートに敷き、分離した乳酸菌(最終処理濃度:1×104CFU/mL、以下同一)と炎症反応誘導物質であるリポポリサッカライド(lipopolysaccharide、LPS)を2時間または24時間処理した後に上澄みおよび細胞を得た。得られた細胞をRIPAバッファ(Gibco社)に入れて均質化した。24時間処理した培養上澄みにおいてTNF−α、IL−10などのサイトカイン発現量を、2時間処理して得られた細胞からp65(NF−kB)、p−p65(phosphor−NF−kB)およびβ−actinの発現量を免疫ブロット法(immunoblotting)により測定した。各乳酸菌別の炎症指標の発現レベルは下記表4の通りである。
大腸癌細胞であるCaco2細胞を韓国細胞株バンクから分譲してRPMI 1640培地で48時間培養した後、Caco2細胞をウェル当たりに2×106の量になるように12−ウェルプレートに分株した。各ウェルにLPS 1μgを単独で処理するか、またはLPS 1μgと乳酸菌1×104CFUを共に処理した後、24時間培養した。その後、各ウェルから培養された細胞を集め、免疫ブロット法(immunoblotting)により密着結合タンパク質(tight junction protein)であるZO−1の発現量を測定した。各乳酸菌別のZO−1の発現量は下記表5の通りである。
分離した乳酸菌の活性を評価した結果、分離した乳酸菌のうち新規な乳酸菌であるラクトバチルス・プランタラム(Lactobacillus plantarum)NK3およびビフィドバクテリウム・ロンガム(Bifidobacterium longum)NK49が密着結合タンパク質であるZO−1の発現量を増加させつつ、抗酸化活性および炎症反応の抑制効果に優れることを確認した(表4および表5)。
その結果、ラクトバチルス・プランタラム(Lactobacillus plantarum)NK3またはビフィドバクテリウム・ロンガム(Bifidobacterium longum)NK49を処理した全ての群において、NF−kBの活性が抑制され、TNF−αの発現量が抑制されることを確認した(図1および図2)。
GAM培地に、分離した新規な乳酸菌であるラクトバチルス・プランタラム(Lactobacillus plantarum)NK3およびビフィドバクテリウム・ロンガム(Bifidobacterium longum)NK49(1×106、1×107、1×108CFU/mL)と共にガードネレラ・バギナリス(Gardnerella vaginalis)またはアトポビウム・バギナエ(Atopobium vaginae)(1×106CFU/mL)を移植した。37℃、嫌気的条件でBHI brothに酵母抽出物(yeast extract)(1%)、マルトース(maltose)(0.1%)、グルコース(glucose)(0.1%)および馬血清(horse serum)(10%)を添加したBHIS培地において24時間培養して抗菌力を測定した。
C57BL/6マウス(雌、19〜22g、6週齢)を1群当たりに6匹ずつ用いて実験を行った。前記マウスにβ−estradiol 17−benzoate(Sigma社、MO、米国)0.125mgをオリーブオイルに溶かして皮下注射した。3日後、ガードネレラ・バギナリス(Gardnerella vaginalis)(1×108CFU/mouse)をマウスの膣内に移植した。移植して8日目から14日間、毎日1回ずつ1×109CFU/mouseの分離した新規な乳酸菌であるラクトバチルス・プランタラム(Lactobacillus plantarum)NK3、ビフィドバクテリウム・ロンガム(Bifidobacterium longum)NK49またはこれらの1:1の混合物を経口または膣内に直接投与した。乳酸菌を投与して7日目(移植して14日目)に最後に投与し、24時間後に動物モデルを犠牲死させて実験を行った。
上記のようにガードネレラ・バギナリス(Gardnerella vaginalis)をマウスの膣に移植した結果、膣と子宮に浮腫を伴った炎症が発生した。しかし、新規な乳酸菌であるラクトバチルス・プランタラム(Lactobacillus plantarum)NK3、ビフィドバクテリウム・ロンガム(Bifidobacterium longum)NK49またはこれらの混合物を経口または膣内に投与した結果、膣と子宮の外観上の炎症が有意に減少することを確認した(図6)。
新規な乳酸菌を上記のように投与してから24時間および48時間に、滅菌された生理食塩水0.5mlで膣内を洗い出した。洗い出した膣洗浄液をQiagen DNA purification kitを用いて分離した後、PCRにより乳酸菌およびガードネレラ・バギナリス(Gardnerella vaginalis)菌株を定量した。
50mMリン酸緩衝液(phosphate buffer、pH6.0)1mlに上記のように洗い出した膣洗浄液を加えて超音波処理した。溶かして凍らせる過程を3回実施した後に遠心分離した。上層液100μLにO−ジアニシジン(o−dianisidine、0.129mg/mL)398μLを加えた。H2O2の最終濃度を0.0005%に合わせた後、25℃および492nm条件で経時的(time course)にミエロペルオキシダーゼ(myeloperoxidase、MPO)の活性を測定した。
前記犠牲死させた動物モデルの大腸または膣粘膜組織にlysis buffer(20mM HEPES、1.5mM MgCl2、0.4mM NaCl、1mM EDTA、1mM dithiotheitol、0.5mM phenyl methyl sulfonyl fluoride、20μg/mLトリプシン阻害剤、1% nonidet p−40、20%グリセロール)を入れて均質化(homogenize)した。Bradford assayによりタンパク質を定量して、タンパク質50μg/μLが含まれるように検体を製造した。前記検体に電気泳動サンプルバッファ(Laemmli sample buffer 950μL+βMe 50μL)10μg/μLを加えた後、100℃で3分間変性(denaturation)させ、電気泳動(150V、30mA)を行った。電気泳動したゲルを30Vにおいて2時間メンブレンにトランスファー(transfer)した。前記メンブレンを5% skim milk/PBS−T(0.05% tween 20/PBS)に15mL入れ、1時間揺すった。1次抗体10μg/μLに1% skim milk/PBS−T 10mLを入れて12時間反応させた後、PBS−T溶液で5分間3回洗浄した。そして、各サイトカインおよび転写因子に対する2次抗体10μg/μLに1% skim milk/PBS−T 20mLを入れて1時間揺すって反応させた。PBS−T溶液で5分間3回洗浄した後、最後にECL溶液で発光させた。
マウスの膣を滅菌された生理食塩水0.5mlで膣内を2回洗い出した。洗い出した膣洗浄液を集めて遠心分離(10,000g、10分間)し、沈殿物をbacterial genomic DNA extraction kit(QIAGEN DNeasy Feces kit;Qiagen、Hilden、Germany)を用いてDNAを抽出した。抽出されたDNA 10ngをQiagen thermal cyclerにおいて下記のプライマーを入れ、SYBER premixを入れて、DNA polymerase activation(95℃、30秒間)、denaturation(95℃、5秒間)およびamplification(63℃、30秒間)を38回繰り返してPCRを行った。
乳酸菌 (Lactobacilli) reverse(5’−3’) CTT GTA CAC ACC GCC CGT(配列番号4);
Control 16S rDNA forward(5’−3’) AGA GTT TGA TCC TGG CTC AG(配列番号5);および
Control 16S rDNA reverse(5’−3’) AAG GAG GTG WTC CAR CC(配列番号6)。
大腸組織100mgに0.5%ヘキサデシルトリメチルアンモニウム臭化物(hexadecyl trimethyl ammonium bromide)含有10mMリン酸カルシウム緩衝液(potassium phosphate buffer、pH7.0)200μLを入れ、均質化(homogenization)した。4℃および10,000gの条件で10分間遠心分離して上澄みを得た。上澄み50μLを0.95mLの反応液(1.6mMテトラメチルベンジジン(tetramethyl benzidine)と0.1mM H2O2含有)に入れ、37℃で反応させつつ、650nmで経時的に吸光度を測定した。前記ミエロペルオキシダーゼ活性は、反応物として生じたH2O2 1μmol/mLを1ユニットに計算した。
ウェスタンブロット法を利用して、p−p65、p65、COX−2およびβ−actinのような炎症反応指標物質を測定した。具体的には、前記ミエロペルオキシダーゼ(Myeloperoxidase、MPO)活性測定実験と同様の方法により得られた上澄み50μgを取り、免疫ブロット法を行った。また、サイトカイン(IL−17、TNF−α)の発現量は、ELISA kitを用いて測定した。
それにより、新規な乳酸菌は、毒性を示さず、且つ、大腸炎の予防および治療に効果があることを確認した。
本発明の発明者らは、ラクトバチルス・プランタラム(Lactobacillus plantarum)NK3を2017年8月4日に公認寄託機関である韓国微生物保存センター(アドレス:大韓民国、ソウル西大門区弘済内2街ギル45ユリムビル)に特許寄託してKCCM12089Pの受託番号を与えられた。
また、本発明の発明者らは、ビフィドバクテリウム・ロンガム(Bifidobacterium longum)NK49を2017年8月4日に公認寄託機関である韓国微生物保存センター(アドレス:大韓民国、ソウル西大門区弘済内2街ギル45ユリムビル)に特許寄託してKCCM12088Pの受託番号を与えられた。
Claims (18)
- ラクトバチルス・プランタラムNK3(Lactobacillus plantarum NK3) KCCM12089P。
- ビフィドバクテリウム・ロンガムNK49(Bifidobacterium longum NK49) KCCM12088P。
- 前記ラクトバチルス・プランタラムNK3(Lactobacillus plantarum NK3) KCCM12089Pは、配列番号1の16S rDNA塩基配列を含む、請求項1に記載のラクトバチルス・プランタラムNK3(Lactobacillus plantarum NK3) KCCM12089P。
- 前記ビフィドバクテリウム・ロンガムNK49(Bifidobacterium longum NK49) KCCM12088Pは、配列番号2の16S rDNA塩基配列を含む、請求項2に記載のビフィドバクテリウム・ロンガムNK49(Bifidobacterium longum NK49) KCCM12088P。
- ラクトバチルス・プランタラムNK3(Lactobacillus plantarum NK3) KCCM12089P、ビフィドバクテリウム・ロンガムNK49(Bifidobacterium longum NK49) KCCM12088Pまたはこれらの混合物を含む炎症疾患の予防または治療用の薬学組成物。
- 前記ラクトバチルス・プランタラムNK3(Lactobacillus plantarum NK3) KCCM12089Pは、その生菌体、その死菌体、その培養物またはその破砕物である、請求項5に記載の炎症疾患の予防または治療用の薬学組成物。
- 前記ビフィドバクテリウム・ロンガムNK49(Bifidobacterium longum NK49) KCCM12088Pは、その生菌体、その死菌体、その培養物またはその破砕物である、請求項5に記載の炎症疾患の予防または治療用の薬学組成物。
- 前記炎症疾患は、関節炎、痛風、肝炎、喘息、肥満、角膜炎、胃炎、腸炎、腎臓炎、大腸炎、糖尿、結核、気管支炎、胸膜炎、腹膜炎、脊椎炎、膵臓炎、炎症痛、尿道炎、膀胱炎、膣炎、動脈硬化症、敗血症、火傷、皮膚炎、歯周炎および歯肉炎を含む群より選択されるいずれか一つ以上である、請求項5に記載の炎症疾患の予防または治療用の薬学組成物。
- 前記炎症疾患は大腸炎または膣炎である、請求項5に記載の炎症疾患の予防または治療用の薬学組成物。
- ラクトバチルス・プランタラムNK3(Lactobacillus plantarum NK3) KCCM12089P、ビフィドバクテリウム・ロンガムNK49(Bifidobacterium longum NK49) KCCM12088Pまたはこれらの混合物を含む炎症疾患の予防または改善用の健康機能食品。
- 前記ラクトバチルス・プランタラムNK3(Lactobacillus plantarum NK3) KCCM12089Pは、その生菌体、その死菌体、その培養物またはその破砕物である、請求項10に記載の炎症疾患の予防または改善用の健康機能食品。
- 前記ビフィドバクテリウム・ロンガムNK49(Bifidobacterium longum NK49) KCCM12088Pは、その生菌体、その死菌体、その培養物またはその破砕物である、請求項10に記載の炎症疾患の予防または改善用の健康機能食品。
- 前記炎症疾患は、関節炎、痛風、肝炎、喘息、肥満、角膜炎、胃炎、腸炎、腎臓炎、大腸炎、糖尿、結核、気管支炎、胸膜炎、腹膜炎、脊椎炎、膵臓炎、炎症痛、尿道炎、膀胱炎、膣炎、動脈硬化症、敗血症、火傷、皮膚炎、歯周炎および歯肉炎を含む群より選択されるいずれか一つ以上である、請求項10に記載の炎症疾患の予防または改善用の健康機能食品。
- 前記炎症疾患は大腸炎または膣炎である、請求項10に記載の炎症疾患の予防または改善用の健康機能食品。
- 炎症疾患の治療のための薬剤を製造するためのラクトバチルス・プランタラムNK3(Lactobacillus plantarum NK3) KCCM12089P、ビフィドバクテリウム・ロンガムNK49(Bifidobacterium longum NK49) KCCM12088Pまたはこれらの混合物の使用。
- 前記炎症疾患は、関節炎、痛風、肝炎、喘息、肥満、角膜炎、胃炎、腸炎、腎臓炎、大腸炎、糖尿、結核、気管支炎、胸膜炎、腹膜炎、脊椎炎、膵臓炎、炎症痛、尿道炎、膀胱炎、膣炎、動脈硬化症、敗血症、火傷、皮膚炎、歯周炎および歯肉炎を含む群より選択されるいずれか一つ以上である、請求項15に記載の使用。
- 炎症疾患の治療に用いるためのラクトバチルス・プランタラムNK3(Lactobacillus plantarum NK3) KCCM12089P、ビフィドバクテリウム・ロンガムNK49(Bifidobacterium longum NK49) KCCM12088Pまたはこれらの混合物を含む組成物。
- 前記炎症疾患は、関節炎、痛風、肝炎、喘息、肥満、角膜炎、胃炎、腸炎、腎臓炎、大腸炎、糖尿、結核、気管支炎、胸膜炎、腹膜炎、脊椎炎、膵臓炎、炎症痛、尿道炎、膀胱炎、膣炎、動脈硬化症、敗血症、火傷、皮膚炎、歯周炎および歯肉炎を含む群より選択されるいずれか一つ以上である、請求項17に記載の組成物。
Applications Claiming Priority (3)
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