JP6038167B2 - 口腔疾患を予防及び治療する組成物及び方法 - Google Patents
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Description
本願は、2011年10月31日付けで提出された米国特許出願第61/553,506号、2012年5月2日付けで提出された同第61/641,503号、及び2012年6月1日付けで提出された同第61/654,490号のそれぞれに対する利益及び優先権を主張するものである。
「抗微生物剤」という用語は、細菌及び酵母を含むがこれらに限定されない微生物を死滅させるか又は微生物の成長を抑制する化合物又は組成物を指す。
1つの方法によって、キレート剤と鉄封鎖糖タンパク質とを含む二成分組成物を形成する場合、これらの化合物を下記のように組み合わせることができる。十分に撹拌しながら、キレート剤を水に溶解した後、鉄封鎖糖タンパク質を溶解することができる。ただし、添加順序を逆にすることができることに留意されたい。
本発明は、少なくとも1つの鉄封鎖糖タンパク質と1つのキレート剤とを含む、口腔疾患の予防又は予防法に対して改良された口腔感染防止組成物を含む。
本発明の組成物を、洗口溶液、研磨用歯磨剤ゲル、義歯洗浄剤、非研磨用歯磨剤ゲル、義歯洗浄剤又は浸漬液、義歯接着剤又はセメント、チューインガム、キャンディ、ソフトドリンク及びスポーツドリンクを含むが、これらに限定されない、口腔への該組成物の送達に好適な多様な配合物に添加することができる。かかる配合物を提供するために、本発明の組成物を1つ又は複数の口腔に許容可能な担体及び/又は賦形剤と組み合わせる。
本発明の別の態様は、齲蝕、歯肉炎及び歯周炎を治療する方法を含む。概して、齲蝕及び歯周病は、1つ又は複数の齲蝕予防/抗微生物剤と組み合わせた、齲蝕、歯肉炎及び歯周炎に関連する口腔細菌を低減するのに効果的な量の鉄封鎖糖タンパク質及びキレート剤と被験体の口腔とを接触させることによって治療することができる。
96ウェルクリスタルバイオレット染色バイオフィルムアッセイを用いて、歯垢(バイオフィルム)形成に関与する齲蝕を引き起こす細菌に対するオボトランスフェリン(OT)とエチレンジアミン四酢酸二ナトリウム(NaEDTA)との組合せの阻害効果を求めた。簡潔に述べると、ストック培養物を、嫌気条件下において0.3%酵母エキス(THYE)と0.01%ブタ胃ムチン(pH7.0)とを含むトッドヒューイット培地中で成長させた。バイオフィルムを、96ウェルのCostar 3598マイクロタイタープレート(Corning Inc.、ニューヨーク州コーニング)において発生させた。静止状態のバイオフィルムの成長は、塩(58mM K2HPO4、15mM KH2PO4、10mM (NH4)2SO4、35mM NaCl、及び2mM MgSO4・7H2O)、ビタミン(0.04mM ニコチン酸、0.1mM ピリドキシンHCl、0.01mM パントテン酸、1μM リボフラビン、0.3μM チアミンHCl、0.05μM d−ビオチン)、アミノ酸(4mM L−グルタミン酸、1mM L−アルギニンHCl、1.3mM L−システインHCl、0.1mM L−トリプトファン)、0.2%カザミノ酸、及び20mM グルコース(pH7.0)を含む半規定(semi-defined)最小(SDM)培地に一晩培養物を3.3%で接種することによって開始させた。細菌をオボトランスフェリン(OT、125μg/ml)とEDTA二ナトリウム(NaEDTA、250μg/ml)との組合せの非存在(対照)又は存在下で成長させた。プレートを、ストレプトコッカス・ミュータンスUA159、ストレプトコッカス・ソブリナスHNG 909S、ストレプトコッカス・オラリスNCTC11472及びストレプトコッカス・サングイスNCTC10904とともに嫌気条件下において37℃で16時間インキュベートした。バイオフィルムの発生を、クリスタルバイオレット染色及び光学密度測定によって測定した。浮遊細胞を含む培地を捨て、バイオフィルムを1ウェル当たり200μlの水で1回リンスして、一晩風乾した。バイオフィルム細胞を200μlの0.4%(wt/vol)クリスタルバイオレットで15分間染色した。クリスタルバイオレットを除去して、ウェルを毎回200μlの水で3回リンスした。プレートを15分間風乾して、各ウェルの沈着物(stain)を200μlの33%酢酸中に可溶化して、630nmの吸光度を、マイクロタイタープレートリーダー(Multiskan Ascent、Labsystems、フィンランド、ヘルシンキ)を用いて測定した。各実験に対して、バックグラウンド染色を、接種していない対照に結合するクリスタルバイオレットを差し引くことで補正した。比較分析は全て、変動を最小限に抑えるために、同じ96ウェルマイクロタイタープレートにおいて異なる株をインキュベートすることによって実施した。OT(125μg/ml)とNaEDTA(250μg/ml)との組合せは、歯石及び齲蝕を引き起こす歯垢に関連する4つ全ての試験ストレプトコッカス種のバイオフィルムに対して有意な阻害効果を有していた(それぞれ、図1、図2、図3及び図4)。
96ウェルクリスタルバイオレット染色バイオフィルムアッセイを用いて、歯肉炎関連のバイオフィルム形成に対するオボトランスフェリン(OT)とエチレンジアミン四酢酸二ナトリウム(NaEDTA)との組合せの阻害効果を求めた。簡潔に述べると、グリセロールストックを、0.025%メナジオン(5mg/ml)、0.1%ヘミン(1mg/ml)及び5%ヒツジ血液が添加されたトリプチックソイ寒天(Tryptic Soy Agar)プレート上で嫌気条件下において48時間成長させた。液体培養物(25ml)を、0.1%ヘミン(1mg/ml)及び0.025%メナジオン(5mg/ml)が添加されたトッドヒューイット培地において嫌気条件下において(24時間)成長させた。バイオフィルムを、96ウェルのCostar 3598マイクロタイタープレート(Corning Inc.、ニューヨーク州コーニング)において発生させた。ポルフィロモナス・ジンジバリスW50の静止状態のバイオフィルムの成長を、(10mM Na2H2PO4、10mM KCl、2mM C6H8O7、1.25mM MgCl2、20μM CaCl2、0.1μM Na2MoO4、25μM ZnCl2、50μM MnCl2、5μM CuCl2、10μM CoCl2、5μM H3BO3(pH7.0に調整))を含む変法塩基本培地において10倍希釈で一晩培養物を接種することによって開始させた。この基本培地に、3%ウシ血清アルブミン、20mM α−ケトグルタル酸及び1%トリプトンを添加して、これを滅菌濾過し、0.1%ヘミン(1mg/ml)及び0.025%メナジオン(5mg/ml)を添加したものである。細菌をオボトランスフェリン(OT、125μg/ml及び500μg/ml)とEDTAナトリウム(NaEDTA、250μg/ml及び1000μg/ml)との組合せの非存在(対照)又は存在下で成長させた。プレートを嫌気条件下において37℃で48時間インキュベートした。バイオフィルムの発生を、クリスタルバイオレット染色及び光学密度測定によって測定した。浮遊細胞を含む培地を捨て、バイオフィルムを1ウェル当たり200μlの水で2回リンスして、1時間風乾した。バイオフィルム細胞を200μlの0.4%(wt/vol)クリスタルバイオレットで15分間染色した。クリスタルバイオレットを除去して、ウェルを200μlの水で2回リンスした。プレートを15分間風乾した後、200μlの33%酢酸中に可溶化して、630nmの吸光度を、マイクロタイタープレートリーダー(Multiskan Ascent、Labsystems、フィンランド、ヘルシンキ)を用いて測定した。各実験に対して、バックグラウンド染色を、接種していない対照に結合するクリスタルバイオレットを差し引くことで補正した。比較分析は全て、変動を最小限に抑えるために、同じ96ウェルマイクロタイタープレートにおいて全ての作用物質をインキュベートすることによって実施した[注釈:プラスチック製品及び培地は全て、最低でも実験前に48時間予め嫌気条件でインキュベートした]。OT(125μg/ml及び500μg/ml)とNaEDTA(250μg/ml及び1000μg/ml)との組合せは、歯肉炎に関連するポルフィロモナス・ジンジバリスのバイオフィルムに対して相当な阻害効果を有していた(図5a及び図5b)。
96ウェルクリスタルバイオレット染色バイオフィルムアッセイを用いて、歯周炎関連のバイオフィルム形成に対するオボトランスフェリン(OT)とエチレンジアミン四酢酸二ナトリウム(NaEDTA)との組合せの阻害効果を求めた。簡潔に述べると、グリセロールストックを、5%重炭酸ナトリウムが添加されたトリプチックソイ寒天プレート上で嫌気条件下において48時間成長させた。アグレガチバクター・アクチノミセテムコミタンスUT32の10個のコロニーを、これらのプレートから取り出し、200μlの新しい培養液に移した[トリプチックソイ培養液(30g/L)、酵母エキス(6g/L)、デキストロース(8g/L)]。10秒間ボルテックスを行い、200μlの培養液を2mlの新しい培養液へと移し、15秒間ボルテックスを行った。接種材料を5μM PVDFシリンジフィルター(Millex−SV、カタログ番号SLSVO25LS)に通した。バイオフィルムを、96ウェルのCostar 3598マイクロタイタープレート(Corning Inc.、ニューヨーク州コーニング)において発生させた。静止状態のバイオフィルムの成長を、新しい培養液中にある接種材料を用いて10倍希釈で接種することによって開始させた。細菌を、オボトランスフェリン(OT、125μg/ml)とEDTAナトリウム(NaEDTA、250μg/ml)との組合せの非存在(対照)又は存在下で成長させた。プレートを嫌気条件下において37℃で48時間インキュベートした。バイオフィルムの発生を、クリスタルバイオレット染色及び光学密度測定によって測定した。浮遊細胞を含む培地を捨て、バイオフィルムを1ウェル当たり200μlの水で1回リンスした直後に、200μlの0.4%(wt/vol)クリスタルバイオレットで1分間染色した。クリスタルバイオレットを除去して、ウェルを毎回200μlの水で3回リンスした。プレートを風乾して、各ウェルの沈着物を200μlの33%酢酸中に可溶化して、630nmの吸光度を、マイクロタイタープレートリーダー(Multiskan Ascent、Labsystems、フィンランド、ヘルシンキ)を用いて測定した。各実験に対して、バックグラウンド染色を、接種していない対照に結合するクリスタルバイオレットを差し引くことで補正した。比較分析は全て、変動を最小限に抑えるために、同じ96ウェルマイクロタイタープレートにおいて全ての作用物質をインキュベートすることによって実施した。OT(125μg/ml)とNaEDTA(250μg/ml)との組合せは、歯周炎に関連するアグレガチバクター・アクチノミセテムコミタンスのバイオフィルムに対する有意な阻害効果を有していた(図6)。
ストレプトコッカス・ミュータンス(歯垢及び齲蝕に関連する)、ストレプトコッカス・オラリス(歯垢及び齲蝕に関連する)、ポルフィロモナス・ジンジバリス(正:Porphyromonas gingivalis)(歯肉炎に関連する)、アグレガチバクター・アクチノミセテムコミタンス(歯周炎に関連する)、緑膿菌(Pseudomonas aeruginosa)(院内感染に関連する)及びバークホルデリア・マルティボランス(Burkholderia multivorans)(肺感染に関連する)を含む6種の生物についてのオボトランスフェリンとEDTA二ナトリウムとの組合せのMICを、96ウェルマイクロタイタープレートアッセイにおいて培養液微量希釈アッセイを用いることで求めた。簡潔に述べると、細菌株を、ストレプトコッカス種についてはTHYE培地、ポルフィロモナス・ジンジバリスについてはヘミン及びメナジオンが添加されたトッドヒューイット培養液、アグレガチバクター・アクチノミセテムコミタンスについては重炭酸ナトリウムが添加されたトリプチックソイ/酵母エキス培養液、並びに緑膿菌(P. aeruginosa)及びバークホルデリア・マルティボランス(B. multivorans)についてはルリア培養液中で嫌気条件又は好気条件において37℃で一晩成長させた後、105cfu/mLに希釈した。100mLという一定量の細菌懸濁液を各ウェルに添加した。次いで一定量(100mL)の組合せをマイクロタイタープレートのウェルの第1列に加えた。マイクロタイタープレートのウェルの内容物を、マルチピペッターを用いて混合し、二段階希釈を行い、所望の濃度の組合せを得た。プレートを嫌気条件下において37℃で24時間〜48時間インキュベートして、マイクロタイタープレートリーダー(Multiskan Ascent、Labsystems、フィンランド、ヘルシンキ)を用いて600nmで読み取った。MICは、成長が完全に阻害された最小抗微生物剤濃度として評価した。MIC値は、各濃度の組合せをプレーティングすることによってOD評価後に確認した。MICを試験した最大濃度は4000μg/ml(OT)/8000μg/ml(NaEDTA)であった。ストレプトコッカス・ミュータンス、ストレプトコッカス・オラリス、ポルフィロモナス・ジンジバリス及びアグレガチバクター・アクチノミセテムコミタンスについてのOT/NaEDTAの組合せのMICは250μg/ml(OT)/500μg/ml(NaEDTA)〜1000μg/ml(OT)/2000μg/ml(NaEDTA)と様々であったが、該組合せは、4000μg/ml(OT)/8000μg/ml(NaEDTA)と高い濃度であっても緑膿菌及びバークホルデリア・マルティボランスに対する効果はなかった(表1)。したがって試験結果から、齲蝕、歯肉炎及び歯周炎等の口腔疾患に関連する細菌に対するOTとNaEDTAとの組合せの選択的効力が実証される。
100mgのオボトランスフェリン又はラクトフェリンを250ml容のガラスボトルに取る。20mMシアノ水素化ホウ素ナトリウムを含み、5%ソルビトールを含む/含まない、100mMリン酸ナトリウムバッファー(pH5.0)を含有するバッファーを反応混合物に添加する。20kDaのメトキシ−ポリエチレングリコール−プロピオンアルデヒド(mPEG−アルデヒド)をタンパク質の上記の撹拌溶液に添加する。次いでmPEG−アルデヒドをタンパク質溶液の入ったボトルに移す。タンパク質濃度は5mg/mlに維持する。次に反応混合物を一晩2℃〜8℃で撹拌する。反応混合物を、バッファー中に5%ソルビトールを含む/含まない40mM酢酸ナトリウムバッファー(pH4.0)(容量は反応容量の5倍にする)を添加することによってクエンチする。粗反応混合物をサイズ排除クロマトグラフィ及びイオン交換樹脂によって精製し、MALDI質量分析法によって特性決定する。
オボトランスフェリン及びラクトフェリン等の鉄封鎖糖タンパク質を、僅かなプロリン又はロイシン残基をそれぞれ、フルオロプロリン又はヘキサフルオロロイシンに置き換えることによってフッ素化する。末端6×Hisタグを含む、標的タンパク質、すなわちオボトランスフェリン又はラクトフェリンを発現するIPTG誘導性ベクターを、大腸菌発現細胞株に移入する。抑制遺伝子lacIqを含まない発現ベクターを、lacIqをコードするpRE4で同時形質転換する。選択される発現細胞株は、アミノ酸が組換えタンパク質に取り込まれる栄養要求性である。Pro栄養要求性及びLeu栄養要求性の大腸菌株JM83及びJW5807−2をそれぞれ、フルオロプロリン及びヘキサフルオロロイシンの取り込みに使用する。選択されるアミノ酸アナログを取り込むのに、発現細胞株を、栄養要求性アミノ酸(0.05mM)と、発現プラスミドを維持するのに適切な抗生物質とが添加された50mlのM9最小培地中で振盪しながら37℃で一晩成長させる。一晩培養物を用いて、独立栄養性アミノ酸(0.035mM)と抗生物質とが添加された500mlのM9最小培地を接種する。栄養要求性アミノ酸が完全に枯渇するまで細胞を成長させた後、栄養要求性アミノ酸(1mM)及びIPTG(1mM)のフッ素化アナログを添加し、組換えタンパク質の合成を誘導する。細胞を12時間〜18時間振盪しながら37℃で更に培養させ、遠心分離によって回収する。細胞を、50μg/mlリゾチームと、1mM PMSFと、0.001% Igepalとを含む100mM リン酸Naバッファー中で再懸濁し、超音波処理して、氷上で30分間保存する。次いで溶解物にRNアーゼ(10μg/ml)及びDNアーゼ(5μg/ml)を添加して、室温で30分間インキュベートして、遠心分離によって透明にする。透明にした溶解物をNi−アガロースカラムに通し、100リン酸Naバッファーで洗浄して、フッ素化組換えタンパク質を100mMのリン酸Naバッファー中の0mM→100mMのイミダゾール勾配で溶出する。標的タンパク質を含む溶出画分をプールし、水で透析した後、凍結乾燥する。
100mgのポリD,L−ラクチド−コ−グリコリド(PLGA)及び100mgのオボトランスフェリン又はラクトフェリンを6mlのアセトンに溶解する。この溶液を20mlの0.15% SDS溶液に撹拌しながら滴加する。混合物を1時間撹拌し続け、20分間10000rpmで遠心分離して、ナノ粒子をペレット状にする。液体を捨て、ペレットを、毎回25mlの水で再懸濁することで3回洗浄した後、10000rpmで20分間遠心分離する。最後に、ペレットをドラフト内で風乾し、4℃で保存する。
多層リポソームを、Novaczek, et al. (1991 Aquatic Toxicology, 21 : 103-118)の処方に従って調製する。コレステロール、ステアリルアミン及びホスファチジルコリンの1:2:7μM混合物を用いて、オボトランスフェリン及びNaEDTAの水溶液を封入する。脂質混合物をクロロホルム中で調製し、ドラフト下で25mm径のガラス試験管の壁上で乾燥させる。次いでオボトランスフェリン−NaEDTA溶液を添加して、脂質膜が視認されなくなるまで混合物をボルテックスする。得られるリポソームを超遠心分離して、3回洗浄して、遊離オボトランスフェリン及びNaEDTAを除去する。
96ウェルクリスタルバイオレット染色バイオフィルムアッセイを用いて、歯垢(バイオフィルム)形成に関与する齲蝕を引き起こす細菌に対するラクトフェリン(LTF)単独、エチレンジアミン四酢酸二ナトリウム(NaEDTA)単独及びクエン酸ナトリウム(S.cit)単独、並びにそれらの組合せの阻害効果を求めた。簡潔に述べると、ストレプトコッカス・ミュータンスUA159及びストレプトコッカス・サングイス(ストレプトコッカス・サングイニス)NCTC10904のストック培養物を、嫌気条件下において0.3%酵母エキス(THYE)と0.01%ブタ胃ムチン(pH7.0)とを含むトッドヒューイット培地中で成長させた。バイオフィルムを、96ウェルのCostar 3598マイクロタイタープレート(Corning Inc.、ニューヨーク州コーニング)において発生させた。静止状態のバイオフィルムの成長は、塩(58mM K2HPO4、15mM KH2PO4、10mM (NH4)2SO4、35mM NaCl、及び2mM MgSO4・7H2O)、ビタミン(0.04mM ニコチン酸、0.1mM ピリドキシンHCl、0.01mM パントテン酸、1μM リボフラビン、0.3μM チアミンHCl、0.05μM d−ビオチン)、アミノ酸(4mM L−グルタミン酸、1mM L−アルギニンHCl、1.3mM L−システインHCl、0.1mM L−トリプトファン)、0.2%カザミノ酸、及び20mM グルコース(pH7.0)を含む半規定最小(SDM)培地に一晩培養物を3.3%で接種することによって開始させた。細菌をラクトフェリン(LTF、500μg/ml)単独、EDTA二ナトリウム(NaEDTA、2.5mg/ml)単独及びクエン酸ナトリウム(S.cit、3.2mg/ml)単独、並びにそれらの組合せの非存在(対照)又は存在下で成長させた。プレートを嫌気性条件下において37℃で16時間、インキュベートした。バイオフィルムの発生を、クリスタルバイオレット染色及び光学密度測定によって測定した。浮遊細胞を含む培地を捨て、バイオフィルムを1ウェル当たり200μlの水で1回リンスして、一晩風乾した。バイオフィルム細胞を200μlの0.4%(wt/vol)クリスタルバイオレットで15分間染色した。クリスタルバイオレットを除去して、ウェルを毎回200μlの水で3回リンスした。プレートを15分間風乾して、各ウェルの沈着物を200μlの33%酢酸中に可溶化して、630nmの吸光度を、マイクロタイタープレートリーダー(Multiskan Ascent、Labsystems、フィンランド、ヘルシンキ)を用いて測定した。各実験に対して、バックグラウンド染色を、接種していない対照に結合するクリスタルバイオレットを差し引くことで補正した。比較分析は全て、変動を最小限に抑えるために、同じ96ウェルマイクロタイタープレートにおいて異なる株をインキュベートすることによって実施した。LTF(0.5mg/ml)、NaEDTA(2.5mg/ml)及びS.cit(3.2mg/ml)の組合せは、歯石及び齲蝕を引き起こす歯垢に関連するストレプトコッカス・ミュータンス及びストレプトコッカス・サングイス(ストレプトコッカス・サングイニス)で試験した場合、バイオフィルムに対して有意な阻害効果を有していた(それぞれ、図7a及び図7b)。
96ウェルクリスタルバイオレット染色バイオフィルムアッセイを用いて、歯周炎関連のバイオフィルム形成に対するラクトフェリン(LTF)単独、エチレンジアミン四酢酸二ナトリウム(NaEDTA)単独及びクエン酸ナトリウム(S.cit)単独、並びにそれらの組合せの阻害効果を求めた。簡潔に述べると、グリセロールストックを、5%重炭酸ナトリウムが添加されたトリプチックソイ寒天プレート上で嫌気条件下において48時間成長させた。アグレガチバクター・アクチノミセテムコミタンスUT32の10個のコロニーを、これらのプレートから取り出し、200μlの新しい培養液に移した[トリプチックソイ培養液(30g/L)、酵母エキス(6g/L)、デキストロース(8g/L)]。10秒間ボルテックスを行い、200μlの培養液を2mlの新しい培養液へと移し、15秒間ボルテックスを行った。接種材料を5μM PVDFシリンジフィルター(Millex−SV、カタログ番号SLSVO25LS)に通した。バイオフィルムを、96ウェルのCostar 3598マイクロタイタープレート(Corning Inc.、ニューヨーク州コーニング)において発生させた。静止状態のバイオフィルムの成長を、新しい培養液中にある接種材料を用いて10倍希釈で接種することによって開始させた。細菌を、ラクトフェリン(LTF、0.5mg/ml)単独、EDTA二ナトリウム(NaEDTA、2.0mg/ml)単独及びクエン酸ナトリウム(S.cit、3.2mg/ml)単独、並びにそれらの組合せの非存在(対照)又は存在下で成長させた。プレートを嫌気条件下において37℃で48時間インキュベートした。バイオフィルムの発生を、クリスタルバイオレット染色及び光学密度測定によって測定した。浮遊細胞を含む培地を捨て、バイオフィルムを1ウェル当たり200μlの水で1回リンスした直後に、200μlの0.4%(wt/vol)クリスタルバイオレットで1分間染色した。クリスタルバイオレットを除去して、ウェルを毎回200μlの水で3回リンスした。プレートを風乾して、各ウェルの沈着物を200μlの33%酢酸中に可溶化して、630nmの吸光度を、マイクロタイタープレートリーダー(Multiskan Ascent、Labsystems、フィンランド、ヘルシンキ)を用いて測定した。各実験に対して、バックグラウンド染色を、接種していない対照に結合するクリスタルバイオレットを差し引くことで補正した。比較分析は全て、変動を最小限に抑えるために、同じ96ウェルマイクロタイタープレートにおいて全ての作用物質をインキュベートすることによって実施した。LTF(0.5mg/ml)、NaEDTA(2.0mg/ml)及びS.cit(3.2mg/ml)の組合せは、歯周炎に関連するアグレガチバクター・アクチノミセテムコミタンスのバイオフィルムに対する有意な阻害効果を有していた(図8)。
ラクトフェリン(LTF)、EDTA二ナトリウム(NaEDTA)及びクエン酸ナトリウム(S.cit)のそれぞれ単独並びにそれらの対(LTF及びNaEDTA、LTF及びS.cit、NaEDTA及びS.cit)並びに3つ全ての組合せ(LTF/NaEDTA/S.cit)のMBCを、ストレプトコッカス・サングイス(イヌ、歯垢関連)及びポルフィロモナス・カンジンジバリス(P. cangingivalis)(イヌ、イヌ歯肉炎関連)を含む2種の生物について、96ウェルマイクロタイタープレートアッセイにおける培養液微量希釈アッセイを用いた後にプレーティングを行い、細胞死を確認することによって求めた。簡潔に述べると、細菌株をストレプトコッカス種についてはTHYE培地、ポルフィロモナス・カンジンジバリスについてはヘミン及びメナジオンが添加されたトッドヒューイット培養液中で嫌気条件又は好気条件において37℃で一晩成長させた後、105cfu/mLに希釈した。100mLという一定量の細菌懸濁液を各ウェルに添加した。次いで一定量(100mL)の組合せをマイクロタイタープレートのウェルの第1列に加えた。マイクロタイタープレートのウェルの内容物を、マルチピペッターを用いて混合し、二段階希釈を行い、所望の濃度の組合せを得た。プレートを嫌気条件下において37℃で24時間〜48時間インキュベートして、マイクロタイタープレートリーダー(Multiskan Ascent、Labsystems、フィンランド、ヘルシンキ)を用いて600nmで読み取った。MBCは、成長が完全に阻害された最小抗微生物剤濃度として評価した。MBC値は、各濃度の組合せをプレーティングすることによってOD評価後に確認した。MBCを試験した最大濃度は20mg/ml(LTF)、8mg/ml(NaEDTA)及び112mg/ml(S.cit)であった。
96ウェルクリスタルバイオレット染色バイオフィルムアッセイを用いて、齲蝕を引き起こし、歯垢(バイオフィルム)を形成する細菌に対するラクトフェリン(LTF)、エチレンジアミン四酢酸二ナトリウム(NaEDTA)及びクエン酸ナトリウム(S.cit)配合物の阻害効果を求めた。歯周炎関連細菌も試験した。ストレプトコッカス・ミュータンスUA159、ストレプトコッカス・ソブリナスHNG 909S、ストレプトコッカス・ゴルドニSK120、及びストレプトコッカス・サングイス(ストレプトコッカス・サングイニス)NCTC10904のストレプトコッカス株を実施例10に記載のように成長させた。アグレガチバクター・アクチノミセテムコミタンスを実施例11に記載のように成長させた。LTF(0.5mg/ml)、NaEDTA(2.0mg/ml)及びS.cit(3.2mg/ml)の配合物は、歯石及び齲蝕を引き起こす歯垢に関連する4つ全ての試験ストレプトコッカス種と、歯周病に関連するアグレガチバクター・アクチノミセテムコミタンスのバイオフィルムに対して顕著な阻害効果を有していた(図9)。
12ウェルポリスチレンマイクロタイタープレートバイオフィルムアッセイを用いて、口腔疾患細菌に対するラクトフェリン(LTF)、エチレンジアミン四酢酸二ナトリウム(NaEDTA)及びクエン酸ナトリウム(S.cit)配合物の阻害効果を求めた。簡潔に述べると、ストレプトコッカス・ミュータンスUA159、ストレプトコッカス・サングイス(ストレプトコッカス・サングイニス)NCTC10904及びアグレガチバクター・アクチノミセテムコミタンスのバイオフィルムを12ウェルポリスチレンマイクロタイタープレート上に発生させ、バイオフィルムに埋包された口腔生菌をアッセイする迅速かつ単純な方法を提供した。最終濃度0.01%のブタ胃ムチンが添加された4倍希釈THYE培地を、ストレプトコッカス・ミュータンス及びストレプトコッカス・サングイス(ストレプトコッカス・サングイニス)のバイオフィルム培地(BM)として使用した。特別なBM[トリプチックソイ培養液(30g/L)、酵母エキス(6g/L)、デキストロース(8g/L)]をアグレガチバクター・アクチノミセテムコミタンスに使用した。バイオフィルムの成長を、2mlのBMの入った各ウェルに20μlの細胞懸濁液を接種することによって開始させ、12のウェルを以下のように設定した:対照2ウェル及び各処理2ウェル(Pet Dental、Slurp n fresh、Healthy mouth及び本配合物)及びブランク2ウェル。培養物を嫌気条件下において37℃で20時間インキュベートして、液体培地を除去した。ウェルを10mM PBSバッファー(pH7.2)で1回リンスして、バイオフィルムに埋包された細胞を15秒間緩やかに超音波処理することによって2mlのPBSバッファー中に回収し、希釈した後、THYEプレート上に塗布し、嫌気条件下において37℃でインキュベートした。バイオフィルムに埋包された生細胞を、48時間のインキュベーション後のコロニー形成単位(CFU)のカウントによって定量化した。LTF(0.5mg/ml)、NaEDTA(2.0mg/ml)及びS.cit(3.2mg/ml)の配合物が、市販の他の伴侶動物用オーラルケア製品よりも良好に作用した(図10a、図10b及び図10c)。
イヌについてのVOHC(米国獣医口膣衛生協議会(Veterinary Oral Health Council)、米国ペンシルバニア州)推奨の試験プロトコルを用いるin vivoでの予備効力研究の目的は、歯垢、歯石(タータ)及び歯肉炎の低減におけるLTF−NaEDTA−S.cit配合物の効果を実証することであった。同数のイヌ(ビーグル成犬)を対照群及び試験群に用いた。本研究でのイヌは全て、同程度のサイズであり、欠損歯がないものにした。イヌに麻酔をして、獣医によって各イヌに対して歯科清掃を行った。歯科清掃の後、研究を始める前にイヌの上顎及び下顎の両方について0レベルのスコアを付けた(歯垢及びタータが完全に存在しないことを意味する)。活性成分としてLTF(0.5mg/ml)、NaEDTA(2mg/ml)及びS.cit(3.2mg/ml)を含む配合物を試験群の通常の飲料水に添加し、対照群には通常の飲料水を与えた。試験期間、全てのイヌ(処理及び対照)に対照食餌(キッブル、乾燥状態で給餌した)を与えた。本研究では、対照とLTF−NaEDTA−S.cit配合物とで食物及び水の消費量と、更にはイヌの体重の変化とをモニタリングした。各イヌでスコア付けを行う歯は以下のものであった:上顎(I3、C、P3、P4、MI)、下顎(C、P3、P4、MI)。研究期間は14日であった。予備研究の結果から、歯垢、歯石/タータ及び歯肉炎の大幅な低減が示された(図11)。さらに、食物又は水の消費量及び体重には違いが見られず、このことから全てのイヌが良好な健康状態であったことが示唆される。この予備研究によって、イヌにおける歯垢及び歯周病に関連する細菌に対するLTF−NaEDTA−S.cit配合物の効力が実証される。
12ウェルポリスチレンマイクロタイタープレートバイオフィルムアッセイを用いて、口腔疾患細菌に対する可変濃度のNaEDTA(1mg/ml、0.5mg/ml及び0.25mg/ml)と、固定濃度のS.cit(3.2mg/ml)とを含む配合物の阻害効果を求めた。簡潔に述べると、ストレプトコッカス・ミュータンスUA159、ストレプトコッカス・ゴルドニ、ストレプトコッカス・サングイス(ストレプトコッカス・サングイニス)NCTC10904及びアグレガチバクター・アクチノミセテムコミタンスのバイオフィルムを12ウェルポリスチレンマイクロタイタープレート上に発生させ、バイオフィルムに埋包された口腔生菌をアッセイする迅速かつ単純な方法を提供した。最終濃度0.01%のブタ胃ムチンが添加された4倍希釈THYE培地を、ストレプトコッカス・ミュータンス、ストレプトコッカス・ゴルドニ及びストレプトコッカス・サングイス(ストレプトコッカス・サングイニス)のバイオフィルム培地(BM)として使用した。特別なBM[トリプチックソイ培養液(30g/L)、酵母エキス(6g/L)、デキストロース(8g/L)]をアグレガチバクター・アクチノミセテムコミタンスに使用した。バイオフィルムの成長を、2mlのBMの入った各ウェルに20μlの細胞懸濁液を接種することによって開始させ、12のウェルを以下のように設定した:対照3ウェル及び各処理3ウェル及びブランク3ウェル。培養物を嫌気条件下において37℃で20時間インキュベートして、液体培地を除去した。ウェルを10mM PBSバッファー(pH7.2)で1回リンスして、バイオフィルムに埋包された細胞を15秒間緩やかに超音波処理することによって2mlのPBSバッファー中に回収し、希釈した後、THYEプレート上に塗布し、嫌気条件下において37℃でインキュベートした。バイオフィルムに埋包された生細胞を、48時間のインキュベーション後のコロニー形成単位(CFU)のカウントによって定量化した。可変濃度のNaEDTAと固定濃度のS.citとを含む3つの試験配合物が、試験生物において異なる程度のバイオフィルムの低減を示した(図12a、図12b、図12c及び図12d)。
12ウェルポリスチレンマイクロタイタープレートバイオフィルムアッセイを用いて、口腔疾患細菌に対する固定濃度のNaEDTA(0.5mg/ml)及びS.cit(3.2mg/ml)と、可変濃度のZL(0.025mg/ml、0.050mg/ml及び0.1mg/ml)とを含む配合物の阻害効果を求めた。簡潔に述べると、ストレプトコッカス・サングイス(ストレプトコッカス・サングイニス)NCTC10904及びアグレガチバクター・アクチノミセテムコミタンスのバイオフィルムを12ウェルポリスチレンマイクロタイタープレート上に発生させ、バイオフィルムに埋包された口腔生菌をアッセイする迅速かつ単純な方法を提供した。最終濃度0.01%のブタ胃ムチンが添加された4倍希釈THYE培地を、ストレプトコッカス・サングイス(ストレプトコッカス・サングイニス)のバイオフィルム培地(BM)として使用した。特別なBM[トリプチックソイ培養液(30g/L)、酵母エキス(6g/L)、デキストロース(8g/L)]をアグレガチバクター・アクチノミセテムコミタンスに使用した。バイオフィルムの成長を、2mlのBMの入った各ウェルに20μlの細胞懸濁液を接種することによって開始させ、12のウェルを以下のように設定した:対照3ウェル及び各処理3ウェル及びブランク3ウェル。培養物を嫌気条件下において37℃で20時間インキュベートして、液体培地を除去した。ウェルを10mM PBSバッファー(pH7.2)で1回リンスして、バイオフィルムに埋包された細胞を15秒間緩やかに超音波処理することによって2mlのPBSバッファー中に回収し、希釈した後、THYEプレート上に塗布し、嫌気条件下において37℃でインキュベートした。バイオフィルムに埋包された生細胞を、48時間のインキュベーション後のコロニー形成単位(CFU)のカウントによって定量化した。可変濃度のZLと、固定濃度のNaEDTA及びS.citとを含む3つの試験配合物が、試験生物においてほぼ同程度のバイオフィルムの低減を示した(図13a及び図13b)。
12ウェルポリスチレンマイクロタイタープレートバイオフィルムアッセイを用いて、口腔疾患細菌に対するNaEDTA(0.025mg/ml及び0.5mg/ml)単独及びS.cit(1.6mg/ml及び3.2mg/ml)単独、並びにそれらの組合せの相乗阻害効果を求めた。簡潔に述べると、ストレプトコッカス・ミュータンス及びアグレガチバクター・アクチノミセテムコミタンスのバイオフィルムを12ウェルポリスチレンマイクロタイタープレート上に発生させ、バイオフィルムに埋包された口腔生菌をアッセイする迅速かつ単純な方法を提供した。最終濃度0.01%のブタ胃ムチンが添加された4倍希釈THYE培地を、ストレプトコッカス・サングイス(ストレプトコッカス・サングイニス)のバイオフィルム培地(BM)として使用した。特別なBM[トリプチックソイ培養液(30g/L)、酵母エキス(6g/L)、デキストロース(8g/L)]をアグレガチバクター・アクチノミセテムコミタンスに使用した。バイオフィルムの成長を、2mlのBMの入った各ウェルに20μlの細胞懸濁液を接種することによって開始させ、12のウェルを以下のように設定した:対照3ウェル及び各処理3ウェル及びブランク3ウェル。培養物を嫌気条件下において37℃で20時間インキュベートして、液体培地を除去した。ウェルを10mM PBSバッファー(pH7.2)で1回リンスして、バイオフィルムに埋包された細胞を15秒間緩やかに超音波処理することによって2mlのPBSバッファー中に回収し、希釈した後、THYEプレート上に塗布し、嫌気条件下において37℃でインキュベートした。バイオフィルムに埋包された生細胞を、48時間のインキュベーション後のコロニー形成単位(CFU)のカウントによって定量化した。予想外なことに、NaEDTAとS.citとの組合せは、個々の化合物と比較してより低い濃度でストレプトコッカス・ミュータンス及びアグレガチバクター・アクチノミセテムコミタンスのバイオフィルムのより多くの低減を示し、このことから2つの化合物間の強い相乗効果が示唆される(図14a、図14b、図14c及び図14d)。
Claims (17)
- (a)EDTAと、
(b)クエン酸ナトリウム、クエン酸カリウム及びクエン酸亜鉛の1つ又は複数から選択されるクエン酸塩と、
を含み、
キレート剤をEDTAとクエン酸の濃度の合計が400mg/lから4000mg/lであることを特徴とする、
細菌に関連する口腔内疾患を予防及び治療するための組成物。 - 前記EDTAが二ナトリウム塩又は四ナトリウム塩の形態である、請求項1に記載の組成物。
- (a)EDTAと、
(b)クエン酸ナトリウム、クエン酸カリウム及びクエン酸亜鉛の1つ又は複数から選択されるクエン酸塩と、
を含み、
EDTAとクエン酸の濃度の合計が300mg/lから3000mg/lであることを特徴とする、
細菌に関連する口腔内疾患を予防及び治療するための組成物。 - 前記細菌が、ストレプトコッカス・ミュータンス、ストレプトコッカス・ソブリナス、ストレプトコッカス・サングイス(サングイニス)、ストレプトコッカス・ゴルドニ、ストレプトコッカス・オラリス、ストレプトコッカス・ミチス、アクチノミセス・オドントリティカス(Actinomyces odontolyticus)、アクチノミセス・ビスコーサス(Actinomyces viscosus)、アグレガチバクター・アクチノミセテムコミタンス、ポルフィロモナス・ジンジバリス、プレボテラ・インテルメディア(Prevotella intermedia)、バクテロイデス・フォーサイス(Bacteroides forsythus)、トレポネーマ・デンティコラ(Treponema denticola)、フゾバクテリウム・ヌクレアーツム(Fusobacterium nucleatum)、カンピロバクター・レクタス(Campylobacter rectus)、アイケネラ・コローデンス(Eikenella corrodens)、ベイロネア種(Veillonella spp.)、ミクロモナス・ミクロス(Micromonas micros)、ポルフィロモナス・カンジンジバリス(Porphyromonas cangingivalis)、ヘモフィルス・アクチノミセテムコミタンス(Haemophilus actinomycetemcomitans)、アクチノミセス種、バチルス種、マイコバクテリウム種、フソバクテリウム種、ストレプトコッカス種、黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)、化膿レンサ球菌(Streptococcus pyogenes)、ストレプトコッカス・アガラクティエ(正:Streptococcus agalactiae)、プロテウス・ミラビリス(Proteus mirabilis)、クレブシエラ・ニューモニエ(Klebsiella pneumoniae)、大腸菌、アシネトバクター種、エンテロコッカス種、プレボテラ種、ポルフィロモナス種、クロスチジウム種、ステノトロホモナス・マルトフィリア(Stenotrophomonas maltophilia)及びカンジダ・アルビカンス(Candida albicans)からなる群より選択される、請求項1〜3のいずれか一項に記載の組成物。
- 水、緩衝液、安定化剤、結合剤、ゲル化剤、脱感作剤、歯牙漂白剤、歯垢沈着防止助剤、界面活性剤、フッ化物、薬草、ビタミン、ミネラル、抗微生物剤、抗生物質、pH調整剤、香料、安息香酸ナトリウム及び着色剤からなる群より選択される1つ又は複数の成分を更に含む、請求項1〜4のいずれか一項に記載の組成物。
- EDTAがEDTA二ナトリウムである、請求項1〜5のいずれか一項に記載の組成物。
- クエン酸ナトリウムとEDTA二ナトリウムとを含み、クエン酸ナトリウムとEDTA二ナトリウムの合計の濃度が400mg/lから4000mg/lである、口腔内疾患を予防及び治療するための組成物。
- 水、緩衝液、安定化剤、結合剤、ゲル化剤、脱感作剤、歯牙漂白剤、歯垢沈着防止助剤、界面活性剤、フッ化物、薬草、ビタミン、ミネラル、抗微生物剤、抗生物質、pH調整剤、香料、安息香酸ナトリウム及び着色剤からなる群より選択される1つ又は複数の成分を更に含む、請求項1〜7のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記ミネラルが、亜鉛塩、乳酸亜鉛、クエン酸亜鉛、グルコン酸亜鉛及び塩化亜鉛の1つ又は複数からなる群より選択される、請求項8に記載の組成物。
- 洗口液/リンス、噴霧剤、溶液、ゲル、水添加剤、研磨用/非歯磨剤ゲル、ペースト、義歯洗浄剤、義歯浸漬液、義歯接着剤又はセメント、チューインガム、キャンディ、ロゼンジ、ビスケット及びソフトドリンクの1つ又は複数として調製される、請求項1〜9のいずれか一項に記載の組成物。
- リポソーム系又はナノ粒子送達系を含む、請求項1〜10のいずれか一項に記載の組成物。
- 過炭酸ナトリウム又は過ホウ素酸ナトリウム、シリコーンポリマー、ラウリル硫酸ナトリウム;フッ化ナトリウム、フッ化第一スズ及びモノフルオロリン酸ナトリウムからなる群より選択されるオーラルケア化合物を更に含む、請求項1〜11のいずれか一項に記載の組成物。
- CSP、CSPアナログ、DispersinB、ナイシン、ラクトフェリシン、オボアルブミン、オボムコイド、硫酸プロタミン、クロルヘキシジン、塩化セチルピリジニウム、トリクロサン、塩化ベンザルコニウム、過酸化水素、没食子酸エピガロカテキン、ランソプラゾール、キシリトール、ソルビトール、オイゲノール、トリポリリン酸ナトリウム、クエン酸、クエン酸ナトリウム、クエン酸カリウム、クエン酸亜鉛、5−フルオロウラシル、シス−2−デセン酸、DNアーゼ I、プロテイナーゼK、銀、ガリウム及び抗微生物ペプチドからなる群より選択される感染防止化合物を更に含む、請求項1〜12のいずれか一項に記載の組成物。
- 家畜及び産業動物、並びに動物園の動物、スポーツ用動物又はペット動物、例えばイヌ、ウマ、ネコ、ウシ、ブタ及びヒツジの1種又は複数種を治療するために使用される、請求項1〜13のいずれか一項に記載の組成物の口腔使用を含む、口腔内疾患を予防又は治療する方法。
- 前記口腔内疾患が歯科バイオフィルムに関連するものである、請求項14に記載の方法。
- 前記口腔内疾患が、齲蝕、歯肉炎、歯周炎、口腔細菌感染及び疾患の1つ又は複数から選択される、請求項14又は15に記載の方法。
- 前記組成物への複数回曝露を更に含む、請求項14〜16のいずれか一項に記載の方法。
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