JP6035503B2 - ワクチンで使用するための、子宮頸部悪性腫瘍に浸潤するt細胞によって標的とされるhpvエピトープ - Google Patents
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Description
[1]HPV関連疾患の予防及び/又は治療用薬物の製造のためのペプチドの使用であって、
前記ペプチドが、100、98、96、94、92アミノ酸以下の長さを有し、HPV E6及びE7タンパク質のうち少なくとも1つのアミノ酸配列由来の少なくとも19個の連続したアミノ酸を含み、前記連続したアミノ酸配列が、HLA−DQ及びHLA−DP分子のうち少なくとも1つによって提示されるエピトープを含み、前記エピトープが、HLA−DQ2に関連して提示されず、且つHPV16 E7タンパク質のアミノ酸35〜50からなるエピトープではない、使用。
[2]連続したアミノ酸配列が、子宮頸部腫瘍性病変に浸潤するT細胞、又は流入領域リンパ節由来のT細胞によって認識されるエピトープを含む、上記[1]に記載の使用。
[3]エピトープがHPV E6タンパク質のエピトープである、上記[1]又は[2]に記載の使用。
[4]エピトープがHPV血清型16、18、31、33又は45、好ましくは16、18、31又は33、より好ましくは16又は18のエピトープである、上記[1]〜[3]のいずれかに記載の使用。
[5]エピトープが、配列番号6、5、7、9、10、11、12、13、16、18、19、20及び21からなる群から選択される、上記[1]〜[4]のいずれかに記載の使用。
[6]連続したアミノ酸配列の長さが、19〜45アミノ酸、好ましくは22〜35アミノ酸、より好ましくは33〜35アミノ酸である、上記[1]〜[5]のいずれかに記載の使用。
[7]HPV関連疾患の予防及び/又は治療用薬物の製造のためのペプチドの使用であって、前記ペプチドが、100アミノ酸以下の長さを有し、HPV E6及びE7タンパク質のうち少なくとも1つのアミノ酸配列由来の少なくとも19個の連続したアミノ酸を含み、前記連続したアミノ酸配列が、子宮頸部腫瘍性病変に浸潤するT細胞、又は流入領域リンパ節由来のT細胞によって認識されるエピトープを含む、使用。
[8]エピトープが、配列番号5〜26からなる群から選択される、上記[7]に記載の使用。
[9]エピトープが、配列番号7、14、22〜26からなる群から選択されるHLAクラスI CTLエピトープである、上記[8]に記載の使用。
[10]連続したアミノ酸配列が、HLA−B分子によって提示されるエピトープを含む、上記[7]に記載の使用。
[11]HLA−B分子が、HLA−B7、HLA−B14、HLA−B27又はHLA−B57分子である、上記[10]に記載の使用。
[12]エピトープが、配列番号7、22、24、25及び26からなる群から選択される、上記[11]に記載の使用。
[13]連続したアミノ酸配列が、HLA−A分子によって提示されるエピトープを含む、上記[9]に記載の使用。
[14]HLA−A分子が、HLA−A2、又はHLA * 0201分子である、上記[13]に記載の使用。
[15]エピトープが、配列番号23及び26からなる群から選択される、上記[14]に記載の使用。
[16]薬物が、上記[1]〜[8]のいずれかに定義される少なくとも2つの異なるペプチドを含む、上記[1]〜[15]のいずれかに記載の使用。
[17]薬物が、少なくとも1つのアジュバントをさらに含む、上記[1]〜[16]のいずれかに記載の使用。
[18]アジュバントが、Toll様受容体を介して作用する、上記[17]に記載の使用。
[19]薬物が、静脈内、皮下、筋肉内粘膜、真皮内及び/又は皮内投与用である、上記[1]〜[18]のいずれかに記載の使用。
[20]有効量の上記[1]〜[19]のいずれかに定義される薬物を、それを必要とする対象に投与することを含む、HPV関連疾患の予防及び/又は治療のための方法。
[21]上記[1]〜[15]のいずれかに定義されるペプチド。
[22]薬物として使用するための、上記[21]に記載のペプチド。
[23]上記[1]〜[15]のいずれかに定義されるペプチド及び薬学的に許容される担体を含む組成物。
[24]好ましくはToll様受容体を介して作用する少なくとも1つのアジュバントをさらに含む、上記[23]に記載の組成物。
[25]上記[1]〜[15]のいずれかに定義される少なくとも1つのペプチドをコードする核酸分子。
[26]配列番号5〜26からなる群から選択されるエピトープを認識するT細胞受容体をコードする核酸分子。
[27]上記[26]に記載の核酸分子を含む単離T細胞。
[28]配列番号5〜26からなる群から選択されるエピトープを認識するT細胞受容体を含む単離T細胞。
一態様において、本発明はしたがって、HPV由来合成ペプチドに加え、新たに同定されたHPVのCD4+Th及びCD8+CTL細胞エピトープのアミノ酸配列に関し、これらを含む免疫原性組成物もまた本発明の一部である。このようなペプチドは、広範なHPV関連悪性腫瘍を含むHPV関連疾患患者において投与時に、大いに改善、増強、及び延長されたCD8+CTLエフェクター及び記憶応答をもたらす。このようなペプチドはまた、このCD4+Th応答の結果として、エフェクター細胞がより浸潤しやすい、大いに改善された炎症誘発性微小環境を誘導することもできる。
好ましい実施形態において、全て本明細書で定義されている本発明において使用されるペプチド又はペプチドを含む組成物又は薬物は、真皮内投与又は適用に適するように処方される。真皮内とは、当業者に既知である。本発明の文脈において、真皮内は皮内と同義であり、皮下とは異なる。物質の最も表面的な適用は、上皮(皮膚上)であり、次いで真皮内適用(皮膚内又は皮膚中へ)、次いで皮下適用(皮膚のすぐ下の組織内)、次いで筋肉内適用(筋肉本体中へ)となる。真皮内適用は通常、注射により投与される。物質の真皮内注射は通常、物質に対して起こり得る反応、アレルギー及び/又は細胞性免疫を試験するために行われる。皮下適用もまた通常、注射により投与され、例えば、皮膚の下の組織内に針を注射する。
1.方法
1.1 対象
the Leiden University Medical Centre and Leyenburg Hospital the Hagueの婦人科において組織学的に証明された子宮頸部腫瘍を示す女性を、インフォームドコンセントを与えた後にHPV16陽性子宮頸部病変に対する細胞性免疫を調べるCIRCLE試験に登録した。試験設計は両方の病院の医療倫理委員会(Medical Ethical Committees)によって承認された。外科的切除組織試料から単離したDNAにHPV16及びHPV18特異的プライマーを使用して、HPV状態に関して対象を試験した(Claas et al. 1989)。HLA拘束分析用の末梢血単核細胞(PBMC)を、インフォームドコンセント後にHLAタイプの匿名の健常な血液ドナーから得た。
HPV16及びHPV18のE6及びE7タンパク質の両方にまたがる一組の重複するペプチドを、T細胞刺激アッセイに使用した。HPV16及びHPV18のE6及びE7は22merの重複する12残基からなっていた。初期に記載されたのと同様にペプチドを合成し溶解させた(van der Burg et al. 2001、Welters et al. 2006)。組換え体HPV E6及びE7タンパク質は、初期に記載されたのと同様に組換え体大腸菌において生成した(van der Burg et al. 2001)。さらに、HPV16 E6とE7の両方の一組の重複する10mer(重複する9アミノ酸)を生成して、HPV16特異的T細胞によって認識される最小ペプチドエピトープの位置を正確に示した。
患者のエプスタインバールウイルス形質転換B細胞系(B−LCL)を、10%のFCSを含有するIMDM中に維持した。単球は初期に記載されたのと同様に末梢血リンパ球から作製した(de Jong et al. 2002)。
子宮頸部腫瘍生検を広汎子宮全摘術後に得て、子宮頸部腫瘍組織は生検後にCINIII患者から得た。新たな頸部組織を約1mm3の切片に刻み、10%のヒトAB血清(Sigma社製、St.Louis MO、USA)、10%のT細胞増殖因子(TCGF,T cell growth Factor、Zeptometrix社製、Buffalo NY、USA)及び5ng/mlのIL−15(Peprotech社製、Rocky Hill NJ、USA)を補充したIMDM(BioWhittaker社製、Verviers、ベルギー)中で培養した。第1日中、5ng/mlのIL−7(Peprotech社製)を培養物に加えてT細胞増殖を確実にした。2〜3週間後、T細胞(TIL、CIL)培養物の特異性を試験し、照射した自己B−LCLと5μg/mlの同種ペプチドの混合物を使用して陽性培養物を増殖した。
T細胞培養物(1ウェル当たり25,000〜50,000個の細胞)を、3日間の増殖アッセイ中三連でHPV16及び18のE6及びE7ペプチド(5μg/ml)及びタンパク質(10μg/ml)の認識に関して、パルス標識した自己単球又は照射した自己EBVで試験した。48時間後、上清を採取し、サイトカイン分析用に−20℃で保存した。培養の最後の16時間中に、1ウェル当たり0.5μCiの[3H]チミジンを加えて増殖を測定した(van der Burg et al. 2001)。抗原特異的IFNγ産生は初期に記載されたのと同様にELISAによって測定した(van der Burg et al. 1999)。
2.1 HPV特異的T細胞は子宮頸部腫瘍浸潤性リンパ球中に存在する
本試験において、本発明者らは、HPV特異的T細胞がそれらの同種抗原と遭遇しそれらのエフェクター機能を発揮すべき部位である、子宮頸部腫瘍性病変中での、HPV16及びHPV18特異的T細胞の存在、タイプ及び特異性を分析した。全体で74名の患者を分析した。頸部組織は、子宮頸癌を有する61名の患者から、及びCINIIIを有する9名の追加的患者から得た。組織の刻んだ切片は、IL−15及びTCGFを含有するサイトカインの混合物の存在下で2〜3週間培養した。腫瘍特異的T細胞の増殖の考えられる偏りを妨げるために、外来性HPV抗原をこれらの培養物に与えることはなかった。培養の第14〜21日以内に、サイトカイン増殖T細胞を採取し、FACSによって分析した。これらの培養物中に存在するCD3+T細胞の平均率は、第2週の41%から第3週の68%まで増大した。一般に、第2週又は第3週(それぞれ38%±21%;48%±24%)のCD3+CD4+T細胞(34%±22%)とCD3+CD8+T細胞(52%±22%)の割合によって示されたように、この培養法は1タイプのT細胞の選択的増殖に好ましくなかった。個々の培養物は、CD4+又はCD8+T細胞のいずれかのさらに顕著な増殖を示す場合もあった(図示せず)。HPV特異的T細胞の存在を分析するために、HPV16及びHPV18のE6及びE7タンパク質にまたがる重複するペプチドの異なるプール、及びそれぞれの組換え体タンパク質でパルス標識した自己単球で培養物を刺激した。51名のHPV16又はHPV18陽性患者の19名中で、本発明者らは増殖によりHPV特異的T細胞を検出することができた(表1、図1a)。これらの培養物はペプチド及びタンパク質負荷単球の両方に応答し、T細胞が自然にプロセシングされた抗原を認識したことを示した。8個の培養物においてE6特異的T細胞を検出し、10個の培養物においてT細胞はE7に応答し、1個のT細胞培養物においてE6とE7の両方に対する応答を検出した。重要なことに、HPV16及び18陰性頸部組織(n=19)中ではHPV16又は18特異的T細胞応答は検出せず、これにより観察したHPV16及び18特異的応答はインビトロで誘導されなかったことが示された(表1)。
HPV特異的反応性の評価後、19の応答T細胞系を同種ペプチド、サイトカイン混合物及びフィーダー細胞での刺激によって増殖した。これらのHPV特異的培養物の15個は、さらなる分析用に十分増殖することができた。HPV特異的T細胞の優れた特異性を、単一のペプチドを使用して短期の刺激アッセイにおいて決定した。5個の培養物が2個以上の異なるペプチドを認識し、一方他の10個の培養物は単一のペプチドを認識した(図1b、表1)。抗原刺激に応答したT細胞のタイプを評価するために、T細胞培養物をそれらの同種ペプチド及びタンパク質抗原で刺激し、且つ応答は細胞内IFNγ染色によって分析した(図2)。大部分のTIL培養物は、HPV特異的CD4+浸潤性Tリンパ球を含有しており(n=13名の患者、13の異なるペプチドを認識した)、一方HPV特異的CD8+T細胞浸潤性リンパ球は6個の培養物中に見られた。HPV特異的T細胞系の9個ではCD4+T細胞応答のみを検出し、4個のT細胞系ではCD4+T細胞とCD8+T細胞の両方が反応し、且つ2個のT細胞系ではCD8T細胞の応答のみを検出した(表1、図2)。
CD8+T細胞及びCD4+T細胞に対するHPVペプチドの提示と関連するHLAクラスI及びII遺伝子座を、遮断抗体及び健常ドナーから単離した部分的HLA適合APCを使用して試験した。広く様々なHLAクラスII分子は、HPV16及びHPV18の抗原E6及びE7の提示と関連することが分かった(表2)。HLA−DR、HLA−DQ及びHLA−DPに対する遮断抗体の使用によって、検出した応答のうち3つはHLA−DRによって拘束され、3つはHLA−DQによって拘束され、3つはHLA−DPによって拘束されたことが明らかになった(図3a、表2)。HPV抗原の提示と関連する正確なHLA拘束エレメントを決定するために、ただ1つのHLA対立遺伝子に適合する健常ドナー由来のAPCを使用した(図3)。6例において本発明者らは、拘束エレメントを正確に決定することができなかった。
腫瘍流入領域リンパ節はHPV特異的T細胞が初回抗原刺激及び活性化される部位であり、したがって、HPV特異的T細胞応答も、6名の異なる子宮頸癌患者由来の腫瘍流入領域リンパ節において試験した。リンパ節単核細胞(LNMC,lymph node mononuclear cell)の単細胞懸濁液は、そのリンパ節の転移を示す子宮頸癌患者から単離した。本発明者らは、新たに単離したLNMCにおけるHPV特異的エクスビボ応答を直接検出することはできなかった(データ示さず)。したがって、LMNCはHPV16又は18のE6及びE7ペプチドプールを用いた1ラウンドのインビトロ刺激によって最初に増殖した。4例においてLNMCはHPV16に応答し、1名の患者では、HPV18応答は増殖及びIFNγ産生によって検出した(表1、図4A)。TIL培養物と同様に、HPV16陽性腫瘍を有する患者はHPV16にのみ反応し、一方HPV18陽性子宮頸癌と診断された患者はHPV18に対してのみ反応した。LNMCをインビトロでHPV16及びHPV18ペプチドを用いて刺激したという事実にもかかわらず(表1)、HPV16/18陰性患者由来のLMNCにおいてHPV16又はHPV18のいずれに対する応答も検出しなかった。これらのLNMC培養物から単離したT細胞クローンは、それらの優れた特異性及びHLA拘束エレメントに関して特徴付けした。CD4+T細胞の反応性は10個の異なるペプチドに見られ、そのうちの7個はTIL培養物中では検出しなかった。これらのエピトープの3個はHLA−DQによって拘束され、且つ他の4個はHLA−DPによって拘束された。さらに、1個のHLA−A*0201拘束及び1個のHLA−B14拘束CD8+T細胞エピトープを同定した(表2)。図4はLNMC培養物の分析の一例を示す。1ラウンドの刺激後、LNMC培養物はHPV16 E6ペプチド又は組換え体タンパク質のプールを負荷したAPCに特異的に応答した(図4A)。単一のペプチドに対する反応性の分析は広範囲のレパートリーのペプチドの認識を示し(図4B)、この培養物から単離したCD4+及びCD8+T細胞クローンは、組換え体タンパク質から自然にプロセシングされたときそれらの同種抗原を認識した(図4C)。HLAクラスII遮断抗体及び部分的適合ドナー由来のAPCを使用して拘束をさらに決定した(図4D)。
HPV16コードオンコプロテインE6及びE7は、動物モデル中で腫瘍拒絶抗原として機能することができ(Zwaveling et al. 2002、Peng et al. 2005)、それらは子宮頸癌における腫瘍浸潤性リンパ球の標的抗原として機能することもできることが示唆されるが、これは患者の大規模集団では決して系統的に分析されていない。本発明者らは、子宮頸癌と最も顕著に関連するHPV型であるHPV16及びHPV18に対して、反応性がある多数のTIL及びCIN浸潤性リンパ球(CIL,CIL-infiltrating lymphocyte)培養物を樹立することができた(Bosch et al. 1995、Munoz et al 2003)。使用したサイトカイン混合物は、いずれかのタイプのT細胞の増殖に関する明らかな優先傾向なしでCD4T細胞とCD8T細胞の両方の増殖を確実にした。本発明者らの試験の経過中、HPV16又はHPV18以外のHPV型に陽性の腫瘍と診断された患者から19のTIL培養物を樹立した。これらの培養物はいずれも、HPV16又はHPV18のE6及びE7抗原を用いた刺激に反応しなかった。特に、HPV16陽性患者由来のTIL及びCILはHPV18のE6及びE7に応答せず、逆も然りであった(表1)。したがって、HPV16又はHPV18陽性患者のTIL及びCILにおいて観察したHPV特異的T細胞応答は、インビトロで誘導されたT細胞応答の結果ではなく、インビボでの抗腫瘍反応を反映するものである。近年本発明者らは、卵巣癌を有する患者の小コホート由来のTIL培養物の増殖においても、このプロトコルは成功したことを示した(Lambeck et al. 2007)。
材料及び方法
試験設計
上腕中の臨床用HPV16ペプチドのプールの真皮内注射によって測定したHPV16 E2、E6、及びE7特異的T細胞応答を分析するための横断的(cross-sectional)パイロット試験を、頸部のHPV関連障害を有する患者及び健常個体において実施した。遅延型過敏反応は記憶T細胞応答を示すので、分析時にHPV16陽性に関する要件は存在しなかった。
インフォームドコンセントを与えた後に、一群の19名の健常個体(HD,healthy individual)がこの試験に参加した。この群の健常個体は31歳の平均年齢(範囲、20〜51歳)を示し、80%の女性及び20%の男性で構成されていた。末梢血単核細胞(PBMC)は、皮膚試験の投与の直前に全ての対象から得た。健常個体における皮膚試験の陽性の後期出現により、19名の健常ボランティアの11名から第2の血液試料を単離した。試験設計はthe Leiden University Medical Centreの医療倫理委員会(Medical Ethical Committees)によって承認された。
遅延型過敏反応(DTH,Delayed Type Hypersensitivity)に基づく皮膚試験を、HPV特異的細胞性免疫応答のインビボ測定用の高感度及び簡潔な方法として使用することができる(Hopfl, 2000、Hopfl, 1991)。皮膚試験用調製物は、HPV16 E6及びE7タンパク質全体及びHPV16 E2タンパク質の大部分の免疫原性領域にまたがる長鎖の臨床用合成ペプチドの8プールからなっていた(de Jong, 2004)。これらの臨床用ペプチドは、LUMCの部門間GMP施設において生成された。皮膚試験のそれぞれのプールは、ペプチドによって含まれるタンパク質中の領域の最初と最後のアミノ酸によって示される、2又は3の合成ペプチドからなっていた。プール1:E231〜60、E246〜75、プール2:E2301〜330、E2316〜345、プール3:E61〜31、E619〜50、プール4:E641〜65、E655〜80、E671〜95、プール5:E685〜109、E691〜122、プール6:E6109〜140、E6127〜158、プール7:E71〜35、E722〜56、プール8:E743〜77、E764〜98。プール3は配列番号5、22及び23を含む。プール4は配列番号7〜9を含む。プール5は配列番号11及び12を含む。プール6は配列番号13、14、24及び25を含む。プール7は配列番号15及び26を含む。プール8は配列番号16及び17を含む。ペプチドプール1つ当たり、16%DMSOを含む20mMの等張リン酸緩衝液(10μg/ペプチド)に溶かした0.2mg/mlペプチドの0.05mlを皮内注射した。ペプチド及び陰性対照(溶媒のみ)のプールを、上腕の個々の皮膚試験部位に別々に注射した。皮膚試験部位は少なくとも3回、ペプチド(Hopfl)の注射後72時間及び7日、及び第1健常対象の1名における非常に後期の皮膚反応の最初の報告後3週間で調べた。注射後2日以内に直径2ミリメートルを超える丘疹が生じたとき、反応は陽性であると考えた。陽性皮膚反応部位から、パンチ生検(4mm)を得て、小片に切断し、10%のヒトAB血清、10%のTCGF及び5ng/nlのIL7及びIL15を含有するIMDM中で培養して、皮膚組織からのリンパ球の移出を可能にした。培養の2〜4週間後、増殖したT細胞を採取し、それらのHPV特異的反応性に関して試験した。
皮膚試験中で使用したペプチドと同様の一組のペプチドを、T細胞刺激アッセイ及びIFNγ−ELISPOTアッセイに使用した。4個のHPV16 E2ペプチドは30merペプチドの重複する15残基からなっており、HPV16 E6は32mer、HPV16 E7は35mer、いずれも重複する14残基からなっていた。以前に記載されたのと同様に(van der Burg, 1999)ペプチドを合成及び溶解した。特に、IFNγELISPOTアッセイでは、ペプチドプール4及び5は皮膚試験中で使用したペプチドプールと若干異なっており、プール4はペプチドE637〜68、E655〜86、E673〜104を含有し、且つプール5はペプチドE673〜104、E691〜122を含んでいた。
以前に記載されたように(van der Burg, 2001)ELISPOTによってHPV16特異的Th細胞の存在を分析した。簡単に言えば、新たなPBMCを、示したHPV16 E2、E6及びE7ペプチドプールの有無の下で、10%ヒトAB血清を補充した1mlのIMDM(Bio Whittaker社製、Verviers、ベルギー)中、24ウェルプレート(Costar社製、Cambridge、MA)の1ウェル当たり2×106個細胞の密度で接種した。ペプチドは5μg/ml/ペプチドの濃度で使用した。37℃でのインキュベーションの4日後、PBMCを採取し、洗浄し、IFNγ捕捉抗体(Mabtech社製、Nacha、スウェーデン)でコーティングしたMultiscreen96ウェルプレート(Millipore社製、Etten-Leur、オランダ)中、10%FCSを補充した100μlのIMDM中、1ウェル当たり105個細胞の密度で四連のウェルに接種した。ELISPOTのさらなる抗体のインキュベーション及び発色は、製造者の説明書(Mabtech社製)に従い実施した。完全自動化コンピュータ支援ビデオ画像システム(Bio Sys)を用いてスポットを計数した。実験ウェル中の平均スポット数から平均スポット数に培地対照の2×SDを加算したものを引くことによって、特異的スポットを計算した(van der Burg, 2001)。
皮膚生検のT細胞培養物を、3日間の増殖アッセイ中の特異的ペプチド及びタンパク質の認識に関して試験した(van der Burg, 2001)。簡単に言うと、37℃でのエクスビボ15培地(Cambrex社製)中での2時間中の平底96ウェルプレートへの付着によって、PBMCから自己単球を単離した。単球はAPCとして使用し、10μg/mlのペプチド及び20μg/mlのタンパク質を一晩負荷した。皮膚試験用浸潤性リンパ球を、10%AB血清を補充したIMDM中、1ウェル当たり2〜5×104個細胞の密度で接種した。単独培地は陰性対照として採取し、フィトヘマグルチン(0.5μg/ml)は陽性対照として働いた。増殖は[3H]チミジン(5μCi/mmol)の取り込みによって測定した。増殖応答は刺激指数(SI)が3以上であったとき特異的であると定義した。増殖アッセイの上清を、抗原特異的サイトカイン産生の分析用にインキュベーション後48時間で採取した。
6個の異なるTh1及びTh2サイトカイン、IFNγ、腫瘍壊死因子α、インターロイキン2(IL2)、IL4、IL5及びIL10の同時検出を、製造者の説明書に従いサイトメトリックビーズアレイ(Becton Dickinson社製)を使用して実施した。カットオフ値は、異なるサイトカインの標準曲線(100pg/mlのIFNγ、残りのサイトカインに関して20pg/ml)に基づいた。抗原特異的サイトカイン産生は、カットオフレベルを超え培地対照濃度の2倍より大きいサイトカイン濃度として定義した(de Jong, 2004)。
陽性皮膚反応部位由来のT細胞培養物の特異性及び特徴を、前に報告されたように(de Jong, 2005)ICSによって試験した。簡単に言えば、皮膚試験用浸潤性リンパ球を採取し、洗浄し、10%AB血清を含むIMDM中に懸濁し、且つ2〜5×104個細胞を、エクスビボ培地において50μlのペプチド(10μg/ml)又はタンパク質(20μg/ml)で一晩パルス標識した自己単球に加えた。単独培地は陰性対照として採取し、フィトヘマグルチン(0.5μg/ml)は陽性対照として働いた。試料はFITC標識マウス抗ヒトIFNγ(0.5g/ml、BD PharMingen社製)、PE標識マウス抗ヒトIL5(0.2mg/ml、BD PharMingen社製)、APC標識抗CD4(BD Bioscience社製)及びPerCP標識抗CD8(BD Bioscience社製)で同時に染色した。4℃でのインキュベーション後、細胞を洗浄し、1%パラホルムアルデヒドで固定し、フローサイトメトリー(FACSscan、BD Bioscience社製)によって分析した。
フィッシャーの正確確立検定(両側)を使用して、PBMCにおけるIFNγ産生HPV特異的T細胞の検出、皮膚試験反応の存在、又は皮膚生検中のHPV特異的T細胞の存在の間の関係、並びにこれらの群内の皮膚反応の大きさ又は数に関する患者と健常対照の間の違いを分析した。統計分析はGraphpad Instatソフトウェア(バージョン3.0)及びGraphpad Prism4を使用して実施した。
HPV16 E2、E6−及びE7ペプチドを用いた皮内注射に対する皮膚反応
本発明者らは、HPV16 E2、−E6及び−E7ペプチドを用いた皮内注射後の健常対照中の皮膚反応を試験した。陽性皮膚反応は直径2〜20ミリメートルの扁平状赤色丘疹として現れ、注射後2〜25日以内に生じた。陽性皮膚反応は、皮膚試験中の152名の健常ボランティアの46名において検出した。全体として、皮膚試験中のそれぞれのペプチドプールは陽性皮膚反応をもたらすことができた。最も頻繁に、E231〜75(対象19名中10名)、E637〜104(9/16)及びE743〜98(7/19)に対する反応を対照群中で観察した。この反応パターンは、本発明者らがPBMCにおいて以前に観察した反応パターンと似ている(de Jong, 2002、Welters, 2003)(図5)。これらの皮膚反応は、これらの個体のPBMCにおいて検出したのと同様に、ペプチド特異的T細胞応答の存在に対応した(データ示さず)。
皮膚試験の結果と血中HPV16特異的1型T細胞の存在を比較するために、IFNγELIspotアッセイを、真皮内ペプチド曝露を行う前に回収したPBMCを用いて実施した。19名の健常ボランティアのうち5名において、本発明者らはIFNγ−ELIspotによってHPV16特異的免疫応答を検出することができた。健常個体の事前曝露血液試料中の、100.000個のPBMC当たり5個以上の血中HPV16特異的T細胞の検出は、同じペプチド配列に対する初期(13日以内)の陽性皮膚反応と関係があった(p=0.0003、両側のフィッシャーの正確確立検定;図6)。後期の陽性皮膚反応(第14〜25日)を誘導したペプチドとの事前曝露血液試料の健常ドナー中で、HPV16特異的血中T細胞は検出しなかった。これは、血中抗原特異的細胞の頻度は、皮膚反応の遅延時間の出現を決定することを示唆する。
健常ボランティアの陽性皮膚反応の約25%は、血中のHPV16特異的IFNγ産生T細胞の検出と関係がなく、他の、非IFNγ産生タイプのT細胞が、HPV16ペプチドの真皮内注射後に皮膚に浸潤する可能性があることが示唆された。
皮膚試験は、インビボでの細胞仲介免疫の測定用の簡潔なアッセイとして一般的に使用する。本発明者らは、インビボでの初期抗原E2、E6及びE7に対するHPV16特異的細胞性免疫応答を、これらの結果とインビトロアッセイによるT細胞反応性の平行測定の結果を比較することによって測定するための、皮膚試験アッセイの使用を確認した。
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Claims (9)
- 子宮頸部(CIN,cervix)、外陰部(VIN,vulva)、膣(VaIN,vagina)、肛門(AIN,anus)、及び陰茎(PIN,penis)の頸部上皮内腫瘍形成、並びに子宮頸部、外陰部、膣、肛門、陰茎及び頭頸部の癌から選択されるHPV関連疾患の予防及び/又は治療用薬物の製造のための組成物の使用であって、
前記組成物が、配列番号1に示されるアミノ酸配列からなるHPV16 E6タンパク質の91〜122番目のアミノ酸残基からなるペプチドと、配列番号1に示されるアミノ酸配列からなるHPV16 E6タンパク質の85〜109番目のアミノ酸残基からなるペプチドとを含む、使用。 - 薬物が、少なくとも1つのアジュバントをさらに含む、請求項1に記載の使用。
- アジュバントが、Toll様受容体を介して作用する、請求項2に記載の使用。
- 薬物が、静脈内、皮下、筋肉内粘膜、真皮内及び/又は皮内投与用である、請求項1〜3のいずれかに記載の使用。
- 子宮頸部(CIN,cervix)、外陰部(VIN,vulva)、膣(VaIN,vagina)、肛門(AIN,anus)、及び陰茎(PIN,penis)の頸部上皮内腫瘍形成、並びに子宮頸部、外陰部、膣、肛門、陰茎及び頭頸部の癌から選択されるHPV関連疾患の予防及び/又は治療剤であって、配列番号1に示されるアミノ酸配列からなるHPV16 E6タンパク質の91〜122番目のアミノ酸残基からなるペプチドと、配列番号1に示されるアミノ酸配列からなるHPV16 E6タンパク質の85〜109番目のアミノ酸残基からなるペプチドとを含む、予防及び/又は治療剤。
- 薬物として使用するための、請求項5に記載の予防及び/又は治療剤。
- 請求項5に定義される予防及び/又は治療剤、及び薬学的に許容される担体を含む組成物。
- 少なくとも1つのアジュバントをさらに含む、請求項7に記載の組成物。
- アジュバントが、Toll様受容体を介して作用する、請求項8に記載の組成物。
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