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JP5422125B2 - センサー周辺の溶液環境を迅速に変化させるシステム及び方法 - Google Patents

センサー周辺の溶液環境を迅速に変化させるシステム及び方法 Download PDF

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Description

（関連出願）
本願は、２００２年２月１２日出願の米国特許仮出願第６０／３５６，３７７号、２００３年１月１５日出願の米国特許出願第１０／３４５，１０７号、及び２００５年１月６日出願の米国特許出願第１１／０３１，５１３号の優先権を主張する。
本発明は、細胞ベースのバイオセンサーのようなセンサーへの、水性流又は他の流体流の迅速かつプログラム可能な送達システム及び方法に関する。特に、本発明は、受容体タンパク質の機能を調節及び検討する（studying）方法、及び異なる状態にあるそのような受容体を調製する方法を提供する。また、本発明は、特に受容体タンパク質における記憶機能が異なる状態にある受容体を調製する能力を利用することに関する。
哺乳類の組織の中で、中枢神経系は、構造及び機能において、最も複雑なものの１つである。脳は、多数の計算タスクを実行する信じられない能力を持ち、記憶メカニズムのいくつかの難解な形態を備える。健康な及び疾患状態の脳において、種々のＣＮＳプロセス機能を理解することは、人類によって最も熱心にに研究されたものの１つであるが、まだ、充分に確立及び理解されていない。
イオンチャネルは重要な治療的標的である。神経伝達、心機能及び記憶は、全て、リガンド開口型及び電圧開口型イオンチャネルの機能に非常に依存する。さらに、心臓、消化管及び脳などの多くの器官における慢性及び急性病態生理学的状態の広い範囲が、イオンチャネルと関係している。実際、現存する多くの薬物は、イオンチャネルに直接あるいは間接的に連結する受容体に結合する。たとえば、抗精神病薬は、ドーパミン作動性、セロトニン作動性、コリン作動性及びグルタミン酸作動性の神経伝達機能に関与する受容体と相互作用する。
イオンチャネルが薬物標的としての重要なため、リガンド開口型及び電圧開口型チャネルに作用する化合物の高処理量の選別（ＨＴＳ）を可能にする方法が必要である（たとえば、「Sinclair et al., 2002, Anal. Chem. 74:6133-6138」を参照されたい）。しかし、イオンチャネルを標的とする、現在のＨＴＳ薬物発見システムは、未熟な（raw）結合アッセイ又は蛍光ベースの読み取りなど、間接的な方法を採用するため、一般的に、重要な薬物活性を見逃してしまう。１００００もの薬物が、百万個の化合物の選別から同定することができるが、偽陽性及び偽陰性の同定が、可能性のある非常に治療的に有効な新薬を無視したり、間違った薬物開発に不必要な費用のかかる投資をすることになる。
パッチクランプ方法は、細胞におけるイオンチャネル活性を測定する、他の如何なる技術よりもすぐれており、ピコアンペアという低い範囲で細胞膜に流れる電流を測定することができる（例えば、「Neher and Sakmann, 1976, Nature 260:799-802」;「Hamill et al., 1981, Pflugers Arch 391:85-100」;「Sakmann and Neher, 1983, In Single-Channel Recording pp.37-52, Eds. B. Sakmann and E.Neher. New York and London, Plenum Press, 1983」）。しかしながら、パッチクランプ方法は、一般的に、ＨＴＳプラットホームを開発するために選択される方法ではなかった。
本発明は、センサーのようなナノスケール又はミクロスケールの対象物の周囲の溶液環境を変更するための微小流体システム及びそれを使用する方法を提供する。本発明は、センサー素子が、特徴が知られていても知られていなくてもよい、多数の異なる溶液環境（たとえば、１０を超える、好ましくは約９６を超える異なる環境）に、迅速に、順番に、そして制御可能に曝される必要があるいかなるセンサー技術にも適用することができる。従来技術の微小流体システムとは対照的に、サンプル送達の間の間隔が、たとえばマイクロ秒及び秒のオーダーで最小化され、化合物（たとえば薬物）の迅速な分析を可能にしている。
一態様によれば、本発明は、受容体を、調節する、制御する、調製する又は検討するシステムを提供する。当該システムは、センサー周辺の溶液環境を変化させる基板であって、各チャネルが出口を含む複数のチャネルを含む基板と、センサーを出口からの流体流に選択的に曝露する走査機構とを含み、当該チャネルのそれぞれが、流体流をオープンボリュームチャンバーへ送達する。
他の態様によれば、本発明は、受容体を、調節する、制御する、調製する又は検討するシステムであって、センサーを受け取るためのオープンボリュームチャンバーと、各チャネルが実質的に分離した流体流をチャンバーに送達するための出口を含む複数のチャネルとを含み、チャネルのそれぞれが、流体流をオープンボリュームチャンバーへ送達するシステムを提供する。
更に他の態様によれば、本発明は、受容体を、調節する、制御する、調製する又は検討するシステムであって、センサー周辺の溶液環境を変化させる基板であって、複数のチャネルを含み、各チャネルは実質的に分離した流体流をセンサーへ送達するための出口を含む基板と、各チャネルからセンサーへ流体の送達を制御するプロセッサとを含み、チャネルのそれぞれが、流体流をオープンボリュームチャンバーへ送達するシステムを提供する。
一態様では、少なくとも１つのチャネルが、貯蔵部と連通している。関連のある態様では、システムは、複数の緩衝液貯蔵部とサンプル貯蔵部とを有している。他の関連のある態様では、各貯蔵部が異なるチャネルと連通する。更に他の関連のある態様では、システムは交互サンプル及び緩衝液貯蔵部を有している。
他の態様では、システムは、更に、正圧又は負圧を貯蔵部へかける機構を包含する。
一態様では、走査機構は、１つ又はそれ以上のチャネルにわたる圧力を変える機構を包含する。
他の態様では、当該システムは、更に、チャンバーに連通する少なくとも１つのドレインチャネルを包含する。
一態様によれば、当該システムは、更に、センサーを保持する機構であって、チャネルの出口に近接するセンサーを位置決めする位置決め装置に結合又は連結されている機構を包含する。関連のある態様では、センサー保持機構は、細胞を保持するための機構を包含する。他の関連のある態様では、センサーは、細胞又は細胞の一部分を包含する。他の関連のある態様は、パッチクランプの細胞又はパッチクランプの細胞膜画分として細胞を提供する。更に他の関連のある態様は、細胞又は細胞の一部分がイオンチャネルを包含する。更に他の関連のある態様では、細胞又は細胞の一部分が、培養細胞、バクテリア細胞、原生生物細胞、酵母菌細胞、植物細胞、昆虫細胞、トリ類細胞、両生類細胞、魚類細胞、哺乳類細胞、卵母細胞、組換え核酸を発現する細胞、及び病的症状を有する親由来の細胞から選択される、ことを提供する。
一態様によれば、細胞又は細胞の一部分は、位置決め装置を使用して、チャネルの出口に近接して位置決めされる。
一態様では、システムは、更に、表面プラズモンエネルギーセンサー、ＦＥＴセンサー、ＩＳＦＥＴ、電気化学センサー、光学センサー、音波バイオセンサー、量子ドット粒子と関連するセンサー素子を含むセンサー、ポリマーに基づくバイオセンサー、及び基板に固定化された生物分子のアレーから選択されるセンサーを包含する。関連のある態様では、システムは複数のセンサーを包含する。
他の態様では、システムは、さらに、選定されたチャネルから流体流へ、ウェルの中の細胞を選択的に曝すための基板中の１つ又はそれ以上のチャネルにわたる圧力を変えるための機構を包含する。
他の態様では、システムは、さらに、出口からの流体流へ、センサーを選択的に曝すための走査機構を包含する。関連のある態様では、走査機構は、基板中の１つ又はそれ以上のチャネルにわたる圧力を順番に変える機構を包含する。
他の態様では、システムは、更に、走査機構に連通するプロセッサを包含する。関連のある態様では、プロセッサは、走査の速度、走査の方向、走査の促進、スキャンの数、チャネルでの休止間隔、及び１つ又はそれ以上のチャネルにわたる圧力変化、の１つ又はそれ以上を制御する。他の関連のある態様では、プロセッサは、曝露時間を制御する。
他の態様では、システムは更に、チャンバー内のセンサーの応答を検出するための、センサーに連通する検出器を包含する。関連のある態様では、検出器は、データ収集システムを包含するプロセッサに連通する。
一態様によれば、システムのチャネルのそれぞれが、オープンボリュームチャンバーへ流体流を送達するのに適合される
一態様では、システムは、流体送達システムから１つ又はそれ以上の基板の貯蔵部へ流体を送り出すマイクロポンプに動作可能に結合された流体送達システムに連結する。関連する態様では、流体送達システムは、異なるタイプのサンプル及び／又は緩衝液を１つ又はそれ以上の貯蔵部に順番に送達することができる。他の関連のある態様では、流体送達システムは、選定された容量又はサンプルの濃度又は緩衝液を少なくとも１つの貯蔵部へプログラム可能に送達することができる。さらに他の関連のある態様では、システムは、交互サンプル（alternaing sample）及び緩衝液貯蔵部を有する。他の関連のある態様では、流体送達システムは、選定された容量又は濃度のサンプル又は緩衝液を少なくとも１つの貯蔵部へ、選定された時間間隔で、プログラム可能に送達することができる。
他の態様では、システムは、さらに、システムから流体を除去するためのアウトプットチャネルを少なくとも１つ包含する。
他の態様では、システムは、さらに、正圧又は負圧を少なくとも１つのチャネルへ送達する機構を包含する。関連のある態様では、圧力を送達する機構は、プロセッサに連通する。
一態様では、基板は、結晶性半導体材料；シリコン；シリコン窒化物；Ｇｅ、ＧａＡｓ；金属、Ａｌ、Ｎｉ、ガラス；石英；結晶性絶縁体；セラミック；プラスチック；エラストマー材料；シリコーン；ＥＰＤＭ；ホスタフロン；重合体；フッ素重合体；テフロン（登録商標）；ポリメチルメタクリレート；ポリジメチルシロキサン；ポリエチレン；ポリプロピレン；ポリブチレン；ポリメチルペンテン；ポリスチレン；ポリウレタン；ポリ塩化ビニル；ポリアリレート；ポリアリールスルホン；ポリカプロラクトン；ポリエステルカルボネート；ポリイミド；ポリケトン；ポリフェニルスルホン；ポリフタルアミド；ポリスルホン；ポリアミド；ポリエステル；エポキシ重合体；熱可塑性物質；有機材料；無機材料；これらの混合物から選択される材料を包含する。
一態様では、基板は三次元で、チャネルの少なくとも２つが、異なる平面に少なくとも部分的に位置している。
一態様では、本発明は、センサー用のオープンボリュームチャンバーと、複数のチャネルとを含む基板を提供する。各チャネルは、実質的に分離した水性又は他の液体流をチャンバーへ送達するための出口を包含する。一態様では、出口は実質的に平行、すなわち、単一平面上に直線上に配列されている。出口の直径は変えることができるが、センサーが生物細胞である一態様では、出口のそれぞれの直径は、好ましくは、少なくとも細胞の直径にほぼ同じである。好ましくは、全てではないが、複数のチャネルが流体流をチャンバーにプログラム可能に送達するのが好ましい。
好ましい態様では、基板の各チャネルは、貯蔵部から溶液を受け取るための入口を少なくとも１つ含み、基板上の幾何学的構造及び配置が、多数のウェルプレート中のウェルの幾何学的構造及び配置に一致する。例えば、基板は、それぞれが基板上の独立したチャネルに連結する貯蔵部を９６〜１０２４個含みうる。各貯蔵部の中心−中心間の距離が、工業規格のマイクロタイター又は多数のウェルプレート中のウェルの中心−中心間距離に対応するのが好ましい。
さらなる態様では、基板は、処置チャンバー内に置かれた細胞に処理を送達するための処置チャンバー又はマイクロチャンバーを１つ又はそれ以上包含する。当該処置として、細胞を化学物質又は化合物（例えば、薬物、カルシウムイオンキレート蛍光染料のような染料）に曝すこと、細胞を電流に曝すこと（例えば、電気せん孔法、電気融合（electrofusion）など）、又は細胞を光に曝すこと（例えば、特定波長の光への曝露）が含まれうる。処置チャンバーは、複数のタイプの処置のために使用することができ、これは順番に又は同時に送達されてもよい。例えば、電気的に処理された細胞を、化学物質又は化合物に曝すことができ及び／又は光に曝すこともできる。処置は、ある期間連続して、又は間欠的（例えば、規則的又は不規則的に間隔を空ける）に行うことができる。細胞処置チャンバーは、処置された細胞をセンサーチャンバー、又はチャンバー内に細胞を位置決めするための位置決め装置（例えば、マイクロ位置決め装置又はナノ位置決め装置）に連結する、細胞保持機構に直接送達するための、出口を有するチャネルを含むことができる。
センサーチャンバーの底面は、光学的に透過性であることが好ましく、一態様では、当該システムは、更に、オープンボリュームチャンバーと光学的に連通する光源（例えば、レーザー）を包含する。光源は、センサーを同じ又は異なる波長の光に連続して又は断続的に曝すために使用することができる。センサーチャンバー及び／又はチャネルは、更に、制御装置を備えることができる。例えば、センサーチャンバー及び／又はチャネルは、チャンバー及び／又はチャネル状態に関するシグナルをシステムプロセッサに提供するための温度センサー、ｐＨセンサーなどを包含することができる。
センサーチャンバーを、種々の異なるセンサーを受けるように適応させることができる。一態様では、センサーは、細胞又は細胞の一部分（例えば、細胞膜画分）を包含する。他の態様では、当該細胞又は細胞膜画分は、シナプス前性発現したイオンチャネル、リガンド開口型チャネル、電圧開口型チャネルなど（これらに限定されない）を包含する、イオンチャネルを含む。更なる態様では、細胞は、Ｇタンパク質結合受容体（ＧＰＣＲ）又はそのリガンドが知られていないオーファン受容体のような受容体、又は公知のリガンドを包含する受容体を含む。
培養細胞は、センサーとして使用することができ、ＣＨＯ細胞、ＮＩＨ−３Ｔ３細胞及びＨＥＫ−２９３細胞からなる群より選択することができ、イオンチャネルや受容体のような感知性分子を発現するように、組換えにより作ることができる。多くの他の異なる細胞のタイプも使用することができ、これは、哺乳類細胞（例えば、ヒト細胞、霊長類細胞、ウシ細胞、ブタ細胞、他の家畜動物などが挙げられるが、これらに限定されるものではない）；バクテリア細胞；原生生物細胞；酵母菌細胞；植物細胞；昆虫細胞を含む無脊椎動物細胞；両生類細胞；トリ類細胞；魚類；などからなる群より選択することができる。
細胞膜画分は、先に記載した細胞のいかなるものからも単離することができ、あるはリポソーム又は他の脂質ベースの粒子を、イオンチャネルや受容体のような感知性分子で、当分野で常用している方法を使用して凝集することによって生成することができる。
細胞又は細胞の一部分は、細胞又は細胞部分の保持機構、例えば、ピペット（例えば、パッチクランプのピペット）又は毛細管で連結した位置決め装置（例えば、マイクロ位置決め装置又はナノ位置決め装置又はマイクロマニピュレーター）、あるいは光学ピンセットを使用して、チャンバー内に配置することができる。位置決め装置はピペットを少なくともｘ軸、ｙ軸、ｚ軸方向に動かすのが好ましい。あるいは、又はこれに加えて、位置決め装置は、ピペットを回転してもよい。また、位置決め装置は、プロセッサに連通するドライブユニットに結合し、ピペットの動きをプロセッサによって制御するようにしたものが好ましい。
一態様では、チャンバーの底面は、１つ又はそれ以上のくぼみを含み、細胞又は細胞の一部分は、１つ又はそれ以上の電極に連通することができるくぼみ内に配置される（例えば、センサーは平面パッチクランプのチップを含むことができる）。
また、細胞ベースでないセンサーをシステムで使用することもできる。適切な細胞ベースでないセンサーとして、表面プラズモンエネルギーセンサー；ＦＥＴセンサー；ＩＳＦＥＴ；電気化学センサー；光学センサー；音波センサー；量子ドット粒子に関連するセンサー素子を含むセンサー；ポリマーに基づくセンサー；基板上に固定された単分子又は分子のアレー（例えば、核酸、ペプチド、ポリペプチド、小分子など）が挙げられるが、これらに限定されるものではない。また、センサーチャンバーは、細胞ベースでない及び／又は細胞ベースの複数の異なるタイプのセンサーを含むことができる。センサー基板を、チャンバーの底面に固着することができ、あるいは基板を単に、チャンバーの底面上に置くこともできる。あるいは、チャンバーの底面それ自身も、センサー基板として作用することができ、１つ又はそれ以上のセンサー素子を当分野で常用される方法を用いて、底面を安定に結合することができる。一態様では、センサー素子を、基板上の公知の位置に、あるいはセンサーチャンバーの底面上に結合する。
しかし、チャンバー内に置かれた対象物は、センサーである必要はない。例えば、当該対象物は、コロイド状粒子、ビーズ、ナノチューブ、非感知性分子、シリコンウェハ、又は他の小さな素子でありえる。
また、本発明は、細胞ベースのバイオセンサーを受け取るチャンバーを少なくとも１つと、複数のチャネルと、少なくとも１つの細胞貯蔵チャンバーと、少なくとも１つの細胞処置チャンバーと、を含む基板を含むシステムを提供する。好ましくは、各チャネルは、流体流をチャンバーに送達するための出口を含み、細胞処置チャンバーは、電流を細胞処置チャンバー内に置かれている細胞に送達するように適合されている。一態様では、細胞処置チャンバーは、さらに、細胞ベースのバイオセンサーを受け取るためのセンサーチャンバーに、細胞を送達するための出口を有するチャネルを包含する。当該システムは、細胞処置チャンバー内で電気せん孔法導入された及び／又は電気融合された及び／又は他の処置をされた細胞周辺の溶液環境を迅速に、プログラム可能に、そして順番に変化させるために使用することができる。あるいは、又はこれに加えて、センサーチャンバーは、また、処置チャンバーとしても使用することができ、一態様では、センサーチャンバーは、センサーを電場に連続してあるいは断続的に曝すために、１つ又はそれ以上の電極で電気的に連通されている。
一態様では、本発明によるシステムは、さらに、チャネルの出口に対するセンサーの位置を走査するための走査機構を含んでなる。走査機構は、静止センサーに対する基板を移動することができ、静止基板に対するセンサーを移動することができ、あるいは、センサー及び基板の両方を、互いに対して種々の速度及び方向で動かすことができる。一態様では、センサーは、位置決め装置（例えば、マイクロ位置決め装置又はナノ位置決め装置又はマイクロマニピュレーター）に結合するセンサー保持機構（例えば、ピペット又は毛細管）を使用して、出口に対して配置される。したがって、位置決め装置は、センサー保持機構を動かすことによって、チャネルの出口に存在する複数の流体流をわたって、センサーを動かすように使用することができる。あるいは、又はそれに加えて、走査を、隣り合うマイクロチャネルにわたって、圧力低下を順番に起こすことによって、規制することもできる。
好ましくは、走査機構は、プロセッサに連通し、移動は、プロセッサからの指示（例えば、プログラムされた指示又はフィードバックシグナルの結果として発生した指示）に応答して起こる。一態様では、プロセッサは、走査の速度、走査の方向、走査の促進及びスキャンの数、の１つ又はそれ以上を制御する。したがって、当該システムは、具体的な（例えば、プログラム可能な）時間の長さに関して、チャンバー内のナノスケール及びマイクロスケールの対象物を、ユーザーが選択した、あるいはシステムが選択した座標に動かすことができる。好ましくは、システムプロセッサは、例えば、前の走査動作に応答して及び／又はシステム検出器によって検出される対象物からの光学シグナルに応答して、チャンバー内の１つ又はそれ以上の対象物の位置を、位置決めするために使用することもできる。一態様では、システムは、さらに、ユーザーと接するためのグラフィカルユーザーディスプレイを含むプロセッサに連通するユーザーデバイスを含んでなる。例えば、当該ディスプレイは、チャンバー内部の対象物（複数を含む）の座標、又は光学データ又はチャンバーから得た他のデータを表示するために使用することができる。
さらに、本発明は、細胞ベースのバイオセンサーを受け取るためのチャンバーであって、受容体又はイオンチャネルを含むチャンバーを含む基板を提供する。一態様では、システムは、基板の相互連結するチャネルを介して、細胞ベースのバイオセンサーを、受容体／イオンチャネルに結合する１種又は数種のリガンド及びリガンドのない緩衝液緩衝液に、順番に短時間曝露する。例えば、バイオセンサーのこれらの異なる溶液状態への短時間の選択的曝露は、相互連結するチャネルにわたって、細胞ベースのバイオセンサーを走査することによって達成することができ、これは、１又は数種のリガンド及び緩衝液の送達を交互に行う。各微小流体チャネル中の緩衝液及びサンプル溶液の流れは、一定速度の定常流が好ましい。
しかし、他の態様では、システムは、細胞ベースのバイオセンサー又は他のタイプのセンサー及び流体が流れる出口の両方に近接して配置される灌流毛細管を介して、緩衝液のパルス（例えば、拍動オン／オフ流）を受容体に送達する。例えば、システムは、出口に近接したｃセンサーを位置決めするために、位置決め装置（例えば、マイクロ位置決め装置、ナノ位置決め装置、マイクロマニピュレーターなど）に結合するセンサー保持機構と、毛細管からセンサーに緩衝液を送達するセンサー保持機構に充分近いところに出口を含む毛細管と、を含みうる。走査機構は、毛細管及びセンサーの両方を同時に動かし、毛細管のセンサーに対する適正な近接性を保つために使用することができる。また、毛細管は、ポンプ機構と結合し、緩衝液の拍動性送達をセンサーに提供することができる。他の態様では、近接する１つ又はそれ以上の灌流毛細管から１つ又はそれ以上のセンサーへの緩衝液の流速は、チャネルからの流体の流速より早く又は遅くすることができる。
本発明は、さらに、円柱状壁及び底面を含むセンサーを受け取るための円筒形チャンバーを含む基板を提供する。一態様では、基板は、サンプルをチャンバーに送達するために、開口部がチャンバーの壁の周囲に関して半径方向に設けられた（例えば、車輪のスポークの配置）出口を含む複数のチャネルを包含する。また、基板は、チャンバーから廃液を排出するためのアウトプットチャネルを少なくとも１つ含むのが好ましい。一態様では、少なくとも１つの付加的なチャネルが、緩衝液をチャンバーへ送達する。好ましくは、緩衝液を送達するための少なくとも１つの付加的なチャネルと、アウトプットチャネルとの間の角度は、１０°を超える。より好ましくは、当該角度は、９０°を超える。チャネル「スポーク」は、全てが同じ平面にあってもよいし、スポークの少なくとも２つが異なる平面にあってもよい。
チャンバー内の溶液の迅速で、プログラムされた、逐次交換は、チャンバー内に置かれたセンサー周辺の溶液環境を変更させるのに使用され、多数のアウトプットチャネルをこの構成では提供することができる。例えば、サンプル／緩衝液を送達する各チャネルに関して、アウトプットチャネルがあってもよい。また、送達用のチャネルの数は、例えば、工業規格のマイクロタイタープレートと接するのに適切な基板を使用するために、変化させることができる。例えば、９６〜１０２４のサンプル送達用チャネルがあってもよい。他の態様では、付加的な、同数の緩衝液送達用チャネル（例えば、サンプル及び緩衝液の相互嵌合流体流を提供するために）があってもよい。
また、本発明は、センサー周辺の溶液環境を変化させるための多層基板であって、流体をセンサーへ送達するためのチャネルを含む第一基板；第一基板に近接している１つ又はそれ以上のセンサーを保留するフィルター層；及びフィルター層からの流体を受け取る廃液貯蔵部を含む第二基板；を含む多層基板を提供する。１つ又はそれ以上のセンサーは、第一基板とフィルター層との間に設けることができる。一態様では、センサーの少なくとも１つが細胞である。システムは、さらに、流体を、第一基板内のチャネルから、フィルターを通って、廃液貯蔵部に流れるように、すなわち、フィルター（すなわちセンサー）層を通る速い流体交換を提供するよう強制するために、第一及び第二基板の間に圧力差を作り出す機構を含むのが好ましい。
さらに、本発明は、センサーを受け取るチャンバー、チャンバーと交差する出口を含む第一チャネル、及び第一チャネルと交差する複数のサンプル送達チャネルを含む基板を提供する。また、第一チャネルは、緩衝液貯蔵部（例えば、連結するチャネルを介して）とも連結する。一態様では、サンプル送達チャネルの縦軸は、他のものに関して平行であるが、第一チャネルの縦軸に関しては角度をなす（例えば、「魚の骨」形状を提供する）。第一チャネル及び／又はサンプルチャネルを通る溶液の速い流れは、緩衝液貯蔵部及び／又はサンプルチャネルに連通する正圧機構によって達成することができる。流速をさらに調整するために、一方向受動バルブをサンプル送達チャネルと第一チャネルとの間の接合部に設けることができる。一態様では、サンプル貯蔵部の少なくとも１つを、その中に針又はチューブを含むことができる隔壁によって密閉する。
本発明は、さらに、センサーを受け取るチャンバー、サンプル又は緩衝液をチャンバーへ送り込むための出口を含む複数の送達チャネル、及び送達チャネルの出口に向かい合う入口を含む、複数のドレインチャネルとを含む基板を提供する。送達チャネルの縦軸は、ドレインチャネルの縦軸と同じ平面にあってもよく、又は異なる平面にあってもよい。一態様では、複数のドレインチャネルは、複数の入口チャネルの頂点にある（すなわち、基板は三次元である）。
先に記載したシステムのいかなるものも、さらに、基板の少なくとも１つのマイクロチャネルに適用する正圧及び負圧を制御するための圧力制御装置を含むことができる。基板が、送達チャネル及びアウトプットチャネル（複数を含む）の両方を含むシステムにおいては、システムは、さらに、少なくとも１つのアウトプットチャネルに負圧を適用しながら、少なくとも１つの送達チャネルに正圧を適用する機構を含むのが好ましい。少なくとも１つのチャネルでの静水圧は、プロセッサが受け取るフィードバックシグナルに応答して変化できることが好ましい。
したがって、システムは、流体流がチャンバーから回収される時及びチャネル内で、調整することができる。例えば、既定の時間後、流体流がシステムに入るチャネルと同じチャネル又は異なるチャネルを介して、流体流をチャンバーから回収することができる。ドレインチャネルが送達チャネルに隣接する場合、システムは、Ｕ字型流体流を作るができ、これは送達チャネルを通って送達される化合物を効率的にリサイクルすることができる。
先に記載したように、直線状、角度のある、分岐状、魚の骨形状など多数の送達チャネル形状を提供することができる。一態様では、各送達チャネルは、縦軸が送達チャネルの縦軸に対して垂直である１つ又はそれ以上の交差チャネルを含む。他の態様では、各送達チャネルは、縦軸が送達チャネルに対して角度のある１つ又はそれ以上の交差チャネルを含む。
一般的に、前記チャネル形状のいかなるものも、サンプルを貯蔵部又はサンプル入口に送達するための容器に（例えば、貯蔵部／入口を有する容器を連結する毛細管又はチューブを介して）接することが可能である。一態様では、少なくとも１つのチャネルは分岐状で、多数の入口を含む。多数の入口が単一容器と接するのが好ましい。しかし、多数の入口が数個の異なる容器と接していてもよい。
さらに、前記基板のいかなるものも、１つ又はそれ以上の外部チューブ又は毛細管を介して、多数のウェルプレート（例えば、マイクロタイタープレート）に連結させることができる。１つ又はそれ以上のチューブ又は毛細管は、チューブ又は毛細管を通る流体の流れを制御する、１つ又はそれ以上の外部バルブを含むことができる。一態様では、多数のウェルプレートの複数のウェルは、公知の溶液を含む。また、システムは、複数のマイクロタイタープレートと接することもでき、例えば、プレートは他プレートの上に積み上げることができる。システムは、さらに、流体をマイクロタイタープレートのウェル又は他の適切な容器（複数を含む）から基板の貯蔵部へ送り出すマイクロポンプを含むことが好ましい。システムは、流体を、貯蔵部を通って基板の選定されたチャネルにプログラム可能に送達することがさらに好ましい。
一態様では、本発明によるシステムは、さらに、センサー応答を検出するセンサーチャンバーに連通する検出器を含む。例えば、検出器は、センサーの電気的、光学的又は化学特性の１つ又はそれ以上の変化を検出するために使用することができる。一態様では、検出器からのシグナルに応答して、プロセッサは、走査の速度、走査の方向、走査の促進、スキャンの数、及び１つ又はそれ以上のチャネルにおける圧力、の１つ又はそれ以上を変更する。
他の実施形態では、本発明は、基板を提供することを含んでなる、受容体を調節する、制御する、調製する又は検討する方法を提供し、基板は、アゴニストによって活性化される受容体を含む細胞ベースのバイオセンサーを包含するチャンバー；及びアゴニスト、アンタゴニスト、又はアゴニスト及びアンタゴニストの両方を送達する、複数の送達チャネル（各々のチャネルが、実質的に分離した水性流又は他の流体流をチャンバーへ送達するための出口を含む）；そして、バイオセンサーを、２つ又はそれ以上の出口から出る流体流に、順次曝露すること、を包含する。
一態様によれば、チャンバーは、少なくとも１種の緩衝液、サンプル、アゴニスト、アンタゴニスト又はこれらの混合物を含む。
一態様では、曝露は、バイオセンサーを選択した濃度のサンプルへの選択的な曝露である。関連のある態様では、曝露は、選択した時間に選択的に行われる。
他の態様では、システムは、さらに１つ又はそれ以上の緩衝液をチャネルに与えることを含む。
さらに他の態様では、システムは、さらに、バイオセンサーを１つ又はそれ以上の緩衝液に曝露することを含む。関連のある態様によれば、バイオセンサーの１つ又はそれ以上の緩衝液への曝すことは、１つ又はそれ以上のサンプルに曝露される間に分散される。他の関連のある態様では、１つ又はそれ以上の緩衝液への曝露は、洗浄期間である。さらに他の関連のある態様では、１つ又はそれ以上の緩衝液への曝露は、休止期間である。さらに他の態様では、システムは、さらに、１つ又はそれ以上の緩衝液への曝露が洗浄及び休止期間であることを含む
一態様では、緩衝液における休止期間は一連のサンプル曝露の間にあり、緩衝液における１つ又はそれ以上の洗浄期間によって相互連結される。
他の態様は、バイオセンサーを緩衝液及びサンプルの流れに選択的に曝露することである。関連する態様によれば、バイオセンサーを、緩衝液及びサンプルの交互流れに選択的に曝露することである。他の関連のある態様では、受容体をリガンド溶液に濃度が増加する順に曝露する。他の関連のある態様では、受容体をリガンド溶液に濃度が減少する順に曝露する。関連のある態様では、受容体をリガンド溶液に濃度が増加する順に曝し、続いて、リガンド溶液に濃度が減少する順に曝露する。さらに他の関連のある態様では、受容体をリガンド溶液に濃度が減少する順に曝露し、続いて、リガンド溶液に濃度が増加する順に曝露する。他の関連のある態様では、受容体をモジュレーターの増減での曝露の後に洗浄溶液に曝露する。
他の態様では、薬剤は、候補薬物、公知の薬物、疑いのある発癌物質、公知の発癌物質、候補毒剤、公知の毒剤及びイオンチャネルに直接又は間接的に作用する薬剤から選択される。
一態様によれば、検討する方法が、受容体の記憶特性を検討する方法である。他の態様によれば、記憶機能は、短期間、中期間、又は長期間の記憶機能である。関連のある態様では、バイオセンサーの記憶特性上の薬物の効果を検討する。
他の態様では、曝露ステップは、少なくとも１つのチャネル出口に関連する、基板若しくはセンサー、又は基板及びセンサーの両方を動かすことによって実施する。関連のある態様では、基板及びセンサーの両方をお互いに独立して動かす。別の関連のある態様では、曝露は、１つ又はそれ以上のチャネルの全部で圧力低下を起こすことを更に包含する。
一態様によれば、同じサンプルが複数のチャネルに提供される。関連のある態様では、異なる濃度のサンプルが、複数のチャネルに提供される。他の態様では、システムは、さらに、サンプル用の用量応答曲線を作ることを含む。
一態様では、細胞ベースのバイオセンサーは、パッチクランプの細胞又はパッチクランプの細胞膜画分を含む。関連のある態様では、パッチクランプの細胞を、位置決め装置に結合する又は連結するパッチクランプのピペットを使用して、出口に関連する位置に置く。
一態様によれば、サンプルはアゴニストである。関連のある態様では、サンプルはアンタゴニストである。
他の態様では、細胞ベースのバイオセンサーはイオンチャネルを含む。関連のある態様では、受容体は、Ｇタンパク質結合受容体を含む。他の関連のある態様では、細胞ベースのバイオセンサーは、組換えにより発現させた受容体を含む。さらに他の関連のある態様では、組換えにより発現させた受容体はオーファン受容体である。
一態様では、サンプルに対する応答を、細胞表面積を測定することによって決定する。関連のある態様では、応答を、細胞ベースのバイオセンサーの電気特性を測定することによって決定する。他の関連のある態様では、応答を、イオンチャネル透過性特性を測定することによって決定する。
他の態様では、サンプルは、神経伝達物質放出のモジュレーターである。
他の実施形態によれば、不連続運動状態で受容体を調製する方法を提供する。当該方法は、細胞ベースのバイオセンサーを２つ以上の濃度のモジュレーターに順番に曝露するステップと、モジュレーターへの曝露の間に休止期間と洗浄期間とを交互に行うステップと、を含み、順番に行う曝露が所定の運動状態のバイオセンサーを停止させる。
一態様によれば、順番に行う曝露は、約１ミリ秒（ｍｓ）〜約１８０分、１ｍｓ〜約６０分、約１ｍｓ〜数十分、又は１ｍｓ〜細胞死の範囲である。
関連のある態様では、休止は、約１ｍｓ〜約１８０分、１ｍｓ〜約６０分、約１ｍｓ〜数１０分、又は１ｍｓ〜細胞死の範囲である。
他の関連のある態様では、洗浄期間は、約１ｍｓ〜約１８０分、１ｍｓ〜約６０分、約１ｍｓ〜数１０分、又は１ｍｓ〜細胞死の範囲である
他の態様では、システムは、さらに、バイオセンサーの分子記憶を決定することを含む。関連のある態様では、分子記憶を、モジュレーターの用量応答を測定することによって決定する。
他の態様では、システムは、さらに、請求項１に記載のシステムを提供することを含む。
他の態様では、モジュレーターの増加する濃度を、バイオセンサーに曝露する。関連のある態様では、モジュレーターの減少する濃度をバイオセンサーに曝露する。
一態様では、モジュレーターは、候補薬物、公知の薬物、疑がわしい発癌物質、公知の発癌物質、候補毒剤、公知の毒剤、及びイオンチャネルに直接又は間接的に作用する薬剤から選択される。
また、本発明は、ナノスケール又はマイクロスケールの対象物（例えばセンサー）周辺の局所的な水溶液又は他の液体溶液環境を変化させる方法を提供する。当該方法は、ナノスケール又はマイクロスケールの対象物と、水性又は他の液体流体とを含むオープンボリュームチャンバーを含む基板を準備することを含む。基板は、さらに、各チャネルがオープンボリュームチャンバーと交差する出口を含む複数のチャネルを含む。流体の実質的に分離した水性流は、少なくとも２つが異なる流体を含む、オープンボリュームチャンバーに送達される。
少なくとも２つの隣接するチャネルから出る流体流は、オープンボリューム内部で、平行にされ、層状にされることが好ましい。しかし、当該システムは、チャネルのセット（少なくとも２つの隣接するチャネル）であって、少なくとも１つのセットが平行化された層状流れを送達し、他の少なくとも１つのセットが平行化されていない層状ではない流れを送達するセットを含むことができる。一態様では、流れは異なる速度で流れる。流体は、チャネルからチャンバーへ、電気泳動及び／又は電気浸透及び／又はポンプを含む、多くの異なる方法によって送達することができる。
一態様では、チャネルの縦軸は実質的に平行である。チャネルは、直線状アレー、二次元アレー又は三次元アレー状に配置することができ、処置チャンバー、センサーチャンバー、貯蔵部及び／又は廃液チャネルを含むことができ、前記容器（複数を含む）又は多数のウェルプレート（複数を含む）と接することができる。一態様では、アウトプットチャネルは、チャネルを過剰にインプット（すなわち、三次元形状において）することができる。少なくとも１つのアウトプット又はドレインチャネルの縦軸は平行であるのが好ましいが、少なくとも１のインプットチャネルの縦軸に関して、異なる平面にあってもよい。正圧をインプットチャネルに適用すると同時に、負圧を隣接するアウトプット又はドレインチャネルに適用することによって、Ｕ字型流体流をチャンバー内に作ることができる。この方法で、チャンバー内の対象物を、入口チャネルからの流体流中の化合物に曝露することができ、これは、例えば、隣接するアウトプット又はドレインチャネルを介して、チャンバーから回収されることによってリサイクルを可能にする。Ｕ字型流体流は、大容量貯蔵部又はオープンボリューム中で特定の組成を有する、流体流の明確に規定された局所領域を作るために、使用されるのが好ましい。
対象物は、少なくとも２つの水性流体流にわたって、順番に走査されるのが好ましく、これによって、対象物周辺の水溶液環境を変える。走査は、基板及び／又は対象物を動かすことによって行うことができ、あるいはチャネルにおける圧力低下によって調整することができる。
オープンボリュームチャンバーは、複数の対象物を含むことができ、好ましくは、各対象物は、少なくとも２つの流れを横切って走査される。走査は、先に記載したように、プロセッサによって制御される走査機構によって行うことができる。さらに、オープンボリュームは、溶液の添加及び排出のための入口及び出口を有することができる。例えば、ぜん動ポンプを使用して、新たな緩衝溶液を記録チャンバーに加えることができる。
一態様では、方法は、さらに、走査の速度、走査の方向、走査の促進、スキャンの数及び１つ又はそれ以上のチャネルにわたる圧力のような走査パラメータの１つ又はそれ以上を修正することを含む。走査パラメータは、１つ又はそれ以上の水性流に対する対象物の応答に関連するシグナルのような、フィードバックシグナルに応答して修正することができる。また、走査は、他のシステム操作と協調して行うことができる。例えば、細胞ベースのバイオセンサーを含むシステムにおいて、走査は、電流へのバイオセンサーの曝露と協調して行うことができ、すなわち、バイオセンサーが過去の１つ又はそれ以上のサンプル出口を走査する時、バイオセンサーの細胞膜内での細孔形成を誘導する。
また、１つ又はそれ以上のチャネルでの静水圧も、プログラムされた指示に従って及び／又はフィードバックシグナルに応答して、プロセッサによって変化させることができる。一態様では、複数のチャネルのそれぞれの静水圧は異なる。
他の態様では、少なくとも２つのチャネル内の流体の粘度は異なる。さらに他の態様では、少なくとも２つのチャネル内の流体は、異なる温度である。さらなる態様では、少なくとも２つのチャネル内の流体の浸透圧が異なる。さらなる態様では、少なくとも２つのチャネル内の流体のイオン強度が異なる。少なくとも１つのチャネルにおける流体は、有機溶剤も含むことができる。異なる出口でこれらのパラメータを変えることによって、センサーの応答を検出の感度を最大にし、バックグラウンドを最小にするように最適化することができる。また、いくつかの態様では、パラメータを提供されるある細胞処置（例えば、電気せん孔法又は電気融合）を最適化するために、変化させることもできる。
また、本発明は、ナノスケール又はマイクロスケールの対象物周辺の溶液環境を、迅速に変化させる方法であって、ナノスケール又はマイクロスケールの対象物を含むセンサーチャンバー内の流体を迅速に交換することを含む方法を提供する。一態様では、チャンバー内の流体交換は、約１分未満で、好ましくは約３０秒未満で、約２０秒未満で、約１０秒未満で、約５秒未満で、約１秒未満で起こる。他の態様では、流体交換は、数ミリ秒内で起こる。他の態様では、流体交換は、数ナノ秒内で起こる。
一態様では、方法は、対象物（これはセンサーあるいは単分子であってもよい）を含むチャンバーであって、流体をチャンバーへ送達するための複数の入口チャネルと、流体をチャンバーから排出するための複数の出口チャネルとを含むチャンバーを準備することを含む。ドレインチャネルの縦軸は、送達チャネルの縦軸に関して角度があるのが好ましい。一態様では、少なくとも１つのドレインチャネルの縦軸は、送達チャネルの縦軸に関して、≧９０°である。当該角度は約１８０°が好ましい。チャンバーに入る流体は、所定の時間後あるいはフィードバックシグナルに応答して、チャンバーから排出される。入口チャネル及びアウトプット又はドレインチャネルを通る流体流れの速度を制御することによって、チャンバー内の流体の完全な交換を、約３０秒未満で、好ましくは数ミリ秒以内で行うことができる。
チャネル内の流体のそれぞれに関する角度での速度は、異なることが好ましい。一態様では、チャネル内の流体のそれぞれに関する角度での静水圧は異なる。他の態様では、チャネル内の流体のそれぞれに関する角度での粘度は異なる。さらに他の態様では、チャネル内の流体のそれぞれに関する角度での浸透圧は異なる。さらなる態様では、チャネル内の流体のそれぞれに関する角度でのイオン強度は異なる。さらに別の態様では、それぞれに関する角度でのチャネルは、異なる有機溶剤を含む。
チャンバーは、円筒形の壁と底面とを含み、出口が、壁の周囲の回りに半径方向に設けられる、すなわち、二次元又は三次元スポークホイール形状でもよい。また、他の形状も可能である。例えば、各送達チャネルは、縦軸が送達チャネルに対して垂直である交差入口チャネルを含みうる。
方法は、一般的に、細胞又はその部分を、先に記載した基板の任意のチャンバー中に提供し、当該細胞又はその部分を、条件を作る水性流の１つ又はそれ以上に曝露し、そして細胞又はその部分の当該条件に対する応答を検出すること及び／又は測定することによって、細胞又はその部分の水性環境における条件に対する応答を測定するために使用することができる。例えば、条件は、細胞又はその部分が曝露される化学物質又は化合物であってもよいし、及び／又は細胞又はその部分を浸す溶液の浸透圧、イオン強度、温度及び速度が同時に又は個別に設定できる。
前記任意の基板におけるセンサーチャンバー内のバルク溶液の組成は、例えば、センサーチャンバーのイオン組成を変えるため、又は化学物質又は化合物を溶液に提供するために、制御することができる。例えば、センサーチャンバーに近接した灌流システムを提供することによって、薬物などの化学物質又は化合物を、実験の間にセンサーチャンバーに加えることができる。
一態様では、細胞又はその部分のある条件への曝露は、センサーチャンバー内で起こる。しかしながら、あるいは又は追加して、細胞又はその部分のある条件への曝露が、１つ又はそれ以上のチャネルを介してセンサーチャンバーに連結するマイクロチャンバー内で起こることも可能である。細胞の周辺の条件が変化することによって誘発される応答を測定するために、細胞又はその部分を、センサーチャンバーに移すことが可能である。
一態様では、本発明は、アンタゴニストを検出又は選別するために、活性化された受容体又はイオンチャネルを生成する方法も提供する。当該方法は、アゴニストの一定の流れを、（例えば、先に記載した任意の基板を使用して）センサーチャンバーへ送り込む複数のマイクロチャネルを通って、センサーチャンバー内の細胞ベースのバイオセンサーへ送達することを含む。好ましくは、細胞ベースのバイオセンサーは、感度を下げない又は非常にゆっくりしか感度を下げない受容体／イオンチャネル複合体を発現する。バイオセンサーのアゴニストへの曝露は、測定可能な応答を提供し、それにより、受容体がマイクロチャネル送達アゴニストを通過する度に活性化される。好ましくは、マイクロチャネルを送達する複数のアゴニストが、細胞ベースのバイオセンサーがこれらのマイクロチャネルのそばを通る時、その存在が測定可能な応答（例えば拮抗作用）における減少と関連づけることができるアンタゴニストを含む。一態様では、複数のマイクロチャネルは、等量のアゴニストを含むが、異なる濃度のアンタゴニストを含む。従って、測定可能な応答の阻害を、アンタゴニストの特定の用量の存在と関連づけることができる。他の態様では、複数のマイクロチャネルは、等量のアゴニストを含むが、複数のマイクロチャネルの１つ又はそれ以上、好ましくは全てが、異なる種類のアンタゴニストを含む。この方法では、特定のタイプのアンタゴニスト（又はアンタゴニストであると疑われる化合物）の活性をモニターすることができる。
一態様では、緩衝液のパルスを細胞ベースのバイオセンサーに送達し、それにより、受容体がアゴニスト又は受容体モジュレーターを含む次のチャネル出口に曝露される前に、受容体を脱感作している任意の結合アゴニスト又はモジュレーターを除去する、先に記載した灌流システムを用いて周期的に再感作される受容体を提供する。アンタゴニストの検出において、パルス化された灌流システムは、常時適用されるアゴニストも周期的に取り除くことができる。再感作されたバイオセンサーがアゴニストに曝露される時、一時的ピーク応答（これは、定常状態応答に脱感作される）が生成される。このピーク応答の生成は、アンタゴニストの検出において、より優れたシグナル−雑音比を提供することができる。
他の態様では、細胞ベースのバイオセンサー中のイオンチャネルは、細胞膜の電位差を変更することによって、連続的に活性化されあるいは周期的に活性化される。これにより、電圧依存性イオンチャネルを調節する化合物又は薬物の検出用のセンサーが提供される。
当該システム又は方法によって測定される応答は、使用されるセンサーのタイプによって変わる。細胞ベースのバイオセンサーを使用する場合、以下のパラメータ又は細胞特性のアゴニスト、アンタゴニスト又はモジュレーター誘発変化を、測定することができる：細胞表面積、細胞膜伸張、イオンチャネル透過性、細胞からの内部小胞の放出、細胞膜からの小胞の修復、細胞内カルシウムの濃度、イオンチャネル誘発電気特性（例えば、電流、電圧、膜電気容量など）、光学特性又は生存度。
一態様では、センサーは、少なくとも１個のパッチクランプの細胞を含む。例えば、当該方法は、システムを従来のパッチクランプのセットアップと組合せることによって、実施することができる。したがって、細胞又は細胞膜画分は、マイクロ位置決め装置又はナノ位置決め装置のような位置決め装置に連結したパッチクランプのピペットを使用することによって、チャネル出口に関連する適正な位置に置くことができる。
あるいは、パッチクランプの細胞又はパッチクランプの細胞膜画分を、１つ又はそれ以上の電極に連通する（例えば、パッチクランプのチップを提供する）、チャンバーの底面内のくぼみに配置することもできる。
本発明に従うシステム及び方法は、イオンチャネルリガンド用及びイオンチャネルに直接的又は間接的に作用する薬物又はリガンド用の高処理量の選別を行うために使用することができる。しかし、より一般的には、当該システム及び方法は、任意の細胞外、細胞内、又は膜結合標的（複数を含む）に影響する、化合物／条件を選別するために使用することができる。したがって、当該システム及び方法は、例えば、細胞上の薬物の効果を特定化するために使用することができる。本発明に従うそのような目的のために得ることができるデータの例として、用量応答曲線、ＩＣ５０値及びＥＣ５０値、電圧−電流曲線、オン／オフ速度、動力学的情報、熱力学的情報などが挙げられるが、これらに限定されるものではない。
従って、システムは、例えば、イオンチャネル又は受容体アンタゴニストが、競合的阻害剤あるいは非競合的阻害剤であるかどうかを特定化するために使用することができる。本発明によるシステム及び方法は、例えば、変化する化合物の種類又は用量に応える細胞の生存能力をモニターすることにより、毒性学選別として又は診断選別においても使用することができる。また、方法は、薬物効果が、外表面受容体又は標的を結合する細胞膜との相互反応に依るのか、又は細胞内受容体又は標的によるのかを見るために、細胞質において、例えば、電気せん孔法を使用して薬物を内部移行するために使用することができる。本発明によるシステムは、対象物が、溶液環境における変化から利益を受ける如何なる方法においても使用することができ、そのような方法は本発明の範囲内に包含されることは当業者には明らかである。
本発明の対象物及び特徴は、以下の詳細な説明及び添付の図面を参照して、さらによく理解できるであろう。図面は実物大ではない。
本発明は、細胞ベースのバイオセンサーのような、センサー周辺の局所溶液環境を迅速に及びプログラム可能に変更するためのシステム及び方法を提供する。本発明は、例えば、中枢神経系にある、受容体タンパク質における、新規機能を決定する方法に関する。当該方法は、リガンドに曝す時間、リガンド濃度、リガンド曝露間の洗浄回数、及び適用の順番を高精度に制御して、受容体タンパク質を含む細胞又は他の調製物を、リガンドに曝露する、微小流体プロトコルをベースとする。特に、パッチクランプの細胞が、制御された曝露時間で、上昇及び下降濃度のリガンドに周期的に曝露される、サイクル走査パッチクランプ用のプロトコルを実証する。当該方法は、さらに、薬物及び医薬的に活性な物質のような受容体モジュレーターの特定化及び検証のために使用することもできる。
（定義）
以下に詳細な説明で使用される具体的な用語に関して、定義を挙げる。
本明細書で使用する「マイクロチャネル」は、２つの壁、底面、少なくとも１個の入口及び少なくとも１個の出口を含む基板中の溝を言う。一態様では、マイクロチャネルは屋根も有する。「マイクロ」という用語は、寸法において下限を含まず、用語「マイクロチャネル」は、一般的に、「チャネル」と互換的に使用する。マイクロチャネルは、寸法で、約０．１μｍ〜約５００μｍの範囲が好ましく、さらに好ましくは１μｍ〜約１５０μｍである。
本明細書で使用する「位置決め装置」は、それが結合する、対象物又は装置（例えば、基板、センサー、細胞、センサー保持機構など）を動かすことができる機構又は機器を言う。位置決め装置は、ナノメーター（例えば、位置決め装置は、ナノ位置決め装置である）、マイクロメーター（例えば、位置決め装置が、マイクロ位置決め装置）及び／又はミリメーターのような距離にわたって対象物の動きを制御できるのが好ましい。適切な位置決め装置は、少なくともｘ軸方向、ｙ軸方向、又はｚ軸方向に動く。一態様では、本発明による位置決め装置は、また、ユーザーによって規定された任意の回転軸の周りを回転する。好ましい態様では、位置決め装置は、プロセッサと連通する駆動ユニットに結合し、対象物の動きを、プログラムされた指示によるプロセッサ、ジョイスティックの使用、他の類似の機器、あるいはこれらの組合せによって制御する。
本明細書で使用する「センサー保持用機構」は、機構に対して、比較的静止位置中にセンサーを保ち、センサーの少なくとも一部分を受け取る装置を言う。一態様では、当該機構は、センサーの少なくとも一部を受け取るための開口部を含む。例えば、そのような機構は、パッチクランプのピペット、毛細管、中空電極などを含むがこれらに限定されるものではない。
本明細書で使用する「センサーを動かす」という用語は、センサーを直接又はそれ自身が動かされるセンサー保持機構の使用によって、動かすことを言う。
本明細書で使用する「チャンバー」は、底面を囲む、壁（開口部を有していても、有していなくてもよい）によって形成される区域を言う。チャンバーは、「オープンボリューム」（例えば覆われていない）あるいは「閉鎖されたボリューム」（例えば、カバーガラスで覆われている）であってもよい。「センサーチャンバー」は、１つ又はそれ以上のセンサーを受け取るものであり、少なくとも２個のマイクロチャネルから１つ又はそれ以上の壁に出口を含む。しかし、本発明によるセンサーチャンバーは、一般的に、その目的に限定することなく、１つ又はそれ以上のナノスケール又はマイクロスケールの対象物を受け取ることができる。センサーチャンバーは、異なる面（必ずしも平行な面である必要はない）で多数の壁を含むことができ、あるいは普通円筒形である単一の壁（例えば、チャンバーが「円盤形状」の場合）を含むこともできる。センサーチャンバーの幾何学的構造が、本発明の態様を限定するということは意図されていない。１つ又はそれ以上の壁（複数も含む）及び／又は底面は、光学的に透過性であってもよい。一般的に、センサーチャンバーは、サイズで言うと、少なくとも約１μｍである。一態様では、チャンバーの規模は、少なくとも単一細胞、例えば、哺乳類の細胞を受け取るのに充分な大きさである。また、センサーチャンバーは、マイクロチャネルを含む基板から分離したものであってもよい。例えば、一態様では、センサーチャンバーは、ペトリ皿であり、マイクロチャネルとペトリ皿との間で流体連通を可能になるように、マイクロチャネルは、ペトリ皿への基板開口部の表面まで伸びる。
本明細書で使用する「センサー」は、分子が曝露される（例えば、１つ又はそれ以上の分子に結合する化合物の存在など）のような、水性環境中の条件で相互反応した時、測定可能な応答を作りうる１つ又はそれ以上の分子を含む装置を言う。一態様では、分子（複数を含む）は、基板上に固定化され、一方、他の態様では、分子（複数を含む）は細胞の部分である（例えば、センサーは「細胞ベースのバイオセンサー」である）。
本明細書で使用する「ナノスケール又はマイクロスケールの対象物」は、その寸法はｎｍからｍｍの範囲の対象物である。
本明細書で使用する「水性」は、水性ではない他の液体、例えば、アルコール及び他の非水性流体及び液体を含む。
本明細書で使用する用語「細胞ベースのバイオセンサー」又は「バイオセンサー」は、無傷細胞又は無傷細胞の一部（例えば、膜パッチのようなもの）であって、細胞（又はその部分）が置かれている水性環境内の条件を感知した時、検出しうる生理的応答を提供することができるものを言う。一態様では、細胞ベースのバイオセンサーは、パッチクランプの電極又は電解質溶液のような、導電性素子と電気的に連通する細胞膜の全細胞又はその一部である。ある実施形態では、任意の構成の脂質二重層内の受容体及び再構築された受容体タンパク質、又は類似の調製物は、用語バイオセンサーの意味の中に包含される。
本明細書で使用する「受容体を調節すること」は、受容体の応答特性を変更することであり、例えば、受容体を表示記憶に変更することである。これは、例えば、本明細書に記載したサイクリック走査パッチクランプ方法によって行ってもよい。受容体の調節の１例として、ある刺激物（Ｘ）に関し、受容体を同じ刺激物の種々の濃度に曝露することによって、受容体の応答特性を変化させることがある。あるいは、受容体を、同じ効果を有するが異なる反応速度を有するアゴニストに曝露してもよい。他の例として、刺激物Ｘに関して特定の応答をするように、曝露及び洗浄（再感作）時間を制御することもある。
本明細書で使用する「受容体を制御する」は、リガンド、アゴニスト又はアンタゴニストに曝露することによって受容体の特性を変更することを言う。これは、例えば、本明細書に記載されたサイクリック走査パッチクランプ方法によって行うことができる。
本明細書で使用する「受容体を調製する」は、不連続運動状態において受容体（複数を含む）を製造する方法を言い、異なる応答機能、動的領域ＥＣ５０値及びヒルスロープを有することを特徴とする。これは、例えば、本明細書に記載されたサイクリック走査パッチクランプ方法によって行うことができる。
本明細書で使用する「受容体を検討する」は、本明細書で記載した方法及び当分野で公知の方法を使用して、受容体に関する情報を得ること及び分析することを言う。
本明細書で使用する「順番に」は、順送りに、連続して、継続的に及び次々と、を包含するものである。あるいは、中断又は嵌合があってもよい。
本明細書で使用する「順番に曝露する」は、バイオセンサーを、リガンド、サンプル、アゴニスト又はアンタゴニストに、順送りに、連続して、継続的に、次々と曝露すること言い、あるいは、リガンド、サンプル、アゴニスト又はアンタゴニストの緩衝液での中断又は嵌合があってもよい。
本明細書で使用する「コントローラー」は、本明細書で記載された方法を制御又は方向付ける装置、例えば、プログラムされたプロセッサを言う。例えば、コントローラーは、曝露時間、サンプル濃度、洗浄及び休止時間を制御してもよい。また、コントローラーは、圧力、センサーの位置、緩衝液又はサンプルのパルス、バイオセンサー上の又はバイオセンサーを囲む溶液の交換を、独立して制御してもよい。
本明細書で使用する「選定された時間間隔」又は「選定された時間の長さ」は、所望の結果を達成するため、あるいは受容体の検査の目的のために設定された時間間隔を言う。例えば、時間は、曝露時間、洗浄時間又は休止時間として選択されてもよい。
本明細書で使用する「サンプル」は、受容体に関連して目的の提供される溶液又は材料を言う。サンプルは、リガンド、アゴニスト、アンタゴニスト、又は未知の及び検討するべき化合物又は組成物を含んでもよい。
本明細書で使用する「又は」は、包含的であっても、排他的であってもよい。
本明細書で使用する「受容体の記憶特性」は、先の出来事（例えば刺激）のために変更された受容体応答機能（複数を含む）を言い、刺激の性質、洗浄時間及び／又は先の刺激の大きさ（濃度）に依存するかもしれない。例えば、特定濃度のアゴニストに対する応答機能は、先の刺激の適応の履歴に依存して変化するかもしれない。
本明細書で使用する「短期間、中期間又は長期間記憶機能」は、受容体の可塑性（plasticity）を言う。例えば、短期間は、約１μｓ〜約１秒間持ちこたえる受容体の可塑性を含み、中期間は約１秒〜約１０分間持ちこたえる可塑性を含み、長期間は、約１０分〜約５日間持ちこたえる可塑性を言う。可塑性は、受容体の記憶能力を言い、その応答機能を先の出来事（例えば刺激）によって変化させる。
本明細書で使用する用語「受容体」は、リガンド分子と特異的に相互作用することができるマクロ分子を言う。受容体は、脂質二重膜、例えば、細胞膜、ゴルジ膜、又は核膜に関連づけてもよく、遊離して存在させてもよく、細胞の細胞質内の分子と関連づけてもよく、あるいは基板上に固定化されていてもよい。受容体を含む細胞ベースのバイオセンサーは、細胞によって正常に発現させた受容体を含んでもよく、また、天然ではない又は組換えにより発現させた（例えば、トランスフェクト細胞又は卵母細胞内で）受容体を含んでもよい。
本明細書で使用する「周期的に再感作された」又は「周期的応答性」は、リガンドを含む、疑いのある又は公知のサンプルを提供するマイクロチャネル出口を横切って走査される時、閉ざされた（すなわちリガンド応答性）位置に保たれたイオンチャネルを言う。例えば、一態様では、受容体又はイオンチャネルは、サンプル及び緩衝液の交互流れを提供する複数の相互嵌合チャネルを横切って走査することにより、周期的に再感作される。受容体／イオンチャネルが相互嵌合チャネルを横切って走査される時の速度は、サンプルを含む流体流に曝露する時、リガンド応答性状態に受容体／イオンチャネルを保つために使用される。さらに、あるいはそれに代えて、受容体／イオンチャネルを、例えば、１つ又はそれ以上の灌流毛細管を使用して、緩衝液のパルスをイオンチャネルに与えることにより、あるいは、イオンチャネルを含むセンサーチャンバー中の溶液の迅速な交換を提供することにより、周期的に再感作される状態に保つこともできる。
本明細書で使用する「実質的に分離した流体流」は、ボリューム内の流れ又はボリューム内の他の流れの外側に、流体で物理的に連続している流体のボリュームで流れる流体（例えばチャンバー内のような）を言うが、これは流体のボリューム内の流れ又は他の流れの外側の流体のバルク特性とは異なり、非平衡である、少なくとも１つのバルク特性を有する。本明細書で使用する「バルク特性」は、流れの流れる方向に垂直な、流れの断面図の流れにおいて、成分（例えば、薬剤、溶質、物質又は緩衝液分子）の特定の性質の平均値を言う。「特性」には、成分の濃度、温度、ｐＨ、イオン強度、又は速度のような化学的又は物理的特性が挙げられる。
本明細書で使用する用語「連通する」は、インプットデータを他のシステム又はシステムの成分から受け取り、インプットデータに応答してアウトプット応答を提供する、システム又はシステム成分の能力を言う。「アウトプット」は、データの形でもよく、あるいはシステム又はシステムの成分により取られた作用の形でもよい。例えば、「走査機構に連通する」プロセッサは、プログラム指示を、走査機構に対するシグナルの形で送り、先に記載したように、種々の走査パラメータを制御する。「センサーチャンバーに連通する検出器」は、センサーチャンバーに光学的に充分近くにあり、センサーチャンバーからの光学シグナル（例えば、光）を受け取る検出器を言う。チャンバーに「光学連通する光源」は、チャンバーに充分な近接度にあり、そこに含まれるチャンバー又は対象物の光学特性を検出器によって検出できるように、チャンバーからシステム検出器への光路を作る光源を言う。
本明細書で使用する「測定可能な応答」は、所与の技術に適正な制御を使用して、測定されるようなバックグランドとは大きく違う応答を言う。
本明細書で使用する、チャンバー又はマイクロチャンバー「と交差する」出口は、チャンバー又はマイクロチャンバーの壁、底面又は上面に開くあるいは送り込む、あるいはチャンバー又はマイクロチャンバーに含まれる流体ボリュームに送り込む出口を言う。
本明細書で使用する「灌流」は、対象物又はセンサー（例えば細胞）の外側表面を洗浄することを言う。
本明細書で使用する「サイクリック走査パッチクランプ」（ＣＳＰＣ）は、曝露時間（ｔｅｘｐ）、クリアランス時間（ｔｗａｓｈ）及び中間サイクル時間（ｔｒｅｓｔ）に関して、各サイクルを制御する受容体エフェクターの固定濃度勾配によって、パッチクランプの細胞を前後に走査する方法を言う。これは、他のシステム、例えば、検出の好ましい方法が、蛍光発光であり、あるいは電気化学的、ＳＰＲ、又は機能的受容体タンパク質検討の分野において公知の他の方法である、Ｇタンパク質結合受容体（ＧＰＲＣ）に適用してもよい。
微小流体装置という用語は、ミクロ加工されたチップ、毛細管システム、Ｕチューブ、液体フィラメント及び微小流体流れ上のシータガラスなどが挙げられ、これらは、細胞及びバイオセンサー周辺の溶液交換に関して低レイノルズ数挙動を特徴とする。
本明細書で使用する「リガンド」という用語は、受容体に結合して活性化又は不活性化のどちらかになる分子を言う。リガンドは、受容体上で、アゴニスト又はアンタゴニストとして作用することができ、あるいは他のアゴニスト又はアンタゴニストによる受容体の応答を調節することによって、作用することができる。
本明細書で使用する「用量応答」という用語は、受容体タンパク質系からの応答のリガンド濃度に伴う変化の仕方を言う。
「ＥＣ５０値」、「ＩＣ５０値」及び「ヒルスロープ」という用語は、受容体タンパク質系の肉眼的特性を言い、Ｓ字型ロジスティックヒル機能あるいは当分野で公知の他の機能に合わせた用量応答機能から誘導される。
「ｔｅｘｐ」という用語は、リガンドに曝す時間を言う。
「ｔｗａｓｈ」という用語は、バイオセンサーを洗浄溶液（リガンドを含まない溶液）に曝露することを言う。
「ｔｒｅｓｔ」という用語は、洗浄溶液（リガンドを含まない溶液）受容体中タンパク質の休止期間を言い、あるいは異なるリガンドを結合するあるいは結合しない構造中に残存する類似のものを検討、制御及び調製することができる。受容体タンパク質を含む細胞又はバイオセンサー周辺の溶液交換に関し、時間を＜１ｍｓに制御することにより、ＧＡＢＡＡ受容体、ＧＩｕ３受容体、ＮＭＤＡ受容体のような（しかしこれらに限定されない）高速受容体システムに関して、異なる状況で受容体の分布を制御することが可能である。これは、細胞及び／又はセンサー周辺の溶液環境の濃度及び曝露時間が規定されている微小流体装置を用いることによって行われ、そのような装置の例が図２８である。
受容体の動力学的スキームに依存して、別々のサブ集団において異なる状態に分離することが可能であるということが発見されている。以下に示す実施例において、ＧＡＢＡＡ受容体について、これがどのように行われるかを示す（図２９）。当該方法は、一般的に、受容体タンパク質全て、例えば、適正な状態にある、又は異なる速度定数によって分離された非活性化状態の結合を有する受容体タンパク質に適用可能である。
異なる状態にある受容体の集団は、異なる応答機能、動的領域、ＥＣ５０値及びヒルスロープによって特定化される（図３１及び３２）。用量応答関係を、リガンド曝露時間が異なる時間について測定する。異なる結合状態の存在を制御する速度定数に応じて、用量応答機能は異なり、動的領域、ＥＣ５０値及びヒルスロープに関し、別々の値となる。
非活性の結合状態に応じて分離した集団内の受容体の分布は、薬物などの受容体モジュレーター及び医薬的に活性な物質の効率及び潜在性に関する詳細なデータを得るために使用することができる。これは、現存する薬物の副作用を試験し、避けるための方法として使用すること、及びデータを基準化し、形成されていない実験プロトコルを得るための方法として薬物選別において使用することができる。
脱感作された状態のような非活性の異なる状態の受容体の蓄積は、シナプスシグナル伝達における、受容体応答を規制している要因である。さらに、活性化後の受容体は異なる状態で停止することができること、そしてこれら状態の分布が、受容体の続いて起こる応答の方法に影響を与えることことが可能である。これらの状態の分布は、リガンド刺激の頻度及び継続時間に依存し、そして曝露時間に応じて、受容体は異なる状態に釣り合うことになる。リガンドの繰返し適応は、脱感作の早期、中期及び低速の存在に依存する大規模な脱感作を示すＧＡＢＡＡ受容体の明白な阻害となる。これは、ゆっくりと脱感作する状態が、ＧＡＢＡの簡易パルスの繰返し活性化の条件下で蓄積することを強く示唆する。
（システム）
一態様では、システムは、複数のマイクロチャネル（それらの出口は、１つ又はそれ以上のセンサーを含むセンサーチャンバーと交差する、又はそこに送り込む）が、その上に加工された基板を提供する。当該システムは、１つ又はそれ以上のセンサーに関連するマイクロチャネルの位置をプログラム可能に変更する走査機構、及びセンサーを異なるチャネルからの溶液に曝露させた場合の応答をモニターする検出器を備える。好ましい態様では、センサーチャンバーは、電極に電気的に連通する細胞ベースのバイオセンサーと、細胞ベースのバイオセンサーの電気的特性における変化を検出する検出器とを含む。
当該システムは、好ましくは、走査機構（例えば、機械的に又はマイクロチャネルを横切るプログラム可能な圧力効果による）による走査速度の制御、基板の１つ又はそれ以上のチャネルによる流体流れの制御、流体流れを誘導するために存在するバルブ及びスイッチの走査の制御、検出器によって検出されるセンサー応答の記録、及びセンサー応答に関係するデータの評価及び表示など（これらに限定されないが）を含むシステム操作を実行するプロセッサを含んでいる。好ましくは、当該システムは、システムの操作を表示し、システムパラメータを変更するグラフィカルインターフェースを含むシステムプロセッサに連通するユーザー装置を含む。
（基板）
好ましい態様では、システムは、溶液を、センサーチャンバー内に少なくとも部分的に含まれるセンサーの１つ又はそれ以上に送達する基板を含む。基板は、以下にさらに記載するように、二次元（２Ｄ）又は三次元（３Ｄ）構造として構成することができる。基板は、２Ｄでも３Ｄでも、一般的に、その出口が１つ又はそれ以上のセンサーを受け取るセンサーチャンバーに交差している複数のマイクロチャネルを含む。センサーチャンバーの底面は光学的に透過性があり、センサーチャンバー内に置かれた１つ又はそれ以上のセンサーから光学データを収集することが可能である。センサーチャンバーの上面が、例えばカバーガラスによって覆われている場合、又は基板が重なっている場合、チャンバーの上面は、光学的に透過性であるのが好ましい。
各マイクロチャネルは、少なくとも１つの入口（例えば、サンプル又は緩衝液を受け取るために）を含む。好ましくは、当該入口は、基板上の幾何学的構造及び配置からウェルの幾何学的構造及び配置まで、工業規格のマイクロタイタープレートに統一されている貯蔵部（例えば、図２Ａ及びＢ中の円として示されている）からの溶液を受け取る。基板は、システムの除去可能な成分であり、したがって、一態様では、本発明は、システムでの使用のための１つ又はそれ以上の基板を含むキットを提供し、これは、異なるチャネル幾何学構造の中から選択するオプションをユーザーに提供する。
異なる基板材料の限定するものではない例示として、結晶性半導体材料（例えば、シリコン、シリコン窒化物、Ｇｅ、ＧａＡｓ）、金属（例えば、Ａｌ、Ｎｉ）、ガラス、石英、結晶性絶縁体、セラミック、プラスチック又はエラストマー材料（例えば、シリコーン、ＥＰＤＭ及びホスタフロン）、他の重合体（例えば、テフロン（登録商標）のようなフッ素重合体、ポリメチルメタクリレート、ポリジメチルシロキサン、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリブチレン、ポリメチルペンテン、ポリスチレン、ポリウレタン、ポリ塩化ビニル、ポリアリレート、ポリアリールスルホン、ポリカプロラクトン、ポリエステルカルボネート、ポリイミド、ポリケトン、ポリフェニルスルホン、ポリフタルアミド、ポリスルホン、ポリアミド、ポリエステル、エポキシ重合体、熱可塑性プラスチックなど）、他の有機材料及び無機材料、及びこれらの組合せが挙げられる。
マイクロチャネルは、当分野で常用される方法、例えば、ディープ反応性イオンエッチング（以下の実施例１でさらに記載する）を使用して、これらの基板の上に加工することができる。チャネル幅は、以下にさらに記載するように、用途に応じて変えることができ、普通、約０．１μｍ〜約１０ｍｍ、好ましくは約１μｍ〜約１５０μｍの範囲であり、一方センサーチャンバーの寸法は、チャンバーへ送り込むチャネル出口の配列に従って変える。例えば、出口が他のものに対して実質的に並行の場合（例えば、図２Ａ〜Ｃのような）、チャンバーの縦軸の長さは、少なくとも、チャンバーへ送り込む出口の幅の合計である。一態様では、全細胞バイオセンサーがセンサーチャンバー中のセンサーとして使用される場合、マイクロチャネルの１つ又はそれ以上の出口の幅は、少なくとも細胞のほぼ直径である。好ましくは、出口のそれぞれの幅は、少なくとも細胞のほぼ直径である。
一態様では、ガラスのような光学的透過性材料の被覆層は、当分野で常用される方法を使用して基板に結合することができ、従来のマイクロピペットベースのパッチクランプ検出システムと接する場合、開口部を残して、貯蔵部及びセンサーチャンバーを覆うのが好ましい。センサーチャンバーの底面も光学的に透過性で、センサーからの光学データの収集を促進するのが好ましい。
（センサー）
（細胞ベースバイオセンサー）
システムは、種々の細胞の応答をモニターするために、細胞ベースのバイオセンサーと連結して使用することができる。バイオセンサーは、マイクロ位置決め装置、ナノ位置決め装置又はマイクロマニピュレーター、又は光学ピンセットのような位置決め装置に連結されたピペット、毛細管又はカラムのようなセンサー（静止でも可動でもよい）を保持する機構を使用するセンサーチャンバー内に配置されている、あるいは流れ又は表面張力を制御し、細胞ベースのバイオセンサーをチャンバー内の溶液に曝露することによって、全細胞又はその一部（例えば、細胞膜パッチ）を含むことができる。バイオセンサーは、基板を動かす、すなわち、バイオセンサーに対するチャネルの位置を変化させることによって、又は細胞を動かす（例えば、マイクロ位置決め装置の走査又は流れ及び／又は表面張力を変化させる）ことによって、基板の種々のチャネルにわたって走査することができる。
一態様では、細胞ベースのバイオセンサーは、イオンチャネルを含み、システムは、イオンチャネル活性をモニターするために使用される。適切なイオンチャネルとして、電圧で開口されるイオンチャネル、リガンド、内因性カルシウム、他のタンパク質、膜伸張（例えば、側膜張力）及びリン酸化（例えば、Hille B., In Ion Channels of Excitable Membranes 1992, Sinauer, Sunderland, Massachusetts, USA）が挙げられる。
他の態様では、イオン開口型チャネルは、電圧開口型チャネルである。電圧開口型チャネルは、膜貫通の電圧閾値に応答して開放する。電圧開口型ナトリウム、カリウム及びカルシウムチャネルは、全て、活動電位（又は、神経パルス）を軸索に下げて、他の神経細胞（又は、ニューロン）に伝導するために必須である。これらのイオンチャネルは、一般に、リジンを有する膜貫通配列及び／又は高アルギニンＳ４共有配列を含む。Ｓ４配列内の正のアミノ酸は、配列を含むイオンチャネルを異なる電圧条件のもとで開閉させる、細胞膜を横切る「感知」電圧であると考えられている。
他の態様では、細胞ベースのバイオセンサー中のイオンチャネルは、リガンド開口型チャネルである。リガンド開口型チャネルはリガンド結合に応答して開口（開放又は閉鎖）する。細胞内のリガンドによって結合した時開口するものと、細胞外のリガンドによって開口するものとの２つのタイプのリガンド開口型チャネルがある。細胞の外側からリガンドによって開口されるイオンチャネルは、化学的シナプス情報伝達において非常に重要である。イオンチャネルのこれらのタイプは、現実に２つの神経細胞間でシグナルを運ぶ小分子である、神経伝達物質によって開口される。細胞の内側から作動されるイオンチャネルは、細胞内の小さなシグナル分子である第二メッセンジャーによって一般的に制御される。細胞内カルシウムイオン、ｃＡＭＰ及びｃＧＭＰが、第二メッセンジャーの例である。最も一般的なカルシウム開口チャネルは、カルシウム開口カリウムチャネルである。このイオンチャネルは、正のフィードバック環境に置かれた時、膜電圧変化で振動性挙動（例えば、内耳有毛細胞の周波数同調のため）を起こす。
さらに他の態様では、イオンチャネルは、他のタンパク質によって開口する。イオンチャネルを直接開口するあるシグナルタンパク質が発見された。これの１例として、Ｇタンパク質のβ−γサブユニットによって開口されるカリウムチャネルがあり、これは、ある膜受容体によって活性化された通常のシグナルタンパク質である。
さらなる態様では、イオンチャネルは、リン酸化によって開口される。リン酸化は、タンパク質キナーゼ（例えば、セリン、トレオニン又はチロシンキナーゼ）によって、例えば、シグナル伝達カスケードの一部として、媒介されうる。
更に別の態様では、細胞ベースのバイオセンサーは、機械的誘因によって直接開口されるメカノトランスダクション（mechanotransduction）・チャネルを含む。例えば、細胞ベースのバイオセンサーは、音などの機械的振動によって直接開口される、内耳有毛細胞のカチオンチャネルを含みうる。特定の方向に毛束を曲げることによって、チャネル開口部の可能性、したがって受容体電流の脱分極性の振幅に影響を与える。
他の態様では、細胞ベースのバイオセンサーは、受容体、好ましくはシグナル変換（transduction）経路に関与する受容体を含む。例えば、細胞ベースのバイオセンサーは、Ｇタンパク質結合受容体又はＧＰＣＲ、グルタミン酸受容体、代謝調節型受容体、造血系受容体又はチロシンキナーゼ受容体を含むことができる。疾患の進行を阻止する又は調節する薬物に感受性があるように、組換え受容体を発現するバイオセンサーをも設計することができる。
バイオセンサーを含む適切な細胞として、ニューロン、リンパ球、マクロファージ、ミクログリア、心細胞、肝細胞、平滑筋細胞、及び骨格筋細胞が挙げられるが、これらに限定されるものではない。一態様では、哺乳類の細胞が使用される。これらには、チャイニーズハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ）細胞、ＮＩＨ−３Ｔ３、及びＨＥＫ−２９３細胞のような培養細胞が含まれ、組換え分子（例えば、組換え受容体及び／又はイオンチャネル）を発現することができる。しかしながら、バクテリアの細胞（大腸菌、バチルス菌、ブドウ糖菌など）、原生生物細胞、酵母菌細胞、植物細胞、昆虫及び他の無脊椎動物の細胞、トリ類細胞、両生類細胞及び卵母細胞も使用することができ、これらは組換え分子の発現に非常に適している。細胞は、一般的に、当該技術分野で公知の細胞培養技術を使用して細胞培養株から、あるいは１回以上の精製（例えば、フローサイトメトリー、パニング（panning）、磁気選別など）の後、解剖した組織から調製する
（非細胞センサー）
一態様では、センサーは、基板上に固定化された、センサー素子、好ましくは、細胞標的（例えば、細胞内受容体、酵素、シグナリングタンパク質、細胞外タンパク質、膜タンパク質、核酸、脂質分子など）である分子を含む。基板は、センサーチャンバーそれ自身の底面であっても、あるいは、チャンバーの底面上に置かれた基板であっても、又はチャンバー内に静止して置かれた（例えば、マイクロ位置決め装置を介して）、可動性の又は静止した基板であってもよい。
センサーは、固体の基板、基板に結合する１つ又はそれ以上の付着層、及び１つ又はそれ以上のチャネル出口からセンサーチャンバーへ導入された化合物を感知するための感知性分子、の任意の組合せを含みうる、１層又は数層で構成されてもよい。本発明による適切なセンサーは、免疫センサー、アフィニティーセンサー及びリガンド結合センサー（これらに限定されない）が挙げられ、これらのそれぞれが、例えば、特定の用量変化、電気化学反応、又は光学シグナルの生成（例えば、蛍光、又は感知性分子の光学スペクトルにおける変化）のような、測定可能な応答を一般化することにより、結合相手の存在に対応しうる。そのようなセンサーは、例えば、米国特許第６，３３１，２４４号に記載され、その全体を参照により、本明細書に組み込む。
一態様では、センサーは、電子を移送する分子で変性するマイクロ電極を含む。マイクロチャネルの１つからの水性流中の１つ又はそれ以上の化合物との接触により引き起こされる化学反応に対して、分子は、電極表面における電気特性における変化を生み出す。例えば、分子は、相互反応する分子の還元又は酸化によってシグナルを伝達する電子移送酵素又は分子を含みうる（例えば、「Gregg et al., J. Phys. Chem. 95;5970-5975, 1991」;「Heller, Acc. Chem. Res. 23(5):128-134, 1990」;「In Diagnostic Biosensor Polymers. ACS Symposium Series. 556」;「Usmani, AM, Akmal, N; eds. American Chemical Society; Washington, D.C.; pp.47-70, 1994」; 米国特許第５，２６２，０３５号の記載を参照されたい）。酵素反応も電界効果トランジスタ（ＦＥＴ）又はイオン感応性電界効果トランジスタ（ＩＳＦＥＴ）を使用して行うことができる。
他の態様では、センサーは、電子部品に連通する石英チップのような固体基板上に固定化された感知性分子を含む。電子部品は、センサー素子と１つ又はそれ以上のセンサーチャンバーに送達される化合物との相互作用の測定として、電圧、電流、光、音、温度、又は質量の任意のものの変化を測定して選択することができる（Hall, Int. J. Biochem. 20(4):357-62,1988；米国特許第４，７２１，６７７号；米国特許第４，６８０，２６８号；米国特許第４，６１４，７１４号；米国特許第６，８７９，１１号の記載を参照されたい）。例えば、一態様では、センサーは、センサー素子が結合する、音波バイオセンサー又は水晶マイクロバランスを含む。この実施形態では、マイクロチャネルからセンサー素子へ送達される水性流の化合物が結合する時、システムがセンサーの共鳴特性における変化を検出する。
他の態様では、センサーは、光学バイオセンサーを含む。光学バイオセンサーは、表面プラズモン共鳴、全内部反射蛍光（ＴＩＲＦ）、臨界角屈折分析、ブルースター角顕微鏡観察、光学導波管ライトモードスペクトル観察（ＯＷＬＳ）、表面電荷測定及びエバネセント波偏光解析のような検出原理に基づき、これらは当該技術分野で公知である（例えば、米国特許第５，３１３，２６４号；欧州特許公開公報第００６７９２１号；欧州特許公開公報第０２７８５７７号；「Kronick et al., 1975, J. Immunol. Meth. 8:235-240」を参照されたい）。
例えば、エバネセント波偏光解析を使用するセンサーに関して、化合物の感知性分子への結合に関連する光学応答は、反射の際の楕円偏光の分極の状態での変化として測定する。分極の状態は、感知する表面での結合サンプル（例えば、センサー素子を含む基板）の屈折率、厚さ、及び表面濃度に関係する。ＴＩＲＦにおいて、もともと蛍光性である又は蛍光標識化されたサンプル分子から放出された放射線のセンサーでの強度及び波長を測定する。エバネセント波励起散乱光技術は、光の感知性分子（結合化合物を伴う又は伴わない）との相互作用による、センサー表面で散乱する放射線の強度の測定に基礎を置く。表面プラズモン共鳴法（ＳＰＲ）は、金属薄膜基板に近いセンサー分子の層の屈折率の変化を測定する（例えば、「Liedberg et al., 1983, Sensors and Actuators 4:299」；英国特許第２１９７０６８号を参照されたい）。これらの感知スキームはそれぞれ、本発明による有用なセンサーを提供するために使用することができる。
更に別の態様では、センサーは、蛍光半導体ナノクリスタル又は量子ドット（Quantum Dot（登録商標））粒子に関連する感知性分子を含む。量子ドット粒子は、特徴的なスペクトル発光を有し、これはその組成及び粒径に関連する。センサー素子への化合物の結合は、量子ドット粒子の放出をモニターすることによって検出することができる（例えば分光的に）（例えば、米国特許第６，３０６，６１０号を参照されたい）。
センサーは、更に、化合物が重合体上のセンサー素子に結合する時、物理学的特性が変化するポリマーに基づくバイオセンサーを含むことができる。例えば、結合は、容積の変化（例えば、膨潤あるいは収縮）、電気特性の変化（例えば、電圧、電流又は共振変化）、又は光学特性変化（例えば、伝送効率の変調又は蛍光強度の変化）として明らかにすることができる。
種々の異なるタイプのセンサーが、本発明の用途で適用され、上記の例示は限定するものではないことは、当業者には明らかであろう。
一般に、１つ又はそれ以上のセンサーの測定アウトプットは、検出装置及び／又はシステムプロセッサに電気的に連通する、制御及び評価装置に連結する。制御及び評価装置は、センサーの基板及び／又は感知チャンバーの底板に集積することができる。制御及び評価装置は、マイクロプロセッサ、マルチプレイクサー、ＩＯユニットなどのような種々の電子部品を含みうる（例えば、米国特許第６，２８０，５８６号の記載を参照されたい）。
（微小流体）
好ましい態様では、本発明による基板は、サンプル及び／又は緩衝液のセンサーチャンバーへの微小流体移送に適応している。
（微小流体構造のウェルプレートとの接続）
サンプル−ウェルプレート（例えば、９６ウェルプレートのような工業規格のマイクロプレート）内に含まれるサンプル（すなわち薬物など）を、好ましくは、当該技術分野で公知の自動ロボットアレー分注器（例えば、「Beckman′s Biomek 1000&2000 automated workstations, Beckman Coulter,Inc., Fullerton, CA」から入手可能）を使用して、操作し、転送する。
ウェルプレート中のサンプルを配置するために使用される同じサンプル転送プラットホームを活用させるための、１つの重要な設計パラメータは、前記チップ中の貯蔵部配列と、そのようなアレー分注器での使用との適合性を確実にすることである。例えば、微小流体チップ内の貯蔵部は、各貯蔵部の中心間の距離が、チップが接するウェルプレートの各ウェルの中心間の距離と一致するように配列するのが好ましい。好ましくは、各貯蔵部は、アレー分注器からの流体の流れを大きく邪魔することなく、アレー分注器からの流体流を受け取るのに適した径を有する。
アレー分注器に加えて、ロボット式逐次分注器のような、サンプルをウェルプレートからチップに転送するための他の適切な自動装置がある。これらの他の装置の使用が、貯蔵部及びマイクロチャネルのチップ上へのより柔軟な配置を可能にし、チャネルパラメータの設計においてより大きな柔軟性を与えるということは、注目すべき重要な点である。これらの分注器の広範な用途により、９６ウェルアレー分注器間の接続に適切な基板を、以下に詳細に記載するが、貯蔵部のチップ及び配置の一般的な設計は、そのようなプラットホームが進化するにつれ、任意の所望のサンプル転送プラットホームと接続するために、修正しうることは、当業者には明らかなはずである。一般的に、９６ウェルプレートを参照するが、これに限定されるものではない。
図２Ａ及び２Ｂは、本発明による微小流体チップの例を示し、９６ウェルプレートとの接続に適切である。図２Ａは、緩衝液貯蔵部を必要としない貯蔵部配列を示す。図２Ｂは、緩衝液及びサンプルの交替型（すなわち相互嵌合）流れがセンサーへ提供される適応用の貯蔵部配列を示す。この配列において、リガンド及び緩衝液貯蔵部の両方に関して、中心間の距離は、９６ウェルプレートのウェルの中心間の距離と同じである。チップ上の貯蔵部の数の２倍化を補償するため、全貯蔵部の直径を半分に減らす。
図３は、従来の自動ロボットアレー分注器を使用して、サンプル溶液をどのようにして９６ウェルプレートのウェルから本発明の一態様に依るチップ上の貯蔵部に転送できるのかを示す。相互連結したリガンド及び緩衝液貯蔵部を有するマイックロチップ（例えば、図２Ｂ中に示されるように）に関して、緩衝溶液は、１つの槽（１つだけの緩衝液が必要な場合）から、又は同じ又は異なる緩衝液を含むウェルを有する９６ウェルプレートから、転送することができる。
サンプル及び／又は緩衝液の供給源との接続に必要な貯蔵部（例えばウェルプレート）に加えて、細胞又は他の目的のサンプルを貯蔵及び転送するためにチップ上に置かれる付加的な貯蔵部があってもよい。図２Ｃは、本発明の一態様による、細胞をチップの貯蔵部又はセンサーチャンバーへ貯蔵及び移送するための付加的な貯蔵部及びマイクロチャネルの可能性のある配置を示す。
細胞チャンバーは、細胞のオンチップ操作を行うために適応することができる。一態様では、チップは、電気せん孔法、エレクトロインジェクション（electroinjection）及び／又は電気融合の１つ又はそれ以上を行うために、１つ又はそれ以上の細胞処置チャンバーを提供する。化学剤及び／又は分子を、電流源に電気的に連通するチャンバー内の細胞に導入することができる。例えば、１つ又はそれ以上の電極をチャンバーに近接して配置してもよく、国際公開公報第９９／２４１１０号（当該公報の全体は参照によって本明細書に組み込まれる）に記載されるように、チャンバーを、例えば、電極／毛細管アレーから電流を送りうる電解質溶液を受け取るように構成することもできる。
細胞処置チャンバーに導入することができる適切な分子として、核酸（遺伝子フラグメント、ｃＤＮＡ、アンチセンス分子、リボザイム、及びアプタマーを含む）；抗体；タンパク質；ポリペプチド；ペプチド；類縁体；薬物；及びこれらの変性体が挙げられるが、これらに限定されない。好ましい態様では、システムプロセッサは、分子の１つ又はそれ以上の細胞処置チャンバーへの送達（例えば、先に記載したように、毛細管アレーを介して）及び培養条件（例えば、時間、温度など）の両方を制御する。例えば、細胞を、ｍＲＮＡの転写；タンパク質の発現；遺伝子、ｍＲＮＡ及び／又はタンパク質の不活性化；核酸又はタンパク質の化学標識付け；核酸又はタンパク質の改変又は加工；経路又は毒素の不活性化；及び／又は表現型の発現（例えば、形態における変化）のような所望の生物活性が現われるまで、適切な時間、培養することができる。
処置された細胞は、例えば、センサーを、分泌された分子又は細胞の表面上に発現された分子に曝露するなど、目的の分子を、センサーチャンバー内のセンサーに送達するために使用することができる。この態様では、システムを、細胞を細胞処置チャンバーからセンサーチャンバーと交差するシステムのチャネルへ放出するようにプログラムすることができ、これによって、センサーチャンバー内のセンサーを目的の分子に曝露する。
あるいは、又はそれに加えて、システムを細胞ベースのバイオセンサーに連結して使用する場合、細胞処置チャンバーを、バイオセンサーそれ自身を調製するために使用することができる。一態様では、細胞を、処置チャンバーから、出口がセンサーチャンバーと交差するチャネルへ送達する。一態様では、システムの走査機構は、マイクロ位置決め装置がセンサーチャンバー内の細胞を位置づけできるように、マイクロ位置決め装置を出口に近接して配置するために使用される。他の態様では、流体流れ又は表面張力を、細胞を適切な位置に位置決めするために使用する。例えば、システムを、細胞を、パッチクランプシステムの一部であるピペットの開口部に送達するために使用することができる。
他の態様では、細胞を、センサーチャンバー内の細胞ベースのバイオセンサーを周期的に置き換えるセンサーチャンバーに送達することができる。この態様では、細胞を処理しなくてもよく、例えば、先行センサー細胞として、実質的に遺伝的及び薬理学的に同一の細胞（すなわち、正常な生物学的変動内）を提供する。あるいは、再配置細胞を、先行センサー細胞とは異なるように生化学的又は遺伝子的に操作し、センサー応答における相違を伴い、細胞の生化学的及び／又は遺伝子的特長の相違をモニター及び相関できるシステムを実現することができる。生化学的又は遺伝的相違は公知でも未知でもよい。
システムを、細胞を細胞処置チャンバーから、細胞による化学物質及び分子の取込みをモニターする対照実験に基づく所定の時間で送達するように、プログラムすることができる。あるいは、システムは、細胞の表現型をモニターして、ある表現型が発現した時に細胞を送達することができる。例えば、一態様では、細胞処置チャンバーは、細胞の光学特性に関する情報をシステムプロセッサに提供する光学センサーと連通し、特定の表現型の発現を示す光学パラメータに応答して、システムは、細胞処置チャンバーからの細胞の放出を誘導することができる。光学パラメータは、対照実験で同定される蛍光レポーター分子又は光学パラメータの取込みを含むことができる。
微小流体を有するオンチップ電気せん孔法とパッチクランプ（あるいは細胞応答をモニターする他の方法）との組合せは、細胞内標的の活性を調節する分子（例えば、リガンド又は薬物）の選別を容易にする。一態様では、細胞不透過性分子を、細胞の一過性電気穿孔法によってある細胞の内部に送達するためにシステムを使用する。この方法では、分子を細胞内受容体、細胞内タンパク質、転写制御因子、及び他の細胞内標的に導入することができる。細胞をセンサーチャンバーに送達することができ、細胞の応答をモニターすることができる（例えば、分子を蛍光ラベルで標識する場合、パッチクランプ又は蛍光物質によって）。あるいは、センサーチャンバーを処置及び応答検出の両方を行うように修正することができる。
さらなる態様では、システムを、走査による電気せん孔法を行うように修正することができる。例えば、異なる化合物を含む複数の異なる流体流にわたって、移動又は走査されるように、細胞を繰返し電気せん孔法導入することができる。一態様では、サンプル流れに接触するよう、細孔を１つ又はそれ以上の細胞に導入し、サンプル流れ中の化合物を細胞に取り上げられるようにすることができる。
（センサー周辺の溶液環境の迅速な変更）
本発明の中核をなすものは、流体中に含まれる化合物又は試薬の複雑な操作のために、異なる溶液のセンサーチャンバー内のセンサーへの繰返し及び迅速な送達を可能にする方法で、ミクロ加工されたチャネルの二次元（２Ｄ）及び三次元（３Ｄ）ネットワークを使用することである。例えば、当該システムで使用される微小流体は、リガンドを、受容体を含む細胞ベースのバイオセンサーにプログラム可能に送達するシステムを可能にする。これは、サンプル（例えば化合物ライブラリー）のＨＴＳ選別用に使用されるシステムがバイオセンサーの応答における化合物の効果をモニターすることを可能にする。一態様では、細胞ベースのバイオセンサーの電気特性を、電圧クランプ又はパッチクランプ技術を使用してモニターする。
システムがセンサーに対するチャネルの位置を変更するための走査機構を提供するので、システムは、サンプル化合物への曝露の後、緩衝液を有する細胞ベースのバイオセンサーを洗い流すために使用することができ、次の化合物への曝露の前に、バイオセンサーの一部である受容体又はイオンチャネルを再感作させることが可能となる。したがって、システムは、受容体機能を有する潜在的なモジュレーター（例えば、アゴニスト又はアンタゴニストのような）への曝露用の周期的再感作受容体を提供することができる。脱感作しない受容体に関しても、緩衝液の受容体へのパルス送達を提供し、（例えば、受容体から結合していないリガンドを除去する）、特異性を強化し及び／又は応答の背景を減少するため、当該システムは有利である。
マイクロチャネルの異なるネットワーク構造の形状は、ミクロの寸法での流体挙動の固有の特徴を利用するように、設計される。３つの例示的な設計を以下に記載する。
第一の設計は、センサーを、チャネルを横切って移動させることによって、あるいは、１つ又はそれ以上のセンサーに対するチャネルを含む基板を移動させることによって、１つ又はそれ以上のセンサーを、チャネル出口から流れる流体の異なる流れを横切って、迅速に移送させるシステムの能力に基づく。また、当該システムは、基板の個々のチャネルの全部で圧力低下を変化させることによって、静止センサーの全部で異なる流体流を一掃することができる。この設計は、新規で独創的な流体挙動の発見から導かれる。すなわち、流体流が一連の小間隔配置のマイクロチャネルからオープンボリュームへ排出する時の側面相互作用及び隣り合う流体流の間の結合は、これらの流れが依然として平行化された状態の距離を劇的に伸ばすことができる。第二の設計は、低レイノルズ数での流体挙動の回復能を利用し、一方、第三の設計は、マイクロチャネル及びチャンバー内の迅速な流体交換能に基礎を置く。
これらの設計に通ずるテーマは、１つ又はそれ以上のバイオセンサーが残存する局所溶液微小環境を迅速及び効率的に変更し、完全なあるいはほぼ完全な溶液交換を提供する、微小流体ベースのアプローチである。当該システムは、小容量（数ｎＬ〜数μＬ）のサンプルが必要であり、ＨＴＳに適用するため簡単に自動化でき、プログラムできる。
（流体の異なる流れにわたるセンサーの迅速な移送）
本発明による基板の複数のマイクロチャネルに存在する隣接する流体流は、低いレイノルズ数を有し、拡散による混合を最小限受ける。例えば、拡散係数が約５×１０−６ｃｍ２／ｓの小分子は、１０μｍ拡散するのに約０．１秒かかるが、拡散時間は距離の２乗で変化する（ｘ２＝２Ｄｔ（式中、Ｄは拡散係数である））ため、１００μｍの拡散に１０秒かかる。同様に、Ｄ〜１０−６ｃｍ２／ｓの代表的なタンパク質に関しては、１０μｍの拡散に０．５秒かかり、１００μの拡散に５０秒かかるだろう。
しかし、マイクロチャネル中の流速は、数メーター／秒からマイクロメーター／秒まで劇的に変化することができる。本発明のシステムにおける流速は、センサーの活性を邪魔することなく使用することができる最大流速に限定される。例えば、パッチクランプのセンサーを使用する場合、チャネル開口部に位置するピペットからのパッチクランプの細胞の除去を防ぐために、パッチクランプの細胞に関して、流速は、普通、数百μｍ／秒からｍｍ／秒のオーダーである（以下の説明を参照されたい）。
（センサーチャンバーへ流れ出る多数の流体流の流動）
複数のマイクロチャネルを使用する場合、マイクロチャネルの出口とオープンボリューム貯蔵部との間の界面での流体の多数の流れの流動プロフィールの理解は必須である。図１６Ａ及び１６Ｂは、単一チャネル（図１６Ａ）及び多数のチャネル（図１６Ｂ）からの、５００μＭの蛍光染料（フルオロレスセイン）を含む流体の流動プロフィール顕微鏡写真を示す。蛍光トレーサーの励起は、落射照明構成で、４８８−ｎｍラインのアルゴンイオンレーザーを使用して行い、トレーサーの蛍光を、ＣＣＤカメラを使用して集め、画像化した。図１６Ａに示すように、隣接するマイクロチャネル及び流体流がない場合、流体は、単一チャネルから流れ出し、半円形様式で、チャネル出口で分散する。図１６Ｂは、複数のチャネル出口から流れ出す、相互連結した緩衝液及びフルオレセイン流体流の流動プロフィールを示す。マイクロチャネルの寸法は、１００μｍ幅、５０μｍ厚さであり、チャネル間の間隔は２５μｍであった。図１６Ａ及び１６Ｂにおけるマイクロチャネル中の流速は４ｍｍ／秒であった。
図１６Ｂに示すように、多数のマイクロチャネルからオープンボリュームへ流れ出す流体流は、約４ｍｍ／秒の流速で、少なくともマイクロチャネルの幅の約４〜５倍（例えば、約数百マイクロメーター）の距離は、視順化されている。低速流速（すなわちｍｍ／秒）のこの範囲では、流体の流速が拡散よりかなり速い。例えば、ｍｍ／秒の流速で、チャネル幅１０μｍ及びチャネル間隔（チャネルの間の空間）が１０μｍの場合、異なるチャネル出口から流れ出る小分子（Ｄ＝５ｘ１０−６ｃｍ２／ｓ）を含む流体の異なる流れは、チャネル出口から少なくとも約０．４ｍｍ下流の距離まで、充分に混合しないであろう。これは、チャネルの出口の外側１０〜２０μｍに置かれている、約１０〜２０μｍの直径を有する代表的な哺乳類の細胞の測定を行うには充分すぎる。拡散時間は距離の２乗で変化するので、マイクロチャネルの幅と間隔を倍の２０μｍにすれば、下流の距離は、細胞が少なくとも約１．６ｍｍに配置できる距離まで延びる。流れの平均線速度は、正確な用途によって変わるが、１０μｍの細胞に関して、一般的な流速は、約１００μｍ／秒から約１０ｍｍ／秒の範囲である。したがって、センサーを、マイクロチャネル出口から流れ出る流体の、実質的に異なる、分離した水性流を横切って走査することができる。
パッチクランプ測定での用途用の好ましい流速及び細胞−出口間距離が約２０μｍ以下で、異なる流体流は、必然的に区別され、分離され、パッチクランプの細胞の存在により拡散されない。パッチクランプ測定で使用されていもよい非常に低い流速（例えば、＜１００μｍ／秒）でさえ、異なる流体流はよく分離される。この流体流のマイクロチャネルのオープンボリュームセンサーチャンバーへの出口で観察される挙動（例えば流体流の平行化）は、異なる流体流に関し、パッチ細胞の比較的迅速な移動を必要とするＨＴＳへの適用を容易にする。マイクロチャネル出口間の空間は、流体流間の分離を最適にするために、流速とともに、最適化することができる。例えば、流速が速くなればなるほど、混合が充分でなくなることが観察される。好ましくは流速とチャネルの間隔は、境界域（すなわち混合区域）の幅を最小限にするように最適化される。境界域は、流体流の幅の約５０％未満、あるいは約４０％未満、約３０％未満、約２０％未満、約１０％未満、約５％未満、約１％未満が好ましい。一態様では、境界域は約２〜３ミクロンである。最適流体流速及びチャネル間隔は、先に記載したように、１つ又はそれ以上のトレーサー染料を使用して、簡単に見い出すことができる。
流体流のオープンボリュームへの特異な挙動を利用するために、複数のマイクロチャネルのそれぞれに適用する圧力を、各流れの正確な操作に関して、独立して変化させることができる。例えば、正圧が１つのチャネルに、負圧が隣接するチャネルにかけられている極端なケースでは、流体流を「Ｕターン」型に作ることができ、緩衝液の鞘の中で負圧のチャネルへ誘導しながら、正圧のチャネルから負圧のチャネルへ進める。したがって、位置、幅、視準、方向及び流速、さらに流体流の組成を、各チャネルに適用する相対的圧力を変えることによって、制御することができる。
図５Ｄ〜Ｆに示すように、これは、細胞の上へ送達されたサンプルを、正圧を受けるチャネルから負圧を受ける廃液チャネルへ回収できる利点を有するＵ字型流体流を作るために使用することができる。これは、パッチクランプの細胞が残存するオープンボリューム内のリガンドの蓄積を最小限にする。サンプル（例えば、薬物、リガンドなど）が低濃度及び／又は高価な状況においては、当該システムは、さらに、リガンドを再使用及び／又はリガンドをシステムに送り返す（すなわち、Ｕ字型流れを閉鎖ループに変える）ために、使用することもできる。
圧力を制御することによって、システムは、流体流の速度（振幅及び方向のどちらも）を制御することができる。また、速度制御は、圧力を変えることなく、各チャネルの抵抗を制御することによって、あるいは抵抗及び圧力の両方を変えることによって行ってもよい。また、流体せん断は、異なる粘度の溶液（例えば、異なる量のサッカロースなどのような糖類を流体流に加える）を、マイクロチャネル及びセンサーチャンバーの両方で使用することによって、変えることができる。したがって、数多くの異なるパラメータを変えることによって、異なる流体流の流動プロフィールを正確に調整することができる。
（流体流下のパッチクランプ）
受容体モジュレーター（アゴニスト又はアンタゴニスト）及び緩衝液の相互嵌合の流れを横切ってパッチクランプの細胞を迅速に走査する能力は、要求される流れ条件下でのパッチ細胞の機械的安定性と、走査速度に依存する。ここで、流体条件の範囲でのパッチクランプの細胞の「ギガシール（giga seal）」及びイオンチャネル活性の安定性を記載する。
パッチクランプの細胞上の液体流の効果は、細胞上の流れによって受ける抵抗力（ストーク抵抗）から発生する。このストークス抵抗は以下の式から計算することができる。
抵抗力＝（摩擦係数）×（流れの速度）
式中、摩擦係数（ｆ）は以下のように計算できる。
ｆ＝６πｒμ
式中、ｒは細胞の半径であり、μは溶液の粘度である。この関係は、レイノルズ数流れ及び球状の粒子に関して有効である。両条件は、本発明で連結して利用される方法及び装置において充分に満たされている。
室温での水に関し、μは、約１センチポイズ（１センチポイズ＝０．０１ｇ／［ｃｍ・ｓ］）であり、代表的な哺乳類の細胞はｒ＝５μｍである。これらの値を用いると、流速が１ｍｍ／秒のものは、抵抗力＝９．４×１０−１１Ｎ又は９４ピコニュートンである。抵抗力は、流速に正比例するので、０．１ｍｍ／秒で抵抗力は、９．４ピコＮである。この数字を視野に入れると、マイクロピペットは、ナノ及びマイクロニュートンを細胞のような小さな粒子に日常的に使用することができる。流体流から細胞上へのドラッグによって発生する抵抗力に加えて、ある速度での細胞の走査は、細胞移動の方向において類似の流体抵抗を発揮し、これは、普通、流体流の方向に対して直角である。流れのない条件下での１ｍｍ／秒での細胞の走査は、同じ速度で流体を流すと、普通、細胞静止を保つのと同じ効果がある。
細胞のずれの問題が起こるかもしれない非常に高い流速が必要な用途に関して、パッチクランプの細胞（複数を含む）は、くぼみ領域又は細胞の寸法に合致したセンサーチャンバー中のウェル中に置かれていもよい。この設計は、チャネル又はチャンバー中の流動プロフィールが、流体と固体表面の界面での、スリップのない境界条件（すなわち、流体と固体表面との界面での速度は０である）のため、放射線状であるので、細胞ずれの問題を防ぎつつ、高流速の使用を可能にする。細胞と類似の寸法を有するウェル（複数を含む）中に細胞（複数を含む）を置くことによって、細胞は、事実上、ウェル及び固体表面から離れて配置された高流速領域からは、「遮蔽」されている。従って、固体表面から離れた平均流速及び流体速度は、非常に速いが、パッチ細胞が置かれているウェルの近傍の流体速度は、非常に遅くできる。この方法を使用して、非常に速い平均流速を使用することができる。
先に検討したように、流体流もパッチクランプの感応性を最大限にするために使用することができる。
図５Ｄ〜Ｆに示すように、２つの平衡するチャネルによって作られるＵ字型流体流を、細胞とパッチクランプのマイクロピペットとの間の最適なシールを作るために使用することができる。
（走査機構）
走査は、（センサーを静止させて基板を動かすことによって、基板を静止させてセンサーを動かすことによって、又は基板及びセンサーの両方を異なる速度及び／又は異なる方向に動かすことによって）機械的に、あるいは異なるマイクロチャネルの圧力低下によって、調整することができる。図８Ａ〜Ｉに、これらの方法がそれぞれどのように行われるかを概略的に示す。センサーの機械的な動き及び走査は、センサーを配置するマイクロ位置決め装置を移動させることによって、簡単に達成することができる。例えば、細胞ベースのバイオセンサーを、吸引によって、物理的にマイクロピペットに接続することができ、これは、次にマイクロマニピュレーターに接続する。殆どのマイクロマニピュレーターを、手動で、あるいは自動電気的に制御することができ、そのように事前プログラムされた動きは、簡単に達成することができる。プログラムされうる数多くのパラメータとして、等速走査の線速度；可変型速度走査の加速率；二次元及び三次元の両方における走査の軌道；繰返し走査の回数が挙げられるが、これらに限定されるものではない。センサーチャンバー内の１つ又はそれ以上のセンサーからのリアルタイムシグナルフィードバックに基づく走査に関して、プログラム可能なパラメータには、シグナル検出と走査設定の変更との間の時間遅延が含まれるが、これに限定されるものではない。走査用アウトプットに対する正しいフィードバックパラメータを決定するために、種々のシグナル加工及びコンピュータ機能を操作することができる。
基板（例えば、チップ）が休止しているプラットホームの機械的動き及び走査も、簡単に達成することができ、これによって、静止バイオセンサーに対し基板を動かすことができる。例えば、異なる設計を持ち、必要とされる仕様を有するコンピュータ制御された顕微鏡の載物台（例えば、ピエゾエレクトリッククリスタルを基礎とするもの、又は電子的に作動させる二条ねじ）は、（例えば、「Prior Scientific Inc., 80 Reservoir Park Drive, Rockland, MA」から）市販されている。適切な走査パラメータを、先に記載したように、例えば、ユーザーの指示、又はセンサーチャンバー内の１つ又はそれ以上のセンサーからのフィードバックシグナルに応答して、プラットホームに連通する、システムプロセッサを用いて、プログラムすることができる。
一態様では、１つ又はそれ以上のセンサーを、センサーチャンバー内の隙間の狭いチャネルの出口の間の距離を迅速に動かし、チャンバー内の１つ又はそれ以上のバイオセンサーを、出口から流れ出る流体の異なる流れに曝露する。例えば、センサーは、チャネルの出口を横切って動くようにプログラムされた、マイクロピペットに付着した細胞又は膜パッチであってもよい。他の態様では、１つ又はそれ以上の静止細胞は、センサーチャンバー（例えば、平面状のパッチクランプ形式）内に固定化され、流体の異なる流れは、静止細胞（複数を含む）上で、例えば、異なる流れが流れ出る個々の独立したチャネルで圧力及び流速を調整することによって、一掃される。あるいは、チャネル出口を、先に記載したように、静止細胞を物理的に通して動かすこともできる。
チャネルを通って流れる水性溶液は（空気と違い）圧縮性ではないので、各流体流の幅及び配置は、各マイクロチャネルを通る相対流速に依存する。従って、マイクロチャネルからの流体流も、各チャネルを通る流速を変えることによって動かし、移動させることができる。これは、各チャネルの全部で圧力低下を制御することによって、あるいは各チャネルの抵抗を変えることによって、最も簡単に達成することができる。圧力変更（あるいは他の手段）によって流体流を動かす能力は、センサー（複数を含む）が、細胞ベースであり、チップ上に固定化された用途において特に有用であり、それによりチップに対する細胞（複数を含む）の機械的な動きが不可能となる。機械的走査と同様に、各チャネルの圧力及び抵抗も、システムプロセッサを使用して、プログラムすることができる。プログラムされうるパラメータとして、各チャネルの圧力及び抵抗における線形変化、各チャネルの圧力及び抵抗における段階的なあるいは連続した変数変化、及び異なるチャネルの間の配列の変化が挙げられるが、これらに限定されない。更に、圧力及び抵抗変化は、リアルタイムフィードバックシグナルに基礎を置くことができ、新しい圧力及び抵抗のパラメータをアウトプットする前に、これらのシグナルを加工し、コンピュータ化してもよい。
走査速度は、用途に応じて調整することができる。例えば、センサーがアゴニストへの連続曝露の際、脱感作する受容体を含む場合、センサーをサンプル含有流れから緩衝液含有流れへ動かし、受容体を再感作することを可能にできる。サンプル流れ及び緩衝液流れを横切ってセンサーを順番に一掃する（機械的にあるいは圧力差によって）ことによって、アゴニスト及び緩衝液のパルス化送達を提供することができ、これによって、周期的に再感作される受容体を生み出す。
走査速度は、このシナリオにおいて、再感作のために必要な時間量を提供するために、調整することができ、それは、イオンチャネルの場合、ミリ秒のオーダー（リガンド−イオンチャネルペアに依存する）が多い。一般的に、センサーの溶液への曝露時間は、制御することができ、マイクロ秒から数時間の範囲である。しかし、長い平衡化時間を有する薬物−受容体ペアに関しては、平衡化時間の長さによって、処理量を限定してもよい。同様に、細胞ベースのバイオセンサーの応答は、生化学的経路を通るシグナルのトランスダクションに依存し、これは、ミリ秒からより長い間隔（例えば数分）まで要求する可能性がある。したがって、操作速度は、使用されるセンサーのタイプに適合するように調整され、時間的経過実験のような対照実験から簡単に決定することができる。
したがって、走査機構（センサー又はチップを動かすものか、あるいはチャネルの全部で圧力低下を制御することによって作用するものか）は、チップに対するセンサーの位置を、ユーザー選択速度又はシステム選択速度で動かすシステムプロセッサによって制御されるのが好ましい。例えば、ユーザーは、走査機構の平行移動パラメータを変えるシステムプログラムを、例えばシステムプロセッサに連通するコンピュータ上に表示されたグラフィカルインターフェース上のアクションボタンを選択することによって、遂行することができる。あるいは、走査速度は、フィードバックシグナルに応答して、システムプロセッサにより修正することができる。（例えば、脱感作を表示する細胞のパッチクランプの記録）。走査機構を、直線状又は段階的走査（例えば、センサーが曝露された、先の出口に隣接していないチャネル出口へでセンサーを移動する）ように、プログラムすることができる。
センサーは、脱感作しない受容体／イオンチャネルを含んでもよく、受容体を再感応する必要をなくす。しかしながら、システムを、緩衝液のパルス送達を提供するために、使用してもよく、例えば、結合していない化合物のない細胞を洗浄するため、使用される。このシナリオでは、走査速度は、応答において観察される「ノイズ」に基づいて調整することができる。例えば、走査速度は、サンプル化合物のある濃度での直線状の用量応答を達成するために、調整することができる。
また、リガンドは、センサーを不可逆的にブロックして、他の流体流において、他のリガンドに応答できないようにしてもよい。この場合、緩衝液でパルスすることは何の効果もないであろう。公知の効果を有する化合物を周期的に細胞に導入し、適正な応答が得られるがどうか検証することによって、細胞が不活性化されたかどうか確認することは容易である。サンプル流体流の選定された数を過ぎて走査するように、システムはセンサーによって応答の欠如を感知することができるのが好ましい。例えば、パッチクランプの記録において応答が観察されない場合、センサーが連続する流体流の選定された数を過ぎて走査するように、システムはフィードバックシグナルを提供することができる。
あるいは、又はそれに加えて、装置を、センサー機能をモニターするために、センサーチャンバー内に設置することができる。一態様では、細胞ベースのバイオセンサーの生存率をモニターするために、光学センサーを、センサーチャンバーに連通して設置する。例えば、細胞死に関連する分光的変化（例えば、クロマチン凝集からのもの）を観察することができ、あるいは死亡したあるいは瀕死の細胞による染料の取込みをモニターすることができる。
一態様では、システムは、センサーシグナルを受け取らなかった走査間隔の選定された数を経過した時、あるプログラム指示を実行する。例えば、システムは、それらのチャネルでの流れを停止するように、特定のチャネルで圧力を変えて、サンプル廃液を最小限にすることができる。別な態様では、閾値期間の間、センサーからの応答シグナルがないのに応答して、１つ又はそれ以上のバイオセンサーの再配置を、センサーチャンバーに送達する（例えば、先に記載した、細胞処置チャンバーから）。
センサーが、チャネル出口からの流速に比較して一定の速度で移動する場合は（例えば、ｍｍ／秒）、幅及び間隔が約１０μｍであるチャネルに関する選別速度（例えば、１秒当たりのスリーンされる化合物）は、約２５Ｈｚであろう。約１００μｍ幅のチャネルであって、チャネル間隔が約１０μｍを使用した場合は、選別速度は、約４．５Ｈｚであろう。移動速度が増える場合、走査範囲は、数百Ｈｚの範囲内であろう。いくつかの用途、例えば、センサーが迅速に脱感作するイオンチャネルを含む場合は、これらは短い時間でシャープな濃度勾配を提供することができるので、狭い出口を有する流体チャネルが、好ましい。そのようなチャネルは、幅が約１μｍ〜約１００μｍの範囲であるのが好ましい。
走査速度は、均一に又は不均一にすることができる。例えば、サンプル流れを提供する（例えば、アゴニストを提供する）チャネルを横切る走査速度を、緩衝液流れを提供するチャネルを横切る走査速度とは違えることができる。可変走査速度は、予備プログラム又はセンサー測定、例えば、パッチクランプの測定からのフィードバックシグナルを基礎とすることができる。実際の走査速度は、正確な選別システムに依って変わるだろうが、代表的な直線状の走査速度は、約１０μｍの直径の、哺乳類の細胞を含むセンサーに関して、約１００μｍ／ｓ〜数百ｍｍ／秒の範囲であろう。
二次元微小流体システムを図４Ａ及び５Ａに示す。当該システムは、マイクロチャネルが相互作用するであろう、例えば９６チャネルの工業規格のマイクロタイタープレートのウェルの数と対応する数の複数のマイクロチャネルを含む基板を含む。システムがサンプル及び緩衝液の交替型流れをセンサーに提供するために使用される場合、少なくとも９６個のサンプルと９６個の緩衝液マイクロチャネル（合計として、少なくとも１９２個のチャネル）が提供される。マイクロタイタープレート又は他の適切な容器のウェルは、サンプル又は緩衝液をチャネルに送り込む貯蔵部に結合され、例えば、先に記載したシステムに関し、基板は１９２個の貯蔵部を含み、各貯蔵部は異なるチャネルに連結する。細胞貯蔵及び送達のために、例えば、パッチクランプの記録用の細胞を提供するために、付加的な貯蔵部が提供される。
図４Ａ及び５Ａで示される実施形態では、マイクロチャネルは、実質的に平行で、幅が約１００μｍ、そして厚さ約５０μｍである。チャネルの正確な厚さは、広い範囲で変化してもよいが、センサーの直径、例えばパッチ細胞の直径に相当する、又はそれより大きいのが好ましい。図では、約１０μｍに広がる内部チャネルが提供されている。
溶液の定常状態の流れが作られ、全マイクロチャネル中を同じ速度で流れ、センサーを収容しているオープンボリュームへ入るように、圧力を、全マイクロチャネルに同時に適用することができる。この方法では、リガンド又は純粋な緩衝液を含む異なる溶液の定常状態濃度をマイクロチャネルのそれぞれの出口の近接で確立することができる。各マイクロチャネルの幅を、各マイクロチャネルにおいて所望の流速を達成するように調整してもよい。
前に検討した実施形態では、平行チャネルから流れ出た流体流は、オープンボリュームセンサーチャンバーに入るが、サンプル及び緩衝液チャネルのセットの反対側に平行のドレインチャネルのセットを設置するのがより便利で望ましいかもしれない。センサーチャンバー内でセンサーの走査を適用するために、適正な幅（例えば、約５０μｍ）の溝を、２セットのチャネル（すなわち、送達及びドレインチャネル）の中間及び／又は直交して配置することができる。適正な流動プロフィールを確立するために、同時に正圧を送達チャネルにかけながら、負圧を全ドレインチャネルにかけてもよい。これは、送達チャネルから流れ出す流体をドレインチャネルのセットに入れるように誘導する。
図５Ｃは、三次元微小流体システムを示す。この３Ｄ構造と図５Ｂで示す平面構造との間の主な違いは、平行なアレーチャネル（例えば、相互連結するサンプル及び緩衝液チャネル）の出口と廃液チャネルの入口との間に流れる流体のｚ軸に沿った変位である。この実施形態では、正圧がサンプル及び緩衝液チャネルの全部にかかり、一方、負圧が同時に全廃液チャネルにかかる。したがって、定常状態流れが、サンプル／緩衝液チャネルの出口と、廃液チャネルの入口との間に確立する。この形態では、パッチクランプの細胞などのセンサーを、流体のｚ軸方向流れを横切って、好ましくはサンプル／緩衝液マイクロチャネルの出口の近くで走査する。
この３Ｄ構造の製造は、平面構造より複雑ではあるが、多くの場合、ｚ軸方向流れの存在は、パッチクランプの細胞などのセンサーを横切って走査する、よりよい流動プロフィール（例えば、よりシャープな濃度勾配）を提供する。ｚ軸方向の流れが確立される長さは、使用されるセンサーの直径／長さより格段に大きくすべきである。例えば、パッチクランプの細胞のような細胞ベースのバイオセンサーの、ｚ軸方向の流れの長さは、約１０μｍ〜数百μｍの範囲が好ましい。
走査に加えて、交替型サンプル流れ及び緩衝液流れを提供するための他の方法を、図７Ａ〜Ｎに示す。この実施形態では、サンプル及び緩衝液を、それぞれ、センサーチャンバーに送り込む相互嵌合出口を提供するというより、全出口流れがサンプル流れである。緩衝液の灌流は、１つ又はそれ以上のセンサーに近接して置かれている１つ又はそれ以上の毛細管によって行われる。図７Ａで、示されたセンサーは、マイクロ位置決め装置、ナノ位置決め装置又はマイクロマニピュレーターのような位置決め装置に連結されたパッチクランプのピペットを使用して、出口に近接して配置されたパッチクランプの細胞である。毛細管は、パッチクランプのピペットに隣接して置かれ、これを、灌流用に、例えば、脱感作された細胞を再感作するために、使用することができる。この方法により、イオンチャネルを含む細胞ベースのバイオセンサーを、周期的な応答状態に保つことができ、すなわちリガンド非応答状態（例えば、薬物に曝露された時、アゴニストに結合する）とリガンド応答状態（例えば、緩衝液による灌流後のリガンド応答）との間で交互に入れ替わるようにすることができる。
この同軸又はサイド毛細管配列を通る緩衝液のプログラムされた送達は、センサーからのフィードバックシグナルを予め設定し又はこれに基づくことができ（例えば、シグナル検出後、緩衝液灌流を、システムプロセッサからの指示に応答して作動させ、結合リガンド全てを洗い流す）、緩衝液のセンサーへのパルス化された送達を提供することができる。一態様では、毛細管の縦軸は、パッチクランプのマイクロピペットの縦軸に関して９０°の角度であり、一方、他の態様では、縦軸は９０°未満である。
マイクロチャネル出口それら自身も、３Ｄアレーに配列されてもよい（例えば、図６Ａ、Ｂで示すように）。出口の３Ｄ配列が処理量を増やすことができ（例えば、選別されるサンプルの数を増やす）、したがって、センサーが評価できる生物学的情報の量を増やすことができる。一態様では、微小流体システムを、細胞標的に関する薬理学的情報、例えば、イオンチャネルを得るために使用する。
この形式でＨＴＳを実施すると、前の段落で記載した走査形式を超えた利点がいくつかある。
（１）リガンド曝露時間を、走査速度及びリガンド流れの幅よりもむしろ、内部灌流時間（例えば、緩衝液のパルス間の時間）によって決定する。
（２）緩衝液灌流及び再感作時間も、緩衝液流れにおける滞留時間よりもむしろ、灌流パルスの持続時間によって決定する。
（３）リガンド流れをより高い充填密度の数で提供することができるので、その結果、１実験で多くの数のリガンドを走査することができる。
（迅速な送達サイクル）
本発明によるシステム他の特徴は、流体をチャネルを通ってセンサーチャンバーへ迅速に送達することができ、化合物をセンサーの微小環境に導入して、当該微小環境から迅速に排出できることである。
ミクロサイズのチャネル内の流体は、層状で可逆的な、レイノルズ数（Ｒｅ）と呼ばれる、無次元指数によって測定しうる特性である。例えば、一般的に、低Ｒｅ数を有する流体流れは可逆的で、一方高Ｒｅ数では、流体流れは、乱流となり、不可逆的になる。層状可逆的な流れと乱流流れとの間の移行は、平滑な円形チャネルを通る流れ（例えば、マイクロチャネルを通る近似流れ）に基づく推測で、約２０００のＲｅ数で起こるようである。たとえ速い流速（ｍ／ｓ）であっても、幅が数ミクロンのチャネルのＲｅは、〜＜１０である。これは、ミクロサイズのチャネル内の流体流は、層状の可逆的な仕組み内に充分入っていることを意味する。ここで利用する流体挙動の重要な特徴は、流体流れの可逆性である。
一態様では、化合物又は薬物をバイオセンサー、好ましくはパッチクランプの細胞を収容するセンサーチャンバーに導入するために、正圧をマイクロチャネルに適用する。化合物／薬物とバイオセンサーとの間の相互作用を可能にする適切な培養時間の後、化合物／薬物をチャンバーから回収するために、負圧を適用する。流体流は完全に可逆的であり、また拡散は使用される条件（例えば、比較的速い流れ）下で無視できるので、薬物は、チャンバーからそこから来たマイクロチャネルへ完全に戻される。この方法では、潜在的相互作用で選別するため、細胞上に送達された各化合物は、引き続いて細胞から回収され、当該細胞は再び、緩衝液に浸けられ、再感作され、異なるマイクロチャネルを経由して送達された次の化合物と相互作用するための準備ができる。
このスキームは、本発明の特定の態様において使用されるチャネル及びチャンバー寸法は小さいため、特に有用である。数多くのチャネル幾何学構造が、このシナリオ、特に、先に記載した、スポークホイール構造を実行するのに適切であり、図９Ａ〜Ｃ及び１０で示した。図からわかるように、マイクロチャネルのアレーは、マイクロチャネルが円形センサーチャンバー中のその中心に合流するスポークホイール形式に配列される。使用されるマイクロチャネルの数は、マイクロチャネルが接すべきサンプル−ウェルプレート中のサンプルウェルの数に依存する。例えば、９６サンプル−ウェルプレートは、少なくとも９６個のマイクロチャネルが必要であろう。中心のセンサーチャンバーは、パッチクランプの細胞などのセンサーの１つ又はそれ以上を収容することができ、これは、マイクロピペットを用いてパッチクランプ又はチップ上にパッチクランプすることができる。図９Ａ〜Ｃは、９６ウェルプレートからの溶液を、標準アレー分注器を使用して、サンプル−ウェルプレートからチップの対応する貯蔵部へ、直接ピペットで注入することができる、９６サンプル−ウェルプレートと接続するためのチップ構造全体のレイアウトを示す。
図１０は、中央チャンバー周辺の拡大した領域を概略的に示す。チャンバーの寸法は、正確な用途（例えば、センサーが細胞を含むか、あるいは他のタイプのセンサーであるか）に従って変えてもよく、代表的な寸法は、約１０〜数百μｍの範囲である。マイクロチャネルの幅も、中央チャンバーの寸法によって変わり、代表的な幅は、約１〜約２０μｍの範囲である。マイクロチャネルの厚さは、重要ではなく、殆どの場合、約１〜約５０ミクロンの範囲である。流速も変えることができ、マイクロチャネル内部の代表的な流速は、ｍｍ／秒〜ｃｍ／秒の範囲で、センサーを横切る開放チャンバー中の対応する流速は、μｍ／ｓ〜ｍｍ／秒の範囲である。各マイクロチャネルにかかる正圧及び負圧は、１つのマイクロチャネルにかけた正圧は溶液をセンサー上に潅流させ、一方負圧は各マイクロチャネルにこの溶液を戻し、これによって、元の緩衝溶液に浸されたバイオセンサーを除去するように、システムプロセッサによって独立して制御することができる。
（流体の迅速な交換）
この設計は、マイクロチャネル中に含まれる溶液とセンサーチャンバー（及び／又は細胞処置チャンバー）とを、迅速かつ効率的に置き換え及び交換することができるという事実に基づく。迅速な溶液交換は、種々の異なるマイクロチャネルネットワーク幾何学構造を用いることにより、達成することができる。一態様では、複数のマイクロチャネルは、合流し、又はセンサーチャンバーへ送り込まれ、一方他の態様では、複数のマイクロチャネルは、それ自身センサーチャンバーへ合流する、単一チャネルへ合流する。複数のマイクロチャネルは、それぞれ、サンプル用の相互嵌合チャネルと送達緩衝液とを含みうる。好ましい態様では、当該設計は、パッチクランプシステムと一体化する。３つの例示的な構造を以下に記載する。
（平面放射状スポークホイール形式）
この構造では、数多くの（例えば、９６〜１０２４個）のマイクロチャネルを、約１０μｍ〜約１０ｍｍの範囲の寸法で、センサーを収容するチャンバーに合流する、放射状スポークのように配置する。使用されるマイクロチャネルの数は、工業規格のマイクロタイタープレート、例えば９６〜１０２４個のウェル、中のサンプルウェルの数に適合するように選択される。ウェルプレートからのインプットの数に適合するマイクロチャネルの数に加えて、少なくとも２個の付加的なマイクロチャネル（１つは灌流／再感作用の緩衝液の送達のため、もう１つは廃液除去のため）があるのが好ましい。マイクロピペットを使用するパッチクランプに関し、この構造は、また、細胞にアクセスするためのオープンボリューム領域も含む。しかし、チップベースのパッチクランプ測定（例えば、国際公開公報第９９／３１５０３号及び第０１／２５７６９号の記載）に関しては、いかなるオープンボリューム領域も無い方が好ましいであろう。マイクロチャネルからの流体流れによって細胞が除去されるのを防ぐため、細胞（複数を含む）は凹んだ部分あるいは細胞（複数を含む）の寸法に適合するウェル中にに置かれるのが好ましい。細胞の寸法より非常に小さな寸法を有する膜パッチに関し、ストークス抵抗により加えられた力は対象物（すなわちパッチ）の寸法に反比例するので、流体流によるバッチの除去は問題ではない。
チャネルから入ってくる流体による、チャンバー内に含まれる流体の効率的な再配置を提供するため、インプットチャネルと廃液チャネルとの間の角度を最適化する。液体混合及び再配は、この角度が約１８０°の時、最適であり、この角度が０°に向かって減少するにつれ、漸進的に悪化する。高流速（ｃｍ／秒〜ｍ／秒）に関して、この角度の効果は、漸進的により重要になり、低流速に関しては、インプットチャネルと廃液チャネルとの間の角度は、あまり重要ではない。
高流速での流体の効率的再配置を最大限にするため、各インプットチャネルが、共通の廃液チャネルを共有する全インプットチャネルを有するより、対応する廃液チャネルを有するようにして、放射状チャネルの数を増やすことができる。この形式において、インプットとアウトプットチャネルとの間の角度の全ては、約１８０°であり、最適流体再配置を保障している。第二の方法は、三次元放射状スポークホイールチャネルネットワークを構築することであり、第三の方法は、分岐状チャネル幾何学構造の使用に関係する。これらの方法を、さらに以下に記載する。
迅速な溶液交換のための２Ｄ放射状スポークホイール形式の好ましい実施形態の１つを図１１Ａ〜Ｃ及び図１２に示す。この実施形態では、マイクロチャネルのアレーを、スポークホイール形式に配列し、円形センサーチャンバー中、中央に合流する。使用されるマイクロチャネルの数は、マイクロチャネルが接するウェルプレートのウェルの数に依存する。例えば、９６サンプル−ウェルプレートは、リガンド送達のために少なくとも９６個のマイクロチャネルと、廃液用に付加的な９６個のマイクロチャネルが必要で、各廃液マイクロチャネルは、対応するサンプル送達マイクロチャネルに関して約１８０°で配向している。これらの１９２個のマイクロチャネルに加えて、緩衝液灌流及び緩衝液廃液のために使用される１組のマイクロチャネルがあり、これで、チャネルの合計は、９６個のサンプル−ウェルプレートに接するため１９４個になる。パッチクランプの細胞などのセンサーは、中央チャンバーの中に収容されており、これは、従来のマイクロピペットベースのパッチクランプシステムに接する場合、オープンボリュームでもよく、チップベースのパッチクランプシステムに接する場合、クローズボリュームでもよい。図１１Ａ〜Ｃは、この微小流体システムの構造を示し、これは、再び、９６ウェルプレートと接続するのに適合するよう設計されている。それぞれパッチクランプ検出器細胞を有する、いくつかのスポークホイール微小流体配列を、平行測定値を得るために、同じチップ構造上で使用することができる。
図１２は、センサーチャンバーの拡大図を示す。この中央チャンバーの寸法を、正確な用途に従って変えてもよく、代表的な寸法は、約１０〜１００μｍの範囲である。マイクロチャネルの幅も、中央チャンバーの直径に依存して変わり、代表的な幅は、約１〜１０μｍの範囲である。マイクロチャネルの厚さは重要ではなく、殆どの場合、約１〜１０μｍの範囲である。流速も変更可能で、マイクロチャネル内部の代表的な流速は、μｍ／秒〜ｃｍ／秒で、中央チャンバー内の対応する流速は、μｍ／秒からｍｍ／秒である。
（三次元放射状スポークホイール形式）
また、三次元放射状スポークホイール配列も、センサーチャンバーに入る流体を効率的に置き換えるため、使用することができる。この構造では、１つ又はそれ以上のセンサー（例えば、細胞）を、放射状チャネルを含む基板と廃液貯蔵部を含む基板との間に挟まれたフィルター膜上に置く。この形式では、流体は、放射状チャネルが残る上層から（例えば、放射状チャネルへ送り込むインプットチャネルを通って）センサー（複数を含む）を過ぎ、次いでフィルターを通って、廃液チャネルに流れるように強制される。したがって、フィルターは、センサー（複数を含む）を速い流体流れで灌流させることができ、一方、センサー（例えば、細胞のような）を、流れに持っていかれないように又は排除されないように保持する。更に、流体を、センサーのそばを流すようにして、センサーを取り巻く流体の全てを置き換えるようにする。
この３Ｄ設計によって提供される数多くの利点がある。（１）細胞周辺の流体を、完全に、効率よく、かつ迅速に交換する。（２）細胞などのセンサーを、フィルター上に強固に配置し、軸方向又はｚ軸方向において、流れがフィルターに対向して細胞を押すので、たとえ非常に速い流速であっても、流体流によって排除されない。（３）先に記載した平面放射状設計に比べて、最小数の放射状チャネルしか必要でない。他の平面設計と比べた場合のこの設計の主な利点は、微細加工における複雑性を改良することである。
３Ｄ放射状スポークホイール形式の好ましい一実施形態を、図１３に示す。この３Ｄ構造と図１２に示す平面構造との間の主な違いは、マイクロチャネルの出口から、廃液マイクロチャネルの入口へ、流体のｚ軸方向への流れが存在することである。他の違いは、センサー（複数を含む）（例えば、細胞）に配置する多孔膜の存在であり、これは、ｚ軸方向の流れが細胞を膜に対して押す時、センサーのために機械的サポートを提供する。この実施形態では、マイクロチャネルの配列及び寸法が、２Ｄ平面形式のそれと同程度である（図１２）。この３Ｄ構造の製造は、平面構造の製造と比べて、より複雑ではあるが、多くの場合、ｚ軸方向の流れが存在することで、特にオープンボリューム貯蔵部に、よりよい流動プロフィールを提供することである。センサーは、廃液チャネルの入り口外側のすぐそば（例えば上面）に置かれているので、リガンド流及び灌流流れの両方を、センサー（複数を含む）のそばを流れるようにし、これは、異なる流体流れによって、センサー（複数を含む）のより効果的で完全な投与をもたらす。また、多孔膜サポートの存在は高流速の使用、及びそれ故、高い処理量を可能とする。
（分岐状チャネル形式）
この設計では、１つは化合物の送達ため、もう１つは廃液のための、２個だけのチャネルを１つ又はそれ以上のセンサー（例えば、パッチクランプの細胞）に隣接して直接配置するのが好ましい。全てのインプットチャネルを分離し、各インプットチャネルの出口へ合流し、中央センサーチャンバーへ送り込むよりも、チャネルを分岐状幾何学的構造に配置する。９６〜１０２４ウェルプレートと接するように、センサー（複数を含む）に隣接する単一送達チャネルを、複数のインプットマイクロチャネルに連結し、各インプットチャネルは、９６〜１０２４ウェルプレートの異なるウェルからインプットを受け取る。この形式は、化合物を送達するチャネル及び廃液チャネルをセンサー（複数を含む）に非常に接近した近接度で配置することができ、それによって、システムからの迅速な応答を保障するという利点を有する。多数の化合物を迅速に連続してセンサー（複数を含む）へ送達することは、化合物を含む流体を、センサーチャンバーに直接送り込む単一チャネルへの制御され、多重化された送達によって達成される。
この設計の好ましい実施形態の１つを図１４Ａ〜Ｃ及び１５に示す。この実施形態では、「魚の骨」構造を、緩衝液貯蔵部に連結する、主「スピン」マイクロチャネルと交差する、サンプル（例えばリガンド）送達マイクロチャネルに対応する各「骨」で製作する。サンプル及び緩衝液のセンサーチャンバー内の１つ又はそれ以上のセンサーへの迅速で逐次的な送達は、先ず正圧をサンプル送達マイクロチャネルの１つにかけ、サンプル（例えばリガンド）のプラグを、そのマイクロチャネルから緩衝液を含む主マイクロチャネルへ誘導することによって達成する。このプラグは、正圧を緩衝液貯蔵部に適用することによって、細胞に誘導され、これがプラグをセンサーに運び、次いでセンサーを緩衝溶液で洗浄する（例えば、それを脱感作する）。サンプル及び緩衝液灌流の送達のこのサイクルは、異なるマイクロチャネルに含まれる異なるサンプルで繰り返される。このチップ設計のレイアウトを図１４Ａ〜Ｃに示す。図で示される実施形態において、チップは、９６ウェルプレートに接することができる。
図１５は、主緩衝液チャネル及びセンサーチャンバーの周辺区域の拡大図である。マイクロチャネル（サンプル送達及び緩衝液送達の両方用）の寸法（幅及び厚さ）は、大きく変えることができ、代表的な寸法は、約１〜１００μｍ、好ましくは約１０〜９０μｍの範囲である。流速も変化してもよく、好ましい流速はμｍ／秒からｃｍ／秒である。
圧力は等方的であり、したがって、正圧又は負圧をかけた時、流体は、いかなる特定の方向のかたよりもなく、圧力低下に沿って流れて行く。従って、一方向受動バルブを、サンプル送達マイクロチャネルと主緩衝液チャネルとの間の接合部で一体化するのが好ましい。これらの一体化一方向バルブの目的は、正圧が緩衝液貯蔵部へかかった時、主緩衝液チャネルから各サンプル送達マイクロチャネルへの任意の流れを防ぐことであり、一方、これらのマイクロチャネルにサンプルを提供する貯蔵部に正圧がかかった時、各サンプル送達マイクロチャネルから主緩衝液チャネルへの流れを起こすことである。微小流体バルブ及びポンプ機構用の数多くの適切な設計が存在する。
以下の検討では、実施の簡素化のため、圧力駆動流れを強調するが、多くの適正な手段を、マイクロチャネル中の液体を移送するために設計することができ、例えば、圧力駆動流、電気浸透流、表面張力駆動流、移動壁駆動流、熱勾配駆動流、超音波誘発流、及びせん断駆動流が挙げられるが、これらに限定されない。これらの技術は当該技術分野で公知である。
（バルブの開閉及びポンプでの吸入排出）
（スキーム１：個々のマイクロチャネルを処理するための隔壁の使用）
このスキームでは、各マイクロチャネルに連結する貯蔵部を、隔壁、例えば、シーリング用ポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）又は当該技術分野で公知のその他の適切な材料を用いて密閉する。隔壁は気密シールを形成するため、隔壁を通って挿入される針又はチューブを介する正圧の適用（例えば空気又は窒素による）により、流体は、センサーチャンバー内の１つ又はそれ以上のセンサー上のマイクロチャネルへ流れ出る（例えば、放射状マイクロチャネルが合流するスポークホイールの中央へ）。隔壁を通って挿入される、針又はチューブを通る小さい吸引による負圧の適用により、流体は、反対方向に回収される（例えば、スポークホイールの中央のチャンバーから、マイクロチャネルに送り込む貯蔵部へ）。
このような針−隔壁の配列のアレーは、各々の貯蔵部を、したがって各々のマイクロチャネルを、個別に処理することを可能にする。このスキームを使用することで、各々のマイクロチャネル内に含まれる流体の同時及び逐次的ポンプ吸入排出及びバルブの開閉が可能となる。正圧及び負圧がかけられた各々のマイクロチャネルにわたって正確な制御を実行することにより、１つ又はそれ以上のセンサーへの制御された流体流及び化合物送達が達成できる。マイクロチャネルの個々の処置を必要としない設計（例えば、設計１−流体の異なる流れを横切るパッチ細胞の迅速な移送）では、単一又は少しの圧力制御装置を有する単一又は少しの隔膜で十分であろう。
（スキーム２：チャネル寸法の変更による流体抵抗の制御）
個々の隔膜を使用する先の設計は、大きな柔軟性及び制御をもたらすが、化合物送達と流体流の配列が予め決められたある用途に関しては、より単純な設計が、実施の簡素化及び簡便性を提供する。このスキームでは、例えば、単一隔壁を介して全貯蔵部に均質にかけられる加圧空気を使用することによって、あるいは入口と出口貯蔵部との間の高さの違いにより起こる重力流動の使用によって、同じ正圧を全ての貯蔵部に適用する。各マイクロチャネルから１つ又はそれ以上のセンサーへの化合物の迅速な逐次的送達は、各マイクロチャネルの流体抵抗を変更することによって達成され、これは、各マイクロチャネルの幅及び長さを変えることにより容易に達成される。
流体抵抗は、円形毛細管に関し、長さに直線的に、直径に４乗則で増加する。各マイクロチャネルの寸法を徐々に及び系統的に変えることにより、センサーチャンバー内の１つ又はそれ以上のセンサー上の化合物の送達におけるマイクロチャネルの間の時間遅延を制御することができる。このスキームは、特に、数多くの化合物を、予め決められた時間遅延で、順番にそして迅速にパッチ細胞／細胞上に送達すべきである、高処理量の薬物選別用途に適切である。
（スキーム３：外部バルブを用いる流体流の制御）
この構造では、アレーウェルプレートのそれぞれのウェルからの化合物を、対応するマイクロチャネルに連結する外部チューブ又は毛細管によって導入する。これらの外部チューブ又は毛細管に結合する外部バルブを、流体流を制御するために使用することができる。多数の適切な外部バルブが存在し、手動で、機械的に、電子的に、空気圧で、磁気的に、流体的に又は化学手段（例えば、ヒドロゲル）によって作動されるものが挙げられる。
（スキーム４：内部バルブを用いる流体流の制御）
外部バルブで流体流を制御するより、使用することができる多数のチップベースのバルブがある。これらのチップベースのバルブは、外部バルブ用に使用したものと同じ原理のいくつかに基礎をおくことができ、あるいは、全く異なる、例えば、ボールバルブ、泡弁、電気運動バルブ、ダイアフラム型バルブ、及びワンショットバルブであってもよい。チップベースのバルブを使用する利点は、これらが、元来、微小流体システムとの一体化に適していることである。特に関係の深いものとして、先に記載した設計のいくつか（例えば、分岐状チャネル形式）を実施するのに好ましい、一方向受動バルブがある。
他の適切な幾何学構造は、上記のシステムの任意のものと一体化してもよい。一態様では、先に記載した微小流体システムの少なくとも１つのチャネルは、２個又はそれ以上の他のチャネルからの流体の２以上の分離した流体の流れを受け取る、ミキシングチャネルである。ミキシングチャネルは、単一チャネルにおいて分離した流れを組合せるために使用することができる。そのような構造は、国際公開公報第０２／２２２６４号に記載されているように、２個又はそれ以上の分離した流れにおいて異なる濃度で提供された物質の濃度勾配を確立するために使用することができる。
（パッチクランプ検出と微小流体との接触）
システムは、細胞の電気特性における変化を測定することによって、細胞の応答をモニターするために使用することができる。一態様では、チップのセンサーチャンバーは、細胞ベースのバイオセンサーを含み、システムは、チャネルから溶液流へのバイオセンサーの応答をモニターするための検出器を含む。モニターすることのできる１つの応答は、イオンチャネルのゲート開閉に応答する、バイオセンサーの電気特性の変化である。例えば、バイオセンサーの膜をわたって流れる電流の変化を、電圧固定法を使用して測定することができる。電流は、数ピコアンペア（ｐＡ）（例えば、単一イオンチャネル開口部に関して）から数μＡ（ゼノパス卵母細胞のような大きな細胞の細胞膜に関して）の範囲でありうる。
電圧固定法の中でも、ｐＡ範囲の電流を測定するには、パッチクランプが最も適している（例えば、「Neher and Sakmann,1976, supra」；「Hamill et al., 1981, supra, Sakmann and Neher,1983, supra」を参照されたい）。パッチクランプの低ノイズ特性は、ガラスミクロ電極又はパッチクランプのピペットを無傷細胞の原形質膜上にきっちりとシールし、それによって隔離されたパッチを製造することによって達成される。ピペットと原形質膜との間の抵抗は、背景ノイズを最小限にするために重要で、１０９オームを超え、「ギガシール」を形成するようにすべきである。「ギガシール」の形成の背後にある正確な機構を説明するが、塩架橋、静電相互作用及びファンデルワールス力のような種々の相互作用が、ピペットのガラス表面と細胞膜の脂質層中の親水性頭部の間の相互作用に介在することが示唆されている（例えば、「Corey and Stevens, 1983, In Single-Channel Recording, pp.53-68, Eds. B. Sakmann and E. Neher. New York and London, Plenum Press」を参照されたい）。パッチクランプ法の変法を、利用することができ、例えば、全細胞記録、インサイドアウト記録、アウトサイドアウト記録及び当該技術分野で公知の穿孔パッチ記録がある。
全細胞記録において、電極チップをカバーする細胞膜を、細胞内部と電極溶液との間の電気的連結（及び化学経路）を確立するために、吸引によって破裂させる。電極溶液は、細胞中のサイトゾルの量に比較して大過剰（約１０μｌ対約１ｐｉ）であるので、電極溶液中のイオン種の変化が細胞膜を超えて濃度勾配を作り、膜貫通イオン流の方向及び大きさをを制御する手段を提供し、所与の受容体／イオンチャネル複合体が得られる。
インサイドアウト及びアウトサイドアウトパッチクランプ構造において、全細胞からの膜パッチの切除によりサイトゾル環境は失われる（例えば、「Neher and Sakmann, 1976,supra」；「Sakmann and Neher, 1983, supra」を参照されたい）。インサイド−アウト及びアウトサイド−アウト構造の両方におけるパッチの切除を得るために、細胞をセンサーチャンバーの底面に接着するのが好ましい。急性的に細胞を分離する場合は、細胞をチャンバーの底面に固定するために、例えばポリ−Ｌ−リジンを使用することができる。
インサイド−アウト構造は、チャンバー内の溶液への膜のサイトゾル側の曝露を可能にする。したがって、それは、単一チャネルレベルで、第二メッセンジャーで活性化されたイオンチャネルの開閉特性を検討するための選択方法である。したがって、サイトゾルシグナル分子の効果又はイオンチャネル機能上の酵素活性を、この構造の方法によって研究することができる。一方、アウトサイド−アウト構造は、パッチの細胞外側の曝露を可能にする。したがって、それは、リガンド開口型又は受容体に操作されるイオンチャネルの活性をモニターするために使用することができる。
低ノイズレベルは、より良好なシグナル−雑音比を、モジュレーター（例えば、アゴニスト又はアンタゴニスト）で与える。最適条件下で、より高いフェムトアンペア（１０−１５Ａ）範囲の単一チャネル電流を分解することができる。ノイズ（例えば、電極及び細胞の間での不良シールによって起こる）を減らして、ＧΩシールの形成を促進するための方法として、ガラス電極の熱加工、又はシグマコートのような薬剤を使用したガラス電極の表面処理が挙げられるが、これらに限定されるものではない。誘電性ノイズ及び容量性−抵抗性チャージングノイズもまた、ピペットチップをできるだけ大きく絶縁するために、石英ガラスを使用して、好適な電極／ピペット幾何学的構造を選択し、シルガード（登録商標）（シリコーン，ＰＤＭＳ）でピペットのガラス表面を覆うことによって、減少させることができる。
全細胞構造の変性にたびたび使用される、穿孔パッチモードも、使用することができる（例えば、Pusch 及び Neher, 1988, 前述参照, の記載を参照されたい）。この技術で、アンホテリシン又はナイスタチンのような細孔構築タンパク質を使用し、細孔を細胞膜に選択的に作り（例えば、「Akaike et al., 1994, Jpn. J. Physiol. 44:433-473」;「Falke et al., 1989, FEBS Lett. 251:167; Bolard et al., 1991, Biochemistry 30:5707-5715」を参照されたい）、細胞内シグナル分子を失うことなく、パッチ細胞膜をわたって導電率を向上させる。
一定の膜電位でイオンチャネルにわたるイオン電流の測定に加えて、パッチクランプ法は、公知の一定のあるいは時間変化する電流で膜電圧の測定をするために使用することができる。「電流クランプ」と言うこのパッチクランプ構造は、リガンド開口型イオンチャネルの活性化あるいは電圧開口型イオンチャネルによって起こされる、膜電位における変化を測定し、薬剤（例えば、薬物）の活性電位に対する効果（すなわち、周波数、持続時間及び振幅）をモニターするために使用することができる、バイオセンサーを製造するのに特に適している。この技術は、薬剤の効果を検査し、神経細胞の興奮性に与える薬剤の影響を検討するために使用することもできる。従って、一態様では、当該システムは、活性電位が誘発された時、電流クランプ内の細胞ベースのバイオセンサーの電圧閾値の変調（例えば、過分極又は脱分極）をモニターするために使用される。
他の態様では、システムは、オープンボリューム貯蔵部中の細胞ベースのバイオセンサーを提供し、ＡＣモードでのバイオセンサーの膜にわたる膜のインピーダンスを測定することによって、細胞膜における電気容量変化をモニターするために使用される。例えば、システムは、細胞からの小胞体の放出（すなわち、エキソサイトーシス）及び／又は細胞による小胞体の取り込み（すなわち、エンドサイトーシス）に与える薬剤の影響をモニターするために使用することができる。
電気生理学的パッチクランプの記録を有する微小流体システムと接する好ましい実施形態の１つを図１Ａに示す。．図１Ａでは、単一パッチクランプの細胞を示すが、数個のパッチクランプの細胞を同時に使用することができる。外部ポンプと流体制御機器とが標準顕微鏡に隣接して置かれている。全一体化システムは、コンピュータ制御され、自動化されているのが好ましい。システムの異なる成分（すなわち、微小流体、走査機構、パッチクランプなど）を、分離コントローラー及び分離ソフトウェアを使用して、別々に制御してもよいが、これらの成分を、先に記載した単一システムプロセッサによって、すべて制御することが最も好ましい。
システムは、従来のパッチクランプのピペット又はマイクロピペットとの用途に容易に適用することができる。一態様では、細胞又は細胞の一分画（例えば細胞膜）をパッチクランプのマイクロピペットの開口部に配置する。パッチクランプのマイクロピペットは当分野で公知であり、例えば、Ｗｏｒｌｄ Ｐｒｅｃｉｓｉｏｎ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ社（Sarasota, Florida 34240USA; http://www.wpiinc.com/WPI_Web/Glass-Holders/Patch_Clamp_Glas.html）から入手可能である。パッチクランプのマイクロピペットを、ギガシール（ギガΩ）がマイクロピペットの終端と細胞の膜との間に作られるまで吸引する。細胞の１つ又はそれ以上の電気特性における変化を、細胞と接触する流体流中のリガンド又は他の化合物の存在を決定する手段としてモニターするのが好ましい。例えば、電気シグナルを、マイクロピペット中の電極によって検出し、好ましくは増幅して、システムプロセッサへ送ることができる。センサーチャンバー中の溶液に接触する参照電極も必要である。
種々の支持溶液を、センサーチャンバーでの使用に適用することができる。溶液のタイプは、評価されるセンサー及び化合物に依存する。例えば、センサー溶液は、イオンチャネルの従来のパッチクランプの分析に使用される記録溶液であってもよい。一般的に、パッチクランプの記録用溶液の正確な組成は、評価されるチャネルのタイプによって変わり（例えば、米国特許第６，３３３，３３７号の「カリウムチャネル」；米国特許第６，３２３，１９１号の「Ｃｌ−チャネル」及び国際特許出願ＰＣＴ／ＵＳ９９／０２００８号の「ナトリウムチャネル」を参照されたい）、そのような溶液は、当該技術分野で周知である。
本発明の一態様では、パッチクランプの記録を、システムプロセッサによって自動化しそして制御する。例えば、システムプロセッサは、１つ又はそれ以上のマイクロピペットの事前にプログラムされた位置への移動を方向づけることができる。他の態様では、システムプロセッサは、センサーチャンバー中の細胞の画像分析に応答して、１つ又はそれ以上のマイクロピペットを方向付ける（例えば、システムは、１つ又はそれ以上の処置チャンバーからマイクロピペット（複数を含む）への細胞の送達をモニターする）。好ましい態様では、パッチクランプのデータの取得及び分析、続く微小流体設定（例えば、圧力、バルブ及びスイッチ）を変えるフィードバック制御、及び走査パラメータ（例えば、走査の速度及び軌道、チャネルにわたっての圧力低下）の制御は、システムプロセッサによって実施される。
従来のパッチクランプシステムを一体化することに加え、本発明による微小流体プラットホームは、観念的には、例えば、国際公開第９９／３１５０３号；国際公開第０１／２５７６９号；国際公開第０１／５９４４７；及び国際公開第９９／６６３２９号に記載されるように、チップベースのパッチクランプとの接続にも適している。この実施形態を図１Ｃに示す。これは、顕微鏡、マイクロピペット、マイクロマニピュレーターなどのようなシステム部品を省くことができる。チップベースのパッチクランプは、本発明の基板と簡単に一体化する。チップベースのパッチクランプシステムは、また、単一基板上で、数個の細胞を一緒にパッチクランプする能力を提供する。
本明細書は、受容体タンパク質を、異なる応答機能、動的領域ＥＣ５０値及びヒルスロープを有することを特徴とする不連続運動状態で調製する方法を記載する。本発明は、感作されていない状態のような結合非活性状態での受容体の蓄積、及び受容体のこれらの状態間の動態を、論理的バイオデバイスの構造において、及びシリカで作られた神経形態超大型集積（ＶＬＳＩ）回路において、使用される分子レベル記憶として基本的に使用することができるかについて説明する。更に、本発明は、薬物及び医薬的に活性な物質などの受容体モジュレーターを、受容体タンパク質中の応答機能、動的領域及び感応性の調整を、アンタゴニスト濃度及び曝露時間により変更するという事実により、特定化及び評価する方法を含む。競合的アンタゴニストが応答挙動におけるいくらかの差別化を消滅させるという発見をしたことで、ＧＡＢＡ系システム上で作用する薬物の副作用のいくらかの原因も同様であるかもしれない。
（システムの使用方法）
本発明は、数多くの異なる生物活性分子及び化合物（例えば、候補薬物）の、標的分子を含むセンサーへの送達を制御する微小流体システムを使用するための電位差を利用する。評価することのできる適切な分子／化合物として、薬物、刺激物、毒素、タンパク質、ポリペプチド、ペプチド、アミノ酸、タンパク質の類縁体及び改変体、ポリペプチド、ペプチド及びアミノ酸、抗体及びその類縁体、免疫剤（例えば、抗原及びその類縁体、ハプテン、発熱物質など）、細胞（例えば、真核細胞、原核細胞、感染細胞、トランスフェクト細胞、組換え細胞、細菌、酵母、生殖細胞など）及びその部分（例えば、細胞核、オルガネラ、分泌促進物質、細胞膜の部分）、ウィルス、受容体、受容体のモジュレーター（例えば、アゴニスト、アンタゴニストなど）、酵素、酵素モジュレーター（例えば、阻害物質、補助因子など）、酵素基質、ホルモン、代謝物及びその類縁体、核酸（例えば、オリゴヌクレオチド、ポリヌクレオチド、フィブリノチド、規制的な配列及び／又はイントロン、及び／又はコード領域を含む遺伝子又は分画、アレル異性体、ＲＮＡ、アンチセンス分子、リボザイム、ヌクレオチド、アプタマー）及びその類縁体及び改変体、化学的及び生物的兵器剤、金属クラスタ、及び無機イオンが挙げられるが、これらに限定されるものではない。
これらの任意の分子の２個及びそれ以上の組合せを、順番にあるいは同時に、センサーチャンバー内の１つ又はそれ以上のセンサーに送達することができる。また、化合物は、製薬会社及び当該技術分野で公知の他の市場で入手可能なソース（例えば、「http://www.tripos.com/compounds/」から入手可能な８０，０００個を超える化合物を含むＬｅａｄＱｕｅｓｔ（登録商標）Ｌｉｂｒａｒｙ；「http://www.chemrx.com」から入手可能な骨格当たり１０００〜５０００個の化合物を含むＣｈｅｍＲｘ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｌｉｂｒａｒｙ；Ｎａｎｏｓｃａｌｅ Ｃｏｍｂｉｎａｔｏｒｉａｌ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ社（Menlo Park, CA）から入手可能なｔｈｅ Ｎａｎｏｓｙｎ Ｐｈａｒｍａ ｌｉｂｒａｒｙなどが挙げられるが、これらに限定されるものではない）の合成ライブラリーから入手することができ、あるいは、当該技術分野で周知の方法を用いる組合せの合成によって生成することができる。分子を細胞に送達する態様では、先に記載したように、細胞を電場（例えば、細胞処置チャンバー中又は電気せん孔法に適用されるセンサーチャンバー中）に一過的に曝露することにより、先に記載された任意の分子を、細胞によって取り上げてもよい。
（周期的に再感作されたイオンチャネルセンサーの提供）
化合物（アゴニスト又はモジュレーター又は薬物のような）を広い範囲のイオンチャネルに結合することは、これらのチャネルにおける構造の変化を誘引し、細胞膜にわたるイオンのフラックスを起こさせるばかりでなく、イオンチャネルに脱感作を起こす、すなわち、持続性、リガンド結合、未切断、非導電性状態に置く原因にもなる（例えば、「Jones and Westbrook, 1996, GL Trends Neurosci. 19:96-101」を参照されたい）。普通、多くのタイプのイオンチャネルの脱感作が数ミリ秒の間に起こり、中枢神経系におけるシナプス情報を加工し修正する機構の１つと考えられる。脱感作は、神経伝達物質又は他の神経モジュレーターによるイオンチャネルの過剰な活性によって起こされた刺激毒性プロセスを予防する、負のフィードバック機構としても作用しているかもしれない（例えば、「Nahum-Levy, et al., 2000, Biophys J. 80:2152-2166」;「Swope et al., 1999, Adv. Second Messenger Phosphoprotein. Res. 33,:49-78」を参照されたい）。
一態様では、例えばＨＴＳ適用において、速い選別速度を達成するために、センサーチャンバー中のパッチクランプの細胞（複数を含む）を、１つのマイクロチャネルの出口から次に迅速に継続して動かす。イオンチャネル及び受容体の迅速な脱感作を達成するため、疑いのあるモジュレーター、アゴニスト又は受容体／イオンチャネルの薬物を含む、マイクロチャネル送達サンプルは、受容体／イオンチャネル（例えば、いかなるアゴニストも含まない緩衝液）の再感作のための緩衝液を送達するマイクロチャネルと相互連結する。イオンチャネル及び受容体を再感作することに加えて、リガンドと薬物曝露との間の細胞上へのこの緩衝液の送達は、リガンド及び前もって細胞に投与された薬物を洗い流す働きをする。したがって、この態様では、周期的に応答するイオンチャネルセンサーを提供することによって、システムを、特定のイオンチャネルのアゴニスト、モジュレーター又は薬物を選別するために使用される。例えば、緩衝液のパルス又は定常状態流れ送達をセンサーに提供することによって、システムは、候補アゴニスト、モジュレーター又は薬物を送達するチャネル出口に曝露された時、再感作される細胞を提供する。図２４Ａ〜Ｃは、センサーチャンバーへ送り込む２６個の出口を含む微小流体チップを使用する１方法による、未知のアゴニストの擬似選別を示す。各チャネルの含有物を図２４Ａに示す。公知の薬理作用（例えば、公知の効能又は力価）を有するアゴニストを、内部制御あるいは標準としての役割のためにあるチャネルに含ませている。この実験用のスコアシート、すなわち、各マイクロチャネル用に得たパッチクランプの応答を図２４Ｃに示す。
他の実施形態では、パッチクランプの細胞近傍の、例えば、パッチピペットに隣接する又は同軸の配列（以下に詳細に説明する）中の付加的な灌流ピペットを、細胞表面上の受容体／イオンチャネルを連続的に再感作する／洗うために使用する。これは、細胞を、非常に迅速に再感作し、洗浄（例えば、ミリ秒内で）することを可能にし、イオンチャネル活性のいくつかの異なる読み／登録を、細胞がチャネル出口にわたって動くようにすることを可能にする。図２７Ａ〜Ｃは、アゴニストの選別用の迅速な再感作の擬似方法を示し、これは、センサーチャンバーへ送り込む１４個の出口を含む微小流体チップの使用と、パッチクランプの細胞と同軸で、直行して、あるいは近接して置かれた流体チャネル（あるいはマイクロピペット）を使用する、アゴニストのない緩衝溶液のパルス灌流とを組合せる。各微小流体チャネルの含有物を図２７Ａに示す。公知の薬理作用（例えば、公知の効能又は力価）を有するアゴニストを、内部標準又はテスト化合物として作用するように、あるチャネルに含ませてある。
微小流体チャネル出口にわたる細胞ベースのバイオセンサーの直線状で、単一な、前方走査用の、図２７Ｂに示す擬似トレースは、単一マイクロチャネル出口当たりに得られる複数のピーク応答を示す。この実験用のスコアシート、すなわち、各マイクロチャネルで得られるパッチクランプの応答を、図２７Ｃに示す。この場合、マイクロチャネルをオープンボリュームに排出するリガンドが、ガウス分布を有していたことをモデル化したので、ガウス分布応答を得る。多くの他のタイプの分布を、基板の幾何学的構造及び流れのコリメーションのレベルのような実験パラメータに依存して得ることができる。しかし、単一マイクロチャネル出口にわたる通過の間細胞の灌流を繰り返すこのタイプは、用量応答情報及び高シグナル−雑音比を、迅速に脱感作する受容体／チャネルのために得ることを可能にする。
所望のデータを得るために、サンプル及び緩衝液の個々の流れにわたる細胞（複数を含む）の種々の走査速度と、各マイクロチャネルにわたる種々の圧力低下を、前もってプログラムされた指示から、あるいはパッチクランプの電極（例えば、検出されたシグナルをベースとする又はリアルタイムで）に電気的に連通する検出器からのフィードバックシグナルに応答して、システムによって実施することができる。
従って、システムを、受容体／イオンチャネルを含む細胞周辺の微小環境を迅速に変更するために使用することができる。例えば、システムは、周期的応答性イオンチャネルを提供することができる。ここで使用される基板及びマイクロチャネルは寸法が小さい（これは迅速な大量移送をもたらす）ため、当該システムは、場合によっては、ユーザーに、１個のパッチクランプのセンサーを用いて薬物を毎秒数百（すなわち毎時間数百万）の速度で選別することを可能にし、提供される薬物及び再感作溶液は、同程度の速度で、センサーに順番に送達される。以上で検討したように、走査速度を、細胞ベースのセンサーの生理的応答を考慮して修正することができ、例えば、ゆっくりと平衡化する受容体には、より遅い走査速度を提供する。
（用量応答曲線の作成及びイオンチャネル薬理の分析）
用量応答曲線は、薬物の作用及び力価に関する種々の情報を提供する。マイクロピペットを含む、従来の方法を使用して用量応答曲線を得ることは、しばしば、時間がかかり面倒である可能性がある。細胞（複数を含む）周辺の微小環境の迅速で制御された操作に関し微小流体を使用する、本発明は、用量応答測定に特異的に適用される。用量応答関係は、ほとんどの場合、直線−対数プロットでＳ字型曲線を描き、ヒルロジスティック関数により記載することができる。
Ｉ＝Ｉｍａｘ／［１＋（ＥＣ５０／Ｃ）ｎ］
式中、Ｉは全細胞電流であり、Ｃはリガンドの濃度であり、Ｉｍａｘは最高電流（すなわち、全チャネルが開放状態にあるときのもの）であり、ＥＣ５０値は最大値の半分（すなわち、受容体集団の半分が活性化された時のものであり、しばしばリガンドの解離常数、ＫＤ値に等しい）であり、そしてｎは受容体に結合するリガンドの化学量を反映するヒル係数である。
一態様では、アゴニストの用量応答情報を得るために、センサーチャンバー内のパッチクランプの細胞（複数を含む）を、１個のマイクロチャネルの出口から次へ連続して迅速に動かす。異なる濃度でアゴニストを送達するマイクロチャネルは、アゴニストを含まない緩衝液を送達するマクロチャネルに相互連結する（例えば、先に記載したように、受容体／イオンチャネルを再感作する及び／又は前もって細胞に投与された化合物を洗い流す）。連続してあるいは順番に希釈されたアゴニストを異なるチャネルに負荷するのが好ましい。図２６Ａは、５６−チャネル基板におけるそのような負荷スキームの１例である。アゴニストは、チャネル５２において最高濃度で存在し、次いで、チャネル６まで次のチャネルのそれぞれで連続して希釈される。公知の薬理作用（例えば、公知の効能又は力価）を有するアゴニストを、内部標準の役目を果たすように、あるチャネルに含ませている。最高濃度を有するチャネルから最低濃度を有するチャネルまでのアゴニスト濃度は、多くのオーダー単位をカバーするのが好ましい。図２６Ｂは、先に記載した異なる濃度でのアゴニストの擬似パッチクランプの記録である。この擬似実験のスコアシート、すなわち、図２６Ｃに示す各マイクロチャネルで得られるパッチクランプの応答から、用量応答曲線を作ることができる。
同様に、いくつかの変性に関し、当該システムを同様に用いて、アンタゴニストの用量応答曲線を得ることができ、これは以下にさらに詳しく記載する。さらに、先に記載したように、微小流体とパッチクランプとの組合せは、イオンチャネル上のモジュレーターの作用に関し、例えば、その受容体用のリガンドの結合定数及び解離定数、及びモジュレーターが受容体のアゴニストであるかアンタゴニストであるかのような広い範囲の情報を提供することができる。しかし、緩衝液の流れに相互連結する受容体を洗浄するあるいは再感作することなく、リガンドの蓄積された応答から用量応答情報を得ることも可能である。この態様では、マイクロチャネルは、異なる濃度でリガンド溶液を含むことだけが必要である。
（アゴニストの検出及び特定化）
（部分アゴニスト）
薬物分子の受容体介在応答を活性化する能力は、無であるか又は全てであるかの特性と言うより段階的特性である。同じ受容体上で作用する、一連の化学的に関連するアゴニストを細胞上でテストする。最大応答（すなわち、高濃度においてアゴニストが生成することができる最も大きな応答）は、一般的に、アゴニストのそれぞれで相違する。ある化合物（「完全アゴニスト」として知られる）は、最大応答を作り出すことができるが、「部分アゴニスト」と言われる他のものは、準最大応答しか作り出すことはできない。従って、「部分アゴニスト」は、完全アゴニストが受容体に結合するのを阻害することによって、「弱いアンタゴニスト」として作用する。従って、最大応答を作り出す公知のアゴニストとともに規定されたイオンチャネルを使用することによって、アゴニストの活性のグレードをモニターすることができる（例えば、図２４を参照）。
（アンタゴニストの検出及び特定化）
一態様では、システムを、イオンチャネル活性のアンタゴニストを選別するために使用する。評価を行うことができる適切なイオンチャネルとして、（ｉ）脱感作しないイオンチャネル、（ｉｉ）脱感作するイオンチャネル、（ｉｉｉ）脱感作するが、活性化された時大きな電流変動を媒介するイオンチャネル、及び（ｉｖ）脱感作特性がアロステリックモジュレーター（例えば、レクチン）の不可逆的結合によってブロックされているイオンチャネルが挙げられる。アンタゴニストを検出するために、バイオセンサーによって発現されたイオンチャネル又は受容体は、アンタゴニストを適用している間、その前、又はその後に、アゴニストにより活性化される、あるいは「テストされる」ことが必要である。例えば、異なるアンタゴニストを、公知の薬理特性を有する明確なアゴニストと共に適用することができる。異なる濃度でのアンタゴニストを、一定濃度のアゴニストと共に、マイクロチャネルに負荷することができる。
イオンチャネル及び受容体の迅速な脱感作を達成するために、アゴニストとアンタゴニスト（例えば、リガンドと薬物）とを含むマイクロチャネルを、いかなるアゴニスト又はアンタゴニストも含まない緩衝液（例えば、受容体／イオンチャネルの再感作用の緩衝液）を送達するマイクロチャネルと相互連結することができる。イオンチャネル及び受容体の再感作に加えて、リガンド及び薬物への曝露時間の間の緩衝液への細胞の曝露が、リガンドと前もって細胞に投与された薬物とを洗い流す役目を果たす。したがって、この態様では、システムは、周期的な応答性イオンチャネルセンサーを提供するために使用される。このシステムでは、アンタゴニストをアゴニスト誘発応答の阻害によって検出する。
他の態様では、システムを、常に未活性の受容体／イオンチャネルに介在されるシグナルにおける減衰によって検出することができるアンタゴニストを選別するために使用する。この特定の設定では、異なるチャネルを、異なるアンタゴニスト、異なる濃度の同じアンタゴニスト、又はこれらの混合物で充填し、一方、アンタゴニストを含む各チャネルは、アゴニストを一定濃度で含む。受容体及びイオンチャネルの連続的な活性化を達成するため、アゴニスト及びアンタゴニストを含むマイクロチャネルを、アンタゴニストが添加されたチャネルの場合のように、緩衝液及びアゴニストを同じ濃度で送達するマイクロチャネルに相互連結する。リガンド及び薬物曝露の間における細胞上へのアゴニストを添加した緩衝液のこの送達は、リガンド及び前もって細胞に投与された薬物を洗い流す役割を果たし、また、受容体／イオンチャネルを再感作する役割も果たす。
このような実験のシミュレーションを図２５Ａ〜Ｃに示す。各チャネルの含有物は、図２５Ａに示す。公知の薬理作用（ブロッキング力価）を有するアンタゴニストは、内部標準として働くように、あるチャネル内に含ませてある。図２５Ｂに示す擬似トレースは、微小流体チャネル出口をわたる細胞ベースのバイオセンサーの直線状単一前方走査を表す。図に示すように、複数のピーク応答を、単一マイクロチャネル出口当たりで得る。この実験のスコアシート、すなわち、各マイクロチャネルで得られるパッチクランプの応答を、図２５Ｃに示し、これから、最も高いブロッキング力価を有するアンタゴニストを同定することができる。
（競合的拮抗作用）
このタイプの競合的作用は、受容体上の同じ結合サイトでのアゴニストとアンタゴニストとの間の競合を言う。可逆的競合的拮抗作用は、同じ最大応答を保ちながら、用量応答曲線の勾配において、より高い濃度へのシフトと、曲線の勾配を特徴とする。不可逆的競合的拮抗作用では、細胞をアゴニストに曝露した時、アンタゴニストに占有されている場合には変化は見られない。
（非競合的拮抗作用）
非競合的拮抗作用は、アンタゴニストが、ある時点で、アゴニストによる応答の生成に導く出来事の連鎖をブロックする状態を表す。このタイプの拮抗作用では、アゴニスト及びアンタゴニストがそれぞれ、受容体／イオンチャネル上の異なるサイトに結合し、あるいはアンタゴニストが単純にイオンチャネル細孔をブロックする。純粋な効果は、アゴニストの用量応答曲線の勾配と最大値とを減少させることである。
（等比体積の阻害）
このタイプの拮抗作用は、ある濃度を超えるアゴニストの自己抑制を言う。すなわち、アゴニストは、充分高い濃度で、それ自身の作用を拮抗し始める。ベル型の用量応答曲線は、しばしば、この種の拮抗作用の存在を示す。
（前シナプス発現イオンチャネルのモジュレーターの検出）
他の態様では、システムを、前シナプス発現イオンチャネルのモジュレーターを検出するために使用する。前シナプスで局在化するイオンチャネルを検討する方法として、しばしば、タンパクリポソーム又は平面的リン脂質二重層に挿入されたシナプトソーム（すなわち、脳組織を均質化することにより生成されるピンチオフ神経末端）のパッチクランプの記録が挙げられる（例えば、「Farley and Rudy, 1988, Biophys. J. 55:919-934; Hirashima and Kirino, 1988, Biochim Biophys Acta 946:209-214」を参照されたい）。Ｈｉｒａｓｈｉｍａ及びＫｉｒｉｎｏ，１９８８（上記を参照）の方法は、本発明によるシステムにおけるパッチクランプ用のバイオセンサーとして使用することのできる、前シナプス発現イオンチャネルを含む、ジャイアントタンパクリポソームを産生する単純で迅速な方法であるため、特に好ましい。
（オーファン受容体／イオンチャネル上で作用するリガンドの検出）
従来の薬物発見のアプローチは、しばしば、リガンドの生物活性、これは続いてその組織薬理及び生理学的役割を特定化するために使用される、の発見によって始まる。代表的には、リガンドが特定化された後、対応する受容体を、ＨＴＳ用途における薬物選別用の標的として同定する。オーファン受容体（すなわち、未規定の生物活性を有する受容体）を特定化するための比較的新しい方法は、「逆薬理学的」アプローチと言われることが多い。
逆アプローチは、そのリガンドの検出のために標的として使用される、未知の機能を有するオーファン受容体から始まる。リガンドは、次いで、受容体の生物学的及び病態生理学的な役割を検討するために使用される。受容体の治療価値の判断を助けるアンタゴニストを開発するために、リガンドを生物学的に特定化するのと同時に、高処理量の選別を受容体上で開始する。
本発明は、逆薬理学的アプローチ用に特に有用である。一態様では、当該システムは、外因性オーファン受容体（例えば、イオンチャネル）を発現する非天然の細胞株である、細胞ベースのバイオセンサーを含む。適切な天然の細胞株として、ＨＥＫ−２９３、ＣＨＯ−ＫＩ、及びＣＯＳ−７が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
非天然の細胞のバックグランド中のイオンチャネルを選別することに関連するいくつかの利点がある。先ず、ヌルバックグランドを含むトランスフェクト細胞株（例えば、通常オーファン受容体を発現しない）を、観察されたシグナルに応答する遺伝子の分子的同定を間違いのないものにする。第二に、オーファン受容体を、過剰発現することができ、従って、選別読み出しのシグナル−雑音を改善することができる。第三に、低バックグランド導電率を有するホスト細胞を、あるタイプのイオンチャネルの超高感度アッセイを可能にするために、選択することができる。最後に、これらの細胞株は、比較的培養しやすく、自動化選別システムによって取り扱われるのに充分丈夫である。
（神経伝達物質小胞放出のモジュレーターの検出）
１０年以上前に開発された、膜電気容量を測定するパッチクランプ方法（例えば、「Neher and Marty, 1982, Proc.Natl.Acad.Sci. USA 79:6712-6716」を参照されたい）は、エキソサイトーシスの基本機構及び制御を検討するのに力強いツールを提供する。
細胞の表面積は、エキソサイトーシスとエンドサイトーシスとの間のバランスに依存する。エキソサイトーシスは、小胞含有物（すなわち、神経伝達物質など）の細胞外空間への流出及び小胞膜の原形質膜への取込みをもたらし、細胞表面積を増加させる。エンドサイトーシスの間、原形質膜の部分は回収され、表面積は減少することになる。したがって、細胞表面積の変化を測定することによって、正味開口放出及び形質膜陥入活性の変化をモニターすることができる。
膜電気容量は、原形質膜区域に比例する、細胞の電気的パラメータである。したがって、一定に保たれた特定電気容量を提供することで、前シナプス的に局在したイオンチャネルによる、開口放出及び形質膜陥入活性の薬物誘導調節による原形質膜区域において変化し、これはシステムの開放センサーチャンバー内のパッチクランプにより、膜電気容量を測定することによって、モニターすることができる。
（細胞の透過性特性の判断）
選別手順において使用される細胞が、広範なイオンチャネルタイプを発現する場合、細胞の活性化されたイオンチャネルのイオン透過性特性の特定化を、細胞での薬物の相互反応を特定化するために使用することができる。イオンチャネルの透過性特性に関する情報を、電流対電圧関係を評価することによって決定することができ、異なる保持電位差でのアゴニスト誘発電流の測定によって作ることができる、逆転電位差をモニターすることによって決定することができる。逆転電位と細胞内及び細胞外濃度に関する知識を使用することによって、相対イオンチャネル透過性特性を異なるモデルから決定する。
（電流トレースのノイズ分析）
アゴニストによって活性化されたイオンチャネルからの電流−トレースの分析を、アゴニスト−イオンチャネル相互反応の更なる特性確認のため、集合及び単一チャネルレベルの両方で行うことができる。全細胞パッチクランプで記録された総電流のために得た自己相関機能のフーリエ変換により、単一又は二重ローレンツ機能により適合されうる電力スペクトルを得る。これらの適合は、電流応答（すなわち、コーナー周波数）の周波数依存性の分析を通して、平均単一チャネル導電率及びイオンチャネル反応速度（例えば、平均単一チャネル開放時間）に関する情報を提供する。原則として、より困難で時間のかかる方法ではあるが、アウトサイドアウトパッチクランプ構造から得られる記録も、同じ受容体イオンチャネル複合体により媒介される単一チャネル開口間隔及び異なる導電率レベルを測定するため、分析することが可能である。
（実施例）
ここに、本発明を、以下の実施例に関連してさらに詳しく説明する。ここで挙げるのは単なる例示であって、詳しい修正がなされてもよく、それは本発明の範囲内に属するものであることは理解されるであろう。
（基板の微細加工）
図１９は、ＳＦ６におけるディープ反応性イオンエッチングにより、シリコン中に加工したマイクロチャネルの実施例を示す。フォトリソグラフィ用のマスクを、標準電子ビーム書込み法を使用し、ＪＥＯＬ ＪＢＸ−５ＤＩＩ電子ビームリソグラフィシステムで製作した（溶媒；反射性４″クロムマスク及びシップリーＵＶ５レジスト、５０ｋｅＶアーク電圧、用量；１５μＣ／ｃｍ−２、曝露電流；５ｎＡ）。レジストを２０００ｒｐｍで６０秒スピンコートし、２５０ｎｍのレジストを得、曝露前に、熱プレートで、１３０℃、１０分間ソフトベークを施した。曝露後、パターンを、オーブン中で１３０℃２０分焼成し、シップリーＭＦ２４−Ａ中で６０秒現像し、脱イオン水で濯いで、反応性イオンエッチング装置（Ｐｌａｓｍａｔｈｅｒｍ ＲＩＥ ｍ−９５、３０秒、５０Ｗ、２５０ｍＴｏｒｒ、１０ｃｃｍ Ｏ２）でエッチングした。クロムをバルザークロムエッチ＃４で１〜２分、エッチングし、マスクを、シップリー１１６５除去装置を使用して残存するレジストから引き剥がして、アセトン、イソプロパノール及び脱イオン水で濯いだ。７００ｎｍの熱成長二酸化ケイ素を有し、総厚さが３８０μｍの３インチ［１００］、両面が研磨された低Ｎドープされたシリコンウェハを、反応性イオンエッチング装置Ｐｌａｓｍａｔｈｅｒｍ ＲＩＥ ｍ−９５中で清浄し（３０秒、５０Ｗ、２５０ｍＴｏｒｒ、１０ｃｃｍ Ｏ２）、シップリーＳ−１８１３フォトレジストを用い、４０００ｒｐｍでスピンコートし、１．３μｍのレジストを得、これを１１０ｍＪ／ｃｍ−２の用量に４００ｎｍの波長で、Ｃａｒｌ Ｓｕｓｓ ＭＡ６マスクアライナーを使用して曝露した。ウェハを、脱イオン水で濯いだシップリーＭＦ３１９中で４５秒間現像して、反応性イオンエッチング装置（Ｐｌａｓｍａｔｈｅｒｍ ＲＩＥ ｍ−９５、３０秒、５０Ｗ、２５０ｍＴｏｒｒ、１０ｃｃｍ Ｏ２）中で灰化した。ウェハを、１０分間１３０℃でハードベークを施し、二酸化ケイ素をＳｉｏＴｅｃｈ緩衝性酸化物エッチング液でエッチングして、脱イオン水で濯いだ。ウェハをアセトンで、残存するレジストから引き剥がして、イソプロパノール及び脱イオン水で濯いだ。ウェハのもう一方側を、シップリーＡＺ４５６２フォトレジストを用い、３０００ｒｐｍで３０秒間スピンコートし、約８μｍのレジストを得、ソフトベークを、熱プレート上で１００℃３分間行い、４８０ｍＪ／ｃｍ−２の用量に、４００ｎｍの波長で、Ｃａｒｌ Ｓｕｓｓ ＭＡ６マスクアライナーを使用して曝露した。パターンを、シップリーＭＦ３１２と脱イオン水との５０：５０混合物中で２００秒間現像し、脱イオン水で濯ぎ、反応性イオンエッチング装置（Ｐｌａｓｍａｔｈｅｒｍ ＲＩＥ ｍ−９５、３０秒間、５０Ｗ、２５０ｍＴｏｒｒ、１０ｃｃｍ Ｏ２）で灰化した。
フォトレジストＡＺ４５６２中に規定されたパターン、記録チャンバー及び組合せアクセスホール及びサンプルウェルを、ＳＴＳ 複数のディープ反応性イオンエッチング装置で、エッチングガスとしてＳＦ６を、不活性化ガスとしてＣ４Ｆ８を使用して、６００ＷのＲＦ電力及び３０Ｗのプラテン電力でエッチングした。システムを一定ＡＰＣ角の７４％で操作し、エッチング時間は１２秒間で、オーバーラン時間は１秒間、そして不活性化時間は８秒間でオーバーラン時間は１秒間であった。エッチング速度は約４．９μｍ／分間であり、エッチング時間は６０分間で、深さ約３００μｍを得た。ウェハを残存するレジストからアセトンで引き剥がし、イソプロパノール及び脱イオン水で濯いだ。
マイクロチャネルを規定する二酸化ケイ素中のパターンを、８００ＷのＲＦ電力、一定ＡＰＣ角度の６８％で、エッチング時間が７秒間でオーバーラン時間が０．５秒間、そして不活性化時間が４秒間でオーバーラン時間が１秒間であった以外は上と同じシステムでエッチングした。エッチング速度は約３．３μｍ／分で、エッチング時間は３０分間で、深さ１００μｍを得た。ウェル及び記録チャンバーを完全にエッチングして、ウェハのこれらのポイントで細孔を開けた。チャネルをシールして、陽極結合を使用し、温度４５０℃及び電圧１０００Ｖで、コーニング＃７７４０のボロシリケートガラスの３インチ、１０００μｍ厚さのウェハとした。結合中の最大電流は、一般的に、５００μＡであった。
（微小流体ベースの緩衝液灌流を使用するパッチクランプの細胞の再感作及び細胞走査）
マイクロチャネルを、重合体、ポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）でモールドし、これをガラスカバーガラス上に不可逆的にシールし、４つの壁を有する封鎖チャネルを形成した。
使用した手順は以下の通りである。
（１）ＰＤＭＳでモールディングするために使用したシリコンは、フォトレジストに対する良好な接着を補償するために、最初にウェハを清浄し、次いで、ネガ型フォトレジスト（ＳＵ８−５０）の層（〜５０μｍ）をウェハ上にスピンコートして製作した。次いで、ネガ型フォトレジストのこの層を、ソフトベークして、フォトレジスト中に含まれていた溶剤を蒸発させた。マスクアライナーを有するフォトリソグラフィを、電子ビーム書込み法を使用して調製する、適切なパターンを有するフォトマスクを使用して行った。次いで、曝露されたウェハを焼成して、曝露されていないフォトレジストを適切な現像液（例えば、酢酸プロピレングリコールメチルエーテル）中で洗い流すことによって現像した。
（２）この現像されたウェハ（ｍａｓｔｅｒ）を、数百マイクロリッターのトリデカフルオロ−１，１，２，２−テトラヒドロオクチル−１−トリクロロシランで数時間、真空下でシラン処理を行うことにより、表面を不活性化した。
（３）脱ガスしたＰＤＭＳプレポリマーをシリコンマスタの頂部へ注いで、オーブン中に置き、６０℃で２時間硬化した。
（４）次いで、マイクロチャネル特徴部を含む硬化ＰＤＭＳモールドを、不可逆的にシールして、酸素プラズマ中で約１分間酸化して、ガラス基板を得た。我々がこの実施例使用したチャネル寸法は、幅約１００μｍ、深さ５０μｍであった。
ここに記載した実験は、単純単一チャネル構造を使用した。このマイクロチャネルを、先ず、適切な直径を有する鋭いホールパンチャーでＰＤＭＳを抜ける平滑な細孔を穿孔して、ポリエチレンチューブと連結した。穿孔の直径より少し大きい外径を有するポリエチレンチューブを当該細孔に挿入して、ＰＤＭＳの弾性性質によって、チューブで圧力シールを形成した。ポリエチレンチューブを適正な寸法（ゲージ）を有するシリンジ針に連結し、これをシリンジに連結した。流体流を起こすための制御圧力を、高精度シリンジポンプ（ＣＭＡ／１００、ミクロ注入ポンプ、Carnegei Medicin）で得た。
パッチクランプの実験を全細胞構造で行った。全細胞記録用分注器を、外径が１．５ｍｍで内径が０．８６ｍｍの厚壁ボロシリケートガラス毛細管（Ｈａｒｖａｒｄ Ａｐｐａｒａｔｕｓ社（Edenbridge, Kent, UK））から製作した。チップの直径及び抵抗は、それぞれ、約２．５μＭ及び５〜１５ＭΩであった。評価した直列抵抗は、常に、＜５０ＭΩであり、そして保持電位差は直列抵抗のため、電圧エラーに対して補正した。パッチクランプの電極溶液は、１００ｍＭのＫＣｌ、２ｍＭのＭｇＣｌ２、１ｍＭのＣａＣｌ２、１１ｍＭのＥＧＴＡ、及び１０ｍＭのＨＥＰＥＳを含み、ｐＨはＫＯＨで７．２に調整した。全実験を室温（１８〜２２℃）で行った。
シグナルを、Ａｘｏｐａｔｃｈ２００Ａ（Ａｘｏｎ社（California, U.S.A））のパッチクランプの増幅器を用い、保持電位差−７０ｍＶで記録し、デジタル化し、コンピュータハードドライブ（サンプル周波数１０ｋＨｚ、フィルター周波数２００Ｈｚ、８ポールベッセルフィルターを使用）に保存して、ＰＣ及びＣｌａｍｐｆｉｔ８．１ソフトウェア（Ａｘｏｎ社）を使用して分析した。マイクロチャネル構造を含む実験用チャンバーを、４０倍及び１０倍対物レンズ（Nikon, Japan）が備わる、倒立方顕微鏡台上に据付けた。顕微鏡を、走査速度を記録するビデオに連結されたＣＣＤカメラ（Hamamatsu）に連結し、ビデオのサンプリング速度は、２５Ｈｚであった。マイクロマニピュレーター（Narishigi,Japan）と結合した装置を、ファラディーケージ中の防振台上に置いた。パッチクランプの増幅器、デジデータ板、フィルター、ビデオ及びＰＣは、ケージの外に置かれ、ライン周波数からの妨害を最小限にした。
接着性ＰＣ−１２細胞を、ペトリ皿中の円形カバーガラスの上で、２〜６日間培養した（抗生物質及びアンチミコチン（antimyocotin）（０．２％）、ウシ胎児血清（１０％）及びＬ−グルタミンを補充したＤＭＥＭ／Ｆ１２培地）。パッチクランプの実験の前に、細胞を洗浄し、ＨＥＰＥＳ−食塩緩衝液（ＨＥＰＥＳ：１０（単位：ｍＭ）、ＮａＣｌ：１４０、ＫＣｌ：５、ＣａＣｌ２：１、ＭｇＣｌ２：１、及びＤ−グルコース：１０を含み、ｐＨ７．４）中で解離して、マイクロチャネルの出口の開放緩衝液貯蔵部に置いた。
シールの強度を、全細胞構造へ入ることなく、パッチクランプされた細胞で、テストした。−７０ｍＶの膜保持電位差を印加し、細胞をチャネル出口から１０μｍ離れた場所に置いた。０．３〜２１ｍｍ／秒の間で変化する異なる流速をかけ、シールを連続的にモニターした。この特定の実験では、パッチシールは、６．７ｍｍ／秒までの流速で安定（電流トレースにおいてシフトなし）であった。
再感作実験に関し、アゴニストを、緩衝液をシリンジからマイクロチャネルに送達し、マイクロチャネルから開放貯蔵部へ排出しながら、細胞を接続する、開放貯蔵部に加えた。パッチクランプの細胞をマイクロチャネルの出口から約１０μｍ離して配置した。パッチクランプの細胞が残る貯蔵部を１ｍＭのアセチルコリン（アゴニスト）で満たした。緩衝液をシリンジポンプによってマイクロチャネルに送達して、約３ｍｍ／秒で連続的にマイクロチャネルに流し込んだ。
細胞が、マイクロチャネルに対して平行な方向へマイクロチャネルの出口から約１０μｍから約８０μｍまで動くので、ギガオームのシールが安定な間（５〜２０Ｇオーム）は、電流は観察されなかった。この事実は、パッチクランプの細胞は、マイクロチャネルから排出する緩衝液によって灌流を起こされ、したがって、開放貯蔵部中のアゴニストと接触しなかったことを意味する。マイクロチャネルの出口から約８０μｍで、パッチ細胞を、マイクロチャネルに対して垂直の方向、アゴニストを含む貯蔵部とマイクロチャネル出口との間、約１００μｍ／秒で繰り返し走査した（図２０）。
電流応答の脱感作は、アゴニストへの曝露後、平均全細胞電流の減少として、長い時間（＞５秒）観察することができた。パッチ細胞が、各曝露間にアゴニストのない緩衝液中で再感作される限り、アゴニストへのより短い曝露時間（＜５秒）では繰返し曝露でも、細胞の脱感作は観察されなかった。
（ＨＴＳ用途のためのリガンド及び緩衝液の相互連結流れにわたるパッチクランプの細胞の迅速な走査）
本発明が使用するＨＴＳを実施するための好ましい実施形態の１つが緩衝液と、各リガンド流は異なる薬物に対応するリガンドとの相互連結流にわたるパッチクランプの細胞を迅速に走査することである。これらの用途では、先に検討したように、マイクロチャネルから排出する流体の流速と、パッチクランプの細胞の走査速度の両方が重要である。図２１Ａ〜Ｄに７−チャネル構造の出口をわたって走査された後のパッチクランプの全細胞の応答を示す。各チャネルの幅は、１００μｍであり、厚さは５０μｍであり、そして内部チャネル間隔は２５μｍである。この７−チャネル構造は、図１６Ｂで示した構造と一致している。マイクロチャネルの製作及びパッチクランプの手順は実施例２に記載した手順と同一である（前記を参照）。使用したパッチクランプの細胞は、ＰＣ−１２細胞であり、マイクロチャネルの出口から１０〜２０マイクロメーター離して配置した。チャネル１、３、５及び７をＰＢＳ緩衝液で満たし、チャネル２、４及び６はアセチルコリンで満たした。流体流の流速は、６．８ｍｍ／秒であった。
図２１Ａ〜Ｄにおいて、パッチクランプの細胞を、相互連結流にわたって、４つの異なる走査速度、Ａ：０．６１ｍｍ／秒、Ｂ：１．２２ｍｍ／秒、Ｃ：２ｍｍ／秒及びＤ：４ｍｍ／秒で走査した。走査速度における違いは、全細胞電流応答ピークの幅を反映し、幅が広ければ広いほど、移行時間は長くなり、ピーク幅は広くなる。さらに、遅い走査速度に関して（例えば、図２１Ａ）、各ピークの最大応答は、パッチクランプの細胞を、１つのアセチルコリン流から次を走査する時、減少する。このピーク応答における減少は、アセチルコリン流中の細胞をより長い時間滞留させる、遅い走査速度の結果の、パッチクランプの細胞の脱感作によって起こるものである。
第二から第三ピークの高さの減少は、第一から第二ピークの減少に比べて大きいことが図２１Ａから分かる。これは、第二の流れにおけるパッチクランプの細胞のより長い滞留時間（すなわちより長いピーク幅）がより多く脱感作を起こすという事実と一致している。走査速度が増加すると（図２１Ｃ及び２１Ｄ）、アセチルコリン流中の滞留時間は減少し、脱感作はもはや問題ではない。例えば、図２１Ｄに示すような速い走査速度（例えば、数十ミリ秒）では、脱感作を検出することができない。図２２は、パッチクランプの細胞をアセチルコリン流の幅にわたって走査すると、走査速度が遅く（秒）、脱感作が顕著であるという反対のシナリオを示す。
これらの実験から、走査速度を制御することが、ＨＴＳ用途のためのシステムの最適な実行を達成するために重要であることが明らかである。走査速度は、先に記載した機構の任意のもの、あるいは当分野で公知の他の方法によって制御することができる。
脱感作及び再感作の動力学に関連するシステムによって得られたデータは、イオンチャネルの薬理学、動力学及び同一性を解明する有用な情報を提供するために、利用することができる。
（緩衝液及び異なる濃度を有するリガンドの相互連結流れを横切るパッチクランプの細胞の迅速な走査による用量応答測定）
実施例３で使用したチャネル構造及び実験設定を、各リガンド流れにおけるリガンドの濃度が予め決められた量によって異なっている条件で、用量応答測定を行うために使用することができる。図２３は、そのような実験の１つであって、３つの異なる濃度（１μＭ、１２μＭ及び２００μＭ）のニコチンをパッチクランプの細胞に適用する実験の結果を示す。この７−チャネル構造では、チャネル１、３、５及び７をＰＢＳ緩衝液で満たし、チャネル２、４及び６を、それぞれ、１μＭ、１２μＭ及び２００μＭのニコチンで満たした。使用した流速は３．２４ｍｍ／秒であり、そして細胞走査速度は２５０μｍ／秒であった。パッチクランプの細胞を、マイクロチャネルの出口から１０〜２０μｍ離して置いた。
１μＭ濃度のニコチンで、全細胞電流応答は、パッチクランプのトレースにおいて、ほとんど認識できなかった。１２μＭでの電流ピークは、良好なシグナル−雑音比で検出され、２００μＭに相当する当該ピークで、１２μＭにおけるピークでのほぼ１５〜２０倍であった。これらの測定で、薬物作用及びイオンチャネル薬理学に関し価値のある情報を提供する用量応答曲線を作成することができる。数多くの勾配形成に関するオンチップ法及び異なる濃度のリガンドを調製するオフチップ法（例えば、「Dertinger et al., 2001, Analytical Chemistry 73:1240-1246」を参照されたい）を使用することができることは強調されるべきである。さらに、用量応答曲線を構築するために使用される異なる濃度の数は、ほとんどの場合、この実施例実施例で使用されてものより多く、必要とされる濃度分解能に依存し、特定の用途に関し望ましい範囲にある。
（微小流体装置及び基本的な設定）
市販のパッチクランプ用の微小流体装置（Ｄｙｎａｆｌｏｗ １６（Cellectricon AB,Goteborg Sweden））を使用して、電気生理学的実験を行った。装置は５０×５７μｍ（ｗ×ｈ）の寸法の１６チャネルであって、オープンボリュームへの出口の点で２２μｍ厚の壁によって分離されている。１６個のサンプル貯蔵部の容積は、８０μｌで、オープンボリュームの寸法は、３０×３５ｍｍである。実験の前に、装置を、マイクロピペットを使用して異なる溶液で負荷した。２ｍｍ厚のポリカーボネート蓋を、両面接着テープ（3M,Stockholm,Sweden）を使用して、サンプル貯蔵部の上に接着し、密閉システムを作った。蓋を、ＰＥチューブを有するシリンジに連結し、シリンジポンプ（ＣＭＡ／１００、マイクロインジェクションポンプ（Carnegie Medicine,Cambridge,UK））を使用して、蓋に囲まれる空気を圧縮して、チャネル内の圧力誘導流でウェルを起動した。
（細胞培養）
接着ＷＳＳ−１細胞を、ペトリ皿で４〜８日間（ＤＭＥＭ／Ｆ１２）培地（当該培地は抗生物質、アンチミコチン（ａｎｔｉｍｙｃｏｔｉｎ）（０．２％）、ウシ胎児血清（１０％）及びＬ−グルタミンを補充）で培養した。実験の前に、細胞を洗浄し、ＨＥＰＥＳ−食塩緩衝液（ＨＢＳ）（ＨＥＰＥＳ：１０（単位：ｍＭ）、ＮａＣｌ：１４０、ＫＣｌ：５、ＣａＣｌ２：１、ＭｇＣｌ２：１、及びＤ−グルコース：１０を含み、ｐＨ７．４）中で解離した。細胞培養で使用した全ての化学薬品は、シグマ−アルドリッチ（Sigma-Aldrich Sweden AB, Stockholm, Sweden）から入手した。
（電気生理学）
全細胞構造（保持電位差：−６０ｍＶ、サンプリング周波数：５ｋＨｚ、フィルター周波数：１ＫＨｚ）で、パッチクランプの実験を行った。細胞浴溶液（ＨＢＳ）は、１０ｍＭのＨＥＰＥＳ、１４０ｍＭのＮａＣｌ、５ｍＭのＫＣｌ、１ｍＭのＣａＣｌ２、１ｍＭのＭｇＣｌ２、１０ｍＭのＤ−グルコースを含んでいた（ｐＨ７．４）。パッチクランプの電極溶液は、１００ｍＭのＫＣｌ、２ｍＭのＭｇＣｌ２、１ｍＭのＣａＣｌ２、１１ｍＭのＥＧＴＡ及び１０ｍＭのＨＥＰＥＳを含み、ｐＨをＫＯＨで７．２に調整した。実験は、室温（１８〜２２℃）で行った。
（分離流中のＧＡＢＡＡ受容体の調製及びこれらの段階の一過性の記憶保存素子としての用途）
用量応答曲線を得た。基板の他の全てのマイクロチャネルを１、５、１０、２０、５０、１００及び５００μＭのＧＡＢＡで負荷し、各アゴニスト曝露後、クリアランスのため、緩衝溶液と相互連結した。チャネル出口にわたって、パッチクランプの細胞を昇順（低い→高い、１μＭのＧＡＢＡへの曝露から始める）で、あるいは降順（高い→低い、５００μＭのＧＡＢＡへの曝露から始める）で走査した。走査は、１０の異なる等速走査を使用して行い、３０ミリ秒から１０秒（各ｔｅｘｐに関しｎ＝３〜６回の走査）の範囲の曝露時間ｔｅｘｐを得た。曝露時間及び洗浄時間ｔｗａｓｈを、各走査の間同等に保った。ｔｗａｓｈの影響を分離して調べ、３０秒までのｔｗａｓｈ、＞１秒のｔｅｘｐのデータに最小限の影響があることが示された。上昇と下降走査の間の待機時間ｔｒｅｓｔは、常に＞３分で、その間細胞は緩衝溶液で灌流した。図３０Ａ〜Ｆは、６個の異なる曝露時間に関し、同じ細胞から得たペアワイズピーク電流用量応答曲線を示す。
ｔｅｘｐが１００ミリ秒未満の場合、動的領域に関し、昇順で得られた用量応答曲線は、降順で得られた用量応答曲線とほぼ一致している。一方、これらは、ｔｅｘｐ＞１００ミリ秒で著しく異なる。従って、これらより長い曝露時間で（我々は、後で、これは受容体のゆっくり脱感作された状態の異なる集団によって起こることを示す）、受容体の応答機能は、アゴニストの初回投与に顕著に依存する。これは受容体ヒステリシスのサインであり、活性化依存性分子記憶の存在の証拠である。受容体を昇順で滴定した場合、全てのｔｅｘｐ調査に関し、２オーダー未満の大きさの動的領域を伴う古典的Ｓ字型用量応答機能が得られた（図３２Ａ〜Ｆ）。降順で適用された用量にでは、１００ミリ秒未満のｔｅｘｐに関し、類似のＳ字型応答機能を得、より長い時間で開口応答は、非飽和性で、より高い用量に関し、ほとんど直線的な増加を示す（図３２Ａ〜Ｆ）。降順で滴定した場合、受容体の動的領域の理解を得るために、５ｍＭまでのＧＡＢＡ濃度を使用した用量応答実験を行い、これは、受容体が直線的な応答を有することを示し、少なくとも４オーダーの大きさを測定する（データは示さず）。
活性化依存性分子記憶の持続時間を決定するために、ＣＳＰＣ実験を行った。昇順走査から始め、次いで降順走査を行う、あるいはその反対、すなわち、降順走査から始め、次いで昇順走査を行って用量応答曲線を得た。２組の実験を、それぞれ、ｔｅｘｐ＝１００ミリ秒又は３秒、及びｔｒｅｓｔ＝０、３０、１２０又は３００秒で行い、ｔｒｅｓｔの異なる値に関して、用量応答曲線中に相違が見分けられない時点があることが分かった（図３０ｇ）。３０秒までのｔｒｅｓｔの値に関して、先の刺激の記憶を見ることができたが、それ以上ｔｒｅｓｔが増えると（＞１２０秒）、この効果は消滅した。これは、これらの条件下での活性化依存性分子記憶は、少なくとも３０秒まで持続することを示す。
今までのところ、ＧＡＢＡＡ受容体の応答機能及び動的領域は、下降及び昇順での投与で異なることを示してきた。次に、ｔｅｘｐの効果をより詳しく見、それが昇順及び降順の両滴定で、容体の感応性を効果的に変えることを示す。図３１Ａ、Ｂは、それぞれ、標準化された昇順及び降順用量応答曲線を示し、ｔｅｘｐの異なる値で得られた。用量応答曲線を、５００μＭで得られた応答に標準化し、平均化した（ｎ＝３〜６個の細胞）。ＥＣ５０値及びヒルスロープを、データをＳ字型ロジスティックヒル機能に合わせることによって計算した。昇順で提供された用量に関する用量応答曲線は、曝露時間が増えるに従い、より低い濃度へ明瞭にシフトしている（図３１Ａ）。これとは対照的に、降順で適用された用量に関する用量応答曲線は、高い濃度に対してシフトする。特に、昇順で適用した用量に関し、曝露時間が増えると、ＥＣ５０値は３５μＭ（ｔｅｘｐ＝３０ミリ秒）から１０μＭ（ｔｅｘｐ＝１０秒）に減少し（図３１Ｃ）、一方ヒルスロープは１．７から２．５に増加する（図３１Ｄ）。ＥＣ５０値の減少は、速い初期相は４．３４ミリ秒の時間定数を、遅い相は３０９ミリ秒の時間定数を有し、二重指数関数型崩壊にほぼ適合しうる、２つの異なる相を伴い、受容体の２つの異なる状態の間の移行を示唆する。降順で適用される用量では、曝露時間の増加に伴い、ＥＣ５０が〜４０μＭから〜１３０μＭに増加し（図３１Ｃ）、ヒルスロープは約１である（図３１Ｄ）。さらに、ＥＣ５０値の変化は３つの異なる相を伴う。最初は、速い減少の相が観察され、続いて速い増加の相、最後に遅い増加の相が観察される。異なる相に関するそれぞれの時間定数は、３．８５ミリ秒、３．７９ミリ秒及び２５５５ミリ秒である。したがって、短い曝露時間（３０〜１００ミリ秒）の間の速い初期減少は、昇順及び降順の両方の用量に見られる。より長い曝露時間の間、受容体は徐々に明らかに異なるＥＣ５０値を有する２つの異なる状態及びヒルスロープに向かって進む。特に、上昇及び下降走査を比較するＥＣ５０値は、１３までの因子が異なる。総合すれば、結果は受容体開口のレベルは初期投与と曝露の持続時間の両方に依存することを示す。一方、ヒルスロープは、初期濃度にだけ依存し、曝露時間が増えるにつれて、変化が少なくなることを示す。また、これらの変化は、一貫して、１分までのタイムスケールで見られる。また、分子記憶の周波数依存性も検査した。特に、実行した用量−応答を、ＧＡＢＡの繰返し短パルス（ｔｅｘｐ及びｔｗａｓｈ＝１００ミリ秒）に、６秒の持続時間で、曝露された細胞から測定した実験（図３２ａ）を、次のＧＡＢＡ濃度に曝露する前に、緩衝液ｔｗａｓｈ＝３又は１８０秒における静止時間で交差する。
（薬物及び医薬的に活性な物質のような受容体モジュレーターの特性確認及び有効性確認）
濃度０．０１、０．１、１、５、１０、１００μＭで競合的アンタゴニストビククリンを使用した。ビククリンサンプルを１００μＭのＧＡＢＡとともに負荷し、効果を検査した。アゴニストでの実験のように、毎秒、清浄のためチャネルを緩衝溶液で満たし、折り返し走査を行う前に、少なくとも３分間の緩衝液中での静止時間を採用した。１００ミリ秒及び３秒のｔｅｘｐに関し、用量応答曲線を得た。アンタゴニストを昇順で適用した時、それぞれ、５．１７±０．４μＭ（ｔｅｘｐ＝１００ミリ秒）及び８．４６±１．４μＭ（ｔｅｘｐ＝３秒）のＩＣ５０値を得た。対照的に、降順適用では、３．５６±０．９μＭ（ｔｅｘｐ＝１００ミリ秒）及び１．８４±０．４μＭ（ｔｅｘｐ＝３秒）のＩＣ５０値を得た。したがって、上昇及び下降走査を比べると、長い曝露時間でブロッキング効果において要素５相違に近いものがある。全体として、結果は、受容体の活性化記憶は、特定の薬物の力価に影響を与えることを示す。また、用量応答実験を、ＧＡＢＡで、前のとおり固定濃度１μＭビククリンで行い、ほぼＩＣ２０値に対応した。図３３Ａ及びＢは、この方法で得た用量応答曲線は、純粋なＧＡＢＡ応答に比べて、より高い濃度で、左に変位していることを示す。昇順走査に関し、用量応答曲線は、降順走査より大きく変位する。さらに、アンタゴニストの添加は、純粋なＧＡＢＡ応答に関して、動的領域及び同調性において観察されるいくらかの違いを一掃する。如何なる科学的な理論に縛られるものではないが、これは固定濃度のアンタゴニストは異なる初期濃度のアゴニストの効果を特により長い曝露時間で平均化するということを意味する可能性がある。また、ある程度、受容体は、濃度及び時間依存性シグナルを解読する能力を、アンタゴニストの添加によって失ってしまうということも示唆している。図３４ａ及びｂは、パッチクランプの実験の結果を示す。ＧＡＢＡ（１、５、１０、２０ ５０ １００及び５００ｍＭ）と固定濃度１μＭのビククリンでの用量応答実験のために、パッチクランプの実験を１６個の負荷チャネル微小流体チップを用いて行い、これはほぼＩＣ２０値に対応した。これらのサンプルチャネルを、他の各チャネル内で、緩衝液チャネルと相互連結し、曝露時間を１００ミリ秒又は３秒のいずれかに設定した。
本明細書に記載したことの変化、修正及びその他の実現は、本発明の精神及び範囲を逸脱することなく、当業者によって実施されるであろう。本明細書で列挙した出版物、特許、特許出願及び他の引用文献は、参照によって本明細書にそれらの全てが組み込まれる。
図１Ａ及び１Ｂは、イオンチャネル活性のパッチクランプの記録を有する微小流体チップの集積を示す、本発明の一態様に依るシステムの概略図を示す。図１Ａは、位置決め装置に連結されたパッチクランプのマイクロピペットを使用して、細胞をチップのマイクロチャネル出口に近接して配置した、微小流体チップの斜視図である。図１Ｂは、図１Ａの部分断面側面図である。図１Ｃは、チップベースパッチクランプのシステムの部分断面側面図である。操作においては、チップは被覆されているのが好ましい。 図２Ａ〜Ｃは、９６ウェルプレートに接するための貯蔵部の例示的な配置を示す、本発明の態様に依る微小流体チップの異なる実施形態の上面図を示す。図２Ａは、リガンド貯蔵部（例えば、９６ウェルプレートからのリガンドのサンプルを受け取る貯蔵部）を含むチップを示す。図２Ｂは、交互又は相互嵌合リガンド及び緩衝液貯蔵部（例えば、他の９６ウェルプレートからの緩衝液のサンプルを受け取る貯蔵部を残しつつ、１個の９６ウェルプレートからのリガンドのサンプルを受け取る１つおきの貯蔵部）を含むチップを示す。図２Ｃに示すように、細胞の貯蔵及び移行用に又は他の目的のサンプル用に、付加的な貯蔵部をチップ上に配置することができる。 図３は、流体を９６ウェルプレートから相互嵌合貯蔵部を含む微小流体チップ上に自動アレー分注器を使用して分取するための方法と、ピペットを使用する細胞送達とを示す、本発明の一態様に依るキットの斜視図である。 図４Ａ〜Ｃは、パッチクランプの細胞、又は相互連結するリガンド流れと緩衝液流れとを横切る細胞などのセンサーを走査するための、本発明の一態様に依る、薬物のＨＴＳ用の微小流体チップ構造の上面図を含む。図４Ａは、２Ｄ及び３Ｄ微小流体システムの両方用のチップ構造全体を示す。図４Ｂは、チップの貯蔵部と、それらが独立して連結するチャネルの拡大図を示す。図４Ｃは、出口がチップのセンサーチャンバーと交差する相互嵌合マイクロチャネルの拡大図を示す。 図５Ａは、チャネルの出口を通って動かされるパッチクランプの細胞を有する、微小流体チップの相互嵌合チャネルの上面図を概略的に示す。図５Ｂ及び５Ｃは、出口及びマイクロチャネルの代替の実施形態の側面図を示す。図５Ｂ及び５Ｃは、それぞれ、２Ｄ及び３Ｄ微小流体チップ設計を示す側面図である。 図５Ｄは、本発明の一態様に依る３Ｄチップ設計の斜視図であり、チップはチャネルの底面セットと上面セットとを含む。図５Ｅは図５Ｄの側面図であり、底面セット中のチャネルからの流体の流れを、「ユーターン」させて上にあるチャネルに流れるように流体流れを圧力差によって制御することを示す。図５Ｆは図５Ｄの上面図であり、「ユーターン」流体流にわたる細胞走査を示す。 図６Ａは、ＨＴＳ用途における向上したスループット用のマイクロチャネル出口配列の３Ｄアレーを示す斜視図である。図６Ｂは、図６Ａに示すような、しかし複数のパッチクランプの細胞を有するマイクロチャネルアレーの使用を示す。図中の矢印は、パッチクランプの細胞（複数を含む）が走査され得る方向を示す。 図７Ａ〜Ｎは、周期的に再感作されるセンサーを提供する、緩衝液灌流を使用してリガンド流れを横切って細胞走査を行うためのチップ設計を示す概略図である。図７Ａは、チップ設計と微小流体システム全体の斜視図である。図７Ｂ〜Ｇは、マイクロチャネルの出口と、それらの灌流毛細管及びパッチクランプのピペットに対する位置の拡大図を示すとともに、異なる流体流を横切ってパッチクランプの細胞を走査しつつ、細胞灌流を行う手順を示す。「Ｐ」は、マイクロチャネル又は毛細管中の流体上の圧力源を示す。太字の矢印は、動きの方向を示す。 図７Ｈ〜７Ｎは、灌流細胞の異なる実施形態を示す。図７Ｈの斜視図に示すように、緩衝液を送達するための毛細管を提供する代わりに、リガンド送達チャネルの出口のそれぞれに置かれた、数多くの小さなマイクロチャネルを緩衝液送達のために使用する。パッチクランプの細胞がリガンドチャネルに向かって動き、システムが応答を検出すると、緩衝液のパルスを小さなマイクロチャネルを介して、灌流用細胞上に送達することができる。このシステムを使用することに対する利点は、パッチクランプの細胞のリガンドに対する曝露時間を、シグナル検出と緩衝液灌流との間の遅延時間を変えることによって、正確に制御することができることである。図７Ｉは、この方法に使用される微小流体システムの側面の断面図で、リガンド及び緩衝液出口の両方に対するパッチクランプの細胞の近接度を示す。図７Ｊは、システムの正面断面図であり、緩衝液流れを示す。図７Ｋは、装置の上面断面図であり、リガンド流れと、緩衝液マイクロチャネルの配置とを示す。図７Ｌ〜７Ｍは、パッチクランプの細胞をリガンド次いで緩衝液に曝露するための、リガンド及び／又は緩衝液チャネルにかかる圧力の使用を示す。 図８Ａ〜Ｉは、パッチクランプの細胞と関連するマイクロチャネル出口の上面図であり、パッチクランプの細胞が流体流に関連して動くことができる方法の異なるものを集合的に示す。図８Ａ〜Ｃは、静止マイクロチャネル出口を横切るパッチ細胞の機械的走査を示す。図８Ｄ〜Ｆは、静止パッチクランプの細胞に対するマイクロチャネル出口機械的走査を示す。図８Ｇ〜Ｉは、それぞれ独立したマイクロチャネルにわたる圧力及びそこを通る流速の制御された変動によって、固定化されたパッチ細胞を横切る流体流を掃引する方法を示す。 図９Ａ〜Ｃは、パッチクランプの細胞を収容するための細胞チャンバーへの及び細胞チャンバーからの化合物の迅速な送達と回収のサイクルを行うための微小流体チップのある設計の上面図である。図９Ａは、細胞チャンバーを送り込むマイクロチャネルの配列の全体を示す。図９Ｂは、貯蔵部及びそれらがアクセスする個々のチャネルの拡大図である。図９Ｃは、細胞チャンバーに送り込むマイクロチャネル出口の拡大図を示す。 図１０は、図９Ａの細胞チャンバーの拡大した上面図であり、パッチクランプの細胞を含む細胞チャンバー周辺のマイクロチャネルの配列を示す。 図１１Ａ〜Ｃは、パッチクランプの細胞周辺の流体の迅速かつ逐次的な交換を行うための微小流体チップを示す上面図である。図１１Ａは、細胞チャンバーに送り込む及び細胞チャンバーから排出するチャネルの配列の全体を示す。ドレインチャネルは、各チャネルの圧力低下が独立して制御されるように、複数の貯蔵部に送り込む。図１１Ｂは、貯蔵部及びそれらが連結するチャネルの拡大図を示す。図１１Ｃは、細胞チャンバーへ送り込むマイクロチャネル出口の拡大図を示す。 図１２は、図１１Ａの拡大図であり、本発明の一態様に依る平面的な２Ｄ微小流体システムにおける、パッチクランプの細胞を有する細胞チャンバー周辺のマイクロチャネル内の流体の流れの配列と流れ方向とを示す。 図１３は、図１１Ａのシステムの拡大した斜視図であり、マイクロチャネルの配列と、本発明の一態様に依る３Ｄ微小流体システムにおける流れの方向とを示す。 図１４Ａ〜Ｃは、本発明の一態様に依るパッチクランプの細胞（図示せず）周辺の流体の迅速かつ逐次的な交換を行うための、魚の骨設計のチップ構造を示す上面図である。図１４Ａに示す例において、単一の廃液貯蔵部へ送り込む単一のドレインチャネルが設けられている。図１４Ｂは、サンプルをマイクロチャネルに提供するための貯蔵部の拡大図を示す。図１４Ｃは、サンプルをセンサーチャンバーへ送り込む中央「脊椎」チャネルと交差する複数の入口チャネルの拡大図を示す。この拡大図において、交差チャネルは、脊椎チャネルに対して斜めというより垂直である。どちらの配置も可能である。 図１５は、図１４Ａの拡大図の概略図であり、本発明の一態様に依るチップにおけるマイクロチャネル及びパッチクランプの細胞の配列及び流れ方向を示すとともに、一方向受動バルブの存在を×で概略的に示す。 図１６Ａ及びＢは、単一マイクロチャネルの出口での流動プロフィール（図１６Ａ）及びマイクロチャネルのアレー（図１６Ｂ）を示す顕微鏡写真である。流体流れは、フロートレーサーとして蛍光染料（フルオレスセイン）を使用して、蛍光下で画像化した。チャネルは、１００−μｍの幅、５０μｍの厚さで、チャネル間の距離は２５μｍ、流速は４ｍｍ／秒であった。 図１７は、マイクロチャネルの相互嵌合アレーの出口の配列の概略図であって、図では、希釈変化させたサンプル（例えば、薬物）を、１つおきのマイクロチャネルに入れてある。チャネルの出口を横切ってパッチクランプの細胞を走査することによって、用量応答測定値を得ることができる。 図１８Ａ〜Ｉは、高頻度灌流とパッチクランプの細胞の再感作に基づいて、用量応答測定値を得るためのシステムの概略図である。灌流は、マイクロチャネル出口を出る流れによって作られる濃度勾配を横切って、パッチクランプの細胞を移動させながら、パッチクランプのピペットに関して同軸上に置かれた毛細管によって、あるいは灌流に適したパッチピペットに隣接して置かれた任意の毛細管によって達成することができる。図１８Ａ〜Ｃは、マイクロチャネル中のリガンドプラグの拡散の広がりによって作られる濃度勾配を示す。図１８Ｄ〜Ｆは、マイクロチャネルから排出した時のリガンド流れの水平拡散の広がりを示す。図１８Ｇ〜Ｈは、マイクロチャネルのネットワークの使用を示す。「Ｐ」は、システムの１つ又はそれ以上のマイクロチャネルでかけられる圧力源を示す。 図１９Ａ〜Ｃは、シリコン中に製作したマイクロチャネルの走査電子顕微鏡写真を示す。図１９Ａは、パッチクランプの細胞（複数を含む）を相互連結されたリガンド流れと緩衝液流れを横切って走査することができる単純マイクロチャネル配列を示す。図１９Ｂは、パッチクランプの細胞を収容する細胞チャンバーへの及びからの化合物の迅速な送達と回収のサイクルを行うための単純平面放射状スポークホイール構造を示す。図１９Ｃは、パッチクランプの細胞周辺の流体の迅速かつ逐次的な交換を行うためのマイクロチャネル出口の単純な魚の骨の配列を示す。 図２０は、細胞を、アセチルコリン（１ｍＭ）を含む開放貯蔵部に緩衝液によって灌流した、チャネル出口を横切る細胞の手動繰返し走査によって誘発された経膜電流応答の全細胞パッチクランプの記録を示す。一列につながったピークは、灌流が形成した勾配を横切るパッチ細胞の繰返し手動走査によって作られる。細胞を、平均走査速度１００μｍ／ｓ、最大速度１５０μｍ／ｓで、挿入図中に示したマイクロチャネルの全出口を横切って、前後に走査した。 図２１Ａ〜Ｄは、パッチクランプの細胞を、平行７チャネル構造（図１６Ｂに示したものと同じ構造）の出口を横切って走査した時の、全細胞の１ｍＭのアセチルコリンに対するパッチクランプの電流応答を示す。チャネル１、３、５及び７をＰＢＳ緩衝液で満たし、一方、チャネル２、４及び６をアセチルコリンで満たした。チャネル流速は６．８ｍｍ／秒、細胞走査速度は、図Ａ）が０．６１ｍｍ／秒、図Ｂ）が１．２２ｍｍ／秒、図Ｃ）が２ｍｍ／秒、そして図Ｄ）が４ｍｍ／秒であった。 図２２は、パッチクランプの細胞を、７チャネル構造（図１６Ｂに示したものと同じ構造）の出口を横切って走査した時の、全細胞の１ｍＭアセチルコリンに対するパッチクランプの電流応答を示す。チャネル１、３、５及び７をＰＢＳ緩衝液で満たし、チャネル２、４及び６をアセチルコリンで満たした。チャネル流速は２．７ｍｍ／秒であり、細胞走査速度は６．２５μｍ／秒であった。 図２３は、パッチクランプの細胞を７チャネル構造（図１６Ｂに示したものと同じ構造）の出口を横切って走査した時の、１μＭ、１２μＭ及び２００μＭのニコチンに対する全細胞の濃度依存パッチクランプの電流応答を示す。チャネル１、３、５及び７をＰＢＳ緩衝液で満たし、チャネル２を１μＭ、４を１２μＭ、そして６を２００μＭのニコチンでそれぞれ満たした。流速は３．２４ｍｍ／秒であり、細胞走査速度は２５０μｍ／秒であった。 図２４Ａ〜Ｃは、２６個の出口を含む微小流体チップを使用して、センサーチャンバーへ送り込む、本発明の１つの方法に従うアゴニスト選別を示す。図２４Ａに示すように、選別は、チャネル出口位置１から２６に直線的に行う。走査は、充分な数の走査を行うまで繰り返すことができる。微小流体チャネル出口を横切る単一前方走査に関する、擬似トレース及びスコアシートを図２４Ｂ及びＣに示す。この分析から、α６が最も高い可能性のあるアゴニストであり、次はα２である。 図２４Ａ〜Ｃは、２６個の出口を含む微小流体チップを使用して、センサーチャンバーへ送り込む、本発明の１つの方法に従うアゴニスト選別を示す。図２４Ａに示すように、選別は、チャネル出口位置１から２６に直線的に行う。走査は、充分な数の走査を行うまで繰り返すことができる。微小流体チャネル出口を横切る単一前方走査に関する、擬似トレース及びスコアシートを図２４Ｂ及びＣに示す。この分析から、α６が最も高い可能性のあるアゴニストであり、次はα２である。 図２５Ａ〜Ｃは、２６個の出口を含む微小流体チップを使用して、センサーチャンバーへ送り込む、本発明の一態様に依るアンタゴニストの選別方法を示す。図２５Ａに示すように、選別は、１〜２６に直線的に行う。走査は、充分な数の走査を行うまで繰り返すことができる。擬似トレース及びスコアシートは、それぞれ図２５Ｂ及びＣに示すように、微小流体チャネル出口を横切る単一前方走査に関し、ζ３が最も高い可能性のあるアンタゴニストであり、次はζ５である。 図２５Ａ〜Ｃは、２６個の出口を含む微小流体チップを使用して、センサーチャンバーへ送り込む、本発明の一態様に依るアンタゴニストの選別方法を示す。図２５Ａに示すように、選別は、１〜２６に直線的に行う。走査は、充分な数の走査を行うまで繰り返すことができる。擬似トレース及びスコアシートは、それぞれ図２５Ｂ及びＣに示すように、微小流体チャネル出口を横切る単一前方走査に関し、ζ３が最も高い可能性のあるアンタゴニストであり、次はζ５である。 図２６Ａ〜Ｃは、２８個の出口を含む微小流体チップを使用して、センサーチャンバーへ送り込む、用量応答選別を示す。図２４Ａに示すように、選別は、チャネル出口位置１から２８に直線的に行う。走査は、充分な数の走査を行うまで繰り返すことができる。微小流体チャネル出口を横切る単一前方走査に関する、擬似トレース及びスコアシートを、２６Ｂ及びＣに示す。これらのデータから、未知のアゴニストαに関し、用量応答曲線を作ることができる。 図２６Ａ〜Ｃは、２８個の出口を含む微小流体チップを使用して、センサーチャンバーへ送り込む、用量応答選別を示す。図２４Ａに示すように、選別は、チャネル出口位置１から２８に直線的に行う。走査は、充分な数の走査を行うまで繰り返すことができる。微小流体チャネル出口を横切る単一前方走査に関する、擬似トレース及びスコアシートを、２６Ｂ及びＣに示す。これらのデータから、未知のアゴニストαに関し、用量応答曲線を作ることができる。 図２７Ａ〜Ｃは、センサーチャンバーへ送り込む１４個の出口を含む微小流体チップ、及びパッチクランプの細胞近くに置かれた流体チャネルを使用した、早い繰返し速度での緩衝液の灌流を用いる、アゴニスト選別方法を示す。図２７Ａに示すように、選別は、チャネル出口位置１から１４に直線的に行う。走査は、充分な数の走査を行うまで繰り返すことができる。微小流体チャネル出口を横切る単一前方走査に関する擬似トレース及びスコアシートを図２７Ｂ、Ｃに示す。複数のピーク応答が、単一マイクロチャネル出口１個について得られる。この分析から、α３が最も高い可能性のあるアゴニストであり、次はα５である。 図２７Ａ〜Ｃは、センサーチャンバーへ送り込む１４個の出口を含む微小流体チップ、及びパッチクランプの細胞近くに置かれた流体チャネルを使用した、早い繰返し速度での緩衝液の灌流を用いる、アゴニスト選別方法を示す。図２７Ａに示すように、選別は、チャネル出口位置１から１４に直線的に行う。走査は、充分な数の走査を行うまで繰り返すことができる。微小流体チャネル出口を横切る単一前方走査に関する擬似トレース及びスコアシートを図２７Ｂ、Ｃに示す。複数のピーク応答が、単一マイクロチャネル出口１個について得られる。この分析から、α３が最も高い可能性のあるアゴニストであり、次はα５である。 図２８は、本発明によるシステムの概略図と種々のｔｅｘｐでの用量応答実験を示す。ａは、オープンボリュームに連結した１６個のサンプル貯蔵部を示す装置の概観である。挿入図は、異なる溶液をパッチクランプの細胞によってアクセスされるオープンボリュームへ流出するチャネルを示す。ローディングパターンは、全ての第二チャネルが、細胞外緩衝液（Ｂ）と相互連結する、特定のリガンド濃度（Ｃ１、Ｃ２、Ｃ３、・・・Ｃ７）を含むように選択する。細胞を第一チャネルの外側に置き、装置を並進させ、細胞を相対的に並進させ、チャネルが流れ出て、これによって走査方向に依存する昇順又は降順で用量に曝露する。電流応答は、走査の間に記録する。 図２９は、受容体状態占有率の分布が濃度及び時間に依存する、数種の異なるリガンド結合状態を含むＧＡＢＡＡ受容体の運動モデルを示す。 図３０ａ〜ｆは、ＧＡＢＡの下降（左）及び上昇（右）用量（１、５、１０、２０、５０、１００及び５００μＭ）を記録するパッチクランプの電流を示す。実験は、同じ細胞上（ｔｒｅｓｔ＞３分及びｔｅｘｐ＝ｔｗａｓｈ、これはスケールバーに対応する）で行った。ｔｅｘｐが増加すると、用量応答が転移し、より長いｔｅｘｐ（＞１００ｍｓ）では、用量応答は、昇順又は降順における用途で相違がある。これは、異なる分配受容体状況があることを意味する。 図３１ａ〜ｂは、ＧＡＢＡＡ受容体の周波数依存性刺激の研究であり、簡易パルス刺激は、連続刺激と本質的に同じ効果を有することを示す。ａは、降順濃度５００、１００、５０、２０、１０、５及び１μＭにおいて適応した、一連の簡易パルスＧＡＢＡ（ｔｅｘｐ＝ｔｗａｓｈ＝１００ｍｓ、３０刺激／パルス列）に対する電流応答である。各パルスセットにおいてｔｗａｓｈ＝３秒。ｂは、ａのように、しかし昇順で適応した用量に対する電流応答を示す。ｃは、下降及び上昇用量において、各パルスの第１、第１０、第１２及び第３０番目のパルスに関する用量応答機能を示す。ｄは、降順及び昇順で適応された用量に関し、ｔｅｘｐでのＥＣ５０値及びヒルスロープ変化を示す。ＥＣ５０値は、各パルスセット内で、脱感作が増えるに従い変化し、適応の順番に依存する。 図３２ａ及びｂは異なるｔｅｘｐが受容体感応性の同調性を示す、ＧＡＢＡＡ受容体の用量応答挙動を示す。図３２ａ及びｂは、５００μＭのＧＡＢＡに基準化された異なるｔｅｘｐに関する７個の異なる用量応答曲線を示す。ａにおいて、用量は、濃度昇順で適用され、曲線は、ｔｅｘｐが増えるにつれ左にシフトする。ｂにおいて、用量は濃度降順で適用され、曲線は、ｔｅｘｐが増加するにつれ右にシフトする。ｃ及びｄは、どのようにして、ｔｅｘｐに従ってＥＣ５０値及びヒルスロープ変化が起こるかについてを示す。降順で適用された用量に関する実験では、ＥＣ５０値は増加し、ヒルスロープは減少する結果となる。昇順で適用された用量に関する実験では、ＥＣ５０値は減少し、ヒルスロープは増加する。これは、ＧＡＢＡＡ受容体の集団は、２以上の異なる状態において生成することができ、受容体の感応性は、曝露時間によって調整することができることをはっきりと示している。 図３３ａ〜ｇは、適用の曝露時間及びモードが、ＧＡＢＡＡ受容体応答の動的領域を調節することを示す。図３３ａ〜ｆは、ｔｅｘｐ＝３０ｍｓ（ａ）、１００ｍｓ（ｂ）、５００ｍｓ（ｃ）、１秒（ｄ）、５秒（ｅ）及び１０秒（ｆ）に関し、代表的な用量応答曲線を示す。示されたピーク電流は、降順（黒色四角）又は昇順（赤色円）で適用された用量からのものである。最初、応答は類似し、Ｓ字上の外観を呈したが、ｔｅｘｐが増加すると、用量応答機能が変化した。降順適応での実験では、動的領域は増加するが、昇順適応での実験では、動的領域は減少する。これは、ＧＡＢＡＡ受容体の集団は、これまでの活性化の記憶を有していることを示す。（ｇ）は、ＧＡＢＡＡ受容体の環状走査パッチクランプに関する用量応答曲線を示し、分子記憶の持続性を明らかにする。代表的用量応答曲線はｔｅｘｐ＝１００ｍｓ（第１及び第２列）あるいは３秒（第３及び第４列）である。用量応答曲線は、昇順走査、次いで降順走査（第１及び第３列）、あるいはこの反対（第２及び第４列）のどちらかから始めて得られた。走査（ｔｒｅｓｔ）の間の時間は、０秒（第２カラム）、３０秒（第３カラムカラム）、１２０秒（第４カラム）又は３００秒（第５カラム）であった。示されたピーク電流は、降順（黒色四角）又は昇順（赤色円）で適応された用量からであった。短い曝露時間では、分子記憶は、３０秒までしか持続しないが、一方長い曝露時間では、２分まで保持する効果がある。 図３４ａ及びｂは、アンタゴニストは、活性化の履歴に依存するＧＡＢＡＡ受容体への異なる効果を有することを示す。ａ及びｂは、ｔｅｘｐ＝ｌ００ｍｓ（ａ）又は３秒（ｂ）で、降順又は昇順で適用した、ＧＡＢＡと、ＧＡＢＡ及び１μＭビククリンに関する用量応答を示す。ＧＡＢＡ及びアンタゴニストに関する用量応答曲線は、左にシフトする。適用の昇順及び降順間の用量応答機能及び動的領域における違いは、アンタゴニストが存在すると、はっきりしなくなる。これは、アンタゴニストの添加により、応答を調整する能力がいくらか除去され、ｔｅｘｐが増加するにつれより顕著になり、副作用の理由であるかもしれないことを示す。

Claims (15)

  1. ａ）１つ又はそれ以上のリガンドによって活性化又は不活性化される受容体を含有するパッチクランプされた細胞又はパッチクランプされた細胞膜画分を含有する細胞ベースのバイオセンサーを含んでなるチャンバー、
    １つ若しくはそれ以上のリガンド又はリガンドを含まない洗浄溶液を送達する、複数の送達チャネルであって、各々のチャネルは、実質的に分離した水性流をチャンバーへ送達するための出口を含む、複数の送達チャネル、及び
    チャネルの出口に対する位置で細胞ベースのバイオセンサーを走査するための走査機構、
    を包含する基板を提供すること；並びに
    ｂ）前記バイオセンサーをリガンドの固定された濃度勾配中で、リガンド濃度が増加する順から始め次いで減少する順、又は、減少する順から始め次いで増加する順のいずれかで、周期的に走査すること
    ここで、前記バイオセンサーは、リガンドに曝露する時間である曝露時間Ｔｅｘｐ、洗浄溶液に曝露する時間であるクリアランス時間Ｔｗａｓｈ及び洗浄溶液を休止する時間である中間サイクル時間Ｔｒｅｓｔに関して各周期で制御して走査され、ここで１つ又はそれ以上のクリアランス時間は１つ又はそれ以上の曝露時間の間に散在し、
    前記バイオセンサーは、２つ又はそれ以上の前記出口から出るリガンド又は洗浄溶液を含む流体流に、順次選択的に曝露される；
    を含んでなる、先の刺激に起因して変更された受容体の応答機能である受容体の記憶特性を表示させるために、サイクリック走査パッチクランプ（ＣＳＰＣ）によって受容体の応答特性を調節する方法。
  2. 前記チャンバーが、洗浄溶液、少なくとも１つのアゴニスト、少なくとも１つのアンタゴニスト、少なくとも１つのサンプル、又はこれらの組合せを包含する、請求項１に記載の方法。
  3. 前記バイオセンサーを、リガンド濃度が増加する順から始め次いで減少する順で、周期的に走査する、請求項１又は２に記載の方法。
  4. 前記バイオセンサーを、リガンド濃度が減少する順から始め次いで増加する順で、周期的に走査する、請求項１又は２に記載の方法。
  5. 前記リガンドが、候補薬物、公知の薬物、疑いのある発癌物質、公知の発癌物質、候補毒剤、公知の毒剤及びイオンチャネルに直接的又は間接的に作用する薬剤からなる群より選ばれる、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
  6. 前記記憶特性が、短期間、中期間又は長期間の記憶機能である、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。
  7. 前記曝露することが、１つ又はそれ以上のチャネルにわたって圧力低下を起こすことを更に含んでなる、請求項１〜６のいずれか１項に記載の方法。
  8. 前記リガンドに関する用量応答曲線を、作ることを更に含んでなる、請求項１〜７のいずれか１項に記載の方法。
  9. 前記応答を、細胞ベースのバイオセンサーの電気特性を測定することによって決定する、請求項８に記載の方法。
  10. 前記リガンドが、神経伝達物質放出のモジュレーターである、請求項８又は９に記載の方法。
  11. 前記パッチクランプされた細胞を、位置決め装置に結合する又は連結するパッチクランプのピペットを使用して、出口に対する位置に置く、請求項１〜１０のいずれか１項に記載の方法。
  12. 前記細胞ベースのバイオセンサーが、イオンチャネルを含有する、請求項１〜１１のいずれか１項に記載の方法。
  13. 前記受容体が、Ｇタンパク質結合受容体を含有する、請求項１〜１１のいずれか１項に記載の方法。
  14. 前記細胞ベースのバイオセンサーが、組換えにより発現させた受容体を含有する、請求項１〜１１のいずれか１項に記載の方法。
  15. 前記組換えにより発現させた受容体が、オーファン受容体である、請求項１４に記載の方法。
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