JP4790271B2 - ３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体、該糖鎖アスパラギン、該糖鎖およびそれらの製造方法 - Google Patents
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Description
【技術分野】
【０００１】
本発明は３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体、３分岐型糖鎖アスパラギン、３分岐型糖鎖およびそれらの製造方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
近年、核酸（ＤＮＡ）、タンパク質に続く第三の鎖状生命分子として、糖鎖分子が注目されてきている。ヒトの体は、約６０兆個の細胞から成っている一大細胞社会であり、全ての細胞表面は糖鎖分子によって覆われている。例えば、ＡＢＯ式血液型は細胞表面の糖鎖の違いにより決定されている。
【０００３】
糖鎖は、細胞間の認識や相互作用に関わる働きをもち、細胞社会を成り立たせる要となっている。細胞社会の乱れは、癌、慢性疾患、感染症、老化などにつながる。
【０００４】
例えば、細胞が癌化すると糖鎖の構造変化が起こることが分かっている。また、コレラ菌やインフルエンザウイルスなどは、ある特定の糖鎖を認識し結合することにより、細胞に侵入し感染することが知られている。
【０００５】
糖鎖は単糖の配列、結合様式・部位、鎖の長さ・分岐様式、全体の高次構造などの多様性から、核酸やタンパク質の構造と比べると非常に複雑な構造である。従って、その構造に由来する生物学的な情報は核酸やタンパク質に比べて多種多様である。糖鎖は、研究の重要性を認識されながらも、その構造の複雑さや多様性により、核酸やタンパク質に比べて研究の推進が遅れている状況にある。
【０００６】
Ｅ．Ｍｅｉｎｊｏｈａｎｎｓ（Ｊ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．Ｐｅｒｋｉｎ Ｔｒａｎｓｌ，１９９８，ｐ５４９−５６０）らは、Ｂｏｖｉｎｅ Ｆｅｔｕｉｎ（ウシ由来の糖タンパク質）から２分岐型糖鎖アスパラギンを合成している。最初の原料である２分岐型糖鎖を得るためにヒドラジン分解反応を利用している。このヒドラジンは毒性が高く、得られる糖鎖の誘導体を医薬品に応用する場合、微量のヒドラジンの混入の可能性があるため安全性の点で問題がある。また、３分岐型糖鎖アスパラギンは合成されていない。
【０００７】
本発明の目的は、アスパラギンのアミノ基窒素が脂溶性の保護基、ビオチン基又はＦＩＴＣ基により修飾された３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体およびその製造方法を提供することにある。
【０００８】
また、本発明の目的は、３分岐型糖鎖アスパラギン、３分岐型糖鎖およびそれらの製造方法を提供することにある。
【発明の開示】
【０００９】
本発明は以下の発明に係る。
１． 式（１）で表されるアスパラギンのアミノ基窒素が脂溶性の保護基、ビオチン基又はＦＩＴＣ基により修飾された３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体。
【化５】
〔式中、Ｑは脂溶性の保護基、ビオチン基またはＦＩＴＣ基を示す。〕
２． 上記３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の糖鎖アスパラギンの非還元末端側のＮ−アセチルグルコサミンに少なくとも１個以上のフコースを含むものである上記に記載の３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体。
３． 上記に記載の３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の脂溶性の保護基、ビオチン基又はＦＩＴＣ基を除去した３分岐型糖鎖アスパラギン。
４． 上記に記載の３分岐型糖鎖アスパラギンのアスパラギン残基を除去した３分岐型糖鎖。
５． 上記に記載のビオチン化３分岐型糖鎖アスパラギンを結合させたマイクロプレート。
６． 上記に記載のビオチン化３分岐型糖鎖アスパラギンを結合させたアフィニティーカラム。
【００１０】
本発明者は、Ｂｏｖｉｎｅ Ｆｅｔｕｉｎ（ウシ由来の糖タンパク質）から、種々の単離された３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を容易かつ大量に得ることができる、３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体、３分岐型糖鎖アスパラギン、３分岐型糖鎖の製造方法、更には糖残基が任意に欠失した糖鎖が結合した新規な３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体、３分岐型糖鎖アスパラギン、３分岐型糖鎖を開発した。
【００１１】
本発明の３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の製造方法は、例えば、天然の糖タンパク質に由来する糖鎖アスパラギン、好ましくはアスパラギン結合型糖鎖から得られる糖鎖アスパラギンの混合物に含まれる当該３分岐型糖鎖アスパラギンに脂溶性の保護基を導入（結合）して３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の混合物を得た後に当該混合物を各３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体に分離することを１つの大きな特徴とする。なお、本明細書において、「糖鎖アスパラギン」とはアスパラギンが結合した状態の糖鎖をいう。また、「アスパラギン結合型糖鎖」とはタンパク質のポリペプチド中のアスパラギン（Ａｓｎ）の酸アミノ基に、還元末端に存在するＮ−アセチルグルコサミンがＮ−グリコシド結合した糖鎖群であって、Ｍａｎ（β１−４）ＧｌｃＮａｃ（β１−４）ＧｌｃＮａｃを母核とする糖鎖群をいう。「糖鎖アスパラギン誘導体」とはアスパラギン残基に脂溶性の保護基が結合した状態の糖鎖アスパラギンをいう。また、化合物の構造式中、「ＡｃＨＮ」はアセトアミド基を示す。
【００１２】
前記するように、天然の糖タンパク質に由来する糖鎖は非還元末端の糖残基がランダムに欠失した糖鎖の混合物である。本発明者らは、意外にも天然の糖タンパク質に由来する糖鎖、具体的には糖鎖アスパラギンの混合物に含まれる当該３分岐型糖鎖アスパラギンに脂溶性の保護基を導入することで、当該保護基が導入された３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の混合物を公知のクロマトグラフィーの手法を用いて容易に個々の３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体に分離することができることを見出した。それにより、本発明の構造を有する３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を大量に調製することが可能となった。
【００１３】
このように、３分岐型糖鎖アスパラギンに脂溶性の保護基を導入して誘導体化することにより個々の３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の分離が可能となったが、これは、脂溶性の保護基を導入したことにより３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の全体の脂溶性が高まり、例えば、好適に使用される逆相系カラムとの相互作用が格段に向上し、その結果、より鋭敏に糖鎖構造の差を反映して個々の３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体が分離されるようになったことによると考えられる。例えば、本発明において好適に使用される脂溶性の保護基であるＦｍｏｃ基の脂溶性は非常に高い。すなわち、Ｆｍｏｃ基のフルオレニル骨格は、中心の５員環にベンゼン環が２つ結合した非常に脂溶性の高い性質の構造をとっており、例えば、逆相系カラムの１つであるＯＤＳカラムのオクタデシル基と非常に強い相互作用を生み、似た構造の３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の分離が可能になったものと考えられる。
【００１４】
さらに本発明によれば、後述するように、得られた３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の保護基を除去することにより種々の３分岐型糖鎖アスパラギンを、また、得られた３分岐型糖鎖アスパラギンのアスパラギン残基を除去することにより種々の３分岐型糖鎖を、容易かつ大量に得ることができる。
【００１５】
本発明の脂溶性の保護基により修飾された３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の製造方法は、具体的には、
（ａ）１種もしくは２種以上の３分岐型糖鎖アスパラギンを含む混合物に含まれる該３分岐型糖鎖アスパラギンに、脂溶性の保護基を導入して３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体混合物を得る工程、ならびに
（ｂ）該３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体混合物、または該３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体混合物に含まれる３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を加水分解して得られる混合物を、クロマトグラフィーに供して各３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を分離する工程、を含むものである。
【００１６】
工程（ａ）において使用される１種もしくは２種以上の３分岐型糖鎖アスパラギンを含む混合物としては、アスパラギンの結合した状態の糖鎖を１種もしくは２種以上含む混合物であれば特に限定されるものではない。例えば、アスパラギンが１または複数個結合した糖鎖を１種もしくは２種以上含む混合物であってもよい。中でも、入手の容易性の観点から、還元末端にアスパラギンが結合した糖鎖を１種もしくは２種以上含む混合物が好適である。なお、本明細書において「糖鎖」とは、任意の単糖が２以上結合したものをいう。
【００１７】
かかる３分岐型糖鎖アスパラギンの混合物は、公知の方法により、好ましくは天然の原料、例えば、ウシ由来フュチュインから糖タンパク質および／または糖ペプチドの混合物を得、当該混合物に、例えば、タンパク質分解酵素、例えば、プロナーゼ（和光純薬社製）、アクチナーゼ−Ｅ（科研製薬社製）や、一般のカルボキシペプチダーゼ、アミノペプチダーゼなどの酵素を添加して、公知の反応条件下に反応を行ってペプチド部分を切断し、当該反応後の反応液として、または反応液より糖鎖アスパラギン以外の成分を公知の方法、例えば、ゲル濾過カラム、イオン交換カラムなどを用いた各種クロマトグラフィーや、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）を用いた精製法に従って除去することにより、得ることができる。
【００１８】
以上のようにして得られた３分岐型糖鎖アスパラギンを含む混合物を用い、それに含まれる３分岐型糖鎖アスパラギンに脂溶性の保護基の導入を行う。当該保護基としては特に限定されるものではなく、例えば、Ｆｍｏｃ基やｔ−ブチルオキシカルボニル（Ｂｏｃ）基、ベンジル基、アリル基、アリルオキシカーボネート基、アセチル基などの、カーボネート系またはアミド系の保護基などを使用することができる。得られた３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を直ちに所望の糖ペプチドの合成に使用できるという観点から、当該保護基としては、Ｆｍｏｃ基またはＢｏｃ基などが好ましく、Ｆｍｏｃ基がより好ましい。Ｆｍｏｃ基はシアル酸など比較的酸性条件に不安定な糖が糖鎖に存在する場合に特に有効である。また、保護基の導入は公知の方法（例えば、Ｐｒｏｔｅｃｔｉｎｇ ｇｒｏｕｐｓ ｉｎ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ ＩＮＣ．，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ １９９１，ＩＳＢＮ Ｏ−４７１−６２３０１−６を参照）に従って行えばよい。
【００１９】
例えば、Ｆｍｏｃ基を用いる場合、３分岐型糖鎖アスパラギンを含む混合物に対しアセトンを適量加えた後、さらに９−フルオレニルメチル−Ｎ−スクシニミヂルカーボネートと炭酸水素ナトリウムを加えて溶解し、２５℃にてアスパラギン残基へのＦｍｏｃ基の結合反応を行うことにより、当該３分岐型糖鎖アスパラギンのアスパラギン残基にＦｍｏｃ基を導入することができる。
【００２０】
以上の操作により、脂溶性の保護基が導入された３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の混合物が得られる。
【００２１】
次いで、上記脂溶性の保護基が導入された３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体混合物を公知のクロマトグラフィー、特に分取型のクロマトグラフィーに供して各３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体に分離する。各３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体のクロマトグラフィーによる分離は、適宜、公知のクロマトグラフィーを単独でまたは複数組み合わせて用いることにより行うことができる。
【００２２】
例えば、得られた３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体混合物をゲル濾過カラムクロマトグラフィーで精製後、ＨＰＬＣを用いて精製する。ＨＰＬＣにおいて用い得るカラムとしては逆相系のカラムが好適であり、例えば、ＯＤＳ、Ｐｈｅｎｙｌ系、ニトリル系や、陰イオン交換系のカラム、具体的には、例えば、ファルマシア社製モノＱカラム、イヤトロン社製イアトロビーズカラムなどが利用可能である。分離条件等は適宜、公知の条件を参照して調整すればよい。以上の操作により、３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体混合物から所望の各３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を得ることができる。
【００２３】
また、上記で得られた種々の３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体に糖転移酵素により、種々の糖（例えば、フコース）を転移することにより所望の糖鎖構造を有する３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を効率的に得ることができる。例えば、糖転移酵素によりフコースを転移することによりフコースを含む所望の糖鎖構造を有する３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を得ることができる。また、使用する糖転移酵素により、結合様式の異なった所望の糖鎖構造を有する３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を得ることができる。
【００２４】
フコースとしては、一般に市販されているフコースあるいは化学合成したものを使用することができる。
【００２５】
フコース転移酵素としては、一般に市販されているもの、天然由来のもの、遺伝子組換えにより生産されたものを用いることができ、転移させるフコースの種類により適宜選択することができる。具体的には、糖鎖アスパラギンの非還元末端側のＮ−アセチルグルコサミンにフコースを転移させる酵素であるＦｕｃｏｓｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ Ｖ（Ｈｕｍａｎ，Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ、血漿由来、血清由来、乳汁由来、肝臓由来）等を挙げることができる。また、フコース加水分解酵素を用いてｐＨ調整等により平衡をずらすことにより、フコースを転移させてもよい。
【００２６】
また本発明は、種々の単離された３分岐型糖鎖アスパラギンを大量に得ることができる３分岐型糖鎖アスパラギンの製造方法を提供する。当該方法は、前記３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の製造方法に従う３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の製造工程に続き、さらに、得られた３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体から保護基を除去する工程を含むものである。
【００２７】
３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体からの保護基の除去は、公知の方法に従って行うことができる（例えば、Ｐｒｏｔｅｃｔｉｎｇ ｇｒｏｕｐｓ ｉｎ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ ＩＮＣ．，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ １９９１，ＩＳＢＮ Ｏ−４７１−６２３０１−６を参照）。例えば、保護基がＦｍｏｃ基である場合、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）中、３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体にモルホリンを加えて反応を行うことによりＦｍｏｃ基を除去することができる。また、Ｂｏｃ基は弱酸を反応させることで除去することができる。保護基除去後、所望により適宜、公知の方法、例えば、ゲル濾過カラム、イオン交換カラムなどを使用する各種クロマトグラフィーや、ＨＰＬＣによる分離という方法によって精製することにより、３分岐型糖鎖アスパラギンを得てもよい。
【００２８】
また、保護基がベンジル基である場合、ベンジル基の除去は、公知の方法に従って行うことができる（例えば、Ｐｒｏｔｅｃｔｉｎｇ ｇｒｏｕｐｓ ｉｎ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ ＩＮＣ．，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ １９９１，ＩＳＢＮ Ｏ−４７１−６２３０１−６を参照）。
本発明では、３分岐型糖鎖アスパラギンのアミノ基窒素をビオチン化またはＦＩＴＣ化した糖鎖アスパラギンを提供する。
【００２９】
上記ビオチン化とは３分岐型糖鎖アスパラギンのアミノ基と、ビオチン（ビタミンＨ）のカルボキシル基の反応によりアミド結合を生成させることである。
【００３０】
また上記ＦＩＴＣ化とは３分岐型糖鎖アスパラギンのアミノ基と、フルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）のイソチオシアネート基の反応によりイソチオアミド結合を生成させることである。
【００３１】
また本発明では、３分岐型糖鎖アスパラギンのアミノ基窒素をビオチン化またはＦＩＴＣ化した糖鎖アスパラギンの製造方法を提供する。
【００３２】
本発明のビオチン化またはＦＩＴＣ化３分岐型糖鎖アスパラギンの製造方法としては、例えば、上記の単離された３分岐型糖鎖アスパラギンのアスパラギンのアミノ基窒素をビオチン化又はＦＩＴＣ化することにより得ることができる。
【００３３】
ビオチン化としては、公知の方法に従って行うことができる。例えば、３分岐型糖鎖アスパラギンを水に溶かし重炭酸ナトリウムを加え、ここに、Ｄ−（＋）−ビオチニルスクシンイミドを溶かしたジメチルホルムアミドを加え、室温で２０分反応させ、ゲル濾過カラム等で精製し、ビオチン化３分岐型糖鎖アスパラギンを得ることができる。
【００３４】
本発明のビオチン化３分岐型糖鎖アスパラギンを結合させたマイクロプレートは、市販のアビジン化したマイクロプレート（例えば、ピアス社製）に、ビオチン化した３分岐型糖鎖アスパラギンを反応させることにより製造することができる。
【００３５】
また、本発明のビオチン化３分岐型糖鎖アスパラギンを結合させたアフィニティーカラムは、市販のアビジン化したアフィニティーカラムに、ビオチン化した３分岐型糖鎖アスパラギンを反応させることにより製造することができる。
【００３６】
本発明のＦＩＴＣ化としては、公知の方法に従って行うことができる。例えば、３分岐型糖鎖アスパラギンを水に溶かして、アセトン、重炭酸ナトリウムを加え、ここに、フルオレセインイソチオシアネートを加え、室温で２時間反応させ、ゲル濾過カラム等で精製し、ＦＩＴＣ化３分岐型糖鎖アスパラギンを得ることができる。
【００３７】
本発明で得られたＦＩＴＣ化３分岐型糖鎖アスパラギンは、例えば、生体組織中の糖類の受容体の研究、レクチンの糖結合特異性の研究に有用である。
さらに、３分岐型糖鎖アスパラギンからのアスパラギン残基の除去は、公知の方法に従って行うことができる。例えば、３分岐型糖鎖アスパラギンを無水ヒドラジンと反応させた後、アセチル化することによりアスパラギン残基を除去して３分岐型糖鎖を得ることができる。また、３分岐型糖鎖アスパラギンを塩基性水溶液で加熱還流後、アセチル化することによってもアスパラギン残基を除去して３分岐型糖鎖を得ることができる。アスパラギン残基除去後、所望により適宜、公知の方法、例えば、ゲル濾過カラム、イオン交換カラムなどを使用する各種クロマトグラフィーや、ＨＰＬＣによる分離という方法によって精製してもよい。
このように、本発明によれば、３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体、３分岐型糖鎖アスパラギンおよび３分岐型糖鎖（以下、３つ併せて糖鎖類という場合がある）を安価かつ効率的に大量に製造することができる。
【００３８】
かかる糖鎖類は医薬品開発等の分野において非常に有用である。例えば、医薬品開発における応用例としては、例えば、ガンのワクチン合成があげられる。細胞がガン化すると体内にはなかった糖鎖が発現することが知られている。また、当該糖鎖を化学的に合成し、ワクチンとして個体に投与すると、ガンの増殖が抑制されることも知られている。そこで、本発明により糖鎖類を製造することができれば、ガンの治療に有効なワクチンの合成を行うことが可能である。また、本発明により得られる糖鎖類を、さらに化学的な反応および糖転移酵素による反応などを組み合わせて新たな糖残基を結合させて誘導体化し、新規なワクチンの合成を行うことも可能である。
【００３９】
また、例えば、糖タンパク質であるエリスロポエチン（ＥＰＯ）が、その赤血球増殖能により貧血の治療薬として使われているが、このＥＰＯは糖鎖が結合していないと活性がでないことが判明している。このように、タンパク質には糖鎖の結合によって生理活性を発現するものがあるので、例えば、糖鎖を結合させることができない大腸菌発現系によりタンパク質のみを大量に調製し、次いで所望の糖鎖構造を有する、本発明により製造した糖鎖を導入することにより生理活性の発現を付与したり、また、任意のタンパク質に種々の糖鎖構造を有する、本発明により製造した３分岐型糖鎖を導入することにより、新たな生理活性を有する新規な糖タンパク質を合成することも可能である。
【００４０】
また、天然の糖タンパク質に存在する糖鎖を本発明により製造した３分岐型糖鎖と置換することにより新たな生理活性を付与することも可能である。糖タンパク質が有する糖鎖を本発明により得られた３分岐型糖鎖と置換する技術としては、例えば、Ｐ．Ｓｅａｒｓ ａｎｄ Ｃ．Ｈ．Ｗｏｎｇ，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２００１，ｖｏｌ２９１，ｐ２３４４〜２３５０に記載の方法をあげることができる。すなわち、糖タンパク質をβ−Ｎ−アセチルグルコサミニダーゼ（Ｅｎｄｏ−Ｈ）で処理してタンパク質表面のアスパラギン残基にはＮ−アセチルグルコサミン残基が１つだけ結合した状態にする。次いで、本発明により得られた所望の３分岐型糖鎖をβ−Ｎ−アセチルグルコサミニダーゼ（Ｅｎｄｏ−Ｍ）を用いて、前記Ｎ−アセチルグルコサミン残基に結合させるという方法があげられる。また、ｔＲＮＡにＮ−アセチルグルコサミンを結合させておいて、大腸菌などの発現系を利用してＮ−アセチルグルコサミン残基を有する糖タンパク質を合成後、本発明により得られた所望の３分岐型糖鎖をＥｎｄｏ−Ｍを用いて導入することも可能である。
【００４１】
また、現在、糖タンパク質を治療薬として利用する際の問題として、投与された糖タンパク質の代謝速度が速いことがあげられる。これは、糖タンパク質の糖鎖末端に存在するシアル酸が生体内で除去されると直ちに当該糖タンパク質が肝臓により代謝されることによる。そのため、ある程度の量の糖タンパク質を投与する必要がある。そこで、本発明により糖鎖の末端に除去されにくいシアル酸を新たに組み込んだ糖鎖を製造し、対象タンパク質に当該糖鎖をＥｎｄｏ−Ｍを利用して導入すれば、生体内での糖タンパク質の代謝速度を制御することが可能となり、投与する糖タンパク質の量を低くすることも可能である。
【発明を実施するための最良の形態】
【００４２】
以下に実施例を挙げて説明するが、本発明は何らこれら実施例に限定されるものではない。
【実施例１】
【００４３】
ＦＥＴＵＩＮ（ＳＩＧＭＡ社製、１ｇ）を、リン酸緩衝液（ｐＨ＝７．０，４０ｍｌ）に溶解させた後、ＮａＮ３（１０ｍｇ）を加える。このものに、オリエンターゼＯＮＳ（ＨＢＩ社製、１．５ｇ）を加え５０℃で約１２時間静置させる。反応の終了をＴＬＣにて確認した後、反応液をセライトにて濾過する。濾液を濃縮により減じ、ゲル濾過カラムクロマトグラフィー（Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５，２．５×１００ｃｍ，Ｈ２Ｏ）で精製する。目的とする糖が含まれるフラクションを集めて濃縮、次いで凍結乾燥を行う。得られた残留物（約３００ｍｇ）に、トリス−塩酸・塩化カルシウム緩衝溶液（ｐＨ＝７．５，２０ｍｌ）、ＮａＮ３（１０ｍｇ）を加え、溶解させる。このものに、アクチナーゼＥ（１６３ｍｇ）を加え１２時間おきにｐＨをチェックしながら４８時間静置させる。反応の終了をＴＬＣで確認した後、セライトろ過を行い、濾液を濃縮して減じ、ゲル濾過カラムクロマトグラフィー（Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５，２．５×１００ｃｍ，Ｈ２Ｏ）で精製する。目的とする糖が含まれるフラクションを集めて濃縮、次いで凍結乾燥を行う。得られた残留物に、４０ｍＭ ＨＣｌ溶液を加え、８０℃で１時間静置させた後中和処理を行う。反応液を濃縮後、ゲル濾過カラムクロマトグラフィー（Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５，２．５×１００ｃｍ，Ｈ２Ｏ）で精製する。目的とする糖が含まれるフラクションを集めて濃縮、次いで凍結乾燥を行う。得られた残留物を水に溶かし、重炭酸ナトリウムを加えた。
ここに、Ｆｍｏｃ−ＯＳｕを溶かしたジメチルホルムアミドを加え、室温で１時間反応させた。原料の消失をＴＬＣ（イソプロパノール：１Ｍ酢酸アンモニウム水溶液＝３：２）で確認後、エバポレーターを用いて濃縮した。残渣をゲルろ過カラム（ｆ ２０ｍｍ×３００ｍｍ，Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５，水）で精製し、目的の糖が含まれるフラクションを集め凍結乾燥を行った。この残留物をＨＰＬＣ分取カラムにて精製した（ＹＭＣ−Ｐａｃｋ Ｒ＆Ｄ ＯＤＳ，Ｄ−ＯＤＳ−５−Ａ，２０×２５０ｍｍ，ＡＮ／２５ｍＭ ＡｃＯＮＨ４ ｂｕｆｆｅｒ＝１８／８２，７．５ｍｌ／ｍｉｎ．，ｗａｖｅ ｌｅｎｇｔｈ；２７４ｎｍ）。３５分後に出てくるメインのピークを分取後、濃縮、次いでＯＤＳカラムにて脱塩処理を行う。凍結乾燥して得られるＦｍｏｃ化３分岐型アシアロ糖鎖アスパラギン（１．０ｍｇ，０．４２μｍｏｌ）を集め、５０ｍＭカコジル酸緩衝液（ｐＨ＝６．０，２５０ｍｌ）に溶解させた後、牛血清アルブミン（ＢＳＡ，１ｍｇ）を加える。これに、ＣＭＰ−シアル酸（３．９ｍｇ，６．１ｍｍｏｌ）、Ａｌｋａｌｉｎｅ ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ（１ｍｌ，２５ｕｎｉｔ）を加え均一化する。最後に、α２，６−Ｓｉａｌｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ（ＣＡＬＢＩＯＣＨＥＭ社製、１００ｍｌ）を加え３７℃で３６時間静置させる。反応液をＨＰＬＣにてモニターしながら、原料がほぼ消失したところで反応を終了し、メンブランフィルターにてろ過を行う。濾液を濃縮し液量を減じた後、ＨＰＬＣ分取カラムにて精製した（ＹＭＣ−Ｐａｃｋ Ｒ＆Ｄ ＯＤＳ，Ｄ−ＯＤＳ−５−Ａ，２０×２５０ｍｍ，ＡＮ／２５ｍＭ ＡｃＯＮＨ４ ｂｕｆｆｅｒ＝１８／８２，７．５ｍｌ／ｍｉｎ．，ｗａｖｅ ｌｅｎｇｔｈ；２７４ｎｍ）ところ、１１分後に目的とする３分岐トリシアロ糖鎖が溶出してきた。これを分取後、ＯＤＳカラムにて脱塩処理を行い、濃縮、凍結乾燥させることにより目的物を２５０μｇ（１８．５％）得た。
【化６】
上記の糖鎖の構造を記号化すると次のようになる。ここで
ＮｅｕＡｃ：シアル酸 Ｇａｌ：Ｄ−ガラクトース ＧｌｃＮＡｃ：Ｎ−アセチルグルコサミン Ｍａｎ：Ｄ−マンノース Ａｓｎ：アスパラギン
を示す。
【化７】
得られた化合物の１Ｈ−ＮＭＲデータは以下のとおりである。
１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ，Ｄ２Ｏ，３０℃，ＨＯＤ＝４．８１）
ｄ ７．９０（ｄ，２Ｈ，Ｆｍｏｃ），７．７０（ｄ，２Ｈ，Ｆｍｏｃ），７．５０（ｄｄ，２Ｈ，Ｆｍｏｃ），７．４２（ｄｄ，２Ｈ，Ｆｍｏｃ），５．１１（ｓ，１Ｈ，Ｍａｎ４−Ｈ１），４．９７（ｄ，１Ｈ，ＧｌｃＮＡｃ１−Ｈ１），４．９１（ｓ，１Ｈ，Ｍａｎ４'−Ｈ−１），４．７５（ｓ，１Ｈ），４．４５−４．６０（ｍ），４．４２（ｂｄ，３Ｈ），４．３３（１Ｈ，Ｆｍｏｃ），４．２０（ｍ，３Ｈ），４．０９（ｂｓ），４．１０（ｍ，２Ｈ），２．６０−２．８０（ｍ，４Ｈ，Ａｓｎ−ｂＣＨ，ＮｅｕＡｃ７，７'，７''−Ｈ３ｅｑ），２．４０−２．６０（ｍ，１Ｈ，Ａｓｎ−ｂＣＨ），２．１１，２．０８，２．０５，２．０１，１．８６（ｅａｃｈ ｓ，Ａｃ），１．７７（ｄｄｄ，３Ｈ，ＮｅｕＡｃ７，７'，７''−Ｈ３ａｘ）
【実施例２】
【００４４】
実施例１で得られた化合物 ２ｎｍｏｌを、トリス塩酸緩衝液 約１０μｌに溶解させた。このものに、ＧＤＰ−フコース ２００ｎｍｏｌ、Ｆｕｃｏｓｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ Ｖ（Ｈｕｍａｎ，Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ）０．５ｍＵを加え、３７℃で約２時間静置、反応させた。反応液を超純水 ２０μｌで希釈したのち、キャピラリー電気泳動（ｆｕｓｅｄ ｓｉｌｉｃａ ｃａｐｉｌｌａｒｙ，５０ｍｍ ｉ．ｄ．，６０ｃｍ，ｂｕｆｆｅｒ；１００ｍＭ Ｔｒｉｓ−ｂｏｒａｔｅ，ｐＨ＝８．３，１００ｍＭ Ｈｅｐｔａｎｅ ｓｕｌｆｏｎａｔｅ，印加電圧２７ｋＶ，温度２５℃，２１４ｎｍ）で分離を行い下記に示すフコースを含有する３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を得た。
【化８】
【実施例３】
（ビオチン化）
【００４５】
実施例１で得られた糖鎖アスパラギンＦｍｏｃ体１μｍｏｌあたりに２４０μＬのＮ，Ｎ−ジメチルホルムアミド、１６０μｌのモルホリンを加え、室温下アルゴン雰囲気で反応させた。ＴＬＣ（展開溶媒として１Ｍ 酢酸アンモニウム：イソプロパノール＝８：５を用いた）にて反応終了を確認した後、氷水で冷却した。ここにジエチルエーテルを反応溶液の１０倍量加えて１５分間攪拌した後、析出した沈殿物をろ別した。得られた残渣を水に溶解させ、３５℃でエバポレートした。更にトルエンを３ｍｌ加えエバポレートするという操作を３回繰り返した。残留物をゲルカラムクロマトグラフィー（Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５，Ｈ２Ｏ）により精製して、Ｆｍｏｃ基の除去された糖鎖アスパラギンを得た。
上記で得られた化合物（６ｍｇ，２．５８μｍｏｌ）を水（３００μｌ）溶かし重炭酸ナトリウム（２．１ｍｇ，２４．９μｍｏｌ）を加えた。ここに、Ｄ−（＋）−ビオチニルスクシンイミド（４．２ｍｇ，１２．３μｍｏｌ）を溶かしたジメチルホルムアミド（３００μｌ）を加え、室温で２０分反応させた。原料消失をＴＬＣ（イソプロパノール：１Ｍ 酢酸アンモニウム水溶液＝３：２）で確認後、エバポレーターを用いて濃縮した。残渣をゲルカラムクロマトグラフィー（Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５，Ｈ２Ｏ）で精製し、下記に示すビオチン化３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体（６．２ｍｇ，９４％）を得た。
【化９】
【実施例４】
（ＦＩＴＣ化）
【００４６】
実施例３と同様にして、Ｆｍｏｃ基の除去された糖鎖アスパラギンを得た。
上記で得られた化合物（１．４ｍｇ、０．６０μｍｏｌ）を、精製水 ７０μｌに溶解させた。このものにアセトン７０μｌ、ＮａＨＣＯ３（０．７６ｍｇ，９μｍｏｌ）を加え、室温化に撹拌した後、Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ ｉｓｏｔｈｉｏｃｙａｎａｔｅ（ＦＩＴＣ，０．９５ｍｇ，２．４ｍｍｏｌ，ＳＩＧＭＡ社製）を加え約２時間撹拌した。２時間後、ＴＬＣにて反応の終了を確認した後、アセトンを減圧下に留去させ、残った水溶液をゲルカラムクロマトグラフィー（Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５，Ｈ２Ｏ）にて精製し目的物の含まれる分画を集めた。集めた分画を濃縮後、ＨＰＬＣ（ＹＭＣ− Ｐａｃｋ ＯＤＳ−ＡＭ，ＳＨ−３４３−５ＡＭ，２０×２５０ｍｍ，ＡＮ／２５ｍＭ ＡｃＯＮＨ４ ｂｕｆｆｅｒ＝１０／９０，７．５ｍｌ／ｍｉｎ．，ｗａｖｅ ｌｅｎｇｔｈ；２７４ｎｍ）で分取した後、濃縮、次いでゲルカラムクロマトグラフィー（Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５，Ｈ２Ｏ）にて脱塩処理を行った。目的物の含まれる分画を集め、濃縮後、凍結乾燥を行うと下記に示す蛍光標識化（ＦＩＴＣ化）された３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体（１．２ｍｇ，７３．５％ ｙｉｅｌｄ）が得られた。
【化１０】
【実施例５】
（マイクロプレートの製造）
【００４７】
９６穴ＢＤバイオコートストレプトアビジン（ＢＤバイオサイエンス社製：バイオアッセイ用、結合能：５ｎｇ／１穴）に、実施例３のビオチン化糖鎖アスパラギン１００μｇ（ビオチン結合能の約１０倍相当量）を蒸留水に溶かし１０００μｌとした。この調整溶液を１穴当り１０μｌとなるように各ウェルに加え、蒸留水で３回洗浄し、マイクロプレートを製造した。各ビオチン化糖鎖アスパラギンの結合収率は、９５％以上であった。固定化率の確認は、洗い出された非固定化糖鎖残量より算出した。
【実施例６】
（アフィニティーカラムの製造）
【００４８】
アビジンコートビーズ（日立ソフトウェアーエンジニアリング社製、ｘＭＡＰ ＬｕｍＡｖｉｄｉｎ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ Ｍｉｃｒｏｓｐｈｅｒｅｓ １ｍｌ）１０ｍｌと実施例３のビオチン化糖鎖アスパラギン３０ｍｇをスラリー状態で撹拌し、ビーズをろ過、洗浄した。洗浄は、ビーズ体積の２倍量の蒸留水を使用して、３回ろ紙上で洗浄した。固定化の確認は、洗浄回収されたビオチン化糖鎖アスパラギンの残量により確認した。次に上記のビオチン化糖鎖アスパラギン固定ビーズ１０ｍｌを３０ｍｌの蒸留水でスラリー状態のまま、ガラス製のオープンクロマトカラム（φ２０ｍｍ、長さ３００ｍｍ）に充填し、アフィニティーカラムを製造した。
【産業上の利用可能性】
【００４９】
本発明によれば、医薬品開発等の分野において有用な単離された３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を従来に比べて非常に容易かつ大量に得ることができる。また本発明によれば、３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体と共に有用な単離された３分岐型糖鎖アスパラギンおよび３分岐型糖鎖をそれぞれ従来に比べて非常に容易かつ大量に得ることができる。
【００５０】
更に本発明によれば、ビオチン・アビジンの結合特異性を利用し、ビオチン化した複数の糖鎖をアビジン化されたマイクロプレート上で反応させるだけで簡単に糖鎖マイクロチップを製造することができる。これにより、特定の糖鎖と結合能を有するタンパク質を解明することができる。
【００５１】
また、ある特定のタンパク質を分離精製する目的で、アビジン化したアフィニティーカラムに特定のビオチン化した糖鎖を結合し固定化し、そこに、ビオチン化した糖鎖と特異的結合能を有するタンパク質を含む混合物を通すことにより目的とするタンパク質のみを単離することができる。
【００５２】
更に本発明で得られたＦＩＴＣ化糖鎖アスパラギンは、例えば生体組織中の糖類の受容体の研究、レクチンの糖結合特異性の研究に有用である。
【０００１】
本発明は３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体、３分岐型糖鎖アスパラギン、３分岐型糖鎖およびそれらの製造方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
近年、核酸（ＤＮＡ）、タンパク質に続く第三の鎖状生命分子として、糖鎖分子が注目されてきている。ヒトの体は、約６０兆個の細胞から成っている一大細胞社会であり、全ての細胞表面は糖鎖分子によって覆われている。例えば、ＡＢＯ式血液型は細胞表面の糖鎖の違いにより決定されている。
【０００３】
糖鎖は、細胞間の認識や相互作用に関わる働きをもち、細胞社会を成り立たせる要となっている。細胞社会の乱れは、癌、慢性疾患、感染症、老化などにつながる。
【０００４】
例えば、細胞が癌化すると糖鎖の構造変化が起こることが分かっている。また、コレラ菌やインフルエンザウイルスなどは、ある特定の糖鎖を認識し結合することにより、細胞に侵入し感染することが知られている。
【０００５】
糖鎖は単糖の配列、結合様式・部位、鎖の長さ・分岐様式、全体の高次構造などの多様性から、核酸やタンパク質の構造と比べると非常に複雑な構造である。従って、その構造に由来する生物学的な情報は核酸やタンパク質に比べて多種多様である。糖鎖は、研究の重要性を認識されながらも、その構造の複雑さや多様性により、核酸やタンパク質に比べて研究の推進が遅れている状況にある。
【０００６】
Ｅ．Ｍｅｉｎｊｏｈａｎｎｓ（Ｊ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．Ｐｅｒｋｉｎ Ｔｒａｎｓｌ，１９９８，ｐ５４９−５６０）らは、Ｂｏｖｉｎｅ Ｆｅｔｕｉｎ（ウシ由来の糖タンパク質）から２分岐型糖鎖アスパラギンを合成している。最初の原料である２分岐型糖鎖を得るためにヒドラジン分解反応を利用している。このヒドラジンは毒性が高く、得られる糖鎖の誘導体を医薬品に応用する場合、微量のヒドラジンの混入の可能性があるため安全性の点で問題がある。また、３分岐型糖鎖アスパラギンは合成されていない。
【０００７】
本発明の目的は、アスパラギンのアミノ基窒素が脂溶性の保護基、ビオチン基又はＦＩＴＣ基により修飾された３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体およびその製造方法を提供することにある。
【０００８】
また、本発明の目的は、３分岐型糖鎖アスパラギン、３分岐型糖鎖およびそれらの製造方法を提供することにある。
【発明の開示】
【０００９】
本発明は以下の発明に係る。
１． 式（１）で表されるアスパラギンのアミノ基窒素が脂溶性の保護基、ビオチン基又はＦＩＴＣ基により修飾された３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体。
【化５】
２． 上記３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の糖鎖アスパラギンの非還元末端側のＮ−アセチルグルコサミンに少なくとも１個以上のフコースを含むものである上記に記載の３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体。
３． 上記に記載の３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の脂溶性の保護基、ビオチン基又はＦＩＴＣ基を除去した３分岐型糖鎖アスパラギン。
４． 上記に記載の３分岐型糖鎖アスパラギンのアスパラギン残基を除去した３分岐型糖鎖。
５． 上記に記載のビオチン化３分岐型糖鎖アスパラギンを結合させたマイクロプレート。
６． 上記に記載のビオチン化３分岐型糖鎖アスパラギンを結合させたアフィニティーカラム。
【００１０】
本発明者は、Ｂｏｖｉｎｅ Ｆｅｔｕｉｎ（ウシ由来の糖タンパク質）から、種々の単離された３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を容易かつ大量に得ることができる、３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体、３分岐型糖鎖アスパラギン、３分岐型糖鎖の製造方法、更には糖残基が任意に欠失した糖鎖が結合した新規な３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体、３分岐型糖鎖アスパラギン、３分岐型糖鎖を開発した。
【００１１】
本発明の３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の製造方法は、例えば、天然の糖タンパク質に由来する糖鎖アスパラギン、好ましくはアスパラギン結合型糖鎖から得られる糖鎖アスパラギンの混合物に含まれる当該３分岐型糖鎖アスパラギンに脂溶性の保護基を導入（結合）して３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の混合物を得た後に当該混合物を各３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体に分離することを１つの大きな特徴とする。なお、本明細書において、「糖鎖アスパラギン」とはアスパラギンが結合した状態の糖鎖をいう。また、「アスパラギン結合型糖鎖」とはタンパク質のポリペプチド中のアスパラギン（Ａｓｎ）の酸アミノ基に、還元末端に存在するＮ−アセチルグルコサミンがＮ−グリコシド結合した糖鎖群であって、Ｍａｎ（β１−４）ＧｌｃＮａｃ（β１−４）ＧｌｃＮａｃを母核とする糖鎖群をいう。「糖鎖アスパラギン誘導体」とはアスパラギン残基に脂溶性の保護基が結合した状態の糖鎖アスパラギンをいう。また、化合物の構造式中、「ＡｃＨＮ」はアセトアミド基を示す。
【００１２】
前記するように、天然の糖タンパク質に由来する糖鎖は非還元末端の糖残基がランダムに欠失した糖鎖の混合物である。本発明者らは、意外にも天然の糖タンパク質に由来する糖鎖、具体的には糖鎖アスパラギンの混合物に含まれる当該３分岐型糖鎖アスパラギンに脂溶性の保護基を導入することで、当該保護基が導入された３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の混合物を公知のクロマトグラフィーの手法を用いて容易に個々の３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体に分離することができることを見出した。それにより、本発明の構造を有する３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を大量に調製することが可能となった。
【００１３】
このように、３分岐型糖鎖アスパラギンに脂溶性の保護基を導入して誘導体化することにより個々の３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の分離が可能となったが、これは、脂溶性の保護基を導入したことにより３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の全体の脂溶性が高まり、例えば、好適に使用される逆相系カラムとの相互作用が格段に向上し、その結果、より鋭敏に糖鎖構造の差を反映して個々の３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体が分離されるようになったことによると考えられる。例えば、本発明において好適に使用される脂溶性の保護基であるＦｍｏｃ基の脂溶性は非常に高い。すなわち、Ｆｍｏｃ基のフルオレニル骨格は、中心の５員環にベンゼン環が２つ結合した非常に脂溶性の高い性質の構造をとっており、例えば、逆相系カラムの１つであるＯＤＳカラムのオクタデシル基と非常に強い相互作用を生み、似た構造の３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の分離が可能になったものと考えられる。
【００１４】
さらに本発明によれば、後述するように、得られた３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の保護基を除去することにより種々の３分岐型糖鎖アスパラギンを、また、得られた３分岐型糖鎖アスパラギンのアスパラギン残基を除去することにより種々の３分岐型糖鎖を、容易かつ大量に得ることができる。
【００１５】
本発明の脂溶性の保護基により修飾された３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の製造方法は、具体的には、
（ａ）１種もしくは２種以上の３分岐型糖鎖アスパラギンを含む混合物に含まれる該３分岐型糖鎖アスパラギンに、脂溶性の保護基を導入して３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体混合物を得る工程、ならびに
（ｂ）該３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体混合物、または該３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体混合物に含まれる３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を加水分解して得られる混合物を、クロマトグラフィーに供して各３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を分離する工程、を含むものである。
【００１６】
工程（ａ）において使用される１種もしくは２種以上の３分岐型糖鎖アスパラギンを含む混合物としては、アスパラギンの結合した状態の糖鎖を１種もしくは２種以上含む混合物であれば特に限定されるものではない。例えば、アスパラギンが１または複数個結合した糖鎖を１種もしくは２種以上含む混合物であってもよい。中でも、入手の容易性の観点から、還元末端にアスパラギンが結合した糖鎖を１種もしくは２種以上含む混合物が好適である。なお、本明細書において「糖鎖」とは、任意の単糖が２以上結合したものをいう。
【００１７】
かかる３分岐型糖鎖アスパラギンの混合物は、公知の方法により、好ましくは天然の原料、例えば、ウシ由来フュチュインから糖タンパク質および／または糖ペプチドの混合物を得、当該混合物に、例えば、タンパク質分解酵素、例えば、プロナーゼ（和光純薬社製）、アクチナーゼ−Ｅ（科研製薬社製）や、一般のカルボキシペプチダーゼ、アミノペプチダーゼなどの酵素を添加して、公知の反応条件下に反応を行ってペプチド部分を切断し、当該反応後の反応液として、または反応液より糖鎖アスパラギン以外の成分を公知の方法、例えば、ゲル濾過カラム、イオン交換カラムなどを用いた各種クロマトグラフィーや、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）を用いた精製法に従って除去することにより、得ることができる。
【００１８】
以上のようにして得られた３分岐型糖鎖アスパラギンを含む混合物を用い、それに含まれる３分岐型糖鎖アスパラギンに脂溶性の保護基の導入を行う。当該保護基としては特に限定されるものではなく、例えば、Ｆｍｏｃ基やｔ−ブチルオキシカルボニル（Ｂｏｃ）基、ベンジル基、アリル基、アリルオキシカーボネート基、アセチル基などの、カーボネート系またはアミド系の保護基などを使用することができる。得られた３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を直ちに所望の糖ペプチドの合成に使用できるという観点から、当該保護基としては、Ｆｍｏｃ基またはＢｏｃ基などが好ましく、Ｆｍｏｃ基がより好ましい。Ｆｍｏｃ基はシアル酸など比較的酸性条件に不安定な糖が糖鎖に存在する場合に特に有効である。また、保護基の導入は公知の方法（例えば、Ｐｒｏｔｅｃｔｉｎｇ ｇｒｏｕｐｓ ｉｎ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ ＩＮＣ．，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ １９９１，ＩＳＢＮ Ｏ−４７１−６２３０１−６を参照）に従って行えばよい。
【００１９】
例えば、Ｆｍｏｃ基を用いる場合、３分岐型糖鎖アスパラギンを含む混合物に対しアセトンを適量加えた後、さらに９−フルオレニルメチル−Ｎ−スクシニミヂルカーボネートと炭酸水素ナトリウムを加えて溶解し、２５℃にてアスパラギン残基へのＦｍｏｃ基の結合反応を行うことにより、当該３分岐型糖鎖アスパラギンのアスパラギン残基にＦｍｏｃ基を導入することができる。
【００２０】
以上の操作により、脂溶性の保護基が導入された３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の混合物が得られる。
【００２１】
次いで、上記脂溶性の保護基が導入された３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体混合物を公知のクロマトグラフィー、特に分取型のクロマトグラフィーに供して各３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体に分離する。各３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体のクロマトグラフィーによる分離は、適宜、公知のクロマトグラフィーを単独でまたは複数組み合わせて用いることにより行うことができる。
【００２２】
例えば、得られた３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体混合物をゲル濾過カラムクロマトグラフィーで精製後、ＨＰＬＣを用いて精製する。ＨＰＬＣにおいて用い得るカラムとしては逆相系のカラムが好適であり、例えば、ＯＤＳ、Ｐｈｅｎｙｌ系、ニトリル系や、陰イオン交換系のカラム、具体的には、例えば、ファルマシア社製モノＱカラム、イヤトロン社製イアトロビーズカラムなどが利用可能である。分離条件等は適宜、公知の条件を参照して調整すればよい。以上の操作により、３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体混合物から所望の各３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を得ることができる。
【００２３】
また、上記で得られた種々の３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体に糖転移酵素により、種々の糖（例えば、フコース）を転移することにより所望の糖鎖構造を有する３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を効率的に得ることができる。例えば、糖転移酵素によりフコースを転移することによりフコースを含む所望の糖鎖構造を有する３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を得ることができる。また、使用する糖転移酵素により、結合様式の異なった所望の糖鎖構造を有する３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を得ることができる。
【００２４】
フコースとしては、一般に市販されているフコースあるいは化学合成したものを使用することができる。
【００２５】
フコース転移酵素としては、一般に市販されているもの、天然由来のもの、遺伝子組換えにより生産されたものを用いることができ、転移させるフコースの種類により適宜選択することができる。具体的には、糖鎖アスパラギンの非還元末端側のＮ−アセチルグルコサミンにフコースを転移させる酵素であるＦｕｃｏｓｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ Ｖ（Ｈｕｍａｎ，Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ、血漿由来、血清由来、乳汁由来、肝臓由来）等を挙げることができる。また、フコース加水分解酵素を用いてｐＨ調整等により平衡をずらすことにより、フコースを転移させてもよい。
【００２６】
また本発明は、種々の単離された３分岐型糖鎖アスパラギンを大量に得ることができる３分岐型糖鎖アスパラギンの製造方法を提供する。当該方法は、前記３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の製造方法に従う３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体の製造工程に続き、さらに、得られた３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体から保護基を除去する工程を含むものである。
【００２７】
３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体からの保護基の除去は、公知の方法に従って行うことができる（例えば、Ｐｒｏｔｅｃｔｉｎｇ ｇｒｏｕｐｓ ｉｎ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ ＩＮＣ．，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ １９９１，ＩＳＢＮ Ｏ−４７１−６２３０１−６を参照）。例えば、保護基がＦｍｏｃ基である場合、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）中、３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体にモルホリンを加えて反応を行うことによりＦｍｏｃ基を除去することができる。また、Ｂｏｃ基は弱酸を反応させることで除去することができる。保護基除去後、所望により適宜、公知の方法、例えば、ゲル濾過カラム、イオン交換カラムなどを使用する各種クロマトグラフィーや、ＨＰＬＣによる分離という方法によって精製することにより、３分岐型糖鎖アスパラギンを得てもよい。
【００２８】
また、保護基がベンジル基である場合、ベンジル基の除去は、公知の方法に従って行うことができる（例えば、Ｐｒｏｔｅｃｔｉｎｇ ｇｒｏｕｐｓ ｉｎ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ ＩＮＣ．，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ １９９１，ＩＳＢＮ Ｏ−４７１−６２３０１−６を参照）。
本発明では、３分岐型糖鎖アスパラギンのアミノ基窒素をビオチン化またはＦＩＴＣ化した糖鎖アスパラギンを提供する。
【００２９】
上記ビオチン化とは３分岐型糖鎖アスパラギンのアミノ基と、ビオチン（ビタミンＨ）のカルボキシル基の反応によりアミド結合を生成させることである。
【００３０】
また上記ＦＩＴＣ化とは３分岐型糖鎖アスパラギンのアミノ基と、フルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）のイソチオシアネート基の反応によりイソチオアミド結合を生成させることである。
【００３１】
また本発明では、３分岐型糖鎖アスパラギンのアミノ基窒素をビオチン化またはＦＩＴＣ化した糖鎖アスパラギンの製造方法を提供する。
【００３２】
本発明のビオチン化またはＦＩＴＣ化３分岐型糖鎖アスパラギンの製造方法としては、例えば、上記の単離された３分岐型糖鎖アスパラギンのアスパラギンのアミノ基窒素をビオチン化又はＦＩＴＣ化することにより得ることができる。
【００３３】
ビオチン化としては、公知の方法に従って行うことができる。例えば、３分岐型糖鎖アスパラギンを水に溶かし重炭酸ナトリウムを加え、ここに、Ｄ−（＋）−ビオチニルスクシンイミドを溶かしたジメチルホルムアミドを加え、室温で２０分反応させ、ゲル濾過カラム等で精製し、ビオチン化３分岐型糖鎖アスパラギンを得ることができる。
【００３４】
本発明のビオチン化３分岐型糖鎖アスパラギンを結合させたマイクロプレートは、市販のアビジン化したマイクロプレート（例えば、ピアス社製）に、ビオチン化した３分岐型糖鎖アスパラギンを反応させることにより製造することができる。
【００３５】
また、本発明のビオチン化３分岐型糖鎖アスパラギンを結合させたアフィニティーカラムは、市販のアビジン化したアフィニティーカラムに、ビオチン化した３分岐型糖鎖アスパラギンを反応させることにより製造することができる。
【００３６】
本発明のＦＩＴＣ化としては、公知の方法に従って行うことができる。例えば、３分岐型糖鎖アスパラギンを水に溶かして、アセトン、重炭酸ナトリウムを加え、ここに、フルオレセインイソチオシアネートを加え、室温で２時間反応させ、ゲル濾過カラム等で精製し、ＦＩＴＣ化３分岐型糖鎖アスパラギンを得ることができる。
【００３７】
本発明で得られたＦＩＴＣ化３分岐型糖鎖アスパラギンは、例えば、生体組織中の糖類の受容体の研究、レクチンの糖結合特異性の研究に有用である。
さらに、３分岐型糖鎖アスパラギンからのアスパラギン残基の除去は、公知の方法に従って行うことができる。例えば、３分岐型糖鎖アスパラギンを無水ヒドラジンと反応させた後、アセチル化することによりアスパラギン残基を除去して３分岐型糖鎖を得ることができる。また、３分岐型糖鎖アスパラギンを塩基性水溶液で加熱還流後、アセチル化することによってもアスパラギン残基を除去して３分岐型糖鎖を得ることができる。アスパラギン残基除去後、所望により適宜、公知の方法、例えば、ゲル濾過カラム、イオン交換カラムなどを使用する各種クロマトグラフィーや、ＨＰＬＣによる分離という方法によって精製してもよい。
このように、本発明によれば、３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体、３分岐型糖鎖アスパラギンおよび３分岐型糖鎖（以下、３つ併せて糖鎖類という場合がある）を安価かつ効率的に大量に製造することができる。
【００３８】
かかる糖鎖類は医薬品開発等の分野において非常に有用である。例えば、医薬品開発における応用例としては、例えば、ガンのワクチン合成があげられる。細胞がガン化すると体内にはなかった糖鎖が発現することが知られている。また、当該糖鎖を化学的に合成し、ワクチンとして個体に投与すると、ガンの増殖が抑制されることも知られている。そこで、本発明により糖鎖類を製造することができれば、ガンの治療に有効なワクチンの合成を行うことが可能である。また、本発明により得られる糖鎖類を、さらに化学的な反応および糖転移酵素による反応などを組み合わせて新たな糖残基を結合させて誘導体化し、新規なワクチンの合成を行うことも可能である。
【００３９】
また、例えば、糖タンパク質であるエリスロポエチン（ＥＰＯ）が、その赤血球増殖能により貧血の治療薬として使われているが、このＥＰＯは糖鎖が結合していないと活性がでないことが判明している。このように、タンパク質には糖鎖の結合によって生理活性を発現するものがあるので、例えば、糖鎖を結合させることができない大腸菌発現系によりタンパク質のみを大量に調製し、次いで所望の糖鎖構造を有する、本発明により製造した糖鎖を導入することにより生理活性の発現を付与したり、また、任意のタンパク質に種々の糖鎖構造を有する、本発明により製造した３分岐型糖鎖を導入することにより、新たな生理活性を有する新規な糖タンパク質を合成することも可能である。
【００４０】
また、天然の糖タンパク質に存在する糖鎖を本発明により製造した３分岐型糖鎖と置換することにより新たな生理活性を付与することも可能である。糖タンパク質が有する糖鎖を本発明により得られた３分岐型糖鎖と置換する技術としては、例えば、Ｐ．Ｓｅａｒｓ ａｎｄ Ｃ．Ｈ．Ｗｏｎｇ，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２００１，ｖｏｌ２９１，ｐ２３４４〜２３５０に記載の方法をあげることができる。すなわち、糖タンパク質をβ−Ｎ−アセチルグルコサミニダーゼ（Ｅｎｄｏ−Ｈ）で処理してタンパク質表面のアスパラギン残基にはＮ−アセチルグルコサミン残基が１つだけ結合した状態にする。次いで、本発明により得られた所望の３分岐型糖鎖をβ−Ｎ−アセチルグルコサミニダーゼ（Ｅｎｄｏ−Ｍ）を用いて、前記Ｎ−アセチルグルコサミン残基に結合させるという方法があげられる。また、ｔＲＮＡにＮ−アセチルグルコサミンを結合させておいて、大腸菌などの発現系を利用してＮ−アセチルグルコサミン残基を有する糖タンパク質を合成後、本発明により得られた所望の３分岐型糖鎖をＥｎｄｏ−Ｍを用いて導入することも可能である。
【００４１】
また、現在、糖タンパク質を治療薬として利用する際の問題として、投与された糖タンパク質の代謝速度が速いことがあげられる。これは、糖タンパク質の糖鎖末端に存在するシアル酸が生体内で除去されると直ちに当該糖タンパク質が肝臓により代謝されることによる。そのため、ある程度の量の糖タンパク質を投与する必要がある。そこで、本発明により糖鎖の末端に除去されにくいシアル酸を新たに組み込んだ糖鎖を製造し、対象タンパク質に当該糖鎖をＥｎｄｏ−Ｍを利用して導入すれば、生体内での糖タンパク質の代謝速度を制御することが可能となり、投与する糖タンパク質の量を低くすることも可能である。
【発明を実施するための最良の形態】
【００４２】
以下に実施例を挙げて説明するが、本発明は何らこれら実施例に限定されるものではない。
【実施例１】
【００４３】
ＦＥＴＵＩＮ（ＳＩＧＭＡ社製、１ｇ）を、リン酸緩衝液（ｐＨ＝７．０，４０ｍｌ）に溶解させた後、ＮａＮ３（１０ｍｇ）を加える。このものに、オリエンターゼＯＮＳ（ＨＢＩ社製、１．５ｇ）を加え５０℃で約１２時間静置させる。反応の終了をＴＬＣにて確認した後、反応液をセライトにて濾過する。濾液を濃縮により減じ、ゲル濾過カラムクロマトグラフィー（Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５，２．５×１００ｃｍ，Ｈ２Ｏ）で精製する。目的とする糖が含まれるフラクションを集めて濃縮、次いで凍結乾燥を行う。得られた残留物（約３００ｍｇ）に、トリス−塩酸・塩化カルシウム緩衝溶液（ｐＨ＝７．５，２０ｍｌ）、ＮａＮ３（１０ｍｇ）を加え、溶解させる。このものに、アクチナーゼＥ（１６３ｍｇ）を加え１２時間おきにｐＨをチェックしながら４８時間静置させる。反応の終了をＴＬＣで確認した後、セライトろ過を行い、濾液を濃縮して減じ、ゲル濾過カラムクロマトグラフィー（Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５，２．５×１００ｃｍ，Ｈ２Ｏ）で精製する。目的とする糖が含まれるフラクションを集めて濃縮、次いで凍結乾燥を行う。得られた残留物に、４０ｍＭ ＨＣｌ溶液を加え、８０℃で１時間静置させた後中和処理を行う。反応液を濃縮後、ゲル濾過カラムクロマトグラフィー（Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５，２．５×１００ｃｍ，Ｈ２Ｏ）で精製する。目的とする糖が含まれるフラクションを集めて濃縮、次いで凍結乾燥を行う。得られた残留物を水に溶かし、重炭酸ナトリウムを加えた。
ここに、Ｆｍｏｃ−ＯＳｕを溶かしたジメチルホルムアミドを加え、室温で１時間反応させた。原料の消失をＴＬＣ（イソプロパノール：１Ｍ酢酸アンモニウム水溶液＝３：２）で確認後、エバポレーターを用いて濃縮した。残渣をゲルろ過カラム（ｆ ２０ｍｍ×３００ｍｍ，Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５，水）で精製し、目的の糖が含まれるフラクションを集め凍結乾燥を行った。この残留物をＨＰＬＣ分取カラムにて精製した（ＹＭＣ−Ｐａｃｋ Ｒ＆Ｄ ＯＤＳ，Ｄ−ＯＤＳ−５−Ａ，２０×２５０ｍｍ，ＡＮ／２５ｍＭ ＡｃＯＮＨ４ ｂｕｆｆｅｒ＝１８／８２，７．５ｍｌ／ｍｉｎ．，ｗａｖｅ ｌｅｎｇｔｈ；２７４ｎｍ）。３５分後に出てくるメインのピークを分取後、濃縮、次いでＯＤＳカラムにて脱塩処理を行う。凍結乾燥して得られるＦｍｏｃ化３分岐型アシアロ糖鎖アスパラギン（１．０ｍｇ，０．４２μｍｏｌ）を集め、５０ｍＭカコジル酸緩衝液（ｐＨ＝６．０，２５０ｍｌ）に溶解させた後、牛血清アルブミン（ＢＳＡ，１ｍｇ）を加える。これに、ＣＭＰ−シアル酸（３．９ｍｇ，６．１ｍｍｏｌ）、Ａｌｋａｌｉｎｅ ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ（１ｍｌ，２５ｕｎｉｔ）を加え均一化する。最後に、α２，６−Ｓｉａｌｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ（ＣＡＬＢＩＯＣＨＥＭ社製、１００ｍｌ）を加え３７℃で３６時間静置させる。反応液をＨＰＬＣにてモニターしながら、原料がほぼ消失したところで反応を終了し、メンブランフィルターにてろ過を行う。濾液を濃縮し液量を減じた後、ＨＰＬＣ分取カラムにて精製した（ＹＭＣ−Ｐａｃｋ Ｒ＆Ｄ ＯＤＳ，Ｄ−ＯＤＳ−５−Ａ，２０×２５０ｍｍ，ＡＮ／２５ｍＭ ＡｃＯＮＨ４ ｂｕｆｆｅｒ＝１８／８２，７．５ｍｌ／ｍｉｎ．，ｗａｖｅ ｌｅｎｇｔｈ；２７４ｎｍ）ところ、１１分後に目的とする３分岐トリシアロ糖鎖が溶出してきた。これを分取後、ＯＤＳカラムにて脱塩処理を行い、濃縮、凍結乾燥させることにより目的物を２５０μｇ（１８．５％）得た。
【化６】
ＮｅｕＡｃ：シアル酸 Ｇａｌ：Ｄ−ガラクトース ＧｌｃＮＡｃ：Ｎ−アセチルグルコサミン Ｍａｎ：Ｄ−マンノース Ａｓｎ：アスパラギン
を示す。
【化７】
１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ，Ｄ２Ｏ，３０℃，ＨＯＤ＝４．８１）
ｄ ７．９０（ｄ，２Ｈ，Ｆｍｏｃ），７．７０（ｄ，２Ｈ，Ｆｍｏｃ），７．５０（ｄｄ，２Ｈ，Ｆｍｏｃ），７．４２（ｄｄ，２Ｈ，Ｆｍｏｃ），５．１１（ｓ，１Ｈ，Ｍａｎ４−Ｈ１），４．９７（ｄ，１Ｈ，ＧｌｃＮＡｃ１−Ｈ１），４．９１（ｓ，１Ｈ，Ｍａｎ４'−Ｈ−１），４．７５（ｓ，１Ｈ），４．４５−４．６０（ｍ），４．４２（ｂｄ，３Ｈ），４．３３（１Ｈ，Ｆｍｏｃ），４．２０（ｍ，３Ｈ），４．０９（ｂｓ），４．１０（ｍ，２Ｈ），２．６０−２．８０（ｍ，４Ｈ，Ａｓｎ−ｂＣＨ，ＮｅｕＡｃ７，７'，７''−Ｈ３ｅｑ），２．４０−２．６０（ｍ，１Ｈ，Ａｓｎ−ｂＣＨ），２．１１，２．０８，２．０５，２．０１，１．８６（ｅａｃｈ ｓ，Ａｃ），１．７７（ｄｄｄ，３Ｈ，ＮｅｕＡｃ７，７'，７''−Ｈ３ａｘ）
【実施例２】
【００４４】
実施例１で得られた化合物 ２ｎｍｏｌを、トリス塩酸緩衝液 約１０μｌに溶解させた。このものに、ＧＤＰ−フコース ２００ｎｍｏｌ、Ｆｕｃｏｓｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ Ｖ（Ｈｕｍａｎ，Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ）０．５ｍＵを加え、３７℃で約２時間静置、反応させた。反応液を超純水 ２０μｌで希釈したのち、キャピラリー電気泳動（ｆｕｓｅｄ ｓｉｌｉｃａ ｃａｐｉｌｌａｒｙ，５０ｍｍ ｉ．ｄ．，６０ｃｍ，ｂｕｆｆｅｒ；１００ｍＭ Ｔｒｉｓ−ｂｏｒａｔｅ，ｐＨ＝８．３，１００ｍＭ Ｈｅｐｔａｎｅ ｓｕｌｆｏｎａｔｅ，印加電圧２７ｋＶ，温度２５℃，２１４ｎｍ）で分離を行い下記に示すフコースを含有する３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を得た。
【化８】
（ビオチン化）
【００４５】
実施例１で得られた糖鎖アスパラギンＦｍｏｃ体１μｍｏｌあたりに２４０μＬのＮ，Ｎ−ジメチルホルムアミド、１６０μｌのモルホリンを加え、室温下アルゴン雰囲気で反応させた。ＴＬＣ（展開溶媒として１Ｍ 酢酸アンモニウム：イソプロパノール＝８：５を用いた）にて反応終了を確認した後、氷水で冷却した。ここにジエチルエーテルを反応溶液の１０倍量加えて１５分間攪拌した後、析出した沈殿物をろ別した。得られた残渣を水に溶解させ、３５℃でエバポレートした。更にトルエンを３ｍｌ加えエバポレートするという操作を３回繰り返した。残留物をゲルカラムクロマトグラフィー（Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５，Ｈ２Ｏ）により精製して、Ｆｍｏｃ基の除去された糖鎖アスパラギンを得た。
上記で得られた化合物（６ｍｇ，２．５８μｍｏｌ）を水（３００μｌ）溶かし重炭酸ナトリウム（２．１ｍｇ，２４．９μｍｏｌ）を加えた。ここに、Ｄ−（＋）−ビオチニルスクシンイミド（４．２ｍｇ，１２．３μｍｏｌ）を溶かしたジメチルホルムアミド（３００μｌ）を加え、室温で２０分反応させた。原料消失をＴＬＣ（イソプロパノール：１Ｍ 酢酸アンモニウム水溶液＝３：２）で確認後、エバポレーターを用いて濃縮した。残渣をゲルカラムクロマトグラフィー（Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５，Ｈ２Ｏ）で精製し、下記に示すビオチン化３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体（６．２ｍｇ，９４％）を得た。
【化９】
（ＦＩＴＣ化）
【００４６】
実施例３と同様にして、Ｆｍｏｃ基の除去された糖鎖アスパラギンを得た。
上記で得られた化合物（１．４ｍｇ、０．６０μｍｏｌ）を、精製水 ７０μｌに溶解させた。このものにアセトン７０μｌ、ＮａＨＣＯ３（０．７６ｍｇ，９μｍｏｌ）を加え、室温化に撹拌した後、Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ ｉｓｏｔｈｉｏｃｙａｎａｔｅ（ＦＩＴＣ，０．９５ｍｇ，２．４ｍｍｏｌ，ＳＩＧＭＡ社製）を加え約２時間撹拌した。２時間後、ＴＬＣにて反応の終了を確認した後、アセトンを減圧下に留去させ、残った水溶液をゲルカラムクロマトグラフィー（Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５，Ｈ２Ｏ）にて精製し目的物の含まれる分画を集めた。集めた分画を濃縮後、ＨＰＬＣ（ＹＭＣ− Ｐａｃｋ ＯＤＳ−ＡＭ，ＳＨ−３４３−５ＡＭ，２０×２５０ｍｍ，ＡＮ／２５ｍＭ ＡｃＯＮＨ４ ｂｕｆｆｅｒ＝１０／９０，７．５ｍｌ／ｍｉｎ．，ｗａｖｅ ｌｅｎｇｔｈ；２７４ｎｍ）で分取した後、濃縮、次いでゲルカラムクロマトグラフィー（Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５，Ｈ２Ｏ）にて脱塩処理を行った。目的物の含まれる分画を集め、濃縮後、凍結乾燥を行うと下記に示す蛍光標識化（ＦＩＴＣ化）された３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体（１．２ｍｇ，７３．５％ ｙｉｅｌｄ）が得られた。
【化１０】
（マイクロプレートの製造）
【００４７】
９６穴ＢＤバイオコートストレプトアビジン（ＢＤバイオサイエンス社製：バイオアッセイ用、結合能：５ｎｇ／１穴）に、実施例３のビオチン化糖鎖アスパラギン１００μｇ（ビオチン結合能の約１０倍相当量）を蒸留水に溶かし１０００μｌとした。この調整溶液を１穴当り１０μｌとなるように各ウェルに加え、蒸留水で３回洗浄し、マイクロプレートを製造した。各ビオチン化糖鎖アスパラギンの結合収率は、９５％以上であった。固定化率の確認は、洗い出された非固定化糖鎖残量より算出した。
【実施例６】
（アフィニティーカラムの製造）
【００４８】
アビジンコートビーズ（日立ソフトウェアーエンジニアリング社製、ｘＭＡＰ ＬｕｍＡｖｉｄｉｎ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ Ｍｉｃｒｏｓｐｈｅｒｅｓ １ｍｌ）１０ｍｌと実施例３のビオチン化糖鎖アスパラギン３０ｍｇをスラリー状態で撹拌し、ビーズをろ過、洗浄した。洗浄は、ビーズ体積の２倍量の蒸留水を使用して、３回ろ紙上で洗浄した。固定化の確認は、洗浄回収されたビオチン化糖鎖アスパラギンの残量により確認した。次に上記のビオチン化糖鎖アスパラギン固定ビーズ１０ｍｌを３０ｍｌの蒸留水でスラリー状態のまま、ガラス製のオープンクロマトカラム（φ２０ｍｍ、長さ３００ｍｍ）に充填し、アフィニティーカラムを製造した。
【産業上の利用可能性】
【００４９】
本発明によれば、医薬品開発等の分野において有用な単離された３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体を従来に比べて非常に容易かつ大量に得ることができる。また本発明によれば、３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体と共に有用な単離された３分岐型糖鎖アスパラギンおよび３分岐型糖鎖をそれぞれ従来に比べて非常に容易かつ大量に得ることができる。
【００５０】
更に本発明によれば、ビオチン・アビジンの結合特異性を利用し、ビオチン化した複数の糖鎖をアビジン化されたマイクロプレート上で反応させるだけで簡単に糖鎖マイクロチップを製造することができる。これにより、特定の糖鎖と結合能を有するタンパク質を解明することができる。
【００５１】
また、ある特定のタンパク質を分離精製する目的で、アビジン化したアフィニティーカラムに特定のビオチン化した糖鎖を結合し固定化し、そこに、ビオチン化した糖鎖と特異的結合能を有するタンパク質を含む混合物を通すことにより目的とするタンパク質のみを単離することができる。
【００５２】
更に本発明で得られたＦＩＴＣ化糖鎖アスパラギンは、例えば生体組織中の糖類の受容体の研究、レクチンの糖結合特異性の研究に有用である。
Claims (5)
- 式（１）で表されるアスパラギンのアミノ基窒素が脂溶性の保護基、ビオチン基又はＦＩＴＣ基により修飾された３分岐型トリシアロ糖鎖アスパラギン誘導体。
- 前記脂溶性の保護基がＦｍｏｃ基である請求項１に記載の３分岐型トリシアロ糖鎖アスパラギン誘導体。
- 請求項１に記載の３分岐型トリシアロ糖鎖アスパラギン誘導体の脂溶性の保護基、ビオチン基又はＦＩＴＣ基を除去した３分岐型トリシアロ糖鎖アスパラギン。
- 式（３）で表されるビオチン化３分岐型トリシアロ糖鎖アスパラギンを結合させたマイクロプレート。
- 式（３）で表わされるビオチン化３分岐型トリシアロ糖鎖アスパラギンを結合させたアフィニティーカラム。
Priority Applications (1)
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|---|---|---|---|
| JP2004562955A JP4790271B2 (ja) | 2002-12-26 | 2003-12-26 | ３分岐型糖鎖アスパラギン誘導体、該糖鎖アスパラギン、該糖鎖およびそれらの製造方法 |
Applications Claiming Priority (4)
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