JP3016759B2 - 競争的ハイブリダイゼーションによる蛍光エネルギー転移 - Google Patents
競争的ハイブリダイゼーションによる蛍光エネルギー転移Info
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
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- C12Q1/6818—Hybridisation assays characterised by the detection means involving interaction of two or more labels, e.g. resonant energy transfer
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Description
に発蛍光団(fluorophore)を有し、他方のプローブ上
に消光剤(quencher)を有する、等しくない長さの相補
的プローブに関する。発蛍光団および消光剤は、発蛍光
団への消光剤の近接により発蛍光団の蛍光が消されるよ
うに並置される。これらのプローブは配列相補性を有す
るヌクレオチドの検出に有用である。その検出能力は、
等しくない長さのプローブの使用により起こる競争的ハ
イブリダイゼーション、およびその後この競争的ハイブ
リダイゼーションにより引き起こされる消光の抑制によ
るものである。
ドを高濃度としていくつかの手段により検出されうるよ
うにするための方法の1つとなっている。いくつかの増
幅方法が使用できる。もっとも広く行われている方法
は、ポリメラーゼ連鎖反応(あるいは現在一般的にPC
Rと呼ばれている)である。増幅法によって検出または
回収および使用できる標的ヌクレオチド配列数が増加す
るが、増幅生成物の検出には高感度の方法が必要であ
る。また、増幅法は、増幅プロセスのリアルタイムモニ
タリングの恩恵を受ける。リアルタイムモニタリングに
より反応性のない増幅を検出でき、あるいはプロセスの
無効率を検出できる。増幅反応を妨害せずにかかるモニ
タリングを行うことができる場合には、リアルタイムモ
ニタリングを用いた負荷オリゴヌクレオチドの定量も可
能である。
めの手段】本発明手順は、互いに配列相補性を有する発
蛍光団標識プローブおよび消光剤標識プローブの間の蛍
光エネルギー転移に基づいている。使用プローブは等し
くない長さであり、そのことは一方のプローブがその相
補的プローブにアニーリングする以上に標的核酸配列に
アニーリングすることを促進する。プローブ配列に相補
的または同一の配列を有する核酸(標的配列)の不存在
下では、2つのプローブは互いにアニーリングするであ
ろう。2つのプローブが互いにアニーリングする場合、
発蛍光団への消光剤の近接により発蛍光団の蛍光の消光
が起こる。プローブ配列に相補的または同一の配列を有
する核酸の存在下では、発蛍光団標識プローブのいくつ
かは相補的配列を有する核酸にハイブリダイゼーション
し、消光剤から離され、増大した(消光されない)蛍光
を生じるであろう。標的配列を有する核酸の存在の特異
的検出にこの蛍光の相違を用いることができる。
ヌクレオチドについて核酸増幅を行うこと(第1のオリ
ゴヌクレオチドプローブおよび長さが少なくとも約2塩
基対短いことにより長さの異なる第2のオリゴヌクレオ
チドプローブを用いる何れかの方法を用いて増幅を行
い、第1のプローブは発蛍光団を有し、第2のプローブ
は第1のプローブに相補的で、該発蛍光団の蛍光を消す
ことのできる消光剤分子を有するものであり、発蛍光団
および消光剤は、プローブがハイブリダイゼーションし
た場合に消光剤分子が発蛍光団の蛍光を消す位置でそれ
らの個々のプローブ上に結合するものであり、長い方の
プローブは優先的に標的ポリヌクレオチドに結合し、優
先的に標的ポリヌクレオチドに結合する場合、発蛍光団
の蛍光強度は、第2のプローブにハイブリダイゼーショ
ンする場合の発蛍光団の蛍光強度よりも大きいものであ
る)、次いで、発蛍光団の蛍光、すなわち核酸増幅の存
在に対応する蛍光の発生をモニターすることを特徴とす
る核酸増幅のモニタリング方法に関する。また本発明
は、等しくない長さのプローブを用いて標的ポリヌクレ
オチドの存在を検出する方法にも関する。発蛍光団およ
び消光剤とアニーリングしたプローブも本発明の一部分
である。
標的ポリヌクレオチドの増幅とともに用いられる。これ
らの増幅方法は、PCR、リガーゼ連鎖反応(LC
R)、ギャップLCR、転写により媒介される増幅(T
MA)核酸配列に基づく増幅(NASBA)、および鎖
置換増幅(SDA)を包含する。PCRは最も興味深
い。PCRは、Innis,et al,editors,PCR Protocols (A
cademic Press,New York,1989);Sambrook et al.,Mole
cular Cloning,Second Edition (Cold Sprong Harbor L
aboratory,New York,1989)等多くの文献に記載されてい
る。オリゴヌクレオチドプローブ結合部位は、標的ポリ
ヌクレオチドを増幅するのに用いるPCRプライマー間
に存在する。いずれのポリメラーゼを用いてPCRを行
ってもよい。標的ポリヌクレオチドから生じる複製物が
多いほど蛍光シグナル強度は強くなるので、標的ポリヌ
クレオチド数を増加させるポリメラーゼはこの方法に都
合がよい。好ましくは、耐熱性ポリメラーゼを用いてP
CRを行う。好ましい酵素はTaq DNAポリメラー
ゼ、例えば、AmplitaqTM(Perkin-Elmer,Norwalk,Con
n.)または同等の耐熱性DNAポリメラーゼである。P
CRのアニーリング温度は、使用オリゴヌクレオチドプ
ローブの融解温度よりも約5ないし10℃低い温度であ
ろう。ポリメラーゼPwoは本発明でうまく用いられ
た。
は、天然または修飾モノマーまたは連結物からなる直鎖
状オリゴマーを包含し、デオキシリボヌクレオチド、リ
ボヌクレオチド等があり、それらはワトソン−クリック
型の塩基対合等のごときモノマー対モノマーの通常のパ
ターンにより標的ポリヌクレオチドに特異的に結合しう
る。通常には、モノマーはホスホジエステル結合または
その類似結合により結合しており、数個のモノマー単
位、例えば3ないし4個ないし数十個のモノマー単位の
サイズのオリゴヌクレオチドを形成している。オリゴヌ
クレオチドが「ATGCCTG」のごとき文字配列によ
り表される場合、そのヌクレオチドは左から右へ5’か
ら3’方向を表すものとし、特記しない限り、「A」は
デオキシアデノシン、「C」はデオキシシチジン、
「G」はデオキシグアノシン、「T」はチミジンを表
す。ホスホジエステル結合のアナログとしては、ホスホ
ロチオエート、ホスホロジチオエート、ホスホラニリデ
ート、ホスホラミダイト等がある。一般的には、本発明
オリゴヌクレオチドプローブはその5’末端近傍に十分
な数のホスホジエステル結合を有しており、使用するエ
キソヌクレアーゼ活性は5’から3’方向へと効果的に
結合プローブを分解してリポーターおよび消光剤分子を
分離させることができる。
ポリヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチド鎖が他の鎖
と2本鎖構造を形成して、各鎖の各ヌクレオチドがワト
ソン−クリック型の塩基対合をしていることを意味す
る。また、その用語は、デオキシイノシン、2−アミノ
プリン塩基と一緒になったヌクレオシド等のごときヌク
レオシドアナログの対合も包含し、それらを用いること
ができる。逆に、標的ポリヌクレオチドとオリゴヌクレ
オチドプローブもしくはプライマーとの間の2本鎖にお
ける「ミスマッチ」は、2本鎖中のヌクレオチドペアー
がワトソン−クリック型の結合をしないことを意味す
る。
Nucleic Acids Research,20:5205-5214(1992);Agrawal
et al,Nucleic Acids Research,18:5419-5423(1990)等
の方法により本発明オリゴヌクレオチドプローブを合成
することができる。便利には、本発明オリゴヌクレオチ
ドプローブを、例えばBeaucage and Iyer,tetrahedron,
48:2223-2311(1992);Molkoらの米国特許第49804
60号;Kosterらの米国特許第4725677号;Caru
thersらの米国特許第4415732号、445806
6号および4973679号等の文献に開示されたホス
ホラミダイト化学のごとき標準的な化学を用いて、自動
DNA合成装置、例えば、Applied Biosystems,Inc.Fos
ter City,Calif.の392または394型DNA/RN
A合成装置により合成する。別の化学、例えばホスホロ
チオエート、ホスホラミダイトのごとき非天然骨格グル
ープを用いてもよいが、得られるオリゴヌクレオチドの
ハイブリダイゼーション効率および/または使用エキソ
ヌクレアーゼの開裂効率が悪影響を受けないことが必要
である。好ましくは、オリゴヌクレオチドプローブの長
さは15ないし60ヌクレオチドの範囲である。より好
ましくは、オリゴヌクレオチドプローブの長さは18な
いし30ヌクレオチドの範囲である。本発明オリゴヌク
レオチドプローブの正確な配列および長さは、一部に
は、結合する標的ポリヌクレオチドの性質による。特定
の具体例のためには、結合位置および長さを変化させて
適切なアニーリングおよび融解特性を得てもよい。好ま
しくは、オリゴヌクレオチドプローブの3’末端ヌクレ
オチドはブロックされているか、または核酸ポリメラー
ゼにより伸長できなくされている。便利には、結合基に
よりオリゴヌクレオチドプローブの末端3’炭素にリポ
ーターもしくは消光剤分子を結合させることにより、か
かるブロッキングを行う。好ましくは、リポーター分子
は、結合基を介してプローブの末端3’炭素もしくは末
端5’炭素に結合することを目的に蛍光有機色素誘導体
化される。好ましくは、消光剤分子も有機色素であり、
本発明具体例にもよるが蛍光性であってもなくてもよ
い。例えば、本発明の好ましい具体例において、消光剤
分子は蛍光性である。一般的には、消光剤分子が蛍光性
であるかどうか、あるいはリポーター分子からの転移エ
ネルギーを非放射性崩壊により放出するかどうかにかか
わらず、消光剤の吸収バンドは実質的にリポーター分子
の蛍光エミッションバンドと重なるべきである。励起リ
ポーター分子からのエネルギーを吸収するが放射性エネ
ルギーを放出しない非蛍光性消光剤分子は、本明細書で
色素原分子(chromogenic molecules)と呼ばれる。特
定のプローブのための適当なリポーター−消光剤ペアー
を選択するために、文献中に多数の利用可能な実際的な
指針があり、例えば、下記文献がある:Clegg "Fluores
cence resonance energy transfer and nucleic acid
s",Methods inEnzymology,211:353-389(1992);Wu et a
l.,"Resonance energy transfer:methods and applicat
ions",Anal.Biochem.218:1-13(1994);Pesce et al,edit
ors,Fluorescence Spectrometry (Marcel Dekker,Ner Y
ork,1971);White et al,Fluorescence Analysis:A Prac
tical Approach (Marcel Dekker,New York,1970)等。ま
た、文献は、リポーター−消光剤ペアーを選択するため
の蛍光性分子および色素原分子ならびにそれらの重要な
光学的特性の完全なリストを提供する文献も含み、例え
ばBerlman,Handbook of Fluorescence Spectra of Arom
atic Molecules,2ndEdition (Academic Press,New Yor
k,1971);Griffiths,Colour and Constitution of Organ
ic Molecules (Academic Press,New York,1976);Bisho
p,editor,Indicators (pregamin Press,Oxford,1972);H
augland,Handbook of Fluorescent Probes and Researc
h Chemicals (Molecular Probes,Eugene,1992);Pringsh
eim,Fluorescence and Phosphorescence (Interscience
Publishers,New York,1949)等がある。さらに、オリゴ
ヌクレオチドに付加できる通常の反応性の基を介して共
有結合させるためにリポーター分子および消光剤分子を
誘導体化するための文献もあり、例えば、Haugland(上
記);Ullmanらの米国特許第3996345号;Khanna
らの米国特許第4351760号等がある。
ルオレセイン類を包含するキサンテン色素、およびロー
ダミン色素から選択してもよい。多くの適当な形態のこ
れらの化合物は広く市販されており、それらは結合部位
としてまたはオリゴヌクレオチドへの結合のための結合
官能基として使用可能な置換基をフェニル部分に有して
いる。別のグループの蛍光性化合物はアルファまたはベ
ータ位にアミノ基を有するナフチルアミン類である。1
−ジメチルアミノナフチル−5−スルホネート、1−ア
ニリノ−8−ナフタレンスルホネートおよび2−p−ト
ルイジニル−6−ナフタレンスルホネートはかかるナフ
チルアミの化合物に包含される。他の色素としては3−
フェニル−7−イソシアネートクマリン、アクリジン
類、例えば9−イソチオシアネートアクリジンおよびア
クリジンオレンジ;N−(p−(2−ベンゾキサゾリ
ル)フェニル)マレイミド;ベンゾキサジアゾール類、
スチルベン類、ピレン類等がある。好ましくは、リポー
ターおよび消光剤分子をフルオレセイン色素およびロー
ダミン色素から選択する。これらの色素およびオリゴヌ
クレオチドへの適当な結合法は多くの文献に記載されて
おり、例えば、Khannaら(上記)、Marshall,Histochem
ical J.,299-303(1975);Mechnenらの米国特許第518
8934号、Mechnenらの欧州特許出願第873102
56.0号;およびBergotらの国際出願PCT/US9
0/05565がある。後の4つの文献を参照により本
明細書に記載されているものとみなす。
ヌクレオチドの3’または5’末端に結合させるための
多くの結合基および方法があり、下記文献に示されてい
る:Eckstein,editor,Oligonucleotides and Analogue
s:A Practical Approach (IRLPress,Oxford,1991);Zuck
erman et al,Nucleic Acids Research,15:5305-5321(19
87)(オリゴヌクレオチド上の3’チオール基);Sharm
a et al,Nucleic Acids Research,19:3019(1991)(3’
スルフヒドリル);Giusti et al,PCR Methodsand Appl
ications,2:223-227(1993)およびFungらの米国特許第4
757141号(Applied Biosystems,Foster City,Cal
if.から市販されているAminolinkTM IIを介した5’ホ
スホアミノ基);Stabinskyの米国特許第473904
4号(3’アミノアルキルホスホリル基);Agrawal et
al,Tetrahedron Letters,31:1543-1546(1990)(ホスホ
ラミダイト結合を介する結合);Sproat et al,Nucleic
Acids Research,15:4837(1987)(5’メルカプト
基);Nelson et al,Nucleic Acids Research,17:7187-
7194(1989)(3’アミノ基)等。好ましくは、合成中に
オリゴヌクレオチドに結合しうる市販結合基、例えば、
Clontech Laboratories(Palo Alto,Calif.)から市販さ
れているものを用いる。
導体化した色素を用いる固相合成の最後にオリゴヌクレ
オチドの5’ヒドロキシルにローダミンおよびフルオレ
セイン色素を結合させる(例えば、Wooらの米国特許第
5231191号;およびHobbs,Jr.の米国特許第49
97928号参照)。
ブの選択は当業者の選択による。本発明は、プライマー
またはプローブの選択について特殊必要事項がなく、ま
た制限もない。かかる選択は当業者の範囲内である。
あればいずれの長さであってもよいが、基準として、長
いほうのプローブは少なくとも3塩基対を有していなけ
ればならず、実施問題として、長いほうのプローブは3
塩基対よりも多い塩基対を含むであろう。しかしなが
ら、FETCHの使用による長さの上限はない。長いほ
うのプローブの長さはFETECHの適用によっては支
配されない。なぜなら、FETCHは少なくとも3塩基
対である必要性のあるいずれの長さのプローブについて
も適合するからである。実際問題として、長いほうのプ
ローブは、標的ポリヌクレオチドおよび短いほうのプロ
ーブにユニークにハイブリダイゼーションすることを保
証する長さを有するであろう。短いほうのプローブは、
長いほうのプローブよりも少なくとも2塩基対短いであ
ろう。このことは、短いほうのプローブを作成する場合
の基礎的事項である。アリーリングしたプローブの解離
温度を計算することによりプローブ間の長さの相違に関
する良好な適合が得られることがわかっている。一般則
として、プライマーの解離温度としては約55℃以上9
0℃未満であることが必要である。この計算を行うため
の便利な手段は、GeneRuner (Hastings Software,Inc.)
の例えばバージョン3.04と呼ばれるソフトウェアを
使用することである。
短いほうの遺伝子を調製してもよい。あるいは、3’末
端切断物であってもよい。3番目の選択肢は、長いほう
の遺伝子の5’および3’末端を切断することにより短
いほうのプローブを作成することである。これらの3つ
の形態の短いほうのプローブのいずれか1つであればう
まくいくであろう。2種またはそれ以上の末端切断形態
を用いることができるが、1の形態のみ、好ましくは
5’末端切断形態のみを用いることが最も簡単である。
した場合、消光剤により発蛍光団の蛍光が効果的に消さ
れる限り、発蛍光団および消光剤をどのような組み合わ
せの塩基対上に置いてもよい。最も簡単な方法は、長い
ほうのプローブの5’末端ヌクレオチド上に発蛍光団を
置き、短いほうのプローブの3’末端ヌクレオチド上に
消光剤を置くことである。この方法は、発蛍光団の蛍光
に対する消光剤分子の影響を最適化することができる。
好ましくは、5’および3’結合基を用いて発蛍光団お
よび消光剤分子をプローブの末端5’炭素および末端
3’炭素に結合する。しかしながら、本発明において有
用な少なくとも一定数の発蛍光団については、発蛍光団
および消光剤が離れて存在してもやはり作動しうること
が示されている。例えば、発蛍光団および消光剤を数塩
基離してもよいことが開示されている米国特許第553
8848号参照。その特許によれば、発蛍光団および消
光剤が少なくとも15ヌクレオチドまたはそれ以上離れ
ているが有用性を示すことが開示されている。同様に、
2つのプローブがハイブリダイゼーションした場合、離
すことが発蛍光団のシグナルへの消光剤の影響能を実質
的に低下させない限り、発蛍光団および消光剤を離すこ
とが可能である。もちろん、発蛍光団および/または消
光剤をプローブ内部のヌクレオチドに結合させることも
できる。しかしながら、合成の容易さならびにプローブ
対標的およびプローブ対プローブのハイブリダイゼーシ
ョンの最適化を理由として、上記のごとく発蛍光団およ
び消光剤をプローブの5’および3’末端に置くことが
好ましい。実際、発蛍光団および消光剤を各々のオリゴ
ヌクレオチドの5’または3’末端ヌクレオチド上に置
くと、アッセイが機能的になるであろう。短いほうのプ
ローブ上に発蛍光団を置き、長いほうのプローブ上に消
光剤を置くための別の配置をとってもよい。さらに、こ
の配置において、長いほうのプローブは優先的に標的に
結合し、かくして、発蛍光団を伴うプローブから十分に
離れるため、その蛍光を効果的に消えないこととなる。
しかしながら、好ましい構築物は、長いほうのプローブ
上に発蛍光団を有するべきである。
るプローブとの割合を変化させることによりアッセイを
最適化することができる。1:1の割合が良好な結果を
もたらす。しかしながら、発蛍光団を有するプローブに
対する消光剤を有するプローブの割合が2:1の場合、
より良好な結果が得られた。本発明のこの態様は最適化
されていないが、当業者は、異なる割合について通常の
試験によるアッセイを行って、最適化しうることがわか
る。
り、特許請求された本発明の範囲を限定的に解するもの
ではない。 一般的説明 競争的ハイブリダイゼーションによる蛍光エネルギー転
移(FETCH)の利用を、ヒト・標本中のC型肝炎ウ
イルス(HCV)のPCRによる検出のためのアッセイ
として開発した。前方のプローブ、すなわち短いほうの
プローブはTAMRA色素(N,N,N’,N’テトラ
メチル−6−カルボキシローダミン)を3’位置に有し
ていた(よって、3’OHはPCR中に伸長不可能)。
一般的に使用される蛍光性色素FAMを発蛍光団として
使用した。蛍光性色素TAMRAはFANのエミッショ
ンバンドと重なる吸収バンドを有しており、この適用例
において消光剤として使用した。
ての既知HCV株を捕らえることのできるアッセイを行
うために、すべての株のRNA配列に共通したポリヌク
レオチド配列を有する2つのプライマーおよび2つのプ
ローブを選択した。それらがすべての既知HCV株にア
ニーリングし、類似の解離温度を有し、互いに広範囲に
わたる3’相補性を有しない等の条件を満たすようにプ
ライマーを選択した。選択したものは、文献記載のヌク
レオチド番号3290から3543までのHCVの5’
非コーディング領域の254bpのセグメントの横にあ
るものであった。HCV配列のデータはプライマーに依
存した。選択したプローブを下表1−2および4に示
す。
へと表示)はそのC1に対する相補性を目立たせること
に役立つ。 表4 塩基数 分子量 標識 プローブC1 20 6914 6−FAM プローブC2 17 6065 TAMRA Gene Runerバージョン3.04(Hastings Software In
c.)により分子量を計算した。
Sorrento Valley Rd.,Suite 105,San Diego,CA 92121)
において注文合成した。それらは下記のごとく合成され
た。 工程1 オリゴヌクレオチド合成 支持体上でオリゴヌクレオチドを合成し、脱保護して
3’リン酸基を生じさせた(Glen Researchカタログ番
号20−2913)。 工程2 6−FMA付加 次いで、支持体結合オリゴヌクレオチドを15当量の6
−FAMアミダイト(Glen Researchカタログ番号10
−5901)と手動で反応させて高効率を保証した。 工程3 オリゴヌクレオチド脱保護 新鮮な濃アンモニア水を用いてFAM標識オリゴを室温
で36時間脱保護した。脱保護後、試薬をデンカンテー
ションで除去し、ビーズを濯ぎ、溶液と一緒に乾燥させ
た。 工程4 精製 逆相HPLCを用いてFAM標識オリゴヌクレオチドを
精製した。FAMは全長の物質上にある唯一のものであ
り、親油性条件下での取り扱いに有用であり、良好な分
離をもたらす。精製後、化合物を乾燥して沈殿するよう
にした。EtOHを用いて化合物を0.3M NaOA
cから沈殿させた。高速遠心分離により生成物を回収
し、EtOHで2回洗浄した。 工程5 最終分析 乾燥生成物を水に再懸濁し、定量し、HPLCにより純
度を分析した。次いで、化合物を再乾燥して発送できる
ようにした。
RNAの検出 1工程の逆転写およびポリメラーゼ連鎖反応としてアッ
セイを行った。ヒト・血清または血漿からHCV RN
Aを単離し、精製した。血清または血漿試料を高変性条
件下で溶解させてRNAアーゼを不活性化させ、無傷の
RNAの単離を保証した。RNAをエタノールで沈殿さ
せ、RNAに結合するQIAmpスピンカラム(Qiage
n,Chatsworth,CA)に移した。次いで、カラムを水洗
し、RNAを溶離させた。精製RNA鋳型(10μl)
をHCVマスターミックス(master mix)(表5参照)
(40μl)と混合し、次いで、逆転写してDNAと
し、表6にあるようにPerkin Elmer 7700配列分析装置
にて同じ試験管中でPCRにより増幅し、検出を行っ
た。PCRを行っている間、いくつかのFAM標識プロ
ーブおよびいくつかのTAMRA標識プローブがPCR
生成物にアニーリングし、かくしてFAM蛍光の消光が
抑制され、検出すべき蛍光が増強された。図1に示すよ
うにFAMの蛍光は温度サイクリングのサイクル数の増
加に伴い増大し、PCR生成物量の増加に対応してい
た。 表5 典型的なHCVマスターミックス 試薬 1本の試験管中の 最終濃度 μl数 (40μl) RNase不含の水 26.8 −−− 10X TaqManTMバッファー 5 1X MgCl2(25mM) 5 2.5mM dNTP(各25mM) 0.6 300mM プライマー HCVC1(100μM) 0.25 500nM プライマー HCVC2(100μM) 0.25 500nM プローブC1(25μM) 0.2 100μM プローブC2(25μM) 0.2 100μM RNase阻害剤(20U/μl) 0.5 10U MU/V RT(50U/μl) 0.5 25U Amplitaqゴールド(5U/μl) 0.5 2.5U TaqManはRoch Molecular Systems,Inc.の商標である。 表6 サイクル 温度 時間 繰り返し ランプタイム 自動インクレメント 回数 (Ramp Time) (Auto Increment) しない 48℃ 60分 自動 しない 95℃ 10分 自動 する 93℃ 15秒 40 自動 57℃ 30秒 72℃ 30秒
V RNAのPCR増幅により得られた蛍光シグナルを
示す。長い方のプローブは5’末端炭素上に発蛍光団を
有し、短いほうのプローブは3’末端炭素上に消光剤を
有しており、短いほうのプローブは長いほうのプローブ
の5’末端から3塩基対欠失させることにより調製され
た。
Claims (12)
- 【請求項1】 標的ポリヌクレオチドについて核酸増幅
を行うこと(第1のオリゴヌクレオチドプローブおよび
長さが少なくとも約2塩基対短いことにより長さの異な
る第2のオリゴヌクレオチドプローブを用いる何れかの
方法を用いて増幅を行い、第1のプローブは発蛍光団を
有し、第2のプローブは第1のプローブに相補的で、該
発蛍光団の蛍光を消すことのできる消光剤分子を有する
ものであり、発蛍光団および消光剤は、プローブがハイ
ブリダイゼーションした場合に消光剤分子が発蛍光団の
蛍光を消す位置でそれらの個々のプローブ上に結合する
ものであり、長い方のプローブは優先的に標的ポリヌク
レオチドに結合し、優先的に標的ポリヌクレオチドに結
合する場合、発蛍光団の蛍光強度は、第2のプローブに
ハイブリダイゼーションする場合の発蛍光団の蛍光強度
よりも大きいものである)、次いで、発蛍光団の蛍光、
すなわち核酸増幅の存在に対応する蛍光の発生をモニタ
ーすることを特徴とする核酸増幅のモニタリング方法 - 【請求項2】 核酸ポリメラーゼが耐熱性核酸ポリメラ
ーゼである請求項1の方法。 - 【請求項3】 第1のプローブ上の発蛍光団および第2
のプローブ上の消光剤分子が同一のハイブリダイゼーシ
ョンした塩基対上にある請求項1の方法。 - 【請求項4】 発蛍光団および消光剤分子が互いに約1
個ないし3個のハイブリダイゼーションした塩基対中に
ある請求項1の方法。 - 【請求項5】 発蛍光団および消光剤分子が互いに3個
またはそれ以上のハイブリダイゼーションした塩基対中
にある請求項1の方法。 - 【請求項6】 発蛍光団が第1のプローブの5’末端ヌ
クレオチド上にあり、消光剤が第2のプローブの3’末
端ヌクレオチド上にある請求項1の方法。 - 【請求項7】 発蛍光団が第1のプローブの3’末端ヌ
クレオチド上にあり、消光剤が第2のプローブの5’末
端ヌクレオチド上にある請求項1の方法。 - 【請求項8】 第1のプローブのヌクレオチド配列から
の3個またはそれ以上の3’末端ヌクレオチドの欠失に
より第2のプローブが第1のプローブよりも短い請求項
1の方法。 - 【請求項9】 第1のプローブのヌクレオチド配列から
の3個またはそれ以上の5’末端ヌクレオチドの欠失に
より第2のプローブが第1のプローブよりも短い請求項
1の方法。 - 【請求項10】 第1のプローブの3個またはそれ以上
の5’末端ヌクレオチドの欠失および第1のプローブの
1個またはそれ以上の3’末端ヌクレオチドの欠失によ
り第2のプローブが第1のプローブよりも短い請求項1
の方法。 - 【請求項11】 第1および第2のプローブが2℃また
はそれ以上異なる解離温度を有する請求項1の方法。 - 【請求項12】 核酸試料を適当な溶液中に入れ、第1
のオリゴヌクレオチドプローブおよび長さが少なくとも
約2塩基対短いことにより長さの異なる第2のオリゴヌ
クレオチドプローブとともにインキュベーションするこ
と(第1のプローブは発蛍光団を有し、第2のプローブ
は第1のプローブに相補的で、該発蛍光団の蛍光を消す
ことのできる消光剤分子を有するものであり、発蛍光団
および消光剤は、プローブがハイブリダイゼーションし
た場合に消光剤分子が発蛍光団の蛍光を消す位置でそれ
らの個々のプローブ上に結合するものであり、長い方の
プローブは優先的に標的ポリヌクレオチドに結合し、優
先的に標的ポリヌクレオチドに結合する場合、発蛍光団
の蛍光強度は、第2のプローブにハイブリダイゼーショ
ンする場合の発蛍光団の蛍光強度よりも大きいものであ
る)、次いで、発蛍光団の蛍光、すなわち特定の核酸配
列の存在に対応した蛍光の発生をモニターすることを特
徴とする、調製された核酸試料中の特定の核酸配列の存
在の検出方法。
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