JP2023011840A - 異なる核酸アジュバントの組み合わせによる、新規Ｔｈ１誘導性アジュバントおよびその用途 - Google Patents

Abstract

【課題】新規Ｔｈ１応答の誘導、細胞傷害性Ｔ細胞の誘導および抗がん作用・抗アレルギー作用技術を提供すること。
【解決手段】ＣｐＧオリゴヌクレオチドとＳＴＩＮＧアゴニストの組合せ物が提供される。あるいは、ＳＴＩＮＧアゴニストを含む、Ｉ型アジュバントとして用いるための組成物であって、該ＳＴＩＮＧアゴニストはＣｐＧオリゴヌクレオチドとともに投与されることを特徴とする、組成物が提供される。あるいは、ＣｐＧオリゴヌクレオチドを含む抗がん剤であって、該ＣｐＧオリゴヌクレオチドはＳＴＩＮＧアゴニストとともに投与されることを特徴とする、抗がん剤が提供される。ＣｐＧオリゴヌクレオチドを含む、ＳＴＩＮＧアゴニストのＩｇＥ誘発作用を低減または消失させるための組成物もまた提供される。
【選択図】なし

Description

特許法第３０条第２項適用申請有り 刊行物等１：日本免疫学会総会・学術集会記録（Ｔｈｅ ４３▲ｒｄ▼ Ａｎｎｕａｌ Ｍｅｅｔｉｎｇ ｏｆ ｔｈｅ Ｊａｐａｎｅｓｅ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｆｏｒ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ）、公開日：平成２６年１１月１８日（印刷上） 刊行物等２：第１３回あわじしま感染症・免疫フォーラムｉｎ奈良（Ｔｈｅ １３ｔｈ Ａｗａｊｉ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｆｏｒｕｍ ｏｎ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ ａｎｄ Ｉｍｍｕｎｉｔｙ ｉｎ Ｎａｒａ）・要旨集、公開日：平成２６年９月２３日 刊行物等３：第１３回あわじしま感染症・免疫フォーラムｉｎ奈良（Ｔｈｅ １３ｔｈ Ａｗａｊｉ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｆｏｒｕｍ ｏｎ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ ａｎｄ Ｉｍｍｕｎｉｔｙ ｉｎ Ｎａｒａ）・ポスター、公開日：平成２６年９月２３日

本発明は、免疫分野に関する。より特定すると、新規Ｔｈ１誘導性アジュバントおよびその用途に関する。

アジュバントとはワクチンの効果を上げるために添加されている免疫増強剤であり、近年の免疫学の発展により、そのアジュバントの作用機序が徐々に明らかにされている。最近では、アジュバントがもつ多彩な免疫制御の特性により感染症のみならず、アレルギー、ガン、自己免疫疾患の予防や治療への応用が期待されている。

これまで多くのワクチンアジュバントは抗体産生（液性免疫）を誘導することを主に開発されてきた。そのためアラムアジュバントをふくめた現行の多くのアジュバントはＴｈ２アジュバント（タイプＩＩアジュバント）と呼ばれる液性免疫誘導型のアジュバントである。しかしながらガンやアレルギーの予防や治療には液性免疫よりも細胞性免疫の誘導が重要であり、それらはＴｈ１アジュバント（タイプＩアジュバント）とよばれている（図９）。

現在まで多くのＴｈ１アジュバントの候補物質が報告されているが、最も有効と考えられているのがＣｐＧオリゴヌクレオチド（ＣｐＧ ＯＤＮ）である。ＣｐＧ ＯＤＮはガンや感染症のワクチンアジュバントとして有効であることが示されているが、現在はさらに効果的なＣｐＧ ＯＤＮが開発・改良が試みられている（非特許文献１および２）。効果的な改良型ＣｐＧ ＯＤＮが開発できれば、今まで以上にガンやアレルギーの治療へ応用される可能性がある。

Tougan, T. TLR9 adjuvants enhance immunogenicity and protective efficacy of the SE36/AHG malaria vaccine in nonhuman primate models. Hum Vaccin Immunother. 2013, 9(2):283-90. Kobiyama, K. et. al. Nonagonistic dectin-1 ligand transforms CpG into a multitask nanoparticulate TLR9 agonist. Proc Natl Acad Sci U S A. 2014, 111(8):3086-91.

本発明者らは、ＣｐＧ ＯＤＮとＳＴＩＮＧアゴニストの組み合わせによるＴｈ１応答の誘導、細胞傷害性Ｔ細胞の誘導および抗がん作用・抗アレルギー作用に関して解析を進めたところ、本発明の特定の組合せが、Ｔｈ１型免疫反応の誘導（図１Ａ）、ガンの予防・治療への応用（図５）およびアレルギーの予防・治療（図８）への応用に使用され得ることが見出された。そして、Ｉ型免疫反応（細胞性免疫）とＩＩ型免疫反応（液性免疫）のスイッチを可能にすることが判明した（図１１）。

本発明者らは、Ｋ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰが個々に有する問題を、Ｋ３ ＣｐＧおよび３’３’－ｃＧＡＭＰを組み合わせることによって克服しようと試みた。本発明者らは、免疫学的特徴、ワクチンアジュバントとしての効力、およびこの組み合わせの抗腫瘍免疫療法としての潜在能力、ならびにｉｎ ｖｉｔｒｏおよびｉｎ ｖｉｖｏにおける作用機序を調査した。ｉｎ ｖｉｔｒｏにおいて、Ｋ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰを組みあわせた効果を、ヒトおよびマウスＰＢＭＣを用いて分析した。さらに、この組み合わせの効果を、免疫化モデルを介して、免疫化の組み合わせの後に抗原特異的Ｔ細胞およびＢ細胞の応答の誘導を測定することによって、ｉｎ ｖｉｖｏにおいて分析した。最終的に、本発明者らは、組み合わせられたＫ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰがマウス腫瘍モデルにおける腫瘍の成長を抑制する能力を評価した。本発明者らの結果は、Ｋ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰの組み合わせが、強力な１型アジュバントおよびガンに対する有望な免疫治療剤を作製することを示す。

本発明者らはＣｐＧ ＯＤＮとＳＴＩＮＧアゴニストの組み合わせが、相乗的にＴｈ１型免疫応答を誘導すること（図１０）、ＳＴＩＮＧアゴニストによって副反応として誘導されるＩｇＥ産生を抑制すること、Ｔｈ１応答にはＭｙＤ８８シグナルとＳＴＩＮＧ－Ｉ型インターフェロンシグナルが必要であること、担ガンモデルマウスにおいて、ＣｐＧ ＯＤＮとＳＴＩＮＧアゴニストを同時に投与することによりｉｎ ｖｉｖｏで効果的にガン細胞の増殖を抑えること（図５）、さらにヒトの末梢血単核球（ＰＢＭＣ）を刺激し、Ｔｈ１応答の指標であるＩＦＮ－γを強力に誘導することを見いだした（図１Ａ）。

種々のＳＴＩＮＧアゴニストについても評価を行い、内因性のＳＴＩＮＧアゴニストである２’３’－ｃＧＡＭＰ、細菌由来である３’３’－ｃＧＡＭＰおよびｃ－ｄｉ－ＧＭＰ、さらに合成ＳＴＩＮＧアゴニストであるＤＭＸＡＡのすべてにおいてＣｐＧと共にマウスに投与することでＴｈ１型免疫反応の誘導が認められた。

これらの結果から、ＣｐＧ ＯＤＮによるＴＬＲ９シグナルとＳＴＩＮＧ－ Ｉ型インターフェロンシグナルの組み合わせは強力なＴｈ１型免疫反応を誘導する重要なシグナルであることが明らかとなり、ヒトにおいても同様な効果が認められることが示唆された。これらをアジュバントとして使用することにより従来は困難であったガンやアレルギーのワクチン療法が可能になると考えられる。

したがって、本発明はＣｐＧ ＯＤＮと他の核酸アジュバント（ＳＴＩＮＧアゴニスト）の組み合わせによる、従来よりも効果的なＴｈ１アジュバントの誘導方法、さらにガンやアレルギーへの新規治療法を提供する。本発明はＣｐＧ ＯＤＮとＳＴＩＮＧアゴニストの組み合わせによるＴｈ１応答の誘導、細胞傷害性Ｔ細胞の誘導および抗ガン作用・抗アレルギー作用に関するシグナル伝達系の因子またはその発現産物あるいはそのフラグメントまたは誘導体など、アジュバントの組み合わせによりにより誘導されるＴｈ１応答を識別するためのマーカー、検出剤、阻害剤、およびガンやアレルギーを予防または治療するための組成物に関する。

このように、ＴＬＲ９およびＩＦＮ遺伝子の刺激剤（ＳＴＩＮＧ）に対するアゴニスト（ＳＴＩＮＧアゴニストまたはＳＴＩＮＧリガンド）は、ワクチンアジュバントとして機能し得る。しかしながら、現在利用可能なＣｐＧ ＯＤＮ（Ｋ／Ｂ型）は、ＩＦＮを弱く誘導し、ＳＴＩＮＧアゴニストは、２型免疫応答を誘導し、潜在的な治療的適用を制限する。本発明では、本発明者らは、ＴＬＲ９－アゴニストとＳＴＩＮＧ－アゴニストとの間の強力な相乗作用を示すことを見出した。それらを組み合わせて、効果的な１型アジュバントおよび抗ガン剤を作製することに成功した。ｉｎ ｖｉｔｒｏでの本発明者らによる研究は、結果的にＮＫ細胞のＩＦＮγ（ＩＩ型ＩＦＮ）の産生が生じるＣｐＧ ＯＤＮ（例えば、Ｋ３）とＳＴＩＮＧアゴニスト（例えば、ｃＧＡＭＰ）との間の相乗効果が、ＩＬ－１２およびＩ型ＩＦＮの同時作用に起因し、ＩＲＦ３／７、ＳＴＩＮＧ、およびＭｙＤ８８によって別個に制御されることを示唆する。ｉｎ ｖｉｖｏでの本発明者らの免疫化モデルは、高い抗原特異性のＩｇＧ２ｃ抗体応答およびＴ細胞由来ＩＦＮγの産生に加えて、ＣＤ８^＋Ｔ細胞応答の促進によって例示されるように、ｃＧＡＭＰとＣｐＧ ＯＤＮとの組み合わせが、強くＴｈ１型応答を誘導することが可能な強力な１型アジュバントとして機能することを明らかにした。本発明者らのマウス腫瘍モデルにおいて、ＣｐＧ ＯＤＮおよびｃＧＡＭＰをともに腫瘍内注射することによって、単独での処置と比較して腫瘍サイズが顕著に減少し、ＣｐＧ ＯＤＮおよびｃＧＡＭＰは抗原を含まない抗ガン剤として機能した。したがって、ＣｐＧ ＯＤＮおよびＳＴＩＮＧアゴニストの組み合わせは、強力なＩＩ型ＩＦＮ誘導剤として治療的適用を提供する。したがって、本発明は以下を提供する。
＜「組み合わせ」に着目した発明シリーズ＞
（１）ＣｐＧオリゴヌクレオチドとＳＴＩＮＧアゴニストの組合せ物。
（２）Ｉ型アジュバントとして用いるためのものである、項目１に記載の組合せ物。
（３）前記ＳＴＩＮＧアゴニストのＩｇＥ誘発作用を抑制するためのものである、項目１または２に記載の組合せ物。
（４）前記ＣｐＧオリゴヌクレオチドは、Ｋ／Ｂ型オリゴヌクレオチドである、項目１～３のいずれか１項に記載の組合せ物。
（５）前記ＣｐＧオリゴヌクレオチドは、Ｋ３ ＣｐＧ（配列番号１＝5’-atcgactatcgagagttctc-3’）、ＣｐＧ１８２６（配列番号２＝5’-tccatgacgttcctgacgtt-3’）、およびＤ３５ ＣｐＧ（配列番号３＝5’-ggtgcatcgatgcagggggg-3’）からなる群より選択されるＣｐＧオリゴヌクレオチドである、項目１～４のいずれか１項に記載の組合せ物。
（６）前記ＳＴＩＮＧアゴニストは、ｃＧＡＭＰ、３’３’－ｃＧＡＭＰ、ｃ－ｄｉ－ＧＡＭＰ、ｃ－ｄｉ－ＡＭＰ、２’３’－ｃＧＡＭＰ、およびＤＭＸＡＡ、から選択されるＳＴＩＮＧアゴニストである、項目１～５のいずれか１項に記載の組合せ物。
（７）抗がん剤として用いるためのものである、項目１～６のいずれか１項に記載の組合せ物。
（８）前記抗がん剤は、リンパ腫、およびメラノーマから選択されるがんを対象とする、項目７に記載の組合せ物。
（９）ＩＩ型免疫応答を減少または消失させ、Ｉ型免疫応答を発現または強化するためのものである、項目１～８のいずれか１項に記載の組合せ物。
（１０）インターフェロンγ（ＩＦＮ－γ）の誘導のためのものである、項目１～９のいずれか１項に記載の組合せ物。
（１１）ワクチンアジュバントとして用いるためのものである、項目１～１０のいずれか１項に記載の組合せ物。
（Ａ１）有効量のＣｐＧオリゴヌクレオチドとＳＴＩＮＧアゴニストとを組み合せて被験体に投与する工程を包含する、該被験体を処置または予防するための方法。
（Ａ２）前記組み合わせはＩ型アジュバントとして用いられる、項目Ａ１に記載の方法。
（Ａ３）前記ＣｐＧオリゴヌクレオチドは、前記ＳＴＩＮＧアゴニストのＩｇＥ誘発作用を抑制するために有効な量で提供される、項目Ａ１またはＡ２に記載の方法。
（Ａ４）前記ＣｐＧオリゴヌクレオチドは、Ｋ／Ｂ型オリゴヌクレオチドである、項目Ａ１～Ａ３のいずれか１項に記載の方法。
（Ａ５）前記ＣｐＧオリゴヌクレオチドは、Ｋ３ ＣｐＧ（配列番号１＝5’-atcgactatcgagagttctc-3’）、ＣｐＧ１８２６（配列番号２＝5’-tccatgacgttcctgacgtt-3’）、およびＤ３５ ＣｐＧ（配列番号３＝5’-ggtgcatcgatgcagggggg-3’）からなる群より選択されるＣｐＧオリゴヌクレオチドである、項目Ａ１～Ａ４のいずれか１項に記載の方法。
（Ａ６）前記ＳＴＩＮＧアゴニストは、ｃＧＡＭＰ、３’３’－ｃＧＡＭＰ、ｃ－ｄｉ－ＧＡＭＰ、ｃ－ｄｉ－ＡＭＰ、２’３’－ｃＧＡＭＰ、およびＤＭＸＡＡ、から選択されるＳＴＩＮＧアゴニストである、項目Ａ１～Ａ５のいずれか１項に記載の方法。
（Ａ７）前記処置または予防は、がんを対象とするものである、項目Ａ１～Ａ６のいずれか１項に記載の方法。
（Ａ８）前記がんは、リンパ腫およびメラノーマから選択される、項目Ａ７に記載の方法。
（Ａ９）前記処置または予防により、ＩＩ型免疫応答を減少または消失させ、Ｉ型免疫応答を発現または強化される、項目Ａ１～Ａ８のいずれか１項に記載の方法。
（Ａ１０）前記処置または予防により、インターフェロンγ（ＩＦＮ－γ）が誘導される、項目Ａ１～Ａ９のいずれか１項に記載の方法。
（Ａ１１）前記組み合わせはワクチンアジュバントとして用いられる、項目Ａ１～Ａ１０のいずれか１項に記載の方法。
＜ＳＴＩＮＧアゴニスト自体のＩ型アジュバント製剤としての用途を強調した発明シリーズ＞
（１２）ＳＴＩＮＧアゴニストを含む、Ｉ型アジュバントとして用いるための組成物であって、該ＳＴＩＮＧアゴニストはＣｐＧオリゴヌクレオチドとともに投与されることを特徴とする、組成物。
（１３）項目２～１１のいずれかまたは複数の特徴を有する、項目１２に記載の組成物。（Ａ１２）ＳＴＩＮＧアゴニストのＩ型アジュバント効果を発揮するための方法であって、該ＳＴＩＮＧアゴニストをＣｐＧオリゴヌクレオチドとともに投与する工程を包含する、方法。
（Ａ１３）項目２～１１またはＡ２～Ａ１１のいずれかまたは複数の特徴を有する、項目Ａ１２に記載の方法。
＜ＳＴＩＮＧアゴニストのＣｐＧに対するＩ型アジュバント製剤増強効果を強調した発明シリーズ＞
（１４）ＳＴＩＮＧアゴニストを含む、ＣｐＧオリゴヌクレオチドのＩ型アジュバントの作用増強剤。
（１５）項目２～１１のいずれかまたは複数の特徴を有する、項目１４に記載の作用増強剤。
（Ａ１４）ＣｐＧオリゴヌクレオチドのＩ型アジュバントの作用を増強する方法であって、該ＣｐＧオリゴヌクレオチドを、ＳＴＩＮＧアゴニストとともに投与する工程を包含する、方法。
（Ａ１５）項目２～１１またはＡ２～Ａ１１のいずれかまたは複数の特徴を有する、項目Ａ１４に記載の方法。
＜ＳＴＩＮＧアゴニストの抗がん剤としての側面を強調した発明シリーズ＞
（１６）ＳＴＩＮＧアゴニストを含む抗がん剤であって、該ＳＴＩＮＧアゴニストはＣｐＧオリゴヌクレオチドとともに投与されることを特徴とする、抗がん剤。
（１７）項目２～１１のいずれかまたは複数の特徴を有する、項目１６に記載の抗がん剤。
（Ａ１６）がんを処置または予防するための方法であって、該方法は：
ＳＴＩＮＧアゴニストを含む抗がん剤をＣｐＧオリゴヌクレオチドとともに投与する工程を包含する、方法。
（Ａ１７）項目２～１１またはＡ２～Ａ１１のいずれかまたは複数の特徴を有する、項目Ａ１６に記載の方法。
＜ＣｐＧオリゴヌクレオチドの抗がん剤としての側面を強調した発明シリーズ＞
（１８）ＣｐＧオリゴヌクレオチドを含む抗がん剤であって、該ＣｐＧオリゴヌクレオチドはＳＴＩＮＧアゴニストとともに投与されることを特徴とする、抗がん剤。
（１９）項目２～１１のいずれかまたは複数の特徴を有する、項目１８に記載の抗がん剤。
（Ａ１８）がんを処置または予防するための方法であって、該方法は、ＣｐＧオリゴヌクレオチドを含む抗がん剤をＳＴＩＮＧアゴニストとともに投与する工程を包含する、方法。
（Ａ１９）項目２～１１またはＡ２～Ａ１１のいずれかまたは複数の特徴を有する、項目Ａ１８に記載の方法。
＜ＣｐＧによる、ＳＴＩＮＧアゴニストのアレルギー（ＩｇＥ）誘発作用抑制を強調したクレームシリーズ＞
（２０）ＣｐＧオリゴヌクレオチドを含む、ＳＴＩＮＧアゴニストのＩｇＥ誘発作用を低減または消失させるための組成物。
（２１）前記ＳＴＩＮＧアゴニストのアレルギー誘発作用が低減または消失される、項目２０に記載の組成物。
（２２）項目２～１１のいずれかまたは複数の特徴を有する、項目２０または２１に記載の組成物。
（Ａ２０）ＳＴＩＮＧアゴニストのＩｇＥ誘発作用を低減または消失させるための方法であって、該方法は、ＳＴＩＮＧアゴニストを用いる際に、ＣｐＧオリゴヌクレオチドを投与する工程を包含する、方法。
（Ａ２１）前記ＳＴＩＮＧアゴニストのアレルギー誘発作用が低減または消失される、項目Ａ２０に記載の方法。
（Ａ２２）項目２～１１またはＡ２～Ａ１１のいずれかまたは複数の特徴を有する、項目Ａ２０またはＡ２１に記載の方法。

本発明において、上述した１または複数の特徴は、明示された組み合わせに加え、さらに組み合わせて提供され得ることが意図される。

本発明のなおさらなる実施形態および利点は、必要に応じて以下の詳細な説明を読んで理解することにより、当業者に認識される。

本発明は、これまで困難であったＴｈ１型免疫反応を誘導する新規アジュバントとその誘導シグナルについての情報を提供する。現行のアジュバントの多くは抗体産生を誘導するＴｈ２アジュバントであるが、これらのアジュバントはガンやアレルギーのワクチン療法には不向きであった。さらに、ＳＴＩＮＧアゴニストは副反応としてＩｇＥを誘導するため、アレルギー性炎症を引き起こす恐れもある。しかしながら本発明では、二種類のアジュバンを組み合わせるだけでＩｇＥ誘導を抑えながら強力なＴｈ１アジュバント効果を誘導できる。また、ＤＭＸＡＡをはじめとするＳＴＩＮＧアゴニスト自体はアラムアジュバントと同様に液性免疫を活性化するＴｈ２アジュバントとして機能することから、ＳＴＩＮＧアゴニストをプラットホームとすることで、そのまま使用すれば従来型の液性免疫誘導型Ｔｈ２アジュバント、ＣｐＧ ＯＤＮと組み合わせれば強力な細胞性免疫誘導型Ｔｈ１アジュバントとして使用できる（図１１）。このように質の異なる疾患に対して使用できる汎用性の高いアジュバントは例がなく、次世代型のアジュバントとして技術的および経済的にも波及効果がある。

図１Ａは、各提供者のヒトＰＢＭＣ培養物の上清における産生されたＩＦＮγの濃度を示す。左から、アジュバントなし、Ｋ３ ＣｐＧ、Ｋ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰ、ｃＧＡＭＰを示す。縦軸は、培養物上清のＩＦＮγの濃度（ｎｇ／ｍｌ）を示す。Ｋ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰ（それぞれＴＬＲ９－アゴニストおよびＳＴＩＮＧ－アゴニスト）は、ＮＫ細胞によって相乗的に先天性ＩＦＮγの産生を誘発する。２人の健常な提供者由来のヒトＰＢＭＣを、Ｋ３ ＣｐＧ（１０μｇ／ｍｌ）、ｃＧＡＭＰ（１０μＭ）、またはＫ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰとともに２４時間インキュベートし、上清のＩＦＮγの濃度をＥＬＩＳＡによって測定した。データは、少なくとも２つの独立した実験の代表であり、２組の平均＋ＳＤで示される。^＊ｐ＜０．０５；^＊＊ｐ＜０．０１（Ｂｏｎｆｅｒｒｏｎｉの多重比較検定を含む一元分散分析）。 図１Ｂは、フローサイトメトリーによって分析した結果を示している。上の段から、アジュバントなし、Ｋ３ ＣｐＧ、Ｋ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰ、ｃＧＡＭＰを示す。左列のパネルの縦軸はＣＤ１６陽性ＣＤ５６陽性のナチュラルキラー細胞（ＮＫ細胞）の前方散乱（ＦＳＣ）強度を、横軸はＩＦＮγ－ＡＰＣの蛍光強度を示している。右列のパネルの縦軸はＣＤ８－ＰＥの蛍光強度を、横軸はＩＦＮγ－ＡＰＣの蛍光強度を示している。Ｋ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰ（それぞれＴＬＲ９－アゴニストおよびＳＴＩＮＧ－アゴニスト）は、ＮＫ細胞によって相乗的に先天性ＩＦＮγの産生を誘発する。３人の健常な提供者由来のヒトＰＢＭＣをＫ３ ＣｐＧ、ｃＧＡＭＰ、またはＫ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰで１６時間刺激し、最後の４時間はブレフェルジンＡの存在下で刺激した。刺激後、細胞を、ＩＦＮγ産生細胞を検出するためにフローサイトメトリーによって分析した。グラフは、ＩＦＮγ産生ＣＤ３^＋ＣＤ８^＋Ｔ細胞、ＣＤ３^＋ＣＤ８^－Ｔ細胞（ＣＤ４^＋Ｔ細胞を含む）およびＣＤ３^－ＣＤ５６^＋ＣＤ１６^＋ＮＫ細胞のパーセンテージを示している。 図１Ｃは、中和抗体で処置した場合の各提供者のヒトＰＢＭＣ培養物の上清における産生されたＩＦＮγの濃度を示す。左の群から、アジュバントなし、Ｋ３ ＣｐＧ、Ｋ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰおよびｃＧＡＭＰを示す。各群の左から、アイソタイプコントロール、α－Ｉ型ＩＦＮ、α－ＩＬ－１２／２３ｐ４０、α－Ｉ型ＩＦＮ＋α－ＩＬ－１２／２３ｐ４０を示す。Ｋ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰ（それぞれＴＬＲ９－アゴニストおよびＳＴＩＮＧ－アゴニスト）は、ＮＫ細胞によって相乗的に先天性ＩＦＮγの産生を誘発する。２人の健常な提供者由来のヒトＰＢＭＣを、Ｋ３ ＣｐＧ、ｃＧＡＭＰ、またはＫ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰでの２４時間の刺激の前に３０秒、５μｇ／ｍｌのアイソタイプコントロール、Ｉ型ＩＦＮ中和抗体、ＩＬ－１２／２３ｐ４０中和抗体またはＩ型ＩＦＮ＋ＩＬ－１２／２３ｐ４０中和抗体で処置した。ＩＦＮγの産生をＥＬＩＳＡにより測定した。データは、少なくとも２つの独立した実験の代表であり、２組の平均＋ＳＤで示される。^＊ｐ＜０．０５；^＊＊ｐ＜０．０１（Ｂｏｎｆｅｒｒｏｎｉの多重比較検定を含む一元分散分析）。 図２Ａは、マウスＰＢＭＣ培養物の上清における産生されたＩＦＮγの濃度を示す。左の群から、アジュバントなし、Ｋ３ ＣｐＧ、Ｋ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰおよびｃＧＡＭＰを示す。各群の左側が野生型マウス由来、右側がＩＲＦ３／７ＤＫＯマウス由来を示す。縦軸は、培養物上清のＩＦＮγの濃度（ｎｇ／ｍｌ）を示す。Ｋ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰの組み合わせは、ＩＲＦ３／７依存的な態様でのｍＰＢＭＣにおける先天性ＩＦＮγの相乗的な誘導、および樹状細胞によるＩＦＮαおよびＩＬ－１２の産生を引き起こす。野生型マウスおよびＩＲＦ３／７ ＤＫＯマウス由来のマウスＰＢＭＣをＫ３ ＣｐＧ、ｃＧＡＭＰ、またはＫ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰで２４時間刺激し、ＩＦＮγの産生をＥＬＩＳＡにより測定した。データは、少なくとも２つの独立した実験の代表であり、２組の平均＋ＳＥＭで示される。^＊＊＊ｐ＜０．００１；（Ｓｔｕｄｅｎｔのｔ検定）。 図２Ｂは、ＤＭ－ＤＣより産生されたＩＬ－１２ｐ４０の濃度を示す。左から、アジュバントなし、Ｋ３ ＣｐＧ、Ｋ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰ、ｃＧＡＭＰを示す。縦軸は、ＩＬ－１２ｐ４０の濃度（ｎｇ／ｍｌ）を示す。Ｋ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰの組み合わせは、ＩＲＦ３／７依存的な態様でのｍＰＢＭＣにおける先天性ＩＦＮγの相乗的な誘導、および樹状細胞によるＩＦＮαおよびＩＬ－１２の産生を引き起こす。ＧＭ－ＤＣを、Ｋ３ ＣｐＧ、ｃＧＡＭＰ、またはＫ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰを２４時間刺激し、ＩＬ－１２ｐ４０の産生をＥＬＩＳＡにより測定した。データは、少なくとも２つの独立した実験の代表であり、２組の平均＋ＳＤで示される。^＊＊＊ｐ＜０．００１；（Ｂｏｎｆｅｒｒｏｎｉの多重比較検定を含む一元分散分析）。 図２Ｃは、ＦＬ－ＤＣより産生されたＩＬ－１２ｐ４０の濃度を示す。左から、アジュバントなし、Ｋ３ ＣｐＧ、Ｋ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰ、ｃＧＡＭＰを示す。縦軸は、ＩＬ－１２ｐ４０の濃度（ｎｇ／ｍｌ）を示す。Ｋ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰの組み合わせは、ＩＲＦ３／７依存的な態様でのｍＰＢＭＣにおける先天性ＩＦＮγの相乗的な誘導、および樹状細胞によるＩＦＮαおよびＩＬ－１２の産生を引き起こす。ＦＬ－ＤＣをＫ３ ＣｐＧ、ｃＧＡＭＰ、またはＫ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰで２４時間刺激し、ＩＬ－１２ｐ４０の産生をＥＬＩＳＡにより測定した。データは、少なくとも２つの独立した実験の代表であり、２組の平均＋ＳＤで示される。^＊＊＊ｐ＜０．００１；（Ｂｏｎｆｅｒｒｏｎｉの多重比較検定を含む一元分散分析）。 図２Ｄは、ＦＬ－ＤＣより産生されたＩＬ－１２ｐ４０の濃度を示す。左から、アジュバントなし、Ｋ３ ＣｐＧ、Ｋ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰ、ｃＧＡＭＰを示す。縦軸は、ＩＦＮαの濃度（ｎｇ／ｍｌ）を示す。Ｋ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰの組み合わせは、ＩＲＦ３／７依存的な態様でのｍＰＢＭＣにおける先天性ＩＦＮγの相乗的な誘導、および樹状細胞によるＩＦＮαおよびＩＬ－１２の産生を引き起こす。ＦＬ－ＤＣをＫ３ ＣｐＧ、ｃＧＡＭＰ、またはＫ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰで２４時間刺激し、ＩＦＮαの産生をＥＬＩＳＡにより測定した。データは、少なくとも２つの独立した実験の代表であり、２組の平均＋ＳＤで示される。^＊＊＊ｐ＜０．００１；（Ｂｏｎｆｅｒｒｏｎｉの多重比較検定を含む一元分散分析）。 図３Ａは、マウスＰＢＭＣ培養物の上清における産生されたＩＦＮγの濃度を示す。左から、アジュバントなし、Ｋ３ ＣｐＧ、Ｋ３ ＣｐＧ＋３’３’－ｃＧＡＭＰ、３’３’－ｃＧＡＭＰ、Ｋ３ ＣｐＧ＋ｃ－ｄｉ－ＧＭＰ、ｃ－ｄｉ－ＧＭＰ、Ｋ３ ＣｐＧ＋２’３’－ｃＧＡＭＰ、２’３’－ｃＧＡＭＰを示す。縦軸は、培養物上清のＩＦＮγの濃度（ｎｇ／ｍｌ）を示す。ＴＬＲ９－アゴニストおよびＳＴＩＮＧ－アゴニストの組み合わせは、ｉｎ ｖｏｖｏで２型免疫応答も抑制する強力な１型アジュバントである。マウスＰＢＭＣを、Ｋ３ ＣｐＧ（１０μｇ／ｍｌ）、ＳＴＩＮＧ－アゴニスト（１０μＭ）、またはＫ３ ＣｐＧ＋ＳＴＩＮＧ－アゴニストで２４時間刺激し、ＩＦＮγの産生をＥＬＩＳＡにより測定した。データは、少なくとも２つの独立した実験の代表であり、２組の平均＋ＳＥＭで示される。 図３Ｂは、ＯＶＡで免疫化したマウスにおける血清の抗ＯＶＡ抗体力価を示す。左のパネルがＩｇＧ２ｃの抗ＯＶＡ抗体力価、右のパネルがＩｇＧ１の抗ＯＶＡ抗体力価を示す。左から、生理食塩水、Ｋ３ ＣｐＧ、Ｋ３ ＣｐＧ＋３’３’－ｃＧＡＭＰ、３’３’－ｃＧＡＭＰ、Ｋ３ ＣｐＧ＋ｃ－ｄｉ－ＧＭＰ、ｃ－ｄｉ－ＧＭＰ、Ｋ３ ＣｐＧ＋２’３’－ｃＧＡＭＰ、２’３’－ｃＧＡＭＰ、ＤＭＸＡＡを示す。ＴＬＲ９－アゴニストおよびＳＴＩＮＧ－アゴニストの組み合わせは、ｉｎ ｖｉｖｏで２型免疫応答も抑制する強力な１型アジュバントである。マウスを、Ｋ３ ＣｐＧ（１０μｇ）、３’３’／２’３’－ｃＧＡＭＰ（１μｇ）、ｃ－ｄｉ－ＧＭＰ（１μｇ）、ＤＭＸＡＡ（５０μｇ）またはＫ３＋３’３’／２’３’－ｃＧＡＭＰ／ｃ－ｄｉ－ＧＭＰ／ＤＭＸＡＡを含むかまたは含まないＯＶＡ（１０μｇ）で、筋肉内で０および１０日目に免疫化した。１７日目に、ＯＶＡ特異的血清ＩｇＧ１およびＩｇＧ２ｃをＥＬＩＳＡにより測定した。データは、少なくとも２つの独立した実験の代表であり、２組の平均＋ＳＤで示される。^＊ｐ＜０．０５；^＊＊ｐ＜０．０１（Ｍａｎｎ－ＷｈｉｔｎｅｙのＵ検定）。 図３Ｂは、ＯＶＡで刺激した脾臓細胞により産生されるＩＦＮγおよびＩＬ－１３の濃度を示す。左のパネルの縦軸がＩＦＮγの濃度（ｎｇ／ｍｌ）、右のパネルの縦軸がＩＬ－１３の濃度（ｎｇ／ｍｌ）を示す。左から、生理食塩水、Ｋ３ ＣｐＧ、Ｋ３ ＣｐＧ＋３’３’－ｃＧＡＭＰ、３’３’－ｃＧＡＭＰ、Ｋ３ ＣｐＧ＋ｃ－ｄｉ－ＧＭＰ、ｃ－ｄｉ－ＧＭＰ、Ｋ３ ＣｐＧ＋２’３’－ｃＧＡＭＰ、２’３’－ｃＧＡＭＰ、ＤＭＸＡＡを示す。ＴＬＲ９－アゴニストおよびＳＴＩＮＧ－アゴニストの組み合わせは、ｉｎ ｖｏｖｏで２型免疫応答も抑制する強力な１型アジュバントである。（Ｂ－Ｃ）マウスを、Ｋ３ ＣｐＧ（１０μｇ）、３’３’／２’３’－ｃＧＡＭＰ（１μｇ）、ｃ－ｄｉ－ＧＭＰ（１μｇ）、ＤＭＸＡＡ（５０μｇ）またはＫ３＋３’３’／２’３’－ｃＧＡＭＰ／ｃ－ｄｉ－ＧＭＰ／ＤＭＸＡＡを含むかまたは含まないＯＶＡ（１０μｇ）で、筋肉内で０および１０日目に免疫化した。脾臓細胞をＯＶＡ（１０μｇ／ｍｌ）タンパク質で４８時間刺激した。ＩＦＮγおよびＩＬ－１３の産生をＥＬＩＳＡにより測定した。データは、少なくとも２つの独立した実験の代表であり、２組の平均＋ＳＤで示される。^＊ｐ＜０．０５；^＊＊ｐ＜０．０１（Ｍａｎｎ－ＷｈｉｔｎｅｙのＵ検定）。 図４Ａは、ＯＶＡで免疫化した各マウスにおける血清の抗ＯＶＡ抗体力価を示す。左のパネルがＩｇＧ２ｃの抗ＯＶＡ抗体力価、右のパネルがＩｇＧ１の抗ＯＶＡ抗体力価を示す。左の群から、Ｋ３ ＣｐＧ、Ｋ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰ、ｃＧＡＭＰを示す。各群の左から野生型、Ｔｍｅｍ１７３ｇｔ、ＭｙＤ８８ ＫＯ、ＩＲＦ３／７ ＤＫＯ、ＩＦＮＡＲ ＫＯマウスを示す。抗原特異的ＩＦＮγの誘導におけるＫ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰの組み合わせの相乗効果は、ＩＲＦ３／７、ＳＴＩＮＧ、ＭｙＤ８８、ＩＬ－１２およびＩ型ＩＦＮシグナル伝達に依存している。野生型、Ｔｍｅｍ１７３ｇｔ、ＩＲＦ３／７ ＤＫＯ、ＭｙＤ８８ ＫＯおよびＩＦＮＡＲ ＫＯ Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウスを、ＯＶＡおよびＫ３ ＣｐＧ、ｃＧＡＭＰ、またはＫ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰで、０および１０日目に筋肉内経路を介して免疫化した。１７日目に、ＯＶＡ特異的血清ＩｇＧ２ｃおよびＩｇＧ１をＥＬＩＳＡにより測定した。データは、少なくとも２つの独立した実験の代表であり、２組の平均＋ＳＤで示される。^＊ｐ＜０．０５；^＊＊ｐ＜０．０１；^＊＊＊ｐ＜０．００１（Ｂｏｎｆｅｒｒｏｎｉの多重比較検定を含む一元分散分析）。 図４Ｂは、ＯＶＡで刺激した脾臓細胞により産生されるＩＦＮγおよびＩＬ－１３の濃度を示す。左のパネルの縦軸がＩＦＮγの濃度（ｎｇ／ｍｌ）、右のパネルの縦軸がＩＬ－１３の濃度（ｎｇ／ｍｌ）を示す。左の群から、Ｋ３ ＣｐＧ、Ｋ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰ、ｃＧＡＭＰを示す。各群の左から野生型、Ｔｍｅｍ１７３ｇｔ、ＭｙＤ８８ ＫＯ、ＩＲＦ３／７ ＤＫＯ、ＩＦＮＡＲ ＫＯマウスを示す。抗原特異的ＩＦＮγの誘導におけるＫ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰの組み合わせの相乗効果は、ＩＲＦ３／７、ＳＴＩＮＧ、ＭｙＤ８８、ＩＬ－１２およびＩ型ＩＦＮシグナル伝達に依存している。脾臓細胞をＯＶＡで４８時間刺激した。ＩＦＮγの産生をＥＬＩＳＡにより測定した。データは、少なくとも２つの独立した実験の代表であり、２組の平均＋ＳＤで示される。^＊ｐ＜０．０５；^＊＊ｐ＜０．０１；^＊＊＊ｐ＜０．００１（Ｂｏｎｆｅｒｒｏｎｉの多重比較検定を含む一元分散分析）。 図４Ｃは、ＯＶＡで免疫化したＣ５７ＢＬ／６Ｊマウスにおける血清の抗ＯＶＡ抗体力価を示す。左のパネルがＩｇＧ２ｃの抗ＯＶＡ抗体力価、右のパネルがＩｇＧ１の抗ＯＶＡ抗体力価を示す。左の群から、Ｋ３ ＣｐＧ、Ｋ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰ、ｃＧＡＭＰを示す。各群の左側がＩＬ－１２ｐ４０＋／－を示し、右側がＩＬ－１２ｐ４０ ＫＯを示す。抗原特異的ＩＦＮγの誘導におけるＫ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰの組み合わせの相乗効果は、ＩＲＦ３／７、ＳＴＩＮＧ、ＭｙＤ８８、ＩＬ－１２およびＩ型ＩＦＮシグナル伝達に依存している。（Ｃ）ＩＬ－１２ｐ４０＋／－および－／－Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウスを、ＯＶＡおよびＫ３ ＣｐＧ、ｃＧＡＭＰ、またはＫ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰで、０および１０日目に筋肉内経路を介して免疫化した。１７日目に、ＯＶＡ特異的血清ＩｇＧ２ｃおよびＩｇＧ１をＥＬＩＳＡにより測定した。データは、少なくとも２つの独立した実験の代表であり、２組の平均＋ＳＤで示される。 図４Ｄは、ＯＶＡで刺激した脾臓細胞により産生されるＩＦＮγおよびＩＬ－１３の濃度を示す。左のパネルの縦軸がＩＦＮγの濃度（ｎｇ／ｍｌ）、右のパネルの縦軸がＩＬ－１３の濃度（ｎｇ／ｍｌ）を示す。左の群から、Ｋ３ ＣｐＧ、Ｋ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰ、ｃＧＡＭＰを示す。各群の左側がＩＬ－１２ｐ４０＋／－を示し、右側がＩＬ－１２ｐ４０ ＫＯを示す。抗原特異的ＩＦＮγの誘導におけるＫ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰの組み合わせの相乗効果は、ＩＲＦ３／７、ＳＴＩＮＧ、ＭｙＤ８８、ＩＬ－１２およびＩ型ＩＦＮシグナル伝達に依存している。（Ｄ）脾臓細胞を、ＯＶＡタンパク質で４８時間刺激した。ＩＦＮγの産生をＥＬＩＳＡにより測定した。データは、少なくとも２つの独立した実験の代表であり、２組の平均＋ＳＤで示される。^＊ｐ＜０．０５（Ｍａｎｎ－ＷｈｉｔｎｅｙのＵ検定）。 図５は、ＥＧ－７マウス腫瘍モデルにおける腫瘍の成長を測定しグラフを示す。縦軸が腫瘍サイズ（ｃｍ^３）、横軸がＥＧ－７リンパ腫細胞の接種後の日数を示す。Ｋ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰの組み合わせは、ＥＧ－７マウス腫瘍モデルにおいて腫瘍を効率的に抑制する。マウスは、１×１０^６個のＥＧ－７リンパ腫細胞（１００μｌのＰＢＳ中）を０日目に皮下注射された。７および１０日目に、マウスは、ＰＢＳ（ｎ＝８）、Ｋ３ ＣｐＧ（ｎ＝８）、ｃＧＡＭＰ（ｎ＝８）、またはＫ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰ（ｎ＝９）の腫瘍内注射を受け、マウスを腫瘍の成長について２２日間モニターした。データは、２つの独立した実験の代表である。^＊ｐ＜０．０５；^＊＊ｐ＜０．０１（Ｍａｎｎ－ＷｈｉｔｎｅｙのＵ検定）。 図６は、ＯＶＡ２５４またはＯＶＡ３２３で刺激した脾臓細胞により産生されるＩＦＮγの濃度を示す。左の群から、生理食塩水、Ｋ３ ＣｐＧ、Ｋ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰ、ｃＧＡＭＰを示す。縦軸は、ＩＦＮγの濃度（ｎｇ／ｍｌ）を示す。をＫ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰの組み合わせは、ｉｎ ｖｉｖｏにおける強力なＣＤ８^＋Ｔ細胞の活性を誘発する。マウスを、ＯＶＡのみ（ｎ＝２）、あるいはＯＶＡおよびＫ３ ＣｐＧ（ｎ＝４）、ｃＧＡＭＰ（ｎ＝４）またはＫ３＋ｃＧＡＭＰ（ｎ＝４）のいずれかで、筋肉内経路を介して０および１０日目に免疫化した。１７日目に、脾臓細胞を単離し、ＭＨＣクラスＩ（ＯＶＡ２５７）またはＭＨＣクラスＩＩ（ＯＶＡ３２３）に特異的なＯＶＡまたはＯＶＡペプチドで４８時間刺激した。ＩＦＮγの産生をＥＬＩＳＡにより測定した。データは、少なくとも２つの独立した実験の代表である。^＊ｐ＜０．０５；^＊＊ｐ＜０．０１（Ｓｔｕｄｅｎｔのｔ検定）。 図７は、細胞内ＩＦＮγ染色実験のためのゲーティング手法を示している。初めに、ＣＤ３^＋／－細胞を、リンパ球ゲートからゲーティングした。次に、ＣＤ３^＋集団から、ＩＦＮγ^＋ＣＤ８^＋／－細胞をゲーティングし、結果に示す。ＮＫ細胞を、ＣＤ３^－ＣＤ５６^＋ＣＤ１６^＋集団からゲーティングし、ＩＦＮγ^＋ＮＫ細胞を結果に示す。 図８は、ＯＶＡで免疫化したマウスにおける血清のＩｇＥの濃度を示す。左から、生理食塩水、Ｋ３ ＣｐＧ、ｃＧＡＭＰ、Ｋ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰを示す。縦軸は、ＩｇＥの濃度を示す。ＳＴＩＮＧアゴニストはＩｇＥを誘導するが、ＣｐＧと組み合わせることにより、これを抑制する。 図９は、細胞性免疫および液性免疫の概要を示す。これまで多くのワクチンアジュバントは、抗体産生（液性免疫）を誘導することを主に開発されてきた。そのためアラムアジュバントを含めた現行の多くのアジュバントは、Ｔｈ２アジュバント（ＩＩ型アジュバント）と呼ばれる液性免疫誘導型のアジュバントである。しかしながらガンやアレルギーの予防や治療には液性免疫よりも細胞性免疫の誘導が重要であり、それらはＴｈ１アジュバント（Ｉ型アジュバント）とよばれている。 図１０は、Ｉ型アジュバントの指標であるＩｇＧ２ｃおよびＩＦＮγの産生を示す。左のパネルは、ＯＶＡで免疫化したマウスにおける血清の抗ＯＶＡ ＩｇＧ２ｃ力価を示している。左から、生理食塩水、Ｋ３ ＣｐＧ、ｃＧＡＭＰ、Ｋ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰを示す。右のパネルは、ＯＶＡで刺激するか、またはＯＶＡで刺激しない場合のＩＦＮγの産生を示す。左の群から、生理食塩水、Ｋ３ ＣｐＧ、ｃＧＡＭＰ、Ｋ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰを示す。各群の左側はＯＶＡで刺激しなかった場合、右側はＯＶＡで刺激した場合の産生されたＩＦＮγを示す。縦軸は、ＩＦＮγの濃度（ｎｇ／ｍｌ）を示す。ＣｐＧ ＯＤＮおよびＳＴＩＮＧアゴニストの組み合わせは、相乗的にＴｈ１型免疫応答を誘導する。 図１１は、ＳＴＩＮＧアゴニストをプラットホームにした新規次世代アジュバントの概要を示す。ＤＭＸＡＡをはじめとするＳＴＩＮＧアゴニスト自体はアラムアジュバントと同様に液性免疫を活性化するＴｈ２アジュバントとして機能することから、ＳＴＩＮＧアゴニストをプラットホームとすることで、そのまま使用すれば従来型の液性免疫誘導型Ｔｈ２アジュバント、ＣｐＧ ＯＤＮと組み合わせれば強力な細胞性免疫誘導型Ｔｈ１アジュバントとして使用できる。 図１２は、脾細胞におけるＣｐＧ１８２６と３’３’－ｃＧＡＭＰとの組み合わせまたはＤ３５ ＣｐＧと３’３’－ｃＧＡＭＰｃ－ｄｉ－ＧＭＰとの組み合わせのインターフェロンガンマ産生の相乗効果を示す図である。上段は、ＣｐＧ１８２６と３’３’－ｃＧＡＭＰとの組み合わせとの組み合わせ、下段は、Ｄ３５ ＣｐＧと３’３’－ｃＧＡＭＰｃ－ｄｉ－ＧＭＰとの組み合わせとの組み合わせを示す。それぞれｙ軸はインターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）の生成量（ｐｇ／ｍｌ）を示し、ｘ軸は左から刺激なし、ＣｐＧ１８２６と３’３’－ｃＧＡＭＰとの組み合わせまたはＤ３５ ＣｐＧと３’３’－ｃＧＡＭＰｃ－ｄｉ－ＧＭＰとの組み合わせ、および３’３’－ｃＧＡＭＰ単独を示す。

以下、本発明を最良の形態を示しながら説明する。本明細書の全体にわたり、単数形の表現は、特に言及しない限り、その複数形の概念をも含むことが理解されるべきである。従って、単数形の冠詞（例えば、英語の場合は「ａ」、「ａｎ」、「ｔｈｅ」など）は、特に言及しない限り、その複数形の概念をも含むことが理解されるべきである。また、本明細書において使用される用語は、特に言及しない限り、当該分野で通常用いられる意味で用いられることが理解されるべきである。したがって、他に定義されない限り、本明細書中で使用される全ての専門用語および科学技術用語は、本発明の属する分野の当業者によって一般的に理解されるのと同じ意味を有する。矛盾する場合、本明細書（定義を含めて）が優先する。

以下に本明細書において特に使用される用語の定義および／または基本的技術内容を適宜説明する。

本明細書において「ＣｐＧオリゴヌクレオチド」または「ＣｐＧオリゴデオキシヌクレオチド」、「ＣｐＧ ＯＤＮ」あるいは単に「ＣｐＧ」とは、交換可能に使用され、少なくとも１つのメチル化されていないＣＧジヌクレオチド配列を含む、ポリヌクレオチド、好ましくは、オリゴヌクレオチドをいう。少なくとも１つのＣｐＧモチーフを含むオリゴヌクレオチドは、複数のＣｐＧモチーフを含み得る。本明細書中で使用される場合、句「ＣｐＧモチーフ」とは、シトシンヌクレオチドと、それに続くグアノシンヌクレオチドを含む、オリゴヌクレオチドのメチル化されていないジヌクレオチド部分をいう。５－メチルシトシンもまた、シトシンの代わりに使用され得る。

ＣｐＧオリゴヌクレオチド（ＣｐＧ ＯＤＮ）は、免疫賦活性のＣｐＧモチーフを含有する、短い（約２０塩基対）、一本鎖の合成ＤＮＡ断片であって、Ｔｏｌｌ様受容体９（ＴＬＲ９）の強力なアゴニストであり、樹状細胞（ＤＣｓ）およびＢ細胞を活性化して、Ｉ型インターフェロン（ＩＦＮｓ）および炎症性サイトカインを産生させ（Ｈｅｍｍｉ， Ｈ．， ｅｔ ａｌ． Ｎａｔｕｒｅ ４０８， ７４０－７４５ （２０００）；Ｋｒｉｅｇ， Ａ．Ｍ． Ｎａｔｕｒｅ ｒｅｖｉｅｗｓ． Ｄｒｕｇ ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ ５， ４７１－４８４ （２００６）．）、細胞傷害性Ｔリンパ球（ＣＴＬ）反応を含む、Ｔｈ１型の液性および細胞性免疫反応のアジュバントとして作用する（Ｂｒａｚｏｌｏｔ Ｍｉｌｌａｎ， Ｃ．Ｌ．， Ｗｅｅｒａｔｎａ， Ｒ．， Ｋｒｉｅｇ， Ａ．Ｍ．， Ｓｉｅｇｒｉｓｔ， Ｃ．Ａ． ＆ Ｄａｖｉｓ， Ｈ．Ｌ． Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａ ９５， １５５５３－１５５５８ （１９９８）．；Ｃｈｕ， Ｒ．Ｓ．， Ｔａｒｇｏｎｉ， Ｏ．Ｓ．， Ｋｒｉｅｇ， Ａ．Ｍ．， Ｌｅｈｍａｎｎ， Ｐ．Ｖ． ＆ Ｈａｒｄｉｎｇ， Ｃ．Ｖ． Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ ｍｅｄｉｃｉｎｅ １８６， １６２３－１６３１ （１９９７））。そこで、ＣｐＧ ＯＤＮは、感染症、癌、喘息および花粉症に対して可能性のある免疫療法剤とみなされてきた（Ｋｒｉｅｇ， Ａ．Ｍ． Ｎａｔｕｒｅ ｒｅｖｉｅｗｓ． Ｄｒｕｇ ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ ５， ４７１－４８４ （２００６）；Ｋｌｉｎｍａｎ， Ｄ．Ｍ． Ｎａｔｕｒｅ ｒｅｖｉｅｗｓ． Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ ４， ２４９－２５８ （２００４））。

ＣｐＧオリゴデオキシヌクレオチド（ＣｐＧ ＯＤＮ）は、細菌ゲノムとの類似に起因する免疫賦活性の特徴を有する非メチル化ＣｐＧモチーフを含有する合成一本鎖ＤＮＡであり、特定の型の自然免疫細胞におけるＴＬＲ９によって認識される［Ｈａｒｔｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．（２０００）１６４：９４４－９５３；Ｗａｇｎｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｔｒｅｎｄｓ Ｉｍｍｕｎｏｌ．（２００４）２５：１－６］。リガンド結合の際、ＴＬＲ９は、アダプター分子ｍｙＤ８８を介してシグナルを伝達し、ＩＲＦ７依存性Ｉ型ＩＦＮおよびＮＦ－κＢ依存性サイトカインの産生をもたらす［Ｋｒｉｅｇ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔ． Ｒｅｖ． Ｄｒｕｇ Ｄｉｓｃｏｖ．（２００６）５：４７１－８４］。さらに、ｉｎ ｖｉｖｏにおいてＣｐＧ ＯＤＮは、ＡＰＣにおけるＣｐＧ ＯＤＮによって誘導されるサイトカインの型に起因して、Ｔｈ１型応答を誘導することが報告されている［Ｋｒｉｅｇ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔ． Ｒｅｖ． Ｄｒｕｇ Ｄｉｓｃｏｖ．（２００６）５：４７１－８４］。異なる型のＣｐＧ ＯＤＮの中で、Ｄ型ＣｐＧ ＯＤＮが、Ｉ型およびＩＩ型ＩＦＮの両方を強く誘導するが、Ｂ細胞活性化を誘導することができない［Ｋｒｉｅｇ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔ． Ｒｅｖ． Ｄｒｕｇ Ｄｉｓｃｏｖ．（２００６）５：４７１－８４；Ｋｌｉｎｍａｎ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔ． Ｒｅｖ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．（２００４）４：１－１０］。Ｋ型ＣｐＧ ＯＤＮ（Ｋ３ ＣｐＧ）は、Ｂ細胞の活性化を強く誘導して、ＩＬ－６および抗体の産生を生じさせ、他方で、それらは、Ｉ型およびＩＩ型ＩＦＮを弱く誘導するだけである。しかし、Ｄ型ＣｐＧ ＯＤＮは凝集を形成するため、Ｋ型 ＣｐＧのみが臨床的用途に利用可能である［Ｋｒｉｅｇ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔ． Ｒｅｖ． Ｄｒｕｇ Ｄｉｓｃｏｖ．（２００６）５：４７１－８４；Ｋｌｉｎｍａｎ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔ． Ｒｅｖ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．（２００４）４：１－１０］。

ＬＰＳまたは非メチル化ＣｐＧ ＤＮＡ（ＣｐＧ）（ＣｐＧ ＯＤＮ）などの病原体由来因子は、ＩＬ－１２およびＩ型またはＩＩ型ＩＦＮなどのサイトカインを産生する自然免疫細胞を刺激し、これはＴｈ１型応答および細胞性免疫を生じさせるのに役立つ［Ｋａｗａｉ ｅｔ ａｌ．， Ｉｍｍｕｎｉｔｙ．（２０１１）３４：６３７－６５０；Ｔｒｉｎｃｈｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ．， Ｉｍｍｕｎｏｌ．（２００７）７：１７９－１９０］。ＩＬ－１２は、ナイーブＣＤ４^＋Ｔ細胞に働き、Ｔｈ１の発生およびＩＦＮγの産生を駆動する［Ｓｅｄｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． Ｕ．Ｓ．Ａ．（１９９３）９０：１０１８８－９２；Ｈｓｉｅｈ ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ．（１９９３）２６０：５４７－５７９］。そして、ＩＦＮγ産生Ｔｈ１細胞は、１型免疫の誘導における主役であり、これは、高い食作用活性によって区別される［Ｓｐｅｌｌｂｅｒｇ ｅｔ ａｌ．， Ｃｌｉｎ． Ｉｎｆｅｃｔ． Ｄｉｓ．（２００１）９０５０９：７６－１０２；Ｍａｎｔｏｖａｎｉ ｅｔ ａｌ．， Ｃｕｒｒ． Ｏｐｉｎ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．（２０１０）２２：２３１－２３７］。さらに、Ｔｈ１細胞は、抗腫瘍免疫の発生において重要な役割を果たし、ＩＦＮγの産生を含む適切な活性化およびＣＴＬのエフェクター機能に役立つ［Ｈｕｎｇ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｅｘｐ． Ｍｅｄ．（１９９８）１８８：２３５７－６８； Ｖｅｓｅｌｙ ｅｔ ａｌ．， Ａｎｎｕ． Ｒｅｖ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．（２０１１）２９：２３５－２７１］。したがって、強いＴｈ１型応答を誘導し得る薬剤、ＣＴＬ、およびＮＫ細胞［Ｖｉｔａｌｅ ｅｔ ａｌ．， Ｅｕｒ． Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．（２０１４）４４：１５８２－１５９２］は、それらが細胞内病原体またはガンに対する効率的なワクチンアジュバントまたは免疫治療剤の開発において重大な役割を果たし得るため、すぐに要求される。

骨格修飾や周囲の配列の違いによりＤ／Ａ型，Ｋ／Ｂ型，Ｃ型、およびＰ型に分類される（Ｖｏｌｌｍｅｒ， Ｊ． ＆ Ｋｒｉｅｇ， Ａ．Ｍ． Ａｄｖａｎｃｅｄ ｄｒｕｇ ｄｅｌｉｖｅｒｙ ｒｅｖｉｅｗｓ ６１， １９５－２０４ （２００９）．）。Ｄ／Ａ型は主に形質細胞様樹状細胞（ｐｌａｓｍａｃｙｔｏｉｄ ｄｅｎｄｒｉｔｉｃ ｃｅｌｌ，「形質細胞様ＤＣ」または「ｐＤＣ」と称する）からのＩ型インターフェロンの産生，Ｋ／Ｂ型はＢ細胞の増殖とＩｇＭやＩＬ－６などの産生をそれぞれ誘導することが示唆されているＤ／Ａ型のＣｐＧ－ＤＮＡはＩＦＮ－α産生を強く誘導するが，ｐＤＣの成熟化誘導活性は低く，Ｂ細胞に直接的な免疫刺激活性を示さない。Ｋ／Ｂ型はＢ細胞に免疫刺激活性を示し，ｐＤＣの成熟化を強く促進し，ＩＬ－１２誘導能が高いのに対し，ＩＦＮ－α誘導能は低い。ＴＣＧの繰り返し配列を有しすべてがチオール化されているＣ型の配列では，ポリクローナルなＢ細胞活性化やｐＤＣによるＩＦＮ－α産生を誘導する。

Ｄ／Ａ型 ＣｐＧ ＯＤＮ（Ａ型、Ｄ型等とも呼ばれ、ＣｐＧ－Ａ ＯＤＮとも表示される）は、５’および３’末端にホスホロチオエート（ＰＳ）結合を、およびホスホジエステル（ＰＯ）のパリンドローム（回文構造）ＣｐＧ含有配列を中心に有するポリＧモチーフを特徴とするオリゴヌクレオチドである。５’および３’末端にホスホロチオエート（ＰＳ）の存在故、細胞取り込みが容易になるとされる。ＣｐＧ Ｄ／Ａ型は、大量のインターフェロンα（ＩＦＮ－α）をｐＤＣ中に産生する（ＣｐＧ Ｋ／Ｂ型とは異なる特徴である）。これにより、ＮＫ細胞およびγδＴ細胞において強力な活性化およびインターフェロンガンマ産生を生じる。しかし、Ｂ細胞は活性化せず、ｐＤＣ成熟化もしない（Ｋｒｕｇ， Ａ．， ｅｔ ａｌ． Ｅｕｒｏｐｅａｎ ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ ３１， ２１５４－２１６３ （２００１）．；およびＶｅｒｔｈｅｌｙｉ， Ｄ．， Ｉｓｈｉｉ， Ｋ．Ｊ．， Ｇｕｒｓｅｌ， Ｍ．， Ｔａｋｅｓｈｉｔａ， Ｆ． ＆ Ｋｌｉｎｍａｎ， Ｄ．Ｍ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ １６６， ２３７２－２３７７ （２００１）．）。

他の３つの型のＯＤＮは、ＰＳ骨格からなる。

Ｋ／Ｂ型 ＣｐＧ ＯＤＮは、ＣｐＧ－Ｂ型またはＣｐＧ－Ｋ型とも呼ばれ、ポリＧモチーフがない、１つ以上のＣｐＧモチーフを有するすべてがホスホロチオエート（ＰＳ）骨格を有するものである。典型的には、非回文構造の、複数のＣｐＧモチーフを含有する。Ｋ／Ｂ型 ＣｐＧはＩＦＮ－αの誘導活性は弱い（ほとんど産生しない）が、非常に強力なＴｈ１アジュバントであり、強力なＢ細胞応答刺激剤であり、化してＩＬ－６を産生させ、ｐＤＣｓを活性化して成熟化させる（Ｖｅｒｔｈｅｌｙｉ， Ｄ．， Ｉｓｈｉｉ， Ｋ．Ｊ．， Ｇｕｒｓｅｌ， Ｍ．， Ｔａｋｅｓｈｉｔａ， Ｆ． ＆ Ｋｌｉｎｍａｎ， Ｄ．Ｍ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ １６６， ２３７２－２３７７ （２００１）；およびＨａｒｔｍａｎｎ， Ｇ． ＆ Ｋｒｉｅｇ， Ａ．Ｍ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ １６４， ９４４－９５３ （２０００）．）。Ｋ／Ｂ型 ＣｐＧ ＯＤＮは、単球由来樹状細胞および ｐＤＣの両方の生存を促進し、活性化し、そして成熟させる機能を有する。

近年、開発されたＣ型およびＰ型のＣｐＧ ＯＤＮはそれぞれ１つおよび２つの回文構造ＣｐＧ配列を含有しており、双方ともＫ型の様にＢ細胞を活性化させ、Ｄ型の様にｐＤＣｓを活性化させることができるが、Ｐ型ＣｐＧ ＯＤＮと比較して、Ｃ型ＣｐＧ ＯＤＮは、ＩＦＮ－α産生をより弱く誘導する（Ｈａｒｔｍａｎｎ， Ｇ．， ｅｔ ａｌ． Ｅｕｒｏｐｅａｎ ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ ３３， １６３３－１６４１ （２００３）；Ｍａｒｓｈａｌｌ， Ｊ．Ｄ．， ｅｔ ａｌ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｌｅｕｋｏｃｙｔｅ ｂｉｏｌｏｇｙ ７３， ７８１－７９２ （２００３）．；およびＳａｍｕｌｏｗｉｔｚ， Ｕ．， ｅｔ ａｌ． Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ ２０， ９３－１０１ （２０１０））。

Ｄ／Ｋ型およびＰ型ＣｐＧ ＯＤＮは、Ｇ－ｔｅｔｒａｄｓと呼ばれる平行４本鎖構造を形成するフーグスティーン塩基対、およびシス回文構造部位とトランス回文構造部位との間のワトソン－クリック塩基対、という高次構造をそれぞれ形成することが示されており、これらはｐＤＣｓによる強力なＩＦＮ－α産生に必要である（Ｓａｍｕｌｏｗｉｔｚ， Ｕ．， ｅｔ ａｌ． Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ ２０， ９３－１０１ （２０１０）．；Ｋｅｒｋｍａｎｎ， Ｍ．， ｅｔ ａｌ． Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｂｉｏｌｏｇｙｉｃａｌ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２８０， ８０８６－８０９３ （２００５）．；およびＫｌｅｉｎ， Ｄ．Ｃ．， Ｌａｔｚ， Ｅ．， Ｅｓｐｅｖｉｋ， Ｔ． ＆ Ｓｔｏｋｋｅ， Ｂ．Ｔ． Ｕｌｔｒａｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙ １１０， ６８９－６９３ （２０１０））。高次構造故、Ｋ型およびＣ型ＣｐＧ ＯＤＮのみが、ヒト用の免疫療法剤およびワクチンアジュバントとして一般的に利用可能であるとされている（Ｐｕｉｇ， Ｍ．， ｅｔ ａｌ． Ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄｓ ｒｅｓｅａｒｃｈ ３４， ６４８８－６４９５ （２００６）； Ｂｏｄｅ， Ｃ．， Ｚｈａｏ， Ｇ．， Ｓｔｅｉｎｈａｇｅｎ， Ｆ．， Ｋｉｎｊｏ， Ｔ． ＆ Ｋｌｉｎｍａｎ， Ｄ．Ｍ． Ｅｘｐｅｒｔ ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ ｖａｃｃｉｎｅｓ １０， ４９９－５１１ （２０１１）；およびＭｃＨｕｔｃｈｉｓｏｎ， Ｊ．Ｇ．， ｅｔ ａｌ． Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ ４６， １３４１－１３４９ （２００７））。

Ａ型 ＣｐＧ ＯＤＮとは対照的に、Ｃ型ＣｐＧは、ポリＧモチーフがない完全なホスホロチオエート（ＰＳ）骨格を有するが、刺激性ＣｐＧモチーフと組み合わせて、ＣｐＧのＡ型パリンドローム配列を含むものである。ｉｎ ｖｉｖｏ研究により、Ｃ型ＣｐＧ ＯＤＮは、非常に強力なＴｈ１アジュバントであることが報告されている。

本発明において好ましい実施形態で用いられるＫ型ＣｐＧ ＯＤＮは、１０ヌクレオチド以上の長さであり、且つ式：

（式中、中央のＣｐＧモチーフ（ＣｐＧとして記載される）はメチル化されておらず、ＷはＡまたはＴであり、Ｎ１、Ｎ２、Ｎ３、Ｎ４、Ｎ５およびＮ６はいかなるヌクレオチドであってもよい）で表されるヌクレオチド配列を含む。

一つの実施形態において、本発明のＫ型ＣｐＧ ＯＤＮは１０ヌクレオチド以上の長さであり、上記式のヌクレオチド配列を含む。但し、上記式中、中央の４塩基のＣｐＧモチーフ（ＴＣｐＧＷ）は１０ヌクレオチド中に含まれていれば良く、必ずしも上記式中、Ｎ３およびＮ４の間に位置する必要はない。また、上記式中、Ｎ１、Ｎ２、Ｎ３、Ｎ４、Ｎ５およびＮ６はいかなるヌクレオチドであっても良く、Ｎ１およびＮ２、Ｎ２およびＮ３、Ｎ３およびＮ４、Ｎ４およびＮ５、並びにＮ５およびＮ６の少なくともいずれか一つ（好ましくは一つ）の組み合わせは２塩基のＣｐＧモチーフであっても良い。前記４塩基のＣｐＧモチーフがＮ３およびＮ４の間に位置しない場合、上記式中、中央の４塩基（４～７番目の塩基）中の連続するいずれかの２塩基がＣｐＧモチーフであり、他の２つの塩基はいかなるヌクレオチドであっても良い。また、オリゴデオキシヌクレオチドのリン酸ジエステル結合の一部または全てがホスホロチオエート結合で置換されていてもよい。好ましくは、オリゴデオキシヌクレオチドのリン酸ジエステル結合の全てがホスホロチオエート結合により置換されている。

本発明においてより好適に用いられるＫ型ＣｐＧ ＯＤＮは１つまたは複数のＣｐＧモチーフを含む非回文構造を含有する。更に好適に用いられるＫ型ＣｐＧ ＯＤＮは１つまたは複数のＣｐＧモチーフを含む非回文構造からなる。

本発明のオリゴデオキシヌクレオチドに含まれるＫ型ＣｐＧ ＯＤＮは、好ましくはヒト化されている。「ヒト化」とは、ヒトＴＬＲ９に対するアゴニスト活性を有することを意味する。従って、ヒト化Ｋ型ＣｐＧ ＯＤＮを含む本発明のオリゴデオキシヌクレオチドは、ヒトに対してＫ型ＣｐＧ ＯＤＮに特有の免疫賦活活性（例えば、ヒトＢ細胞を活性化してＩＬ－６を産生させる活性）を有する。

ヒト化Ｋ型ＣｐＧ ＯＤＮは、一般的に、ＴＣＧＡまたはＴＣＧＴからなる４塩基のＣｐＧモチーフを特徴とする。また、多くのケースにおいて、一つのヒト化Ｋ型ＣｐＧ ＯＤＮ中にこの４塩基のＣｐＧモチーフが２または３個含まれる。従って、好ましい実施形態において、本発明のオリゴデオキシヌクレオチドに含まれるＫ型ＣｐＧ ＯＤＮは、少なくとも１個、より好ましくは２以上、更に好ましくは２または３個、ＴＣＧＡまたはＴＣＧＴからなる４塩基のＣｐＧモチーフを含む。該Ｋ型ＣｐＧ ＯＤＮが２または３個の４塩基のＣｐＧモチーフを有する場合、これらの４塩基のＣｐＧモチーフは同一であっても異なっていてもよい。ただし、ヒトＴＬＲ９に対するアゴニスト活性を有する限り、特に限定されない。

本発明のオリゴデオキシヌクレオチドに含まれるＫ型ＣｐＧ ＯＤＮは、より好ましくは、配列（ａｔｃｇａｃｔｃｔｃ ｇａｇｃｇｔｔｃｔｃ（配列番号１））で表されるヌクレオチド配列を含む。

Ｋ型ＣｐＧ ＯＤＮの長さは、本発明のオリゴデオキシヌクレオチドが免疫賦活活性（例えば、Ｂ細胞（好ましくは、ヒトＢ細胞）を活性化してＩＬ－６を産生させる活性）または抗がん活性を有する限り、特に限定されないが、好ましくは１００ヌクレオチド長以下（例えば、１０－７５ヌクレオチド長）である。Ｋ型ＣｐＧ ＯＤＮの長さは、より好ましくは５０ヌクレオチド長以下（例えば、１０－４０ヌクレオチド長）である。Ｋ型ＣｐＧ ＯＤＮの長さは、更に好ましくは３０ヌクレオチド長以下（例えば、１０－２５ヌクレオチド長）である。Ｋ型ＣｐＧ ＯＤＮの長さは、最も好ましくは、１２－２５ヌクレオチド長である。

本明細書において「リガンド」または「アゴニスト」とは、交換可能に使用され、対象となる実体（例えば、レセプター）に対してそのレセプターの生物学的作用を発現またはそれを増強する物質をいう。天然のアゴニスト（リガンドとも称される）のほか、合成されたものや改変されたもの等を挙げることができる。

小胞体に局在する膜タンパク質として同定された「ＳＴＩＮＧ」（ＩＦＮ遺伝子の（アダプター分子）刺激剤（ｓｔｉｍｕｌａｔｏｒ ｏｆ ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ ｇｅｎｅｓ））は，さまざまなＲＮＡウイルスおよびＤＮＡウイルスの感染に対する生体防御機構において重要な役割をはたす．また，ＳＴＩＮＧはウイルスおよび細菌に由来するＤＮＡ成分に対する自然免疫応答の誘導に重要な役割を示すことが報告されているが，その分子機序は明らかにされていなかった．この論文において，筆者らは，ＳＴＩＮＧはウイルスに由来するゲノムＤＮＡのみならず，ＩＳＤとよばれる４５～９０塩基対の合成２本鎖ＤＮＡ，さらに，アポトーシス細胞に由来する自己のＤＮＡ成分と複合体を形成しうることを明らかにした．ｉｎ ｖｉｔｒｏにおけるＤＮＡ相互作用領域の解析より，ＳＴＩＮＧのＣ末端側の領域が重要であることが示された．ＳＴＩＮＧによるさまざまなＤＮＡ成分の認識はＳＴＩＮＧの核膜の周辺領域へのダイナミックな局在の変化を誘発し，ＴＢＫ１の活性化を介しインターフェロンの産生を誘導することが示された．さらに，ＳＴＩＮＧは微生物に由来する非自己のＤＮＡ成分のみならず，自己のＤＮＡ成分の認識を介した慢性的な炎症性の応答の制御にも関与している可能性が示唆された。

本明細書において「ＳＴＩＮＧリガンド」および「ＳＴＩＮＧアゴニスト」は、交換可能に使用され、ＩＦＮ遺伝子の（アダプター分子）刺激剤（ＳＴＩＮＧ＝ｓｔｉｍｕｌａｔｏｒ ｏｆ ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ ｇｅｎｅｓ）のリガンド（アゴニスト）であり、Ｉ型ＩＦＮ産生およびＮＦ－κＢ媒介サイトカイン産生を誘導する。ＳＴＩＮＧアゴニストは小胞体に局在する膜タンパク質であるとされている。ＳＴＩＮＧアゴニストとしては、ｃＧＡＭＰに加えて、細菌起源の環状ジヌクレオチドであるｃ－ｄｉ－ＡＭＰおよびｃ－ｄｉ－ＧＭＰは、ＴＢＫ１－ＩＲＦ３軸を介してシグナルを伝達して、Ｉ型ＩＦＮ産生およびＮＦ－κＢ媒介サイトカイン産生を誘導するＩＦＮ遺伝子の、アダプター分子刺激剤（ＳＴＩＮＧ）のリガンドである［Ｂｕｒｄｅｔｔｅ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ．（２０１１）４７８：５１５－８；Ｍｃｗｈｉｒｔｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｅｘｐ． Ｍｅｄ．（２００９）２０６：１８９９－１９１１］。最近の研究は、これらの環状ジヌクレオチドは、抗原特異的Ｔ細胞および液性免疫応答を増強する能力に起因して強力なワクチンアジュバントとして機能する。それにもかかわらず、本発明者らのグループは以前、ＳＴＩＮＧアゴニストであるＤＭＸＡＡは、ＳＴＩＮＧ－ＩＲＦ３媒介性のＩ型ＩＦＮの産生を介して、２型免疫応答を予想外に誘導する［Ｔａｎｇ ｅｔ ａｌ．， ＰＬｏＳ Ｏｎｅ．（２０１３）８：１－６］。２型免疫応答は、１型免疫応答を誘導できないことがあるため、環状ジヌクレオチドを含むＳＴＩＮＧアゴニストの臨床上の有用性には議論の余地があった。例えば、最も一般的なアジュバントのアルミニウム塩（アラム）は、細胞内病原体由来の疾患またはガンの場合に防御すると考えられている細胞媒介性免疫を誘導する能力を欠く［Ｈｏｇｅｎｅｓｃｈ ｅｔ ａｌ．， Ｆｒｏｎｔ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．（２０１３）３：１－１３］。この制限を克服するために、アラムを、モノホスホリルリピドＡ［Ｍａｃｌｅｏｄ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． Ｕ． Ｓ． Ａ．（２０１１）１０８：７９１４－７９１９］およびＣｐＧ ＯＤＮ［Ｗｅｅｒａｔｎａ ｅｔ ａｌ．， Ｖａｃｃｉｎｅ．（２０００）１８：１７５５－１７６２］を含む多くの異なる種類のアジュバントと組み合わせられてきた。ＳＴＩＮＧに関連する技術については、微生物ＤＮＡと同様に、特に宿主ＤＮＡが不適切にサイトゾルに存在する場合は、宿主ＤＮＡもまた、危険信号となり得、それによって、インターフェロンおよび炎症性サイトカインの産生をもたらす［Ｄｅｓｍｅｔ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔ． Ｒｅｖ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．（２０１２）１２：４７９－４９１；Ｂａｒｂｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｒｅｖ．（２０１１）２４３：９９－１０８］。最近同定された１つのサイトゾルＤＮＡセンサーは、環状ＧＭＰ－ＡＭＰ合成酵素（ｃＧＡＳ）であり、これは非標準の環状ジヌクレオチドｃＧＡＭＰ（２’３’－ｃＧＡＭＰ）の産生を触媒し、そのプリンヌクレオシドとの間の非標準２’、５’結合および３’、５’結合を含有する［Ｓｕｎ ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ．（２０１３）３３９：７８６－９１］。標準ｃＧＡＭＰ（３’３’）は、細菌内で合成され、哺乳類２’３’－ｃＧＡＭＰよりも様々な結合を有し、ＧＭＰおよびＡＭＰヌクレオシドはビス－（３’、５’）結合によって結合する［Ｗｕ ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ．（２０１３）３３９：８２６－３０；Ｚｈａｎｇ ｅｔ ａｌ．， Ｍｏｌ． Ｃｅｌｌ．（２０１３）５１：２２６－３５］。

したがって、本発明において使用され得るＳＴＩＮＧアゴニストとしては、２’３’－ｃＧＡＭＰ、ｃ－ｄｉ－ＡＭＰ、３’３’－ｃＧＡＭＰ、３’２’－ｃＧＡＭＰ等の環状時ヌクレオチド（ＣＤＮ）、ＤＭＸＡＡ等のキサンテノン誘導体等を挙げることができる。また、ＳＴＩＮＧアゴニストはＷＯ２０１０／０１７２４８に説明されており、その内容は全体が参考として援用される。

本明細書において「アジュバント」とは、本明細書中で使用されるとき、ワクチンの効果を上げるために添加されている免疫増強剤であり、特定の抗原を構成するのではなく、投与される抗原に対する免疫応答を押し上げる、薬剤のことを指す。アジュバントは近年の免疫学の発展により、そのアジュバントの作用機序が徐々に明らかにされている。最近では、アジュバントがもつ多彩な免疫制御の特性により感染症のみならず、アレルギー、ガン、自己免疫疾患の予防や治療への応用が期待されている。

これまで多くのワクチンアジュバントは抗体産生（液性免疫）を誘導することを主に開発されてきた。そのためアラムアジュバントをふくめた現行の多くのアジュバントはＴｈ２アジュバントと呼ばれる液性免疫誘導型のアジュバントである。しかしながらガンやアレルギーの予防や治療には液性免疫よりも細胞性免疫の誘導が重要であり、それらはＴｈ１アジュバントまたはＩ型アジュバントとよばれている。

現在まで多くのＴｈ１アジュバントの候補物質が報告されているが、最も有効と考えられているのがＣｐＧオリゴヌクレオチド（ＣｐＧ ＯＤＮ）である。ＣｐＧ ＯＤＮはガンや感染症のワクチンアジュバントとして有効であることが示されているが（非特許文献１）、現在はさらに効果的なＣｐＧ ＯＤＮが開発・改良が試みられている（非特許文献２）。効果的な改良型ＣｐＧ ＯＤＮが開発できれば、今まで以上にガンやアレルギーの治療へ応用される可能性がある。

本明細書において「Ｉ型アジュバント」とは、Ｔｈ１アジュバントとも呼ばれ、Ｉ型免疫反応を誘発するアジュバントをいう。代表的にはナチュラルキラー細胞または細胞傷害性Ｔ細胞による抗腫瘍効果によって特徴づけられる。

本明細書において「ＩＩ型アジュバント」とは、Ｔｈ２アジュバントとも呼ばれ、ＩＩ型免疫反応を誘発するアジュバントをいう。代表的には、抗体誘導による感染予防効果によって特徴づけられる。

本明細書において「Ｉ型免疫応答」とは細胞性免疫ともいい、食細胞、細胞傷害性Ｔ細胞 （ＣＴＬ；Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃ Ｔ Ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅｓ）、ナチュラルキラー細胞が体内の異物排除を担当する免疫系である。Ｔ細胞が関係する。ヘルパーＴ細胞にはＴｈ１細胞とＴｈ２細胞が存在し、これらはサイトカインを放出することにより互いの機能を抑制しあっていると考えられている。これらの細胞はもとは１つの細胞から分化し、この細胞をナイーブＴ細胞（Ｔｈ０）と呼ぶ。具体的な分化メカニズムについてはＴ細胞の項を参照。Ｔｈ０細胞からＴｈ１細胞に分化した細胞はＩＬ－２等のいわゆるＴｈ１サイトカインを産生し、ウイルスに感染した細胞等の破壊を行うＣＴＬの活性化を行う。また、細胞性免疫はウイルスに感染した細胞の除去のみでなく腫瘍免疫や移植免疫にも関与している。

本明細書において「ＩＩ型免疫応答」とは液性免疫ともいい、抗体や補体を中心とした免疫系である。抗体が血清中に溶解して存在するためこのように呼ばれる。マクロファージや樹状細胞などは抗原を細胞内へ取り込んだのちに分解を行い、その断片を細胞表面に提示することにより抗原提示細胞として機能している。抗原提示細胞はＭＨＣクラスＩＩ分子を介して抗原断片を提示し、ナイーブＴ細胞（Ｔｈ０）細胞表面のＴ細胞抗原受容体（ＴＣＲ；Ｔ Ｃｅｌｌ Ｒｅｃｅｐｔｏｒ）へシグナルを伝える。Ｔｈ０細胞が１型ヘルパーＴ細胞（Ｔｈ１）と２型ヘルパーＴ細胞（Ｔｈ２）のどちらに分化するかの割合は疾患により異なるがＴｈ２サイトカインと呼ばれるインターロイキン（ＩＬ；Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ）－４，ＩＬ－５等の存在下においてＴｈ０はＴｈ２に分化し、液性免疫を誘導する。

本明細書において「免疫グロブリンＥ」または「ＩｇＥ」とは、哺乳類にのみ存在する糖タンパク質であり、免疫グロブリンの一種である。ＩｇＥ分子は２つの重鎖（ε鎖）と２つの軽鎖（κ鎖およびλ鎖）から構成され、２つの抗原結合部位を有している。健常人における血清中のＩｇＥ濃度はｎｇ／ｍｌ単位であり他の種類の免疫グロブリンと比較しても非常に低いが、アレルギー疾患を持つ患者の血清中では濃度が上昇しマスト細胞や好塩基球の細胞内顆粒中に貯蔵される生理活性物質の急速な放出（脱顆粒反応）を誘起する。これらのことからＩｇＥはヒスタミンなどと並んでアレルギー反応において中心的な役割を果たす分子の一つとして数えられる。

本明細書において「アレルギー」とは、免疫反応が、特定の抗原に対して過剰に起こることをいう。アレルギーを引き起こす環境由来抗原を特にアレルゲンと呼ぶ。「アレルギー疾患」とは、外部からの抗原に対し、免疫反応が起こる疾患をいう。ただしその抗原は通常生活で曝露される量では無害であることが多く（たとえば春先の花粉そのものが毒性を持っているわけではない）、不必要に不快な結果をもたらす免疫応答が起こっているといえる。アレルギー性疾患とも言う。代表的な疾患としてはアトピー性皮膚炎、アレルギー性鼻炎（花粉症）、アレルギー性結膜炎、アレルギー性胃腸炎、気管支喘息、小児喘息、食物アレルギー、薬物アレルギー、蕁麻疹があげられる。また、最近になって柑橘類の匂いや、ガムなどの香料の匂い程度で喘息、顔面紅潮などの1型アレルギー症状を示す病
態が注目されている。

他方、「自己免疫疾患」とは、自己の体を構成する物質を抗原として、免疫反応が起こる疾患。特定の臓器や部位の障害、炎症をもたらしたり、全身性の症状を呈する場合がある。代表的な疾患としては関節リウマチといった膠原病や円形脱毛症があげられる。

本明細書において「インターフェロン（ＩＦＮ）」とは、動物体内で病原体（特にウイルス）や腫瘍細胞などの異物の侵入に反応して細胞が分泌するタンパク質（サイトカイン）であり、そのうち、ＩＦＮ－γは、Ｔｈ１型サイトカインである。

本明細書において「被験体（者）」とは、本発明の診断または検出、あるいは治療等の対象となる対象（例えば、ヒト等の生物または生物から取り出した細胞、血液、血清等）をいう。

本明細書において「薬剤」、「剤」または「因子」（いずれも英語ではagentに相当す
る）は、広義には、交換可能に使用され、意図する目的を達成することができる限りどのような物質または他の要素（例えば、光、放射能、熱、電気などのエネルギー）でもあってもよい。そのような物質としては、例えば、タンパク質、ポリペプチド、オリゴペプチド、ペプチド、ポリヌクレオチド、オリゴヌクレオチド、ヌクレオチド、核酸（例えば、cDNA、ゲノムDNAのようなDNA、mRNAのようなRNAを含む）、ポリサッカリド、オリゴサッ
カリド、脂質、有機低分子（例えば、ホルモン、リガンド、情報伝達物質、有機低分子、コンビナトリアルケミストリで合成された分子、医薬品として利用され得る低分子（例えば、低分子リガンドなど）など）、これらの複合分子が挙げられるがそれらに限定されない。ポリヌクレオチドに対して特異的な因子としては、代表的には、そのポリヌクレオチドの配列に対して一定の配列相同性を（例えば、70％以上の配列同一性）もって相補性を有するポリヌクレオチド、プロモーター領域に結合する転写因子のようなポリペプチドなどが挙げられるがそれらに限定されない。ポリペプチドに対して特異的な因子としては、代表的には、そのポリペプチドに対して特異的に指向された抗体またはその誘導体あるいはその類似物（例えば、単鎖抗体）、そのポリペプチドがレセプターまたはリガンドである場合の特異的なリガンドまたはレセプター、そのポリペプチドが酵素である場合、その基質などが挙げられるがそれらに限定されない。

本明細書において「治療」とは、ある疾患または障害（例えば、がん、アレルギー）について、そのような状態になった場合に、そのような疾患または障害の悪化を防止、好ましくは、現状維持、より好ましくは、軽減、さらに好ましくは消退させることをいい、患者の疾患、もしくは疾患に伴う1つ以上の症状の、症状改善効果あるいは予防効果を発揮
しうることを含む。事前に診断を行って適切な治療を行うことは「コンパニオン治療」といい、そのための診断薬を「コンパニオン診断薬」ということがある。

本明細書において「治療薬（剤）」とは、広義には、目的の状態（例えば、がん、アレルギー等の疾患など）を治療できるあらゆる薬剤をいう。本発明の一実施形態において「治療薬」は、有効成分と、薬理学的に許容される1つもしくはそれ以上の担体とを含む医薬組成物であってもよい。医薬組成物は、例えば有効成分と上記担体とを混合し、製剤学の技術分野において知られる任意の方法により製造できる。また治療薬は、治療のために用いられる物であれば使用形態は限定されず、有効成分単独であってもよいし、有効成分と任意の成分との混合物であってもよい。また上記担体の形状は特に限定されず、例えば、固体または液体（例えば、緩衝液）であってもよい。なおがん、アレルギー等の治療薬は、がん、アレルギー等の予防のために用いられる薬物（予防薬）、またはがん、アレルギー等の抑制剤を含む。

本明細書において「予防」とは、ある疾患または障害（例えば、アレルギー）について、そのような状態になる前に、そのような状態にならないようにすることをいう。本発明の薬剤を用いて、診断を行い、必要に応じて本発明の薬剤を用いて例えば、アレルギー等の予防をするか、あるいは予防のための対策を講じることができる。

本明細書において「予防薬（剤）」とは、広義には、目的の状態（例えば、アレルギー等の疾患など）を予防できるあらゆる薬剤をいう。

本明細書において「キット」とは、通常2つ以上の区画に分けて、提供されるべき部分
（例えば、検査薬、診断薬、治療薬、抗体、標識、説明書など）が提供されるユニットをいう。安定性等のため、混合されて提供されるべきでなく、使用直前に混合して使用することが好ましいような組成物の提供を目的とするときに、このキットの形態は好ましい。そのようなキットは、好ましくは、提供される部分（例えば、検査薬、診断薬、治療薬をどのように使用するか、あるいは、試薬をどのように処理すべきかを記載する指示書または説明書を備えていることが有利である。本明細書においてキットが試薬キットとして使用される場合、キットには、通常、検査薬、診断薬、治療薬、抗体等の使い方などを記載した指示書などが含まれる。

本明細書において「指示書」は、本発明を使用する方法を医師または他の使用者に対する説明を記載したものである。この指示書は、本発明の検出方法、診断薬の使い方、または医薬などを投与することを指示する文言が記載されている。また、指示書には、投与部位として、経口、食道への投与（例えば、注射などによる）することを指示する文言が記載されていてもよい。この指示書は、本発明が実施される国の監督官庁（例えば、日本であれば厚生労働省、米国であれば食品医薬品局（FDA）など）が規定した様式に従って作成され、その監督官庁により承認を受けた旨が明記される。指示書は、いわゆる添付文書（package insert）であり、通常は紙媒体で提供されるが、それに限定されず、例えば、電子媒体（例えば、インターネットで提供されるホームページ、電子メール）のような形態でも提供され得る。

（好ましい実施形態）
以下に本発明の好ましい実施形態を説明する。以下に提供される実施形態は、本発明のよりよい理解のために提供されるものであり、本発明の範囲は以下の記載に限定されるべきでないことが理解される。従って、当業者は、本明細書中の記載を参酌して、本発明の範囲内で適宜改変を行うことができることは明らかである。また、本発明の以下の実施形態は単独でも使用されあるいはそれらを組み合わせて使用することができることが理解される。

＜ＣｐＧとＳＴＩＮＧアゴニストとの組み合わせ＞
１つの局面では、本発明は、ＣｐＧオリゴヌクレオチドとＳＴＩＮＧアゴニスト（あるいはＳＴＩＮＧリガンドともいう）の組合せ物を提供する。本発明の組合せを用いて、種々の治療または予防、例えば、がん、アレルギー等の治療または予防、あるいは免疫賦活化を用いた治療または予防を行うことができる。

したがって、本発明は、ＣｐＧオリゴヌクレオチドとＳＴＩＮＧアゴニストの組合せ物の有効量をそれを必要とする被験体に投与する工程を包含する、疾患の治療または予防のための方法を提供する。

１つの実施形態では、本発明の組合せ物は、Ｉ型アジュバントとして用いるためのものである。この現象は、両方の側面から見て予想外である。すなわち、ＳＴＩＮＧアゴニストの側から見れば、通常このリガンドは液性免疫すなわち抗体誘導による感染予防効果のみを生じるものと考えられているが、ＣｐＧを加えることで、細胞性免疫が惹起されている。このような「スイッチ」効果はまさに予想外であるといえる。また、ＣｐＧの細胞性免疫惹起効果が、ＳＴＩＮＧアゴニストで顕著に亢進された。ＳＴＩＮＧアゴニストに細胞性免疫惹起効果がほとんどないことにかんがみれば、ＣｐＧが持っている細胞性免疫惹起効果を考慮したとしても量的に予想外に顕著な亢進を示したといえる。

別の実施形態では、本発明の組合せ物は、前記ＳＴＩＮＧアゴニストのＩｇＥ誘発作用を抑制するためのものである。理論に束縛されることを望まないが、ＳＴＩＮＧアゴニストにＩｇＥ誘発作用があり、アレルギーの副作用がありうることが予想外にも本発明において初めて見出された。したがって、このような課題を解決する必要があるところ、その解決がＣｐＧによってなされたという点でも予想外であるといえる。

１つの実施形態では、ＳＴＩＮＧアゴニストとしては、３’３’－ｃＧＡＭＰ、２’３’－ｃＧＡＭＰ、２’２’－ｃＧＡＭＰ、ＤＭＸＡＡ、ｃ－ｄｉ－ＡＭＰおよびｃ－ｄｉ－ＧＭＰ等を挙げることができる。ＤＭＸＡＡはマウス特異的なＳＴＩＮＧアゴニストでありヒトではあまり効果がないとされる。３’３’－ｃＧＡＭＰは細菌性ｃＧＭＡＰであり、２’３’－ｃＧＡＭＰ哺乳動物性ｃＧＡＭＰであり、２’２’－ｃＧＡＭＰは非天然型のｃＧＡＭＰである。

１つの実施形態では、本発明のＣｐＧオリゴヌクレオチドは、Ｋ／Ｂ型オリゴヌクレオチドである。理論に束縛されることを望まないが、Ｋ／Ｂ型オリゴヌクレオチドは特にCpGODNはがん、感染症のワクチンアジュバントとして有効であることが示されているところ、本発明によりさらにこれを増強することができるからである。

1つの実施形態において、本発明において使用され得るＣｐＧオリゴヌクレオチドとしては、一般的なＣｐＧであればどのようなものでも使用することができるが、例えば、Ｋ３ ＣｐＧ（配列番号１（5’-atcgactatcgagagttctc-3’））、ＣｐＧ１８２６（配列番号２（5’-tccatgacgttcctgacgtt-3’））、およびＤ３５ ＣｐＧ（配列番号３（5’-ggtgcatcgatgcagggggg-3’））等を用いることができるがそれらに限定されない。

１つの実施形態では、本発明において使用され得るＳＴＩＮＧアゴニストは、ｃＧＡＭＰ、３’３’－ｃＧＡＭＰ、ｃ－ｄｉ－ＡＭＰ、ｃ－ｄｉ－ＧＡＭＰ、２’３’－ｃＧＡＭＰ、ＤＭＸＡＡ等を挙げることができる。

１つの特定の実施形態では、本発明の組合せ物は、抗がん剤として用いられる。この場合、本発明の治療または予防のための方法は、がんを治療または予防するための方法として提供される。

１つの実施形態では、前記抗がん剤は、リンパ腫、メラノーマ等のがんを対象とすることができる。

別の実施形態では、本発明の組合せ物は、ＩＩ型免疫応答を減少または消失させ、および／またはＩ型免疫応答を発現または強化するためのものである。

別の実施形態では、本発明の組合せ物は、インターフェロンγ（ＩＦＮ－γ）の誘導のためのものである。あるいは、本発明の組合せ物は、ワクチンアジュバントとして使用するためのものである。この場合、本発明の治療または予防のための方法は、免疫を不活化するための方法として提供される。

これらの２つの因子（ＣｐＧオリゴヌクレオチドおよびＳＴＩＮＧアゴニスト）は、それぞれ同時に投与されてもよく、時間を違えて投与されてもよく、同じ製剤で投与されてもよく異なる製剤を組み合わせて投与されてもよく、順にあるいは別々に投与されてもよい。

Ｔ細胞活性化に対するアッセイは例えば、以下のように実施することができる。いくつかの実施形態において、様々なアッセイが、免疫応答がＴ細胞またはＴ細胞の群において刺激されているか否か（すなわち、Ｔ細胞またはＴ細胞の群が「活性化されて」いるか否か）を判定するために利用され得る。いくつかの実施形態において、Ｔ細胞における免疫応答の刺激は、Ｔ細胞によるサイトカインの抗原誘導性産生を測定することによって判定され得る。いくつかの実施形態において、Ｔ細胞における免疫応答の刺激は、Ｔ細胞によるＩＦＮγ、ＩＬ－４、ＩＬ－２、ＩＬ－１０、ＩＬ－１７および／またはＴＮＦαの抗原誘導性産生を測定することによって判定され得る。いくつかの実施形態において、Ｔ細胞によるサイトカインの抗原生成性産生は、細胞内のサイトカイン染色の後のフローサイトメトリーによって測定され得る。いくつかの実施形態において、Ｔ細胞によるサイトカインの抗原誘導性産生は、表面捕捉染色の後のフローサイトメトリーによって測定され得る。いくつかの実施形態において、Ｔ細胞によるサイトカインの抗原誘導性産生は、活性化されたＴ細胞培養物の上清中のサイトカイン濃度を測定することによって判断され得る。いくつかの実施形態において、これは、ＥＬＩＳＡによって測定され得る。

いくつかの実施形態において、Ｔ細胞によるサイトカインの抗原生成性産生は、ＥＬＩＳＰＯＴアッセイによって測定され得る。一般に、ＥＬＩＳＰＯＴアッセイは、サンドイッチ酵素結合免疫吸着測定法（ＥＬＩＳＡ）という手法に非常に類似の手法を使用する。抗体（例えば、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体など）を、ＰＶＤＦ（フッ化ポリビニリデン）が裏打ちされた（ｂａｃｋｅｄ）マイクロプレート上に無菌的にコーティングする。抗体を、対象のサイトカインに対する特異性について選択する。そのプレートをブロッキングする（例えば、そのアッセイにおけるいずれの抗体とも反応性でない血清タンパク質を用いて）。目的の細胞を、抗原またはマイトジェンとともに様々な密度でプレーティングし、次いで、加湿された３７℃のＣＯ_２恒温器内に指定の時間にわたって置く。活性化された細胞によって分泌されたサイトカインは、広い表面積のＰＶＤＦ膜上のコーティングされた抗体によって局所的に捕捉される。ウェルを洗浄することにより、細胞、残骸および培地成分を除去した後、そのサイトカインに特異的な２次抗体（例えば、ビオチン化ポリクローナル抗体）をそのウェルに加える。この抗体は、標的サイトカインの異なるエピトープと反応性であり、ゆえに、これを用いることにより、捕捉されたサイトカインが検出される。洗浄することにより、任意の未結合のビオチン化抗体を除去した後、検出されたサイトカインを、アビジン－ＨＲＰおよび促進基質（例えば、ＡＥＣ、ＢＣＩＰ／ＮＢＴ）を用いて可視化する。着色した最終産物（スポット、通常、黒っぽい青色）は、代表的には、個別のサイトカイン産生細胞を表す。スポットは、手動で（例えば、解剖顕微鏡を用いて）、またはマイクロウェルの像を捕捉し、そしてスポットの数および大きさを解析する自動リーダーを用いて、計数され得る。いくつかの実施形態において、各スポットは、単一のサイトカイン産生細胞に対応する。

いくつかの実施形態において、Ｔ細胞における免疫応答は、約１％～約１００％の抗原特異的Ｔ細胞が、サイトカインを産生している場合に、刺激されていると言われる。いくつかの実施形態において、Ｔ細胞における免疫応答は、少なくとも約１％、少なくとも約５％、少なくとも約１０％、少なくとも約２５％、少なくとも約５０％、少なくとも約７５％、少なくとも約９０％、少なくとも約９５％、少なくとも約９９％または約１００％の抗原特異的Ｔ細胞が、サイトカインを産生している場合に、刺激されていると言われる。

いくつかの実施形態において、Ｔ細胞における免疫応答は、免疫された被験体が、無処置コントロールよりも少なくとも約１０倍、少なくとも約５０倍、少なくとも約１００倍、少なくとも約５００倍、少なくとも約１０００倍、少なくとも約５０００倍、少なくとも約１０，０００倍、少なくとも約５０，０００倍、少なくとも約１００，０００倍または少なくとも約１００，０００倍超、多いサイトカイン産生細胞を含む場合に、刺激されていると言われる。

いくつかの実施形態において、Ｔ細胞における免疫応答の刺激は、Ｔ細胞の抗原誘導性増殖を測定することによって判定され得る。いくつかの実施形態において、抗原誘導性増殖は、分裂Ｔ細胞におけるＨ^３－チミジンの取り込みとして測定され得る（時折、「リンパ球形質転換試験」または「ＬＴＴ」と称される）。いくつかの実施形態において、Ｈ^３－チミジンの取り込み（γカウンターからのカウント数として与えられる）が、無処置コントロールよりも、少なくとも約５倍、少なくとも約１０倍、少なくとも約２０倍、少なくとも約５０倍、少なくとも約１００倍、少なくとも約５００倍、少なくとも約１０００倍、少なくとも約５０００倍、少なくとも約１０，０００倍または少なくとも約１０，０００倍超、高い場合に、抗原誘導性増殖が生じたと言われる。

いくつかの実施形態において、抗原誘導性増殖は、フローサイトメトリーによって測定され得る。いくつかの実施形態において、抗原誘導性増殖は、カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル（ＣＦＳＥ）希釈アッセイによって測定され得る。ＣＦＳＥは、そのスクシンイミジル反応基によって細胞質タンパク質（例えば、Ｔ細胞タンパク質）のアミノ基に結合する、無毒性で蛍光性の膜透過性色素である。細胞が分裂するとき、ＣＦＳＥ標識されたタンパク質は、娘細胞に等しく分配されるので、細胞蛍光は分裂ごとに半減する。その結果として、抗原特異的Ｔ細胞は、各々の抗原の存在下における培養後にその蛍光を失い（ＣＦＳＥ^低）、そして培養物中の他の細胞（ＣＦＳＥ^高）と識別可能になる。いくつかの実施形態において、ＣＦＳＥ希釈（すべてのＣＦＳＥ^＋細胞に対するＣＦＳＥ^低細胞のパーセンテージとして与えられる）が、少なくとも約５％、少なくとも約１０％、少なくとも約２５％、少なくとも約５０％、少なくとも約７５％、少なくとも約９０％、少なくとも約９５％または少なくとも約１００％である場合に、抗原誘導性増殖が生じたと言われる。

いくつかの実施形態において、Ｔ細胞における免疫応答は、Ｔ細胞活性化の細胞性マーカーが、刺激されていない細胞と異なるレベル（例えば、それより高いレベルまたはより低いレベル）で発現されている場合に、刺激されていると言われる。いくつかの実施形態において、ＣＤ１１ａＣＤ２７、ＣＤ２５、ＣＤ４０Ｌ、ＣＤ４４、ＣＤ４５ＲＯおよび／またはＣＤ６９は、刺激されていないＴ細胞よりも、活性化されているＴ細胞において、より高度に発現される。いくつかの実施形態において、Ｌ－セレクチン（ＣＤ６２Ｌ）、ＣＤ４５ＲＡおよび／またはＣＣＲ７は、刺激されていないＴ細胞よりも、活性化されているＴ細胞において、それほど高度に発現されない。

いくつかの実施形態において、Ｔ細胞における免疫応答は、抗原パルス（ａｎｔｉｇｅｎ－ｐｕｌｓｅｄ）標的細胞に対するエフェクターＣＤ８^＋Ｔ細胞による細胞傷害性をアッセイすることによって測定される。例えば、^５１クロム（^５１Ｃｒ）放出アッセイが、行われ得る。このアッセイでは、エフェクターＣＤ８^＋Ｔ細胞が、クラスＩＭＨＣ上にウイルスペプチドを提示している感染細胞と結合し、そしてその感染細胞にアポトーシスを起こすようにシグナル伝達する。エフェクターＣＤ８^＋Ｔ細胞が加えられる前に、その細胞が^５１Ｃｒで標識されている場合、上清に放出される^５１Ｃｒの量は、死滅させた標的の数に比例する。

当業者は、上述のアッセイが、Ｔ細胞の活性化が起きているか否かを判定するために利用され得る単なる例示的な方法であることを理解する。Ｔ細胞の活性化が起きているか否かを判定するために使用され得る当業者に公知の任意のアッセイは、本発明の範囲内に包含される。本発明において利用されるアッセイならびにＴ細胞の活性化が起きているか否かを判定するために使用され得るさらなるアッセイは、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ，Ｈｏｂｏｋｅｎ，ＮＹ，２００７；本明細書中で参考として援用される）に記載されている。

＜ＳＴＩＮＧアゴニスト自体のＩ型アジュバント製剤としての用途＞
別の局面では、本発明は、ＳＴＩＮＧアゴニストを含む、Ｉ型アジュバントとして用いるための組成物であって、該ＳＴＩＮＧアゴニストはＣｐＧオリゴヌクレオチドとともに投与されることを特徴とする、組成物を提供する。ここで使用されるＳＴＩＮＧアゴニストおよびＣｐＧオリゴヌクレオチドは、＜ＣｐＧとＳＴＩＮＧアゴニストとの組み合わせ＞および実施例を含め本明細書の他の箇所に記載される任意の形態を１つまたは複数を組み合わせて採用することができることが理解される。

したがって、本発明は、被験体における疾患の治療または予防のための方法であって、該方法は、有効量のＳＴＩＮＧアゴニストを含む、Ｉ型アジュバントとして用いるための組成物をそれを必要とする被験体に投与する工程を含み、該ＳＴＩＮＧアゴニストはＣｐＧオリゴヌクレオチドとともに投与されることを特徴とする。この場合、ＣｐＧオリゴヌクレオチドは、ＳＴＩＮＧアゴニストの投与と同時、または前あるいは後に投与することができる。したがって、本発明は、ＳＴＩＮＧアゴニストのＩ型アジュバント効果を発揮するための方法であって、該ＳＴＩＮＧアゴニストをＣｐＧオリゴヌクレオチドとともに投与する工程を包含する、方法を提供する。

１つの実施形態では、アジュバント増強効果を利用した本発明で治療または予防され得る疾患は、がん、アレルギー、ウイルスまたは細菌感染症等を挙げることができる。さらに特定すると、アジュバント増強効果を利用した本発明で治療または予防され得る疾患は、がんであり、そのような癌としては、リンパ腫、メラノーマ等を挙げることができる。

これらの２つの因子（ＣｐＧオリゴヌクレオチドおよびＳＴＩＮＧアゴニスト）は、それぞれ同時に投与されてもよく、時間を違えて投与されてもよく、同じ製剤で投与されてもよく異なる製剤を組み合わせて投与されてもよく、順にあるいは別々に投与されてもよい。

＜ＳＴＩＮＧアゴニストのＣｐＧに対するＩ型アジュバント製剤増強効果＞
別の局面では、本発明は、ＳＴＩＮＧアゴニストを含む、ＣｐＧオリゴヌクレオチドのＩ型アジュバントの作用増強剤を提供する。ここで使用されるＳＴＩＮＧアゴニストおよびＣｐＧオリゴヌクレオチドは、＜ＣｐＧとＳＴＩＮＧアゴニストとの組み合わせ＞および実施例を含め本明細書の他の箇所に記載される任意の形態を１つまたは複数を組み合わせて採用することができることが理解される。

したがって、本発明は、有効量のＳＴＩＮＧアゴニストを含む組成物を被験体に投与する工程を包含する、ＣｐＧオリゴヌクレオチドのＩ型アジュバントの作用増強のための方法を提供する。したがって、本発明はまた、ＣｐＧオリゴヌクレオチドのＩ型アジュバントの作用を増強する方法であって、該ＣｐＧオリゴヌクレオチドを、ＳＴＩＮＧアゴニストとともに投与する工程を包含する、方法を提供する。

これらの２つの因子（ＣｐＧオリゴヌクレオチドおよびＳＴＩＮＧアゴニスト）は、それぞれ同時に投与されてもよく、時間を違えて投与されてもよく、同じ製剤で投与されてもよく異なる製剤を組み合わせて投与されてもよく、順にあるいは別々に投与されてもよい。

＜ＳＴＩＮＧアゴニストの抗がん剤としての使用＞
別の局面では、本発明は、ＳＴＩＮＧアゴニストを含む抗がん剤であって、該ＳＴＩＮＧアゴニストはＣｐＧオリゴヌクレオチドとともに投与されることを特徴とする、抗がん剤を提供する。ここで使用されるＳＴＩＮＧアゴニストおよびＣｐＧオリゴヌクレオチドは、＜ＣｐＧとＳＴＩＮＧアゴニストとの組み合わせ＞および実施例を含め本明細書の他の箇所に記載される任意の形態を１つまたは複数を組み合わせて採用することができることが理解される。

したがって、本発明は、ＳＴＩＮＧアゴニストを含む抗がん剤を有効量被験体に投与する工程を包含する、被験体におけるがんの治療または予防のための方法を提供し、この方法において、該ＳＴＩＮＧアゴニストはＣｐＧオリゴヌクレオチドとともに投与されることを特徴とする。したがって、本発明は、がんを処置または予防するための方法であって、該方法は：ＳＴＩＮＧアゴニストを含む抗がん剤をＣｐＧオリゴヌクレオチドとともに投与する工程を包含する、方法を提供する。

１つの実施形態では、ＳＴＩＮＧアゴニストを利用した本発明で治療または予防され得るがんは、リンパ腫、メラノーマ等のがんを対象とすることができる。

これらの２つの因子（ＣｐＧオリゴヌクレオチドおよびＳＴＩＮＧアゴニスト）は、それぞれ同時に投与されてもよく、時間を違えて投与されてもよく、同じ製剤で投与されてもよく異なる製剤を組み合わせて投与されてもよく、順にあるいは別々に投与されてもよい。

＜ＣｐＧオリゴヌクレオチドの抗がん剤としての使用＞
別の局面では、本発明は、ＣｐＧオリゴヌクレオチドを含む抗がん剤であって、該ＣｐＧオリゴヌクレオチドはＳＴＩＮＧアゴニストとともに投与されることを特徴とする、抗がん剤を提供する。ここで使用されるＳＴＩＮＧアゴニストおよびＣｐＧオリゴヌクレオチドは、＜ＣｐＧとＳＴＩＮＧアゴニストとの組み合わせ＞および実施例を含め本明細書の他の箇所に記載される任意の形態を１つまたは複数を組み合わせて採用することができることが理解される。

したがって、本発明は、ＣｐＧオリゴヌクレオチドを含む抗がん剤を有効量被験体に投与する工程を包含する、がんを治療または予防するための方法であって、該ＣｐＧオリゴヌクレオチドはＳＴＩＮＧアゴニストとともに投与されることを特徴とする、方法を提供する。したがって、本発明は、がんを処置または予防するための方法であって、該方法は、ＣｐＧオリゴヌクレオチドを含む抗がん剤をＳＴＩＮＧアゴニストとともに投与する工程を包含する、方法を提供する。

１つの実施形態では、ＣｐＧオリゴヌクレオチドを利用した本発明で治療または予防され得るがんは、リンパ腫、メラノーマ等のがんを挙げることができるがこれらに限定されない。

これらの２つの因子（ＣｐＧオリゴヌクレオチドおよびＳＴＩＮＧアゴニスト）は、それぞれ同時に投与されてもよく、時間を違えて投与されてもよく、同じ製剤で投与されてもよく異なる製剤を組み合わせて投与されてもよく、順にあるいは別々に投与されてもよい。

＜ＣｐＧによる、ＳＴＩＮＧアゴニストのアレルギー（ＩｇＥ）誘発作用抑制＞
別の局面では、本発明は、ＣｐＧオリゴヌクレオチドを含む、ＳＴＩＮＧアゴニストのＩｇＥ誘発作用を低減または消失させるための組成物を提供する。ここで使用されるＳＴＩＮＧアゴニストおよびＣｐＧオリゴヌクレオチドは、＜ＣｐＧとＳＴＩＮＧアゴニストとの組み合わせ＞および実施例を含め本明細書の他の箇所に記載される任意の形態を１つまたは複数を組み合わせて採用することができることが理解される。

したがって、本発明は、有効量のＣｐＧオリゴヌクレオチドを含む組成物を被験体に投与する工程を包含する、ＳＴＩＮＧアゴニストのＩｇＥ誘発作用を低減または消失させるための方法を提供する。したがって、本発明は、ＳＴＩＮＧアゴニストのＩｇＥ誘発作用を低減または消失させるための方法であって、該方法は、ＳＴＩＮＧアゴニストを用いる際に、ＣｐＧオリゴヌクレオチドを投与する工程を包含する、方法を提供する。

１つの実施形態では、本発明で治療または予防され得るアレルギーとしては、ＳＴＩＮＧアゴニストの副作用としてのアレルギー、その他、アトピー性皮膚炎、アレルギー性鼻炎（花粉症）、アレルギー性結膜炎、アレルギー性胃腸炎、気管支喘息、小児喘息、食物アレルギー、薬物アレルギー、蕁麻疹等を挙げることができるがそれらに限定されない。

これらの２つの因子（ＣｐＧオリゴヌクレオチドおよびＳＴＩＮＧアゴニスト）は、それぞれ同時に投与されてもよく、時間を違えて投与されてもよく、同じ製剤で投与されてもよく異なる製剤を組み合わせて投与されてもよく、順にあるいは別々に投与されてもよい。

１つの実施形態では、前記ＳＴＩＮＧアゴニストのアレルギー誘発作用が低減または消失される。

（医薬品、剤型等）
本発明は、上記種々の形態の医薬（治療薬または予防薬）として提供される。

治療薬、予防薬等の投与経路は、治療に際して効果的なものを使用するのが好ましく、例えば、静脈内、皮下、筋肉内、腹腔内、または経口投与等であってもよい。投与形態としては、例えば、注射剤、カプセル剤、錠剤、顆粒剤等であってもよい。本発明の成分を投与する場合には、注射剤として用いることが効果的である。注射用の水溶液は、例えば、バイアル、またはステンレス容器で保存してもよい。また注射用の水溶液は、例えば生理食塩水、糖(例えばトレハロース)、NaCl、またはNaOH等を配合してもよい。また治療薬は、例えば、緩衝剤(例えばリン酸塩緩衝液)、安定剤等を配合してもよい。

一般的に、本発明の組成物、医薬、治療剤、予防剤等は、治療有効量の治療剤または有効成分、および薬学的に許容しうるキャリアもしくは賦形剤を含む。本明細書において「薬学的に許容しうる」は、動物、そしてより詳細にはヒトにおける使用のため、政府の監督官庁に認可されたか、あるいは薬局方または他の一般的に認められる薬局方に列挙されていることを意味する。本明細書において使用される「キャリア」は、治療剤を一緒に投与する、希釈剤、アジュバント、賦形剤、またはビヒクルを指す。このようなキャリアは、無菌液体、例えば水および油であることも可能であり、石油、動物、植物または合成起源のものが含まれ、限定されるわけではないが、ピーナツ油、ダイズ油、ミネラルオイル、ゴマ油等が含まれる。医薬を経口投与する場合は、水が好ましいキャリアである。医薬組成物を静脈内投与する場合は、生理食塩水および水性デキストロースが好ましいキャリアである。好ましくは、生理食塩水溶液、並びに水性デキストロースおよびグリセロール溶液が、注射可能溶液の液体キャリアとして使用される。適切な賦形剤には、軽質無水ケイ酸、結晶セルロース、マンニトール、デンプン、グルコース、ラクトース、スクロース、ゼラチン、モルト、米、小麦粉、チョーク、シリカゲル、ステアリン酸ナトリウム、モノステアリン酸グリセロール、タルク、塩化ナトリウム、脱脂粉乳、グリセロール、プロピレン、グリコール、水、エタノール、カルメロースカルシウム、カルメロースナトリウム、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ポリビニルアセタールジエチルアミノアセテート、ポリビニルピロリドン、ゼラチン、中鎖脂肪酸トリグリセライド、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油60、白糖、カルボキシメチルセルロース、コーンスターチ、無機塩等が含まれる。組成物は、望ましい場合、少量の湿潤剤または乳化剤、あるいはpH緩衝剤もまた含有することも可能である。これらの組成物は、溶液、懸濁物、エマルジョン、錠剤、ピル、カプセル、粉末、持続放出配合物等の形を取ることも可能である。伝統的な結合剤およびキャリア、例えばトリグリセリドを用いて、組成物を座薬として配合することも可能である。経口配合物は、医薬等級のマンニトール、ラクトース、デンプン、ステアリン酸マグネシウム、サッカリン・ナトリウム、セルロース、炭酸マグネシウムなどの標準的キャリアを含むことも可能である。適切なキャリアの例は、E．W．Martin, Remington’s Pharmaceutical Sciences(Mark Publishing Company, Easton, U.S.A）に記載される。このような組成物は、患者に適切に投与する形を提供するように、適切な量のキャリアと一緒に、治療有効量の療法剤、好ましくは精製型のものを含有する。配合物は、投与様式に適していなければならない。これらのほか、例えば、界面活性剤、賦形剤、着色料、着香料、保存料、安定剤、緩衝剤、懸濁剤、等張化剤、結合剤、崩壊剤、滑沢剤、流動性促進剤、矯味剤等を含んでいてもよい。

本発明の一実施形態において「塩」は、例えば、任意の酸性（例えばカルボキシル）基で形成されるアニオン塩、または任意の塩基性（例えばアミノ）基で形成されるカチオン塩を含む。塩類には無機塩または有機塩を含み、例えば、Berge et al., J. Pharm.Sci., 1977, 66, 1-19に記載されている塩が含まれる。また例えば、金属塩、アンモニウム塩、有機塩基との塩、無機酸との塩、有機酸との塩等が挙げられる。本発明の一実施形態において「溶媒和物」は、溶質および溶媒によって形成される化合物である。溶媒和物については例えば、J. Honig et al., The Van Nostrand Chemist’s Dictionary P650 (1953)を参照できる。溶媒が水であれば形成される溶媒和物は水和物である。この溶媒は、溶質の生物活性を妨げないものが好ましい。そのような好ましい溶媒の例として、特に限定するものではないが、水、または各種バッファーが挙げられる。本発明の一実施形態において「化学修飾」は、例えば、PEGもしくはその誘導体による修飾、フルオレセイン修飾、またはビオチン修飾等が挙げられる。

本発明を医薬として投与する場合、種々の送達（デリバリー）系が知られ、そしてこのような系を用いて、本発明の治療剤を適切な部位（例えば、食道）に投与することも可能であり、このような系には、例えばリポソーム、微小粒子、および微小カプセル中の被包：治療剤（例えば、ポリペプチド）を発現可能な組換え細胞の使用、受容体が仲介するエンドサイトーシスの使用；レトロウイルスベクターまたは他のベクターの一部としての療法核酸の構築などがある。導入法には、限定されるわけではないが、皮内、筋内、腹腔内、静脈内、皮下、鼻内、硬膜外、および経口経路が含まれる。好適な経路いずれによって、例えば注入によって、ボーラス（bolus）注射によって、上皮または皮膚粘膜裏打ち（例えば口腔、直腸および腸粘膜など）を通じた吸収によって、医薬を投与することも可能であるし、必要に応じてエアロゾル化剤を用いて吸入器または噴霧器を使用しうるし、そして他の生物学的活性剤と一緒に投与することも可能である。投与は全身性または局所であることも可能である。本発明ががんに使用される場合、さらに、がん（病変部）に直接注入する等、適切な経路いずれかによって投与されうる。

好ましい実施形態において、公知の方法に従って、ヒトへの投与に適応させた医薬組成物として、組成物を配合することができる。このような組成物は注射により投与することができる。代表的には、注射投与のための組成物は、無菌等張水性緩衝剤中の溶液である。必要な場合、組成物はまた、可溶化剤および注射部位での疼痛を和らげるリドカインなどの局所麻酔剤も含むことも可能である。一般的に、成分を別個に供給するか、または単位投薬型中で一緒に混合して供給し、例えば活性剤の量を示すアンプルまたはサシェなどの密封容器中、凍結乾燥粉末または水不含濃縮物として供給することができる。組成物を注入によって投与しようとする場合、無菌薬剤等級の水または生理食塩水を含有する注入ビンを用いて、分配することも可能である。組成物を注射によって投与しようとする場合、投与前に、成分を混合可能であるように、注射用の無菌水または生理食塩水のアンプルを提供することも可能である。

本発明の組成物、医薬、治療剤、予防剤を中性型または塩型あるいは他のプロドラッグ（例えば、エステル等）で配合することも可能である。薬学的に許容しうる塩には、塩酸、リン酸、酢酸、シュウ酸、酒石酸などに由来する遊離型のカルボキシル基とともに形成されるもの、イソプロピルアミン、トリエチルアミン、2－エチルアミノエタノール、ヒスチジン、プロカインなどに由来するものなどの遊離型のアミン基とともに形成されるもの、並びにナトリウム、カリウム、アンモニウム、カルシウム、および水酸化第二鉄などに由来するものが含まれる。

特定の障害または状態の治療に有効な本発明の治療剤の量は、障害または状態の性質によって変動しうるが、当業者は本明細書の記載に基づき標準的臨床技術によって決定可能である。さらに、場合によって、in vitroアッセイを使用して、最適投薬量範囲を同定するのを補助することも可能である。配合物に使用しようとする正確な用量はまた、投与経路、および疾患または障害の重大性によっても変動しうるため、担当医の判断および各患者の状況に従って、決定すべきである。しかし、投与量は特に限定されないが、例えば、1回あたり0.001、1、5、10、15、100、または1000mg/kg体重であってもよく、それらいずれか2つの値の範囲内であってもよい。投与間隔は特に限定されないが、例えば、1、7、14、21、または28日あたりに1または2回投与してもよく、それらいずれか2つの値の範囲あたりに1または2回投与してもよい。投与量、投与間隔、投与方法は、患者の年齢や体重、症状、対象臓器等により、適宜選択してもよい。また治療薬は、治療有効量、または所望の作用を発揮する有効量の有効成分を含むことが好ましい。悪性腫瘍マーカーが、投与後に有意に減少した場合に、治療効果があったと判断してもよい。有効用量は、in vitroまたは動物モデル試験系から得られる用量－反応曲線から推定可能である。

本発明の一実施形態において「患者」または「被験体」は、ヒト、またはヒトを除く哺乳動物（例えば、マウス、モルモット、ハムスター、ラット、ネズミ、ウサギ、ブタ、ヒツジ、ヤギ、ウシ、ウマ、ネコ、イヌ、マーモセット、サル、またはチンパンジー等の1種以上）を含む。

本発明の医薬組成物または治療剤もしくは予防剤はキットとして提供することができる。

特定の実施形態では、本発明は、本発明の組成物または医薬の1以上の成分が充填された、1以上の容器を含む、薬剤パックまたはキットを提供する。場合によって、このような容器に付随して、医薬または生物学的製品の製造、使用または販売を規制する政府機関によって規定された形で、政府機関による、ヒト投与のための製造、使用または販売の認可を示す情報を示すことも可能である。

特定の実施形態において、本発明の成分を含む医薬組成物を、リポソーム、微小粒子、または微小カプセルを介して投与することができる。本発明の多様な態様において、このような組成物を用いて、本発明の成分の持続放出を達成することが有用である可能性もある。

本発明の治療薬、予防薬等の医薬等としての製剤化手順は、当該分野において公知であり、例えば、日本薬局方、米国薬局方、他の国の薬局方などに記載されている。従って、当業者は、本明細書の記載があれば、過度な実験を行うことなく、使用すべき量等の実施形態を決定することができる。

（一般技術）
本明細書において用いられる分子生物学的手法、生化学的手法、微生物学的手法は、当該分野において周知であり慣用されるものであり、例えば、Sambrook J. et al.(1989). Molecular Cloning: A Laboratory Manual,Cold Spring Harborおよびその3rd Ed.(2001); Ausubel, F.M.(1987).Current Protocols in Molecular Biology, Greene Pub. Associates and Wiley-Interscience; Ausubel, F.M.(1989). Short Protocols in Molecular Biology: A Compendium of Methods from Current Protocols in Molecular Biology, Greene Pub. Associates and Wiley-Interscience; Innis, M.A.(1990).PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications, Academic Press; Ausubel, F. M.(1992). Short Protocols in Molecular Biology: A Compendium of Methods from Current Protocols in Molecular Biology, Greene Pub. Associates; Ausubel, F.M. (1995).Short Protocols in Molecular Biology: A Compendium of Methods from Current Protocols in Molecular Biology, Greene Pub. Associates; Innis, M.A. et al.(1995).PCR Strategies, Academic Press; Ausubel, F.M.(1999).Short Protocols in
Molecular Biology: A Compendium of Methods from Current Protocols in Molecular Biology, Wiley, and annual updates; Sninsky, J.J. et al.(1999). PCR Applications: Protocols for Functional Genomics, Academic Press、別冊実験医学「遺伝子導入＆発現解析実験法」羊土社、1997などに記載されており、これらは本明細書において関連する部分（全部であり得る）が参考として援用される。

人工的に合成した遺伝子を作製するためのDNA合成技術および核酸化学については、例えば、Gait, M.J.(1985). Oligonucleotide Synthesis: A Practical Approach, IRL Press; Gait, M.J.(1990). Oligonucleotide Synthesis: A Practical Approach, IRL Press; Eckstein, F.(1991). Oligonucleotides and Analogues: A Practical Approach, IRL Press; Adams, R.L. et al.(1992). The Biochemistry of the Nucleic Acids, Chapman & Hall; Shabarova, Z. et al.(1994).Advanced Organic Chemistry of Nucleic Acids, Weinheim; Blackburn, G.M. et al.(1996). Nucleic Acids in Chemistry and Biology, Oxford University Press; Hermanson, G.T.(I996). Bioconjugate Techniques, Academic Pressなどに記載されており、これらは本明細書において関連する部分が参考として援用される。

例えば、本明細書において、当該分野に知られる標準法によって、例えば自動化DNA合成装置（Biosearch、Applied Biosystems等から市販されるものなど）の使用によって、本発明のオリゴヌクレオチドを合成することも可能である。例えば、Steinら（Stein et al., 1988,Nucl. Acids Res. 16:3209）の方法によって、ホスホロチオエート・オリゴヌクレオチドを合成することも可能であるし、調節孔ガラスポリマー支持体（Sarin et al., 1988, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85:7448-7451）等の使用によって、メチルホスホネート・オリゴヌクレオチドを調製することも可能である。

本明細書において「または」は、文章中に列挙されている事項の「少なくとも1つ以上」を採用できるときに使用される。「もしくは」も同様である。本明細書において「2つの値の範囲内」と明記した場合、その範囲には2つの値自体も含む。

本明細書において引用された、科学文献、特許、特許出願などの参考文献は、その全体が、各々具体的に記載されたのと同じ程度に本明細書において参考として援用される。

以上、本発明を、理解の容易のために好ましい実施形態を示して説明してきた。以下に、実施例に基づいて本発明を説明するが、上述の説明および以下の実施例は、例示の目的のみに提供され、本発明を限定する目的で提供したのではない。従って、本発明の範囲は、本明細書に具体的に記載された実施形態にも実施例にも限定されず、特許請求の範囲によってのみ限定される。

以下に実施例を記載する。必要な場合、以下の実施例で用いる動物の取り扱いは、必要な場合、医薬基盤研究所および／または大阪大学において規定される基準を遵守し、ヘルシンキ宣言に基づいて行った。試薬類は具体的には実施例中に記載した製品を使用したが、他メーカー（Sigma－Aldrich、和光純薬、ナカライ、R&D Systems、USCN Life Science INC等）の同等品でも代用可能である。

（一般手法）
（材料および方法）
（マウス）
７～１０週齢の雌性Ｃ５７ＢＬ／６ＪマウスをＣＬＥＡ ＪＡＰＡＮ ＩＮＣ．から購入した（日本、大阪）。ＭｙＤ８８ ＫＯマウスをＯｒｉｅｎｔａｌ ＢｉｏＳｅｒｖｉｃｅ Ｉｎｃ．（日本、京都）から購入した。ＳＴＩＮＧのリガンド結合部位に機能欠失型変異を有する［Ｓａｕｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｉｎｆｅｃｔ． Ｉｍｍｕｎ．（２０１１）７９：６８８－９４］ＩＬ－１２ｐ４０ ＫＯおよびＳＴＩＮＧ変異マウス（Ｔｍｅｍ１７３ｇｔ）を、Ｊａｃｋｓｏｎ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（Ｂａｒ Ｈａｒｂｏｒ、ＭＥ、ＵＳＡ）から購入した。ＩＲＦ３／７ ＤＫＯマウスを、ＩＲＦ３ ＫＯ［Ｔａｎｇ ｅｔ ａｌ．， ＰＬｏＳ Ｏｎｅ．（２０１３）８：１－６］およびＩＲＦ７ ＫＯマウスから生成し、これらのうちの後者は、ＭＥＸＴのＮａｔｉｏｎａｌ Ｂｉｏ－Ｒｅｓｏｕｒｃｅ Ｐｒｏｊｅｃｔを介して、ＲＩＫＥＮ ＢＲＣ（日本、茨城）によって提供された。ＩＦＮＡＲ２ ＫＯマウスをＢ＆Ｋ Ｕｎｉｖｅｒｓａｌから得た。全ての動物実験を、Ａｎｉｍａｌ Ｃａｒｅ ａｎｄ Ｕｓｅ Ｃｏｍｍｉｔｔｅ ｏｆ ＲＩＭＤおよび大阪大学免疫学フロンティア研究センター（ＩＦＲｅＣ）のガイドラインに従って行い、動物の使用は、大阪大学により承認された。

（試薬）
２’３’－ｃＧＡＭＰ、ｃ－ｄｉ－ＧＭＰおよび３’３’－ｃＧＡＭＰを、Ｉｎｖｉｖｏｇｅｎ（Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ、ＵＳＡ）から購入した。ＤＭＸＡＡをＳｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ（Ｓｔ． Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ、ＵＳＡ）から購入し、５％のＮａＨＣＯ_３に溶解した。ヤマサ（日本、千葉）は、ｃ－ｄｉ－ＧＭＰを提供してくれた。ＯＶＡを関東化学（日本、大阪）から購入し、エンドトキシンレベルを、Ｔｏｘｉｃｏｌｏｒ（登録商標）（生化学工業、日本、東京）により１ＥＵ／ｍｇ未満として決定した。Ｋ３ ＣｐＧ ＯＤＮ（配列番号１）を、以前記載されたようにＧｅｎｅ Ｄｅｓｉｇｎ（Ｉｂａｒａｋｉ，Ｏｓａｋａ，Ｊａｐａｎ）によって合成された。

（サイトカインの測定）
マウスＩＬ－１２ｐ４０、マウスＩＬ－１３、およびヒトＩＦＮγのレベルを、ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ（Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ、ＵＳＡ）のＥＬＩＳＡキットを用いて測定した。

（統計分析）
Ｍａｎｎ－ＷｈｉｔｎｅｙのＵ検定、Ｓｔｕｄｅｎｔのｔ検定またはＢｏｎｆｅｒｒｏｎｉの多重比較検定を含む一元分散分析を、統計分析に用いた（^＊ｐ＜０．０５；^＊＊ｐ＜０．０１；^＊＊＊ｐ＜０．００１）。統計分析をＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍ ｓｏｆｔｗａｒｅ（Ｌａ Ｊｏｌｌａ、ＣＡ、ＵＳＡ）を用いて行った。

（実施例１：免疫化および脾臓細胞の培養）
麻酔後、Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウスを、０および１０日目に、ＯＶＡ（１０μｇ）、またはＯＶＡおよびＫ３ ＣｐＧ（１０μｇ）、ＤＭＸＡＡ（５０μｇ）、ｃ－ｄｉ－ＧＭＰ（１μｇ）、２’３’－ｃＧＡＭＰまたは３’３’－ｃＧＡＭＰ（１μｇ）、あるいはＫ３ ＣｐＧ＋２’３’－ｃＧＡＭＰ／３’３’－ｃＧＡＭＰ／ｃ－ｄｉ－ＧＭＰ／ＤＭＸＡＡで筋肉内に免疫化した。１７日目に、ＯＶＡ特異的血清ＩｇＧ１およびＩｇＧ２ｃを、以前に記載されたＥＬＩＳＡによって測定した［Ｋｕｒｏｄａ ｅｔ ａｌ．， Ｉｍｍｕｎｉｔｙ．（２０１１）３４：５１４－５２６］。ＩｇＧ２ｃおよびＩｇＧ１のＥＬＩＳＡにおいて使用される二次抗体は、西洋ワサビペルオキシダーゼコンジュゲートヤギ抗マウスＩｇＧ２ｃおよびＩｇＧ１（Ｂｅｔｈｙｌ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｍｏｎｔｇｏｍｅｒｙ、ＴＸ）であった。１７日目に、脾臓細胞を回収し、単細胞懸濁液を、ｇｅｎｔｌｅＭＡＣＳ ｄｉｓｓｏｃｉａｔｏｒ（ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃｈ、Ｇｌａｄｂａｃｈ、Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いて調製した。Ｔｒｉｓ－ＮＨ_４Ｃｌバッファーを用いた赤血球の溶解の後、脂肪をＲＰＭＩ（１％のペニシリン／ストレプトマイシンおよび１０％のウシ胎児血清（ＦＣＳ）を含有する）中で培養し、全ＯＶＡ（１０μｇ／ｍｌ）あるいはＭＨＣクラスＩまたはＭＨＣクラスＩＩに特異的であるＯＶＡペプチド（それぞれＯＶＡ２５７、ＯＶＡ３２３）（１０μｇ／ｍｌ）で４８時間刺激した。ＩＦＮγおよびＩＬ－１３の産生をＥＬＩＳＡによって測定した。

（結果：ＴＬＲ９－アゴニストおよびＳＴＩＮＧ－アゴニストの組み合わせは、１型アジュバントであり、２型免疫応答を抑制する）
アゴニストのＳＴＩＮＧアゴニスト、ＤＭＸＡＡ、ｃ－ｄｉ－ＧＭＰおよび哺乳動物の２’３’－ｃＧＡＭＰが、２型免疫応答を誘導することが報告されていることを考慮して［Ｚｈａｎｇ ｅｔ ａｌ．， Ｍｏｌ． Ｃｅｌｌ．（２０１３）５１：２２６－３５；Ｂｕｒｄｅｔｔｅ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ．（２０１１）４７８：５１５－８；Ｔａｎｇ ｅｔ ａｌ．， ＰＬｏＳ Ｏｎｅ．（２０１３）８：１－６］、本発明者らは、次に、Ｋ３ ＣｐＧがこれらの他のＳＴＩＮＧアゴニストと協同する能力を調べた。マウスＰＢＭＣは、３’３’－ｃＧＡＭＰで刺激しただけでなく、２’３’－ｃＧＡＭＰおよびｃ－ｄｉ－ＧＭＰもＫ３ ＣｐＧと協同して、先天性ＩＦＮγの産生を誘導した（図３Ａ）。

ｉｎ ｖｉｖｏにおいて、これらの組み合わせのアジュバントの特性を評価するために、本発明者らは、ＯＶＡタンパク質ならびにＫ３ ＣｐＧ、ＳＴＩＮＧ－アゴニスト、またはＫ３ ＣｐＧおよびＳＴＩＮＧ－アゴニストの組み合わせで、マウスを０日目および１０日目の２回免疫化した。１７日目に、抗原特異的抗体の応答および脾臓細胞の応答を試験した。ｃＧＡＭＰ、ｃ－ｄｉ－ＧＭＰおよびＤＭＸＡＡなどのＳＴＩＮＧアゴニストでアジュバント化された全てのマウス群は、血清の抗ＯＶＡ ＩｇＧ１の高い力価（図３Ｂ）、および脾細胞によるＯＶＡ特異的ＩＬ－１３の産生（図３Ｃ）で特徴づけられる２型免疫応答を有していたが、ＴＬＲ９アゴニストのＫ３ ＣｐＧでアジュバント化された群は２型免疫応答を有していなかった。明確な対照によって、Ｋ３ ＣｐＧの添加は、ＳＴＩＮＧアゴニストによって誘導される全ての２型免疫応答を、ＯＶＡ特異的な血清ＩｇＧ２ｃおよび脾細胞ＩＦＮγの強い誘導によって特徴づけられる１型免疫応答に変換し、この２型免疫応答は、ＯＶＡ特異的な血清ＩｇＧ２ｃおよび脾細胞ＩＦＮγの強い誘導によって特徴づけられ、他方でＯＶＡ特異的なＩｇＧ１およびＩＬ－１３の産生をシャットダウンする（図３Ｂおよび図３Ｃ）。本発明者らはまた、ＯＶＡ特異的なＣＤ８^＋Ｔ細胞によるＩＦＮγの相乗的な誘導を観察した（図６）。これらの結果は、ＴＬＲ９－アゴニストおよびＳＴＩＮＧ－アゴニストの組み合わせが、組み合わせによって免疫化されたマウスの抗原刺激脾臓細胞における相乗的適応性ＩＦＮγを誘導すること、およびＳＴＩＮＧアゴニストによって誘導される２型免疫応答を抑制することが可能な強力な１型アジュバントを生じさせることを示唆する。

（実施例２：ヒトＰＢＭＣの単離および刺激）
全てのｈＰＢＭＣの実験を、Ｉｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ Ｒｅｖｉｅｗ Ｂｏａｒｄ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ Ｉｎｎｏｖａｔｉｏｎからの承認に従って行った。ヒトＰＢＭＣを、ヒトリンパ分離培地（ＩＢＬ、日本）を用いて健常な血液提供者の血液から単離し、１×１０^６個の細胞をＲＰＭＩ中で培養した。ＰＢＭＣをＫ３ ＣｐＧ（１０μｇ／ｍｌ）、ｃＧＡＭＰ（１０μＭ）、またはＫ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰで２４時間刺激し、ＩＦＮγの産生をＥＬＩＳＡによって測定した。

ｉｎ ｖｉｔｒｏでの中和実験について、上記のように培養されたｈＰＢＭＣを、刺激の２４時間前に、ＩＬ－１２／２３ｐ４０中和抗体（クローン：Ｃ８．６、ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ、 Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ、ＵＳＡ）、Ｉ型ＩＦＮ中和抗体（クローン：ＭＭＨＡＲ－２、ＰＢＬ Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ Ｓｏｕｒｃｅ、Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ、ＮＪ、ＵＳＡ）、またはＩＬ－１２／２３ｐ４０中和抗体およびＩ型ＩＦＮ中和抗体の処置（５μｇ／ｍｌ）に、３０分間供する。

（結果：組み合わせた場合、Ｋ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰは、ヒトＰＢＭＣ（ｈＰＢＭＣ）におけるＩＦＮγを強力に誘導する）
Ｋ３ ＣｐＧは、１型免疫応答を誘導すると報告されているヒト化Ｋ型（Ｂ型としても知られている）ＣｐＧ ＯＤＮであるが、弱くＩＦＮを誘導するだけである［Ｋｌｉｎｍａｎ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔ． Ｒｅｖ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．（２００４）４：１－１０；Ｖｅｒｔｈｅｌｙｉ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．（２００１）１６６：２３７２－２３７７］。他方で、ｃＧＡＭＰは、強い１型ＩＦＮを誘導し得、アジュバントとして機能し［Ｌｉ ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ．（２０１３）３４１：１３９０－４］、他のＳＴＩＮＧアゴニストは、２型免疫応答を誘導することが報告された［Ｔａｎｇ ｅｔ ａｌ．， ＰＬｏＳ Ｏｎｅ．（２０１３）８：１－６］。Ｋ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰのこれらの公知の制限を克服するために、本発明者らは、Ｋ３ ＣｐＧおよび標準３’３’－ｃＧＡＭＰの組み合わせの免疫賦活性の特性をｉｎ ｖｉｔｒｏにおけるｈＰＢＭＣにおいて調べた。ＴＬＲ９媒介シグナル経路とＳＴＩＮＧ媒介シグナル経路との相互作用を見出すために複数のｈＰＢＭＣを用いて多くのサイトカインをスクリーニングした後（データは示さず）、本発明者らは、本発明の組み合わせが、ＩＦＮγの誘導において、強力な相乗作用（Ｋ３ ＣｐＧまたはｃＧＡＭＰ単独での刺激よりも約１０～９０倍）を示すことを見出した（図１Ａ）。

次に、ｈＰＢＭＣにおいて主要なＩＦＮγ産生細胞型を同定するために、本発明者らは、Ｋ３ ＣｐＧ、ＣＧＡＭＰ、またはこれらの組み合わせで刺激されたｈＰＢＭＣにおけるＩＦＮγの細胞内染色を行った。本発明者らの結果は、ＣＤ３^－ＣＤ５６^＋ＣＤ１６^＋ＮＫ細胞は、ｈＰＢＭＣの中で、組み合わせの刺激に対する応答における相乗的なＩＦＮγの主要な産生細胞であることを示す（図１Ｂ）。

Ｉ型ＩＦＮおよびＩＬ－１２は、１型免疫応答の誘導に加えて、ＩＦＮγの産生のためのＮＫ細胞を活性化することが可能である［Ｈｕｎｔｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｌｅｔｔ．（１９９７）５９：１－５；Ｎｇｕｙｅｎ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．（２００２）１６９：４２７９－４２８７］。したがって、本発明者らは、次に、ｈＰＢＭＣにおける組み合わせが誘導する先天性ＩＦＮγ産生におけるＩＬ－１２およびＩ型ＩＦＮの役割を調べた。ＩＬ－１２中和抗体での処置は、組み合わせの刺激によって相乗的なＩＦＮγの誘導を減少させた（図１Ｃ）。Ｉ型ＩＦＮ中和抗体での処置は、組み合わせが誘導するＩＦＮγの産生に対していずれの影響もなかったが、Ｉ型ＩＦＮおよびＩＬ－１２の両方を同時に中和することによって、相乗的なＩＦＮγ産生をさらに減少させた（図１Ｃ）。これらの結果は、ＩＬ－１２は、Ｉ型ＩＦＮとの組み合わせにおいて、ｈＰＢＭＣによるＩＦＮγの相乗的な産生に役に立つことを示す。まとめると、上記の結果は、組み合わせた場合、Ｋ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰは、ＩＬ－１２およびＩ型ＩＦＮに部分的に依存する機序を介して多量のＩＦＮγの産生をもたらす強力なＮＫ活性化因子であり得る。

（実施例３：マウスＰＢＭＣおよび樹状細胞の培養）
マウスＰＢＭＣを、マウスリンパ分離培地（ＩＢＬ、日本）を用いてＣ５７ＢＬ／６Ｊマウスから単離し、０．５×１０^６個の細胞をＲＰＭＩ中で培養した。ＧＭ－ＤＣの培養物を、Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウスの脛骨および大腿骨由来の骨髄細胞を洗い流し、これらの細胞を、２０ｎｇ／ｍｌのＧＭ－ＣＳＦ（Ｐｅｐｒｏ Ｔｅｃｈ、Ｒｏｃｋｙ Ｈｉｌｌ、ＮＪ、ＵＳＡ）の存在下で７日間培養するによって調製した。ＧＭ－ＤＣを、１％のペニシリン／ストレプトマイシンおよび２０％のＦＣＳを含有するＲＰＭＩ中で培養した。ＦＬ－ＤＣ培養物を、１００ｎｇ／ｍｌのヒトＦｌｔ３Ｌ（Ｐｅｐｒｏ Ｔｅｃｈ）の存在下で７日間培養されたＣ５７ＢＬ／６Ｊマウスの骨髄細胞から調製した。ＦＬ－ＤＣを、１％のペニシリン／ストレプトマイシンおよび１０％ＦＣＳを含有するＲＰＭＩ中で培養した。

野生型マウスおよびＩＲＦ３／７ ＤＫＯマウス由来のマウスＰＢＭＣをＫ３ ＣｐＧ、ｃＧＡＭＰ、またはＫ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰで２４時間刺激し、ＩＦＮγの産生をＥＬＩＳＡにより測定した。また、ＧＭ－ＤＣおよびＦＬ－ＤＣを、Ｋ３ ＣｐＧ、ｃＧＡＭＰ、またはＫ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰを２４時間刺激し、ＩＬ－１２ｐ４０およびＩＦＮαの産生をＥＬＩＳＡにより測定した。

（結果：マウスにおけるＫ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰによる相乗的なＩＦＮγの誘導の細胞機序および細胞内機序）
マウスにおける初期（先天性）ＩＦＮγの誘導に対する本発明のＴＬＲ９アゴニストとＳＴＩＮＧ－アゴニストとの間の相乗作用を調べるために、本発明者らは、マウスＰＢＭＣ（ｍＰＢＭＣ）をＫ３ ＣｐＧ、ｃＧＡＭＰ、またはこれらの組み合わせでｉｎ ｖｉｔｒｏにおいて刺激した。本発明者らがｈＰＢＭＣにおいて観察したものと同様な相乗的態様において、多量のＩＦＮγの産生を観察した。ＩＲＦ３およびＩＲＦ７は、それぞれｃＧＡＭＰ媒介性Ｉ型ＩＦＮおよびＣｐＧ媒介性Ｉ型ＩＦＮの誘導のための必要な下流の分子であるので［Ｗｕ ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ．（２０１３）３３９：８２６－３０；Ｋａｗａｉ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．（２００４）５：１０６１－８］、本発明者らは、野生型マウスまたはＩＲＦ３およびＩＲＦ７の両方を欠損したマウス（ダブルノックアウト、ＤＫＯ）のどちらかに由来するｍＰＢＭＣを用いて、相乗的なＩＦＮγの産生におけるＩＲＦ３およびＩＲＦ７の役割を調べた。相乗的なＩＦＮγの産生が、ＩＲＦ３／７ＤＫＯのｍＰＢＭＣにおいて抑制された（図２Ａ）。

ＩＬ－１２およびＩ型ＩＦＮは、ｈＰＢＭＣにおける相乗的なＩＦＮγの産生の原因となるため（図１Ｃ）、本発明者らは、ＩＬ－１２および／またはＩ型ＩＦＮを産生し得る樹状細胞を活性化する組み合わせられたＫ３ ＣＰＧおよびｃＧＡＭＰの能力を調べた。半発明者らが、ＧＭ－ＣＳＦ由来樹状細胞（ＧＭ－ＤＣ）およびＦｌｔ３Ｌ由来樹状細胞（ＦＬ－ＤＣ）を、Ｋ３ ＣｐＧ、ｃＧＡＭＰ、またはこれらの組み合わせとインキュベートすると、本発明者らは、ｍＰＢＭＣにおいて観察されたものと同様の相乗作用を見出した（図２Ｂ～図２Ｄ）。Ｋ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰの組み合わせは、単独での刺激により誘導される量よりも、ＧＭ－ＤＣ（図２Ｂ）およびＦＬ－ＤＣ（図２Ｃ）の両方による顕著に高いＩＬ－１２ｐ４０の産生、およびＦＬ－ＤＣ（図２Ｄ）による顕著に高いＩＦＮαの産生を誘導した。このことは、本発明の組み合わせによる相乗的なＩＦＮγの誘導において、ＩＬ－１２およびＩ型ＩＦＮに対する潜在的な役割を示す。あわせて、これらの結果は、ｈＰＢＭＣにおけるＩＦＮγを強力に誘導するＫ３ ＣｐＧとｃＧＡＭＰとの間の相乗作用は、マウスにおいて再現されることを示す。この相乗作用についての機序は、ＩＲＦ３／７媒介性細胞内シグナル伝達に関与し、相乗作用は、形質細胞様ＤＣ（ｐＤＣ）によるＩ型ＩＦＮ、ならびに古典的ＤＣ（ｃＤＣ）およびｐＤＣの両方によるＩＬ－１２の産生を誘導する。

（実施例５：細胞内サイトカインおよび細胞表面分子の染色）
ヒトＰＢＭＣをＫ３ ＣｐＧ（１０μｇ／ｍｌ）、ｃＧＡＭＰ（１０μＭ）、またはＫ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰで１６時間刺激し、最後の４時間はブレフェルジンＡの存在下で刺激した。刺激後、細胞を回収し、ＣＤ１６－ＰｅｒＣＰ－Ｃｙ５．５抗体（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ：Ｆｒａｎｋｌｉｎ Ｌａｋｅ、ＮＪ）、ＣＤ５６－ＢＶ４２１抗体（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ）、ＣＤ３－ＦＩＴＣ抗体（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）およびＣＤ８－ＰＥ抗体（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃｈ）を用いて表面分子を染色した。固定化および透過処理された細胞を、細胞内ＩＦＮγの検出のためにＩＦＮγ－ＡＰＣ（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ）で染色し、ＢＤ ＦＡＣＳＣＡＮＴＯ ＩＩ フローサイトメータを用いて分析した。

（実施例６：腫瘍細胞および処置）
Ｅ．Ｇ７－ＯＶＡ胸腺腫細胞を、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＶＡ、ＵＳＡ）から購入し、ＲＰＭＩ中で培養した。１×１０^６個の細胞を、０日目にマウスの背中の皮下に注射した。７および１０日目に、マウスは、ＰＢＳ（５０μｌ）、Ｋ３ ＣｐＧ（１０μｇ）、ｃＧＡＭＰ（１０μｇ）、またはＫ３ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰが腫瘍内に与えられ、腫瘍の成長についてマウスを２２日間モニターした。

（結果：Ｋ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰは、一緒にマウス同系外植腫瘍モデルにおける腫瘍の成長を抑制できる）
Ｔｈ１細胞およびＣＤ８^＋Ｔ細胞の応答は、抗腫瘍免疫の精製に重要であるので、本発明者らは、マウス腫瘍モデルにおけるＫ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰの組み合わせの免疫療法の潜在能力を調べた。本発明者らは、ＯＶＡ発現ＥＧ－７リンパ腫細胞をマウスに皮下注射によって接種した。７日目および１０日目に、マウスは、ＰＢＳ、Ｋ３ ＣｐＧ（１０μｇ）、ｃＧＡＭＰ（１０μｇ）、またはＫ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰの腫瘍内注射を受けた。組み合わせ処置は、ＰＢＳ、Ｋ３ ＣｐＧ、またはｃＧＡＭＰの処置と比べて、腫瘍の成長を顕著に抑制し（図５）、これは本発明の組み合わせは、ガンに対する抗原を含まない免疫治療剤として機能し得ることを示唆する。

（実施例７：ＫＯマウスにおけるＩＦＮγの産生）
野生型、Ｔｍｅｍ１７３ｇｔ、ＩＲＦ３／７ ＤＫＯ、ＭｙＤ８８ ＫＯおよびＩＦＮＡＲ ＫＯ Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウスを、ＯＶＡおよびＫ３ ＣｐＧ、ｃＧＡＭＰ、またはＫ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰで、０および１０日目に筋肉内経路を介して免疫化した。１７日目に、ＯＶＡ特異的血清ＩｇＧ２ｃおよびＩｇＧ１をＥＬＩＳＡにより測定した。また、脾臓細胞をＯＶＡで４８時間刺激し、ＩＦＮγの産生をＥＬＩＳＡにより測定した。

ＩＬ－１２ｐ４０＋／－および－／－Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウスもまた、ＯＶＡおよびＫ３ ＣｐＧ、ｃＧＡＭＰ、またはＫ３ ＣｐＧ＋ｃＧＡＭＰで、０および１０日目に筋肉内経路を介して免疫化した。１７日目に、ＯＶＡ特異的血清ＩｇＧ２ｃおよびＩｇＧ１をＥＬＩＳＡにより測定した。また、脾臓細胞を、ＯＶＡタンパク質で４８時間刺激し、ＩＦＮγの産生をＥＬＩＳＡにより測定した。

（結果：ＩＲＦ３／７、ＳＴＩＮＧ、ＭｙＤ８８、ＩＬ－１２およびＩ型ＩＦＮのシグナル伝達に依存するＩＦＮγの相乗的な誘導）
本発明者らは、ｍＰＢＭＣにおいて先天的なＩＦＮγの相乗的な産生が、ｃＧＡＭＰおよびＫ３ ＣｐＧのそれぞれによるＩ型ＩＦＮの誘導に必要とされるＩＲＦ３およびＩＲＦ７に完全に依存することを示した。ｃＧＡＭＰはＳＴＩＮＧのリガンドであり、Ｋ３ ＣｐＧは、アダプター分子ＭｙＤ８８を介してシグナル伝達するＴＬＲ９のリガンドであるため、本発明者らは、ＩＲＦ３／７ ＤＫＯマウス、ＩＦＮα／βレセプター（ＩＦＮＡＲ）ＫＯマウス、ＭｙＤ８８ ＫＯマウスおよびＳＴＩＮＧ変異マウスを用いて、ＩＲＦ３／７、ＭｙＤ８８、ＳＴＩＮＧおよびＩ型ＩＦＮの、組み合わせによって誘導される抗原特異的ＩＦＮγの相乗的な産生における関与を評価した。血清における組み合わせによって誘導された抗原特異的ＩｇＧ２ｃおよび脾臓によるＩＦＮγの産生は、野生型マウスと比較して、ＳＴＩＮＧ変異マウス、ＩＲＦ３／７ ＤＫＯマウス、ＭｙＤ８８ ＫＯマウスおよびＩＦＮＡＲ ＫＯマウスにおいて顕著に減少した（図４Ａおよび図４Ｂ）。

マウスおよびヒトＰＢＭＣにおける本発明者らのｉｎ ｖｉｔｒｏ研究はまた、ＩＬ－１２が先天性のＩＦＮγの相乗的な誘導に寄与することを示した。したがって、本発明者らは、次に、ＩＬ－１２ｐ４０＋／－マウスおよび－／－マウスを用いることによって、ＩＬ－１２の関与を調査した。本発明者らは、ＩＬ－１２ｐ４０が抗原特異的なＩＦＮγの相乗的な誘導に必要とされるが、ＩｇＧ２ｃ抗体の応答の誘導には必要とされないことを見出した（図４Ｃおよび図４Ｄ）。本発明者らの全ての結果は、Ｋ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰの組み合わせは、強力な１型アジュバントであり、ＩＲＦ３／７、ＳＴＩＮＧ、ＭｙＤ８８、ＩＬ－１２およびＩ型ＩＦＮのシグナル伝達依存的な態様で、抗原特異的ＩＦＮγの産生を相乗的に誘導していることを示唆している。

（実施例９：ＩｇＥ抗体の産生の測定）
本実施例は、アレルギー抑制についての実施例である。

麻酔後、マウスを、０および１０日目に、ＯＶＡ（１０μｇ）、またはＯＶＡおよびＫ３ ＣｐＧ（１０μｇ）、ｃＧＡＭＰ（１０μＭ）またはＫ３ ＣｐＧ＋ＧＡＭＰで筋肉内に免疫化した。１７日目に、ＯＶＡ特異的血清ＩｇＥを、ＥＬＩＳＡによって測定した。

（結果：ＳＴＩＮＧアゴニストはＩｇＥを誘導するが、ＣｐＧと組み合わせることによりこれを抑制する）
現行のアジュバントの多くは抗体産生を誘導するＴｈ２アジュバントであるが、これらのアジュバントはガンやアレルギーのワクチン療法には不向きであった。さらに、ＳＴＩＮＧアゴニストは副反応としてＩｇＥを誘導するため、アレルギー性炎症を引き起こす恐れもある。しかしながら本発明では、二種類のアジュバンを組み合わせるだけでＩｇＥ誘導を抑えながら強力なＴｈ１アジュバント効果を誘導できる（図８）。

（考察）
細胞内病原体またはガンに対する効率的なワクチンは、１型免疫応答を誘導するアジュバントを必要とする。ｃＧＡＭＰおよびｃ－ｄｉ－ＧＭＰなどの環状ジヌクレオチドは、膜貫通型分子ＳＴＩＮＧに直接結合し、ＴＢＫ１－ＩＲＦ３依存性シグナル経路を活性化してＩ型ＩＦＮを誘導するので、潜在的なワクチンアジュバントとして注目されてきた［Ｄｕｂｅｎｓｋｙ ｅｔ ａｌ．， Ｔｈｅｒ． Ａｄｖ． Ｖａｃｃｉｎｅｓ．（２０１３）１：１３１－１４３］。しかし、ＳＴＩＮＧ－アゴニストが、１型防御免疫応答よりもむしろ２型免疫応答を誘導するという証拠は［Ｔａｎｇ ｅｔ ａｌ．， ＰＬｏＳ
Ｏｎｅ．（２０１３）８：１－６］、それらの潜在的な治療的適用を制限することを示唆している。この研究において、本発明者らは、ＳＴＩＮＧ－アゴニストをＴＬＲ９リガンドのＫ３ ＣｐＧと組み合わせることによってこの問題を解決する。この組み合わせは、先天性ＩＦＮγおよび適応性ＩＦＮγの産生を相乗的に増強する。それは、強力な１型アジュバントとして機能し、抗体ならびにＣＤ４^＋Ｔｈ１細胞およびＣＤ８^＋Ｔ細胞を強く誘導し、そしてマウス腫瘍モデルにおける腫瘍の成長を効率的に抑制し得る抗腫瘍剤として機能する。

本研究は、Ｋ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰの組み合わせが、ヒトおよびマウスＰＢＭＣの両方において先天性ＩＦＮγの産生を相乗的に誘導することを示し（図１および図２）、この現象は、ヒトとマウスとの間で保存されていることを示唆している。本発明者らによるｉｎ ｖｉｔｒｏでの結果はまた、作用機序が、ＩＬ－１２およびＩ型ＩＦＮに関与することを示す。具体的には、Ｋ３ ＣｐＧとｃＧＡＭＰとの間の相乗作用の間、Ｉ型ＩＦＮは、その効果の喪失がＩＬ－１２で補填されるため必要とされなかった（図１Ｃ）。以前の報告では、Ｉ型ＩＦＮおよびＩＬ－１２が、リステリア・モノサイトゲネスの感染後、ＣＤ４^＋Ｔ細胞によってＩＦＮγの産生を相乗的に誘導し得ることが示唆された。それらは、両方のサイトカイン非存在下で相乗作用が顕著に減少したことを示したが、サイトカインのいずれか一方の非存在下では部分的に減少し、これは本発明者らの結果と一致する［Ｗａｙ ｅｔ ａｌ．， Ｉｍｍｕｎｏｌ．（２００７）１７８：４４９８－４５０５］。さらに、本発明者らは、ＰＢＭＣで観察された相乗作用と同様に、本発明の組み合わせは、ＧＭ－ＤＣおよびＦＬ－ＤＣにおけるＩＬ－１２ｐ４０の産生を相乗的に誘導することができ（図２Ｃおよび図２Ｄ）、通常の樹状細胞および形質細胞様の樹状細胞が組み合わせによって誘導された相乗作用に果たす潜在的な役割を示唆する。同様のＩＬ－１２の相乗作用は、ＭｙＤ８８およびＴＲＩＦ依存性シグナル経路を必要とする骨髄由来ＤＣにおけるＴＬＲリガンド、ＣｐＧおよびポリＩ：Ｃの組み合わせにより、Ｋｒｕｍｍｅｎらによって報告された［Ｋｒｕｍｍｅｎ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｌｅｕｋｏｃ． Ｂｉｏｌ．（２０１０）８８：１８９－９９］。本発明者らの結果はまた、ＭｙＤ８８依存性（ＴＬＲ９）および非依存性（ＳＴＩＮＧ）シグナル経路を活性化する分子の組み合わせが、強い免疫賦活剤を生じさせ、このような組み合わせは、免疫治療的適用に有用であり得ることを示唆する。

本発明者らによる発見によると、ＮＫ細胞は、ｈＰＢＭＣの培養、その後の組み合わせによる刺激における主要なＩＦＮγ産生細胞である（図１Ｂ）。他方で、以前の報告では、ＮＫ細胞は低いレベルのＴＬＲ９を発現するが、ＣｐＧの刺激に対して応答する細胞は、ｈＰＢＭＣにおけるＴＬＲ９発現ｐＤＣおよびＢ細胞であることが示されている。また、ＩＬ－１２およびＩ型ＩＦＮは、ＮＫ細胞におけるＩＦＮγの産生および細胞障害性を制御することが報告されている［Ｎｇｕｙｅｎ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．（２００２）１６９：４２７９－４２８７；Ｃｈａｃｅ ｅｔ ａｌ．， Ｃｌｉｎ．
Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｉｍｍｕｎｏｐａｔｈｏｌ．（１９９７）８４：１８５－１９３］。これらの報告および本発明者らのｉｎ ｖｉｔｒｏのデータを考慮すると、本発明者らが提唱する先天性ＩＦＮγの相乗的な誘導の機序は、ｐＤＣがＫ３ ＣｐＧに対して応答し、ｃＤＣまたはマクロファージなどの他の細胞がｃＧＡＭＰに対して応答して、多量のＩ型ＩＦＮおよびＩＬ－１２を産生し得るというものであり、これは、その後、ＩＬ－１２レセプターおよびＩ型ＩＦＮレセプターを介してシグナル伝達することによって、協同してＮＫ細胞におけるＩＦＮγの産生を誘導する。

２’３’－ｃＧＡＭＰのアジュバント効果についての最初の報告は、筋肉内ｃＧＡＭＰ免疫化が、ＳＴＩＮＧ依存的な態様で、抗原特異的Ｂ細胞およびＴ細胞の応答を誘導し得ることを示した［Ｌｉ ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ．（２０１３）３４１：１３９０－４］。３’３’－ｃＧＡＭＰを用いた本発明者らのｉｎ ｖｉｖｏの免疫化研究はまた、以前の報告と一致する；それは、ＳＴＩＮＧ依存的な態様で、強い抗原特異的Ｂ細胞およびＴ細胞の応答を誘導する（図４Ａおよび図４Ｂ）。本発明者らはまた、３’３’－ｃＧＡＭＰは、脾臓細胞において、ＩｇＧ１だけでなく、ＩｇＧ２ｃ抗体応答およびＴｈ２型サイトカイン応答を誘導し得る２型アジュバントであることを示した（図３Ｂおよび図３Ｃ）。２型アジュバントは通常Ｔｈ１様Ｉｇアイソタイプ（ＩｇＧ２ｃ）の産生を通常誘導しないが、Ｉ型ＩＦＮがＩｇＧ２ｃ抗体応答を誘導するため、おそらくＩ型ＩＦＮを誘導する能力に起因して、ｃＧＡＭＰはＴｈ１様Ｉｇアイソタイプ誘導し得る［Ｓｗａｎｓｏｎ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｅｘｐ． Ｍｅｄ．（２０１０）２０７：１４８５－５００］。さらに、本発明者らは、別個の機序が、ｃＧＡＭＰによるＢ細胞およびＴ細胞の応答の誘導に関与しており、この機序において、ｃＧＡＭＰ誘導性の抗体応答は、Ｉ型ＩＦＮシグナル伝達に依存するが、Ｔｈ２応答はこれに依存しないことを見出した（図４Ｂ）。さらに、ｃＧＡＭＰは、ＳＴＩＮＧ－ＩＲＦ３軸のみを介してシグナルを伝達して、Ｉ型ＩＦＮの産生を誘導することが知られているので［Ｗｕ ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ．（２０１３）３３９：８２６－３０］、本発明者らは、ＩＲＦ３／７ＤＫＯマウスにおける抗体およびＴ細胞の応答の減少が観察されることを予測した。しかし、ｃＧＡＭＰ誘導性の抗体応答はＩＲＦ３／７ＤＫＯマウスにおいてわずかに減少した一方で、ｃＧＡＭＰ誘導性のＴ細胞応答はＩＲＦ３／７に部分的に依存し、驚くべきことにＭｙＤ８８に依存していたが、そのような効果はＳＴＩＮＧに完全に依存していた（図４Ａおよび図４Ｂ）。したがって、本発明者らは、さらに、ＳＴＩＮＧ－ＩＲＦ３経路に加えて、ｃＧＡＭＰが、アダプター分子ＭｙＤ８８に関与する未知のシグナル経路を活性化し得る可能性を調査している。

Ｋ３ ＣｐＧは１型免疫応答を誘導することが可能なアジュバントとして報告されたが［Ｃｈｕ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｅｘｐ． Ｍｅｄ．（１９９７）１８６：１６２３－１６３１］、本発明者らは、Ｋ３ ＣｐＧが、ｃＧＡＭＰまたは組み合わせによる免疫化群に匹敵するレベルで、抗原特異的な抗体またはＴ細胞の応答を誘導することができないため、Ｋ３ ＣｐＧが単独で弱い１型アジュバントであることを見出した。興味深いことに、弱い１型アジュバントＫ３ ＣｐＧの２型アジュバントｃＧＡＭＰとの組み合わせが、相乗的な抗原特異的ＩＦＮγの産生ならびに強いＴｈ１様抗体およびＣＤ８^＋Ｔ細胞の応答を誘導する強い１型アジュバントを生じさせた（図３および図６）。本発明者らの発見はまた、２型アジュバントであるＣｐＧおよびＩＦＡの組み合わせが１型免疫応答を誘導し、他方で２型免疫応答を抑制することを示す以前の研究と一致している［Ｃｈｕ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｅｘｐ． Ｍｅｄ．（１９９７）１８６：１６２３－１６３１］。重要なことに、本発明の組み合わせによる強力な１型免疫応答の誘導に加えて、本発明者らは、本発明の組み合わせが、ｃＧＡＭＰによって誘導される２型免疫応答を抑制し得ることも示した。このことは、優位な２型応答が、アレルギーなどの多くの慢性疾患を引き起こすことが報告されているため、安全性の増加に重要である［Ｓｐｅｌｌｂｅｒｇ ｅｔ ａｌ．， Ｃｌｉｎ． Ｉｎｆｅｃｔ． Ｄｉｓ．（２００１）９０５０９：７６－１０２；Ｍｕｌｌｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．（１９９３）１５０：５５７６－５５８４；Ｓｅｋｉ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔ． Ｍｅｄ．（２００３）９：１０４７－１０５４］。本発明者らの結果はまた、ＩｇＧ２ｃの産生が増強され、他方でＩｇＧ１の産生がＣｐＧによって抑制されるということにおいて、Ｌｉｎらの発見と一致している［Ｌｉｎ ｅｔ ａｌ．， Ｅｕｒ． Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．（２００４）３４：１４８３－７］。さらに、抗原特異的ＩＦＮγの誘導に対する本発明の組み合わせの相乗効果は、ＩＲＦ３およびＩＲＦ７に依存しており（図４Ａおよび図４Ｂ）、Ｉ型ＩＦＮは、この相乗作用において重要な役割を果たし得ることを示している。この考えは、本発明者らがＩＦＮＡＲ ＫＯマウスにおいて観察した相乗作用の完全な消失によってさらに支持される（図４Ａおよび図４Ｂ）。さらに、ＭｙＤ８８は、ＴＬＲ９の下流シグナル伝達分子であり、ｃＧＡＭＰは、ＳＴＩＮＧのリガンドであるので、本発明者らは、組み合わせの１型免疫誘導効果が、予測通りＭｙＤ８８およびＳＴＩＮＧの両方に依存していることを見出した（図４Ａおよび図４Ｂ）。他方で、本発明者らは、ＩＬ－１２ｐ４０がＴｈ１型サイトカイン応答の相乗的な誘導に必要とされるが、ＩｇＧ２ｃ抗体応答の誘導には必要とされないことを示した（図４Ｃおよび図４Ｄ）。ＩＬ－１２は、Ｔｈ１細胞の発生およびＩＦＮγの産生に重要であるので、Ｔｈ１型サイトカイン応答におけるＩＬ－１２の依存性を観察することは合理的である。本発明の組み合わせによるＩＬ－１２非依存性のＩｇＧ２ｃの誘導について考えられる説明は、ＫＯマウスにおけるＩ型ＩＦＮの産生は、ＩＬ－１２の非存在を補填し得るということである。以前の報告では、Ｔ細胞非依存的な態様で、Ｉ型ＩＦＮがＩｇＧ２ｃ抗体の応答を誘導し得［Ｓｗａｎｓｏｎ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｅｘｐ． Ｍｅｄ．（２０１０）２０７：１４８５－５００］、他方で、ＩＬ－１２は、Ｔ細胞またはＮＫ細胞からのＩＦＮγ産生を誘導することによって、ＩｇＧ２ｃ抗体応答を誘導する［Ｇｒａｃｉｅ ｅｔ ａｌ．， Ｅｕｒ． Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．（１９９６）２６：１２１７－１２２１］。

最終的に、本発明者らは、Ｋ３ ＣｐＧおよびｃＧＡＭＰの組み合わせが、この組み合わせでの処置だけで、ＥＧ－７マウス腫瘍モデルにおける腫瘍の成長を効率的に抑制できたため、強い抗腫瘍効果を有しているということを見出した（図５）。本発明者らのｉｎ ｖｉｖｏでの結果は、組み合わせが、強いＣＤ８^＋Ｔ細胞の応答を誘導することを示し（図６）、ＣｐＧ ＯＤＮが、ＣＤ８^＋細胞傷害性Ｔ細胞の精製を誘導するということをすでに報告されているので［Ｋｒｉｅｇ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔ． Ｒｅｖ． Ｄｒｕｇ Ｄｉｓｃｏｖ．（２００６）５：４７１－８４］、本発明の組み合わせの抗腫瘍効果が、強いＣＤ８^＋Ｔ細胞の活性化の誘導に起因する可能性がある。本発明者らの仮説は、ＯＶＡコンジュゲートＣｐＧ ＯＤＮのワクチン接種もまた、ＣＤ８^＋Ｔ細胞に依存する強力な抗腫瘍効果を有することを示す以前の報告によって支持される［Ｃｈｏ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．（２０００）１８：５０９－５１４］。しかし、本発明の組み合わせ処置によって増強されるＮＫ細胞の活性化の可能性を除外できず、ｈＰＢＭＣ培養物中の場合と同様に、本発明者らは、ＩＦＮγの相乗効果において主要な役割を果たすものとしてＮＫ細胞を同定した。ＯＶＡコンジュゲートＣｐＧ ＯＤＮ［Ｃｈｏ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．（２０００）１８：５０９－５１４］またはナノ粒子コンジュゲートＣｐＧ ＯＤＮ［Ｄｅ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． Ｕ．Ｓ．Ａ．（２０１３）１１０：１９９０２－７］などの以前報告されたＣｐＧベースの抗腫瘍剤に対する本発明の組み合わせ治療の利点は、それは、Ｋ３ ＣｐＧとｃＧＡＭＰとの間の化学的なコンジュゲートを必要としないということである。さらに、これらのシステムとは異なり、本発明のアプローチは、腫瘍抗原の注射またはコンジュゲートを必要としない。それは、予防ワクチンよりはむしろ抗原を含まない抗腫瘍剤として機能する。

結論として、本発明者らによる研究は、ＴＬＲ９－アゴニストおよびＳＴＩＮＧ－アゴニストの組み合わせは、強い細胞性免疫応答を必要とするワクチンに有利な１型アジュバント、および相乗的なＩＦＮγの産生のためにヒトＮＫ細胞も刺激し得る有望な抗腫瘍剤であることを示唆する。したがって、本発明者らの結果は、ＴＬＲ９およびＳＴＩＮＧのシグナル経路の組み合わせられた作用機序に対する洞察を提供し、これは、本発明の組み合わせの免疫療法およびアジュバント特性を潜在的に促進する。

（実施例１０：STINGリガンドの多種類に関する実験）
本実施例では、実施例１～９と同様の実験を行う。ｃＧＡＭＰ、ｃ－ｄｉ－ＧＭＰ、２’３’－ｃＧＡＭＰ、ＤＭＸＡＡを用いて、実施例７～９の条件で、３’３’－ｃＧＡＭＰに代えて、ｃＧＡＭＰ、ｃ－ｄｉ－ＧＭＰ、２’３’－ｃＧＡＭＰ、ＤＭＸＡＡを用いて、同様の実験を行う。

そうすると、ｃＧＡＭＰ、ｃ－ｄｉ－ＧＭＰ、２’３’－ｃＧＡＭＰ、ＤＭＸＡＡでも、実施例１～６で見られるように、３’３’－ｃＧＡＭＰと同様の結果が得られることが理解される。

（実施例１１：ＣｐＧ（Ｋ３以外）の多種類のものに関する実験）
本実施例では、実施例１～９の実験をＫ３以外のＣｐＧ１８２６、Ｄ３５ ＣｐＧのようなＣｐＧを用いて行った。

（材料および方法）
ＣｐＧ１８２６（配列番号２＝5’-tccatgacgttcctgacgtt-3’）、およびＤ３５ ＣｐＧ（配列番号３＝5’-ggtgcatcgatgcagggggg-3’）を、それぞれＩｎｖｉｖｏｇｅｎから購入、およびＧｅｎｅ Ｄｅｓｉｇｎ（Ｉｂａｒａｋｉ，Ｏｓａｋａ，Ｊａｐａｎ）によって合成された。これらは、合成または購入後、凍結乾燥品を滅菌水にて溶かして使用した。

(方法)
マウス（ｃ５７ＢＬ／６）の脾細胞を１×１０^７細胞／ｍｌに調整し、ｉｎ ｖｉｔｒｏにおいて上記ＣｐＧ等の刺激剤で２４時間刺激した培養上清中のＩＦＮ－γをＥＬＩＳＡ法にて測定した。これらの方法は、（一般手法）に記載されるように行った。
（結果）
結果を図１２に示す。示されるように、それぞれのＣｐＧは、ＳＴＩＮＧアゴニストである３’３’－ｃＧＡＭＰと組み合わせた場合に脾臓細胞においてインターフェロン産生において相乗効果が生じることが実証された。したがって、本発明の作用効果は、特定のＣｐＧに限定されず広くＣｐＧ一般において発揮されることが実証されたといえる。

（参考文献）
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４４． Ｈｏｎｄａ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ．（２００５）４３４：７７２－７７７．
４５． Ｋｏｂｉｙａｍａ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． Ｕ． Ｓ． Ａ．（２０１４）１１１：１－６．
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以上のように、本発明の好ましい実施形態を用いて本発明を例示してきたが、本発明は、特許請求の範囲によってのみその範囲が解釈されるべきであることが理解される。本明細書において引用した特許、特許出願および文献は、その内容自体が具体的に本明細書に記載されているのと同様にその内容が本明細書に対する参考として援用されるべきであることが理解される。本願は、日本国特願２０１４－２３５９３４号に対して優先権主張をするものであり、その内容は全体が本願において参考として援用される。

本発明は、次世代型のアジュバントとして技術的および経済的にも波及効果があると思われ、製薬業、バイオ産業等において産業上の利用可能性を見出すことができる。

配列番号１：Ｋ３ ＣｐＧの配列：5’-atcgactatcgagagttctc-3’
配列番号２：ＣｐＧ１８２６の配列：5’-tccatgacgttcctgacgtt-3’
配列番号３：Ｄ３５ ＣｐＧの配列： 5’-ggtgcatcgatgcagggggg-3’

Claims (1)

1. 図面に記載の発明。

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