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JP2023062014A - Ｍｈｃクラスｉエピトープ送達ポリペプチド - Google Patents

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Abstract

【課題】１つ又は２つ以上のＴ細胞エピトープを細胞のＭＨＣクラスＩ提示経路に送達することができる新規Ｔ細胞エピトープ送達ポリペプチドを提供する。
【解決手段】ポリペプチドは、１）Ｂ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化されている、２）組み込まれたＴ細胞エピトープを含む、並びに／又は、３）毒素機能を保持する毒素エフェクターを含む、ポリペプチドを含む。
【選択図】なし

Description

本発明は、一般に、脊索動物細胞によるＭＨＣクラスＩ提示のために異種Ｔ細胞エピトープを送達するポリペプチドの能力を導入するためのポリペプチド修飾方法、及びこれらの方法を用いて製造されたポリペプチドに関する。より具体的には、本発明は、ＭＨＣクラスＩ分子によって認識されうる、及び脊索動物細胞のＭＨＣクラスＩ系によって細胞表面に提示されうる、１つ又は２つ以上のＴ細胞エピトープペプチドを付加させることによって、プロテアソーム送達エフェクター機能を有するポリペプチドを修飾して、免疫特性の点で親分子と異なる異種Ｔ細胞エピトープ送達ポリペプチドにする方法に関する。本発明の特定の方法は、１つ又は２つ以上のＴ細胞エピトープの導入によって抗原性及び／又は免疫原性を低減させるようにポリペプチドを修飾する方法に関する。別の態様において、本発明は、本発明の方法を用いて生成されたポリペプチド、及び本発明の方法を用いて生成されたポリペプチドを含む細胞標的化分子に関する。本発明の細胞標的化分子は、例えば、様々な疾患、例えばがん、腫瘍、他の増殖異常、免疫障害及び微生物感染などの、障害及び状態の診断及び治療などの、非常に多くの用途に使用することができる。
両生類、鳥類、魚類、哺乳類、爬虫類及びサメなどの脊索動物の免疫系は、特に脅威となる外来性分子、細胞及び病原体の存在を特定しようと外因性分子の細胞外環境と細胞内環境両方を絶えず探査している。主要組織適合性（ＭＨＣ，Major Histo-Compatibility
）系は、脊索動物において適応免疫系の一部として機能する（Janeway's Immunobiology
（Murphy K, ed., Garland Science, 8thed.,2011)）。脊索動物体内で、細胞外抗原は
ＭＨＣクラスII系によって提示されるが、細胞内抗原はＭＨＣクラスＩ系によって提示されうる。
一般に、細胞への外因性ペプチド、ポリペプチド又はタンパク質の投与は、細胞膜の物理的バリアのため、これらの分子がその細胞に侵入する結果にはならない。加えて、これらの分子は、細胞表面及び／又は細胞外環境で細胞外酵素活性によって分解されて小分子になることが多い。エンドサイトーシスによって細胞外環境から内在化されるポリペプチド及びタンパク質は、一般に、初期エンドソーム、後期エンドソーム及びリソソームを含むエンドサイトーシス経路の一部としてリソソームタンパク質分解によって分解される。ファゴサイトーシスによって細胞外環境から内在化されるポリペプチド及びタンパク質は、一般に、ファゴリソソームで終わる同様の経路によって分解される。
ＭＨＣクラスII経路は、一般に特殊化抗原提示細胞によるファゴサイトーシス及びプロセッシング後、細胞外空間内の分子に由来する抗原性ペプチドを提示し、これらの細胞は、プロフェッショナル抗原提示細胞又は他の抗原提示細胞、例えば樹状細胞（ＤＣ，dendritic cell）、単核食細胞（ＭＮＰＣ，mononuclearphagocyte）、特定の内皮細胞及び
Ｂリンパ球（Ｂ細胞）などでありうる。これらの抗原提示細胞は、ＣＤ４陽性（ＣＤ４＋，CD4 positive）Ｔリンパ球（Ｔ細胞）による認識のためにＭＨＣクラスII分子と複合体を形成した特定のペプチドを該細胞表面に提示する。その一方で、ＭＨＣクラスＩ系は、脊索動物のほとんどの細胞において機能して、ＣＤ８＋Ｔ細胞による認識のために細胞内空間、一般にサイトゾル、から抗原性ペプチドを提示する。
ＭＨＣクラスＩ系は、細胞内抗原の抗原提示をもたらすことにより、免疫系において不可欠な役割を果たす（Cellularand Molecular Immunology（Abbas A, ed., Saunders, 8thed., 2014））。このプロセスは、主として新生物細胞から及び細胞内病原体が関与する微生物感染から保護するために脊索動物において進化した適応免疫系の重要な部分である
と考えられているが、特定の損傷細胞はこのプロセスによって同様に除去されうる。ＭＨＣクラスＩ分子と複合体を形成した抗原ペプチドの提示は、溶解、アポトーシスの誘導、及び／又は壊死によって提示細胞を細胞毒性Ｔ細胞（ＣＴＬ，cytotoxic T-cell）による標的化殺滅に対して感作させる。ＭＨＣクラスＩ分子と複合体を形成した特異的ペプチドエピトープの提示は、がん、腫瘍及び細胞内病原体に対する免疫応答の刺激及び維持に大きな役割を果たす。
ＭＨＣクラスＩ系は、様々な細胞内エピトープ、自己又は非自己（外来性）両方のペプチド抗原又は脂質抗原両方をプロセッシングし、細胞表面に提示するように、継続的に機能する。ＭＨＣクラスＩは、細胞内病原体又は形質転換細胞からの外来性抗原を呈示し、防御Ｔ細胞免疫応答を開始するようにＣＤ８＋エフェクターＴ細胞にシグナルを送る。加えて、ＭＨＣクラスＩ系は、自己ペプチドエピトープを提示するように継続的に機能して、免疫学的寛容を確立し、維持する。
ＭＨＣクラスＩ系によるペプチドエピトープ提示は、５つの主要ステップを含む：１）細胞質ペプチドの生成、２）小胞体（ＥＲ，endoplasmic reticulum）の内腔へのペプチ
ドの輸送、３）特定のペプチドと結合しているＭＨＣクラスＩ分子の安定した複合体形成、４）細胞表面でのそれらの安定したペプチド－ＭＨＣクラスＩ分子複合体（ペプチド－ＭＨＣクラスＩ複合体）の提示、及び５）特異的ＣＤ８＋Ｔ細胞（特異的ＣＴＬを含む）による提示された特定の抗原性ペプチド－ＭＨＣクラスＩ複合体の認識。
提示された抗原－ＭＨＣクラスＩ複合体のＣＤ８＋Ｔ細胞による認識は、ＣＤ８＋Ｔ細胞活性化、クローン増殖、及びＣＤ８＋エフェクター細胞（特異的エピトープ－ＭＨＣクラスＩ複合体を提示する破壊細胞を標的にするＣＴＬを含む）への分化につながる。これは、特異的ＣＤ８＋エフェクター細胞集団の生成につながり、この集団の一部が体全体を移動して、特異的エピトープ－ＭＨＣクラスＩ複合体を提示する細胞を探索して破壊する。
ＭＨＣクラスＩ系は、サイトゾルペプチドで開始される。サイトゾル中のペプチドの存在は、様々な形で現れることがある。一般に、ＭＨＣクラスＩ分子によって提示されるペプチドは、細胞内タンパク質及びポリペプチドのプロテアソーム分解から得られる。ＭＨＣクラスＩ経路は、ＥＲ膜と会合している抗原ペプチド輸送体（ＴＡＰ，transporter associated with antigen processing）タンパク質で始まることができる。ＴＡＰがペプチドをサイトゾルからＥＲの内腔に移行させ、その後、そこでペプチドは空のＭＨＣクラスＩ分子と会合することができる。ＴＡＰは、６～４０アミノ酸残基も含むが最も一般的には約８～１２アミノ酸残基のサイズのものであるペプチドを移行させる（Koopmann J et al.,Eur J Immunol 26: 1720-8 (1996)）。
ＭＨＣクラスＩ経路は、プロセッシングのためにタンパク質、ポリペプチド又はペプチドのサイトゾルに輸送すること、そしてその後ＴＡＰ媒介移行によりＥＲに再び入り直すことを含む経路によってＥＲの内腔で開始されることもある。
ＴＡＰによってサイトゾルからＥＲの内腔に輸送されたペプチドは、その後、様々なＭＨＣクラスＩ分子による結合に利用されうる。ＥＲの内腔において、ＴＡＰを含む多成分ペプチド負荷マシンは、安定したペプチド－ＭＨＣクラスＩ分子複合体の構築に役立ち、場合によっては、特に、トリミングと呼ばれるプロセスでの最適なサイズのペプチドへの切断により、ペプチドをさらにプロセッシングする（Mayerhofer P, Tampe R, J Mol Biol piiS0022-2835 (2014)を参照されたい）。ＥＲにおいて、様々なＭＨＣクラスＩ分子
は、高特異的免疫グロブリン型の抗原結合ドメインを用いて、ＭＨＣクラスＩ分子が強い親和性を有する特異的ペプチドのみと堅く結合する。その後、ペプチド－ＭＨＣクラスＩ
複合体は、細胞外環境への提示及びＣＤ８＋Ｔ細胞による認識のために分泌経路によって細胞膜に輸送される。
エピトープ－ＭＨＣクラスＩ複合体のＣＤ８＋Ｔ細胞による認識は防御免疫応答を開始し、１又は２以上のＣＴＬの細胞毒活性のため、最終的には提示細胞の死滅で終わる。ＣＴＬは、様々な特異性を有する様々なＴ細胞受容体（ＴＣＲ，T-cell receptor）を発現
する。ＭＨＣ対立遺伝子は高可変性であり、これらの多型によって付与される多様性は、二通りで、すなわち、ペプチド抗原の結合に影響を及ぼすことによって、及びＭＨＣ分子とＴＣＲ間の接触領域に影響を及ぼすことによって、Ｔ細胞による認識に影響を及ぼすことができる。その特定の細胞表面ＴＣＲを介したＣＴＬによる抗原－ＭＨＣクラスＩ分子複合体認識に応じて、ＣＴＬは、主として提示細胞へのパーフォリン及び／又はグランザイム送達によって媒介される細胞溶解活性によって、抗原－ＭＨＣクラスＩ複合体提示細胞を殺滅することになる。加えて、ＣＴＬは、免疫賦活性サイトカイン、例えば、インターフェロンガンマ（ＩＦＮ－ガンマ，interferon gamma）、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ，tumor necrosisfactor）アルファ、マクロファージ炎症性タンパク質－１ベータ（ＭＩＰ－１ベータ，macrophageinflammatory protein-1 beta）、並びにインターロイキン、例えばＩＬ－１７、ＩＬ－４及びＩＬ－２２などを放出することになる。さらに、活性化されたＣＴＬは、それらを活性化したエピトープ－ＭＨＣクラスＩ複合体の提示細胞の近位を、その近位細胞の存在するペプチド－ＭＨＣクラスＩ複合体レパートリーにかかわらず、無差別に殺滅することができる（Wiedemann A et al., Proc Natl AcadSciUSA103: 10985-90 (2006)）。これらのエピトープ－ＭＨＣクラスＩ複合体誘導免疫応答を、患者体内の特定の細胞タイプを殺滅するための並びに他の近位細胞に対して免疫系を感作するための治療薬に利用することができるだろうと考えられた。
ＭＨＣクラスＩ提示経路は、所望の免疫応答を誘導するために様々な治療薬に活用することができるだろう。しかし、そのような技術の開発には、例えば、細胞膜を通っての送達；エンドサイトーシス経路の回避及びリソソームの破壊；並びに一般には標的細胞による外来性ポリペプチドの離隔、修飾及び／又は破壊を含む、いくつかの障害がある（Sahay G et al., J Control Release 145: 182-195 (2010)、Fuchs H et al., Antibodies 2:209-35 (2013)）。
加えて、ポリペプチドを含む治療薬、例えば、ポリペプチド系生物製剤及びバイオ医薬品の有効性は、該治療薬に反応してレシピエントにおいて発生する望ましくない免疫応答によって削減されることが多い。事実上全てのポリペプチド系治療薬は、哺乳動物対象への投与後、ある程度の免疫応答を誘導する。様々な免疫応答レベルは、低レベル、低親和性及び一過性免疫グロブリン－Ｍ抗体の産生から高レベル、高親和性免疫グロブリンＧ抗体の産生までを包含する。治療薬の免疫原性は、治療有効性を低下させる、薬物動態を有害に変化させる、及び／又は、数ある帰結のなかでも、過敏症反応、アナフィラキシー、アナフィラキシー様反応若しくは輸注反応をもたらす、望ましくない免疫応答をレシピエントにおいて生じさせることもある（Buttel I et al.,Biologicals 39: 100-9 (2011)
を参照されたい）。
例えば、ポリペプチド系治療薬は、レシピエントが該治療薬の抗原性部位に対する抗体（中和抗体又は坑薬物抗体と呼ばれることもある）を生じる原因になることがある。治療薬を認識する抗体を発生させる免疫応答は、該治療薬の作用に対する免疫抵抗をもたらすこともある。加えて、内因性因子を有する抗治療抗体間の交差反応が望ましくない臨床成績をもたらすこともある。
レシピエントが哺乳動物であり、ポリペプチド配列が植物又は微生物に由来する場合などの、レシピエントと遠縁に当たる種に由来するポリペプチド配列を有するポリペプチド
系治療薬は、レシピエントの免疫系による攻撃標的にされる傾向がある（総説については、Sauerborn M etal.,TrendsPharmacol Sci 31: 53-9 (2010)を参照されたい）。脊椎
動物免疫系は、自然免疫系と適応免疫系の両方で外来性ポリペプチド配列を認識することに適応している。したがって、例えば２つの異種ヒトポリペプチド配列の組換え接合部を含むポリペプチドのヒトへの投与などの、同じ脊椎動物種からの脊椎動物へのポリペプチドの投与は、非自己として認識され、免疫応答を惹起しうる。
したがって、ポリペプチド含有治療薬を設計する際、治療的処置を受ける対象における望ましくない免疫応答の出現を予防及び／又は低減するために治療薬の免疫原性を最小にするように努めることが、多くの場合、望ましい。特に、Ｂ細胞及び／又はＴ細胞抗原性及び／又は免疫原性を生じさせる可能性が高い治療薬のポリペプチド領域は、除去、抑制及び最小化の標的にされる。
所与のポリペプチド配列中のＢ細胞エピトープとＴ細胞エピトープの両方を、ソフトウェアを使用してインシリコで予測することができる（Bryson C et al., BioDrugs 24: 1-8 (2010)を参照されたい）。例えば、EpiMatrix（EpiVax社製、Providence、RI、U.S.）と呼ばれるソフトウェアをうまく利用して、組換えタンパク質におけるＴ細胞免疫原性を予測した（De GrootAet al., Dev Biol (Basel) 122: 171-94 (2005)、Koren E et al.,Clin Immunol 124:26-32 (2007)）。
短縮化又は変異による抗原性及び／又は免疫原性エピトープの除去などの、ポリペプチド含有治療薬の免疫原性を低減するための多くのアプローチが記載されている（Tangri Set al., JImmunol 174: 3187-96 (2005)、Mazor R et al., Proc Natl Acad Sci USA 109:E3597-603 (2012)、Yumura K et al.,Protein Sci 22: 213-21 (2012)）。適応免疫系は、外来性ポリペプチドを、該ポリペプチドの表面の少数の別個の部位に多くの場合存在する免疫エピトープによって絶妙な特異性で認識することができる。しかし、抗体結合親和性は、エピトープ内の少数の特異的アミノ酸との相互作用によって支配されうる。したがって、免疫原性エピトープを破壊するポリペプチド中の極めて重要なアミノ酸の修飾は、免疫原性を低減させることができる（Laroche Y et al., Blood 96: 1425-32 (2000)）。エピトープ認識を壊す修飾は、アミノ酸欠失、置換、及び非免疫原性コンジュゲートでのエピトープ隠蔽を含む。
ポリペプチド系治療薬の開発のために、患者のＢ細胞媒介免疫応答及び中和抗体の産生を誘導しないようにすることが望ましい。なぜならその誘導は治療の有効性を低減させ、用量効果プロファイルを変化させ、患者が受ける用量の数を制限するからである（Lui W et al., Proc Natl Acad SciUSA109:11782-7 (2012)を参照されたい）。
Murphy K, ed., Garland Science, 8thed., 2011 Cellular and Molecular Immunology（Abbas A, ed., Saunders, 8th ed., 2014） Koopmann J et al., Eur J Immunol 26: 1720-8 (1996) Mayerhofer P, Tampe R, J Mol Biol pii S0022-2835 (2014) Wiedemann A et al., Proc Natl Acad Sci USA 103: 10985-90 (2006) Sahay G et al., J Control Release145:182-195(2010) Fuchs H et al., Antibodies 2: 209-35 (2013) Buttel I et al., Biologicals 39: 100-9 (2011) Sauerborn M et al., Trends Pharmacol Sci31:53-9(2010) Bryson C et al., BioDrugs24: 1-8 (2010) De Groot A et al., Dev Biol(Basel)122:171-94 (2005) Koren E et al., Clin Immunol 124: 26-32 (2007) Tangri S et al., J Immunol 174: 3187-96 (2005) Mazor R et al., Proc Natl Acad SciUSA109:E3597-603 (2012) Yumura K et al., Protein Sci 22: 213-21 (2012) Laroche Y et al., Blood 96: 1425-32 (2000) Lui W et al., Proc Natl AcadSciUSA109: 11782-7 (2012)
したがって、１つ又は２つ以上のＴ細胞エピトープを細胞のＭＨＣクラスＩ提示経路に送達することができる新規Ｔ細胞エピトープ送達ポリペプチドを生成する方法を有することは、望ましいことであろう。生理条件下でＴ細胞エピトープを標的細胞の内部に送達して所望のＴ細胞媒介免疫応答を開始させることができるポリペプチドであるが、細胞外空間にあるときに例えば阻害抗体の生成などの望ましくない免疫応答を誘導しないポリペプチドを有することも、望ましいことであろう。したがって、１つ又は２つ以上のＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープが付加され、１つ又は２つ以上のＢ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープが消失されている、Ｔ細胞エピトープ送達ポリペプチドを有することは、望ましいことであろう。
特異的細胞タイプ、例えば感染又は悪性細胞、への細胞毒性の標的化送達のための細胞標的化、ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ送達分子を有することも、望ましいことであろう。加えて、Ｂ細胞免疫原性の低減を示す細胞標的化、ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ送達分子を有することは、望ましいことであろう。細胞標的化分子によって送達されたＴ細胞免疫原性ペプチドが標的細胞の表面に提示されると、Ｔ細胞エピトープは、レシピエント自身の免疫系を活性化してＣＤ８＋Ｔ細胞を動員することによって提示細胞破壊のシグナルを伝達することができる。加えて、標的細胞が提示するＴ細胞エピトープ－ＭＨＣクラスＩ複合体によって活性化されたＣＤ８＋Ｔ細胞は、より広範な免疫応答を刺激し、微小環境を（例えば、腫瘍又は感染組織部位でのサイトカイン放出によって）、他の免疫細胞（例えばエフェクターＴ細胞）がその局所領域に動員されうるように変化させることができる。
加えて、毒素に由来するが、親毒素ポリペプチドの特定の生物学的エフェクター機能、例えば、細胞内在化の促進、細胞内経路指定の指示、及び／又は毒素の酵素活性を保っている、新規Ｔ細胞エピトープ送達ポリペプチドを生成する方法を有することは、望ましいことであろう。加えて、ポリペプチドが望ましくない免疫応答を生じさせる尤度の低減、及び毒素ポリペプチドを含む分子を内在化する標的細胞に対する望ましいＴ細胞応答を誘導する尤度の増加、両方の手段として、Ｂ細胞エピトープをＴ細胞エピトープで置換することによって毒素由来ポリペプチドを工学的に操作する方法を有することは、望ましいことであろう。
本発明は、特定の細胞標的化分子の成分として、脊索動物体内の有核標的細胞による提示のためにＴ細胞エピトープを送達する能力を有する、Ｔ細胞エピトープ送達ポリペプチド（本書では「ＣＤ８＋Ｔ細胞高度免疫化された」と言う）の様々な実施形態を提供する。本発明は、Ｂ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープに関して哺乳動物において抗原性及び／又は免疫原性の可能性が低減された、脱免疫化された、ＣＤ８＋Ｔ細胞高度免疫化されたポリペプチド（本書では「Ｂ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化された」と言う）の様々な実施形態も提供する。本発明は、特異的細胞タイプ、例えば脊索動物体内の感染又は悪性細胞、への細胞毒性の標的化送達のための細胞標的化、ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ送達分子の様々な実施形態も提供する。
加えて、本発明は、細胞のＭＨＣクラスＩ提示経路に１つ又は２つ以上異種Ｔ細胞エピトープを送達することができる新規ポリペプチドを生成する方法の実施形態を提供する。本発明は、Ｂ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞免疫原性の尤度を低減させると同時にＣＤ８＋Ｔ細胞免疫原性の尤度を増加させることによる、ポリペプチドのバリアントを生成する方法の様々な実施形態も提供する。本発明は、出発ポリペプチドが、毒素エフェクター領域を含み、本発明の方法を用いることによって産生される特定のポリペプチドが、結果として、例えば酵素活性及び細胞毒性などの毒素エフェクター機能を保持するポリペプチドとなる、細胞のＭＨＣクラスＩ提示経路に１つ又は２つ以上の異種Ｔ細胞エピトープを送達することができる新規ポリペプチドを産生する方法の特定の実施形態も提供する。
本発明のポリペプチドは、ＣＤ８＋Ｔ細胞高度免疫化されていることもあり、又は脱免疫化されていることもあり、又は両方であることもある。本発明の脱免疫化されたポリペプチドは、Ｂ細胞エピトープ脱免疫化されていることもあり、又はＴ細胞脱免疫化されていることもあり、又は両方であることもある。本発明のＴ細胞脱免疫化されたポリペプチドは、ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化されていることもあり、又はＣＤ８＋Ｔ細胞脱免疫化されていることもあり、又は両方であることもある。本発明のポリペプチドの特定の実施形態は、１つ又は２つ以上の異種Ｔ細胞エピトープを含む。本発明のポリペプチドの特定のさらなる実施形態において、１つ又は２つ以上の異種Ｔ細胞エピトープは、ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープである。
特定の実施形態において、本発明のポリペプチドは、組み込まれた（embedded）又は挿入された（inserted）異種Ｔ細胞エピトープを含み、ポリペプチドは、ポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からプロテアソームにＴ細胞エピトープを細胞内送達することができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、毒素由来ポリペプチドをさらに含み、毒素由来ポリペプチドは、毒素由来ポリペプチドが存在する細胞の、サイトゾル、小胞体及びリソソームからなる群から選択される細胞内区画に経路指定することができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、毒素由来ポリペプチドに組み込まれている又は挿入されている異種Ｔ細胞エピトープを含む。
特定の実施形態において、本発明のポリペプチドは、１又は２以上の毒素エフェクター機能を示すことができる毒素エフェクターポリペプチドを含む毒素由来ポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、毒素エフェクターポリペプチドは、ＡＢｘ毒素、リボソーム不活性化タンパク質毒素、アブリン、炭疽毒素、Ａｓｐｆ１、ブーゲニン、ブリオジン、コリックス毒素、クローディン、ジフテリア毒素、ゲロニン、易熱性エンテロトキシン、ミトギリン、百日咳毒素、ヤマゴボウ抗ウイルスタンパク質、プルケリン、緑膿菌外毒素（Pseudomonas exotoxin）Ａ、レストリクトシン、リシン、サポリン、サルシン、志賀毒素、及びスブチラーゼ細胞毒からなる群から選択される毒素に由来する。
特定の実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号１、配列番号２若しくは配列番号３のアミノ酸７５～２５１又は配列番号４５のアミノ酸２～３８９に由来する毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２４１に由来する志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２５１に由来する。特定のさらなる実施形態において、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２６１に由来する。
特定の実施形態において、本発明のポリペプチドは、組み込まれた又は挿入された異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを有し、ポリペプチドは、ポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からのＭＨＣクラスＩ分子にＴ細胞エピトープを細胞内送達することができる。特定のさらなる実施形態において、ポリペプチドは、毒素由来ポリペプチドをさらに含み、毒素由来ポリペプチドは、ポリペプチドが存在する細胞の、サイトゾル、小胞体及びリソソームからなる群から選択される細胞内区画に経路指定することができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、毒素由来ポリペプチド中の異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、１又は２以上の毒素エフェクター機能を示すことができる毒素エフェクターポリペプチドを含む毒素由来ポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、ＡＢｘ毒素、リボソーム不活性化タンパク質毒素、アブリン、炭疽毒素、Ａｓｐｆ１、ブーゲニン、ブリオジン、コリックス毒素、クローディン、ジフテリア毒素、ゲロニン、易熱性エンテロトキシン、ミトギリン、百日咳毒素、ヤマゴボウ抗ウイルスタンパク質、プルケリン、緑膿菌外毒素Ａ、レストリクトシン、リシン、サポリン、サルシン、志賀毒素、及びスブチラーゼ細胞毒からなる群から選択される毒素に由来する毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定の実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号１、配列番号２若しくは配列番号３のアミノ酸７５～２５１又は配列番号４５のアミノ酸２～３８９に由来する毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２４１に由来する志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２５１に由来する。特定のさらなる実施形態において、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２６１に由来する。
特定の実施形態において、本発明のポリペプチドは、異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを含み、ポリペプチドは、ポリペプチドが存在する細胞の表面でのＭＨＣクラスＩ分子による提示のためにＴ細胞エピトープを細胞内送達することができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、毒素由来ポリペプチドを含み、毒素由来ポリペプチドは、毒素由来ポリペプチドが存在する細胞の、サイトゾル、小胞体及びリソソームからなる群から選択される細胞内区画に経路指定することができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、毒素由来ポリペプチド中の異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、１又は２以上の毒素エフェクター機能を示すことができる毒素エフェクターポリペプチドを含む毒素由来ポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、ＡＢｘ毒素、リボソーム不活性化タンパク質毒素、アブリン、炭疽毒素、Ａｓｐｆ１、ブーゲニン、ブリオジン、コリックス毒素、クローディン、ジフテリア毒素、ゲロニン、易熱性エンテロトキシン、ミトギリン、百日咳毒素、ヤマゴボウ抗ウイルスタンパク質、プルケリン、緑膿菌外毒素Ａ、レストリクトシン、リシン、サポリン、サルシン、志賀毒素、及びスブチラーゼ細胞毒からなる群から選択される毒素に由来する毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定の実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号１、配列番号２若しくは配列番号３のアミノ酸７５～２５１又は配列番号４５のアミノ酸２～３８９に由来する毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２４１に由来する志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２５１に由来する。特定のさらなる実施形態において、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２６１に由来する。
特定の実施形態において、本発明のポリペプチドは、異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープと会合しているプロテアソーム送達エフェクターポリペプチドであって、ポリペプチドが存在する細胞の表面でのＭＨＣクラスＩ分子による提示のためにＴ細胞エピトープを細胞内送達することができるプロテアソーム送達エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープが志賀毒素エフェクターポリペプチドのアミノ末端に直接融合されていない、志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、Ｂ細胞エピトープに組み込まれている又は挿入されている第２のＴ細胞エピトープをさらに含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、毒素由来ポリペプチドをさらに含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドと第２のＴ細胞エピトープとを含む毒素エフェクターポリペプチドを含む、毒素由来ポリペプチドをさらに含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、１又は２以上の毒素エフェクター機能を示すことができる毒素エフェクターポリペプチドを含む毒素由来ポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、ＡＢｘ毒素、リボソーム不活性化タンパク質毒素、アブリン、炭疽毒素、Ａｓｐｆ１、ブーゲニン、ブリオジン、コリックス毒素、クローディン、ジフテリア毒素、ゲロニン、易熱性エンテロトキシン、ミトギリン、百日咳毒素、ヤマゴボウ抗ウイルスタンパク質、プルケリン、緑膿菌外毒素Ａ、レストリクトシン、リシン、サポリン、サルシン、志賀毒素、及びスブチラーゼ細胞毒からなる群から選択される毒素に由来する毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定の実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号１、配列番号２若しくは配列番号３のアミノ酸７５～２５１又は配列番号４５のアミノ酸２～３８９に由来する毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２４１に由来する志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２５１に由来する。特定のさらなる実施形態において、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２６１に由来する。
本発明の方法の特定のさらなる実施形態には、ポリペプチドのＣＤ８＋Ｔ細胞免疫原性を増加させる方法であって、ポリペプチドは、ポリペプチドが存在する細胞の、サイトゾル、小胞体及びリソソームからなる群から選択される細胞内区画に細胞内で経路指定することができ、方法が、ポリペプチドに異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを組み込む又は挿入するステップを含む方法がある。特定のさらなる実施形態において、方法は、ポリペプチドの内因性Ｂ細胞エピトープ、内因性ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ及び／又は触媒ドメイン内への組み込み又は挿入である、組み込む又は挿入するステップを含む。方法の特定のさらなる実施形態において、方法のポリペプチドは毒素に由来する。方法の特定のさらなる実施形態において、ポリペプチドは、毒素エフェクターポリペプチドを含み、毒素エフェクターポリペプチドは、毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からプロテアソームにＴ細胞エピトープを細胞内送達することができ、方法は、毒素エフェクターポリペプチドに異種Ｔ細胞エピトープを組み込む又は挿入するステップを含む。方法の特定のさらなる実施形態では、組み込む又は挿入するステップの結果として毒素エフェクターポリペプチドが得られ、毒素エフェクターポリペプチドは、毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からＭＨＣクラスＩ分子へのＴ細胞エピトープの細胞内送達に加えて、１又は２以上の毒素エフェクター機能を示すことができる。
本発明の方法の特定のさらなる実施形態には、ポリペプチドのＣＤ８＋Ｔ細胞免疫原性を増加させる方法であって、ポリペプチドは、ポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からプロテアソームにＴ細胞エピトープを細胞内送達することができ、方法が
、ポリペプチドに異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを組み込む又は挿入するステップを含む方法がある。方法の特定のさらなる実施形態において、方法のポリペプチドは毒素に由来する。方法の特定のさらなる実施形態において、ポリペプチドは、毒素エフェクターポリペプチドを含み、毒素エフェクターポリペプチドは、毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソームからプロテアソームにＴ細胞エピトープを細胞内送達することができ、方法は、毒素エフェクターポリペプチドに異種Ｔ細胞エピトープを組み込む又は挿入するステップを含む。方法の特定のさらなる実施形態では、組み込む又は挿入するステップの結果として毒素エフェクターポリペプチドが得られ、毒素エフェクターポリペプチドは、毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からＭＨＣクラスＩ分子へのＴ細胞エピトープの細胞内送達に加えて、１又は２以上の毒素エフェクター機能を示すことができる。
本発明の方法の特定のさらなる実施形態には、ポリペプチドのＣＤ８＋Ｔ細胞免疫原性を増加させる方法であって、ポリペプチドは、ポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からＭＨＣクラスＩ分子にＴ細胞エピトープを細胞内送達することができ、方法が、ポリペプチドに異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを組み込む又は挿入するステップを含む方法がある。方法の特定のさらなる実施形態において、方法のポリペプチドは毒素に由来する。方法の特定のさらなる実施形態において、ポリペプチドは、毒素エフェクターポリペプチドを含み、毒素エフェクターポリペプチドは、毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からプロテアソームにＴ細胞エピトープを細胞内送達することができ、方法は、毒素エフェクターポリペプチドに異種Ｔ細胞エピトープを組み込む又は挿入するステップを含む。方法の特定のさらなる実施形態では、組み込む又は挿入するステップの結果として毒素エフェクターポリペプチドが得られ、毒素エフェクターポリペプチドは、毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からＭＨＣクラスＩ分子へのＴ細胞エピトープの細胞内送達に加えて、１又は２以上の毒素エフェクター機能を示すことができる。
本発明の方法の特定の実施形態には、Ｔ細胞エピトープ送達分子を生成する方法であって、Ｔ細胞エピトープ送達分子は、その分子が存在する細胞の初期エンドソーム区画からサイトゾル、小胞体及び／又はリソソームにＴ細胞エピトープを細胞内送達することができ、方法が、異種Ｔ細胞エピトープをポリペプチドと会合させるステップを含み、ポリペプチドは、ポリペプチドが存在する細胞の、サイトゾル、小胞体及びリソソームからなる群から選択される細胞内区画に経路指定することができる、方法がある。方法の特定のさらなる実施形態において、会合は、分子の内因性Ｂ細胞エピトープ、内因性ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ及び／又は触媒ドメインへの異種Ｔ細胞エピトープの組み込み及び挿入からなる。方法の特定のさらなる実施形態において、方法のポリペプチドは、毒素に由来する。方法の特定のさらなる実施形態において、ポリペプチドは、毒素エフェクターポリペプチドを含み、毒素エフェクターポリペプチドは、毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からサイトゾル、小胞体及び／又はリソソームにＴ細胞エピトープを細胞内送達することができ、方法は、毒素エフェクターポリペプチドに異種Ｔ細胞エピトープを組み込む又は挿入するステップを含む。方法の特定のさらなる実施形態では、組み込む又は挿入するステップの結果として毒素エフェクターポリペプチドが得られ、毒素エフェクターポリペプチドは、毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からサイトゾル、小胞体及び／又はリソソームへのＴ細胞エピトープの細胞内送達に加えて、１又は２以上の毒素エフェクター機能を示すことができる。
本発明の方法の特定の実施形態には、ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ送達分子を生成する方法であって、ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ送達分子は、その送達分子が存在する細胞の初期エンドソーム区画からプロテアソームにＴ細胞エピトープを細胞内送達することができ、方法が、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドに異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ
を組み込む又は挿入するステップであって、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドは、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からプロテアソームにＴ細胞エピトープを細胞内送達することができる、ステップを含む方法がある。方法の特定のさらなる実施形態において、会合は、分子の内因性Ｂ細胞エピトープ、内因性ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ及び／又は触媒ドメインへの異種Ｔ細胞エピトープの組み込み及び挿入からなる。方法の特定のさらなる実施形態において、方法のポリペプチドは、毒素に由来する。方法の特定のさらなる実施形態において、ポリペプチドは、毒素エフェクターポリペプチドを含み、毒素エフェクターポリペプチドは、毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からプロテアソームへのＴ細胞エピトープの細胞内送達に加えて、１又は２以上の毒素エフェクター機能を示すことができる。
本発明の方法の特定の実施形態にはＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ送達分子を生成する方法であって、ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ送達分子は、その送達分子が存在する細胞の初期エンドソーム区画からＭＨＣクラスＩ分子にＴ細胞エピトープを細胞内送達することができ、方法が、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドに異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ送達分子を組み込む又は挿入するステップであって、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドは、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からＭＨＣクラスＩ分子にＴ細胞エピトープを細胞内送達することができる、ステップを含む方法がある。方法の特定のさらなる実施形態において、会合は、分子の内因性Ｂ細胞エピトープ、内因性ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ及び／又は触媒ドメインへの異種Ｔ細胞エピトープの組み込み及び挿入からなる。方法の特定のさらなる実施形態において、方法のポリペプチドは、毒素に由来する。方法の特定のさらなる実施形態において、ポリペプチドは、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドを含む毒素エフェクターポリペプチドを含み、方法は、毒素エフェクターポリペプチドに異種Ｔ細胞エピトープを組み込む又は挿入するステップを含む。方法の特定のさらなる実施形態において、＿＿の結果として得られる毒素エフェクターポリペプチドは、その毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からＭＨＣクラスＩ分子へのＴ細胞エピトープの細胞内送達に加えて、１又は２以上の毒素エフェクター機能を示すことができる。
本発明の方法の特定の実施形態には、細胞内に存在するときにＭＨＣクラスＩ分子による提示のためにＴ細胞エピトープを送達することができるＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ送達分子を生成する方法であって、方法が、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドに異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを組み込む又は挿入するステップを含み、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドは、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からプロテアソームにＴ細胞エピトープを細胞内送達することができる、方法がある。方法の特定のさらなる実施形態において、会合は、分子の内因性Ｂ細胞エピトープ、内因性ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ及び／又は触媒ドメインへの異種Ｔ細胞エピトープの組み込み及び挿入からなる。方法の特定のさらなる実施形態において、方法のポリペプチドは、毒素に由来する。方法の特定のさらなる実施形態において、ポリペプチドは、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドを含む毒素エフェクターポリペプチドを含み、方法は、毒素エフェクターポリペプチドに異種Ｔ細胞エピトープを組み込む又は挿入するステップを含む。方法の特定のさらなる実施形態において、＿＿の結果として得られる毒素エフェクターポリペプチドは、その毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からＭＨＣクラスＩ分子へのＴ細胞エピトープの細胞内送達に加えて、１又は２以上の毒素エフェクター機能を示すことができる。
本発明の方法の特定の実施形態には、細胞内に存在するときにＭＨＣクラスＩ分子による提示のためにＴ細胞エピトープを送達することができるＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ送達分子を生成する方法であって、方法が、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドに
異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ送達分子を組み込む又は挿入するステップを含み、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドは、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からＭＨＣクラスＩ分子にＴ細胞エピトープを細胞内送達することができる、方法がある。方法の特定のさらなる実施形態において、会合は、分子の内因性Ｂ細胞エピトープ、内因性ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ及び／又は触媒ドメインへの異種Ｔ細胞エピトープの組み込み及び挿入からなる。方法の特定のさらなる実施形態において、方法のポリペプチドは、毒素に由来する。方法の特定のさらなる実施形態において、ポリペプチドは、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドを含む毒素エフェクターポリペプチドを含み、方法は、毒素エフェクターポリペプチドに異種Ｔ細胞エピトープを組み込む又は挿入するステップを含む。方法の特定のさらなる実施形態において、＿＿の結果として得られる毒素エフェクターポリペプチドは、その毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からＭＨＣクラスＩ分子へのＴ細胞エピトープの細胞内送達に加えて、１又は２以上の毒素エフェクター機能を示すことができる。
特定の実施形態において、本発明の脱免疫化されたポリペプチドは、内因性Ｂ細胞エピトープ及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープを破壊する異種Ｔ細胞エピトープを含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、毒素由来ポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープは、毒素由来ポリペプチドの中にある。特定のさらなる実施形態において、本発明の毒素由来ポリペプチドは、毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態では、毒素エフェクターポリペプチド中の異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ。特定のさらなる実施形態において、毒素エフェクターポリペプチドは、１又は２以上の毒素エフェクター機能を示すことができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、ＡＢｘ毒素、リボソーム不活性化タンパク質毒素、アブリン、炭疽毒素、Ａｓｐｆ１、ブーゲニン、ブリオジン、コリックス毒素、クローディン、ジフテリア毒素、ゲロニン、易熱性エンテロトキシン、ミトギリン、百日咳毒素、ヤマゴボウ抗ウイルスタンパク質、プルケリン、緑膿菌外毒素Ａ、レストリクトシン、リシン、サポリン、サルシン、志賀毒素、及びスブチラーゼ細胞毒からなる群から選択される毒素に由来する毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、毒素エフェクターポリペプチドは、ジフテリア毒素ファミリーの少なくとも１つのメンバーのＡ及びＢサブユニットに由来するアミノ酸配列を含むジフテリア毒素エフェクターポリペプチドであり、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号３９の３～１０、配列番号３９の３３～４３、配列番号３９の７１～７７、配列番号３９の１２５～１３１、配列番号３９の１３８～１４６、配列番号３９の１６５～１７５、及び配列番号３９の１８５～１９１からなる天然位置のアミノ酸の群から選択されるアミノ酸配列の少なくとも１つのＢ細胞エピトープ及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域の破壊を含み、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドは、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞のサイトゾル区画に経路指定することができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号４５のアミノ酸２～３８９に由来するジフテリア毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、毒素エフェクターポリペプチドは、志賀毒素ファミリーの少なくとも１つのメンバーのＡサブユニットに由来するアミノ酸配列を含む志賀毒素エフェクターポリペプチドであり、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１又は配列番号２の１～１５、配列番号３の３～１４、配列番号３の２６～３７、配列番号１又は配列番号２の２７～３７、配列番号１又は配列番号２の３９～４８、配列番号３の４２～４８、配列番号１、配列番号２又は配列番号３の５３～６６、配列番号１、配列番号２又は配列番号３の９４～１１５、配列番号１又は配列番号２の１４１～１５３、配列番号３の１４０～１５６、配列番号１又は配列番号２の１７９～１９０、配列番号３の１７９～１９１、配列番号３の２０４、配列番号１又は配列番号２の２０５及び配列番号３の２１０～２１８、配列番号３の２４０～２６０、配列番号１又は配列番号２の２４３～２５７、配列番号１又は配列番号２の２５４～２６８、配列番号３の２６２～２７８、配列番号３の２８１～２９７及び配列番号１又は配列番号２の２８５～２９３のＢ細胞エピトープ領域と、配列番号１又は配列番号２の４～３３、配列番号１又は配列番号２の３４～７８、配列番号１又は配列番号２の７７～１０３、配列番号１又は配列番号２の１２８～１６８、配列番号１又は配列番号２の１６０～１８３、配列番号１又は配列番号２の２３６～２５８及び配列番号１又は配列番号２の２７４～２９３のＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域とからなる天然位置のアミノ酸の群から選択される志賀毒素Ａサブユニットアミノ酸配列の少なくとも１つのＢ細胞エピトープ及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域の破壊を含み、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、志賀毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞のサイトゾル区画に経路指定することができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸７５～２５１に由来する志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２４１に由来する志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２５１に由来する。特定のさらなる実施形態において、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２６１に由来する。
特定の実施形態において、本発明のポリペプチドは、内因性Ｂ細胞エピトープ及び／又は内因性ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープを破壊する、異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを含み、ポリペプチドは、ポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からプロテアソームにＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを細胞内送達することができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、毒素由来ポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープは、毒素由来ポリペプチドの中にある。特定のさらなる実施形態において、本発明の毒素由来ポリペプチドは、毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態では、毒素エフェクターポリペプチド中の異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ。特定のさらなる実施形態において、毒素エフェクターポリペプチドは、１又は２以上の毒素エフェクター機能を示すことができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、ＡＢｘ毒素、リボソーム不活性化タンパク質毒素、アブリン、炭疽毒素、Ａｓｐｆ１、ブーゲニン、ブリオジン、コリックス毒素、クローディン、ジフテリア毒素、ゲロニン、易熱性エンテロトキシン、ミトギリン、百日咳毒素、ヤマゴボウ抗ウイルスタンパク質、プルケリン、緑膿菌外毒素Ａ、レストリクトシン、リシン、サポリン、サルシン、志賀毒素、及びスブチラーゼ細胞毒からなる群から選択される毒素に由来する毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、毒素エフェクターポリペプチドは、ジフテリア毒素ファミリーの少なくとも１つのメンバーのＡ及びＢサブユニットに由来するアミノ酸配列を含むジフテリア毒素エフェクターポリペプチドであり、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号３９の３～１０、配列番号３９の３３～４３、配列番号３９の７１～７７、配列番号３９の１２５～１３１、配列番号３９の１３８～１４６、配列番号３９の１６５～１７５、及び配列番号３９の１８５～１９１からなる天然位置のアミノ酸の群から選択されるアミノ酸配列の少なくとも１つのＢ細胞エピトープ及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域の破壊を含み、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドは、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞のサイトゾル区画に経路指定することができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号４５のアミノ酸２～３８９に由来するジフテリア毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、毒素エフェクターポリペプチドは、志賀毒素ファミリーの少なくとも１つのメンバーのＡサブユニットに由来するアミノ酸配列を含む志賀毒素エフェクターポリペプチドであり、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１又は配列番号２の１～１５、配列番号３の３～１４、配列番号３の２６～３７、配列番号１又は配列番号２の２７～３７
、配列番号１又は配列番号２の３９～４８、配列番号３の４２～４８、配列番号１、配列番号２又は配列番号３の５３～６６、配列番号１、配列番号２又は配列番号３の９４～１１５、配列番号１又は配列番号２の１４１～１５３、配列番号３の１４０～１５６、配列番号１又は配列番号２の１７９～１９０、配列番号３の１７９～１９１、配列番号３の２０４、配列番号１又は配列番号２の２０５及び配列番号３の２１０～２１８、配列番号３の２４０～２６０、配列番号１又は配列番号２の２４３～２５７、配列番号１又は配列番号２の２５４～２６８、配列番号３の２６２～２７８、配列番号３の２８１～２９７及び配列番号１又は配列番号２の２８５～２９３のＢ細胞エピトープ領域と、配列番号１又は配列番号２の４～３３、配列番号１又は配列番号２の３４～７８、配列番号１又は配列番号２の７７～１０３、配列番号１又は配列番号２の１２８～１６８、配列番号１又は配列番号２の１６０～１８３、配列番号１又は配列番号２の２３６～２５８及び配列番号１又は配列番号２の２７４～２９３のＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域とからなる天然位置のアミノ酸の群から選択される志賀毒素Ａサブユニットアミノ酸配列の少なくとも１つのＢ細胞エピトープ及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域の破壊を含み、前記志賀毒素エフェクターポリペプチドは、前記志賀毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞のサイトゾル区画に経路指定することができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸７５～２５１に由来する志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２４１に由来する志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２５１に由来する。特定のさらなる実施形態において、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２６１に由来する。
特定の実施形態において、本発明の脱免疫化されたポリペプチドは、内因性Ｂ細胞エピトープ及び／又は内因性ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープを破壊する、異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを含み、ポリペプチドは、ポリペプチドが存在する細胞の初期エンドソーム区画からＭＨＣクラスＩ分子にＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを細胞内送達することができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、毒素由来ポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープは、毒素由来ポリペプチドの中にある。特定のさらなる実施形態において、本発明の毒素由来ポリペプチドは、毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態では、毒素エフェクターポリペプチド中の異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ。特定のさらなる実施形態において、毒素エフェクターポリペプチドは、１又は２以上の毒素エフェクター機能を示すことができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、ＡＢｘ毒素、リボソーム不活性化タンパク質毒素、アブリン、炭疽毒素、Ａｓｐｆ１、ブーゲニン、ブリオジン、コリックス毒素、クローディン、ジフテリア毒素、ゲロニン、易熱性エンテロトキシン、ミトギリン、百日咳毒素、ヤマゴボウ抗ウイルスタンパク質、プルケリン、緑膿菌外毒素Ａ、レストリクトシン、リシン、サポリン、サルシン、志賀毒素、及びスブチラーゼ細胞毒からなる群から選択される毒素に由来する毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、毒素エフェクターポリペプチドは、ジフテリア毒素ファミリーの少なくとも１つのメンバーのＡ及びＢサブユニットに由来するアミノ酸配列を含むジフテリア毒素エフェクターポリペプチドであり、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号３９の３～１０、配列番号３９の３３～４３、配列番号３９の７１～７７、配列番号３９の１２５～１３１、配列番号３９の１３８～１４６、配列番号３９の１６５～１７５、及び配列番号３９の１８５～１９１からなる天然位置のアミノ酸の群から選択されるアミノ酸配列の少なくとも１つのＢ細胞エピトープ及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域の破壊を含み、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドは、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞のサイトゾル区画に経路指定することができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号４５のアミノ酸２～３８９に由来するジフテリア毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、毒素エフェクターポリペプチドは、志賀毒素ファミリーの少なくとも１つのメンバーのＡサブユニットに由来するアミノ酸配列を含む志賀毒素エフェクターポリペプチドであり、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１又は配列番号２の１～１５、配列番号３の３～１４、配列番号３の２６～３７、配列番号１又は配列番号２の２７～３７、配列番号１又は配列番号２の３９～４８、配列番号３の４２～４８、配列番号１、配列番号２又は配列番号３の５３～６６、配列番号１、配列番号２又は配列番号３の９４～１１５、配列番号１又は配列番号２の１４１～１５３、配列番号３の１４０～１５６、配列番号１又は配列番号２の１７９～１９０、配列番号３の１７９～１９１、配列番号３の２０４、配列番号１又は配列番号２の２０５及び配列番号３の２１０～２１８、配列番号３の２４０～２６０、配列番号１又は配列番号２の２４３～２５７、配列番号１又は配列番号２の２５４～２６８、配列番号３の２６２～２７８、配列番号３の２８１～２９７及び配列番号１又は配列番号２の２８５～２９３のＢ細胞エピトープ領域と、配列番号１又は配列番号２の４～３３、配列番号１又は配列番号２の３４～７８、配列番号１又は配列番号２の７７～１０３、配列番号１又は配列番号２の１２８～１６８、配列番号１又は配列番号２の１６０～１８３、配列番号１又は配列番号２の２３６～２５８及び配列番号１又は配列番号２の２７４～２９３のＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域とからなる天然位置のアミノ酸の群から選択される志賀毒素Ａサブユニットアミノ酸配列の少なくとも１つのＢ細胞エピトープ及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域の破壊を含み、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、志賀毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞のサイトゾル区画に経路指定することができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸７５～２５１に由来する志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２４１に由来する志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２５１に由来する。特定のさらなる実施形態において、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２６１に由来する。
特定の実施形態において、本発明の脱免疫化されたポリペプチドは、内因性Ｂ細胞エピトープ及び／又は内因性ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープを破壊する、異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを含み、ポリペプチドは、ポリペプチドが存在する細胞の表面でのＭＨＣクラスＩ分子による提示のためにＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを細胞内送達することができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、毒素由来ポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープは、毒素由来ポリペプチドの中にある。特定のさらなる実施形態において、本発明の毒素由来ポリペプチドは、毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態では、毒素エフェクターポリペプチド中の異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ。特定のさらなる実施形態において、毒素エフェクターポリペプチドは、１又は２以上の毒素エフェクター機能を示すことができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、ＡＢｘ毒素、リボソーム不活性化タンパク質毒素、アブリン、炭疽毒素、Ａｓｐｆ１、ブーゲニン、ブリオジン、コリックス毒素、クローディン、ジフテリア毒素、ゲロニン、易熱性エンテロトキシン、ミトギリン、百日咳毒素、ヤマゴボウ抗ウイルスタンパク質、プルケリン、緑膿菌外毒素Ａ、レストリクトシン、リシン、サポリン、サルシン、志賀毒素、及びスブチラーゼ細胞毒からなる群から選択される毒素に由来する毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、毒素エフェクターポリペプチドは、ジフテリア毒素ファミリーの少なくとも１つのメンバーのＡ及びＢサブユニットに由来するアミノ酸配列を含むジフテリア毒素エフェクターポリペプチドであり、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号３９の３～１０、配列番号３９の３３～４３、配列番号３９の７１～
７７、配列番号３９の１２５～１３１、配列番号３９の１３８～１４６、配列番号３９の１６５～１７５、及び配列番号３９の１８５～１９１からなる天然位置のアミノ酸の群から選択されるアミノ酸配列の少なくとも１つのＢ細胞エピトープ及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域の破壊を含み、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドは、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞のサイトゾル区画に経路指定することができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号４５のアミノ酸２～３８９に由来するジフテリア毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、毒素エフェクターポリペプチドは、志賀毒素ファミリーの少なくとも１つのメンバーのＡサブユニットに由来するアミノ酸配列を含む志賀毒素エフェクターポリペプチドであり、前記志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１又は配列番号２の１～１５、配列番号３の３～１４、配列番号３の２６～３７、配列番号１又は配列番号２の２７～３７、配列番号１又は配列番号２の３９～４８、配列番号３の４２～４８、配列番号１、配列番号２又は配列番号３の５３～６６、配列番号１、配列番号２又は配列番号３の９４～１１５、配列番号１又は配列番号２の１４１～１５３、配列番号３の１４０～１５６、配列番号１又は配列番号２の１７９～１９０、配列番号３の１７９～１９１、配列番号３の２０４、配列番号１又は配列番号２の２０５及び配列番号３の２１０～２１８、配列番号３の２４０～２６０、配列番号１又は配列番号２の２４３～２５７、配列番号１又は配列番号２の２５４～２６８、配列番号３の２６２～２７８、配列番号３の２８１～２９７及び配列番号１又は配列番号２の２８５～２９３のＢ細胞エピトープ領域と、配列番号１又は配列番号２の４～３３、配列番号１又は配列番号２の３４～７８、配列番号１又は配列番号２の７７～１０３、配列番号１又は配列番号２の１２８～１６８、配列番号１又は配列番号２の１６０～１８３、配列番号１又は配列番号２の２３６～２５８及び配列番号１又は配列番号２の２７４～２９３のＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域とからなる天然位置のアミノ酸の群から選択される志賀毒素Ａサブユニットアミノ酸配列の少なくとも１つのＢ細胞エピトープ及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域の破壊を含み、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、志賀毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞のサイトゾル区画に経路指定することができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸７５～２５１に由来する志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２４１に由来する志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２５１に由来する。特定のさらなる実施形態において、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２６１に由来する。
特定の実施形態において、本発明の脱免疫化されたポリペプチドは、内因性Ｂ細胞エピトープ及び／又は内因性ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープを破壊する第１の異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを含む、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドを含み、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドは、第２のＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープに連結されており、ポリペプチドは、ポリペプチドが存在する細胞の表面でのＭＨＣクラスＩ分子による提示のために第２のＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを細胞内送達することができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、毒素由来ポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープは、毒素由来ポリペプチドの中にある。特定のさらなる実施形態において、本発明の毒素由来ポリペプチドは、毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態では、毒素エフェクターポリペプチド中の異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ。特定のさらなる実施形態において、毒素エフェクターポリペプチドは、１又は２以上の毒素エフェクター機能を示すことができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、ＡＢｘ毒素、リボソーム不活性化タンパク質毒素、アブリン、炭疽毒素、Ａｓｐｆ１、ブーゲニン、ブリオジン、コリ
ックス毒素、クローディン、ジフテリア毒素、ゲロニン、易熱性エンテロトキシン、ミトギリン、百日咳毒素、ヤマゴボウ抗ウイルスタンパク質、プルケリン、緑膿菌外毒素Ａ、レストリクトシン、リシン、サポリン、サルシン、志賀毒素、及びスブチラーゼ細胞毒からなる群から選択される毒素に由来する毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、毒素エフェクターポリペプチドは、ジフテリア毒素ファミリーの少なくとも１つのメンバーのＡ及びＢサブユニットに由来するアミノ酸配列を含むジフテリア毒素エフェクターポリペプチドであり、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号３９の３～１０、配列番号３９の３３～４３、配列番号３９の７１～７７、配列番号３９の１２５～１３１、配列番号３９の１３８～１４６、配列番号３９の１６５～１７５、及び配列番号３９の１８５～１９１からなる天然位置のアミノ酸の群から選択されるアミノ酸配列の少なくとも１つのＢ細胞エピトープ及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域の破壊を含み、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドは、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞のサイトゾル区画に経路指定することができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号４５のアミノ酸２～３８９に由来するジフテリア毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、毒素エフェクターポリペプチドは、志賀毒素ファミリーの少なくとも１つのメンバーのＡサブユニットに由来するアミノ酸配列を含む志賀毒素エフェクターポリペプチドであり、前記志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１又は配列番号２の１～１５、配列番号３の３～１４、配列番号３の２６～３７、配列番号１又は配列番号２の２７～３７、配列番号１又は配列番号２の３９～４８、配列番号３の４２～４８、配列番号１、配列番号２又は配列番号３の５３～６６、配列番号１、配列番号２又は配列番号３の９４～１１５、配列番号１又は配列番号２の１４１～１５３、配列番号３の１４０～１５６、配列番号１又は配列番号２の１７９～１９０、配列番号３の１７９～１９１、配列番号３の２０４、配列番号１又は配列番号２の２０５及び配列番号３の２１０～２１８、配列番号３の２４０～２６０、配列番号１又は配列番号２の２４３～２５７、配列番号１又は配列番号２の２５４～２６８、配列番号３の２６２～２７８、配列番号３の２８１～２９７及び配列番号１又は配列番号２の２８５～２９３のＢ細胞エピトープ領域と、配列番号１又は配列番号２の４～３３、配列番号１又は配列番号２の３４～７８、配列番号１又は配列番号２の７７～１０３、配列番号１又は配列番号２の１２８～１６８、配列番号１又は配列番号２の１６０～１８３、配列番号１又は配列番号２の２３６～２５８及び配列番号１又は配列番号２の２７４～２９３のＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域とからなる天然位置のアミノ酸の群から選択される志賀毒素Ａサブユニットアミノ酸配列の少なくとも１つのＢ細胞エピトープ及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域の破壊を含み、志賀毒素エフェクターポリペプチドには、志賀毒素エフェクターポリペプチドが存在する細胞のサイトゾル区画に経路指定することができる。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸７５～２５１に由来する志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２４１に由来する志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定のさらなる実施形態において、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２５１に由来する。特定のさらなる実施形態において、志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１、配列番号２又は配列番号３のアミノ酸１～２６１に由来する。
本発明の方法の特定の実施形態には、ポリペプチドのＢ細胞免疫原性を低減させる方法であって、ポリペプチドに付加させたＴ細胞エピトープの１つ又は２つ以上のアミノ酸残基でＢ細胞エピトープを破壊するステップを含む方法がある。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、Ｂ細胞エピトープにおいて１つ又は２つ以上のアミノ酸置換を行うステップをさらに含む。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、Ｂ細胞エピトープへの１つ又は２つ以上のアミノ酸挿入を行うステップをさらに含む。
本発明の方法の特定の実施形態には、ポリペプチドのＢ細胞免疫原性を低減させる方法であって、ポリペプチド中のＢ細胞エピトープを同定するステップと、同定されたＢ細胞エピトープをポリペプチドに付加させたＴ細胞エピトープ内の１つ又は２つ以上のアミノ酸残基で破壊するステップとを含む方法がある。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、Ｂ細胞エピトープにおいて１つ又は２つ以上のアミノ酸置換を行うステップをさらに含む。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、Ｂ細胞エピトープへの１つ又は２つ以上のアミノ酸挿入を行うステップをさらに含む。
本発明の方法の特定の実施形態には、ポリペプチドのＢ細胞免疫原性を低減させると同時にポリペプチドのＣＤ８＋Ｔ細胞免疫原性を増加させる方法であって、ポリペプチドに付加させた異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ内の１つ又は２つ以上のアミノ酸残基でＢ細胞エピトープを破壊するステップを含む方法がある。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、Ｂ細胞エピトープにおいて１つ又は２つ以上のアミノ酸置換を行うステップをさらに含む。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、Ｂ細胞エピトープへの１つ又は２つ以上のアミノ酸挿入を行うステップをさらに含む。
本発明の方法の特定の実施形態には、ポリペプチドのＢ細胞免疫原性を低減させると同時にポリペプチドのＣＤ８＋Ｔ細胞免疫原性を増加させる方法であって、ポリペプチド中のＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープを同定するステップと、同定されたＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープをポリペプチドに付加させたＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ内の１つ又は２つ以上のアミノ酸残基で破壊するステップとを含む方法がある。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、Ｂ細胞エピトープにおいて１つ又は２つ以上のアミノ酸置換を行うステップをさらに含む。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、Ｂ細胞エピトープへの１つ又は２つ以上のアミノ酸挿入を行うステップをさらに含む。
本発明の方法の特定の実施形態には、ポリペプチドにおけるＣＤ４＋Ｔ細胞免疫原性を低減させる方法であって、前記ポリペプチドに付加させたＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ内の１つ又は２つ以上のアミノ酸残基でＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープを破壊するステップを含む方法がある。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープにおいて１つ又は２つ以上のアミノ酸置換を行うステップをさらに含む。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープへの１つ又は２つ以上のアミノ酸挿入を行うステップをさらに含む。
本発明の方法の特定の実施形態には、ポリペプチドにおけるＣＤ４＋Ｔ細胞免疫原性を低減させる方法であって、ポリペプチド中のＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープを同定するステップと、同定されたＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープをポリペプチドに付加させたＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ内の１つ又は２つ以上のアミノ酸残基で破壊するステップとを含む方法がある。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープにおいて１つ又は２つ以上のアミノ酸置換を行うステップをさらに含む。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープへの１つ又は２つ以上のアミノ酸挿入を行うステップをさらに含む。
本発明の方法の特定の実施形態には、ポリペプチドにおけるＣＤ４＋Ｔ細胞免疫原性を低減させると同時にポリペプチドのＣＤ８＋Ｔ細胞免疫原性を増加させる方法であって、ポリペプチドに付加させた異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ内の１つ又は２つ以上のアミノ酸残基でＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープを破壊するステップを含む方法がある。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープにおいて１つ又は２つ以上のアミノ酸置換を行うステップをさらに含む。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープへの１つ又は２つ以上のアミノ酸挿入を行うステップをさらに含む。
本発明の方法の特定の実施形態には、ポリペプチドにおけるＣＤ４＋Ｔ細胞免疫原性を低減させると同時にポリペプチドのＣＤ８＋Ｔ細胞免疫原性を増加させる方法であって、ポリペプチド中のＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープを同定するステップと、同定されたＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープをポリペプチドに付加させたＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ内の１つ又は２つ以上のアミノ酸残基で破壊するステップとを含む方法がある。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープにおいて１つ又は２つ以上のアミノ酸置換を行うステップをさらに含む。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープへの１つ又は２つ以上のアミノ酸挿入を行うステップをさらに含む。
本発明のポリペプチドの特定の実施形態は、本発明の方法のいずれかによって産生されたポリペプチドを提供する。
特定の実施形態において、本発明のポリペプチドは、配列番号１１～４３及び４６～４８のうちのいずれか１つを含む、又は配列番号１１～４３及び４６～４８のうちのいずれか１つから本質的になる。
特定の実施形態において、本発明の細胞標的化分子は、細胞標的化部分又は細胞標的化剤と、本発明の任意のポリペプチドとを含む。特定のさらなる実施形態において、細胞標的化分子は結合領域をさらに含み、結合領域は、１つ又は２つ以上のポリペプチドを含み、少なくとも１つの細胞外標的生体分子に特異的に結合することができる。特定のさらなる実施形態において、結合領域は、相補性決定領域３（ＣＤＲ３，complementary determining region 3）断片拘束ＦＲ３－ＣＤＲ３－ＦＲ４（ＦＲ３－ＣＤＲ３－ＦＲ４）ポリペプチド、シングルドメイン抗体（ｓｄＡｂ，single-domain antibody）断片、ナノボディ、ラクダ科動物に由来する重鎖抗体ドメイン（ＶＨＨ断片）、軟骨魚類に由来する重鎖抗体ドメイン、免疫グロブリン新規抗原受容体（ＩｇＮＡＲ，immunoglobulin new antigen receptor）、ＶＮＡＲ断片、一本鎖可変断片（ｓｃＦｖ，single-chain variable fragment）、抗体可変断片（Ｆｖ，variablefragment）、抗原結合断片（Ｆａｂ，antigen-bindingfragment）、Ｆｄ断片、小モジュラー免疫医薬（ＳＭＩＰ，small modular immunopharmaceutical）ドメイン、フィブロネクションから得られる第１０フィブロネクチンIII型ドメイン（１０Ｆｎ３，fibronection-derived 10th fibronectin type III domain）（例えばモノボディ）、テネイシンIII型ドメイン（例えばＴＮｆｎ３）、アンキリン反復モチーフドメイン（ＡＲＤ，ankyrin repeat motif domain）、低密度リポタンパク質受容体由来Ａドメイン（ＬＤＬＲのＡドメイン又はＬＤＬＲ－Ａ，low-density-lipoprotein-receptor-derivedA-domain）、リポカリン（アンチカリン）、Kunitzドメイン、プロテインＡ由来Ｚドメイン、ガンマ－Ｂ結晶由来ドメイン（アフィリン）、ユビキチン由来ドメイン、Ｓａｃ７ｄ由来ポリペプチド、Ｆｙｎ由来ＳＨ２ドメイン（アフィチン）、ミニタンパク質、Ｃ型レクチン様ドメイン足場、工学的に操作された抗体模倣物、及び結合機能性を保持する前述のもののいずれかの遺伝子操作された任意の対応物からなる群から選択されるポリペプチドを含む。本発明の細胞標的化分子の特定のさらなる実施形態では、細胞標的化分子を結合領域の細胞外標的生体分子と物理的に結合されている細胞に投与すると、細胞標的化分子は細胞を死滅させることができる。本発明の細胞標的化分子の特定のさらなる実施形態では、細胞標的化分子を、メンバーが結合領域の細胞外標的生体合分子と物理的に結合されている第１の細胞集団、及びメンバーが前記結合領域のいかなる細胞外標的生体分子とも物理的に結合されていない第２の細胞集団に投与すると、前記第２の細胞集団のメンバーと比較して前記第１の細胞集団のメンバーに対する細胞標的化分子の細胞毒性効果は少なくとも３倍大きい。本発明の細胞標的化分子の特定のさらなる実施形態において、結合領域は、ＣＤ２０、ＣＤ２２、ＣＤ４０、ＣＤ７９、ＣＤ２５、ＣＤ３０、ＨＥＲ２／ｎｅｕ／ＥｒｂＢ２、ＥＧＦＲ、ＥｐＣＡＭ、ＥｐｈＢ２、前立腺特異的膜抗原、Ｃｒｉｐｔｏ、エンドグリン、線維芽細胞活性化タンパク質、Lewis－Ｙ、ＣＤ１９、ＣＤ２１、ＣＳ１／ＳＬＡＭＦ７、ＣＤ３３、ＣＤ５２、ＥｐＣＡＭ、ＣＥＡ、ｇｐＡ３３、ムチン、ＴＡＧ－７２、炭酸脱水酵素IX、葉酸結合タンパク質、ガングリオシドＧＤ２、ガングリオシドＧＤ３、ガングリオシドＧＭ２、ガングリオシドLewis－Ｙ２、ＶＥＧＦＲ、アルファＶベータ３、アルファ５ベータ１、ＥｒｂＢ１／ＥＧＦＲ、Ｅｒｂ３、ｃ－ＭＥＴ、ＩＧＦ１Ｒ、ＥｐｈＡ３、ＴＲＡＩＬ－Ｒ１、ＴＲＡＩＬ－Ｒ２、ＲＡＮＫＬ、ＦＡＰ、テネイシン、ＣＤ６４、メソセリン、ＢＲＣＡ１、ＭＡＲＴ－１／メランＡ、ｇｐ１００、チロシナーゼ、ＴＲＰ－１、ＴＲＰ－２、ＭＡＧＥ－１、ＭＡＧＥ－３、ＧＡＧＥ－１／２、ＢＡＧＥ、ＲＡＧＥ、ＮＹ－ＥＳＯ－１、ＣＤＫ－４、ベータ－カテニン、ＭＵＭ－１、カスパーゼ－８、ＫＩＡＡ０２０５、ＨＰＶＥ６、ＳＡＲＴ－１、ＰＲＡＭＥ、癌胎児抗原、前立腺特異的抗原、前立腺幹細胞抗原、ヒトアスパルチル（アスパラギニル）ベータ－ヒドロキシラーゼ、ＥｐｈＡ２、ＨＥＲ３／ＥｒｂＢ－３、ＭＵＣ１、ＭＡＲＴ－１／メランＡ、ｇｐ１００、チロシナーゼ関連抗原、ＨＰＶ－Ｅ７、エプスタイン・バーウイルス抗原、Ｂｃｒ－Ａｂｌ、アルファ－フェトプロテイン抗原、１７－Ａ１、膀胱腫瘍抗原、ＣＤ３８、ＣＤ１５、ＣＤ２３、ＣＤ５２、ＣＤ５３、ＣＤ８８、ＣＤ１２９、ＣＤ１８３、ＣＤ１９１、ＣＤ１９３、ＣＤ２４４、ＣＤ２９４、ＣＤ３０５、Ｃ３ＡＲ、ＦｃｅＲＩａ、ガレクチン－９、ｍｒｐ－１４、ｓｉｇｌｅｃ－８、ｓｉｇｌｅｃ－１０、ＣＤ４９ｄ、ＣＤ１３、ＣＤ４４、ＣＤ５４、ＣＤ６３、ＣＤ６９、ＣＤ１２３、ＣＤ１９３、ＴＬＲ４、ＦｃｅＲＩａ、ＩｇＥ、ＣＤ１０７ａ、ＣＤ２０３ｃ、ＣＤ１４、ＣＤ１５、ＣＤ３３、ＣＤ６４、ＣＤ６８、ＣＤ８０、ＣＤ８６、ＣＤ１０５、ＣＤ１１５、Ｆ４／８０、ＩＬＴ－３、ガレクチン－３、ＣＤ１１ａ－ｃ、ＧＩＴＲＬ、ＭＨＣクラスＩＩ、ＣＤ２８４－ＴＬＲ４、ＣＤ１０７－Ｍａｃ３、ＣＤ１９５－ＣＣＲ５、ＨＬＡ－ＤＲ、ＣＤ１６／３２、ＣＤ２８２－ＴＬＲ２、ＣＤ１１ｃ、ＣＤ１２３、及び前述のもののいずれかの任意の免疫原性断片からなる群から選択される細胞外標的生体分子と結合することができる。本発明の細胞標的化分子の特定のさらなる実施形態において、細胞標的化分子は、ＫＤＥＬファミリーのメンバーのカルボキシ末端小胞体保留／回収シグナルモチーフをさらに含む。特定のさらなる実施形態では、ＫＤＥＬ、ＨＤＥＦ、ＨＤＥＬ、ＲＤＥＦ、ＲＤＥＬ、ＷＤＥＬ、ＹＤＥＬ、ＨＥＥＦ、ＨＥＥＬ、ＫＥＥＬ、ＲＥＥＬ、ＫＡＥＬ、ＫＣＥＬ、ＫＦＥＬ、ＫＧＥＬ、ＫＨＥＬ、ＫＬＥＬ、ＫＮＥＬ、ＫＱＥＬ、ＫＲＥＬ、ＫＳＥＬ、ＫＶＥＬ、ＫＷＥＬ、ＫＹＥＬ、ＫＥＤＬ、ＫＩＥＬ、ＤＫＥＬ、ＦＤＥＬ、ＫＤＥＦ、ＫＫＥＬ、ＨＡＤＬ、ＨＡＥＬ、ＨＩＥＬ、ＨＮＥＬ、ＨＴＥＬ、ＫＴＥＬ、ＨＶＥＬ、ＮＤＥＬ、ＱＤＥＬ、ＲＥＤＬ、ＲＮＥＬ、ＲＴＤＬ、ＲＴＥＬ、ＳＤＥＬ、ＴＤＥＬ及びＳＫＥＬからなる群から選択される、カルボキシ末端小胞体保留／回収シグナルモチーフ。
本発明の特定の実施形態において、細胞毒性タンパク質の細胞標的化部分の細胞外標的生体分子と物理的に結合されている細胞に本発明の細胞標的化分子を投与すると、細胞毒性タンパク質は、細胞を死滅させることができる。
本発明の特定の実施形態において、細胞外標的生体分子の存在について異なる細胞タイプの２集団に本発明の細胞標的化分子を投与すると、細胞標的化分子は、細胞標的化分子の細胞標的化部分の細胞外標的生体分子と物理的に結合されていない細胞タイプとのＣＤ５０に比べて少なくとも３倍又は４倍以上小さいＣＤ５０で、その結合領域の細胞外標的生体分子と物理的に結合されている細胞タイプを細胞死させることができる。
特定の実施形態において、本発明の細胞標的化分子は、配列番号４９～６０のアミノ酸配列のいずれか１つのポリペプチドを含む、又は配列番号４９～６０のアミノ酸配列のいずれか１つのポリペプチドから本質的になる。
特定のさらなる実施形態において、本発明のポリペプチドは、毒素由来ポリペプチドの触媒活性を低減させる又は除去するが少なくとも１つの他の毒素エフェクター機能を保持する変異を含む。特定の実施形態において、本発明の細胞標的化分子は、酵素活性を有する毒素エフェクターポリペプチドに由来する毒素由来ポリペプチドをさらに含み、毒素由来ポリペプチドは、天然に存在する毒素と比較して毒素エフェクターポリペプチドの酵素活性を変化させる変異を含む。特定のさらなる実施形態において、変異は、毒素エフェクターポリペプチドの細胞毒性を低減させる又は除去する少なくとも１つのアミノ酸残基欠失、挿入及び置換から選択される。特定の実施形態において、本発明の細胞標的化分子は、ジフテリア毒素ファミリーのメンバーの天然に存在するＡサブユニットと比較してジフテリア毒素エフェクター領域の酵素活性を変化させる変異であって、例えば少なくとも１つのアミノ酸残基欠失又は置換、例えばＨ２１Ａ、Ｙ２７Ａ、Ｗ５０Ａ、Ｙ５４Ａ、Ｙ６５Ａ、Ｅ１４８Ａ及びＷ１５３Ａなど、から選択される変異をさらに含む志賀毒素エフェクター領域を含む。特定の実施形態において、本発明の細胞標的化分子は、志賀毒素ファミリーのメンバーの天然に存在するＡサブユニットと比較して志賀毒素エフェクター領域の酵素活性を変化させる変異であって、例えば少なくとも１つのアミノ酸残基欠失又は置換、例えば配列番号１、配列番号２又は配列番号３におけるＡ２３１Ｅ、Ｒ７５Ａ、Ｙ７７Ｓ、Ｙ１１４Ｓ、Ｅ１６７Ｄ、Ｒ１７０Ａ、Ｒ１７６Ｋ及び／又はＷ２０３Ａなど、から選択される変異をさらに含む志賀毒素エフェクター領域を含む。
本発明は、本発明のポリペプチド及び／又は細胞標的化分子と、少なくとも１つの薬学的に許容される賦形剤又は担体とを含む医薬組成物、並びに本書の中でさらに説明するような本発明の方法におけるそのようなポリペプチド、細胞標的化分子、又はそれを含む組成物の使用も提供する。本発明の特定の実施形態は、本発明の任意のポリペプチド及び／又は本発明の任意の細胞標的化分子と、少なくとも１つの薬学的に許容される賦形剤又は担体とを含む医薬組成物である。
本発明のポリペプチド、細胞標的化分子、タンパク質及び組成物の他に、本発明のポリペプチドを含む本発明のポリペプチド又は細胞標的化分子又はタンパク質を含むポリペプチドをコードすることができるポリヌクレオチド、並びに本発明のポリヌクレオチドを含む発現ベクター、及び本発明の発現ベクターを含む宿主細胞は、本発明の範囲内である。発現ベクターを含む宿主細胞は、例えば、本発明のポリペプチド及び／若しくはそれを含む本発明のタンパク質又はそれらのポリペプチド成分若しくは断片を組換え発現によって産生する方法において、使用されることがある。
加えて、本発明は、細胞を選択的に殺滅する方法であって、細胞を、本発明の細胞標的化分子、又は本発明のそのようなタンパク質を含む医薬組成物と接触させるステップを含む方法を提供する。特定の実施形態において、細胞を接触させるステップは、インビトロで行われる。特定の実施形態において、細胞を接触させるステップは、インビボで行われる。
本発明は、それを必要とする患者において疾患、障害及び／又は状態を治療する方法であって、それを必要とする患者に、本発明のポリペプチドを含む組成物、ポリペプチド及び／若しくはそれを含むタンパク質、又は前述のもののいずれかを含む組成物（例えば医薬組成物）の治療有効量を投与するステップを含む方法をさらに提供する。特定の実施形態において、本発明のこの方法を用いて治療される疾患、障害又は状態は、がん、腫瘍、免疫障害及び微生物感染から選択される。この方法の特定の実施形態において、治療されるがんは、骨がん、乳がん、中枢／末梢神経系がん、胃腸がん、胚細胞がん、腺がん、頭頸部がん、血液がん、腎・尿路癌、肝がん、肺／胸膜がん、前立腺がん、肉腫、皮膚がん及び子宮がんからなる群から選択される。この方法の特定の実施形態において、治療される免疫障害は、アミロイドーシス、強直性脊椎炎、喘息、クローン病、糖尿病、移植片拒
絶、移植片対宿主病、橋本甲状腺炎、溶血性尿毒症症候群、ＨＩＶ関連疾患、エリテマトーデス、多発性硬化症、多発動脈炎、乾癬、乾癬性関節炎、リウマチ様関節炎、強皮症、敗血症性ショック、シェーグレン症候群、潰瘍性大腸炎及び血管炎からなる群から選択される疾患に関連した免疫障害である。
本発明の特定の実施形態には、がん、腫瘍、免疫障害又は微生物感染の治療又は予防のための、本発明のポリペプチドを含む組成物、ポリペプチド及び／若しくはそれを含む細胞標的化分子、又は前述のもののいずれかを含む組成物がある。本発明の特定の実施形態には、がん、腫瘍、免疫障害又は微生物感染の治療又は予防のための医薬品の製造における、本発明の組成物の使用がある。
本発明の細胞標的化分子の特定の実施形態を用いて、本発明のタンパク質の細胞外標的生体分子と物理的に結合されている細胞に１つ又は２つ以上のさらなる外因性物質を送達することができる。加えて、本発明は、細胞の内部に外因性物質を送達する方法であって、細胞を本発明の細胞標的化分子、医薬組成物及び／又は診断用組成物とインビトロ又はインビボのいずれかで接触させるステップを含む方法を提供する。本発明は、外因性物質を、それを必要とする患者の細胞の内部に送達する方法であって、患者に本発明の細胞標的化分子を投与するステップを含み、標的細胞が本発明のタンパク質の細胞外標的生体分子と物理的に結合されている、方法をさらに提供する。
本発明の特定の実施形態には、疾患、障害又は状態の診断、予後予測又は特性評価における、本発明の化合物（例えばポリペプチド若しくは細胞標的化分子）及び／又は本発明の組成物（例えば医薬組成物）の使用がある。
本発明の特定の実施形態には、本発明のポリペプチド及び／若しくはそれを含む細胞標的化分子、又は前述のもののいずれかを含む組成物と、細胞タイプ、組織、器官、疾患、障害、状態又は患者についての診断に有用な情報などの情報の収集のための検出促進剤とを含む、診断用組成物がある。
本発明の特定の実施形態には、本発明の細胞標的化分子及び／又は診断用組成物を使用して細胞を検出する方法であって、細胞を前記細胞標的化分子及び／又は診断用組成物と接触させるステップと、前記細胞標的化分子及び／又は診断用組成物の存在を検出するステップとを含む方法がある。特定の実施形態において、細胞を接触させるステップは、インビトロで行われる。特定の実施形態において、細胞を接触させるステップは、インビボで行われる。特定の実施形態において、細胞を検出するステップは、インビトロで行われる。特定の実施形態において、細胞を検出するステップは、インビボで行われる。
例えば、本発明の診断用組成物を使用して、検出促進剤を含む本発明のタンパク質を含む組成物を哺乳動物対象に投与し、次いで、本発明のタンパク質の存在をインビトロ又はインビボのいずれかで検出することにより、細胞をインビボで検出してもよい。収集される情報は、本発明の細胞標的化分子の結合領域の細胞外標的と物理的に結合されている細胞の存在に関することもあり、又は疾患、障害若しくは状態の診断、予後予測、特性評価及び／若しくは治療に有用であることもある。本発明の特定の化合物（例えばポリペプチド及び細胞標的化分子）、本発明の組成物（例えば医薬組成物及び診断用組成物）、及び本発明の方法を用いて、患者が、本発明の医薬組成物に応答する群に属するかどうかを判定してもよい。
本発明のポリペプチド及び本発明の細胞標的化分子の特定の実施形態を、脊索動物の免疫治療及び／又はワクチン接種のために免疫原として又は免疫原の成分として利用してもよい。
特定の実施形態については、本発明の方法は、脊索動物体内の組織部位に「接種」するための方法であり、方法は、本発明の細胞標的化分子、本発明の医薬組成物、又は本発明の診断用組成物を脊索動物に投与するステップを含む。特定の実施形態において、組織部位に「接種」する本発明の方法は、悪性、罹病又は炎症組織を含む組織部位に「接種」する方法である。特定のさらなる実施形態において、組織部位に「接種」する本発明の方法は、罹病組織、腫瘍塊、がん性腫瘍、腫瘍、感染組織及び異常細胞塊からなる群から選択される組織を含む組織部位に「接種」する方法である。特定のさらなる実施形態において、組織部位に「接種」する本発明の方法は、ＭＨＣクラスＩ複合体中の細胞標的化分子の標的細胞によって自然に提示されないペプチド、標的細胞によって発現されるいずれのタンパク質中にも自然に存在しないペプチド、標的細胞のプロテオーム中に自然に存在しないペプチド、接種される部位の細胞外微小環境に自然に存在しないペプチド、及び標的にされる腫瘍塊又は感染組織に自然に存在しないペプチドからなる群から選択される異種Ｔ細胞エピトープを含む、本発明の細胞標的化分子、本発明の医薬組成物又は本発明の診断用組成物を脊索動物に投与するステップを含む。
本発明の特定の実施形態には、本発明の組成物を備え、使用説明書、さらなる試薬及び／又は医薬品送達デバイスを備えていてもよいキットがある。
本発明のこれら及び他の特徴、態様及び利点は、以下の説明、添付の特許請求の範囲、及び付属の図に関連してよりよく理解されることになる。本発明の上述の要素を個々に組み合わせて又は自由に除去して本発明の他の実施形態を、以降にそのような組合せ又は除去に反対するいかなる記述もなければ、作製することができるだろう。
Ｂ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化バリアントを含む、エフェクターポリペプチドを提示する例示的Ｔ細胞エピトープ、及びそれを含む細胞標的化タンパク質の一般的構造を示す図である。 毒素エフェクターポリペプチドのＢ細胞エピトープ領域へのＴ細胞エピトープの組み込みによって触媒活性は有意に損なわなかったことを示すグラフである。Ｂ細胞エピトープ領域に組み込まれたＴ細胞エピトープを含む２つの例示的ジフテリア毒素由来ポリペプチドは、野生型ジフテリア毒素に匹敵するリボソームの不活性化レベルを示した。 ウェスタンブロット分析による様々な抗ＳＬＴ－１Ａ抗体の認識により、Ｂ細胞エピトープ領域へのＴ細胞エピトープの組み込み又は挿入によってエピトープが破壊されたことを示す図である。 ウェスタン分析による様々な抗ＳＬＴ－１Ａ抗体の認識により、Ｂ細胞エピトープ領域へのＴ細胞エピトープの組み込みによってエピトープが破壊されたことを示す図である。 異なる処理（未処理、本発明の例示的細胞標的化タンパク質での処理、外因性エピトープペプチド及びＰＬＥでの処理、並びに外因性エピトープペプチドのみでの処理）が行われた細胞のセットのフローサイトメトリー分析結果のオーバーレイを示すグラフである。Ｂ細胞エピトープ領域を破壊する組み込まれたＴ細胞エピトープを含む脱免疫化志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む、本発明の３つの例示的細胞標的化タンパク質で処理された細胞の細胞表面で、ＭＨＣ分子と複合体を形成する組み込まれたエピトープペプチドが提示された。
例証となる非限定的実施形態、及び付属の図への参照を用いて、以降、本発明をより詳細に説明する。しかし、本発明は多くの異なる形態で実施されることがあり、本発明を、
下に示す実施形態に限定されるとみなすべきではない。むしろ、これらの実施形態は、本開示が行き届いたものになるように、また本発明の範囲を当業者に知らせるために提供するものである。
本発明をより容易に理解できるように、特定の用語を下で定義する。さらなる定義は、発明の詳細な説明の中で見つけることができる。
本明細書及び添付の特許請求の範囲において用いる場合、用語「１つの（a）」、「１
つの（an）」及び「その（the）」は、文脈による別段の明白な指図がない限り、単数及
び複数両方の指示対象を含む。
本明細書及び添付の特許請求の範囲において用いる場合、２つの種、Ａ及びＢ、に言及するときの用語「及び／又は」は、Ａ及びＢの少なくとも一方を意味する。本明細書及び添付の特許請求の範囲において用いる場合、２つより多くの種、例えばＡ、Ｂ及びＣ、に言及するときの用語「及び／又は」は、Ａ、Ｂ若しくはＣの少なくとも１つ、又はＡ、Ｂ若しくはＣのいずれかの組合せ（この場合は各々の種に単数の可能性又は複数の可能性がある）の少なくとも１つを意味する。
本明細書全体を通して、語「含む（comprise）」、又は「含む（comprises）」若しく
は「含むこと（comprising）」などの語尾変化形は、述べられている整数（若しくは成分）又は整数（若しくは成分）群の包含を暗示するが、他のいかなる整数（若しくは成分）又は整数（若しくは成分）群の除外も暗示しないと解されるものとする。
本明細書を通して、用語「含む（including）」は、「含むがこれらに限定されない（including but not limited to）」を意味するために用いる。「含む（including）」及び「含むがこれらに限定されない（including butnot limited to）」は、同義で用いる。
用語「アミノ酸残基」又は「アミノ酸」は、タンパク質、ポリペプチド又はペプチドに組み込まれているアミノ酸への言及を含む。用語「ポリペプチド」は、アミノ酸又はアミノ酸残基の任意の重合体を含む。用語「ポリペプチド配列」は、ポリペプチドを物理的に含む一連のアミノ酸又はアミノ酸残基を指す。「タンパク質」は、１本又は２本以上のポリペプチド鎖を含む高分子である。「ペプチド」は、合計１５～２０アミノ酸残基より小さいサイズの小さいポリペプチドである。用語「アミノ酸配列」は、その長さに依存してペプチド又はポリペプチドを物理的に含む一連のアミノ酸又はアミノ酸残基を指す。別段の指示がない限り、本書において開示するポリペプチド及びタンパク質配列は、アミノ末端からカルボキシ末端へのそれらの順序を表すように左から右に記載している。
用語「アミノ酸」、「アミノ酸残基」、「アミノ酸配列」又はポリペプチド配列は、天然に存在するアミノ酸を含み、別段の制限がない限り、天然に存在するアミノ酸と同様に機能することができる公知の天然アミノ酸アナログ、例えば、セレノシステイン、ピロールリジン、Ｎ－ホルミルメチオニン、ガンマ－カルボキシグルタメート、ヒドロキシプロリン、ハイプシン、ピログルタメート及びセレノメチオニンも含む。本書において言及するアミノ酸は、表Ａ中の以下のような簡略表記名によって記載している：
Figure 2023062014000001


ポリペプチドに関しての句「保存的置換」は、ポリペプチド全体の機能及び構造を実質的に改変しない、ポリペプチドのアミノ酸組成の変化を指す（Creighton, Proteins: Structures and Molecular Properties (W. H.Freeman and Company, New York (2nd ed., 1992)を参照されたい）。
本書において用いる場合、用語「発現された」、「発現すること」又は「発現する」は、ポリヌクレオチド又は核酸のポリペプチド又はタンパク質への翻訳を指す。発現されたポリペプチド又はタンパク質は、細胞内に残存し、細胞表面膜の成分になることもあり、又は細胞外空間に分泌されることもある。
本書において用いる場合、記号「α」は、記号の後に続く生体分子と結合することができる免疫グロブリン型結合領域の簡略表記である。記号「α」は、記号の後に続く生体分子と結合するその能力に基づく免疫グロブリン型結合領域の機能的特徴を指すために用いている。
記号「：：」は、物理的に互いに結合して連続するポリペプチドを形成する前又はした
後のポリペプチド領域を意味する。
本発明では、句「～に由来する」は、ポリペプチド領域が、タンパク質中で元来見つけられるアミノ酸配列であって、元の配列と比較して全機能及び構造が実質的に保存されるような付加、欠失、短縮化又は他の改変を今や含むこともあるアミノ酸配列を含むことを意味する。
本発明では、用語「エフェクター」は、１つ又は２つ以上の因子の動員及び／又はアロステリック効果をもたらす、細胞毒性、生体シグナル伝達、酵素的触媒、細胞内経路指定及び／又は分子間結合などの、生物活性を提供することを意味する。
本書において用いる場合、例えばＡＢｘ毒素などの多量体毒素に関して、用語「サブユニット」及び「鎖」は同義で用いている。
本発明では、句「ＣＤ８＋Ｔ細胞高度免疫化された」は、分子が、生きている脊索動物体内の有核脊索動物細胞の内部に存在するとき、ＣＤ８＋Ｔ細胞抗原性又は免疫原性に関して抗原能力及び／又は免疫原能力が増加されたことを意味する。一般に、ＣＤ８＋Ｔ細胞免疫化された分子は、固有の特徴のため、又は細胞標的化分子の成分として、有核脊索動物細胞の初期エンドソーム区画に細胞内在化することができる。
本発明では、句「Ｂ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化された」は、分子が、哺乳動物への投与後、Ｂ細胞抗原性若しくは免疫原性及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞抗原性若しくは免疫原性のいずれかに関して抗原能力及び／又は免疫原能力が低減されたことを意味する。
本発明では、用語「プロテアソーム送達エフェクター」は、プロテアソーム送達エフェクター分子のプロテアソーム分解をもたらすのに適格である細胞内区画に細胞内局在する生物活性を提供する分子を意味する。一般に、このプロテアソーム送達生物活性は、初期エンドソーム区画内へのプロテアソーム送達エフェクター分子の初期細胞内局在から判定することができるが、細胞内への移動及び、例えばその細胞内へのエンドサイトーシス的侵入後などの、その細胞のエンドソーム区画の通過を含む前記活性を、例えば細胞外開始位置から、判定することもできる。あるいは、プロテアソーム送達エフェクター生物活性は、特定の実施形態では、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドが内在化してそのプロテアソーム分解をもたらすのに的確な区画に達する前に、細胞のいかなるエンドソーム区画の通過も伴わないことがある。当業者は、当技術分野において公知の技法を用いて、プロテアソーム送達エフェクター機能をもたらす所与の分子の能力をアッセイすることができる。
本発明のＴ細胞エピトープ又はポリペプチドのＴ細胞エピトープペプチド成分に関して、用語「異種」は、修飾されるポリペプチドに最初は存在しなかったエピトープ又はペプチド配列であって、本書に記載するような組み込み方法、融合方法、挿入方法及び／若しくはアミノ酸置換方法によって付加されたのか、任意の他の工学手段によって付加されたのかにかかわらず、本発明の方法を用いてポリペプチドに付加されたエピトープ又はペプチド配列を指す。その付加の結果が、元の未修飾ポリペプチドに対して外来性のＴ細胞エピトープを含む修飾ペプチドであり、すなわち、Ｔ細胞エピトープは、元のポリペプチド中には存在しなかった。
ポリペプチド中のＢ細胞エピトープ又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープに関して、用語「内因性」は、本発明の方法によって修飾される前にそのポリペプチド中に既に存在するエピトープを指す。
本書において用いる場合、ポリペプチド領域又はポリペプチド内の特徴に関して、用語「破壊された」又は「破壊」又は「破壊すること」は、領域内の又は特徴を構成する少なくとも１つのアミノ酸の改変を指す。アミノ酸改変は、ポリペプチドのアミノ酸配列を改変する様々な変異、例えば、欠失、反転、挿入又は置換などを含む。アミノ酸改変は、例えば、アミノ酸官能基の１つ又は２つ以上の原子の改変、又はアミノ酸官能基への１つ又は２つ以上の原子の付加などの、化学的変化も含む。
本発明のＴ細胞エピトープ又はポリペプチドのＴ細胞エピトープペプチド成分に関して、句「と会合している」又は「と会合した」は、Ｔ細胞エピトープ及びポリペプチドが、共有結合的連結によるか非共有結合的連結によるかにかかわらず、互いに物理的に連結されていること、例えば、ポリペプチド内に組み込まれている若しくは挿入されている、ポリペプチドに融合されている、及び／又はポリペプチドと化学的に結合されていることを意味する。
請求項記載の本発明に関して、用語「会合させること」は、互いと会合した又は互いと会合している２つの分子を作製する行為を意味する。
本発明のＴ細胞エピトープ又はポリペプチドのＴ細胞エピトープペプチド成分に関して、用語「組み込まれた」及びその文法上の異形は、同じ総数のアミノ酸残基を共有する新たなポリペプチド配列を生成するための、ポリペプチド内の１つ又は２つ以上のアミノ酸の異なるアミノ酸領域での内部置換を指す。したがって、組み込まれたという用語は、出発ポリペプチドへのいかなる追加のアミノ酸、ペプチド又はポリペプチド成分のいかなる外的な末端融合も含まず、いかなる追加のアミノ酸残基のいかなる追加の内部挿入も含まず、既存のアミノ酸の置換のみを含む。内部置換は、単にアミノ酸残基置換によって果たされることもあり、又は一連の置換、欠失、挿入及び／若しくは反転によって果たされることもある。１つ又は２つ以上のアミノ酸の挿入を用いる場合には、組み込まれたＴ細胞エピトープを得るために挿入の次に同数の近位アミノ酸を欠失させなければならない。これは、全Ｔ細胞エピトープの長さと同等のポリペプチド配列長増加性付加を指す、本発明のポリペプチド中のＴ細胞エピトープに関する用語「挿入」の使用とは対照的である。挿入は、挿入部の近位にないポリペプチドの他の領域が欠失されて、その結果、最終ポリペプチドの全長を減少させたとしても、前述のものを含む。
本発明のＴ細胞エピトープ又はポリペプチドのＴ細胞エピトープペプチド成分に関して、用語「融合された」及びその文法上の異形は、元のアミノ酸残基数より多いアミノ酸残基数を有する新たなポリペプチドを生成するための、ポリペプチドのアミノ末端又はカルボキシ末端いずれかへの４、５、６又は７つ以上のアミノ酸の外的付加を指す。融合Ｔ細胞エピトープは、ポリペプチドの他の領域が欠失されて、その結果、最終ポリペプチドの全長を減少させたとしても、新たなポリペプチドが例えばプロテアソーム送達エフェクター機能などの元のポリペプチドのエフェクター機能を保持するのであれば、アミノ末端又はカルボキシ末端のいずれかへの４、５、６又は７つ以上のアミノ酸の付加を含む。
本書において用いる場合、用語「毒素エフェクターポリペプチド」は、ポリペプチドが由来する毒素に存在する１又は２以上の生物活性をもたらすのに十分である毒素由来エフェクター領域を含むポリペプチドを意味する。
本書において用いる場合、用語「Ｔ細胞エピトープ送達」は、Ｔ細胞エピトープを有するプポリペプチド領域のプロテアソーム分解をもたらすのに適格である細胞内区画に細胞内で局在する生物活性を提供する分子を意味する。一般に、このプロテアソーム送達生物活性は、初期エンドソーム区画内へのＴ細胞エピトープの初期細胞内局在から判定するこ
とができるが、細胞内への移動及び、例えばその細胞内へのエンドサイトーシス的侵入後などの、その細胞のエンドソーム区画の通過を含む活性を、例えば細胞外開始位置から、判定することもできる。あるいは、Ｔ細胞エピトープ送達活性は、特定の実施形態では、Ｔ細胞エピトープ送達分子が内在化して、Ｔ細胞エピトープペプチドへの分解のためにＴ細胞エピトープをプロテアソームに送達するのに的確な区画に達する前に、細胞のいかなるエンドソーム区画の通過も伴わないことがある。有効なＴ細胞エピトープ送達機能は、Ｔ細胞エピトープ送達分子が内在化された細胞の細胞に表面における送達されたＴ細胞エピトープのＭＨＣ提示を観察することによってアッセイすることができる。
本書において用いる場合、毒素エフェクター機能又は活性は、なかんずく、細胞内在化の促進、エンドソーム逃避の促進、細胞内区画への経路指定の指示、触媒機能、基質結合、細胞のアポトーシスの誘導、細胞分裂停止（cytostasis）の誘発、及び細胞毒性を含みうる。
本書において用いる場合、毒素由来ポリペプチドエフェクター機能の保持は、再現性のある適切な定量的アッセイによって測定して、野生型ポリペプチド対照に匹敵する毒素エフェクター機能活性レベルを指す。例えば、当業者に公知の様々なアッセイを用いて、毒素エフェクターポリペプチドの酵素活性及び／又は細胞内経路指定を測定することができる。本発明のポリペプチドの酵素的ポリペプチドエフェクター毒素機能は、その酵素活性が、同じ条件下での同じアッセイで野生型ポリペプチドに匹敵する場合、保持されている。
細胞毒性タンパク質の細胞毒性活性に関して、用語「選択的細胞毒性」は、標的細胞タイプの細胞殺滅の優先性を明らかにするための標的細胞集団と非標的バイスタンダー細胞集団間の相対細胞毒性レベルを指し、この相対細胞毒性レベルを標的細胞タイプの半最大細胞毒性濃度（ＣＤ５０）の非標的細胞タイプのＣＤ５０に対する比として表現することができる。
序論
本発明は、細胞表面提示のために標的細胞のＭＨＣクラスＩ系にＴ細胞エピトープペプチドを送達することができるポリペプチド及び細胞標的化分子を産生する方法を提供する。本発明は、細胞表面提示のために標的細胞のＭＨＣクラスＩ系に異種Ｔ細胞エピトープペプチドを送達することができる、本発明の方法を用いて製造された、例示的Ｔ細胞エピトープポリペプチドも提供する。本発明の方法を用いて生成されるポリペプチド、例えばＴ細胞エピトープ送達ポリペプチド及びＣＤ８＋Ｔ細胞高度免疫化されたポリペプチドは、様々な分子及び組成物、例えば、細胞毒性治療薬、治療送達剤及び診断分子の成分として利用されうる。
加えて、本発明は、ＭＨＣクラスＩ提示によってＴ細胞免疫原性の尤度を増加させるために異種Ｔ細胞エピトープをポリペプチド内の重複位置に備えさせると同時にＢ細胞抗原性及び／又は免疫原性の尤度を低下させることによって、ポリペプチドのバリアントを産生する方法を提供する。本発明は、細胞表面提示のために標的細胞のＭＨＣクラスＩ系に異種Ｔ細胞エピトープペプチドを送達することができる、本発明の方法を用いて製造された、例示的Ｂ細胞エピトープ脱免疫化された、Ｔ細胞エピトープポリペプチドも提供する。本発明の方法を用いて生成されるポリペプチド、例えばＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化されたエピトープ送達ポリペプチド、ＣＤ８＋Ｔ細胞高度免疫化され、ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化されたポリペプチドは、様々な分子及び組成物、例えば、細胞毒性治療薬、治療送達剤及び診断分子の成分として利用されうる。
Ｉ．ＣＤ８＋Ｔ細胞高度免疫化されたポリペプチドの一般構造
本発明は、様々なプロテアソーム送達エフェクターポリペプチド領域を含むポリペプチドを、１つ又は２つ以上の異種Ｔ細胞エピトープを含むように工学的に操作することを含み、この場合、ポリペプチドを真核細胞の初期エンドソーム区画に送達すると、ポリペプチドは、分解及び細胞のＭＨＣクラスＩ系への侵入のための１つ又は２つ以上の異種Ｔ細胞エピトープのプロテアソームへの送達に十分な細胞内の細胞内区画に局在することができる。プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドは、いかなる源から得られるものであってもよいが、特定の実施形態では、本発明のポリペプチドは、天然に存在するタンパク質毒素に由来する様々なプロテアソーム送達エフェクターポリペプチドに由来する。
Ａ．１つ又は２つ以上の異種、Ｔ細胞エピトープ及びプロテアソーム送達エフェクターポリペプチドを含むように工学的に操作されたポリペプチド
本発明は、１つ又は２つ以上の異種Ｔ細胞エピトープの組み込み、融合及び／又は挿入による本発明のポリペプチドへの修飾の出発点として様々なポリペプチドを使用することを企図している。これらのソースポリペプチドは、プロテアソーム送達エフェクター能力を示すべきである、又は示すと予測されるものであるべきである。
ＭＨＣクラスＩ経路に侵入するペプチドエピトープの主要な源は、サイトゾル分子のプロテアソーム分解の結果として得られるペプチドである。しかし、ＥＲ局在分子、例えばウイルス糖タンパク質及び形質転換細胞糖タンパク質は、異なる経路によってＭＨＣクラスＩ系により提示されることもある。ＭＨＣクラスＩ提示のこの代替経路はＥＲで始まるが、このペプチドのポリペプチド又はタンパク質源は、プロテアソームによるタンパク質プロセッシングのためにサイトゾルに輸送された後、ＭＨＣクラスＩ分子へのペプチド負荷のためにＴＡＰによってＥＲの内腔に輸送される。この代替経路の根底をなす正確なメカニズムは不明であるが、ミスフォールドタンパク質、「欠陥のあるリボソーム産物」及び前述のものを模倣する構造を検出するためのＥＲ関連分解（ＥＲＡＤ，ER-associated degradation）型監視系を含むだろう。このＥＲＡＤ型系は、分解のために特定のポリペ
プチド及びタンパク質をサイトゾル中のプロテアソームに輸送し、その結果、サイトゾル抗原性ペプチドを産生することができる。加えて、様々な毒素の細胞内経路指定に関する研究は、サイトゾル又は小胞体いずれかへ到達するだけでＭＨＣクラスＩ経路にＴ細胞エピトープが送達されることを示唆している。
したがって、サイトゾル及び／若しくは小胞体に局在すること並びに／又はサイトゾル及び／若しくは小胞体へのそれら自体の細胞内輸送を指示することが公知である又は発見されたポリペプチド及びタンパク質は、プロテアソーム送達機能を示す１つ又は２つ以上のプロテアソーム送達エフェクターポリペプチド領域を含むと予測される分子クラスに相当する。例えば特定の毒素などの、特定のタンパク質及びポリペプチドは、エンドソーム区画からサイトゾルに逃避し、それによってリソソーム分解を回避する能力を示す。したがって、エンドソーム分解を免れてサイトゾルに達することが公知である又は発見されたポリペプチド及びタンパク質は、上述の分子クラスに含まれる。ポリペプチド又はタンパク質が、プロテアソームへの到達を可能にする細胞内位置に最終的に到着するのであれば、そのポリペプチド又はタンパク質がとるサイトゾル又はＥＲへの正確な経路はどうでもよい。
加えて、特定の分子は、リソソームに局在した後に細胞のプロテアソームに達することができる。例えば、細胞のサイトゾルに直接導入される外来性タンパク質、例えばリステリア・モノサイトゲネス（Listeria monocytogenes）によって分泌されるリステリオリジン及び他のタンパク質、は、ＭＨＣクラスＩ経路に侵入し、エフェクターＴ細胞による認識のためにＭＨＣクラスＩ複合体で提示される（Villanueva M et al., J Immunol 155: 5227-33 (1995)）。加えて、ファゴリソソームタンパク質分解を含む、リソソームタンパク質分解は、抗原性ペプチドを生産することができ、抗原性ペプチドは、サイトゾルに移
行され、カノニカルＥＲＡＤ系から展開しうる交差提示と呼ばれるプロセスで細胞表面提示のためにＭＨＣクラスＩ経路に侵入する（Gagnon E et al., Cell 110: 119-31(2002)
）。したがって、リソソームに局在するこが既知である又は発見された特定のポリペプチド及びタンパク質は、プロテアソーム送達機能を示すプロテアソーム送達エフェクター領域を有するポリペプチドの好適な源でありうる。
初期エンドソーム区画の出発位置からの細胞のサイトゾル、ＥＲ及び／又はリソソーム区画に細胞内経路指定するタンパク質性分子の能力は、当業者が当技術分野において公知のアッセイを用いて判定することができる。その場合、当業者は、当技術分野において公知の標準的な技法を用いて、例えば毒素などのポリペプチド又はタンパク質源のプロテアソーム送達エフェクターポリペプチド領域をマッピングし、単離することができる。
１．毒素に由来するプロテアソーム送達エフェクターポリペプチド
本発明は、毒素に由来する様々なポリペプチドをプロテアソーム送達エフェクター領域として使用することを企図している。多くの毒素は、それらの細胞内経路指定挙動についての豊富な知識のため、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドの最適な源となる。
多くの天然に存在するタンパク質性毒素は、エンドソーム逃避及び逆行輸送経路によるものを含む、脊椎動物宿主細胞における細胞内経路指定の指示のために最適化された、高度に進化した構造を有する。
非常に多くの毒素は、一般に細孔形成によって、エンドソーム逃避特性を示す（MandalM et al., BiochimBiophysActa1563: 7-17 (2002)）。例えば、ジフテリア毒素、及びリシンのような植物II型リボソーム不活性化タンパク質は、エンドソームから逃避することができる（Murphy S et al., Biochim Biophys Acta 1824: 34-43 (2006)、Slominska-Wojewodzka M, Sandvig K, Antibodies 2: 236-269 (2013)、Walsh M et al., Virulence 4: 774-84 (2013)）。リソソームを含む、エンドソーム区画からの逃避は、当技術分野において公知のアッセイを用いて、例えば、ホースラディッシュペルオキシダーゼ、ウシ血清アルブミン、Alexa488のようなフルオロフォア、及び毒素由来ポリペプチドを用いるレポーターアッセイを用いて、直接測定し、定量することができる（例えば、Bartz R et al., BiochemJ435: 475-87(2011)、Gilabert-Oriol R et al., Toxins 6: 1644-66(2014)を参照されたい。
多くの毒素は、脊椎動物宿主細胞においてそれらの独自の細胞内経路指定を指示する。例えば、多くの毒素の中毒経路は、１）宿主細胞への毒素の細胞内在化、２）１つ又は２つ以上の細胞内区画を経由する毒素の細胞内経路指定、及び３）宿主因子基質が酵素的に修飾されるサイトゾルへの毒素の触媒部分のその後の局在を含む、多段階プロセスとして説明することができる。例えば、このプロセスは、炭疽菌致死因子、コレラ毒素、ジフテリア毒素、百日咳毒素、緑膿菌外毒素、並びにII型リボソーム不活性化タンパク質、例えばリシン及び志賀毒素の中毒経路を表す。
同様に、組換え毒素、修飾毒素構造、及び毒素に由来する工学的に操作されたポリペプチドは、これらの同じ特性を保存することができる。例えば、ジフテリア毒素（ＤＴ，diphtheria toxin）、炭疽菌致死因子（ＬＦ，anthrax lethalfactor）毒素、及び緑膿菌
外毒素（ＰＥ，Pseudomonas exotoxin）Ａに由来する工学的に操作された組換えポリペプチドは、細胞外空間からサイトゾルにポリペプチドを移動させるための送達媒体として使用されている。初期エンドソーム区画からサイトゾル又はＥＲいずれかに細胞内経路を指定する固有の能力を有するいずれのタンパク質毒素も、本発明の目的に活用されうる、例えば、修飾のための出発成分として活用されることもあり、又はプロテアソーム送達エフ
ェクターポリペプチド内のより小さいプロテアソーム送達エフェクター領域をマッピングするための源として活用されることもある、プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドの源となる。
多くの毒素標的化真核細胞について、毒性は、サイトゾル中の基質が関与する酵素メカニズムの結果である（表Ｉを参照されたい）。これらの毒素は、それらのホロ毒素の酵素的に活性なポリペプチド領域をサイトゾルに送達する能力を有する毒素構造を進化させた。これらの毒素の酵素領域を本発明のポリペプチドの生成のための出発成分として使用してもよい。
Figure 2023062014000002


メンバーが重複している２つの毒素スーパーファミリーの毒素、ＡＢｘ毒素及びリボ毒、は本発明での使用に非常に適している。
ＡＢｘ毒素は、真核細胞に侵入し、サイトゾルに経路指定して、それらの分子標的を攻撃することができる。同様に、リボ毒は、真核細胞に侵入し、サイトゾルに経路指定して、リボソームを不活性化することができる。Ａｂｘ毒素及びリボ毒スーパーファミリーのメンバーは、本発明において使用するための毒素由来ポリペプチド及びプロテアソーム送達エフェクターポリペプチドを同定するための適切な源である。
バイナリー毒素とも言われるＡＢｘ毒素は、細菌、真菌及び植物において見つけられる。ＡＢｘ毒素は、Ａ及びＢサブユニットと言われる、別個の機能を有する２本又は３本以上のポリペプチド鎖の構造構成を共有する毒素のスーパーファミリーを形成する。ｘは、例えば、ジフテリア毒素についてのＡＢ１及び志賀毒素についてのＡＢ５のような、ＡＢｘファミリーメンバーのホロ毒素中のＢサブユニットの数を表す。ＡＢ５毒素スーパーファミリーは、次の４つの主要ファミリーからなる：コリックス毒素（Ｃｔ又はＣｔｘ，cholix toxin）、百日咳毒素（Ｐｔｘ，pertussis toxin）、志賀毒素（Ｓｔｘ，Shiga toxin）、及びスブチラーゼ細胞毒（ＳｕｂＡＢ，Subtilasecytotoxin）。ＡＢ５毒素の細
胞毒メカニズムは、中毒にかかっている真核生物宿主細胞における毒素のＡサブユニットのサイトゾル又はＥＲのいずれかへの細胞内経路指定を含み、サイトゾル又はＥＲにおいて、触媒Ａサブユニットは、様々な宿主細胞タンパク質に相当する該サブユニットの酵素基質に対して作用する（表Ｉを参照されたい）。
ジフテリア毒素は、真核性伸長因子－２（ＥＦ２，elongation factor-2）の触媒性Ａ
ＤＰリボシル化によってタンパク質合成を中断させる。ジフテリア毒素は、触媒Ａサブユニットと、リン脂質二重層移行エフェクタードメイン及び細胞標的化結合ドメインを含有するＢサブユニットとからなる。その中毒過程で、ジフテリア毒素は、おそらくエンドソーム逃避によって、該毒素の触媒ドメインの真核細胞のサイトゾルへの細胞内経路を指定することができる（Murphy J, Toxins (Basel) 3: 294-308 (2011)）。このエンドソーム逃避メカニズムは、例えば炭疽菌致死因子及び浮腫因子などの他の毒素と共有されることがあり、一般的なエンドソーム逃避能力は、例えば特定のクロストリジウム・ディフィシル（C. difficile）毒素、ゲロニン、リステリオリジン、ＰＥ、リシン及びサポリンを含む、多くの多様な毒素によって示される（例えば、Varkouhi A et al.,J Control Release 151: 220-8 (2010)、Murphy J, Toxins(Basel) 3: 294-308 (2011)を参照されたい）。
特に、サイトゾル中のリボソームを不活性化する毒素は、本発明において使用のためのプロテアソーム送達エフェクターポリペプチドの同定に有用である。これらの毒素は、サイトゾル標的化エフェクター機能と細胞毒性リボ毒性毒素エフェクター機能の両方を同時にもたらすポリペプチド領域を含む。
請求項記載の本発明に関して、句「リボ毒性毒素エフェクターポリペプチド」は、インビトロでリボソーム不活性化、インビトロ及び／若しくはインビボでタンパク質合成阻害、細胞毒、並びに／又は細胞分裂停止をもたらすことができる、天然に存在するリボ毒及び合成リボ毒を含む、タンパク質に由来するポリペプチドを指す。一般に、リボ毒性毒素エフェクターポリペプチドは、天然に存在するタンパク質毒素、又はヒトの介入によって改変されている若しくは工学的に操作されている毒素様構造に由来する。しかし、毒素又は合成ポリペプチド中に自然に存在しない天然に存在する酵素性ドメインなどの、他のポリペプチドは、本書において用いる場合、この用語の範囲内である（例えば、Newton D et al., Blood 97: 528-35 (2001)、DeLorenzoC et al., FEBS Lett 581:296-300 (2007)、DeLorenzo C, D'AlessioG, CurrPharm Biotechnol 9:210-4 (2008)、Menzel Cet al.,Blood 111: 3830-7 (2008)を参照されたい。したがって、リボ毒性毒素エフェク
ターポリペプチドは、リボ毒性が増加若しくは減少した合成若しくは工学的に操作されたタンパク質構造、及び／又は非ネイティブ特性を有するように別様に改変された天然に存在するタンパク質に由来することもある。
リボ毒性毒素エフェクターポリペプチドは、例えば藻類、細菌、真菌、植物及び動物などの、多様な門からのタンパク質のリボ毒性ドメインに由来することもある。例えば、様々なリボ毒に由来するポリペプチドは、細胞タイプ特異的細胞毒治療薬を創生するという目的で化学的コンジュゲーション又は組換えタンパク質工学によって免疫グロブリンドメイン又は受容体リガンドに連結又は融合されてきた（Pastan I et al., Annu Rev Biochem 61: 331-54(1992)、Foss F et al., CurrTop MicrobiolImmunol234: 63-81 (1998)、Olsnes S, Toxicon 44: 361-70 (2004)、Pastan I, et al.,NatRevCancer 6: 559-65 (2006)、Lacadena J et al., FEMS Microbiol Rev 31: 212-37(2007)、de Virgilio M
et al., Toxins 2: 2699-737 (2011)、Walsh M,Virulence4:774-84 (2013)、Weidle U et al., Cancer Genomics Proteomics 11: 25-38 (2014)）。
リボ毒性毒素エフェクターポリペプチドは、タンパク質リボ毒のリボソーム不活性化タンパク質（ＲＩＰ，RibosomeInactivating Protein）スーパーファミリーのメンバーの
触媒ドメインに由来することもある（de Virgilio M et al., Toxins2:2699-737(2011)
、Lapadula W et al., PLoS ONE 8: e72825 (2013)、Walsh M, Virulence 4: 774-84 (2013)）。ＲＩＰは、藻類、細菌、真菌及び植物において発現されるリボ毒性タンパク質で
あり、準化学量論的濃度で真核生物及び原核生物タンパク質合成の強力な阻害剤であることが多い（Stirpe, F, BiochemJ202: 279-80 (1982)を参照されたい）。様々なＲＩＰ
が、がん治療用の治療薬に使用するための有望な毒素エフェクターポリペプチド配列源と考えられている（Pastan I, et al., Nat RevCancer6:559-65 (2006)、Fracasso G et
al., Ribosome-inactivating protein-containing conjugates for therapeutic use,Toxic Plant Proteins 18, pp. 225-63 (Eds.Lord J,Hartley, M. Berlin,Heidelberg: Springer-Verlag, 2010)、deVirgilio M etal., Toxins 2: 2699-737 (2011)、Puri M et al., Drug Discov Today 17: 774-83 (2012)、WalshM, Virulence 4: 774-84 (2013)を参
照されたい）。
組換え細胞毒性ポリペプチドにおいて最も一般的に使用されているリボ毒は、ジフテリア毒素、緑膿菌外毒素Ａ、リシン、α－サルシン、サポリン、及びゲロニンを含む（Shapira A, Benhar I, Toxins2:2519-83(2010)、Yu C et al., Cancer Res 69:8987-95(2009)、Fuenmayor J,Montano R, Cancers 3: 3370-93 (2011)、Weldon, FEBS J 278:4683-700 (2011)、Carreras-SangraN et al., Protein EngDesSel25: 425-35 (2012)、Lyu M
at al., Methods Enzymol 502: 167-214(2012)、Antignani,Toxins5: 1486-502
(2013)、Lin H et al., Anticancer Agents MedChem13:1259-66 (2013)、Polito L et al., Toxins 5: 1698-722 (2013)、WalshM, Virulence 4: 774-84 (2013)を参照され
たい。これらのリボ毒は、一般に、リボソーム不活性化タンパク質（ＲＩＰ）として分類され、サルシン－リシンループ（ＳＲＬ，sarcin-ricin loop）、又はＳＲＬと結合する
リボソーム機能に必要なタンパク質を攻撃することによって、真核生物リボソームを不活性化する一般細胞毒性メカニズムを共有する。
ＳＲＬ構造は、古菌類、細菌及び真核生物という３つの系統発生群間で、原核生物リボソームと真核生物リボソームの両方がＳＲＬリボソーム構造を共有するように、高度に保存されている（Gutell R et al.,Nucleic Acids Res 21: 3055-74 (1993)、Szewczak A,
Moore P, J Mol Biol 247: 81-98 (1995)、Gluck A, Wool I,JMol Biol 256: 838-48 (1996)、Seggerson K, Moore P, RNA 4: 1203-15(1998)、Correll C et al., J Mol Biol292:275-87 (1999)）。多様な門からの様々な種のＳＲＬを結晶構造電子密度マップに非
常に精密に重ね合わせることができる（Ban N et al., Science 11:905-20(2000)、Gabashvili I et al., Cell 100: 537-49(2000)）。ＳＲＬは、ＥＦ－Ｔｕ、ＥＦ－Ｇ、
ＥＦ１及びＥＦ２などの伸長因子の共同作用によるリボソーム移行機能に不可欠である保存された二次構造を形成する、より大きい普遍的に保存されたリボソーム配列である（Vo
orhees R et al., Science 330: 835-8 (2010)、Shi X et al., J Mol Biol 419: 125-38(2012)、ChenK et al., PLoSOne8: e66446 (2013)）。ＳＲＬ（サルシン－リシンル
ープ）は、真菌リボ毒サルシン及び植物II型ＲＩＰリシンの共有標的であることにちなんで名付けられた。
ＲＩＰスーパーファミリーは、リボソーム移行機能に干渉する、ＲＩＰ、真菌リボ毒及び細菌リボ毒を含む（表Ｂ、Brigotti M et al., Biochem J 257: 723-7 (1989)を参照されたい）。大部分のＲＩＰ、例えばアブリン、ゲロニン、リシン及びサポリンは、リボソームの大きいｒＲＮＡの普遍的に保存されたサルシン／リシンループ（ＳＲＬ）内の特異的アデニン（例えば、動物におけるＡ４３２４、真菌におけるＡ３０２７、及び原核生物におけるＡ２６６０）を不可逆的に脱プリン化する。大部分の真菌リボ毒、例えばα－サルシンは、ＳＲＬ内の特異的結合（例えば、動物におけるＧ４３２５とＡ４３２６間の結合、真菌におけるＧ３０２８とＡ３０２９間の結合、及び原核生物におけるＧ２６６１とＡ２６６２間の結合）を不可逆的に切断して、リボソームを損傷させることによってタンパク質合成を触媒的に阻害する（Martinez-Ruiz A et al., Toxicon 37: 1549-63 (1999)、Lacadena J et al.,FEMS Microbiol Rev 31: 212-37(2007)、Tan Q et al., J Biotechnol139: 156-62(2009)）。細菌タンパク質リボ毒Ｃｔ、ＤＴ及びＰＥは、リボソーム
機能を触媒的に損傷させることによってタンパク質合成を阻害することができ、ほんの少数の毒素分子で有効にアポトーシスを誘導することができるので、ＲＩＰスーパーファミリーに分類される。
ＲＩＰは、リボソームＲＮＡ（ｒＲＮＡ，robosomal RNA）Ｎ－グリコシダーゼ活性に
よってリボソームを損傷させることによってインビトロで移行を阻害する能力という１つの共通の特徴によって定義される。２０１３年までに、１００を超えるＲＩＰが記載されていた（Walsh M, Virulence 4: 774-84 (2013)）。大部分のＲＩＰは、真核生物リボソ
ームと原核動物リボソーム両方の大きいｒＲＮＡの普遍的に保存されたサルシン／リシンループ（ＳＲＬ）内の特異的アデニンを脱プリン化する。より多数のＲＩＰが次の科で見つかっている：ナデシコ科、ニワトコ科、ウリ科、トウダイグサ科、ヤマゴボウ科及びイネ科。
ＲＩＰファミリーのメンバーは、それらの構造に基づいて少なくとも３クラスにカテゴリー分けされる。Ｉ型ＲＩＰ、例えば、ゲロニン、ルフィン、ＰＡＰ、サポリン及びトリコサンチンは、酵素ドメインを含み、会合している標的化ドメインがない、単量体タンパク質である。II型ＲＩＰ、例えば、アブリン、リシン、志賀毒素は、バイナリーＡＢｘ毒素に特有の酵素Ａサブユニット及び標的化Ｂサブユニットを有する、マルチサブユニット、ヘテロマータンパク質である（Ho M, et al., Proc Natl Acad Sci USA106:20276-81
(2009)）。III型ＲＩＰ、例えば、オオムギＪＩＰ６０ ＲＩＰ及びトウモロコシｂ－３
２ ＲＩＰは、活性化のために大規模なタンパク質プロセッシングを必要とする酵素前駆体として合成される（Peumans W et al.,FASEBJ15: 1493-1506 (2001)、Mak A et al.,
Nucleic Acids Res 35: 6259-67 (2007)）。
ＲＩＰファミリーのメンバー間の配列相同性は低い（同一性５０％未満）が、それらの触媒ドメインは、重ね合わせることができる保存された三次構造を共有し、その結果、リボソームの脱プリン化に関与する肝要な残基を同定することができる（de Virgilio M etal., Toxins 2:2699-737(2011)、Walsh M, Virulence 4:774-84 (2013)）。例えば、リ
シン及び志賀毒素の触媒ドメインは、それらのＡ鎖サブユニットの１８％配列同一性にもかかわらず結晶学的データを使用して重ね合わせることができる（Fraser M et al., NatStruct Biol 1: 59-64(1994)）。
多くの酵素及びポリペプチドエフェクター領域が例えばゲロニン、サポリン、ヤマゴボ
ウ抗ウイルスタンパク質（ＰＡＰ，pokeweed antiviral protein）、ブリオジン、アルファ－サルシン、Onconase（登録商標）、膵臓リボヌクレアーゼ、Ｂａｘ、好酸球由来ニューロトキシン、及びアンジオゲニンなどの、免疫毒素の細胞毒性成分を生成するために使用されている。特に、細胞毒性の強い免疫毒素は、次のＲＩＰに由来するポリペプチドを使用して産生されている：リシン、ゲロニン、サポリン、モモルジン及びＰＡＰ（Pasqualucci L etal., Haematologica 80:546-56(1995)）。
コレラ毒素、リシン及び志賀毒素は全て、それらのそれぞれの中毒過程で、ＥＲへの細胞内経路を指定し、その後、そのＥＲにおいてそれらの触媒ドメインは放出され、サイトゾルに移行される。これらの毒素は、宿主細胞のアンフォールドタンパク質機構及びＥＲＡＤ系を利用して宿主細胞にシグナルを送って、それらの触媒ドメインをサイトゾルに輸送させる（Spooner R, Lord J, Curr Top MicrobiolImmunol 357: 190-40 (2012)を参照
されたい）。
特異的細胞内区画に細胞内経路指定する所与の分子の能力を、当業者は、当技術分野において公知の技法を用いてアッセイすることができる。これは、次の細胞内区画：サイトゾル、ＥＲ及びリソソーム、のいずれか１つに目的の分子を局在させることができる、当技術分野において一般的な技法を含む。
請求項記載の本発明に関して、句「サイトゾル標的化毒素エフェクターポリペプチド」は、細胞内在化後にサイトゾルに細胞内で経路指定することができる、天然に存在するリボ毒及び合成リボ毒を含む、タンパク質に由来するポリペプチドを指す。一般に、サイトゾル標的化毒素エフェクター領域は、天然に存在するタンパク質毒素、又はヒト介入によって改変されている若しくは工学的に操作されている毒素様構造に由来するが、例えばコンピューターによって設計されたポリペプチドなどの他のペプチドは、本書において用いる場合、この用語の範囲内である（例えば、Newton D et al., Blood 97: 528-35 (2001)、DeLorenzoC et al., FEBS Lett 581:296-300 (2007)、DeLorenzo C, D'Alessio G,Curr Pharm Biotechnol9:210-4 (2008)、Menzel C et al., Blood 111: 3830-7(2008)
を参照されたい）。したがって、サイトゾル標的化毒素エフェクター領域は、リボ毒性
が増加若しくは減少した合成若しくは工学的に操作されたタンパク質構造、及び／又は非ネイティブ特性を有するように別様に改変された天然に存在するタンパク質に由来することがある。当業者は、当技術分野において公知の技法を用いて、サイトゾル標的化毒素エフェクター機能をもたらす所与の分子の能力をアッセイすることができる。
本発明のサイトゾル標的化毒素エフェクター領域は、リボ毒性毒素エフェクターポリペプチドに由来することがあり、多くの場合、リボ毒性毒素エフェクターポリペプチドと重なるか、又はリボ毒性毒素エフェクターポリペプチドを完全に含む。
２．他のポリペプチド領域又は非タンパク質性材料に由来するプロテアソーム送達エフェクターポリペプチド
毒素由来分子以外のタンパク質性分子であって、サイトゾル、ＥＲ、若しくはプロテアソームへの送達に好適な任意の他の細胞内区画内に局在する、又はサイトゾル、ＥＲ若しくは区画へのそれら独自の細胞内経路指定を指示する、固有の能力を有するタンパク質性分子が、非常に多数ある。これらのポリペプチドのいずれかを直接使用してもよいし、又は本発明において使用するためのプロテアソーム送達エフェクターポリペプチドに誘導体化してもよいが、だたし、固有の細胞内局在エフェクター機能が保存されることを条件とする。
例えば、非常に多くの天然に存在するタンパク質及びポリペプチドを含む、非常の多数の分子が、細孔形成、脂質二重層融合及びプロトンスポンジ効果を含む非常に多くのメカ
ニズムによって、細胞へのエンドサイトーシス後にエンドソーム区画から逃避できることは公知である（例えば、Varkouhi A et al., J Control Release151: 220-8 (2010)を参照されたい）。エンドソーム逃避機能を有する非毒度由来分子の非限定的な例は、ウイルス剤、例えばヘマグルチニンＨＡ２；脊椎動物由来ポリペプチド及びペプチド、例えばヒトカルシトニン由来ペプチド、ウシプリオンタンパク質及びスイートアローペプチド；合成生物模倣型ペプチド；並びにエンドソーム破壊能力を有するポリマーを含む（例えば、Varkouhi A et al.,J Control Release 151: 220-8 (2010)を参照されたい）。リソソー
ムを含む、エンドソーム区画からの逃避は、当技術分野において公知のアッセイを用いて、例えば、ホースラディッシュペルオキシダーゼ、ウシ血清アルブミン、Alexa 488のようなフルオロフォア、及び毒素由来ポリペプチドを用いるレポーターアッセイを用いて、直接測定し、定量することができる（例えば、Bartz R et al., Biochem J 435: 475-87 (2011)、Gilabert-Oriol R et al.,Toxins6:1644-66 (2014)を参照されたい）。
他の例は、特異的細胞内区画に局在する分子である。内質保持／回収シグナルモチーフ（例えばKDEL）を含む大部分のポリペプチドは、細胞内の異なる区画から真核生物細胞のＥＲに局在することができる。
初期エンドソーム区画の出発位置からの細胞のサイトゾル、ＥＲ及び／又はリソソーム区画に細胞内経路指定するポリペプチドの能力は、当業者が当技術分野において公知のアッセイを用いて判定することができる。その場合、当業者は、当技術分野において公知の標準的な技法を用いて、例えば毒素などのポリペプチド又はタンパク質源のプロテアソーム送達エフェクターポリペプチド領域をマッピングし、単離することができる。
３．１つ又は２つ以上の異種、Ｔ細胞エピトープ及びプロテアソーム送達エフェクターポリペプチドを含むように工学的に操作されたポリペプチド
プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドが得られたら、本発明の方法を使用してそのポリペプチドを工学的に操作して、本発明のＴ細胞高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化されたポリペプチドにすることができる。初期エンドソーム区画から出発してＭＨＣクラスＩ経路への侵入及びその後のＭＨＣクラスＩ提示のためにプロテアソームにＴ細胞エピトープを送達することができる本発明のポリペプチドを生成するために、本発明の方法を用いて、１つ又は２つ以上のＴ細胞エピトープを任意のプロテアソーム送達エフェクターポリペプチド、例えばサイトゾルへの経路を指定する毒素エフェクターポリペプチドなど（リボ毒性毒素エフェクターポリペプチドを含むこともある）に組み込む、融合する、又は挿入する。
細胞のＭＨＣクラスＩ経路への侵入のためにプロテアソームにＴ細胞エピトープを送達する所与の分子の能力を、当業者は、本書に記載する方法及び／又は当技術分野において公知の技法を用いてアッセイすることができる（下記の実施例を参照されたい）。同様に、初期エンドソーム区画からプロテアソームにＴ細胞エピトープを送達する所与の分子の能力を、当業者は、本書に記載する方法及び／又は当技術分野において公知の技法を用いてアッセイすることができる。
細胞表面での提示のために初期エンドソーム区画からのＭＨＣクラスＩ分子にＴ細胞エピトープを送達する所与の分子の能力を、当業者は、本書に記載する方法及び／又は当技術分野において公知の技法を用いてアッセイすることができる（下記の実施例を参照されたい）。同様に、初期エンドソーム区画からＭＨＣクラスＩ分子にＴ細胞エピトープを送達する所与の分子の能力を、当業者は、本書に記載する方法及び／又は当技術分野において公知の技法を用いてアッセイすることができる。
本発明の方法を用いて修飾されたプロテアソーム送達エフェクターポリペプチドは、本
発明の方法による修飾前又は後いずれにおいても、細胞内在化を誘導できる必要も、促進できる必要もない。本発明の細胞標的化分子を製造するために、当技術分野において公知の標準的技法を用いて、必要に応じて細胞標的化及び／又は細胞内在化機能をもたらすための当業者に公知の他の成分と本発明のポリペプチドを連結させてもよい。
Ｂ．異種Ｔ細胞エピトープ
本発明のポリペプチド及び細胞標的化分子は、各々、１つ又は２つ以上の異種Ｔ細胞エピトープを含む。Ｔ細胞エピトープは、抗原が有する分子構造であり、ペプチド及び直鎖状アミノ酸配列及び＿＿によって表すことができる。異種Ｔ細胞エピトープは、本発明のＴ細胞高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化されたポリペプチドを生成するために本発明の方法を使用して修飾される出発プロテアソーム送達エフェクターポリペプチドであるソースポリペプチドにはまだ存在しないエピトープである。
異種Ｔ細胞エピトープペプチドは、例えばソースポリペプチド内で１つ又は２つ以上のアミノ酸置換を生じさせる方法、ソースポリペプチドに１つ若しくは２つ以上のアミノ酸を融合させる方法、ソースポリペプチドに１つ若しくは２つ以上のアミノ酸を挿入する方法、ソースポリペプチドにペプチドを連結させる方法、及び／又は前述の方法の組合せを含む、当業者に公知の非常に多くの方法によって、ソースポリペプチドに組み込むことができる。その組込みの結果が、１つ又は２つ以上の異種Ｔ細胞エピトープを含むソースポリペプチドの修飾バリアントである。
いずれのＴ細胞エピトープも本発明の異種Ｔ細胞エピトープとして使用されると考えられるが、所望の特性に基づいて特定のエピトープを選択してもよい。１つの目的は、ＣＤ８＋Ｔ細胞高度免疫化されたポリペプチドの生成であり、前記ＣＤ８＋Ｔ細胞高度免疫化されたポリペプチドは、該異種Ｔ細胞エピトープが、高免疫原性であり、細胞表面において提示され、ＭＨＣクラスＩ分子と複合体を形成すると強いインビボ免疫応答を惹起してすることができることを意味する。本発明のポリペプチドの特定の実施形態において、１つ又は２つ以上の異種Ｔ細胞エピトープは、ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープである。
Ｔ細胞エピトープは、タンパク質のペプチド成分、及び哺乳動物免疫応答を惹起できることが既知である又は証明されているタンパク質に由来するペプチドを含む、いくつかの源に由来することがある。Ｔ細胞エピトープは、様々な天然に存在するタンパク質から生成されることがあり、又はそのようなタンパク質に由来することがある。Ｔ細胞エピトープは、哺乳動物にとって異質の様々な天然に存在するタンパク質、例えば、微生物のタンパク質などに由来することもある。特に、感染性微生物は、公知の抗原特性及び／若しくは免疫原特性を有する非常の多数のタンパク質、又は小領域若しくはエピトープを含有することがある。Ｔ細胞エピトープは、変異したヒトタンパク質に由来することもあり、又は悪性ヒト細胞によって異常に発現されたヒトタンパク質に由来することもある。
Ｔ細胞エピトープは、ペプチド、タンパク質のペプチド成分、及びタンパク質に由来するペプチドを含む、哺乳動物免疫応答を惹起することができることが既知であるいくつかのソース分子から選択されることがあり、そのようなソース分子に由来することもある。例えば、細胞内病原体のタンパク質と哺乳動物宿主は、Ｔ細胞エピトープ源である。抗原性タンパク質又はペプチドが十分に研究されている、ウイルス、細菌、真菌及び単細胞真核生物などの非常に多くの細胞内病原体がある。Ｔ細胞エピトープは、ヒトウイルス又は他の細胞内病原体、例えば、細菌様マイコバクテリウム、真菌様トキソプラズマ、及び原生生物様トリパノソーマなどから選択又は同定することができる。
例えば、ヒトウイルスからのウイルスタンパク質の多くの公知免疫原性ウイルスペプチド成分がある。非常に多くのヒトＴ細胞エピトープが、Ａ型インフルエンザウイルスから
タンパク質中ペプチド、例えば、タンパク質（ＨＡ糖タンパク質ＦＥ１７、Ｓ１３９／１、ＣＨ６５、Ｃ０５、ヘマグルチニン１（ＨＡ１，hemagglutin 1）ヘマグルチニン２（ＨＡ２，hemagglutinin 2）、非構造タンパク質１及び２（ＮＳ１及びＮＳ２，nonstructural protein 1及び2）、基質タンパク質１及び２（Ｍ１及びＭ２，matrix protein 1及び2）、核タンパク質（ＮＰ，nucleoprotein）、ノイラミニダーゼ（ＮＡ，neuraminidase））中のペプチドにマッピングされており、これらのペプチドの多くは、エクスビボアッセイを用いることなどによって、ヒト免疫応答を惹起することが証明されている（例えば、Assarsson E et al, J Virol 82: 12241-51 (2008)、AlexanderJ et al., Hum Immunol71:468-74 (2010)、Wang M et al., PLoSOne5: e10533 (2010)、Wu J etal.,Clin Infect Dis 51: 1184-91 (2010)、Tan P et al.,Human Vaccin 7: 402-9 (2011)、Grant E et al.,Immunol Cell Biol 91: 184-94 (2013)、Terajima M et al.,Virol J 10: 244 (2013)を参照されたい）。同様に、非常に多くのＴ細胞エピトープは、ヒトサイトメガロウイルス（ＨＣＭＶ，human cytomegalovirus）からのタンパク質のペプチド成分、例えば、タンパク質（ｐｐ６５（ＵＬ８３）、ＵＬ１２８－１３１、最初期１（ＩＥ－１，immediate-early1；ＵＬ１２３）、糖タンパク質Ｂ、テグメントタンパク質）中のペプチド、にマッピングされており、これらのペプチドの多くは、エクスビボアッセイを使用することなどによってヒト免疫応答を惹起することが証明されている（Schoppel K et al.,J Infect Dis 175: 533-44 (1997)、Elkington R et al, J Virol 77: 5226-40(2003)、Gibson Let al., J Immunol 172: 2256-64 (2004)、Ryckman B et al.,J Virol 82: 60-70 (2008)、Sacre K et al., J Virol82: 10143-52(2008)）。
いずれのＴ細胞エピトープを本発明の組成物及び方法において使用してもよいが、特定のＴ細胞エピトープが、それらの公知の特性及び／又は実験によって判定された特性に基づき、望ましいこともある。
多くの種において、ＭＨＣ遺伝子は複数のＭＨＣ－Ｉ分子バリアントをコードする。ＭＨＣクラスＩタンパク質多型は、ＣＤ８＋Ｔ細胞による抗原－ＭＨＣクラスＩ複合体認識に影響しうるため、特定のＭＨＣクラスＩ多型についての知識及び／又は異なる遺伝子型のＴ細胞によって認識される特定の抗原－ＭＨＣクラスＩ複合体の能力を用い、それらに基づいて、異種Ｔ細胞エピトープを選択してもよい。
免疫原性であること、ＭＨＣクラスＩ限定であること、及び／又は特異的ヒト白血球抗原（ＨＬＡ，humanleukocyte antigen）バリアントと適合することが公知である、十分
に定義されたペプチド－エピトープがある。ヒトにおける利用又はヒト標的細胞を伴う利用のために、当業者は、当技術分野において公知の技法を用いて、ＨＬＡクラスＩ限定エピトープを選択又は同定することができる。ヒトＭＨＣクラスＩ分子と結合するペプチドの能力を用いて、推定Ｔ細胞エピトープの免疫原性を予測することができる。ヒトＭＨＣクラスＩ分子と結合するペプチドの能力を、ソフトウェアツールを用いて点数化することができる。特定のヒト集団においてより高頻度に見られる対立遺伝子によってコードされているＨＬＡバリアントのペプチド選択性に基づいてＴ細胞エピトープを本発明の異種Ｔ細胞エピトープ成分としての使用に選択してもよい。例えば、ヒト集団は、ＭＨＣクラスＩ分子のアルファ鎖について多型性であり、可変対立遺伝子がＨＬＡ遺伝子によってコードされている。特定のＴ細胞エピトープは、例えばＨＬＡ－Ａ対立遺伝子群、ＨＬＡ－Ａ２及びＨＬＡ－Ａ３、によってコードされている普通に存在するＨＬＡ変異体などの、特異的ＨＬＡ分子によって、より効率よく提示されることがある。
本発明の異種Ｔ細胞エピトープ成分として使用するためのＴ細胞エピトープを選択する際、エピトープ産生及びそれぞれのＭＨＣクラスＩ分子への輸送に影響を及ぼすことができる複数の因子をＭＨＣクラスＩ分子によるエピトープ選択の過程で考えられることがあり、例えば、標的細胞における次の因子：プロテアソーム、ＥＲＡＡＰ／ＥＲＡＰ１、タ
パシン、及びＴＡＰ、のエピトープ特異性などを考えることができる（例えば、Akram A,Inman R, Clin Immunol 143: 99-115(2012)を参照されたい）。
本発明の異種Ｔ細胞エピトープ成分として使用するためのＴ細胞エピトープを選択する際、標的にすべき細胞タイプ又は細胞集団中に存在するＭＨＣクラスＩ分子と最もよく適合するエピトープ－ペプチドを選択してもよい。異なるＭＨＣクラスＩ分子は、特定のペプチド配列と差次的結合を示し、特定のペプチド－ＭＨＣクラスＩバリアント複合体は、エフェクターＴ細胞のＴＣＲによって特異的に認識される。当業者は、ＭＨＣクラスＩ分子特異性及びＴＣＲ特異性についての知識を用いて、本発明において使用する異種Ｔ細胞エピトープの選択を最適化することができる。
加えて、ＭＨＣクラスＩ提示のための複数の免疫原性Ｔ細胞エピトープを、複数のＴ細胞エピトープの標的化送達において同時に使用するために同じポリペプチド成分に組み込んでもよい。
Ｃ．内因性Ｂ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域を破壊するために組み込まれた又は挿入された１つ又は２つ以上の異種Ｔ細胞エピトープを含むプロテアソーム送達エフェクターポリペプチド
治療薬の成分としてプロテアソーム送達エフェクターポリペプチドを使用することの魅力にもかかわらず、多くのポリペプチドは、脊椎動物に投与されたとき細胞外空間において免疫原性である。タンパク質療法において望ましくない免疫原性は、有効性の低下、予測不能な薬物動態、並びに投薬量及び反復投与を制限する望ましくない免疫応答をもたらした。治療薬を脱免疫化しようと努力する上で、１つの主な難題は、例えばプロテアソーム送達などの所望のポリペプチドエフェクター機能を維持しながら、ポリペプチドエフェクタードメイン、例えばそのサイトゾル標的化ドメイン、内の免疫原性エピトープをサイレンシング又は破壊することである。加えて、ポリペプチドの機能を保存しながらポリペプチド構造内の免疫エピトープをアミノ酸置換によって破壊し、同時に、標的細胞による細胞内在化、プロセッシング及び細胞表面提示後まで免疫系によって認識されない１つ又は２つ以上Ｔ細胞エピトープを付加することは、かなりの難題である。この難題を解決することによって、望ましいＣＤ８＋Ｔ細胞免疫原性を示し、その上、望ましくないＢ細胞及びＣＤ４＋Ｔ細胞免疫原性を低減させるポリペプチド（本明細書では「ＣＤ８＋高度免疫化された及び／若しくはＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化された」分子、又は「Ｔ細胞エピトープ送達及び／若しくはＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化された」分子と言う）の生成が可能になる。
II．本発明のＴ細胞エピトープ送達、ＣＤ８＋Ｔ細胞高度免疫化されたポリペプチドを含む細胞標的化分子の一般構造
本発明のポリペプチドを非常に多くの他のポリペプチド、薬剤及び部分と結合させて、例えば本発明の細胞毒性、細胞標的化タンパク質などの、細胞標的化分子を生成することができる。本発明のプロテアソーム送達エフェクターポリペプチドを含むＴ細胞エピトープを使用し、例えば、特異的細胞タイプの表面と物理的に結合されている細胞外標的生体分子との高親和性結合を示すことができる結合領域などの、細胞標的化成分の付加を用いて、細胞毒性ポリペプチド及びタンパク質を構築することができる。加えて、毒性であるか非毒性であるかにかかわらず本発明のＢ細胞エピトープ脱免疫化されたポリペプチドを哺乳動物への投与に有用な非常に多くの分子の成分として使用することができる。
Ａ．異種Ｔ細胞エピトープを含むプロテアソームエフェクターポリペプチドを含む細胞標的化分子
本発明は、１）細胞標的化結合領域と、２）異種Ｔ細胞エピトープを含む本発明のプロテアソーム送達エフェクターポリペプチドとを各々が含む、細胞標的化分子を含む。
細胞標的化部分
本発明の特定の分子は、細胞外標的生体分子に特異的に結合することができる結合領域を含む細胞標的化部分に連結された本発明のＴ細胞高度免疫化されたプロテアソーム送達エフェクターポリペプチドを含む。特定の実施形態において、本発明の分子は、Ｔ細胞高度免疫化されたプロテアソーム送達エフェクターポリペプチド及び細胞標的化結合領域が互いに融合されて連続ポリペプチド鎖又は細胞標的化融合タンパク質を形成するために、単一のポリペプチド又はタンパク質を含む。
本発明の細胞標的化分子の細胞標的化部分は、本発明のポリペプチドに連結されているときに特異的細胞の極めて近位にある細胞標的化分子を、それらの特異的細胞の表面での分子相互作用に基づいて各々が架橋できる、分子構造を含む。細胞標的化部分は、リガンドと、細胞表面標的と結合するポリペプチドとを含む。
細胞標的化部分の１つのタイプは、タンパク質性結合領域である。本発明の細胞標的化分子の結合領域は、細胞外標的生体分子に選択的に及び特異的に結合することができる１つ又は２つ以上のポリペプチドを含む。結合領域は、１つ又は２つ以上の様々なポリペプチド部分、例えば、合成リガンドであるか自然に存在するリガンドであるかにかかわらず、リガンド、及びそれらの誘導体；免疫グロブリン由来ドメイン；免疫グロブリンドメインの代替物として合成により工学的に操作された足場などを含むことがある。本発明の細胞標的化分子にタンパク質性結合領域を使用することにより、一本鎖細胞標的化タンパク質である細胞標的化分子の生成が可能になる。
リガンド、モノクローナル抗体、工学的に操作された抗体誘導体、抗体の工学的に操作された代替物などの、特異的細胞タイプへのポリペプチドの、それらの結合特性による標的化に有用である非常に多くの結合領域が、当技術分野において公知である。
１つの特異的な、しかし非限定的な態様によると、本発明の細胞標的化分子の結合領域は、天然に存在するリガンド、又は細胞外標的生体分子、一般に細胞表面受容体、との結合機能性を保持するリガンドの誘導体を含む。例えば、当技術分野において公知の様々なサイトカイン、成長因子及びホルモンを使用して、コグネートサイトカイン受容体、成長因子受容体又はホルモン受容体を発現する特異的細胞タイプの細胞表面に本発明の細胞標的化分子を標的化することができる。リガンドの特定の非限定的な例（別名をカッコ内に示す）は、Ｂ細胞活性化因子（ＢＡＦＦ，B-cell activating factor、ＡＰＲＩＬ）、コロニー刺激因子（ＣＳＦ，colony stimulating factor）、表皮成長因子（ＥＧＦ，epidermalgrowth factor）、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ，fibroblast growth factor）、血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ，vascular endothelial growth factor）、インスリン様増殖因子（ＩＧＦ，insulin-like growth factor）、インターフェロン、インターロイキン（例えばＩＬ－２、ＩＬ－６及びＩＬ－２３）、神経成長因子（ＮＧＦ，nerve growth factor）、血小板由来増殖因子（ＴＧＦ，plateletderived growth factor）、及び腫瘍壊死因子（ＴＮＦ，tumor necrosis factor）を含む。
特定の他の実施形態によると、結合領域は、細胞外標的生体分子に結合することができる合成リガンドを含む。１つの非限定的な例は、細胞毒性Ｔリンパ球抗原４（ＣＴＬＡ－４，cytotoxic T-lymphocyte antigen 4）に対するアンタゴニストである。
１つの特異的な、しかし非限定的な態様によると、結合領域は、免疫グロブリン型結合領域を含むことがある。本書において用いる場合の用語「免疫グロブリン型結合領域」は、抗原又はエピトープなどの１つ又は２つ以上の標的生体分子に結合することができるポリペプチド領域を指す。結合領域は、標的と結合するそれらの能力によって定義されることもある。免疫グロブリン型結合領域は、一般に、抗体又は抗体様構造に由来するが、他の源からの代替足場がこの用語の範囲内で考えられる。
免疫グロブリン（Ｉｇ）タンパク質は、Ｉｇドメインとして公知の構造ドメインを有する。Ｉｇドメインは、長さが約７０～１１０アミノ酸残基の範囲であり、典型的に７～９本の逆平行ベータ鎖が、サンドイッチ様構造を形成する２つのベータシートになるように並んでいる、特徴的なＩｇフォールドを有する、Ｉｇフォールドは、前記サンドイッチの内面で疎水性アミノ酸相互作用及び前記サンドイッチ内のシステイン残基間の高度に保存されたジスルフィド結合によって安定化される。Ｉｇドメインは、可変的なもの（ＩｇＶ又はＩセット）であることもあり、定常的なもの（ＩｇＣ又はＣセット）であることもあり、又は中間のもの（ＩｇＩ又はＩセット）であることもある。一部のＩｇドメインは、抗体の、それらのエピトープへの結合の特異性にとって重要である、相補性決定領域（ＣＤＲ，complementarity determining region）と会合していることがある。Ｉｇ様ドメインは、非免疫グロブリンタンパク質においても見つけられ、それに基づいてタンパク質のＩｇスーパーファミリーのメンバーとして分類される。HUGO遺伝子命名法委員会（ＨＧＮＣ，HUGO Gene NomenclatureCommittee）は、Ｉｇ様ドメイン含有ファミリーのメンバー
のリストを提供している。
免疫グロブリン型結合領域は、アミノ酸配列が、例えば分子工学によって又はライブラリースクリーニングによる選択によって、ネイティブ抗体のアミノ酸配列又は非免疫グロブリンタンパク質のＩｇ様ドメインのアミノ酸配列から変更された、抗体又はその抗原結合断片のポリペプチド配列である。免疫グロブリン型結合領域の産生における組換えＤＮＡ技術及びインビトロライブラリースクリーニングの妥当性のため、抗体を再設計して、より小さいサイズ、細胞侵入又は他の治療上の改善などの所望の特性を得ることができる。可能なバリエーションは多く、１つだけのアミノ酸の変化から、例えば可変領域の、完全再設計まで様々でありうる。典型的に、抗原結合特性を向上させるように、可変領域の安定性を向上させるように、又は免疫原性応答の可能性を低下させるように、可変領域に変更を加えることになる。
本発明の成分として企図される非常に多くの免疫グロブリン型結合領域がある。特定の実施形態において、免疫グロブリン型結合領域は、細胞外標的生体分子に結合することができる抗体パラトープなどの、免疫グロブリン結合領域に由来する。特定の他の実施形態において、免疫グロブリン型結合領域は、いずれの免疫グロブリンドメインにも由来しないが、細胞外標的生体分子との高親和性結合をもたらすことによって免疫グロブリン結合領域のように機能する、工学的に操作されたポリペプチドを含む。この工学的に操作されたポリペプチドは、本書に記載の免疫グロブリンからの相補性決定領域を含む、又はそのような相補鎖決定領域から本質的になる、ポリペプチド足場を含んでいてもよい。
特異的細胞タイプへのポリペプチドの、それらの高親和性結合特性による標的化に有用である、非常に多くの結合領域が、先行技術にもある。特定の実施形態において、本発明の結合領域は、シングルドメイン抗体（ｓｄＡｂ）ドメイン、ナノボディ、ラクダ化動物に由来する重鎖抗体ドメイン（ＶＨＨ断片）、二価ナノボディ、軟骨魚類に由来する重鎖抗体ドメイン、免疫グロブリン新規抗原受容体（ＩｇＮＡＲ）、ＶＮＡＲ断片、一本鎖可変（ｓｃＦｖ）断片、多量体化ｓｃＦｖ断片（ダイアボディ、トリアボディ、テトラボディ）、二重特異性タンデムｓｃＦｖ断片、ジスルフィド安定化抗体可変（Ｆｖ）断片、ＶＬ、ＶＨ、ＣＬ及びＣＨ１ドメインからなるジスルフィド安定化抗体結合（Ｆａｂ）断片、二価Ｆ（ａｂ’）２断片、重鎖及びＣＨ１ドメインからなるＦｄ断片、一本鎖Ｆｖ－ＣＨ３ミニボディ、二重特異性ミニボディ、二量体ＣＨ２ドメイン断片（ＣＨ２Ｄ）、Ｆｃ抗原結合ドメイン（Ｆｃａｂ）、単離された相補性決定領域３（ＣＤＲ３）断片、拘束フレームワーク領域３，ＣＤＲ３，フレームワーク領域４（ＦＲ３－ＣＤＲ３－ＦＲ４）ポリペプチド、小モジュラー免疫医薬（ＳＭＩＰ）ドメイン、並びにそのパラトープ及び結合機能を保持する前述のものの任意の遺伝子操作された対応物を含む群から選択される（Saerens D etal.,Curr.Opin.Pharmacol8: 600-8 (2008)、Dimitrov D,MAbs1:26-8 (2009)、Weiner L, Cell 148: 1081-4 (2012)、Ahmad Z et al., Clin Dev Immunol 2012: 980250 (2012)を参照されたい）。
特定の他の実施形態に従って、結合領域は、免疫グロブリンドメインの工学的に操作された代替足場であって、標的生体分子の高親和性及び特異的結合などの類似の機能特性を示し、より大きい安定性又は免疫原性の低減などの特性向上の工学的操作を可能にする、代替足場を含む。本発明の細胞標的タンパク質の特定の実施形態について、結合領域は、工学的に操作された、第１０フィブロネクチンIII型（１０Ｆｎ３）ドメイン（モノボデ
ィ、AdNectins（商標）、又はAdNexins（商標））、工学的に操作された、テネイシン由
来、テネイシンIII型ドメイン（Centryns（商標））、工学的に操作された、アンキリン
反復モチーフ含有ポリペプチド（DARPins（商標））、工学的に操作された、低密度リポ
タンパク質受容体由来、Ａドメイン（ＬＤＬＲ－Ａ）（Avimers（商標））、リポカリン
（アンチカリン）、工学的に操作された、プロテアーゼ阻害剤由来、Kunitzドメイン、工学的に操作された、プロテインＡ由来、Ｚドメイン（Affibodies（商標））、工学的に操作された、ガンマ－Ｂ結晶由来足場又は工学的に操作された、ユビキチン由来足場（アフィリン）、Ｓａｃ７ｄ由来ポリペプチド（Nanoffitins（登録商標）又はアフィチン）、工学的に操作された、Ｆｙｎ由来、ＳＨ２ドメイン（Fynomers（登録商標））、ミニタンパク質、Ｃ型レクチン様ドメイン足場、工学的に操作された抗体模倣体、及びその結合機能性を保持する前述のものの任意の遺伝子操作された対応物を含む群から選択される（Worn A, Pluckthun A, J MolBiol305:989-1010 (2001)、Xu L et al., Chem Biol 9:933-42(2002)、Wikman M et al.,Protein EngDesSel 17:455-62 (2004)、Binz H et al., Nat Biotechnol 23: 1257-68(2005)、Hey T et al., Trends Biotechnol23 :514-522 (2005)、Holliger P, HudsonP, Nat Biotechnol 23:1126-36(2005)、Gill D, DamleN, CurrOpin Biotech 17: 653-8(2006)、KoideA, Koide S,Methods Mol Biol 352:
95-109 (2007)、Byla P et al., J Biol Chem 285: 12096 (2010)、ZollerF et al., Molecules 16:2467-85(2011)）。
上記結合領域のいずれを本発明の成分として使用してもよいが、ただし、その結合領域成分が、細胞外標的生体分子に対して、１リットル当たり１０－５～１０－１２モル、好ましくは２００ナノモル（ｎＭ）未満の解離定数を有することを条件とする。
本発明の特定の細胞標的化分子は、細胞外標的生体分子に選択的に及び特異的に結合することができる１つ又は２つ以上のポリペプチドを含む細胞外標的生体分子特異的結合領域に連結された本発明のポリペプチドを含む。細胞外標的生体分子は、非常に多くの基準に基づいて選択することができる。
細胞標的化部分の細胞外標的生体分子
本発明の細胞標的化分子の特定の結合領域は、細胞外標的生体分子と特異的に結合することができる、好ましくは、がん細胞、腫瘍細胞、形質細胞、感染細胞、又は細胞内病原体を内部に持つ宿主細胞などの、目的の細胞タイプの表面に物理的に結合されている、ポリペプチド領域を含む。
用語「標的生体分子」は、結合領域によって結合されてタンパク質を生物体内の特定の細胞タイプ又は位置に標的化することができる生体分子、一般にはタンパク質、又はグリコシル化などの翻訳後修飾によって修飾されたタンパク質を指す。細胞外標的生体分子は、未修飾ポリペプチド、生化学的官能基の付加によって修飾されたポリペプチド、及び糖脂質を含む、様々なエピトープを含みうる（例えば、米国特許第５，０９１，１７８号明細書、欧州特許第２４３１７４３号明細書を参照されたい）。細胞外標的生体分子は、本発明の細胞標的化分子に内因的に内在化される、又は本発明の細胞標的化分子との相互作用によって容易に内在化させられることが望ましい。
本発明では、標的生体分子の修飾に関して用語「細胞外」は、その構造の少なくとも一部分が細胞外環境に曝露された生体分子を指す。細胞外標的生体分子は、細胞膜成分、膜貫通タンパク質、細胞膜に係留されている生体分子、細胞表面に結合されている生体分子及び分泌された生体分子を含む。
本発明に関して、標的生体分子を記述するために使用するときの句「物理的に結合されている」は、標的生体分子又はその一部分を細胞の外部と結合させる、共有結合性及び／又は非共有結合性両方の分子間相互作用、例えば、単一の相互作用各々のエネルギーがおおよそ約１～５キロカロリーである、標的生体分子と細胞との複数の非共有結合性相互作用（例えば、静電結合、水素結合、ファンデルワールス相互作用、疎水力など）を意味する。全ての不可欠膜タンパク質は、細胞膜と物理的に結合されている状態で見出すことができる。例えば、細胞外標的生体分子は、膜貫通領域、脂質アンカー、糖脂質アンカーを含むことがあり、及び／又は前述のもののいずれか１つを含む因子と（例えば、非特異的疎水性相互作用及び／又は脂質結合相互作用によって）非共有結合的に会合していることもある。
本発明の細胞標的化分子の結合領域は、例えば、それらの標的生体分子の細胞特異的発現、及び／又は特異的細胞タイプに対するそれらの標的生体分子の物理的局在などの、非常に多くの基準に基づいて設計又は選択されうる。例えば、本発明の特定の細胞毒性タンパク質は、１つの細胞タイプのみによって排他的に発現される細胞方面標的を細胞表面と結合させることができる結合ドメインを含む。
全ての有核脊椎動物細胞は、ＭＨＣクラスＩ系を使用して細胞内ペプチドエピトープを発現することができると考えられている。したがって、本発明の細胞標的化分子の細胞外標的生体分子は、原理上は、いかなる有核脊椎動物細胞も、ＭＨＣクラスＩ提示経路へのＴ細胞エピトープ送達の標的にすることができる。
本発明の細胞標的化分子の結合領域の細胞外標的生体分子は、がん細胞、免疫細胞、及び細胞内病原体、例えばウイルス、細菌、真菌、プリオン又は原生動物に感染した細胞上にバイオマーカーを不釣り合いなほど多く又は排他的に含みうる。
当業者は、当技術分野において公知の技法を用いて、本発明のＴ細胞高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化されたポリペプチドを様々な他の分子に連結させて、細胞に物理的に結合されている特異的細胞外標的生体分子を標的化し、標的細胞内在化を促進することができる。例えば、本発明のポリペプチドを、例えば受容体媒介エンドサイトーシスなどによって、より容易に形質膜貫入される細胞表面受容体標的化分子に連結させてもよく、又は細胞表面でのメカニズムによって細胞内在化を促進する分子、例えば、クラスリン被覆ピット構築、リン脂質層形成、及び／若しくは管状陥入を促進する分子などに連結させてもよい。標的結合後に細胞内在化を促進する細胞標的化部分の能力を、当業者に公知のアッセイを用いて判定してもよい。
ＫＤＥＬファミリーのメンバーの小胞体保留／回収シグナルモチーフ
本発明では、句「小胞体保留／回収シグナルモチーフ」、ＫＤＥＬ型シグナルモチーフ、又はシグナルモチーフは、真核生物細胞内でＫＤＥＬ受容体による小胞体へのタンパク質の細胞内局在を促進するように機能することができるＫＤＥＬファミリーの任意のメンバーを指す。
カルボキシ末端リジン－アスパラギン－グルタメート－ロイシン（ＫＤＥＬ）配列は、真核生物細胞内の可溶性タンパク質のカノニカル小胞体保留及び回収シグナルモチーフであり、ＫＤＥＬ受容体によって認識される（Capitani M, Sallese M, FEBS Lett 583: 3863-71 (2009)を参照されたい）。シグナルモチーフのＫＤＥＬファミリーは、多くのＫＤＥＬ様モチーフ、例えば、ＨＤＥＬ、ＲＤＥＬ、ＷＤＥＬ、ＹＤＥＬ、ＨＥＥＬ、ＫＥＥＬ、ＲＥＥＬ、ＫＦＥＬ、ＫＩＥＬ、ＤＫＥＬ、ＫＫＥＬ、ＨＮＥＬ、ＨＴＥＬ、ＫＴＥＬ及びＨＶＥＬを含み、これらの全てが、系統発生学上の複数の界にわたって小胞体の内腔の常在物であることが公知であるタンパク質のカルボキシ末端において見出される（Munro S, Pelham H, Cell 48: 899-907 (1987)、Raykhel I et al.,J Cell Biol 179: 1193-204 (2007)）。ＫＤＥＬシグナルモチーフファミリーは、合成構築物を使用して証明された少なくとも４６のポリペプチドバリアントを含む（Raykhel, J CellBiol 179: 1193-204 (2007)）。さらなるＫＤＥＬシグナルモチーフは、ＡＬＥＤＥＬ、ＨＡＥＤＥＬ、ＨＬＥＤＥＬ、ＫＬＥＤＥＬ、ＩＲＳＤＥＬ、ＥＲＳＴＥＬ、及びＲＰＳＴＥＬを含む（Alanen H et al., J Mol Biol409:291-7(2011)）。ＫＤＥＬシグナルモチーフを表す
一般化コンセンサスモチーフは、［ＫＲＨＱＳＡ］－［ＤＥＮＱ］－Ｅ－Ｌと記載されている（Hulo N et al., Nucleic AcidsRes34:D227-30 (2006)）。
ＫＤＥＬファミリーシグナルモチーフを含有するタンパク質は、Golgi複合体全体にわ
たって分布しているＫＤＥＬ受容体によって結合され、小胞体の内腔への放出のために微小管依存性メカニズムによって小胞体に輸送される（Griffiths G et al., J Cell Biol 127: 1557-74 (1994)、Miesenbock G,Rothman J, J Cell Biol 129: 309-19 (1995)）。
ＫＤＥＬ受容体は、Golgi複合体と小胞体間で動的に循環する（JacksonM et al.,EMBO J. 9: 3153-62 (1990)、Schutze M et al.,EMBO J. 13: 1696-1705 (1994)）。
本発明では、ＫＤＥＬファミリーのメンバーは、真核生物細胞内でＫＤＥＬ受容体による小胞体へのタンパク質の細胞内局在を促進するように機能することができる合成シグナルモチーフを含む。言い換えると、ＫＤＥＬファミリーの一部のメンバーは、自然界に存在しないことがあり、しかし自然界で観察される必要もなく、当技術分野において公知の方法を用いて構築され、実験により検証されており、又は構築され、実験により検証されうる。例えば、Raykhel I et al.,J Cell Biol 179: 1193-204（2007）を参照されたい。
本発明のポリペプチド及び細胞標的化分子の特定の実施形態の成分として、ＫＤＥＬ型シグナルモチーフは、ポリペプチド又は細胞標的化タンパク質中でカルボキシ末端上に存在するように物理的に位置し、配向され、又は配置される。
本発明では、Ｔ細胞高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化されたポリペプチド並びに細胞標的化結合領域について、互いとの関連でも、全体の、細胞標的化、融合タンパク質のＮ末端及びＣ末端との関連でも、特定の順序も配向も決められていない（例えば図１を参照されたい）。
本発明の細胞標的化分子の一般構造は、様々な多様な細胞標的化結合領域を様々なＣＤ８＋Ｔ細胞高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化されたポリペプチドとともに使用して、様々な細胞外標的生体分子の多様な標的化をもたらし、かくして細胞毒性、細胞分裂停止、及び／又は様々な多様な細胞タイプへの外因性物質送達の標的化をもたらす点で、モジュラーである。不適切な細胞内経路指定のため、Ｔ細胞エピトープ提示をもたらさず、及び／又は細胞毒性でない、ＣＤ８＋Ｔ細胞高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化されたポリペプチドは、細胞に外因性物質を送達するための細胞標的化分子の成分、例えば、Ｔ細胞エピトープ又は抗原などとして依然として有
用でありうる。
III．本発明のポリペプチド成分及び／又はそれらの小成分を結合する連結
本発明の個々の細胞標的化部分、ポリペプチド、及び／又はタンパク質成分、例えば、細胞標的化結合領域並びにＣＤ８＋Ｔ細胞高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化されたポリペプチドを、当技術分野において周知の及び／又は本書に記載する１つ又は２つ以上のリンカーによって安定的に互いに連結させることができる。結合領域の個々のポリペプチド小成分、例えば、重鎖可変領域（ＶＨ）、軽鎖可変領域（ＶＬ）、ＣＤＲ、及び／又はＡＢＲ領域を、当技術分野において周知の及び／又は本書に記載する１つ又は２つ以上のリンカーによって安定的に互いに連結させることができる（例えば、Weisser N, Hall J, Biotechnol Adv27:502-20(2009)、Chen X et al., Adv Drug
Deliv Rev 65: 1357-69 (2013)）。本発明のタンパク質成分、例えば、多鎖結合領域は
、当技術分野において周知の１つ又は２つ以上のリンカーによって互いに又は本発明の他のポリペプチド成分と安定的に連結させることができる。本発明のペプチド成分、例えば、ＫＤＥＬファミリー小胞体保留／回収シグナルモチーフは、当技術分野において周知の１つ又は２つ以上のリンカー、例えばタンパク質性リンカー、によって本発明の別の成分に安定的に連結させることができる。
好適なリンカーは、一般に、いずれのリンカーも他の成分も用いずに個々に生産されたポリペプチド成分と非常に類似した三次元構造での、本発明の各ポリペプチド成分のフォールディングを可能にするものである。好適なリンカーは、単一のアミノ酸、ペプチド、ポリペプチド、及び上述のもののいずれかを欠くリンカー、例えば、分岐状であるか環状であるかにかかわらず様々な非タンパク質性炭素鎖を含む（例えば、Chen X et al., AdvDrug DelivRev65: 1357-69 (2013)）。
好適なリンカーは、タンパク質性であることがあり、１つ又は２つ以上のアミノ酸、ペプチド及び／又はポリペプチドを含むことがある。タンパク質性リンカーは、組換え融合タンパク質及び化学的に連結されたコンジュゲートの両方に好適である。タンパク質性リンカーは、例えば約５～約３０、又は約６～約２５アミノ酸残基などの、約２～約５０アミノ酸残基を概して有する。選択されるリンカーの長さは、例えば、所望の特性、又はリンカーを選択している特性などの、様々な因子に依存することとなる（例えば、Chen X et al., Adv Drug Deliv Rev65:1357-69 (2013)を参照されたい）。
好適なリンカーは、例えば化学的リンカーなどの、非タンパク質性のものであることもある（例えば、Dosio F et al., Toxins 3:848-83(2011)、Feld J et al., Oncotarget
4: 397-412 (2013)を参照されたい）。免疫グロブリン由来ポリペプチドを異種ポリペプ
チドに結合させるために一般に使用されるリンカーなどの、当技術分野において公知の様々な非タンパク質性リンカーを使用して、細胞標的化部分を、ＣＤ８＋Ｔ細胞高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化されたポリペプチド成分に連結させることができる。例えば、ポリペプチドリンカーは、それらのアミノ酸残基及び炭水化物部分の官能性側鎖、例えば、カルボキシ、アミノ、アミン、スルフヒドリル、カルボン酸、カルボニル、ヒドロキシル及び／又は環式環基などを用いて連結させることができる。例えば、ジスルフィド結合及びチオエーテル結合を用いて、２つ又は３つ以上のポリペプチドを連結させてもよい（例えば、Fitzgerald D et al., Bioconjugate Chem 1: 264-8 (1990)、Pasqualucci L etal., Haematologica 80:546-56(1995)を参照されたい）。加えて、非天然アミノ酸残基を他の官能性側鎖、例えばケトン基と併用してもよい（例えば、Sun S et al., Chembiochem Jul18(2014)、Tian F etal., ProcNatl Acad Sci USA 111: 1766-71 (2014)を参照されたい）。非タンパク質性化学的リンカーの例は、Ｎ－スクシンイミジル（４－ヨードアセチル）－アミノベンゾエート、Ｓ－（Ｎ－スクシンイミジル)チオアセテート（ＳＡＴＡ，S-(N-succinimidyl)thioacetate）、Ｎ-スクシンイミジル－オキシカルボニル－ｃｕ－メチル－ａ－（２－ピリジルジチオ）トルエン（ＳＭＰＴ，N-succinimidyl-oxycarbonyl-cu-methyl-a-(2-pyridyldithio)toluene）、Ｎ-スクシンイミジル４－（２－ピリジルジチオ）－ペンタノアート（ＳＰＰ，N-succinimidyl4-(2-pyridyldithio)-pentanoate）、スクシンイミジル４－（Ｎ－マレイミドメチル）シクロヘキサンカルボキシレート（ＳＭＣＣ又はＭＣＣ，succinimidyl 4-(N-maleimidomethyl) cyclohexanecarboxylate）、スルホスクシンイミジル（４－ヨードアセチル）－アミノベンゾエート、４－スクシンイミジル－オキシカルボニル－α－（２－ピリジルジチオ）トルエン、スルホスクシンイミジル－６－（α－メチル－α－（ピリジルジチオール）－トルアミド）ヘキサノエート、Ｎ－スクシンイミジル－３－（－２－ピリジルジチオ）－プロピオネート（ＳＰＤＰ，N-succinimidyl-3-(-2-pyridyldithio)-proprionate）、スクシンイミジル６（３（－（－２－ピリジルジチオ）－プロピオンアミド）ヘキサノエート、スルホスクシンイミジル ６（３（－（－２－ピリジルジチオ）－プロピオンアミド）ヘキサノエート、マレイミドカプロイル（ＭＣ，maleimidocaproyl）、マレイミドカプロイル－バリン－シトルリン－Ｐ－アミノベンジルオキシカルボニル（ＭＣ－ｖｃ－ＰＡＢ，maleimidocaproyl-valine-citrulline-p-aminobenzyloxycarbonyl）、３－マレイミド安息香酸Ｎ－ヒドロキシスクシンイミドエステル（ＭＢＣ，3-maleimidobenzoic acidN-hydroxysuccinimide ester）、アルファ－アルキル誘導体、スルホＮＨＳ－ＡＴＭＢＡ（スルホスクシンイミジルＮ－［３－（アセチルチオ）－３－メチルブチリル－ベータ－アラニン］）、スルホジクロロフェノール、２－イミノチオラン、３－（２－ピリジルジチオ）－プロピオニルヒドラジド、エルマン試薬、ジクロロトリアジン酸、及びＳ－（２－チオピリジル）－Ｌ－システインを含むが、これらに限定されない（例えば、Thorpe P et al., Eur J Biochem147:197-206(1985)、Thorpe P et al., Cancer Res 47:5924-31(1987)、Thorpe P et al., Cancer Res 48: 6396-403(1988)、Grossbard M etal., Blood 79: 576-85 (1992)、LuiC et al., Proc Natl Acad Sci USA 93:8618-23 (1996)、Doronina S et al.,NatBiotechnol 21: 778-84 (2003)、FeldJet al., Oncotarget 4: 397-412 (2013)を参照されたい）。
タンパク質性であるか非タンパク性であるかにかかわらず、好適なリンカーは、例えば、プロテアーゼ感受性、環境酸化還元電位感受性、ｐＨ感受性、酸切断性、光切断性及び／又は熱感受性リンカーを含みうる（例えば、Dosio F et al.,Toxins 3: 848-83 (2011)、Chen Xet al., Adv Drug Deliv Rev 65: 1357-69 (2013)、Feld Jet al., Oncotarget 4: 397-412 (2013)を参照されたい）。
タンパク質性リンカーを本発明の組換え融合細胞標的化分子への組み込みに選択してもよい。本発明の組換え融合細胞標的化タンパク質のためのリンカーは、約２～５０アミノ酸残基、好ましくは約５～３０アミノ酸残基を概して含む（Argos P, J Mol Biol 211: 943-58 (1990)、WilliamsonM, BiochemJ297: 240-60 (1994)、George R, HeringaJ,Protein Eng 15: 871-9 (2002)、Kreitman R, AAPSJ8: E532-51 (2006)）。一般に、タンパク質性リンカーは、例えばトレオニン、プロリン、グルタミン、グリシン及びアラニンなどの、極性、非荷電及び／又は荷電残基を有するアミノ酸残基の大部分を含む（例えば、Huston J et al.Proc Natl Acad Sci U.S.A.85: 5879-83 (1988)、Pastan I et al.,Annu Rev Med 58: 221-37 (2007)、LiJet al., Cell Immunol 118: 85-99 (1989)、CumberA et al.BioconjChem3: 397-401 (1992)、Friedman P et al., Cancer Res53:334-9 (1993)、Whitlow M et al., Protein Engineering6:989-95 (1993)、Siegall C et al.,J Immunol 152: 2377-84 (1994)、Newton et al.Biochemistry 35: 545-53(1996)、Ladurner et al.J Mol Biol 273: 330-7 (1997)、Kreitman R et al.,LeukLymphoma 52: 82-6 (2011)、米国特許第４，８９４，４４３号明細書を参照されたい）。タンパク質性リンカーの非限定的な例は、アラニン－セリン－グリシン－グリシン－プロリン－グルタメート（ＡＳＧＧＰＥ）、バリン－メチオニン（ＶＭ）、アラニン－メチオニン（ＡＭ）、ＡＭ（Ｇ２－４Ｓ）ｘＡＭ（この場合、Ｇはグリシンであり、Ｓはセリンであり、ｘは１～１０の整数である）を含む。
タンパク質性リンカーを所望の特性に基づいて選択することができる。当業者は、特異的特徴を念頭に置いて、例えば、融合分子のフォールディング、安定性、発現、可溶性、薬物動態特性、薬力学的特性、及び／又は融合構築物に関連して同じドメイン単独での活性と比較した融合ドメインの活性のうちの１つ又は２つ以上を最適化するように、タンパク質性を選択することができる。例えば、タンパク質性リンカーは、可動性、剛性及び／又は切断性に基づいて選択されることもある（例えば、Chen X et al., Adv Drug Deliv Rev65:1357-69 (2013)を参照されたい）。当業者は、リンカーを選択する際にデータベ
ース及びリンカー設計ソフトウェアツールを利用することができる。特定のリンカーが、発現を最適化するために選択されることもある（例えば、Turner D et al., J Immunl Methods205:43-54(1997)を参照されたい）。ホモ多量体を形成するために同一のポリペ
プチド若しくはタンパク質間の又はヘテロ多量体を形成するために異なるポリペプチド若しくはタンパク質間の分子間相互作用を促進するために、特定のリンカーが選択されることもある。例えば、本発明の細胞標的化タンパク質のポリペプチド成分間の所望の非共有結合性相互作用、例えば、二量体及び他のより高次の多量体の形成に関連した相互作用などを可能にする、タンパク質性リンカーを選択されることもある（例えば、米国特許第４，９４６，７７８号明細書を参照されたい）。
可動性タンパク質性リンカーは、多くの場合、１２アミノ酸残基長より長く、小さい非極性アミノ酸残基、極性アミノ酸残基及び／又は親水性アミノ酸残基、例えばグリシン、セリン及びトレオニンなどに富んでいる（例えば、Bird R et al., Science 242: 423-6 (1988)、FriedmanP et al., Cancer Res 53:334-9(1993)、Siegall C et al., J Immunol 152:2377-84 (1994)を参照されたい）。可動性タンパク質性リンカーは、成分間の
空間的離隔を増すように選択されることもあり、及び／又は成分間の分子間相互作用を可能にするように選択されることもある。例えば、様々な「ＧＳ」リンカーが当業者に公知であり、複数のグリシン及び／又は１つ若しくは２つ以上のセリンで構成され、例えば（ＧｘＳ）ｎ、（ＳｘＧ）ｎ、（ＧＧＧＧＳ）ｎ及び（Ｇ）ｎ（この場合、ｘは１～６であり、ｎは１～３０である）などの反復単位で構成されることもある（例えば、国際公開第９６／０６６４１号パンフレットを参照されたい）。可動性タンパク質性リンカーの非限定的な例は、ＧＫＳＳＧＳＧＳＥＳＫＳ、ＧＳＴＳＧＳＧＫＳＳＥＧＫＧ、ＧＳＴＳＧＳＧＫＳＳＥＧＳＧＳＴＫＧ、ＧＳＴＳＧＳＧＫＳＳＥＧＫＧ、ＧＳＴＳＧＳＧＫＰＧＳＧＥＧＳＴＫＧ、ＥＧＫＳＳＧＳＧＳＥＳＫＥＦ、ＳＲＳＳＧ、及びＳＧＳＳＣを含む。
剛性タンパク質性リンカーは、多くの場合、堅いアルファヘリックス構造であり、プロリン残基及び／又は１つ若しくは２つ以上の戦略的に配置されたプロリンに富んでいる（例えば、Chen X et al., Adv Drug Deliv Rev65:1357-69 (2013)を参照されたい）。剛
性リンカーは、連結された成分間の分子間相互作用を防止するために選択されることがある。
好適なリンカーは、成分のインビボ分離、例えば、切断及び／又は環境特異的不安定性に起因する成分のインビボ分離などを可能にするように、選択されうる（例えば、Dosio F et al.,Toxins 3: 848-83 (2011)、Chen Xet al., Adv Drug Deliv Rev 65: 1357-69
(2013)を参照されたい）。インビボ切断性タンパク質性リンカーは、タンパク質プロセ
ッシングによって結合解除することができる、及び／又は環境を、多くの場合、生物体内の若しくは特定の細胞タイプの内部の特異的部位の環境を、削減することができる（例えば、Doronina S et al.,Bioconjug Chem 17:144-24 (2006)、EricksonH et al., Cancer
Res 66: 4426-33 (2006)を参照されたい）。インビボ切断性タンパク質性リンカーは
、１つ又は２つ以上のシステイン対によって形成されるプロテアーゼ感受性モチーフ及び／又はジスルフィド結合を含むことが多い（例えば、Pietersz G et al.,Cancer Res 48:
4469-76 (1998)、The J et al., J ImmunolMethods110: 101-9(1998)を参照された
い；Chen X et al., Adv Drug DelivRev65: 1357-69 (2013)を参照されたい）。インビ
ボ切断性タンパク質性リンカーは、生物体内の特定の位置、細胞内の区画、のみに存在する及び／又は特定の生理若しくは病的条件下でのみ活性になるプロテアーゼ（例えば、異常に高レベルのプロテアーゼ、特定の疾患部位で過剰発現されるプロテアーゼ、及び病原性微生物によって特異的に発現されるプロテアーゼなど）に対して感受性であるように設計することができる。例えば、細胞内のみに存在するプロテアーゼ、特異的細胞タイプ内にのみ存在するプロテアーゼ、及びがん若しくは炎症のような病的条件下でのみ存在するプロテアーゼ、例えば、Ｒ－ｘ－ｘ－Ｒモチーフ及びＡＭＧＲＳＧＧＧＣＡＧＮＲＶＧＳＳＬＳＣＧＧＬＮＬＱＡＭなどによって切断されるタンパク質性リンカーは、当技術分野において公知である。
本発明の細胞標的化分子の特定の実施形態では、標的細胞内に存在するプロテアーゼによる切断をもたらすために１つ又は２つ以上のプロテアーゼ感受性部位を含むリンカーを使用することがある。本発明の細胞標的化分子の特定の実施形態では、脊椎動物生物への投与後の望ましくない毒性を低減させるために切断性でないリンカーを使用することもある。
好適なリンカーは、タンパク質性であるか非タンパク性であるかにかかわらず、例えば、プロテアーゼ感受性、環境酸化還元電位感受性、ｐＨ感受性、酸切断性、光切断性及び／又は熱感受性リンカーを含みうる（例えば、Chen X et al., Adv Drug Deliv Rev65:1357-69 (2013)を参照されたい）。
好適な切断性リンカーは、例えば、Zarling D et al., J Immunol 124: 913-20 (1980)、JungS, MoroiM,Biochem Biophys Acta761:152-62 (1983)、Bouizar Z et al., Eur J Biochem 155: 141-7 (1986)、ParkL etal., J Biol Chem 261: 205-10 (1986)、Browning J, Ribolini A, J Immunol143:1859-67 (1989)、Joshi S, Burrows R, J Biol Chem265:14518-25 (1990)などの、当技術分野において公知である切断性基を含むリン
カーを含みうる。
好適なリンカーは、ｐＨ感受性リンカーを含みうる。例えば、特定の好適なリンカーは、標的細胞の細胞内区画内部での解離をもたらすためにより低いｐＨ環境でのそれらの不安定性について選択されることがある。例えば、１つ又は２つ以上のトリチル基、誘導体化トリチル基、ビスマレイミドエトキシプロパン基、アジピン酸ジヒドラジド基及び／又は酸不安定性基を含むリンカーは、特異的ｐＨ範囲を有する環境で本発明の細胞標的化分子の成分、例えばポリペプチド成分、の放出をもたらすことができる（例えば、WelhonerH et al.,J Biol Chem 266: 4309-14 (1991)、 FattomA et al., Infect Immun 60:584-9 (1992)を参照されたい）。例えば腫瘍組織のｐＨが健常組織の場合より低いなどの、組織間の生理的ｐＨ差に対応するｐＨ範囲で切断する特定のリンカーを選択してもよい（例えば、米国特許第５，６１２，４７４号明細書を参照されたい）。
光切断性リンカーは、可視領域の光などの、特定の波長領域の電磁放射線への曝露に基づいて切断されるリンカーである。（例えば、Goldmacher V etal., Bioconj Chem 3: 104-7(1992)を参照されたい）。光切断性リンカーを使用して、本発明の細胞標的化分子
の成分、例えばポリペプチド成分、を特定の波長の光への曝露に基づいて放出させることができる。光切断性リンカーの非限定的な例は、システインの光切断性保護基のようなニトロベンジル基、ニトロベンジルオキシカルボニルクロリド架橋剤、ヒドロキシプロピルメタクリルアミド共重合体、グリシン共重合体、フルオレセイン共重合体及びメチルローダミン共重合体を含む（Hazum E et al., Pept Proc Eur PeptSymp, 16th, BrunfeldtK,ed.,105-110 (1981)、Senter et al., Photochem Photobiol42:231-7(1985)、Yen et al., MakromolChem 190: 69-82 (1989)、Goldmacher V etal., Bioconj Chem 3: 104-7 (1992)）。光切断性リンカーは、ファイバーオプティクスを使用して光に曝露することができる疾患、障害及び状態を治療するために設計された本発明の細胞標的化分子を形成するための連結成分に、特に使用されうる。
本発明の細胞標的化分子の特定の実施形態において、細胞標的化結合領域は、共有結合性連結及び非共有結合性連結の両方を含む当業者に公知の手段を任意の数用いて、ＣＤ８＋Ｔ細胞高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化されたポリペプチドに連結される（例えば、Chen X et al., Adv Drug Deliv Rev65:1357-69 (2013)、Behrens C, Liu B, MAbs6: 46-53 (2014)を参照されたい）。
本発明の細胞標的化タンパク質の特定の実施形態において、タンパク質は、重鎖可変（ＶＨ）ドメインと軽鎖可変（ＶＬ）ドメインを接続するリンカーを有するｓｃＦｖである結合領域を含む。例えば１５残基（Ｇｌｙ４Ｓｅｒ）３ペプチドなどの、この目的に好適な非常に多くのリンカーが当技術分野において公知である。非共有結合性多価構造の形成に使用することができる好適なｓｃＦｖリンカーは、ＧＧＳ、ＧＧＧＳ、ＧＧＧＧＳ、ＧＧＧＧＳＧＧＧ、ＧＧＳＧＧＧＧ、ＧＳＴＳＧＧＧＳＧＧＧＳＧＧＧＧＳＳ及びＧＳＴＳＧＳＧＫＰＧＳＳＥＧＳＴＫＧを含む（Pluckthun A, PackP, Immunotechnology 3:83-105(1997)、Atwell J et al., Protein Eng12:597-604(1999)、Wu A et al., Protein Eng14: 1025-33(2001)、Yazaki P et al., J Immunol Methods253: 195-208(2001)、Carmichael J et al., J Mol Biol326: 341-51(2003)、Arndt M et al., FEBS Lett 578:257-61(2004)、Bie C et al.,World J Hepatol 2: 185-91(2010)）。
本発明の細胞標的化分子の成分の連結に好適な方法は、そのような連結を果たすために当技術分野において現在公知のいずれの方法によるものであってもよいが、ただし、本書に記載するアッセイを含む適切なアッセイによって測定して、その結合が、細胞標的化部分の結合能力、ＣＤ８＋Ｔ細胞高度免疫化された及び／若しくはＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化されたポリペプチド成分の細胞内在化、並びに／又は適切な場合には所望の毒素エフェクター機能を妨げないことを条件とする。
本発明の細胞標的化分子では、細胞標的化結合領域並びにＣＤ８＋Ｔ細胞高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化されたポリペプチド領域について、互いとの関連でも、細胞標的化分子全体との関連でも、特定の順序も配向も決められていない（例えば図１を参照されたい）。本発明のポリペプチド及び細胞標的化分子の成分をいずれの順序で配置してもよいが、ただし、細胞標的化部分並びにＴ細胞高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化されたエフェクターポリペプチド領域の所望の活性を除去しないことを条件とする。本発明の細胞標的化分子の特定の実施形態において、細胞標的化部分、ＣＤ８＋Ｔ細胞高度免疫化された及び／若しくはＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化されたポリペプチド、並びに／或いは小胞体保留／回収シグナルモチーフを互いに直接連結されることもあり、並びに／又は１つ若しくは２つ以上の介在ポリペプチド配列によって、例えば、当技術分野において周知の及び／若しくは本書に記載する１つ若しくは２つ以上のリンカーで、安定的に互いに連結されることもある。
IV．Ｔ細胞エピトープを送達するＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化されたポリペプチド及びそれを含む細胞標的化融合タンパク質の特異的構造のバリエーションの例
標的細胞によってＭＨＣクラスＩ提示のためのＴ細胞エピトープを送達する能力を有するＴ細胞の高度免疫化されたポリペプチドは、原則的に、エフェクターポリペプチドを送達するいずれかのプロテアソームにＴ細胞エピトープを付加することによって作製することができる。本発明のＴ細胞の高度免疫化されたポリペプチドのＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたサブバリアントは、エフェクターポリペプチドを送達するプロテアソー
ム内のいずれかのＢ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域における１又は２以上のアミノ酸残基を、重複する異種Ｔ細胞エピトープで置き換えることによって作製することができる。標的細胞によってＭＨＣクラスＩ提示のためのＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを送達する能力を有する細胞標的化分子は、原則的に、結果得られた分子が、少なくとも本発明のポリペプチド、細胞標的化部分、又はそれらが一緒になった構造的な組合せによってもたらされる細胞の内在化能力を有する限りは、いずれかの本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチドを細胞標的化部分に連結することによって作製することができる。
標的細胞によってＭＨＣクラスＩ提示のためのＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを送達する能力を有するＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化されたポリペプチドは、毒素によって誘導されたエフェクターポリペプチドを送達するプロテアソームを使用することによって作製することができる。同様に、本発明のＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化された、ＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化されたポリペプチドは、毒素によって誘導されたプロテアソームを送達するエフェクターポリペプチド中のいずれかのＢ細胞エピトープ領域中の１又は２以上のアミノ酸残基を、重複する異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープで置き換えることによって作製することができる。
本発明の特定のＴ細胞の高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチドは、哺乳動物への投与後にポリペプチドが抗原性及び／又は免疫原性を示す可能性を低下させるために、異種Ｔ細胞エピトープの付加による少なくとも１つの推定上のＢ細胞エピトープ領域の破壊を含む。用語「破壊された」又は「破壊」又は「破壊すること」は、本明細書でＢ細胞エピトープ領域に関して使用される場合、Ｂ細胞エピトープ領域における少なくとも１つのアミノ酸の欠失、逆転したアミノ酸の少なくとも１つがＢ細胞エピトープ領域にある場合は２又は３以上のアミノ酸の逆位、Ｂ細胞エピトープ領域における少なくとも１つのアミノ酸の挿入、又はＢ細胞エピトープ領域における少なくとも１つのアミノ酸の変異を指す。変異によるＢ細胞エピトープ領域の破壊は、非標準アミノ酸及び／又は非天然アミノ酸でのアミノ酸置換を包含する。破壊の影響を受けた領域におけるアミノ酸残基の数は、好ましくは、２又は３以上、３又は４以上、４又は５以上、５又は６以上、６又は７以上、７又は８以上等、８、９、１０、１１、１２まで、又はそれより多くのアミノ酸残基である。
特定のＢ細胞エピトープ領域及び破壊は、本明細書において、配列リストに示されるネイティブの志賀毒素のＡサブユニット又は原始型のジフテリア毒素のＡサブユニットの特定のアミノ酸位置を参照して表されるが、ここで、天然に存在する毒素のＡサブユニットは、そのアミノ末端に約２２アミノ酸のシグナル配列を含有する前駆体型を含む可能性があり、このシグナル配列が除去されると、成熟毒素のＡサブユニットが産生されて、熟練した作業者にとって認識可能になることに留意されたい。
本発明の特定のＴ細胞の高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチドは、哺乳動物への投与後にポリペプチドがＣＤ４＋Ｔ細胞の抗原性及び／又は免疫原性を示す可能性を低下させるために、異種Ｔ細胞エピトープの付加による少なくとも１つの推定上のＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域の破壊を含む。用語「破壊された」又は「破壊」又は「破壊すること」は、本明細書でＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域に関して使用される場合、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域における少なくとも１つのアミノ酸の欠失、逆転したアミノ酸の少なくとも１つがＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープにある場合は２又は３以上のアミノ酸の逆位、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域における少なくとも１つのアミノ酸の挿入、又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域における少なくとも１つのアミノ酸の変異を指す。変異によるＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域の破壊は、非標準アミノ酸及び／又は非天然アミノ酸でのアミノ酸置換を包含する。破壊の影響を受けた領域におけるアミ
ノ酸残基の数は、好ましくは、２又は３以上、３又は４以上、４又は５以上、５又は６以上、６又は７以上、７又は８以上等、８、９、１０、１１、１２まで、又はそれより多くのアミノ酸残基である。
特定のＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域及び破壊は、本明細書において、配列リストに示されるネイティブの志賀毒素のＡサブユニット又は原始型のジフテリア毒素のＡサブユニットの特定のアミノ酸位置を参照して表されるが、ここで、天然に存在する毒素のＡサブユニットは、そのアミノ末端に約２２アミノ酸のシグナル配列を含有する前駆体型を含む可能性があり、このシグナル配列が除去されると、成熟毒素のＡサブユニットが産生されて、熟練した作業者にとって認識可能になることに留意されたい。
１．志賀毒素によって誘導されたＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ提示及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド
タンパク質毒素の志賀毒素ファミリーは、構造的及び機能的に関連する様々な天然に存在する毒素、例えば、志賀毒素、志賀毒素様毒素１、及び志賀毒素様毒素２で構成される（Johannes L, Romer W, Nat Rev Microbiol 8:105-16 (2010)）。志賀毒素ファミリー
のメンバーは、同じ全体構造及び作用機序を共有する（Engedal, N et al., Microbial Biotech 4: 32-46 (2011)）。例えば、Ｓｔｘ、ＳＬＴ－１及びＳＬＴ－２は、無細胞系において区別できない酵素活性を示す（Head S et al., J Biol Chem 266: 3617-21 (1991)、Tesh V et al.,Infect Immun 61:3392-402(1993)、Brigotti M et al.,Toxicon 35:1431-1437 (1997)）。
志賀毒素ファミリーは、志賀赤痢菌（S. dysenteriae）血清型１から単離した真の志賀毒素（Ｓｔｘ）、腸管出血性大腸菌（enterohemorrhagic E. coli）の血清型から単離し
た志賀毒素様毒素１バリアント（ＳＬＴ１又はＳｔｘ１又はＳＬＴ－１又はＳｌｔ－Ｉ）、及び腸管出血性大腸菌の血清型から単離した志賀毒素様毒素２バリアント（ＳＬＴ２又はＳｔｘ２又はＳＬＴ－２）を包含する。ＳＬＴ１は、１つのみの残基でＳｔｘと異なっており、どちらもベロ細胞毒素又はベロ毒素（ＶＴ）と称されてきた（O’Brien, Curr TopMicrobiol Immunol 180: 65-94 (1992)）。ＳＬＴ１及びＳＬＴ２バリアントは、アミノ酸配列レベルで約５３～６０％しか互いに類似していないが、これらは、志賀毒素ファミリーのメンバーに共通の酵素活性及び細胞毒性のメカニズムを有する（Johannes, Nat Rev Microbiol 8: 105-16(2010)）。３９種を超える様々な志賀毒素、例えば定義されたサブタイプであるＳｔｘ１ａ、Ｓｔｘ１ｃ、Ｓｔｘ１ｄ、及びＳｔｘ２ａ－ｇが説明されている（Scheutz F et al.,J Clin Microbiol 50: 2951-63(2012)）。志賀毒素をコードする遺伝子は、遺伝子水平伝播を介して細菌種間で広がっている可能性があるため、志賀毒素ファミリーのメンバーは本来、いかなる細菌種にも限定されない（Strauch E et al., Infect Immun69:7588-95(2001)、Zhaxybayeva O, Doolittle W, Curr Biol 21:R242-6(2011)）。種間伝播の一例として、志賀毒素は、患者から単離したＡ．ヘモリチカス（A. haemolyticus）の株で発見された（Grotiuz G et al.,J Clin Microbiol44:3838-41 (2006)）。志賀毒素をコードするポリヌクレオチドが新しい亜種又は種に侵入すると、志賀毒素のアミノ酸配列は、志賀毒素ファミリーのメンバーに共通の細胞毒性メカニズムをなお維持しながら遺伝的浮動及び／又は選択圧力によりわずかな配列バリエーションを発生させることが可能になると推測される（Scheutz, J ClinMicrobiol 50: 2951-63 (2012)を参照）。
本発明の目的に関して、成句「志賀毒素エフェクター領域」は、少なくとも１つの志賀毒素の機能を示すことが可能な、志賀毒素ファミリーのメンバーの志賀毒素のＡサブユニットに由来するポリペプチド領域を指す。志賀毒素の機能としては、例えば、細胞への侵入、脂質膜の変形、細胞内経路を方向付けること、リボソームを触媒的に不活性化すること、細胞毒性を達成すること、及び細胞増殖抑制作用を達成することが挙げられる。
本発明の目的に関して、志賀毒素のエフェクター機能は、志賀毒素のＡサブユニットに由来するポリペプチド領域によって付与された生物活性である。志賀毒素のエフェクター機能の非限定的な例としては、細胞の内在化、細胞内の経路決定、触媒活性、及び細胞毒性が挙げられる。志賀毒素の触媒活性の非限定的な例としては、リボソーム不活性化、タンパク質合成阻害、Ｎ－グリコシダーゼ活性、ポリヌクレオチド：アデノシングリコシダーゼ活性、ＲＮＡアーゼ活性、及びＤＮＡアーゼ活性が挙げられる。ＲＩＰは、核酸、ポリヌクレオシド、ポリヌクレオチド、ｒＲＮＡ、ｓｓＤＮＡ、ｄｓＤＮＡ、ｍＲＮＡ（及びポリＡ）、及びウイルス核酸を脱プリン化することができる（Barbieri L et al., Biochem J 286:1-4(1992)、Barbieri L et al., Nature 372: 624 (1994)、LingJ et al.,FEBS Lett 345: 143-6 (1994)、BarbieriL et al., Biochem J 319: 507-13 (1996)、Roncuzzi L, Gasperi-Campani A, FEBS Lett 392: 16-20 (1996)、Stirpe F et al.,FEBS Lett 382: 309-12 (1996)、BarbieriL et al., NucleicAcidsRes 25: 518-22 (1997)、Wang P, TumerN,Nucleic Acids Res 27:1900-5 (1999)、Barbieri L et al.,BiochimBiophys Acta 1480:258-66 (2000)、Barbieri L et al., J Biochem128: 883-9 (2000)、Bagga S et al., JBiol Chem 278: 4813-20 (2003)、PicardD et al., J Biol Chem 280:20069-75 (2005)）。いくつかのＲＩＰは、抗ウイルス活性及びスーパーオキシドジスムターゼ活性を示す（Erice A et al., Antimicrob Agents Chemother 37:835-8 (1993)、Au T etal., FEBS Lett 471: 169-72 (2000)、ParikhB, Tumer N, Mini Rev Med Chem 4:523-43 (2004)、Sharma N et al., Plant Physiol 134:171-81(2004)）。志賀毒素の触媒活性は、インビトロとインビボの両方で観察されている。志賀毒素のエフェクター活性に関するアッセイは、例えば、タンパク質合成阻害活性、脱プリン活性、細胞成長の阻害、細胞毒性、スーパーコイルＤＮＡの弛緩活性、及び／又はヌクレアーゼ活性などの様々な活性を測定することができる。
志賀毒素のエフェクター機能の保持とは、本明細書で使用される場合、野生型志賀毒素のエフェクターポリペプチド対照に匹敵する再現性を有する適切な定量アッセイによって測定された場合の、志賀毒素の機能的な活性のレベルを指す。リボソーム阻害に関して、志賀毒素のエフェクター機能は、１０，０００ｐＭ又はそれ未満のＩＣ５０を示す。標的陽性細胞殺滅アッセイにおける細胞毒性に関して、志賀毒素のエフェクター機能は、細胞型及びその適切な細胞外標的生体分子の発現に応じて、１，０００ｎＭ又はそれ未満ＣＤ５０を示す。
「有意な」志賀毒素のエフェクター機能の保持とは、本明細書で使用される場合、野生型志賀毒素エフェクターポリペプチド対照に匹敵する再現性を有する適切な定量アッセイによって測定された場合の、志賀毒素の機能的な活性のレベルを指す。インビトロでのリボソーム阻害に関して、有意な志賀毒素のエフェクター機能は、リボソーム源（例えば細菌、古細菌、又は真核生物（藻類、菌類、植物、又は動物））に応じて３００ｐＭ又はそれ未満のＩＣ５０を示す。これは、触媒的に不活性なＳＬＴ－１Ａ １－２５１二重ミュータント（Ｙ７７Ｓ、Ｅ１６７Ｄ）の場合の１００，０００ｐＭのおよそのＩＣ５０と比較して有意に大きい阻害である。実験室での細胞培養における標的陽性細胞殺滅アッセイにおける細胞毒性に関して、有意な志賀毒素のエフェクター機能は、細胞株及びその適切な細胞外標的生体分子の発現に応じて１００、５０、若しくは３０ｎＭ又はそれ未満のＣＤ５０を示す。これは、細胞株に応じて１００～１０，０００ｎＭのＣＤ５０を有する細胞を標的化する結合領域を有さないＳＬＴ－１Ａ成分単独と比較して有意に大きい適切な標的細胞株に対する細胞毒性である。
いくつかのサンプルに関して、正確な曲線適合に必要なデータポイントを収集できないことにより、ＩＣ５０又はＣＤ５０のいずれかの正確な値を得るのが難しい場合がある。不正確なＩＣ５０及び／又はＣＤ５０値は、有意な志賀毒素のエフェクター機能活性を決
定する場合に、検討されるべきではなない。例えば実施例で説明されるアッセイなどの例示的な志賀毒素のエフェクター機能アッセイからのデータの分析で説明されるように、曲線を正確に適合するのに不十分なデータは、実際の志賀毒素のエフェクター機能の代表値として検討されるべきではない。例えば、理論上、所与のサンプルについて一連の濃度でそれぞれ５０％より大きいリボソーム阻害又は細胞死が起こらない場合、ＩＣ５０もＣＤ５０も決定することはできない。
志賀毒素のエフェクター機能における活性検出の失敗は、細胞への侵入、細胞内の経路決定、及び／又は酵素活性の欠如というよりは、不適切な発現、ポリペプチドフォールディング、及び／又はポリペプチドの安定性に起因する可能性がある。志賀毒素のエフェクター機能に関するアッセイは、志賀毒素のエフェクター機能活性の有意な量を測定するために本発明のポリペプチドをそれほど多く必要としない場合がある。低い又はゼロのエフェクター機能の根本的な原因が、タンパク質の発現又は安定性に関すると経験的に決定される程度に、当業者は、志賀毒素の機能的なエフェクター活性を回復させて測定できるように、当業界において公知のタンパク質化学及び分子工学技術を使用してこのような要因を相殺することが可能な場合がある。例として、不適切な細胞ベースの発現は、異なる発現制御配列を使用することによって相殺してもよい。不適切なポリペプチドフォールディング及び／又は安定性は、末端配列を安定化すること、又はタンパク質の３次元構造を安定化させる非エフェクター領域における補償変異などによって利益を得る可能性がある。個々の志賀毒素の機能のための新しいアッセイが利用可能になる場合、ＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチドは、志賀毒素のエフェクター機能のいずれかのレベルが、例えば野生型志賀毒素エフェクターポリペプチドの活性の１０００倍若しくは１００倍以内又はそれ未満であるか、又は機能的なノックアウト志賀毒素エフェクターポリペプチドと比較して３倍～３０倍又はそれより大きい活性を示す場合に分析され得る。
十分な細胞内の経路決定は、単に、細胞毒性アッセイ、例えばＴ細胞エピトープ提示ベースの、又はサイトゾル及び／若しくはＥＲ標的基質が関与する毒素のエフェクター機能ベースの細胞毒性アッセイなどで細胞毒性を観察するだけで推測され得る。
注目すべきことに、志賀毒素エフェクターポリペプチドの細胞毒性が野生型と比べて低下しているとしても、実際には、弱毒化したＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチドを使用する適用は、野生型志賀毒素エフェクターポリペプチドを使用する適用と同等か又はそれより有効な可能性があり、これはなぜなら低下した抗原性及び／又は免疫原性は、例えばより多くの投薬量、より多くの繰り返しの投与、又は長期投与などを可能にすることによって低下した細胞毒性を相殺する可能性があるためである。野生型志賀毒素エフェクターポリペプチドは極めて有力であり、サイトゾルに到達する１つのみの分子で殺滅することが可能であるか、又はおそらく４０個の分子を内在化させることが可能である。野生型志賀毒素エフェクターポリペプチドと比較して顕著に低下した志賀毒素のエフェクター機能、例えば細胞内の経路決定又は細胞毒性などを有するＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチドであっても、標的化細胞の殺滅及び／又は特異的な細胞検出ベースの適用にとってなお十分有力である可能性がある。
本発明の特定の実施形態は、志賀毒素ファミリーのメンバーのＡサブユニットに由来するアミノ酸配列を含む志賀毒素エフェクターポリペプチドを含むポリペプチドであって、志賀毒素エフェクター領域は、本明細書に示される少なくとも１つの天然位置の（natively positioned）Ｂ細胞エピトープ領域（例えば表２、３、及び４を参照）の破壊を含む、ポリペプチドを提供する。特定の実施形態において、本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号１又は配列番号２の１～１５；配列番号３の３～１４；配列番号３の２６～３７；配列番号１又は配列番号２の２７～３７；配列番号１又は配列番号２の３９～４８；配列番号３の４２～４８；配列番号１、配列番号２又は配列番号３の５３～６６；配列番号１、配列番号２又は配列番号３の９４～１１５；配列番号１又は配列番号２の１４１～１５３；配列番号３の１４０～１５６；配列番号１又は配列番号２の１７９～１９０；配列番号３の１７９～１９１；配列番号３の２０４；配列番号１又は配列番号２の２０５；及び配列番号３の２１０～２１８；配列番号３の２４０～２６０；配列番号１又は配列番号２の２４３～２５７；配列番号１又は配列番号２の２５４～２６８；配列番号３の２６２～２７８；配列番号３の２８１～２９７；及び配列番号１又は配列番号２の２８５～２９３のＢ細胞エピトープ領域、並びに配列番号１又は配列番号２の４～３３、配列番号１又は配列番号２の３４～７８、配列番号１又は配列番号２の７７～１０３、配列番号１又は配列番号２の１２８～１６８、配列番号１又は配列番号２の１６０～１８３、配列番号１又は配列番号２の２３６～２５８、及び配列番号１又は配列番号２の２７４～２９３のＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域からなる天然位置のアミノ酸の群から選択されるアミノ酸配列；又は保存された志賀毒素エフェクターポリペプチド及び／若しくは非ネイティブの志賀毒素エフェクターポリペプチド配列における等価な位置の少なくとも１つの破壊を含む、全長の志賀毒素のＡサブユニット（例えばＳＬＴ－１Ａ（配列番号１）、ＳｔｘＡ（配列番号２）、又はＳＬＴ－２Ａ（配列番号３））を含むか又はそれから本質的になっていてもよい。
本発明の特定の実施形態は、志賀毒素ファミリーのメンバーのＡサブユニットに由来するアミノ酸配列を含む志賀毒素エフェクターポリペプチドを含むポリペプチドであって、志賀毒素エフェクター領域は、本明細書に示される少なくとも１つの天然位置のＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域（例えば表２、３、及び４を参照）の破壊を含む、ポリペプチドを提供する。特定の実施形態において、本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチドは、４～３３、３４～７８、７７～１０３、１２８～１６８、１６０～１８３、２３６～２５８、及び２７４～２９３からなる天然位置のアミノ酸の群から選択されるアミノ酸配列；又は保存された志賀毒素エフェクターポリペプチド及び／若しくは非ネイティブの志賀毒素エフェクターポリペプチド配列における等価な位置の少なくとも１つの破壊を含む、全長の志賀毒素のＡサブユニット（例えばＳＬＴ－１Ａ（配列番号１）、ＳｔｘＡ（配列番号２）、又はＳＬＴ－２Ａ（配列番号３））を含むか又はそれから本質的になっていてもよい。
特定の実施形態において、本発明の志賀毒素エフェクターポリペプチドは、トランケートされた志賀毒素のＡサブユニットを含むか又はそれから本質的になっていてもよい。志賀毒素のＡサブユニットのトランケーションは、毒素エフェクターの触媒活性及び細胞毒性に影響を及ぼすことなくＢ細胞エピトープ領域全体の欠失をもたらす可能性がある。有意な酵素活性を示す最小の志賀毒素のＡサブユニットフラグメントは、ＳｔｘＡの残基７５～２４７で構成されるポリペプチドである（Al-Jaufy, Infect Immun62: 956-60 (1994)）。ＳＬＴ－１Ａ、ＳｔｘＡ、又はＳＬＴ－２Ａのカルボキシ末端のアミノ酸１～２５１へのトランケーションは、２つの予測されたＢ細胞エピトープ領域、２つの予測されたＣＤ４陽性（ＣＤ４＋）Ｔ細胞エピトープ、及び予測された不連続のＢ細胞エピトープを除去する。ＳＬＴ－１Ａ、ＳｔｘＡ、又はＳＬＴ－２Ａのアミノ末端の７５～２９３へのトランケーションは、少なくとも３つの予測されたＢ細胞エピトープ領域及び３つの予測されたＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープを除去する。ＳＬＴ－１Ａ、ＳｔｘＡ、又はＳＬＴ－２Ａのアミノ及びカルボキシ末端の両方の７５～２５１へのトランケーションは、少なくとも５つの予測されたＢ細胞エピトープ領域、４つの推定上のＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ、及び１つの予測された不連続のＢ細胞エピトープを欠失させる。
特定の実施形態において、本発明の志賀毒素エフェクターポリペプチドは、提供されたＢ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域中に少なくとも１つの変異、例えば欠失、挿入、逆位、又は置換を有する全長又はトランケートされた志賀毒素のＡサブユニットを含むか又はそれから本質的になっていてもよい。特定のさらなる実施形態において、ポリペプチドは、Ｂ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域内に少なくとも１つのアミノ酸の欠失を含む破壊を含む。特定のさらなる実施形態において、ポリペプチドは、Ｂ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域内に少なくとも１つのアミノ酸の挿入を含む破壊を含む。特定のさらなる実施形態において、ポリペプチドは、アミノ酸の逆位を含む破壊を含み、ここで少なくとも１つの逆転したアミノ酸は、Ｂ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域内である。特定のさらなる実施形態において、ポリペプチドは、非標準アミノ酸又は化学的に改変された側鎖を有するアミノ酸へのアミノ酸置換などの変異を含む破壊を含む。実施例に、極めて多くのアミノ酸置換の例を示す。
他の実施形態において、本発明の志賀毒素エフェクターポリペプチドは、少なくとも１つのアミノ酸が実施例で示される天然位置のＢ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域（表２、３、及び／又は４を参照）において破壊されている全長の志賀毒素のＡサブユニットより短いトランケートされた志賀毒素のＡサブユニットを含むか又はそれから本質的になる。
本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチドは、全長Ａサブユニットより小さくてもよく、例えば、アミノ酸７７～２３９位のポリペプチド領域（ＳＬＴ－１Ａ（配列番号１）又はＳｔｘＡ（配列番号２））又は志賀毒素ファミリーのメンバーの他のＡサブユニットにおける均等物（例えば配列番号３の７７～２３８）などからなる。例えば、本発明の特定の実施形態において、ＳＬＴ－１Ａに由来する志賀毒素エフェクターポリペプチドは、少なくとも１つのアミノ酸が実施例で示される内因性Ｂ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域（表２、３、及び／又は４）において破壊されている配列番号１のアミノ酸７５～２５１、配列番号１の１～２４１、配列番号１の１～２５１、又は配列番号１のアミノ酸１～２６１に由来してもよい。同様に、ＳｔｘＡに由来するＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化された志賀毒素エフェクター領域は、少なくとも１つのアミノ酸が実施例で示される少なくとも１つの内因性Ｂ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域（表２、３、及び／又は４）において破壊されている配列番号２のアミノ酸７５～２５１、配列番号２の１～２４１、配列番号２の１～２５１、又は配列番号２のアミノ酸１～２６１を含むか又はそれから本質的になっていてもよい。加えて、ＳＬＴ－２に由来する志賀毒素エフェクター領域は、少なくとも１つのアミノ酸が実施例で示される少なくとも１つのＢ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域（表２、３、及び／又は４）において破壊されている配列番号３のアミノ酸７５～２５１、配列番号３の１～２４１、配列番号３の１～２５１、又は配列番号３のアミノ酸１～２６１を含むか又はそれから本質的になっていてもよい。
本発明の細胞標的化分子の特定の実施形態はそれぞれ、酵素活性に関する１又は２以上の主要な残基を変異させることによって、志賀毒素のエフェクター機能を保持しつつも、細胞毒性ではない機能、例えば、細胞分裂停止の達成、外因性物質の送達、及び／又は細胞型の検出のために細胞毒性が低減又は無効化されたポリペプチドに細胞毒性の親分子から加工されていてもよい、ＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む。
特定の実施形態に関して、本発明のポリペプチドは、志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定の実施形態に関して、本発明のポリペプチドは、配列番号１１～４３のポリペプチドの１つを含むか又はそれから本質的になる。
特定の実施形態に関して、本発明の細胞標的化分子は、志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む細胞毒性タンパク質である。特定の実施形態に関して、本発明の細胞標的化分子は、配列番号４９～５４のポリペプチドの１つを含むか又はそれから本質的になる。
２．ジフテリア毒素によって誘導されたＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド
本発明の目的に関して、成句「ジフテリア毒素エフェクター領域」は、少なくとも１つのジフテリア毒素の機能を示すことが可能な、ジフテリア毒素ファミリーのメンバーのジフテリア毒素に由来するポリペプチド領域を指す。ジフテリア毒素の機能としては、例えば、細胞への侵入、エンドソーム脱出、細胞内経路を方向付けること、リボソームを触媒的に不活性化すること、細胞毒性を達成すること、及び細胞増殖抑制作用を達成することが挙げられる。
本発明の目的に関して、ジフテリア毒素のエフェクター機能は、ジフテリア毒素に由来するポリペプチド領域によって付与された生物活性である。ジフテリア毒素のエフェクター機能の非限定的な例としては、細胞の内在化、細胞内の経路決定、触媒活性、及び細胞毒性が挙げられる。ジフテリア毒素の触媒活性の非限定的な例としては、リボソーム不活性化、タンパク質合成阻害、及びＡＤＰ－リボシル化が挙げられる。ジフテリア毒素の触媒活性は、インビトロとインビボの両方で観察されている。ジフテリア毒素のエフェクター活性に関するアッセイは、例えば、タンパク質合成阻害活性、ＡＤＰ－リボシル化、細胞成長の阻害、及び／又は細胞毒性などの様々な活性を測定することができる。十分な細胞内の経路決定は、単に、細胞毒性アッセイ、例えばＴ細胞エピトープ提示ベースの、又はサイトゾル及び／若しくはＥＲ標的基質が関与する毒素のエフェクター機能ベースの細胞毒性アッセイなどで細胞毒性を観察するだけで推測され得る。
注目すべきことに、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドの毒素エフェクター活性が野生型と比べて低下しているとしても、実際には、弱毒化したＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたジフテリア毒素エフェクターポリペプチドを使用する適用は、野生型の活性レベルを有するジフテリア毒素エフェクターポリペプチドを使用する適用と同等か又はそれより有効な可能性があり、これはなぜなら低下した抗原性及び／又は免疫原性は、例えばより多くの投薬量、より多くの繰り返しの投与、又は長期投与などを可能にすることによって低下した細胞毒性を相殺する可能性があるためである。細胞内の経路決定のエフェクター活性のみを示すジフテリア毒素エフェクターポリペプチドは、標的化細胞のＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ送達ベースの適用での使用に適切である。
本発明の特定の実施形態は、ジフテリア毒素ファミリーのメンバーのＡサブユニットに由来するアミノ酸配列を含むジフテリア毒素エフェクターポリペプチドを含むポリペプチドであって、ジフテリア毒素エフェクター領域は、本明細書で提供される少なくとも１つの天然位置のＢ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域の破壊を含む、ポリペプチドを提供する（例えば表５を参照）。特定の実施形態において、本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたジフテリア毒素エフェクターポリペプチドは、配列番号４４の３～１０、配列番号４４の１５～３１、配列番号４４の３２～５４；配列番号４４の３３～４３、配列番号４４の７１～７７、配列番号４４の９３～１１３、配列番号４４の１２５～１３１、配列番号４４の１３８～１４６、配列番号４４の１４１～１６７、配列番号４４の１６５～１７５、配列番号４５の１８２～２０１、配列番号４４の１８５～１９１、及び配列番号４５の２２５～２３８からなる天然位置のアミノ酸の群から選択されるアミノ酸配列；又は保存されたジフテリア毒素エフェクターポリペプチド及び／若しくは非ネイティブのジフテリア毒素エフェクターポリペプチド配列における等価な位置の少なくとも１つの破壊を含む配列番号４５のアミノ酸２～３８９のポリペプチドを含むか又はそれから本質的になっていてもよい。
本発明のジフテリア毒素エフェクターポリペプチドは、少なくとも１つのアミノ酸が、実施例で示される少なくとも１つの天然位置のＢ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域において破壊されている限りは（表５を参照）、野生型と比較して１又は２以上の変異（例えば置換、欠失、挿入又は逆位）を含んでいてもよい。本発明の特定の実施形態において、ＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたジフテリア毒素エフェクターポリペプチドは、宿主細胞形質転換、トランスフェクション、感染若しくは誘導の周知の方法、又はジフテリア毒素エフェクターポリペプチドと連結された細胞を標的化する結合領域が媒介する内在化のいずれかによって細胞に侵入した後に細胞毒性を保持するのに十分な程度の、天然に存在するジフテリア毒素のＡサブユニットに対する配列同一性を有する。
ジフテリア毒素のＡサブユニットにおける酵素活性及び／又は細胞毒性にとって最も重要な残基は、以下の残基位置：ヒスチジン－２１、チロシン－２７、グリシン－５２、トリプトファン－５０、チロシン－５４、チロシン－６５、グルタミン酸－１４８、及びトリプトファン－１５３にマッピングされている（Tweten R et al., JBiol Chem 260: 10392-4 (1985)、WilsonB et al., J BiolChem269: 23296-301 (1994)、Bell C, Eisenberg D,Biochemistry 36: 481-8(1997)、Cummings M et al.,Proteins31: 282-98 (1998)、Keyvani K et al., Life Sci 64: 1719-24 (1999)、DolanK et al., Biochemistry 39: 8266-75 (2000)、Zdanovskaia M et al., Res Micrbiol 151: 557-62 (2000)、Kahn K, Bruice T, J Am Chem Soc 123: 11960-9 (2001)、Malito E et al.,Proc Natl Acad Sci USA 109: 5229-34 (2012)）。本発明の細胞毒性細胞標的化分子の細胞死を引き起こす能力、例えばその細胞毒性は、当業界において周知の多数のアッセイのいずれか１又は２以上を使用して測定され得る。
本発明の特定の実施形態において、ポリペプチドは、少なくとも１つのアミノ酸が実施例で示される天然位置のＢ細胞エピトープ及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域において破壊されている（表５）配列番号４５のアミノ酸２又はアミノ酸２～３８９を含むか又はそれから本質的になる、ＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたジフテリア毒素エフェクターを含む。
特定の実施形態に関して、本発明のポリペプチドは、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドを含む。特定の実施形態に関して、本発明のポリペプチドは、配列番号４６～４８のポリペプチドの１つを含むか又はそれから本質的になる。
特定の実施形態に関して、本発明の細胞標的化分子は、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドを含む細胞毒性タンパク質である。特定の実施形態に関して、本発明の細胞標的化分子は、配列番号５５～６０のポリペプチドの１つを含むか又はそれから本質的になる。
特定の実施形態に関して、本発明のポリペプチドは、配列番号１１～４３又は４６～４８のポリペプチドのいずれか１つを含むか又はそれから本質的になる。
本発明の細胞標的化分子はそれぞれ、細胞表面上で発現される標的生体分子などの、細胞と物理的に関連する少なくとも１つの細胞外標的生体分子に特異的に結合することができる細胞標的化部分に連結された、少なくとも１つのＴ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチドを含む。この一般的な構造は、本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫
化されたポリペプチドにあらゆる数の多様な細胞標的化部分を連結させることができるモジュール式構造である。
標的生体分子のいずれかの細胞外部分への機能的な結合部位を含有し、さらにより好ましくは高親和性（例えばＫＤで示されるような）での標的生体分子への結合が可能な、本発明のポリペプチド及び細胞標的化分子のフラグメント、バリアント、及び／又は誘導体を使用することは、本発明の範囲内である。本発明の細胞標的化分子の製作及び本発明の方法における使用のために、１０－５～１０－１２モル／リットル、好ましくは２００ｎＭ未満の解離定数（ＫＤ）で標的生体分子の細胞外部分に結合するいずれの細胞標的化部分が置換されていてもよい。
ＶＩ．本発明のＴ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド並びにそれを含む細胞標的化分子のポリペプチド配列におけるバリエーション
熟練した作業者であれば、例えば、抗原性及び／又は免疫原性を示す可能性を低下させる１又は２以上のエピトープ破壊と共に毒素エフェクター領域の全体の構造及び機能を維持することによって、本発明のＴ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド及び細胞標的化分子、並びに前者のいずれかをコードするポリヌクレオチドに、それらの生物活性を低減させることなくバリエーションをもたらすことができることを理解していると予想される。例えば、いくつかの改変が、発現、精製、並びに／又は薬物動態学的特性及び／若しくは免疫原性を容易にする可能性がある。このような改変は熟練した作業者に周知であり、例えば、開始部位を提供するためのアミノ末端に付加されたメチオニン、都合よく配置された制限部位若しくは終止コドンを作製するためのいずれかの末端に配置された追加のアミノ酸、並びに便利な検出及び／若しくは精製のために提供されるいずれかの末端に融合した生化学的な親和性タグが挙げられる。
また、エピトープタグ又は他の部分に関する配列などの、アミノ及び／又はカルボキシ末端における追加のアミノ酸残基の包含も本明細書において検討される。追加のアミノ酸残基は、例えば、クローニングの容易化、発現の容易化、翻訳後修飾、合成の容易化、精製、検出の容易化、及び投与などの様々な目的に使用することができる。エピトープタグ及び部分の非限定的な例は、キチン結合タンパク質ドメイン、エンテロペプチダーゼ切断部位、Ｘａ因子切断部位、ＦＩＡｓＨタグ、ＦＬＡＧタグ、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ，green fluorescent protein）、グルタチオン－Ｓ－トランスフェラーゼ部分、ＨＡタグ、マルトース結合タンパク質ドメイン、ｍｙｃタグ、ポリヒスチジンタグ、ＲｅＡｓＨタグ、ｓｔｒｅｐ－タグ、ｓｔｒｅｐ－タグＩＩ、ＴＥＶプロテアーゼ部位、チオレドキシンドメイン、トロンビン切断部位、及びＶ５エピトープタグである。
上記実施形態の特定のものにおいて、本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド及び／又は細胞標的化タンパク質のポリペプチド配列は、少なくとも１つのアミノ酸が本明細書に示される少なくとも１つの天然位置のＢ細胞エピトープ領域において破壊されている限りは、ポリペプチド領域に導入される１又は２以上の保存的アミノ酸置換で変更される。用語「保存的置換」は、本明細書で使用される場合、１又は２以上のアミノ酸が別の生物学的に類似するアミノ酸残基で置き換えられることを示す。その例としては、類似の特徴を有するアミノ酸残基、例えば小さいアミノ酸、酸性アミノ酸、極性アミノ酸、塩基性アミノ酸、疎水性アミノ酸及び芳香族アミノ酸の置換が挙げられる（例えば、下記の表Ｃを参照）。内因性の哺乳動物ペプチド及びタンパク質に通常存在しない残基での保存的置換の例は、アルギニン又はリシン残基の、例えばオルニチン、カナバニン、アミノエチルシステイン、又は別の塩基性アミノ酸での保存的置換である。ペプチド及びタンパク質において表現型ではサイ
レントな置換に関するさらなる情報については、例えば、Bowie J et al., Science247:1306-10 (1990)を参照されたい。
Figure 2023062014000003


表Ｃにおける保存的置換のスキームでは、例示的なアミノ酸の保存的置換は、物理化学的な特性によって、Ｉ：中性、親水性；II：酸及びアミド；III：塩基性；IV：疎水性；
Ｖ：芳香族、嵩高なアミノ酸、VI：親水性で非荷電性、VII：脂肪族で非荷電性、VIII：
非極性で非荷電性、IX：シクロアルケニル結合、Ｘ：疎水性、XI：極性、XII：小さい、XIII：ターン許容性、及びXIV：フレキシブルにグループ分けされる。例えば、保存的アミノ酸置換としては、以下：１）Ｓは、Ｃで置換されていてもよい；２）Ｍ又はＬは、Ｆで置換されていてもよい；３）Ｙは、Ｍで置換されていてもよい；４）Ｑ又はＥは、Ｋで置換されていてもよい；５）Ｎ又はＱは、Ｈで置換されていてもよい；及び６）Ｈは、Ｎで置換されていてもよいことが挙げられる。
追加の保存的アミノ酸置換としては、以下：１）Ｓは、Ｃで置換されていてもよい；２）Ｍ又はＬは、Ｆで置換されていてもよい；３）Ｙは、Ｍで置換されていてもよい；４）Ｑ又はＥは、Ｋで置換されていてもよい；５）Ｎ又はＱは、Ｈで置換されていてもよい；及び６）Ｈは、Ｎで置換されていてもよいことが挙げられる。
特定の実施形態において、本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド及び／又は細胞標的化分子（例えば細胞標的化タンパク質）は、最大で、２０、１５、１０、９、８、７、６、５、４、３、２、又は１つのアミノ酸置換を有する本発明のポリペプチド領域の機能的なフラグメント又はバリアントを含んでいてもよい。
特定の実施形態において、本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド及び／又は細胞標的化分子は、それが
実施例で示される天然位置のＢ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域（表２、３、４、及び／又は５）の少なくとも１つのアミノ酸の破壊を保持する限りは、さらにポリペプチド又はタンパク質が、単独で並びに／又は治療及び／若しくは診断用組成物の成分としてＴ細胞エピトープ送達機能を保持する限りは、本明細書で列挙されたポリペプチド配列と比較して、最大で、２０、１５、１０、９、８、７、６、５、４、３、２、又は１つのアミノ酸置換を有する本発明のポリペプチド領域の機能的なフラグメント又はバリアントを含んでいてもよい。本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチド及び／又は細胞標的化タンパク質のバリアントは、変化した細胞毒性、変化した細胞増殖抑制作用、変化した免疫原性、及び／又は変化した血清中半減期などの所望の特性を達成するために、例えば結合領域又はＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／若しくはＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド領域内で、１又は２以上のアミノ酸を変更すること又は１又は２以上のアミノ酸を欠失させるか若しくは挿入することによって、本発明の細胞標的化タンパク質のポリペプチドを変化させる結果として本発明の範囲内である。本発明のＢ細胞エピトープの脱免疫化された及びＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化されたポリペプチド及び／又は細胞標的化タンパク質はさらに、シグナル配列を伴っていてもよいし、又はそうでなくてもよい。
したがって、特定の実施形態において、本発明の志賀毒素エフェクター又はジフテリア毒素エフェクターポリペプチドは、例えば志賀毒素のＡサブユニット、例えばＳＬＴ－１Ａ（配列番号１）、ＳｔｘＡ（配列番号２）、及び／若しくはＳＬＴ－２Ａ（配列番号３）、又はジフテリア毒素の触媒ドメイン（配列番号４４）などの天然に存在する毒素に対して、少なくとも５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９７％、９８％、９９％、９９．５％又は９９．７％の全体的な配列同一性を有するアミノ酸配列を含むか又はそれから本質的になる。特定の実施形態において、本発明の脱免疫化された志賀毒素エフェクター又はジフテリア毒素エフェクターポリペプチドは、少なくとも１つのアミノ酸が実施例で示される少なくとも１つの天然位置のＢ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域（表２、３、４、及び／又は５）において破壊されている天然に存在する毒素に対して、少なくとも５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９７％、９８％、９９％、９９．５％又は９９．７％の全体的な配列同一性を有するアミノ酸配列を含むか又はそれから本質的になる。
本発明の細胞標的化分子の特定の実施形態において、ＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化された毒素エフェクターポリペプチド領域の酵素活性を増加させるために、１又は２以上のアミノ酸残基が変異、挿入又は欠失されていてもよい。例えば、Ｓｔｘ１Ａにおけるアラニン－２３１の残基位置をグルタミン酸に変異させることは、インビトロでその酵素活性を増加させる（Suhan M, Hovde C, Infect Immun66:5252-9(1998)）。
本発明の細胞標的化分子の特定の実施形態において、ＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化された毒素エフェクターポリペプチド領域の触媒性及び／又は細胞毒性の活性を低下させるか又は消去するために、１又は２以上のアミノ酸残基が変異又は欠失されていてもよい。例えば、志賀毒素ファミリー又はジフテリア毒素ファミリーのメンバーのＡサブユニットの触媒性及び／又は細胞毒性の活性は、変異又はトランケーションによって低減又は消去され得る。
本発明の特定の実施形態において、リボトキシンのエフェクター領域は、インビトロでリボソームの触媒性の不活性化を維持できなくなるように変更されている。しかしながら、リボトキシンの毒性を低下させるか又は消去するためのリボトキシンのエフェクター領域を改変する他の手段も、本発明の範囲内で想定される。例えば、特定の変異は、インビトロでのアッセイによって観察可能な触媒能力を維持しつつも、リボトキシンのエフェクター領域がそのリボソーム基質と結合できないようにすることができ、それに対して他の変異は、インビトロで裸の核酸に対する触媒能力を維持しつつも、リボトキシンの領域がリボソーム内の特異的なリボ核酸配列を標的化できないようにすることができる（例えばAlford S etal., BMC Biochem10: 9 (2009)、Alvarez-Garcia E et al., Biochim Biophys Act 1814: 1377-82(2011)、WongY et al., PLoSOne 7: e49608 (2012)を参照）。
ＤＴにおいて、例えば、ヒスチジン－２１、チロシン－２７、グリシン－５２、トリプトファン－５０、チロシン－５４、チロシン－６５、グルタミン酸－１４８、及びトリプトファン－１５３などの、触媒活性にとって重要であることが公知の数種のアミノ酸残基がある（Tweten R et al., JBiol Chem 260: 10392-4 (1985)、WilsonB et al., J BiolChem269: 23296-301 (1994)、Bell C, Eisenberg D,Biochemistry 36: 481-8(1997)、CummingsM et al.,Proteins31: 282-98 (1998)、Keyvani K et al., Life Sci 64: 1719-24(1999)、DolanK et al., Biochemistry 39:8266-75 (2000)、Zdanovskaia M et al., Res Micrbiol 151: 557-62 (2000)、Kahn K,Bruice T, J Am Chem Soc 123:11960-9 (2001)、Malito E et al.,Proc Natl AcadSci USA 109:5229-34 (2012)）。コリックス毒素（cholix toxin）におけるグルタミン酸－５８１は、ＤＴにおいてグルタミン酸－１４８と共に保存されており（Jorgensen R et al., EMBO Rep 9: 802-9 (2008)）、したがって、コリックス毒素におけるグルタミン酸－５８１の変異は、コリックス毒素の酵素活性を低下させると予測される。
ＰＥにおいて、例えば、トリプトファン－４１７、ヒスチジン－４２６、ヒスチジン－４４０、グリシン－４４１、アルギニン－４８５、トリプトファン－４５８、トリプトファン－４６６、チロシン－４７０、チロシン－４８１、グルタミン酸－５４６、アルギニン－５５１、グルタミン酸－５５３、及びトリプトファン－５５８などの、触媒活性にとって重要であることが公知の数種のアミノ酸残基がある（Douglas C, Collier R, J Bacteriol169:4967-71 (1987)、Wilson B, ColliverR,Curr Top Microbiol Immunol 175:
27-41 (1992)）、Beattie B et al., Biochemistry35:15134-42(1996)、Roberts T, Merrill A, BiochemJ 367: 601-8 (2002)、YatesSet al., Biochem J 385: 667-75 (2005)、Jorgensen R et al., EMBO Rep 9: 802-9 (2008)）。コリックス毒素におけるグルタミン酸－５７４及びグルタミン酸－５８１は、それぞれＰＥにおいてグルタミン酸－５４６及びグルタミン酸－５５３と共に保存されており（Jorgensen R et al., EMBO Rep 9: 802-9 (2008)）、したがってコリックス毒素におけるグルタミン酸－５７４及び／又はグルタミン酸－５８１の変異は、コリックス毒素の酵素活性を低下させると予測される。
コリックス毒素の触媒ドメイン、ＤＴ、ＰＥ、及び他の関連する酵素は重ね合わせることが可能であるため（JorgensenR, et al., J Biol Chem 283:10671-8(2008)）、触媒
活性に必要なアミノ酸残基は、熟練した作業者に公知の配列アライメント方法によって、関連するポリペプチド配列で予測が可能である。
ＲＩＰファミリーの数種のメンバーは、触媒残基に関してよく研究されている。例えば、ほとんどのＲＩＰファミリーメンバーは、例えば触媒ドメインのアミノ末端近傍の２つのチロシン、触媒ドメインの中心の近傍のグルタミン酸及びアルギニン、並びに触媒ドメインのカルボキシ末端の近傍のトリプトファンなどの触媒作用に関する５つの主要なアミノ酸残基を共有する（Lebeda F, Olson M,Int J Biol Macromol 24:19-26(1999)、MlsnaD et al.,Protein Sci 2: 429-35 (1993)、de Virgilio M et al.,Toxins 2: 2699-737(2011)、Walsh M, Virulence 4: 774-84(2013)））。ＲＩＰファミリーのメンバー
の触媒ドメインは重ね合わせることが可能であるため、触媒活性に必要なアミノ酸残基は、熟練した作業者に公知の配列アライメント方法によって、ＲＩＰファミリーの自然に生じた及び／又は新しいメンバーで予測が可能である（例えばHusain J et al., FEBS Lett 342: 154-8 (1994)、RenJ et al., Structure 2: 7-16(1994)、Lebeda F, Olson M, Int J Biol Macromol 24: 19-26(1999)、Ma Q et al., Acta CrystallogrD Biol Crystallog r 56: 185-6 (2000)、Savino C et al., FEBS Lett470:239-43 (2000)、Robertus J, Monzingo A, Mini Rev Med Chem 4: 477-86 (2004)、Mishra V et al., J Biol Chem 280: 20712-21 (2005)、Zhou C et al., Bioinformatics 21: 3089-96 (2005)、Lubelli C et al.,Anal Biochem 355: 102-9(2006)、Touloupakis E etal., FEBS J 273: 2684-92(2006)、Hou X et al., BMCStructBiol 7: 29 (2007)、Meyer A et al., Biochem Biophys Res Commun 364:195-200(2007)、Ruggiero A et al., Protein Pept Lett 14:97-100 (2007)、Wang T et al., Amino Acids34:239-43(2008)を参照）。
アブリンのＡサブユニットにおいて、例えば、チロシン－７４、チロシン－１１３、グルタミン酸－１６４、アルギニン－１６７、及びトリプトファン－１９８などの触媒活性にとって重要な数種のアミノ酸残基がある（Hung C et al., Eur J Biochem219:83-7(1994)、Chen J et al., Protein Eng10: 827-33(1997)、Xie L et al., EurJ Biochem
268: 5723-33 (2001)）。
カリブディン（charybdin）において、例えば、バリン－７９、チロシン－１１７、グ
ルタミン酸－１６７、及びアルギニン－１７０などの触媒活性にとって重要な数種のアミノ酸残基がある（Touloupakis E et al., FEBSJ273:2684-92 (2006)）。
シナモミン（cinnamomin）のＡサブユニットにおいて、例えば、チロシン－７５、チロシン－１１５、グルタミン酸－１６７、アルギニン－１７０、及びトリプトファン－２０１などの触媒活性にとって重要な数種のアミノ酸残基がある（Hung C et al., Eur J Biochem219:83-7(1994)、Chen J et al., Protein Eng10: 827-33(1997)）。
ルファクリン（luffaculin）において、例えば、チロシン－７０、グルタミン酸－８５、チロシン－１１０、グルタミン酸－１５９、及びアルギニン－１６２などの触媒活性にとって重要な数種のアミノ酸残基がある（Hou X et al., BMC Struct Biol 7: 29 (2007)）。
ルフィン（luffin）において、例えば、チロシン－７１、グルタミン酸－８６、チロシン－１１１、グルタミン酸－１６０、及びアルギニン－１６３などの触媒活性にとって重要な数種のアミノ酸残基がある（Ma Q et al., Acta Crystallogr D Biol Crystallogr 56: 185-6 (2000)）。
トウモロコシのＲＩＰにおいて、例えば、チロシン－７９、チロシン－１１５、グルタミン酸－１６７、アルギニン－１７０、及びトリプトファン－２０１などの触媒活性にとって重要な数種のアミノ酸残基がある（Robertus J, Monzingo A, Mini Rev Med Chem 4:477-86 (2004)、Yang Y et al., J Mol Biol 395: 897-907(2009)）。
ＰＤ－Ｌにおいて、ＰＤＬ－１では、例えば、チロシン－７２、チロシン－１２２、グルタミン酸－１７５、アルギニン－１７８、及びトリプトファン－２０７などの触媒活性にとって重要な数種のアミノ酸残基がある（Ruggiero A et al., Biopolymers 91: 1135-42 (2009)）。
ヤドリギのＲＩＰのＡサブユニットにおいて、例えば、チロシン－６６、フェニルアラニン－７５、チロシン－１１０、グルタミン酸－１５９、アルギニン－１６２、グルタミン酸－１６６、アルギニン－１６９、及びトリプトファン－１９３などの触媒活性にとって重要な数種のアミノ酸残基がある（Langer M et al., Biochem Biophys Res Commun264:944-8(1999)、Mishra V et al., Act CrystallogrDBiol Crystallogr 60:2295-2304(2004)、Mishra V et al., J Biol Chem 280: 20712-21(2005)、Wacker R et al., J Pept Sci 11: 289-302 (2005)）。
ヤマゴボウ抗ウイルスタンパク質（ＰＡＰ）において、例えば、リシン－４８、チロシン－４９、アルギニン－６７、アルギニン－６８、アスパラギン－６９、アスパラギン－７０、チロシン－７２、フェニルアラニン－９０、アスパラギン－９１、アスパラギン酸－９２、アルギニン－１２２、チロシン－１２３、グルタミン酸－１７６、アルギニン－１７９、トリプトファン－２０８、及びリシン－２１０などの触媒活性にとって重要な数種のアミノ酸残基がある（Rajamohan F etal., J Biol Chem 275: 3382-90 (2000)、Rajamohan F etal., Biochemistry 40:9104-14 (2001)）。
リシンのＡ鎖において、例えば、アルギニン－４８、チロシン－８０、アスパラギン－１２２、チロシン－１２３、グルタミン酸－１７７、アルギニン－１８０、セリン－２０３、アスパラギン－２０９、トリプトファン－２１１、グリシン－２１２、アルギニン－２１３、セリン－２１５、及びイソロイシン－２５２などの触媒活性にとって重要であることが公知の数種のアミノ酸残基がある（Frankel A et al., Mol Cell Biol 9: 415-20 (1989)、Schlossman D etal., Mol Cell Biol 9: 5012-21 (1989)、Gould J et al.,Mol Gen Genet 230:91-90(1991)、Ready M et al.,Proteins10: 270-8 (1991)、Rutenber E et al.,Proteins 10: 240-50 (1991)、Monzingo A, Robertus,J,J Mol Biol 227: 1136-45(1992)、Day P et al.,Biochemistry35: 11098-103 (1996)、Marsden C et al., EurJ Biochem27: 153-62 (2004)、PangY et al., PLoSOne 6: e17883 (2011)）。リシンにおいて、例えば、Ｎ２４、Ｆ２５、Ａ２８、Ｖ２９、Ｙ８１、Ｖ８２、Ｖ８３、Ｇ８４、Ｅ１４６、Ｅ１４７、Ａ１４８、Ｉ１４９、Ｓ１６８、Ｆ１６９、Ｉ１７０、Ｉ１７１、Ｃ１７２、Ｉ１７３、Ｑ１７４、Ｍ１７５、Ｉ１７６、Ｓ１７７、Ｅ１７８、Ａ１７９、Ａ１８０、Ｒ１８１、Ｆ１８２、Ｑ１８３、Ｙ１８４、Ｄ２０２、Ｐ２０３、Ｉ２０６、Ｔ２０７、Ｎ２１０、Ｓ２１１、Ｗ２１２、及びＧ２１３などの欠失している場合にリシンの触媒活性を損なうことが公知の数種のアミノ酸残基がある（Munishkin A,
Wool I, J Biol Chem 270: 30581-7 (1995)、Berrondo M, Gray J,Proteins79:2844-60
(2011)）。
サポリンにおいて、例えば、チロシン－１６、チロシン－７２、チロシン－１２０、グルタミン酸－１７６、アルギニン－１７９、及びトリプトファン－２０８などの触媒活性にとって重要であることが公知の数種のアミノ酸残基がある（Bagga S et al., JBiol Chem 278: 4813-20 (2003)、Zarovni N et al., CancGeneTher14: 165-73 (2007)、Lombardi A et al., FASEB J24:253-65(2010)）。加えて、触媒活性を低下させるために
、シグナルペプチドが包含される場合もある（Marshall R et al., PlantJ65:218-29 (2011)）。
トリコサンチンにおいて、例えば、チロシン－７０、チロシン－１１１、グルタミン酸－１６０、アルギニン－１６３、リシン－１７３、アルギニン－１７４、リシン－１７７、及びトリプトファン－１９２などの触媒活性にとって重要であることが公知の数種のアミノ酸残基がある（Wong et al., Eur J Biochem221:787-91(1994)、Li et al., Protein Eng12: 999-1004(1999)、Yan et al., Toxicon 37: 961-72(1999)、Ding etal.,
Protein Eng 16: 351-6 (2003)、GuoQ et al.,Protein Eng 16: 391-6 (2003)、ChanD et
al., Nucleic Acid Res 35: 1660-72 (2007)）。
真菌性リボトキシンは、ＲＩＰファミリーのメンバーと同じ普遍的に保存されたＳＲＬのリボソーム構造を酵素的に標的化し、ほとんどの真菌性リボトキシンは、ＲＮＡアーゼＴ１タイプの触媒ドメイン配列及び二次構造を共有する（Lacadena J et al.,FEMS Microbiol Rev 31: 212-37(2007)）。ほとんどの真菌性リボトキシン及び関連する酵素は、触媒作用に関する３つの高度に保存されたアミノ酸残基、２つのヒスチジン残基及びグルタミン酸残基（ＲＮＡアーゼＴ１において、例えばヒスチジン－４０、グルタミン酸－５８、及びヒスチジン－９２）を共有する。ＤＳＫＫＰモチーフは、ＳＲＬとの特異的な結合のために真菌性リボトキシンに存在することが多い（Kao R, Davies J, J Biol Chem 274: 12576-82 (1999)）。真菌性リボトキシンの触媒ドメインは重ね合わせることが可能であるため、触媒活性に必要なアミノ酸残基は、熟練した作業者に公知の１又は２以上の配列アライメント方法を使用して、自然に生じた及び／又は新しい真菌性リボトキシンで予測が可能である。
Ａｓｐｆ１の場合、１６アミノ酸残基（７～２２位）の内部欠失は、そのリボ核酸溶解活性（ribonucleolyticactivity）及び細胞毒性を著しく損なった（Garcia-Ortega L et
al., FEBS J 272: 2536-44 (2005)）。
ミトギリンにおいて、例えば、アスパラギン－７、ヒスチジン－４９、グルタミン酸－９５、リシン－１１１、アルギニン－１２０、及びヒスチジン－１３６などの触媒活性にとって重要であることが公知の数種のアミノ酸残基がある（Kao R et al., Mol Microbiol 29: 1019-27(1998); Kao R, Davies J,FEBSLett 466: 87-90 (2000)）。
レストリクトシンにおいて、例えば、チロシン－４７、ヒスチジン－４９、グルタミン酸－９５、リシン－１１０、リシン－１１１、リシン－１１３、アルギニン－１２０、及びヒスチジン－１３６などの触媒活性にとって重要であることが公知の数種のアミノ酸残基がある（Nayak S, Batra J, Biochemistry 36: 13693-9 (1997)、Nayak S et al., Biochemistry 40: 9115-24 (2001)、Plantinga M et al., Biochemistry 50: 3004-13 (2011)）。
α－サルシンにおいて、例えば、トリプトファン－４８、ヒスチジン－４９、ヒスチジン－５０、トリプトファン－５１、アスパラギン－５４、イソロイシン－６９、グルタミン酸－９５、グルタミン酸－９６、リシン－１１、リシン－１１２、リシン－１１４、アルギニン－１２１、ヒスチジン－１３６、ヒスチジン－１３７、リシン－１４５などの触媒活性にとって重要であることが公知の数種のアミノ酸残基がある（Lacadena J et al.,Biochem J 309: 581-6 (1995)、Lacadena J et al.,Proteins37: 474-84(1999)、Martinez-Ruiz A et al.,Toxicon37: 1549-63 (1999)、deAntonio C et al.,Proteins 41: 350-61 (2000)、Masip M et al.,Eur J Biochem 268: 6190-6(2001)）。
志賀毒素ファミリーのメンバーのＡサブユニットの細胞毒性は、変異又はトランケーションによって変更、低減、又は消去され得る。チロシン－７７、グルタミン酸－１６７、アルギニン－１７０、チロシン－１１４、及びトリプトファン－２０３と名付けられた位置は、Ｓｔｘ、Ｓｔｘ１、及びＳｔｘ２の触媒活性にとって重要であることが示されている（Hovde C et al.,Proc Natl Acad Sci USA85:2568-72 (1988)、Deresiewicz R et al., Biochemistry31:3272-80 (1992)、Deresiewicz R et al., Mol Gen Genet241:467-73 (1993)、Ohmura M et al., MicrobPathog15: 169-76 (1993)、CaoC etal., Microbiol Immunol 38: 441-7 (1994)、Suhan M, HovdeC, Infect Immun66: 5252-9(1998)）。無細胞リボソーム不活性化アッセイにおいて、グルタミン酸－１６７とアルギニン－１７０の両方を変異させると、Ｓｌｔ－Ｉ Ａ１の酵素活性が消去された（LaPointe, J Biol Chem 280: 23310-18 (2005)）。小胞体でＳｌｔ－Ｉ Ａ１のデノボ発現を使用する別のアプローチにおいて、グルタミン酸－１６７とアルギニン－１７０の両方を変異させると、Ｓｌｔ－Ｉ Ａ１フラグメントの細胞毒性がその発現レベルで消去された（LaPointe, J Biol Chem 280: 23310-18 (2005)）。トランケーション分析から、残基７５から２６８までのＳｔｘＡのフラグメントが、インビトロで有意な酵素活性をなお保持していることが実証された（Haddad, J Bacteriol １７５: 4970-8 (1993)）。残基１～２３９を含有するＳｌｔ－Ｉ Ａ１のトランケートされたフラグメントは、インビトロにおいて有意な酵素活性及びサイトゾルにおいてデノボ発現による細胞毒性を示した（LaPointe, J Biol Chem 280: 23310-18 (2005)）。小胞体中の残基１～２３９にトランケートされたＳｌｔ－Ｉ Ａ１フラグメントの発現は、サイトゾルにレトロ転移（retrotranslocate）することができないことから、細胞毒性ではなかった（LaPointe, J Biol Chem 280: 23310-18 (2005)）。
志賀毒素のＡサブユニットにおける酵素活性及び／又は細胞毒性にとって最も重要な残基は、なかでも以下の残基位置：アスパラギン－７５、チロシン－７７、チロシン－１１４、グルタミン酸－１６７、アルギニン－１７０、アルギニン－１７６、及びトリプトファン－２０３にマッピングされた（Di, Toxicon 57: 535-39 (2011)）。特定には、グルタミン酸－Ｅ１６７からリシン、及びアルギニン－１７６からリシンの変異を含有するＳｔｘ２Ａの二重ミュータントコンストラクトは完全に不活性化され、それに対して、Ｓｔｘ１及びＳｔｘ２における多くの単一の変異は細胞毒性の１０分の１の低下を示した。さらに、Ｓｔｘ１Ａの１～２３９又は１～２４０へのトランケーションは、その細胞毒性を低下させ、同様に、Ｓｔｘ２Ａの保存された疎水性残基へのトランケーションは、その細胞毒性を低下させた。志賀毒素のＡサブユニットにおける真核性リボソーム及び／又は真核性リボソーム阻害の結合にとって最も重要な残基は、なかでも以下の残基位置、アルギニン－１７２、アルギニン－１７６、アルギニン－１７９、アルギニン－１８８、チロシン－１８９、バリン－１９１、及びロイシン－２３３にマッピングされている（McCluskey A et al., PLoS One7:e31191(2012)）。
志賀毒素様毒素１のＡサブユニットのトランケーションは、インビトロでリボソームを酵素的に不活性化することが可能な場合、触媒活性を示し、細胞内で発現される場合、細胞毒性である（LaPointe, J Biol Chem 280: 23310-18 (2005)）。完全な酵素活性を示す最小の志賀毒素のＡサブユニットフラグメントは、Ｓｌｔ１Ａの残基１～２３９で構成されるポリペプチドである（LaPointe, J Biol Chem 280: 23310-18 (2005)）。実質的な触媒活性を保持すると報告された志賀毒素のＡサブユニットの最小のフラグメントは、ＳｔｘＡの７５～２４７残基であるにもかかわらず（Al-Jaufy, Infect Immun62: 956-60 (1994)）、真核細胞内でデノボ発現されたＳｔｘＡのトランケーションは、サイトゾルに到達してリボソームを触媒的に不活性化させるのに、わずか２４０残基しか必要としない（LaPointe, JBiol Chem 280: 23310-18 (2005)）。
ＳＬＴ－１Ａ（配列番号１）又はＳｔｘＡ（配列番号２）に由来する本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチド及び／又は細胞標的化分子の特定の実施形態において、これらの変化は、７５位におけるアスパラギン、７７位におけるチロシン、１１４位におけるチロシン、１６７位におけるグルタミン酸、１７０位におけるアルギニン、１７６位におけるアルギニンの置換、及び／又は２０３位におけるトリプトファンの置換を包含する。このような置換の例は、従来技術に基づき熟練した作業者に公知であると予想され、例えば、７５位におけるアスパラギンからアラニンへの置換、７７位におけるチロシンからセリンへの置換、１１４位におけるチロシンからセリンへの置換、１６７位におけるグルタミン酸からグルタミン酸への置換、１７０位におけるアルギニンからアラニンへの置換、１７６位におけるアルギニンからリシンへの置換、及び／又は２０３位におけるトリプトファンからアラニンへの置換である。志賀毒素の酵素活性及び／又は細胞毒性を強化するか又は低下させるかのいずれかの他の変異は本発明の範囲内であり、周知の技術及び本明細書で開示されたアッセイを使用して決定され得る。
本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド及び／又は細胞標的化分子は、１又は２以上の追加の薬剤にコン
ジュゲートされていてもよく、このような薬剤としては、本明細書で説明されるような薬剤を含む当業界において公知の治療剤及び／又は診断剤を挙げることができる。
Ｖ．本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド並びにそれを含む細胞標的化分子の一般的な機能
本発明は、細胞を標的化する細胞毒性分子及び診断用組成物などの様々な物質の組成物の成分として使用することができる、様々なＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチドを説明する。特定には、ＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチドは、がん、免疫障害、及び微生物感染を含む様々な疾患を治療するための特異的な細胞型の標的化された殺滅のための、例えば免疫毒素及びリガンド－毒素融合体などの様々なタンパク質治療剤の成分としての用途を有する。
本発明のいずれのＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化されたポリペプチドも、例えば両生類、鳥類、魚類、哺乳動物、爬虫類、又はサメなどの脊索動物内の特異的な細胞型への細胞の内在化を標的化する細胞標的化部分の付加により、有用な可能性がある治療用細胞標的化分子に加工することができる。同様に、本発明のいずれのＢ細胞エピトープの脱免疫化されたポリペプチドも、脊索動物内の特異的な細胞型への細胞の内在化を標的化する細胞標的化部分の付加により、有用な可能性がある治療用細胞標的化分子に加工することができる。本発明は、細胞毒性細胞標的化分子が、Ｔ細胞エピトープを選択的に送達する、特異的な細胞型を殺滅する、その成長を阻害する、それに外因性物質を送達する、及び／又はそれを検出するように細胞標的化を引き起こすための結合領域と機能的に関連するＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチドを含む様々な細胞毒性細胞標的化分子を提供する。この系は、本発明のあらゆるＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチドを多様な細胞型に標的化するために、あらゆる数の多様な結合領域を使用することができるモジュール式構造である。
ＭＨＣクラスＩ複合体によるＴ細胞の免疫原性エピトープペプチドの提示は、ＣＴＬ媒介細胞崩壊によって殺滅するために提示細胞を標的化する。ＭＨＣクラスＩペプチドを、標的細胞に内在化する治療剤のエフェクターポリペプチド成分を送達するプロテアソームに加工することによって、免疫刺激抗原の標的化された送達及び提示は、脊椎動物の標的細胞の内因性ＭＨＣクラスＩ経路を利用することにより達成することができる。例えば高い免疫原性を有する公知のウイルスエピトープ－ペプチドなどの免疫刺激性の非自己抗原の標的化された細胞による提示は、標的細胞を破壊して生物内の標的細胞部位により多くの免疫細胞を補充するための他の免疫細胞へのシグナルであり得る。
したがって、すでに細胞毒性を有する分子、例えば細胞毒性の毒素エフェクター領域を含む可能性のある治療剤などは、本発明の方法を使用してより細胞毒性の分子に加工したり、及び／又はエフェクターＴ細胞を介して作動する追加の細胞毒性メカニズムを有するように加工したりしてもよい。これらの複数の細胞毒性メカニズムは、相互に補完する可能性があり（例えば、直接の標的細胞殺滅と間接的な（ＣＴＬ媒介）細胞殺滅の両方を提供することによって）、互いに重複してバックアップする可能性があり（例えば、一方の細胞殺滅メカニズムを他方の非存在下で提供することによって）、及び／又は治療耐性の発生から保護する可能性がある（悪性又は感染細胞が進化して２種の異なる細胞殺滅メカニズムを同時にブロックする可能性がより低い状況に耐性を制限することによって）。
加えて、細胞毒性に関して毒素及び／又は酵素領域を頼る親の細胞毒性分子は、組み込まれたＴ細胞エピトープを用いるか、又は独立して変異若しくはトランケーションなどの他の手段によってＴ細胞エピトープを組み込むことと親分子の酵素活性を不活性化するこ
との両方による、Ｔ細胞エピトープのサイトゾルへの送達及び提示のみを介して、細胞毒性になるように加工してもよい。このアプローチは、１つの細胞毒性メカニズムを除去し、それと同時に別の細胞毒性メカニズムを追加し、局所領域への免疫刺激能力を追加する。さらに、細胞毒性に関して毒素及び／又は酵素領域を頼る親の細胞毒性分子は、異種Ｔ細胞エピトープを作製する配列変化によって酵素活性が低下されるか又は消去されるように親分子の酵素ドメインにＴ細胞エピトープを組み込むことにより、Ｔ細胞エピトープのサイトゾルへの送達及び提示のみを介して、細胞毒性になるように加工してもよい。これは、細胞に内在化させてサイトゾルに経路決定する能力を有する酵素的に細胞毒性の分子を、細胞毒性及び局所的な免疫刺激に関するＴ細胞エピトープのプロテアソーム送達及び提示を頼る酵素的に不活性な細胞毒性分子に一段階で改変することを可能にする。
Ａ．細胞表面上のＭＨＣクラスＩ提示のためのＴ細胞エピトープの送達
本発明の特定のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化されたポリペプチド及び細胞標的化分子の１つの機能は、細胞による１又は２以上のＭＨＣクラスＩ提示のためのＴ細胞エピトープの送達である。標的細胞のＭＨＣクラスＩ系への外因性Ｔ細胞エピトープペプチドの送達は、細胞表面上のＭＨＣクラスＩ分子と関連してＴ細胞エピトープペプチドを提示するように標的細胞を誘導するのに使用することができ、その後それによってＣＤ８＋エフェクターＴ細胞の活性化が引き起こされて標的細胞が攻撃される。
本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化されたポリペプチド及び細胞標的化分子の特定の実施形態は、標的細胞のプロテアソームに１又は２以上のＴ細胞エピトープを送達することが可能である。次いで送達されたＴ細胞エピトープは、タンパク質分解処理されて、ＭＨＣクラスＩ経路によって標的細胞の外部表面上に提示される。
本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化されたポリペプチド及び細胞標的化分子のこれらのＴ細胞エピトープ提示機能の適用は莫大である。哺乳類の生物におけるいずれの有核細胞も、ＭＨＣクラスＩ分子に複合化したそれらの細胞外面上における免疫原性Ｔ細胞エピトープペプチドのＭＨＣクラスＩ経路の提示が可能な場合がある。加えて、Ｔ細胞エピトープ認識の感度は、提示にＭＨＣ－Ｉペプチド複合体をごくわずかしか要しないほど優れており、すなわちエフェクターＴ細胞による認識にとって単一の複合体の提示で十分であり得る（Sykulev Y et al.,Immunity 4: 565-71 (1996)）。
異種Ｔ細胞エピトープを標的細胞表面上に提示させるには、Ｔ細胞エピトープを含むペプチドフラグメントが作製されて、ＭＨＣクラスＩ分子へのローディングのためにＥＲ内腔に輸送されるように、異種Ｔ細胞エピトープペプチドを送達するポリペプチドは標的細胞中のプロテアソームによって分解されなければならない。
加えて、ＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化されたポリペプチドは、まず標的細胞の内部に到達し、次いで標的細胞中でプロテアソームと接触しなければならない。標的細胞の内部に本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化されたポリペプチドを送達するために、本発明の細胞を標的化する分子は、標的細胞への内在化が可能でなければならない。本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化されたポリペプチドが細胞を標的化する分子の成分として内在化されたら、ＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化されたポリペプチドは、典型的には、例えばエンドサイトーシス小胞などの初期エンドソーム区画中に存在するようになる。次いでＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化されたポリペプチドは、少なくとも１つの無傷の異種Ｔ細胞エピトープと共に標的細胞のプロテアソームに到達する必要がある。
これらの機能は、当業界において熟練した作業者に公知の様々な標準的な方法によって検出及びモニターすることができる。例えば、Ｔ細胞エピトープペプチドを送達して、標的細胞のＭＨＣクラスＩ系によるエピトープペプチドの提示を促進する本発明の細胞標的
化分子の能力は、様々なインビトロ及びインビボのアッセイ、例えば、ＭＨＣクラスＩ／ペプチド複合体の直接の検出／可視化、異種Ｔ細胞エピトープペプチドのＭＨＣクラスＩ分子への結合親和性の測定、及び／又はＣＴＬ応答をモニターすることによる標的細胞上でのＭＨＣクラスＩ－エピトープペプチド複合体提示の機能的な結果の測定などを使用して調査することができる。
この本発明のポリペプチド及び分子の機能をモニターするための特定のアッセイは、インビトロ又はエクスビボでの特異的なＭＨＣクラスＩ／ペプチド抗原複合体の直接の検出を含む。ペプチド－ＭＨＣクラスＩ複合体の直接の可視化及び定量化にとって一般的な方法は、熟練した作業者に公知の様々な免疫検出試薬を含む。例えば、特異的なモノクローナル抗体を、特定のＭＨＣ／クラスＩ／ペプチド抗原複合体を認識するように開発することができる（Porgador A et al,Immunity 6: 715-26 (1997)）。同様に、可溶性で多量
体のＴ細胞受容体、例えばTCR-STAR試薬（Altor社、Mirmar、FL、U.S.）は、特異的なＭ
ＨＣ Ｉ／抗原複合体を直接可視化又は定量化するのに使用することができる（Zhu X etal., J Immunol 176: 3223-32 (2006)）。これらの特異的なｍＡｂ又は可溶性で多量体
のＴ細胞受容体は、例えば免疫組織化学、フローサイトメトリー、及び酵素結合免疫測定法（ＥＬＩＳＡ，enzyme-linkedimmuno assay）などの様々な検出方法と共に使用され得
る。
ＭＨＣ Ｉ／ペプチド複合体を直接同定及び定量化するための代替方法は、例えば、細胞表面からペプチド－ＭＣＨクラスＩ複合体を抽出し、次いでペプチドを精製し、配列決定と質量分析によって同定するProPresent抗原提示アッセイ（ProImmune, Inc.社、Sarasota、FL、U.S.）（Falk K et al., Nature 351: 290-6 (1991)）などの質量分析法を含む。
本発明のポリペプチド及び分子のＴ細胞エピトープの送達及びＭＨＣクラスＩ提示機能をモニターするための特定のアッセイは、ＭＨＣクラスＩ及びペプチドの結合と安定性をモニターするためのコンピューターによる方法及び／又は実験的方法を含む。ＭＨＣクラスＩ対立遺伝子へのエピトープペプチドの結合応答の予測に熟練した作業者が使用するための数種のソフトウェアプログラムが利用可能であり、例えば、免疫エピトープデータベース及び分析資源（ＩＥＤＢ、Immune Epitope Database and Analysis Resource）分析資源ＭＨＣ－Ｉ結合予測統一ツール（Kim Y et al., Nucleic AcidRes40:W525-30 (2012)などがある。数種の実験的アッセイが慣習的に適用されており、例えば結合速度を定量化及び／又は比較するための細胞表面結合アッセイ及び／又は表面プラズモン共鳴アッセイなどがある（Miles Ket al., Mol Immunol 48: 728-32 (2011)）。加えて、公知の対照と比較した、所与のＭＨＣクラスＩ対立遺伝子に関する三次元のＭＨＣ－ペプチド複合体を安定化させるペプチドの能力の測定に基づく他のＭＨＣ－ペプチド結合アッセイも開発されている（例えば、ProImmmune, Inc.社製のMHC-ペプチド結合アッセイ）。
その代わりに、細胞表面上でのＭＨＣクラスＩ／ペプチド抗原複合体の提示の結果の測定は、特異的な複合体に対する細胞傷害性Ｔ細胞（ＣＴＬ，cytotoxic T cell）応答をモニターすることによって行うことができる。これらの測定としては、ＭＨＣクラスＩ四量体又は五量体試薬によるＣＴＬの直接の標識付けが挙げられる。四量体又は五量体は、主要組織適合複合体（ＭＨＣ，Major Histocompatibility Complex）対立遺伝子及びペプチドの組合せによって決定された特定の特異性を有するＴ細胞受容体に直接結合する。加えて、特異的なＣＴＬ応答を同定するために、ＥＬＩＳＡ又は酵素結合免疫スポット（ＥＬＩｓｐｏｔ，enzyme-linked immunospot）による放出されたサイトカイン、例えばインターフェロンガンマ又はインターロイキンの定量化が一般的にアッセイされる。ＣＴＬの細胞毒性能力は、古典的な５１クロム（Ｃｒ）放出アッセイ又は代替の非放射性細胞毒性アッセイ（例えば、Promega社、Madison、WI、U.S.から入手可能な、CytoTox96（登録商標）非放射性キット及びCellTox（商標）CellTiter-GLO（登録商標）キット）、グランザイムＢ ＥＬＩＳｐｏｔ、カスパーゼアッセイ又はＬＡＭＰ－１トランスロケーションフローサイトメトリーアッセイなどの多数のアッセイを使用して測定することができる。標的細胞の殺滅を特異的にモニターするために、カルボキシフルオレセインジアセテートスクシンイミジルエステル（ＣＦＳＥ，Carboxyfluoresceindiacetate succinimidyl ester
）が、エピトープ特異的なＣＳＦＥ標識標的細胞の殺滅をモニターするためのインビトロ又はインビボでの調査にとって所望の細胞集団を容易且つ迅速に標識するのに使用することができる（Durward M et al., J Vis Exp 45 pii2250(2010)）。
インビボにおけるＭＨＣクラスＩ提示に対する応答に続いて、ＭＨＣクラスＩ／抗原促進物質（antigenpromoting agent）（例えば、ペプチド、タンパク質又は不活性化／弱
毒化ウイルスワクチン）を投与し、続いて活性薬剤（例えばウイルス）で負荷を与え、その物質に対する応答を、典型的にはワクチン非接種の対照と比較してモニターすることができる。エクスビボのサンプルは、ＣＴＬ活性に関して、これまでに説明した方法（例えばＣＴＬ細胞毒性アッセイ及びサイトカイン放出の定量化）に類似した方法でモニターすることができる。
ＨＬＡ－Ａ、ＨＬＡ－Ｂ、及び／又はＨＬＡ－Ｃ分子は、免疫親和性（例えば、抗ＭＨＣ抗体の「プルダウン」精製）を使用して溶解後に毒素を受けた細胞から単離され、精製された複合体から関連するペプチド（すなわち、単離されたＭＨＣ分子によって提示されるペプチド）が回収される。回収されたペプチドは、配列決定と質量分析によって分析される。質量分析データは、外因性（非自己）ペプチド（Ｔ細胞エピトープＸ）の配列からなるタンパク質データベースライブラリー及びヒトの国際的なタンパク質インデックス（代表的な「自己」又は非免疫原性ペプチド）と比較される。ペプチドは、確率データベースに従って有意性により格付けされる。全ての検出された抗原性（非自己）ペプチド配列が列挙される。データは、スクランブル化したデコイデータベースを検索して誤ったヒットを減らすことによって検証される（例えばMa B, Johnson R, Mol Cell Proteomics 11:O111.014902 (2012)を参照）。その結果は、Ｔ細胞エピトープＸからのペプチドが、毒素を受けた標的細胞の表面上でＭＨＣ複合体において提示されることを実証することになる。
提示されたペプチド－抗原－ＭＨＣ複合体のセットは、発現された抗原特異的なＨＬＡ分子によって細胞間で異なっている可能性がある。そのためＴ細胞は、異なる抗原特異性を有する異なるＴＣＲ分子を使用して細胞表面上に表示された特異的なペプチド－抗原－ＭＨＣ複合体を認識する可能性がある。
複数のＴ細胞エピトープは、本発明の細胞標的化分子によって送達されてもよく、例えば単一のプロテアソームが送達するエフェクターポリペプチド中に２又は３以上の異なるＴ細胞エピトープを組み込むことによって送達されてもよいことから、本発明の単一の細胞標的化分子は、異なるＭＨＣクラスバリアントを有する同じ種の有効な脊索動物のものであってもよく、例えば異なるＨＬＡ対立遺伝子を有するヒトにおけるものなどである。これは、ＭＨＣ複合体タンパク質の多様性及び多型に基づき、対象の異なる部分集団において異なるＴ細胞エピトープと異なる有効性とを同時に組み合わせることを可能にする（例えばYuhki N et al., J Hered 98: 390-9 (2007)を参照）。例えば、ヒトＭＨＣ複合体タンパク質、ＨＬＡタンパク質は、遺伝学的先祖、例えばアフリカ人（サハラ以南）、アメリカインディアン、コーカソイド、モンゴロイド、ニューギニア人及びオーストラリア人、又は太平洋諸島の人々をベースとするヒト間でも様々である（例えばWang M, Claesson M, Methods MolBiol1184:309-17 (2014)を参照）。
Ｔ細胞応答の活性化は、特定の抗がん、抗新生物、抗腫瘍及び／又は抗微生物性の生物
学的薬物にとって、標的化された細胞に対する患者自身の免疫系を刺激するのに望ましい特徴である。またロバストで強力なＴ細胞応答の活性化も、多くのワクチンの望ましい特徴である（Aly HA, J Immunol Methods 382: 1-23 (2012)）。生物内での標的細胞によるＴ細胞エピトープの提示は、標的細胞及び／又はその生物内の一般的な場所に対するロバストな免疫応答の活性化をもたらすことができる。したがって、提示のためのＴ細胞エピトープの標的化された送達は、治療レジメン中にＴ細胞応答の活性化を操作するために利用される可能性がある。
Ｂ．標的化された細胞毒性及び／又はＣＴＬ補充を介した細胞殺滅
本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチドを含む本発明の細胞標的化分子は、以下の両方：１）ＭＨＣクラスＩ提示のための細胞型特異的なＴ細胞エピトープの送達及び２）有力な細胞毒性を提供することができる。加えて、本発明の細胞標的化分子の特定の実施形態はまた、哺乳動物に投与した場合に特定の免疫応答が起こる可能性を低下させる脱免疫化も提供する。
本発明の細胞標的化分子の特定の実施形態において、細胞標的化部分（例えば細胞標的化結合領域）の細胞外標的生体分子と物理的に組み合わされた細胞を接触させるときに、本発明の細胞標的化分子は、細胞の死を引き起こすことが可能である。細胞殺滅のメカニズムは、例えば毒素エフェクター領域の酵素活性を介した直接のメカニズムであってもよいし、又はＣＴＬ媒介細胞崩壊を介した間接的なメカニズムであってもよく、さらに、エクスビボで操作された標的細胞、インビトロで培養された標的細胞、インビトロで培養された組織サンプル中の標的細胞、又はインビボの標的細胞などの標的細胞の様々な条件下にあってもよい。
１．Ｔ細胞エピトープの送達及びＭＨＣクラスＩ提示を介した間接的な細胞殺滅
本発明の、Ｂ細胞エピトープの脱免疫化がなされた又はなされていないＴ細胞エピトープを送達するＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化されたポリペプチドは、間接的な細胞殺滅のための細胞標的化分子の成分として使用することができる。本発明の細胞標的化分子の特定の実施形態は、細胞標的化分子の標的内在化の際に標的細胞のＭＨＣクラスＩ提示経路に１又は２以上のＴ細胞エピトープを送達する本発明のポリペプチドを提示するＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを含むことから、それらは細胞毒性である。
本発明の細胞標的化分子の特定の実施形態において、細胞標的化部分（例えば細胞標的化結合領域）の細胞外標的生体分子と物理的に組み合わされた細胞を接触させるときに、本発明の細胞標的化分子は、例えば標的細胞による１又は２以上のＴ細胞エピトープの提示とそれに続くＣＴＬ補充を介して、細胞の死を間接的に引き起こすことが可能である。
２．細胞標的化毒素の細胞毒性を介した直接の細胞殺滅
本発明のＴ細胞エピトープを送達するＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチドは、直接の細胞殺滅のための細胞標的化分子の成分として使用することができる。
多くの天然に存在する毒素は真核細胞を殺滅するようになっているため、毒素によって誘導されたプロテアソームを送達するエフェクター領域を使用して設計された細胞毒性タンパク質は、有力な細胞殺滅活性を示すことができる。特定には、プロテアソームを送達するエフェクター領域は、リボトキシンの毒素エフェクターポリペプチドも含む可能性もある。しかしながら、他の毒素エフェクター領域は、本発明の細胞標的化分子、例えば、リボソームを触媒的に不活性化しないが他のメカニズムにより細胞毒性である毒素からのポリペプチドなどでの使用に検討される。例えば、コリックス毒素、易熱性エンテロトキシン、及びＧｓアルファサブユニットを攻撃することによる百日咳毒素のヘテロ三量体Ｇ
タンパク質である。
ＡＢｘ毒素スーパーファミリーの多くのメンバーのＡサブユニットは、細胞のサイトゾルに一度入れば真核細胞を殺滅することが可能な酵素ドメインを含む。複数のＡＢｘ毒素によって誘導された毒素酵素ドメインを含むポリペプチド内でのＴ細胞エピトープでのＢ細胞エピトープの置き換えは、それらの酵素活性を有意に変更しない。したがって、本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチドは、潜在的に、２つの細胞殺滅メカニズムを提供することができる。
本発明の細胞標的化分子の特定の実施形態は、活性な毒素成分を含む本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチドを含むことから、それらは細胞毒性である。
本発明の細胞標的化分子の特定の実施形態において、細胞標的化部分（例えば細胞標的化結合領域）の細胞外標的生体分子と物理的に組み合わされた細胞を接触させるときに、本発明の細胞標的化分子は、例えば毒素エフェクター領域の酵素活性などを介して、細胞の死を直接引き起こすことが可能である。
Ｃ．脱免疫化は、哺乳動物への投与を含む適用を改善する
本発明のポリペプチド及び細胞標的化分子は、哺乳動物において望ましくない免疫応答が生じる可能性を低下させながら哺乳動物において望ましい免疫応答が生じる可能性を増加させるために、治療剤及び／又は診断剤のいずれかとしての哺乳動物種への投与に関する改善された有用性を有する。
本発明の特定のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化された毒素によって誘導されたポリペプチドは、様々な哺乳動物に投与される場合、それらの抗原性プロファイルの点で異なっている可能性があるが、Ｂ細胞及び／又はＣＤ４＋Ｔ細胞の抗原性及び／又は免疫原性の低下を示すと予測される。特定の実施形態において、脱免疫化されたＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化されたポリペプチドを誘導した元の毒素ポリペプチドの所望の生物学的機能は、Ｂ細胞エピトープを破壊してＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを付加した後でも本発明のポリペプチドにおいて保存される。加えて、Ｂ細胞エピトープは、成熟ＣＤ４＋Ｔ細胞のエピトープと同時に存在するか又は重複することが多いことから、Ｂ細胞エピトープの破壊は、同時にＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープを崩壊することが多い。
Ｄ．細胞型間で選択的な細胞毒性
本発明の特定の細胞標的化分子は、非標的化バイスタンダー細胞の存在下における特異的な標的細胞の選択的な殺滅において用途を有する。標的細胞のＭＨＣクラスＩ経路への免疫原性Ｔ細胞エピトープの送達を標的化することによって、それに続く本発明の細胞標的化分子により誘導されたＴ細胞エピトープの提示及び標的細胞のＣＴＬ媒介細胞崩壊を、非標的化細胞の存在下で選択された細胞型を優先的に殺滅することに限定することができる。加えて、様々な毒素エフェクター領域の有力な細胞毒性活性による標的細胞の殺滅は、免疫原性Ｔ細胞エピトープと細胞毒性の毒素エフェクターポリペプチドの同時送達により標的細胞を優先的に殺滅することに限定することができる。
特定の実施形態において、細胞型の混合物に本発明の細胞標的化分子を投与するとき、細胞標的化分子は、細胞外標的生体分子と物理的に組み合わされていない細胞型と比較して、細胞外標的生体分子と物理的に組み合わされた細胞を選択的に殺滅することが可能である。多くの毒素、例えばＡＢｘ及びリボトキシンファミリーのメンバーなどは真核細胞の殺滅に適していることから、毒素エフェクター領域を使用して設計された細胞毒性タン
パク質は、有力な細胞毒性活性を示す可能性がある。高親和性の結合領域を使用して特異的な細胞型への酵素的に活性な毒素エフェクター領域の送達を標的化することによって、この有力な細胞殺滅活性を、標的化が望ましい細胞型と選ばれた結合領域の標的生体分子との物理的な関連によってそのような細胞型のみを殺滅することに限定することができる。
特定の実施形態において、本発明の細胞毒性細胞標的化分子は、２又は３以上の異なる細胞型の混合物内で特異的な細胞型の死を選択的又は優先的に引き起こすことが可能である。これは、高い優先性で、例えば標的生体分子を発現しない「バイスタンダー」細胞型に対して３倍の細胞毒性作用で、細胞毒性活性を特異的な細胞型に標的化することを可能にする。その代わりに、標的生体分子が十分低い量で発現されるか及び／又は標的化されるべきではない細胞型と少量で物理的に組み合わされる場合、結合領域の標的生体分子の発現は、１つの細胞型に限られない場合がある。これは、高い優先性で、例えば有意な量の標的生体分子を発現しないか、又は有意な量の標的生体分子と物理的に組み合わされない「バイスタンダー」細胞型に対して３倍の細胞毒性作用で、細胞殺滅を特異的な細胞型に標的化することを可能にする。
特定のさらなる実施形態において、２種の異なる細胞型集団に細胞毒性細胞標的化分子を投与するとき、細胞毒性細胞標的化分子は、そのメンバーが細胞毒性タンパク質の結合領域の細胞外標的生体分子を発現する標的細胞集団に対する半最大細胞毒性濃度（ＣＤ５０、half-maximal cytotoxic concentration）が、そのメンバーが細胞毒性タンパク質の結合領域の細胞外標的生体分子を発現しない細胞集団に対する同じ細胞毒性タンパク質のＣＤ５０用量の少なくとも３分の１の用量であることによって定義されるような細胞死を引き起こすことが可能である。
特定の実施形態において、細胞外標的生体分子と物理的に組み合わされた細胞型集団に対する細胞毒性活性は、結合領域のいかなる細胞外標的生体分子とも物理的に組み合わされていない細胞型集団に対する細胞毒性活性より少なくとも３倍高い。本発明によれば、選択的な細胞毒性は、（ａ）結合領域の標的生体分子と物理的に組み合わされた特異的な細胞型の細胞集団に対する細胞毒性の、（ｂ）結合領域の標的生体分子と物理的に組み合わされていない細胞型の細胞集団に対する細胞毒性に対する比率（ａ／ｂ）に関して定量化されてもよい。特定の実施形態において、細胞毒性の比率は、結合領域の標的生体分子と物理的に組み合わされた細胞集団又は細胞型について、結合領域の標的生体分子と物理的に組み合わされていない細胞集団又は細胞型と比較して、少なくとも３倍、５倍、１０倍、１５倍、２０倍、２５倍、３０倍、４０倍、５０倍、７５倍、１００倍、２５０倍、５００倍、７５０倍、又は１０００倍高い選択的な細胞毒性であることを示す。
この優先的な細胞殺滅機能は、様々な条件下で、非標的化バイスタンダー細胞の存在下で、例えばエクスビボで操作された細胞型の混合物、インビトロで細胞型の混合物と共に培養された組織、又はインビボの複数の細胞型の存在下で（例えばインサイチュで、又は多細胞生物内におけるその天然位置で）本発明の特定の細胞毒性細胞標的化分子によって、標的化された細胞を殺滅することを可能にする。
Ｅ．標的化細胞内部への追加の外因性物質の送達
細胞毒性及び細胞増殖抑制性の適用に加えて、本発明の細胞標的化分子は、情報収集及び診断機能のために使用されてもよい。さらに、本発明の細胞毒性細胞標的化分子の非毒性バリアント、又は毒性バリアントは、細胞毒性タンパク質の細胞外標的生体分子と物理的に組み合わされた細胞に追加の外因性物質を送達すること、及び／又はそのような細胞の内部を標識することに使用されてもよい。少なくとも１つの細胞表面に標的生体分子を発現する様々な種類の細胞及び／又は細胞集団は、外因性物質を受け取るために本発明の
細胞標的化分子によって標的化されてもよい。本発明の機能的な成分は、モジュール式構造であり、それにおいて、様々な毒素エフェクター領域及び追加の外因性物質が、腫瘍細胞の非侵襲的なインビボでのイメージングなどの多様な適用を提供するために様々な結合領域に連結されていてもよい。
本発明の細胞標的化分子は、それらの非毒性形態を含めて、その結合領域によって認識される細胞外標的生体分子と物理的に組み合わされた細胞に侵入することが可能であることから、本発明の細胞標的化分子の特定の実施形態は、標的化された細胞型の内部に追加の外因性物質を送達するのに使用することができる。ある意味では、本発明の細胞標的化分子全体が細胞に侵入する外因性物質であり、したがって「追加の」外因性物質は、コアの細胞標的化分子そのもの以外に連結される異種物質である。Ｔ細胞エピトープ付加後に非毒性になるＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチドは、それでもなお細胞に外因性物質を送達するのに有用であり得る（例えばＴ細胞エピトープの置き換えが、毒素エフェクター領域の触媒機能にとって重要なアミノ酸残基と重複する）。
「追加の外因性物質」は、本明細書で使用される場合、一般的にネイティブの標的細胞内に提示されないことが多い１又は２以上の分子を指し、本発明のタンパク質は、細胞の内部にこのような材料を特異的に輸送するのに使用することができる。追加の外因性物質の非限定的な例は、ペプチド、ポリペプチド、タンパク質、ポリヌクレオチド、小分子の化学療法剤、及び検出促進剤である。
特定の実施形態において、追加の外因性物質は、酵素を含むタンパク質又はポリペプチドを含む。特定の他の実施形態において、追加の外因性物質は、核酸であり、例えば低分子阻害ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ，small inhibiting RNA）又はマイクロＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ，microRNA）として機能するリボ核酸などである。特定の実施形態において、追加の外因性物質は、抗原であり、例えば、細菌タンパク質、ウイルスタンパク質、がんにおいて変異したタンパク質、がんにおいて異常に発現されたタンパク質、又はＴ細胞相補性決定領域に由来する抗原などである。例えば、外因性物質としては、抗原、例えば細菌感染した抗原提示細胞に特徴的な抗原、及び外因性抗原として機能することが可能なＴ細胞相補性決定領域が挙げられる。外因性物質のさらなる例としては、酵素などの抗原性ペプチドよりも大きいポリペプチド及びタンパク質が挙げられる。ポリペプチド又はタンパク質を含む外因性物質は、熟練した作業者にとって公知か又は未知かにかかわらず１又は２以上の抗原を含んでいてもよい。
Ｆ．診断機能のための情報収集
本発明の特定の細胞標的化分子は、インビトロ及び／又はインビボにおける特異的な細胞、細胞型、及び／又は細胞集団の検出において用途を有する。特定の実施形態において、本明細書で説明されるタンパク質は、診断と治療の両方、又は診断単独に使用される。診断と治療の両方に同じ細胞毒性タンパク質が使用される場合、診断のための検出促進剤を取り入れている細胞毒性タンパク質バリアントは、本明細書で説明される例示的な置換などの１又は２以上のアミノ酸置換を介した毒素エフェクター領域の触媒による不活性化によって非毒性にされてもよい。検出促進剤にコンジュゲートされる本発明の細胞毒性細胞標的化分子の非毒性形態は、診断機能に、例えば同じ又は関連する結合領域を含む治療レジメンと共に使用されるコンパニオン診断に使用されてもよい。
当業界において公知の検出促進剤を様々な本発明の細胞標的化分子にコンジュゲートする能力は、がん、腫瘍、免疫及び感染細胞の検出に有用な組成物を提供する。これらの本発明の細胞標的化分子の診断の実施形態は、当業界において公知の様々なイメージング技術及びアッセイを介した情報収集に使用される可能性がある。例えば、本発明の細胞標的
化分子の診断の実施形態は、患者又は生検サンプルにおける個々のがん細胞、免疫細胞、又は感染細胞の細胞内のオルガネラ（例えばエンドサイトーシス、ゴルジ、小胞体、及びサイトゾル区画）のイメージングを介した情報収集に使用される可能性がある。
様々な種類の情報は、診断での使用のためか又は他の使用のためかにかかわらず、本発明の細胞標的化分子の診断の実施形態を使用して収集することができる。この情報は、例えば、新生細胞のタイプを診断すること、患者の疾患の治療感受性を決定すること、経時的に抗新生物療法の進行をアッセイすること、経時的に免疫調節療法の進行をアッセイすること、経時的に抗菌療法の進行をアッセイすること、移植材料中の感染細胞の存在を評価すること、移植材料中の不要な細胞型の存在を評価すること、及び／又は腫瘤の外科的切除後に残留した腫瘍細胞の存在を評価することにおいて有用であり得る。
例えば、本発明の細胞標的化分子の診断用バリアントを使用して収集された情報を使用して患者の部分集団を確認できる可能性があり、そうなれば、個々の患者を、そのような診断の実施形態を使用して解明されたそれらの固有の特徴に基づき部分集団に類別することができる。例えば、具体的な医薬品又は療法の有効性が、患者の部分集団を定義するのに使用される基準の１つのタイプとなる可能性がある。例えば、本発明の特定の細胞毒性細胞標的化分子の非毒性の診断用バリアントは、どの患者が、同じ本発明の細胞標的化分子の細胞毒性バリアントに対して陽性に応答すると予測される患者のクラス又は部分集団に属するのかを識別するのに使用することができる。したがって、本発明の細胞毒性細胞標的化分子の非毒性バリアントを含む本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化された細胞標的化分子を使用した患者の同定、患者の層別化、及び診断のための関連方法は、本発明の範囲内であるとみなされる。
VII．本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の
脱免疫化されたポリペプチド及びそれを含む細胞標的化分子の産生、製造、及び精製
本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド及び細胞標的化分子は、当業者に周知の生化学工学の技術を使用して産生され得る。例えば、本発明のポリペプチド及び細胞標的化分子は、標準的な合成方法、組換え発現系の使用、又は他のあらゆる好適な方法によって製造され得る。したがって、本発明のポリペプチド及び細胞標的化タンパク質は、多数の方法で合成することが可能であり、このような方法としては、例えば、（１）標準的な固相又は液相の手法を使用して、段階的に又はフラグメントのアセンブリのいずれかによってタンパク質のポリペプチド又はポリペプチド成分を合成するステップと、最終的なペプチド化合物生成物を単離し精製するステップとを含む方法；（２）宿主細胞中の本発明の細胞標的化タンパク質のポリペプチド又はポリペプチド成分をコードするポリヌクレオチドを発現させるステップと、宿主細胞又は宿主細胞培養から発現生成物を回収するステップとを含む方法；又は（３）インビトロで本発明の細胞標的化タンパク質のポリペプチド又はポリペプチド成分をコードするポリヌクレオチドを無細胞発現させるステップと、発現生成物を回収するステップとを含む方法；又は（１）、（２）又は（３）の方法のあらゆる組合せによって、ペプチド成分のフラグメントを得て、その後フラグメントを合体させ（例えばライゲートして）ペプチド成分を得て、ペプチド成分を回収する方法が挙げられる。
本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／若しくはＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド又は細胞標的化タンパク質のタンパク質若しくはポリペプチド成分を、固相又は液相ペプチド合成の手段によって合成することが好ましい場合がある。本発明のポリペプチド及び細胞標的化分子は、好適には、標準的な合成方法によって製造されてもよい。したがって、ペプチドは、例えば、標準的な固相又は液相手法で、段階的に又はフラグメントのアセンブリのいずれかによってペプチドを合成するステップと、最終的なペプチド生成物を単離し精製するステップとを含む方法によって合成されてもよい。これに関して、国際公開第１９９８／１１１２５号パンフレット、又はとりわけFields G et al.,Principles and Practice of Solid-Phase PeptideSynthesis（SyntheticPeptides, Grant G, ed., OxfordUniversity Press,U.K.,2nd ed., 2002）及びそこに記載された合成の実施例を参照してもよい。
本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド及び細胞毒性の細胞標的化タンパク質は、当業界において周知の組換え技術を使用して調製（産生及び精製）されてもよい。一般的に、コード化ポリヌクレオチドを含むベクターで形質転換又はトランスフェクトされた宿主細胞を培養すること、及び細胞培養からポリペプチドを回収することによってポリペプチドを調製するための方法は、例えばSambrook J et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual （Cold Spring Harbor Laboratory Press, NY, U.S., 1989）、Dieffenbach C et al., PCR Primer: A Laboratory Manual （Cold Spring Harbor Laboratory Press, N.Y., U.S., 1995）で説明されている。本発明のポリペプチド及び／又は細胞標的化タンパク質を産生するために、あらゆる好適な宿主細胞を使用することができる。宿主細胞は、本発明のポリペプチドの発現を駆動させる１又は２以上の発現ベクターで安定して若しくは一時的にトランスフェクションされた、形質転換された、形質導入された、又は感染した細胞であり得る。加えて、本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド及び／又は細胞標的化タンパク質は、変化した細胞毒性、変化した細胞増殖抑制作用、及び／又は変化した血清中半減期などの所望の特性を達成するために、１又は２以上のアミノ酸の変更又は１又は２以上のアミノ酸の欠失若しくは挿入をもたらす本発明のポリペプチド又は細胞標的化タンパク質をコードするポリヌクレオチドの改変によって産生されてもよい。
本発明のポリペプチド又は細胞標的化タンパク質を産生するために選ばれる可能性がある多種多様の発現系がある。例えば、本発明の細胞標的化タンパク質の発現のための宿主生物としては、原核生物、例えば大腸菌（E. coli）及び枯草菌（B. subtilis）、真核細胞、例えば酵母及び糸状菌（Ｓ．セレビジエ（S. cerevisiae）、Ｐ．パストリス（P. pastoris）、黒麹菌（A. awamori）、及びＫ．ラクティス（K. lactis）など）、藻類（コナミドリムシ（C. reinhardtii）など）、昆虫細胞株、哺乳動物細胞（ＣＨＯ細胞など）、植物細胞株、並びに真核生物、例えばトランスジェニック植物（シロイスナズナ（A. thaliana）及びベンサミアナタバコ（N. benthamiana）など）が挙げられる。
したがって、本発明はまた、上記で列挙した方法に従って、本発明の細胞標的化タンパク質の本発明のポリペプチド若しくはポリペプチド成分の一部若しくは全てをコードするポリヌクレオチド、宿主細胞に導入される場合は本発明のポリペプチドの一部若しくは全てをコードすることが可能な本発明の少なくとも１つのポリヌクレオチドを含む発現ベクター、及び／又は本発明のポリヌクレオチド若しくは発現ベクターを含む宿主細胞を使用して、本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド及び／又は細胞標的化タンパク質を産生するための方法も提供する。
組換え技術を使用して宿主細胞又は無細胞系中でポリペプチド又はタンパク質が発現される場合、高純度を有するか又は実質的に均一な調製物を得るために、宿主細胞の要素などの他の成分から所望のポリペプチド又はタンパク質を分離（又は精製）することが有利である。精製は、当業界において周知の方法、例えば遠心分離技術、抽出技術、クロマトグラフ及び画分化技術（例えばゲルろ過によるサイズ分離、イオン交換カラム、疎水性相互作用クロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー、シリカでのクロマトグラフィー又はカチオン交換樹脂、例えばＤＥＡＥなどによる電荷分離、クロマトフォーカシング、及び汚染物質を除去するためのプロテインＡセファロースクロマトグラフィー）、並びに沈
殿技術（例えばエタノール沈殿又は硫酸アンモニウム沈殿）によって達成することができる。本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／若しくはＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド並びに／又は細胞標的化分子の純度を増加させるために、相当数の生化学精製技術を使用することができる。特定の実施形態において、本発明のポリペプチド及び細胞標的化分子は、ホモ多量体の形態（すなわち２又は３以上の本発明の同一なポリペプチド又は細胞標的化分子のタンパク質複合体）で精製されてもよい。
以下の実施例は、本発明のポリペプチド又は細胞標的化分子を産生するための方法の非限定的な例、加えて本発明の例示的な細胞標的化分子の産生の具体的な、ただし非限定的な態様の説明である。
VIII．本発明のＴ細胞の高度免疫化された及び／若しくはＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド又はそれを含む細胞標的化分子を含む医薬及び診断用組成物
本発明は、以下のさらなる詳細で説明される状態、疾患、障害、又は症状（例えばがん、悪性腫瘍、非悪性腫瘍、成長異常、免疫障害、及び微生物感染）の治療又は防止のための医薬組成物において、単独で、又は１又は２以上の追加の治療剤と組み合わせて使用するためのポリペプチド及びタンパク質を提供する。本発明はさらに、本発明に従って、少なくとも１つの薬学的に許容される担体、賦形剤、又は媒体と共に、本発明のポリペプチド若しくは細胞標的化分子、又はそれらの薬学的に許容される塩若しくは溶媒和物を含む医薬組成物を提供する。特定の実施形態において、本発明の医薬組成物は、本発明のポリペプチド又は細胞標的化分子のホモ多量体及び／又はヘテロ多量体の形態を含んでいてもよい。医薬組成物は、以下のさらなる詳細で説明される疾患、状態、障害、又は症状を治療、緩和又は予防する方法において有用であると予想される。このような疾患、状態、障害、又は症状はそれぞれ、本発明に係る医薬組成物の使用に対して別の実施形態であると想定される。本発明は、さらに、以下でより詳細に説明されるように、少なくとも１つの本発明に係る治療方法で使用するための医薬組成物を提供する。
用語「患者」及び「対象」は、本明細書で使用される場合、同義的に使用され、あらゆる生物、一般的に脊椎動物、例えば少なくとも１つの疾患、障害、又は状態の症状、症候、及び／又は徴候を示すヒト及び動物を指す。これらの用語は、哺乳動物、例えば霊長類の非限定的な例、家畜動物（例えばウシ、ウマ、ブタ、ヒツジ、ヤギなど）、コンパニオンアニマル（例えばネコ、イヌなど）及び実験動物（例えばマウス、ウサギ、ラットなど）を包含する。
本明細書で使用される場合、「治療する」、「治療すること」、又は「治療」及びそれらの文法上の変化形は、有益な又は所望の臨床結果を得るためのアプローチを指す。この用語は、状態、障害若しくは疾患の発病又は進行速度を遅延させること、それに関連する症状を低減又は軽減すること、状態の完全又は部分退縮をもたらすこと、又は上記いずれかのいくつかの組合せを指す場合もある。本発明の目的に関して、有益な又は所望の臨床結果としては、これらに限定されないが、検出可能か又は検出不可能かにかかわらず、症状の低減又は軽減、疾患の程度の減少、疾患の状況の安定化（例えば悪化しないこと）、疾患進行の遅延又は減速、病状の緩和又は一時的緩和、及び寛解（部分又は完全にかかわらず）が挙げられる。「治療する」、「治療すること」、又は「治療」はまた、治療を受けない場合に予測される生存時間と比べて生存を長くすることを意味する場合もある。したがって治療が必要な対象（例えばヒト）は、すでに問題の疾患又は障害に罹っている対象であり得る。用語「治療する」、「治療すること」、又は「治療」は、治療しない場合と比較して病理学的状況又は症状の重症度の増加を阻害又は低減することを包含し、関連する疾患、障害、又は状態の完全な停止を暗に示すことを必ずしも意味するわけではない。腫瘍及び／又はがんに関して、治療は、全体的な腫瘍負荷量及び／又は個々の腫瘍サイズの低減を包含する。
本明細書で使用される場合、用語「予防する」、「予防すること」、「予防」及びそれらの文法上の変化形は、状態、疾患、若しくは障害の発症を予防する、又はその病状を変更するためのアプローチを指す。したがって、「予防」は、防止的又は予防的措置を指す場合もある。本発明の目的に関して、有益な又は所望の臨床結果としては、これらに限定されないが、検出可能か又は検出不可能かにかかわらず、疾患の症状、進行又は発症の予防又は減速が挙げられる。したがって予防が必要な対象（例えばヒト）は、まだ問題の疾患又は障害に罹っていない対象であり得る。用語「予防」は、治療しない場合と比較して疾患の発病を減速させることを包含し、関連する疾患、障害又は状態の永続的な予防を暗に示すことを必ずしも意味するわけではない。したがって状態を「予防すること」又は状態の「予防」は、特定の状況において、状態を発症する危険を低下させること、又は状態に関連する症状の発症を予防若しくは遅延することを指す場合がある。
「有効量」又は「治療有効量」は、本明細書で使用される場合、標的の状態を予防若しくは治療すること、又は状態に関連する症状を有利に軽減することなどの対象における少なくとも１つの望ましい治療効果を生じる組成物（例えば治療用組成物又は薬剤）の量又は用量である。最も望ましい治療有効量は、それを必要とする所与の対象について当業者によって選択された特定の治療の望ましい効能を生じると予想される量である。この量は、これらに限定されないが、治療化合物の特徴（活性、薬物動態学、薬力学、及び生物学的利用率など）、対象の生理学的状態（年齢、性別、疾患のタイプ、疾患の段階、全般的な身体状態、所与の投薬量に対する反応性、及び薬物療法のタイプなど）、製剤中の薬学的に許容される１又は複数の担体の性質、及び投与経路などの熟練した作業者によって理解されている様々な要因に応じて異なると予想される。臨床及び薬理学分野における熟練者は、慣例的な実験を介して、すなわち化合物の投与に対する対象の応答をモニターし、それに応じて投薬量を調整することによって治療有効量を決定することが可能であると予想される（例えばRemington: The Science and Practice of Pharmacy （Gennaro A, ed., Mack Publishing Co., Easton, PA, U.S., 19th ed.,1995）を参照）。
診断用組成物は、本発明のポリペプチド又は細胞標的化分子及び１又は２以上の検出促進剤を含む。同位体、色素、比色法用の薬剤、コントラスト増強剤、蛍光剤、生物発光剤、及び磁気性の薬剤などの様々な検出促進剤が当業界において公知である。これらの薬剤は、本発明のポリペプチド又は細胞標的化分子にあらゆる位置で取り込まれていてもよい。薬剤の取り込みは、タンパク質のアミノ酸残基を介して、又はリンカー及び／又はキレート化剤を介した連結などの当業界において公知のいくつかのタイプの連結を介していてもよい。薬剤の取り込みは、スクリーニング、アッセイ、診断手順、及び／又はイメージング技術において診断用組成物の存在の検出が可能になるような方法でなされる。
本発明の診断用組成物を生産又は製造する場合、本発明の細胞標的化分子は、１又は２以上の検出促進剤に直接的又は間接的に連結されてもよい。情報収集方法のために、例えば生物の疾患、障害、又は状態に対する診断及び／又は予後の適用のために、本発明のポリペプチド又は細胞標的化分子に機能するように連結できる、熟練した作業者に公知の極めて多くの検出促進剤がある（例えばCai W et al., J Nucl Med 48: 304-10 (2007)、Nayak T, Brechbiel M, BioconjugChem20:825-41 (2009)、Paudyal P et al., Oncol Rep
22: 115-9 (2009)、Qiao J et al., PLoSONE 6: e18103 (2011)、Sano K et al., Breast
Cancer Res14: R61 (2012)を参照）。例えば、検出促進剤としては、画像を強調す
る造影剤、例えば蛍光色素（例えばAlexa680、インドシアニングリーン、及びＣｙ５．５）、同位体及び放射性核種、例えば１１Ｃ、１３Ｎ、１５Ｏ、１８Ｆ、３２Ｐ、５１Ｍｎ、５２ｍＭｎ、５２Ｆｅ、５５Ｃｏ、６２Ｃｕ、６４Ｃｕ，６７Ｃｕ、６７Ｇａ、６８Ｇａ、７２Ａｓ、７３Ｓｅ、７５Ｂｒ、７６Ｂｒ、８２ｍＲｂ、８３Ｓｒ、８６Ｙ、９０Ｙ、８９Ｚｒ、９４ｍＴｃ、９４Ｔｃ、９９ｍＴｃ、１１０Ｉｎ、１１１Ｉｎ、１２０Ｉ、
１２３Ｉ、１２４Ｉ、１２５Ｉ、１３１Ｉ、１５４Ｇｄ、１５５Ｇｄ、１５６Ｇｄ、１５７Ｇｄ、１５８Ｇｄ、１７７Ｌｕ、１８６Ｒｅ、１８８Ｒｅ、及び２２３Ｒ；常磁性イオン、例えばクロム（ＩＩＩ）、マンガン（ＩＩ）、鉄（ＩＩＩ）、鉄（ＩＩ）、コバルト（ＩＩ）、ニッケル（ＩＩ）、銅（ＩＩ）、ネオジム（ＩＩＩ）、サマリウム（ＩＩＩ）、イッテルビウム（ＩＩＩ）、ガドリニウム（ＩＩＩ）、バナジウム（ＩＩ）、テルビウム（ＩＩＩ）、ジスプロシウム（ＩＩＩ）、ホルミウム（ＩＩＩ）又はエルビウム（ＩＩＩ）；金属、例えばランタン（ＩＩＩ）、金（ＩＩＩ）、鉛（ＩＩ）、及びビスマス（ＩＩＩ）；超音波コントラスト増強剤、例えばリポソーム；放射線不透物質、例えばバリウム、ガリウム、及びタリウム化合物が挙げられる。検出促進剤は、中間官能基、例えば２－ベンジルＤＴＰＡ、ＰＡＭＡＭ、ＮＯＴＡ、ＤＯＴＡ、ＴＥＴＡ、それらの類似体、及び前述のもののいずれかの機能的な均等物のようなキレート化剤を使用することによって直接的又は間接的に取り込まれていてもよい（Leyton J et al.,Clin Cancer Res 14: 7488-96(2008)を参照）。
タンパク質に、特に免疫グロブリン及び免疫グロブリンに由来するドメインに様々な検出促進剤を取り込む、取り付ける、及び／又はコンジュゲートするための、熟練した作業者に公知の極めて多くの標準的な技術がある（Wu A, Methods 65: 139-47 (2014)）。同
様に、医療分野で一般的に使用される非侵襲的なインビボでのイメージング技術などの熟練した作業者に公知の極めて多くのイメージングアプローチがあり、例えば、コンピューター断層撮影イメージング（ＣＴスキャニング）、光学的イメージング（直接の、蛍光による、及び生物発光によるイメージングなど）、磁気共鳴映像法（ＭＲＩ，magnetic resonance imaging）、ポジトロンエミッショントモグラフィー（ＰＥＴ，positron emission tomography）、単光子放射型コンピューター断層撮影法（ＳＰＥＣＴ，single-photon emission computed tomography）、超音波、及びＸ線コンピューター断層撮影イメージングである（総論については、Kaur S et al., Cancer Lett 315: 97-111 (2012)を参照）
。
IX．本発明のＴ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド又は細胞標的化分子を含む医薬及び／又は診断用組成物の生産又は製造
本発明のポリペプチド及び細胞標的化分子のいずれかの薬学的に許容される塩又は溶媒和物も、同様に本発明の範囲内である。
本発明の内容における用語「溶媒和物」は、溶質（この場合、本発明に係るポリペプチド化合物又はそれらの薬学的に許容される塩）と溶媒との間で形成された規定の化学量論の複合体を指す。それに関して、溶媒は、例えば、水、エタノール、又は別の薬学的に許容される、典型的には小分子の有機種、例えば、これらに限定されないが、酢酸又は乳酸などであり得る。問題の溶媒が水である場合、このような溶媒和物は通常、水和物と称される。
本発明のポリペプチド及びタンパク質又はそれらの塩は、典型的には薬学的に許容される担体中に治療有効量の本発明の化合物又はそれらの塩を含む、貯蔵又は投与のために調製された医薬組成物として製剤化されてもよい。用語「薬学的に許容される担体」は、あらゆる標準的な医薬用担体を包含する。治療用途のための薬学的に許容される担体は薬学分野において周知であり、例えば、Remington's Pharmaceutical Sciences （MackPublishing Co. （A. Gennaro, ed., 1985）で説明される。「薬学的に許容される担体」としては、本明細書で使用される場合、ありとあらゆる生理学的に許容できる、すなわち適合する溶媒、分散媒、コーティング、抗菌剤、等張剤及び吸収遅延剤などが挙げられる。薬学的に許容される担体又は希釈剤としては、経口、直腸、経鼻又は非経口（皮下、筋肉内、静脈内、皮内、及び経皮など）投与に好適な製剤で使用されるものが挙げられる。例示的な薬学的に許容される担体としては、滅菌水溶液又は分散液、及び滅菌注射用溶液又は分散液を即時調製するための滅菌粉末が挙げられる。本発明の医薬組成物で採用される可能性がある好適な水性及び非水性担体の例としては、水、エタノール、ポリオール（例えばグリセロール、プロピレングリコール、ポリエチレングリコールなど）、及びそれらの好適な混合物、植物油、例えばオリーブ油、並びに注射可能な有機エステル、例えばエチルオレエートが挙げられる。適切な流動性は、例えば、レシチンなどのコーティング材料の使用によって、分散液のケースで求められる粒度の維持によって、及び界面活性剤の使用によって維持することができる。特定の実施形態において、担体は、静脈内、筋肉内、皮下、非経口、脊髄又は表皮投与（例えば注射又は点滴による）に好適である。選択された投与経路に応じて、タンパク質又は他の医薬成分は、特定の投与経路によって患者に投与されたときに活性タンパク質が遭遇する可能性がある低いｐＨ及び他の天然の不活性化条件の作用から化合物を保護することを意図した材料でコーティングされていてもよい。
本発明の医薬組成物の製剤は、単位剤形で便利なように提供されてもよいし、薬学分野において周知の方法のいずれかによって調製されてもよい。このような形態において、組成物は、適切な量の活性成分を含有する単位用量に分割される。単位剤形は、パッケージ化された調製物、別々の量の調製物を含有するパッケージ、例えば、バイアル又はアンプル中にパケット化された錠剤、カプセル、及び粉末であってもよい。また単位剤形は、カプセル剤、カシェ剤、又は錠剤そのものであってもよいし、又は適切な数のこれらのパッケージ化された形態のいずれかであってもよい。単位剤形は、単回用量の注射可能な形態で、例えばペンの形態で提供されてもよい。組成物は、あらゆる好適な経路及び投与手段に合わせて製剤化されてもよい。皮下又は経皮の投与様式は、本明細書で説明される治療用タンパク質に特に好適であり得る。
本発明の医薬組成物はまた、保存剤、湿潤剤、乳化剤及び分散剤などのアジュバントを含有していてもよい。微生物の存在の防止は、滅菌手順と、様々な抗菌剤及び抗真菌剤、例えば、パラベン、クロロブタノール、フェノールソルビン酸などの包含との両方によって確実にすることができる。組成物への等張剤、例えば糖、塩化ナトリウムなども望ましい場合がある。加えて、注射可能な医薬の形態の持続吸収は、モノステアリン酸アルミニウム及びゼラチンなどの吸収を遅延させる物質の包含によって達成することができる。
また本発明の医薬組成物は、薬学的に許容される抗酸化剤を包含していてもよい。例示的な薬学的に許容される抗酸化剤は、水溶性抗酸化剤、例えばアスコルビン酸、塩酸システイン、硫酸水素ナトリウム、メタ重亜硫酸ナトリウム、亜硫酸ナトリウムなど；油溶性抗酸化剤、例えばパルミチン酸アスコルビル、ブチルヒドロキシアニソール（ＢＨＡ，butylated hydroxyanisole）、ブチルヒドロキシトルエン（ＢＨＴ，butylated hydroxytoluene）、レシチン、没食子酸プロピル、アルファ－トコフェロールなど；及び金属キレート剤、例えばクエン酸、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ，ethylenediamine tetraacetic acid）、ソルビトール、酒石酸、リン酸などである。
別の態様において、本発明は、本発明の異なるポリペプチド及び／若しくは細胞標的化分子、又は前述のもののいずれかのエステル、塩若しくはアミドの１つ又は組合せと、少なくとも１つの薬学的に許容される担体とを含む医薬組成物を提供する。
治療用組成物は、典型的には滅菌されており、製造及び貯蔵条件下で安定である。組成物は、溶液、マイクロエマルジョン、リポソーム、又は高い薬物濃度に好適な他の秩序ある構造として製剤化されてもよい。担体は、例えば、水、アルコール、例えばエタノール、ポリオール（例えばグリセロール、プロピレングリコール、及び液体ポリエチレングリコール）、又はあらゆる好適な混合物を含有する溶媒又は分散媒であり得る。適切な流動性は、当業界において周知の調合の化学に従って、例えば、レシチンなどのコーティングの使用によって、分散液のケースで求められる粒度の維持によって、及び界面活性剤の使用によって維持することができる。特定の実施形態において、等張剤、例えば糖、マンニトール、ソルビトールなどの多価アルコール、又は塩化ナトリウムが組成物において望ましい可能性がある。注射用組成物の持続吸収は、組成物中に、例えばモノステアリン酸塩及びゼラチンなどの吸収を遅延させる物質を包含させることによって達成することができる。
皮内又は皮下適用に使用される溶液又は懸濁液は、典型的には、滅菌希釈剤、例えば注射用水、食塩水、不揮発性油、ポリエチレングリコール、グリセリン、プロピレングリコール又は他の合成溶媒；抗菌剤、例えばベンジルアルコール又はメチルパラベン；抗酸化剤、例えばアスコルビン酸又は重亜硫酸ナトリウム；キレート剤、例えばエチレンジアミン四酢酸；緩衝剤、例えば酢酸塩、クエン酸塩又はリン酸塩；及び張度調節剤、例えば塩化ナトリウム又はデキストロースなどの１又は２以上を包含する。ｐＨは、酸又は塩基、例えば塩酸若しくは水酸化ナトリウム、又はクエン酸塩、リン酸塩、酢酸塩を含む緩衝剤などで調整することができる。このような調製物は、ガラス又はプラスチックで製作された、アンプル、使い捨てのシリンジ又は複数回用量用のバイアル中に封入されていてもよい。
滅菌注射用溶液は、必要に応じて上述した成分の１つ又は組合せを含む適切な溶媒中に本発明のポリペプチド又は細胞標的化分子を必要な量で取り込み、続いて滅菌精密ろ過することによって調製されてもよい。分散液は、分散媒及び上述したものなどの他の成分を含有する滅菌媒体に活性化合物を取り込むことによって調製されてもよい。滅菌注射用溶液を調製するための滅菌粉末のケースにおいて、調製方法は、それらの滅菌ろ過溶液から任意の追加の望ましい成分に加えて活性成分の粉末を生じる真空乾燥及びフリーズドライ（凍結乾燥）である。
本発明のポリペプチド又は細胞標的化分子の治療有効量が、例えば静脈内、皮膚又は皮下注射によって投与するために設計される場合、結合剤は、パイロジェンフリーの非経口的に許容できる水溶液の形態であると予想される。適切なｐＨ、等張性、安定性などを検討して非経口的に許容できるタンパク質溶液を調製するための方法は、当業界における能力の範囲内である。静脈内、皮膚、又は皮下注射にとって好ましい医薬組成物は、結合剤に加えて、等張の媒体、例えば塩化ナトリウム注射液、リンゲル注射液、デキストロース注射液、デキストロース及び塩化ナトリウム注射液、乳酸加リンゲル注射液、又は当業界で公知の他の媒体を含有すると予想される。また本発明の医薬組成物は、安定剤、保存剤、緩衝液、抗酸化剤、又は当業者に周知の他の添加剤を含有していてもよい。
本明細書の他所で説明されるように、本発明のポリペプチド又は細胞標的化分子は、インプラント、経皮パッチ、及びマイクロカプセル化された送達系を含む放出制御製剤などの、急速な放出から化合物を保護すると予想される担体を用いて調製されてもよい。生分解性の生体適合性ポリマー、例えばエチレン酢酸ビニル、ポリ無水物、ポリグリコール酸、コラーゲン、ポリオルトエステル、及びポリ乳酸を使用することができる。このような製剤を調製するための多くの方法は特許化されているか、又は一般的に当業者に公知である（例えばSustained and Controlled Release Drug Delivery Systems （Robinson J, ed., Marcel Dekker, Inc., NY, U.S., 1978）を参照）。
特定の実施形態において、本発明の医薬組成物は、インビボにおいて望ましい分布を確実にするように製剤化されてもよい。例えば、血液脳関門は、多くの大きい及び／又は親水性の化合物を排除する。特定のインビボにおける配置に本発明の治療化合物又は組成物を標的化するために、それらを例えばリポソーム中に製剤化してもよく、ここでリポソームは、特定の細胞又は臓器に選択的に輸送されることにより標的化された薬物送達を強化する１又は２以上の部分を含んでいてもよい。例示的な標的化部分は、葉酸塩又はビオチ
ン；マンノシド；抗体；界面活性プロテインＡ受容体；ｐ１２０カテニンなどを包含する。
医薬組成物は、インプラント又は微粒子系として使用するように設計された非経口製剤を包含する。インプラントの例は、エマルジョン、イオン交換樹脂、及び可溶性塩溶液などの高分子又は疎水性成分で構成されるデポ製剤である。微粒子系の例は、マイクロスフェア、微粒子、ナノカプセル、ナノスフェア、及びナノ粒子である（例えばHonda M et al., Int J Nanomedicine 8: 495-503 (2013)、Sharma A et al., Biomed Res Int 2013: 960821 (2013)、Ramishetti S,Huang L, Ther Deliv 3:1429-45(2012)を参照）。放出制御製剤は、イオンに対する感受性を有するポリマー、例えばリポソーム、ポロキサマー４０７、及びヒドロキシアパタイトなどを使用して調製されてもよい。
Ｘ．ポリヌクレオチド、発現ベクター、及び宿主細胞
本発明のポリペプチド及びタンパク質のほかにも、本発明のポリペプチド及び細胞標的化分子、又はそれらの機能的な部分をコードするポリヌクレオチドも、本発明の範囲内に包含される。用語「ポリヌクレオチド」は、用語「核酸」と同等であり、そのそれぞれが、デオキシリボ核酸（ＤＮＡ，deoxyribonucleic acid）のポリマー、リボ核酸（ＲＮＡ，ribonucleic acid）のポリマー、ヌクレオチド類似体を使用して生成されたこれらのＤＮＡ又はＲＮＡの類似体、並びにそれらの誘導体、フラグメント及びホモログの１又は２以上を包含する。本発明のポリヌクレオチドは、一本鎖、二本鎖、又は三本鎖であり得る。このようなポリヌクレオチドは、例えば、ＲＮＡコドンの第三の位置で許容されるが異なるＲＮＡコドンとして同じアミノ酸をコードすることが公知のゆらぎを考慮に入れて、例示的なタンパク質をコードすることが可能な全てのポリヌクレオチドを包含するように具体的に開示されている（Stothard P,Biotechniques 28: 1102-4 (2000)を参照）。
一態様において、本発明は、本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド及び／又は細胞標的化タンパク質、又はそれらのフラグメント若しくは誘導体をコードするポリヌクレオチドを提供する。ポリヌクレオチドは、例えば、タンパク質のアミノ酸配列の１つを含むポリペプチドに対して、少なくとも５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９９％又はそれよりより高い同一性を有するポリペプチドをコードする核酸配列を包含し得る。また本発明は、本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド及び／又は細胞標的化タンパク質、又はそれらのフラグメント若しくは誘導体をコードするポリヌクレオチドにストリンジェントな条件下でハイブリダイズするヌクレオチド配列、又はあらゆるこのような配列のアンチセンス若しくは相補物を含むポリヌクレオチドも包含する。
本発明の分子（例えば、ＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド及び／又はそれを含む細胞標的化タンパク質）の誘導体又は類似体は、とりわけ、例えば、同じサイズのポリヌクレオチド又はポリペプチド配列に対して、又は当業界において公知のコンピューター相同性プログラムによってアライメントが行われる並べられた配列と比較した場合に、少なくとも約４５％、５０％、７０％、８０％、９５％、９８％、又は９９％もの同一性で（好ましい同一性は８０～９９％である）、本発明のポリヌクレオチド、ＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド、又は細胞標的化タンパク質に実質的に相同な領域を有するポリヌクレオチド（又はポリペプチド）分子を包含する。例示的なプログラムは、Smith T, Waterman M, Adv. Appl. Math. 2: 482-9 (1981)のアルゴリズムを使用するデフォルト設定を使用した、ＧＡＰプログラム（Wisconsin SequenceAnalysis Package、ＵＮＩＸ用バージョン８、Genetics Computer Group、University ResearchPark、Madison、WI、U.S.）である。また、ストリンジェントな条件下で本発明
の細胞標的化タンパク質をコードする配列の相補物にハイブリダイズすることが可能なポリヌクレオチドも包含される（例えばAusubel F et al.,Current Protocols in Molecular Biology （John Wiley& Sons, New York, NY, U.S.,1993）、及び以下を参照）。ストリンジェントな条件は当業者公知であり、例えば、Current Protocols in MolecularBiology （John Wiley&Sons, NY, U.S., Ch. Sec.6.3.1-6.3.6 (1989)）で見出すことができる。
本発明はさらに、本発明の範囲内のポリヌクレオチドを含む発現ベクターを提供する。本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド及び／又は細胞標的化タンパク質をコードすることが可能なポリヌクレオチドは、発現ベクターを生産するための当業界において周知の材料及び方法を使用して、細菌プラスミド、ウイルスベクター及びファージベクターなどの公知のベクターに挿入されてもよい。このような発現ベクターは、いずれかの選択された宿主細胞又は無細胞発現系（例えば以下の実施例で説明されるｐＴｘｂ１及びｐＩＶＥＸ２．３）内での検討される本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド及び／又は細胞標的化タンパク質の産生を維持するのに必要なポリヌクレオチドを包含すると予想される。特定のタイプの宿主細胞又は無細胞発現系と共に使用するための発現ベクターを含む具体的なポリヌクレオチドは当業者周知であり、それらを慣例的な実験を使用して決定してもよいし、又は購入してもよい。
用語「発現ベクター」は、本明細書で使用される場合、１又は２以上の発現単位を含む直鎖状又は環状のポリヌクレオチドを指す。用語「発現単位」は、所望のポリペプチドをコードし、宿主細胞中で核酸セグメントの発現をもたらすことが可能なポリヌクレオチドセグメントを示す。発現単位は、典型的には、転写プロモーター、所望のポリペプチドをコードするオープンリーディングフレーム、及び転写ターミネーターを含み、全て機能できるように配置される。発現ベクターは、１又は２以上の発現単位を含有する。したがって、本発明の内容において、単一のポリペプチド鎖を含む、ＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド及び／又はタンパク質（例えば、ＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化された志賀毒素エフェクター領域が遺伝子組換えされたｓｃＦｖ）をコードする発現ベクターは、少なくとも単一のポリペプチド鎖のための発現単位を包含し、それに対して例えば２又は３以上のポリペプチド鎖（例えばＶＬドメインを含む１つの鎖及び毒素エフェクター領域に連結されたＶＨドメインを含む第二の鎖）を含むタンパク質は、そのタンパク質の２つのポリペプチド鎖それぞれにつき１つずつの少なくとも２つの発現単位を包含する。本発明の多重鎖の細胞標的化タンパク質を発現させるために、各ポリペプチド鎖のための発現単位が、異なる発現ベクターに別々に含有されていてもよい（例えば発現は、各ポリペプチド鎖のための発現ベクターが導入された単一の宿主細胞で達成され得る）。
ポリペプチド及びタンパク質の一過性の又は安定な発現を指示することが可能な発現ベクターは当業界において周知である。発現ベクターは、一般的に、これらに限定されないが、以下：それぞれ当業界において周知の、異種シグナル配列又はペプチド、複製起点、１又は２以上のマーカー遺伝子、エンハンサー要素、プロモーター、及び転写終結配列の１又は２以上を包含する。任意の調節制御配列、統合配列、及び採用される可能性がある有用なマーカーは、当業界において公知である。
用語「宿主細胞」は、発現ベクターの複製又は発現を維持することができる細胞を指す。宿主細胞は、原核細胞、例えば大腸菌又は真核細胞（例えば酵母、昆虫、両生類、鳥類、又は哺乳動物細胞）であり得る。本発明のポリヌクレオチドを含むか又は本発明のポリペプチド及び／若しくは細胞標的化タンパク質を産生することが可能な宿主細胞株の作出及び単離は、当業界において公知の標準的な技術を使用して達成することができる。
本発明の範囲内のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド及び／又はタンパク質は、宿主細胞でのより最適な発現などの所望の特性を達成するのにより好適にすることができる、１又は２以上のアミノ酸の変更又は１又は２以上のアミノ酸の欠失若しくは挿入によってポリペプチド及び／又はタンパク質をコードするポリヌクレオチドを改変することによって生産される、本明細書で説明されるポリペプチド及びタンパク質のバリアント又は誘導体であってもよい。
XI．送達デバイス及びキット
特定の実施形態において、本発明は、１又は２以上の本発明の物質の組成物、例えばそれを必要とする対象に送達するための医薬組成物を含むデバイスに関する。したがって、１又は２以上の本発明の化合物を含む送達デバイスを使用して、静脈内、皮下、筋肉内又は腹膜内注射；経口投与；経皮投与；肺内又は経粘膜投与；インプラント、浸透圧ポンプ、カートリッジ又はマイクロポンプによる投与；又は当業者によって認識される他の手段による投与などの様々な送達方法によって本発明の物質の組成物を患者に投与することができる。
また、少なくとも１つの本発明の物質の組成物を含み、包装及び使用説明書を含んでいてもよいキットも本発明の範囲内である。キットは、薬物の投与及び／又は診断の情報収集に有用であり得る。本発明のキットは、少なくとも１つの追加の試薬（例えば、標準、マーカーなど）を含んでいてもよい。キットは、典型的には、キット内容物の意図した使用を表示するラベルを包含する。キットは、サンプル又は対象中で細胞型（例えば腫瘍細胞）を検出するための、又は患者が、本明細書で説明されるような本発明の化合物、組成物又は関連する方法を利用する治療方策に応答するグループに属するかどうかを診断するための試薬及び他のツールをさらに含んでいてもよい。
XII．本発明のＴ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化
されたポリペプチドを生成する方法
本発明は、細胞のエンドソーム区画から細胞のサイトゾル、ＥＲ、又はリソソームへの細胞内の経路決定がすでに可能なポリペプチドを改変することによって、本発明のＴ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチドを作製する方法であって、異種Ｔ細胞エピトープをポリペプチドに付加するステップを含む方法を提供する。本発明の特定のさらなる方法において、異種Ｔ細胞エピトープは、細胞のエンドソーム区画から細胞のサイトゾル、ＥＲ、又はリソソームへの細胞内の経路決定が可能なポリペプチド内に組み込まれるか又は挿入される。
本発明の方法の特定の実施形態において、本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチドは、細胞のエンドソーム区画から細胞のサイトゾル、ＥＲ、又はリソソームへの細胞内の経路決定がすでに可能なポリペプチドを改変することによって作製され、本方法は、ポリペプチドに異種Ｔ細胞エピトープを付加するステップを含む。本発明の特定のさらなる方法において、異種Ｔ細胞エピトープは、細胞のエンドソーム区画から細胞のサイトゾル、ＥＲ、又はリソソームへの細胞内の経路決定が可能なポリペプチド内に組み込まれるか又は挿入される。
本発明の方法の特定の実施形態において、細胞のエンドソーム区画から細胞のサイトゾル、ＥＲ、又はリソソームへの細胞内の経路決定がすでに可能なポリペプチドが、本発明のＴ細胞の高度免疫化されたポリペプチドに作製され、本方法は、ポリペプチドに異種Ｔ細胞エピトープを付加するステップを含む。本発明の方法の特定のさらなる実施形態において、細胞のエンドソーム区画から細胞のサイトゾル、ＥＲ、又はリソソームへの細胞内
の経路決定がすでに可能なポリペプチドが、本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化されたポリペプチドに作製され、本方法は、ポリペプチドに異種Ｔ細胞エピトープを付加するステップを含む。本発明の特定のさらなる方法において、異種Ｔ細胞エピトープは、細胞のエンドソーム区画から細胞のサイトゾル、ＥＲ、又はリソソームへの細胞内の経路決定が可能なポリペプチド内に組み込まれるか又は挿入される。
本発明の方法の特定の実施形態において、ＭＨＣクラスＩ分子による提示のためにＴ細胞エピトープを送達することが可能なポリペプチドが作製され、本方法は、細胞のエンドソーム区画から細胞のプロテアソームへのＴ細胞エピトープの細胞内送達が可能なポリペプチドに、異種Ｔ細胞エピトープを付加するステップを含む。本発明の特定のさらなる方法において、異種Ｔ細胞エピトープは、細胞のエンドソーム区画から細胞のサイトゾル、ＥＲ、又はリソソームへの細胞内の経路決定が可能なポリペプチド内に組み込まれるか又は挿入される。
本発明の方法の特定の実施形態において、Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチドが作製され、本方法は、細胞のエンドソーム区画から細胞のサイトゾル、ＥＲ、又はリソソームへの細胞内の経路決定がすでに可能なポリペプチドの内因性Ｂ細胞エピトープ領域に、異種Ｔ細胞エピトープを挿入するか又は組み込むステップを含む。
本発明の方法の特定の実施形態において、本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチドが作製され、本方法は、細胞のエンドソーム区画から細胞のサイトゾル、ＥＲ、又はリソソームへの細胞内の経路決定がすでに可能なポリペプチドの内因性Ｂ細胞エピトープ領域に、異種Ｔ細胞エピトープを組み込むか又は挿入するステップを含む。
本発明の方法の特定の実施形態において、細胞のエンドソーム区画から細胞のサイトゾル、ＥＲ、又はリソソームへの細胞内の経路決定がすでに可能なポリペプチドが、本発明のＴ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチドに作製され、本方法は、ポリペプチドの内因性Ｂ細胞エピトープ領域に、異種Ｔ細胞エピトープを組み込むか又は挿入するステップを含む。本発明の方法の特定のさらなる実施形態において、細胞のエンドソーム区画から細胞のサイトゾル、ＥＲ、又はリソソームへの細胞内の経路決定がすでに可能なポリペプチドが、本発明のＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化されたポリペプチドに作製され、本方法は、ポリペプチドの内因性Ｂ細胞エピトープ領域に、異種Ｔ細胞エピトープを組み込むか又は挿入するステップを含む。
本発明の方法の特定の実施形態において、ＭＨＣクラスＩ分子による提示のためにＴ細胞エピトープを送達することが可能な脱免疫化されたポリペプチドが作製され、本方法は、細胞のエンドソーム区画から細胞のプロテアソームへのＴ細胞エピトープの細胞内送達が可能なポリペプチドの内因性Ｂ細胞エピトープ領域に、異種Ｔ細胞エピトープを組み込むか又は挿入するステップを含む。
本発明の方法の特定の実施形態において、脊索動物に投与される際のＢ細胞の免疫原性を低下させた、脱免疫化されたポリペプチドが作製される。本発明の方法の特定の実施形態は、ポリペプチドにおいてＢ細胞の免疫原性を低下させるための方法であって、ポリペプチドに付加された異種Ｔ細胞エピトープに含まれる１又は２以上のアミノ酸残基でポリペプチド内のＢ細胞エピトープ領域を破壊するステップを含む方法である。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、Ｂ細胞エピトープ領域中に１又は２以上のアミノ酸置換を作製することをさらに含む。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、Ｂ細胞エピトープ領域中に１又は２以上のアミノ酸挿入を作製することをさら
に含む。
本発明の方法の特定の実施形態は、脊索動物への投与後に、ポリペプチドにおいてＢ細胞の免疫原性を低下させ、同時にＣＤ８＋Ｔ細胞の免疫原性を増加させるための方法であって、ポリペプチドに付加された異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープに含まれる１又は２以上のアミノ酸残基でポリペプチド内のＢ細胞エピトープ領域を破壊するステップを含む方法である。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、Ｂ細胞エピトープ領域中に１又は２以上のアミノ酸置換を作製することをさらに含む。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、Ｂ細胞エピトープ領域中に１又は２以上のアミノ酸挿入を作製することをさらに含む。
本発明の方法の特定の実施形態は、脊索動物への投与後に、ポリペプチドにおいてＢ細胞の免疫原性を低下させ、同時にＣＤ８＋Ｔ細胞の免疫原性を増加させるための方法であって、１）ポリペプチド中のＢ細胞エピトープを同定するステップ；及び２）ポリペプチドに付加された異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープに含まれる１又は２以上のアミノ酸残基で同定されたＢ細胞エピトープを破壊するステップを含む方法である。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、Ｂ細胞エピトープ領域中に１又は２以上のアミノ酸置換を作製することをさらに含む。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、Ｂ細胞エピトープ領域中に１又は２以上のアミノ酸挿入を作製することをさらに含む。
本発明の方法の特定の実施形態は、脊索動物への投与後に、ポリペプチドにおいてＢ細胞の免疫原性を低下させ、同時にＣＤ８＋Ｔ細胞の免疫原性を増加させるための方法であって、１）ポリペプチド中のＢ細胞エピトープを同定するステップと、２）ポリペプチドに付加された異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープに含まれる１又は２以上のアミノ酸残基で同定されたＢ細胞エピトープを破壊するステップとを含む方法である。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、Ｂ細胞エピトープ領域中に１又は２以上のアミノ酸置換を作製することをさらに含む。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、Ｂ細胞エピトープ領域中に１又は２以上のアミノ酸挿入を作製することをさらに含む。
本発明の方法の特定の実施形態において、脊索動物に投与される際のＣＤ４＋Ｔ細胞の免疫原性を低下させた、ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチドが作製される。本発明の方法の特定の実施形態は、ポリペプチドにおいてＣＤ４＋Ｔ細胞の免疫原性を低下させるための方法であって、ポリペプチドに付加された異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープに含まれる１又は２以上のアミノ酸残基でポリペプチド内のＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域を破壊するステップを含む方法である。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、Ｂ細胞エピトープ領域中に１又は２以上のアミノ酸置換を作製することをさらに含む。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域中に１又は２以上のアミノ酸挿入を作製することをさらに含む。
本発明の方法の特定の実施形態は、脊索動物への投与後に、ポリペプチドにおいてＣＤ４＋Ｔ細胞の免疫原性を低下させ、同時にＣＤ８＋Ｔ細胞の免疫原性を増加させるための方法であって、ポリペプチドに付加された異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープに含まれる１又は２以上のアミノ酸残基でポリペプチド内のＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域を破壊するステップを含む方法である。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域中に１又は２以上のアミノ酸置換を作製することをさらに含む。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域中に１又は２以上のアミノ酸挿入を作製することをさらに含む。
本発明の方法の特定の実施形態は、脊索動物への投与後に、ポリペプチドにおいてＣＤ４＋Ｔ細胞の免疫原性を低下させ、同時にＣＤ８＋Ｔ細胞の免疫原性を増加させるための方法であって、１）ポリペプチド中のＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープを同定するステップ；及び２）ポリペプチドに付加された異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープに含まれる１又は２以上のアミノ酸残基で同定されたＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープを破壊するステップを含む方法である。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域中に１又は２以上のアミノ酸置換を作製することをさらに含む。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域中に１又は２以上のアミノ酸挿入を作製することをさらに含む。
本発明の方法の特定の実施形態は、脊索動物への投与後に、ポリペプチドにおいてＣＤ４＋Ｔ細胞の免疫原性を低下させ、同時にＣＤ８＋Ｔ細胞の免疫原性を増加させるための方法であって、１）ポリペプチド中のＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープを同定するステップと、２）ポリペプチドに付加された異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープに含まれる１又は２以上のアミノ酸残基で同定されたＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープを破壊するステップとを含む方法である。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域中に１又は２以上のアミノ酸置換を作製することをさらに含む。特定のさらなる実施形態において、破壊するステップは、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域中に１又は２以上のアミノ酸挿入を作製することをさらに含む。
XIII．本発明のＴ細胞の高度免疫化された及び／若しくはＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の脱免疫化されたポリペプチド、それを含む細胞標的化分子、又はそれらの医薬及び／若しくは診断用組成物を使用するための方法
一般的に、本発明の目的は、特定のがん、腫瘍、成長異常、免疫障害、又は本明細書で述べられるさらなる病的状態などの疾患、障害、及び状態の予防及び／又は治療において使用することができる薬理活性薬剤、加えてそれを含む組成物を提供することである。したがって、本発明は、標的細胞のＭＨＣクラスＩ提示経路にＴ細胞エピトープを送達するために、標的化された細胞の殺滅のために、標的化された細胞に追加の外因性物質を送達するために、標的化された細胞の内部を標識するために、診断の情報を収集するために、及び本明細書で説明されるような疾患、障害、及び状態を治療するために、本発明のポリペプチド、細胞標的化分子、及び医薬組成物を使用する方法を提供する。
例えば細胞毒性の毒素領域ポリペプチドを含む可能性のある治療剤などのすでに細胞毒性の分子は、より高い細胞毒性を示すか、及び／又は重複してバックアップする細胞毒性を完全に異なるメカニズムを介して作動させるように加工してもよい。これらの複数の細胞毒性メカニズムは、相互に補完する可能性があり（例えば、直接及び間接的な細胞殺滅の２つのメカニズム、加えて局所領域への免疫刺激のメカニズムの両方を提供することによって）、互いに重複してバックアップする可能性があり（例えば、他方の非存在下で直接の細胞殺滅を提供することによって）、及び／又は発生した耐性から保護する可能性がある（悪性又は感染細胞が２種の異なるメカニズムを同時にブロックする可能性がより低い状況に耐性を制限することによって）。
加えて、細胞毒性に関して毒素エフェクター及び／又は酵素領域を頼る親の細胞毒性分子は、酵素的に不活性になるが、標的細胞のＴ細胞エピトープのＭＨＣクラスＩ系への送達とそれに続く標的細胞表面への提示によって細胞毒性になるように親分子を変異させることによって加工してもよい。このアプローチは、１つの細胞毒性メカニズムを除去しつつも別のメカニズムを追加して、Ｔ細胞エピトープ提示によって標的細胞が局所領域に免疫刺激する能力を追加する。さらに、細胞毒性に関して酵素領域を頼る親の細胞毒性分子は、酵素活性が低下されるか又は消去されるように親分子の酵素ドメインにＴ細胞エピトープを組み込むことにより、Ｔ細胞エピトープのＭＨＣクラスＩ系への送達のみを介して、細胞毒性になるように加工してもよい。これは、エンドソーム区画中に入ったらサイトゾル及び／又はＥＲに経路決定する能力を有する酵素的に細胞毒性の分子を、標的細胞のＴ細胞エピトープのＭＨＣクラスＩ系への送達とそれに続く細胞毒性のための標的細胞表面での提示を頼る酵素的に不活性な細胞毒性分子に一段階で改変することを可能にする。本発明のポリペプチドのいずれも、例えば生物内などの２又は３以上の細胞型の混合物内の特異的な細胞型を標的化する様々な細胞を標的化する結合領域を連結することによって、治療剤としての可能性を有する細胞を標的化する細胞毒性分子に加工することができる。
特定には、本発明の目的は、現在のところ当業界において公知の薬剤、組成物、及び／又は方法と比較して一定の利点を有するこのような薬理活性薬剤、組成物、及び／又は方法を提供することである。したがって、本発明は、ポリペプチド配列を特徴とするポリペプチド及びタンパク質並びにそれらの医薬組成物を使用する方法を提供する。例えば、配列番号１～６０のポリペプチド配列のいずれかが、以下の方法で使用される細胞標的化分子の成分として具体的に利用される可能性がある。
本発明は、細胞を殺滅する方法であって、細胞を、インビトロ又はインビボのいずれかで本発明のポリペプチド、タンパク質、又は医薬組成物と接触させるステップを含む方法を提供する。本発明のポリペプチド、タンパク質、及び医薬組成物を使用して、１つ又は複数の細胞を特許請求された物質の組成物の１つと接触させたときに特異的な細胞型を殺滅することができる。特定の実施形態において、本発明の細胞毒性ポリペプチド、タンパク質、又は医薬組成物を使用して、がん細胞、感染細胞、及び／又は血液学的な細胞を含む混合物などの異なる細胞型の混合物中の特異的な細胞型を殺滅することができる。特定の実施形態において、本発明の細胞毒性ポリペプチド、タンパク質、又は医薬組成物を使用して、異なる細胞型の混合物中のがん細胞を殺滅することができる。特定の実施形態において、本発明の細胞毒性ポリペプチド、タンパク質、又は医薬組成物を使用して、移植前の組織などの異なる細胞型の混合物中の特異的な細胞型を殺滅することができる。特定の実施形態において、本発明のポリペプチド、タンパク質、又は医薬組成物を使用して、治療目的の投与前の組織材料などの細胞型の混合物中の特異的な細胞型を殺滅することができる。特定の実施形態において、本発明のポリペプチド、タンパク質、又は医薬組成物を使用して、ウイルス又は微生物に感染した細胞を選択的に殺滅するか、又はそれとは別に細胞表面生体分子などの特定の細胞外標的生体分子を発現する細胞を選択的に殺滅することができる。本発明のポリペプチド、タンパク質、及び医薬組成物は、例えば、インビトロ又はインビボのいずれかで組織から不要な細胞型を枯渇させることにおける使用、移植片対宿主反応を治療するために免疫応答をモジュレートすることにおける使用、抗ウイルス剤としての使用、抗寄生虫剤としての使用、及び移植組織から不要な細胞型を取り除くことにおける使用などの様々な適用を有する。
特定の実施形態において、本発明の細胞毒性ポリペプチド、タンパク質、又は医薬組成物は、単独で、又は他の化合物又は医薬組成物と組み合わせて、インビトロで、又は対象において、例えば治療が必要な患者においてインビボで細胞集団に投与されると、有力な細胞殺滅活性を示すことができる。特異的な細胞型に対して高親和性の結合領域を使用して酵素的に活性な毒素領域及びＴ細胞エピトープの送達を標的化することによって、生物内の、例えば特定のがん細胞、新生細胞、悪性細胞、非悪性腫瘍細胞、又は感染細胞内の特定の細胞型を特異的且つ選択的に殺滅することに、この有力な細胞殺滅活性を限定することができる。
本発明は、それを必要とする患者において細胞を殺滅する方法であって、患者に、少なくとも１つの本発明の細胞毒性ポリペプチド若しくはタンパク質、又はそれらの医薬組成物を投与するステップを含む方法を提供する。
細胞毒性ポリペプチド、タンパク質、又はそれらの医薬組成物の特定の実施形態を使用して、がん又は腫瘍細胞と物理的に組み合わされていることが見出された細胞外生体分子を標的化することによって、患者におけるがん細胞を殺滅することができる。用語「がん細胞」又は「癌細胞」は、異常に速い速度の様式で成長し分裂する様々な新生細胞を指し、当業者には明らかであると予想される。用語「腫瘍細胞」は、悪性及び非悪性細胞の両方を包含する。一般的に、がん及び／又は腫瘍は、治療及び／又は予防を受けることが可能な疾患、障害、又は状態と定義することができる。本発明の方法及び組成物によって利益を得る可能性があるがん細胞及び／又は腫瘍細胞で構成されるがん及び腫瘍（悪性又は良性のどちらも）は、当業者には明らかであると予想される。新生細胞は、以下：制御不能な成長、分化の欠如、局所的な組織浸潤、血管新生、及び転移の１又は２以上を伴うことが多い。
本発明の細胞毒性ポリペプチド若しくは細胞標的化分子、又はそれらの医薬組成物の特定の実施形態を使用して、免疫細胞と物理的に組み合わされていることが見出された細胞外生体分子を標的化することによって、患者における免疫細胞（健康か又は悪性かどうかにかかわらず）を殺滅することができる。
本発明の細胞毒性ポリペプチド若しくは細胞標的化分子、又はそれらの医薬組成物の特定の実施形態を使用して、感染細胞と物理的に組み合わされていることが見出された細胞外生体分子を標的化することによって、患者における感染細胞を殺滅することができる。
悪性、新生物、又はそれとは別の意味で不要なＴ細胞及び／又はＢ細胞の細胞集団（例えば骨髄）を患者から取り出し、次いでＴ細胞及び／又はＢ細胞が枯渇した材料を患者に再注入する目的のために、本発明の細胞標的化分子又はそれらの医薬組成物を利用することは、本発明の範囲内である（例えばvan Heeckeren W et al., Br J Haematol 132: 42-55 (2006)を参照；例えばAlpdogan O, van den Brink M, SeminOncol 39: 629-42 (2012)を参照）。
患者から取り出された単離された細胞集団からＴ細胞及び／又はＢ細胞をエクスビボで枯渇させる目的で、本発明の細胞標的化分子又はそれらの医薬組成物を利用することは、本発明の範囲内である。１つの非限定的な例において、本発明の細胞標的化分子は、臓器及び／又は組織の移植による拒絶反応を防止するための方法で使用することができ、ここでドナーの臓器又は組織は、臓器からドナーのＴ細胞及び／又はＢ細胞を取り除くために、移植前に、本発明の細胞毒性細胞標的化分子又はそれらの医薬組成物で潅流される（例えばAlpdogan O, vanden Brink M, Semin Oncol 39: 629-42 (2012)を参照）。
また、骨髄及び又は幹細胞移植を受けようとする患者における移植片対宿主病及び耐性の誘発に対する防止策として、ドナー細胞集団からＴ細胞及び／又はＢ細胞を枯渇させる目的で本発明の細胞標的化分子又はそれらの医薬組成物を利用することも本発明の範囲内である（例えばvan Heeckeren W et al., Br J Haematol 132: 42-55 (2006)を参照;例えばAlpdogan O, vanden Brink M, Semin Oncol 39: 629-42 (2012)を参照）。
本発明の細胞毒性のポリペプチド若しくは細胞標的化分子、又はそれらの医薬組成物の特定の実施形態を使用して、感染細胞と物理的に組み合わされていることが見出された細胞外生体分子を標的化することによって、患者における感染細胞を殺滅することができる。
本発明の細胞標的化分子、又はそれらの医薬組成物の特定の実施形態は、免疫系を活性化して場所の秩序を保つために、非自己のＴ細胞エピトープペプチド提示細胞を生物内の
場所に「接種」するのに使用することができる。この本発明の「接種」方法の特定のさらなる実施形態において、場所は、腫瘤又は感染組織の部位である。この本発明の「接種」方法の好ましい実施形態において、非自己のＴ細胞エピトープペプチドは、細胞標的化分子の標的細胞によってまだ提示されていないペプチド、標的細胞によって発現されるいずれのタンパク質内でも提示されていないペプチド、標的細胞のプロテオーム内で提示されていないペプチド、接種しようとする部位の細胞外の微環境中で提示されていないペプチド、及び標的化しようとする腫瘤又は感染組織の部位中で提示されていないペプチドからなる群より選択される。
この「接種」方法は、エフェクターＴ細胞による認識及び下流の免疫応答の活性化のために、１又は２以上のＭＨＣクラスＩで提示されたＴ細胞エピトープで脊索動物内の１又は２以上の標的細胞を標識するように機能する。本発明の細胞標的化分子の、細胞の内在化、細胞内の経路決定、及びＴ細胞エピトープ送達の機能を利用することによって、送達されたＴ細胞エピトープを表示する標的細胞は、宿主Ｔ細胞による提示標的細胞の認識の誘導及びＣＴＬによる標的細胞殺滅を含むさらなる免疫応答の誘導に利用される。この本発明の細胞標的化分子を使用する「接種」方法は、細胞標的化分子によって送達されたＴ細胞エピトープを提示するか否かにかかわらず、例えば腫瘤又は感染組織の部位などの接種された微環境内で適応免疫応答を誘導して細胞を攻撃することによって、一時的なワクチン接種作用を提供することができる。この「接種」方法はまた、生物内の標的細胞集団、腫瘤、及び／又は感染組織の部位に対する免疫寛容の破壊を誘導する場合もある。
加えて、本発明は、患者において疾患、障害又は状態を治療する方法であって、それを必要とする患者に、本発明の細胞毒性ポリペプチド若しくは細胞標的化分子、又はそれらの医薬組成物の少なくとも１つの治療有効量を投与するステップを含む方法を提供する。本方法を使用して治療が可能な検討される疾患、障害、及び状態としては、がん、悪性腫瘍、非悪性腫瘍、成長異常、免疫障害、及び微生物感染が挙げられる。本発明の化合物の「治療上有効な投薬量」の投与は、疾患の症状の重症度の減少、疾患の症状がない期間の頻度及び持続時間の増加、又は疾患の苦しみによる損傷若しくは能力障害の予防をもたらすことができる。
本発明の化合物の治療有効量は、投与経路、治療される哺乳動物のタイプ、及び検討される具体的な患者の身体的特性によって決まると予想される。この量を決定するためのこれらの要因及びそれらの関係は、医療分野における熟練した技術者に周知である。この量及び投与方法は、最適な効能を達成するように調整されてもよく、体重、食事、並行して行われる薬物療法のような要因、及び医療分野における当業者に周知の他の要因によって決めてもよい。ヒトでの使用にとって最も適切な投薬量及び用量レジメンは、本発明により得られた結果から導くことができ、適切に設計された臨床試験で確認してもよい。有効な投薬量及び治療プロトコールは、実験動物において低用量で開始して、次いで作用をモニターしながら投薬量を増加させ、同様に投薬レジメンを系統的に変更するという従来の手段によって決定してもよい。所与の対象ごとの最適な投薬量を決定する際に、臨床医により極めて多くの要因を検討に入れることができる。このような検討は当業者公知である。
許容できる投与経路は、これらに限定されないが、エアロゾル、経腸、経鼻、眼、経口、非経口、直腸、経膣、又は経皮（例えばクリーム、ゲル又は軟膏の局所投与、又は経皮パッチ手段による）などの当業界において公知のあらゆる投与経路を指す場合がある。「非経口投与」は、典型的には、作用が意図される部位での注射又はそのような部位と連通する注射に関連し、眼窩下、点滴、動脈内、嚢内、心臓内、皮内、筋肉内、腹膜内、肺内、脊髄内、胸骨内、髄腔内、子宮内、静脈内、クモ膜下、被膜下、皮下、経粘膜、又は経気管投与などが挙げられる。
本発明の医薬組成物の投与のために、投薬量範囲は、一般的には、宿主の体重に対して、約０．０００１～１００ミリグラム／キログラム（ｍｇ／ｋｇ）及びそれより多く、通常は０．０１～５ｍｇ／ｋｇであると予想される。例示的な投薬量は、体重１ｋｇ当たり０．２５ｍｇ、体重１ｋｇ当たり１ｍｇ、体重１ｋｇ当たり３ｍｇ、体重１ｋｇ当たり５ｍｇ若しくは体重１ｋｇ当たり１０ｍｇ、又は１～１０ｍｇ／ｋｇの範囲内であり得る。例示的な治療計画は、１日１回若しくは２回の投与、又は週１回若しくは２回の投与、２週毎に１回、３週毎に１回、４週毎に１回、月１回、２若しくは３ヶ月毎に１回、又は３～６ヶ月毎に１回である。投薬量は、特定の患者ごとに治療的有用性を最大化するために必要に応じて、熟練した健康管理の専門家によって選択及び再調整が可能である。
本発明の医薬組成物は、典型的には、同じ患者に複数の機会で投与されると予想される。１回の投薬間の間隔は、例えば２～５日、１週間、１ヶ月、２若しくは３ヶ月、６ヶ月、又は１年であり得る。また投与間の間隔は、対象又は患者における血中濃度又は他のマーカーの調節に基づいて不規則であってもよい。本発明の化合物のための投薬レジメンは、体重１ｋｇ当たり１ｍｇ又は体重１ｋｇ当たり３ｍｇの静脈内投与を包含し、ここで本化合物は、２～４週間毎に６回の投薬、次いで３ヶ月毎に体重１ｋｇ当たり３ｍｇ又は体重１ｋｇ当たり１ｍｇで投与される。
本発明の医薬組成物は、当業界において公知の様々な方法の１又は２以上を使用する１又は２以上の投与経路を介して投与してもよい。熟練した作業者は認識しているものと予想されるように、投与の経路及び／又は様式は、所望の結果に応じて様々であると予想される。本発明のポリペプチド、タンパク質、及び医薬組成物のための投与経路としては、例えば、静脈内、筋肉内、皮内、腹膜内、皮下、脊髄、又は他の非経口投与経路、例えば注射又は点滴による投与経路が挙げられる。他の実施形態において、本発明のポリペプチド、タンパク質、又は医薬組成物は、非経口経路、例えば、局所、表皮又は粘膜の投与経路、例えば、鼻腔内、口腔、経膣、直腸、舌下、若しくは局所での投与経路などによって投与され得る。
本発明の治療用ポリペプチド、タンパク質、又は医薬組成物は、当業界において公知の様々な医療用デバイスの１又は２以上を用いて投与されてもよい。例えば、一実施形態において、本発明の医薬組成物は、無針皮下注射デバイスを用いて投与されてもよい。本発明において有用な周知のインプラント及びモジュールの例は、当業界において、例えば、制御された速度で送達するための組み込み型マイクロ点滴ポンプ；経皮投与するためのデバイス；正確な点滴速度で送達するための点滴ポンプ；連続的に薬物送達するための流量可変の組み込み型点滴デバイス；及び浸透性薬物の送達系などが挙げられる。これらの及び他のこのようなインプラント、送達系、及びモジュールは、当業者公知である。
本発明のポリペプチド、タンパク質、又は医薬組成物は、単独で、又は１又は２以上の他の治療剤又は診断剤と組み合わせて投与されてもよい。組合せ療法は、治療しようとする特定の患者、疾患又は状態に基づき選択された少なくとも１つの他の治療剤と組み合わされた、本発明の細胞毒性細胞標的化分子又はそれらの医薬組成物を包含していてもよい。他のこのような薬剤の例としては、とりわけ、細胞毒性の抗がん剤若しくは化学療法剤、抗炎症剤若しくは増殖抑制剤、抗微生物剤若しくは抗ウイルス剤、成長因子、サイトカイン、鎮痛薬、治療活性を有する小分子若しくはポリペプチド、単鎖抗体、古典的な抗体若しくはそれらのフラグメント、又は１又は２以上のシグナル伝達経路をモジュレートする核酸分子、及び治療的又は予防的処置レジメンを補足するか又は別の方法でそのようなレジメンにおいて有益な可能性がある類似のモジュレートする治療剤が挙げられる。
本発明のポリペプチド、タンパク質、又は医薬組成物を用いた患者の治療は、好ましく
は、標的化された細胞の細胞死及び／又は標的化された細胞の成長の阻害をもたらす。そのようなものとして、本発明の細胞毒性細胞標的化分子、及びそれらを含む医薬組成物は、標的細胞の殺滅又は枯渇が有益であり得る様々な病理学的障害、例えば、とりわけ、がん、腫瘍、他の成長異常、免疫障害、及び感染細胞を治療するための方法において有用であると予想される。本発明は、細胞増殖を抑制し、新形成、過剰に活性なＢ細胞、及び過剰に活性なＴ細胞などの細胞の障害を治療するための方法を提供する。
特定の実施形態において、本発明のポリペプチド、タンパク質、及び医薬組成物は、がん、腫瘍（悪性及び良性）、成長異常、免疫障害、及び微生物感染を治療又は予防するのに使用することができる。さらなる態様において、上記のエクスビボの方法を上記のインビボの方法と組み合わせて、骨髄移植のレシピエントにおける拒絶を治療又は予防する方法、及び免疫寛容を達成するための方法を提供することができる。
特定の実施形態において、本発明は、ヒトなどの哺乳動物の対象において悪性腫瘍又は新生物及び他の血液細胞に関連するがんを治療するための方法であって、それを必要とする対象に本発明の細胞毒性タンパク質又は医薬組成物の治療有効量を投与するステップを含む方法を提供する。
本発明の細胞毒性ポリペプチド、タンパク質、及び医薬組成物は、例えば、不要なＴ細胞を除去することにおける使用、免疫応答をモジュレートして移植片対宿主反応を治療することにおける使用、抗ウイルス剤としての使用、抗菌剤としての使用、及び移植組織から不要な細胞型を取り除くことにおける使用などの様々な適用を有する。本発明の細胞毒性ポリペプチド、タンパク質、及び医薬組成物は、一般的に抗新生物剤であり、すなわちそれらは、がん又は腫瘍細胞の成長を阻害すること及び／又はそれらの死を引き起こすことによって、新生物又は悪性細胞の発生、成熟、又は蔓延の治療及び／又は予防が可能であることを意味する。
特定の実施形態において、本発明のポリペプチド、タンパク質、又は医薬組成物は、Ｂ細胞、形質細胞又は抗体が媒介する疾患又は障害、例えば白血病、リンパ腫、骨髄腫、ヒト免疫不全ウイルス関連の疾患、アミロイド症、溶血尿毒症症候群、多発性動脈炎、敗血症性ショック、クローン病、リウマチ様関節炎、強直性脊椎炎、乾癬性関節炎、潰瘍性大腸炎、乾癬、喘息、シェーグレン症候群、移植片対宿主疾患、移植片拒絶反応、糖尿病、血管炎、強皮症、及び全身性エリテマトーデスなどを治療するのに使用される。
別の態様において、本発明のポリペプチド、タンパク質、及び医薬組成物の特定の実施形態は、抗菌剤であり、すなわちそれらは、例えばウイルス、細菌、菌類、プリオン、又は原生動物によって引き起こされる微生物学的な病原性感染の獲得、発達、又は結果の治療及び／又は予防が可能であることを意味する。
患者におけるＴ細胞又はＢ細胞を殺滅する目的で本発明の細胞毒性タンパク質、又はそれらの医薬組成物を患者に投与することによるＴ細胞又はＢ細胞が媒介する疾患又は状態の予防又は治療を提供することは、本発明の範囲内である。この使用法は、移植される材料の源、例えばヒト又はヒト以外の源であるかどうかに関係なく、骨髄移植、幹細胞移植、組織移植、又は臓器移植のために患者を準備又は調整することに適合する。
本発明の細胞毒性ポリペプチド、タンパク質、又は医薬組成物を使用して宿主Ｔ細胞の標的化された細胞を殺滅することによって、宿主対移植片病の予防又は治療のために骨髄のレシピエントを提供することは、本発明の範囲内である。
本発明の細胞毒性ポリペプチド、タンパク質、及び医薬組成物は、本発明の細胞毒性ポ
リペプチド、タンパク質、又は医薬組成物の治療有効量をそれを必要とする患者に投与することを含むがんの治療方法に利用することができる。本発明の方法の特定の実施形態において、治療されるがんは、骨がん（例えば多発性骨髄腫又はユーイング肉腫）、乳がん、中枢／末梢神経系のがん（例えば脳がん、神経線維腫症、又は膠芽腫）、消化器がん（例えば胃がん又は結腸直腸がん）、生殖細胞がん（例えば卵巣がん及び睾丸がん）、腺がん（例えば膵臓がん、副甲状腺がん、褐色細胞腫、唾液腺がん、又は甲状腺がん）、頭頸部がん（例えば鼻咽頭がん、口腔がん、又は咽頭がん）、血液がん（例えば白血病、リンパ腫、又は骨髄腫）、腎臓から尿道のがん（例えば腎臓がん及び膀胱がん）、肝臓がん、肺／胸膜がん（例えば中皮腫、小細胞肺癌、又は非小細胞肺癌）、前立腺がん、肉腫（例えば血管肉腫、線維肉腫、カポジ肉腫、又は滑膜肉腫）、皮膚がん（例えば基底細胞癌、扁平上皮癌、又は黒色腫）、及び子宮がんからなる群より選択される。
本発明のポリペプチド、タンパク質、及び医薬組成物は、本発明の細胞毒性タンパク質又は医薬組成物の治療有効量をそれを必要とする患者に投与することを含む免疫障害の治療方法に利用することができる。本発明の方法の特定の実施形態において、免疫障害は、アミロイド症、強直性脊椎炎、喘息、クローン病、糖尿病、移植片拒絶反応、移植片対宿主病、橋本甲状腺炎、溶血尿毒症症候群、ＨＩＶ関連の疾患、紅斑性狼瘡、多発性硬化症、多発性動脈炎、乾癬、乾癬性関節炎、リウマチ様関節炎、強皮症、敗血症性ショック、シェーグレン症候群、潰瘍性大腸炎、及び血管炎からなる群より選択される疾患に関連する炎症に関する。
本発明の特定の実施形態は、がん、腫瘍、他の成長異常、免疫障害、及び／又は微生物感染を治療又は予防するための医薬組成物又は医薬品の成分として、本発明のポリペプチド又は細胞標的化分子を使用することである。例えば、患者の皮膚上に現れる免疫障害は、炎症を低下させようとする努力において、このような医薬品で治療され得る。別の例において、皮膚の腫瘍は、腫瘍サイズを低下させるか又は腫瘍を完全になくそうとする努力において、このような医薬品で治療され得る。
本発明の特定の細胞毒性ポリペプチド、タンパク質、及び医薬組成物は、免疫の破壊（immunolesioning）及びニューロンのトレースなどの分子神経外科適用で使用することができる（総論については、Wiley R, Lappi D,Adv Drug Deliv Rev 55: 1043-54(2003)
を参照）。例えば、標的化ドメインは、様々なリガンド、例えば神経回路に特異的なＧタンパク質共役受容体などのニューロン表面の受容体と結合することによって特異的な神経細胞型を標的化する神経伝達物質及び神経ペプチドから選択又は誘導されてもよい。同様に、標的化ドメインは、ニューロン表面の受容体と結合する抗体から選択又は誘導されてもよい。特定の毒素がそれら自身の逆行性軸索輸送をロバストに指示することから、本発明の特定の細胞毒性細胞標的化分子を使用して、細胞体から遠位の細胞毒性タンパク質注射部位で細胞外標的を発現するニューロンを殺滅することができる（Llewellyn-Smith I et al., J NeurosciMethods103: 83-90 (2000)を参照）。これらの神経細胞型特異的な
標的化細胞毒性ポリペプチド及びタンパク質は、例えば感覚のメカニズムを解明するための神経科学の調査（例えばMishraS, HoonM, Science 340: 968-71(2013)を参照）、及
びパーキンソン及びアルツハイマーなどの神経変性疾患のモデル系を作製すること（例えばHamlinA et al., PLoSOnee53472 (2013)を参照）において用途を有する。
本発明の特定の実施形態は、新生細胞及び／又は免疫細胞型の内部を標識又は検出するために、本発明のポリペプチド、タンパク質、医薬組成物、及び／又は診断用組成物を使用する方法である。本発明の特定のポリペプチド、タンパク質、及び医薬組成物の、逆行性細胞内輸送を介して細胞内の特異的な細胞型及び経路に侵入する能力に基づいて、特異的な細胞型の内部区画が、検出のために標識される。これは、患者内のインサイチュの細胞に、又は生物から取り出された細胞及び組織、例えば生検材料に行うことができる。
本発明の特定の実施形態は、疾患、状態及び／又は障害に関する情報収集の目的で細胞型の存在を検出するために、本発明のポリペプチド、タンパク質、医薬組成物、及び／又は診断用組成物を使用する方法である。本方法は、細胞を診断に十分な量の細胞毒性分子と接触させて、アッセイ又は診断技術によって細胞毒性分子を検出するステップを含む。成句「診断に十分な量」は、利用される特定のアッセイ又は診断技術によって情報収集目的で十分な検出及び正確な測定がもたらされる量を指す。一般的に、インビボでの診断での使用における生物全体にとって診断に十分な量は、対象１ｋｇ当たり０．１ｍｇ～１００ｍｇの非累積用量の、検出促進剤が連結された本発明の細胞標的化分子と予想される。典型的には、これらの情報収集方法で使用される本発明のポリペプチド又は細胞標的化分子の量は、なお診断に十分な量であるという条件で、可能な限り低いと予想される。例えば、生物におけるインビボでの検出の場合、対象に投与される本発明のポリペプチド、タンパク質、又は医薬組成物の量は、実行可能なレベルで可能な限り低いと予想される。
検出促進剤と組み合わされた本発明のポリペプチド及び細胞標的化分子の細胞型特異的な標的化は、本発明の分子の結合領域の細胞外標的生体分子と物理的に組み合わされた細胞を検出及びイメージングする方法を提供する。本発明のポリペプチド又は細胞標的化分子を使用する細胞のイメージングは、当業界において公知のあらゆる好適な技術によってインビトロ又はインビボで行ってもよい。診断の情報は、生物の全身イメージングなどの当業界において公知の様々な方法を使用して、又は生物から採取したエクスビボのサンプルを使用して収集してもよい。本明細書において使用される用語「サンプル」は、これらに限定されないが、流体、例えば血液、尿、血清、リンパ液、唾液、肛門の分泌物、膣の分泌物、及び精液、並びに生検手順により得られた組織などのあらゆるものを指す。例えば、様々な検出促進剤は、磁気共鳴映像法（ＭＲＩ）、光学的方法（例えば直接の、蛍光による、及び生物発光によるイメージング）、ポジトロンエミッショントモグラフィー（ＰＥＴ）、単光子放射型コンピューター断層撮影法（ＳＰＥＣＴ）、超音波、Ｘ線コンピューター断層撮影、及び上述のものの組合せなどの技術による、非侵襲的なインビボでの腫瘍イメージングために利用することができる（総論については、Kaur S et al., Cancer Lett 315: 97-111 (2012)を参照）。
本発明の特定の実施形態は、がん、腫瘍、及び／又は免疫細胞型の内部を標識又は検出するための診断用組成物として、本発明のポリペプチド、タンパク質、又は医薬組成物を使用する方法である（例えば、Koyama Y et al., Clin Cancer Res 13: 2936-45 (2007)
、Ogawa M et al., Cancer Res 69: 1268-72 (2009)、Yang L et al., Small 5: 235-43 (2009)を参照）。本発明の特定のポリペプチド、タンパク質、及び医薬組成物の、逆行性細胞内輸送を介して細胞内の特異的な細胞型及び経路に侵入する能力に基づいて、特異的な細胞型の内部区画が、検出のために標識される。これは、患者内のインサイチュの細胞に、又は生物から取り出された細胞及び組織、例えば生検材料に行うことができる。
本発明の診断用組成物は、疾患、障害、又は状態を本発明の関連医薬組成物によって潜在的に治療可能であると特徴付けるのに使用することができる。本発明の特定の物質の組成物は、患者が、本明細書で説明されるような本発明の化合物、組成物又は関連方法を利用する治療方策に応答するグループに属するのかどうか、又は本発明の送達デバイスの使用に十分な適正があるのかどうかを決定するのに使用することができる。
本発明の診断用組成物は、疾患、例えばがんが検出された後、その疾患をより十分に特徴付けるために、例えば遠隔転移、不均質性、及びがん進行のステージをモニターするために使用することができる。疾患、障害又は感染の表現型の評価は、治療の意思決定をする間の予後及び予測の役に立つ可能性がある。疾患の再発において、本発明の特定の方法は、局所的な問題か又は全身性の問題かを決定するのに使用することができる。
本発明の診断用組成物は、治療剤のタイプ、例えば小分子薬物、生物学的薬物、又は細胞ベースの療法に関係なく、治療剤に対する応答を評価するのに使用することができる。例えば、本発明の診断の特定の実施形態は、腫瘍サイズの変化、数及び分布などの抗原陽性細胞集団の変化を測定すること、又はすでに患者に施された療法によって標的化された抗原とは異なるマーカーをモニターすることに使用することができる（Smith-Jones P etal., Nat. Biotechnol 22: 701-6 (2004)、EvansMet al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108: 9578-82 (2011)を参照）。
細胞型の存在を検出するのに使用される方法の特定の実施形態は、例えば骨がん（例えば多発性骨髄腫又はユーイング肉腫）、乳がん、中枢／末梢神経系のがん（例えば脳がん、神経線維腫症、又は膠芽腫）、消化器がん（例えば胃がん又は結腸直腸がん）、生殖細胞がん（例えば卵巣がん及び睾丸がん）、腺がん（例えば膵臓がん、副甲状腺がん、褐色細胞腫、唾液腺がん、又は甲状腺がん）、頭頸部がん（例えば鼻咽頭がん、口腔がん、又は咽頭がん）、血液がん（例えば白血病、リンパ腫、又は骨髄腫）、腎臓から尿道のがん（例えば腎臓がん及び膀胱がん）、肝臓がん、肺／胸膜がん（例えば中皮腫、小細胞肺癌、又は非小細胞肺癌）、前立腺がん、肉腫（例えば血管肉腫、線維肉腫、カポジ肉腫、又は滑膜肉腫）、皮膚がん（例えば基底細胞癌、扁平上皮癌、又は黒色腫）、子宮がん、ＡＩＤＳ、アミロイド症、強直性脊椎炎、喘息、自閉症、心臓発生、クローン病、糖尿病、エリテマトーデス、胃炎、移植片拒絶反応、移植片対宿主病、グレーブス病、橋本甲状腺炎、溶血尿毒症症候群、ＨＩＶ関連の疾患、紅斑性狼瘡、リンパ増殖性障害、多発性硬化症、重症筋無力症、神経炎症、多発性動脈炎、乾癬、乾癬性関節炎、リウマチ様関節炎、強皮症、敗血症性ショック、シェーグレン症候群、全身性エリテマトーデス、潰瘍性大腸炎、血管炎、細胞増殖、炎症、白血球活性化、白血球接着、白血球走化性、白血球成熟、白血球遊走、ニューロンの分化、急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ，acute lymphoblastic leukemia）、Ｔ急性リンパ性白血病／リンパ腫（ＡＬＬ）、急性骨髄性白血病、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ，acute myeloid leukemia）、Ｂ細胞慢性リンパ球性白血病（Ｂ－ＣＬＬ，B-cellchronic lymphocytic leukemia）、Ｂ細胞前リンパ球性リンパ腫、バーキットリンパ腫（ＢＬ，Burkitt's lymphoma）、慢性リンパ球性白血病（ＣＬＬ，chronic lymphocytic leukemia）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ－ＢＰ，chronic myelogenous leukemia）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ，chronicmyeloidleukemia）、びまん性大細胞型Ｂ細胞リンパ腫、濾胞性リンパ腫、ヘアリーセル白血病（ＨＣＬ，hairy cell leukemia）、ホジキンリンパ腫（ＨＬ，Hodgkin's Lymphoma）、血管内大細胞型Ｂ細胞リンパ腫、リンパ腫様肉芽腫症、リンパ形質細胞性リンパ腫、ＭＡＬＴリンパ腫、マントル細胞リンパ腫、多発性骨髄腫（ＭＭ，multiple myeloma）、ナチュラルキラー細胞白血病、節性辺縁帯Ｂ細胞リンパ腫、非ホジキンリンパ腫（ＮＨＬ，Non-Hodgkin's lymphoma）、プラズマ細胞性白血病、形質細胞腫、原発性滲出液リンパ腫、前リンパ球性白血病、前骨髄球性白血病、小リンパ球性リンパ腫、脾性辺縁帯リンパ腫、Ｔ細胞リンパ腫（ＴＣＬ，T-cell lymphoma）、重鎖病、単クローン性免疫グロブリン血症、単クローン性免疫グロブリン沈着症、骨髄異形成症候群（ＭＤＳ，myelodusplastic syndrome）、くすぶり型多発性骨髄腫、及びワルデンシュトレーム型マクログロブリン血症などの疾患、障害、及び状態に関する情報を収集するのに使用することができる。
特定の実施形態において、本発明のポリペプチド及び細胞標的化分子、又はそれらの医薬組成物は、診断及び治療の両方に、又は診断単独に使用される。いくつかの状況において、治療のために本発明のポリペプチド又は細胞標的化分子を選択する前に、対象及び／又は例えば治療が必要な患者などの対象からの罹患組織で発現されたＨＬＡバリアント及び／又はＨＬＡ対立遺伝子を決定又は検証することが望ましいと予想される。
以下の、１）ＣＤ８＋Ｔ細胞の高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞の
脱免疫化されたポリペプチド、２）ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを提示する毒素によって誘導されたポリペプチド、及び３）上述のポリペプチドを含み、特定の細胞型を特異的に標的化することが可能な、選択的に細胞毒性の細胞標的化タンパク質の非限定的な実施例によって、本発明をさらに例示する。
［実施例］
以下の実施例は、本発明のいくつかの実施形態を証明する。しかしながら、これらの実施例は例示目的のためのものに過ぎず、本発明の条件及び範囲に関して全体的に明確であると意図されるものではなく、解釈されるべきでもないと理解される。以下の実施例における実験は、そうでなければ詳細に説明される場合を除いて、当業者には周知であり、日常的である標準的な技術を用いて実行された。
ＭＨＣクラスＩシステムによるＴ細胞免疫原性エピトープペプチドの提示はＣＴＬ介在溶解による殺滅のために提示細胞を標的とし、局所微小環境での免疫刺激を引き起こす。標的細胞内在化治療学での毒素エフェクターポリペプチド成分内の免疫原性エピトープ配列を加工することによって、免疫刺激抗原の標的送達及び提示を達成することができる。例えば、高免疫原性を有する既知のウイルス抗原などの免疫刺激非自己抗原の提示は、他の免疫細胞への標的細胞シグナルによって、標的細胞を破壊し、より多くの免疫細胞をエリアに補充する。
本実施例において、１又は２以上のＴ細胞エピトープを含ませるために内部領域を加工することによって、Ｔ細胞エピトープは志賀毒素エフェクターポリペプチド及びジフテリア毒素エフェクターポリペプチドに組み込まれ又は挿入され、標的細胞内在化分子の成分としての機能を果たすことができる。従って、出発ポリペプチドへのアミノ酸残基、ペプチド、又はポリペプチド成分が付加された末端融合はない。
本実施例において、複数のアミノ酸置換を加工することによって、元の毒素エフェクターポリペプチドと比較して、例示的毒素エフェクターポリペプチドのアミノ酸残基の総数が変化せずに、多くのＴ細胞エピトープが標的細胞内在化分子の毒素エフェクターポリペプチド成分に組み込まれた。従って、本実施例で試験した全てのジフテリア毒素エフェクターポリペプチド及び多くの志賀毒素エフェクターポリペプチドについて、追加のアミノ酸挿入はなく、存在するアミノ酸置換のみの結果、元のポリペプチドの元の長さが維持された。
細胞標的化分子の成分（例えば、抗毒素及びリガンド毒素融合など）として機能することができる、新規の毒素由来エフェクターポリペプチドが作製され、細胞内在化、細胞質ゾルへの細胞内ルーティング、及びＣＴＬにシグナルを送るために、ＭＨＣクラスＩ経路によって標的細胞表面に提示するための、細胞質ゾルへのＴ細胞エピトープの送達を促進することができる。
いくつかの新規の毒素由来エフェクターポリペプチドはまた、１又は２以上の本発明の方法を用いて、Ｂ細胞エピトープ領域にＴ細胞エピトープを組み込み又は挿入することによって、脱免疫化された。脱免疫化と同時に、同じ毒素ポリペプチド領域内の標的細胞の表面にＴ細胞エピトープを提示させるために、予測されたＢ細胞エピトープ領域を、ＭＨＣクラスＩ分子と結合すると予測された既知のＴ細胞エピトープに置換することによって破壊した。毒素由来ポリペプチドのアミノ酸配列を、コンピューターで抗原性及び／又は免疫原性Ｂ細胞エピトープを予測するために分析した。様々なＴ細胞エピトープが組み込まれた毒素由来ポリペプチドを、毒素エフェクター機能の保持について実験した。
本発明の毒素エフェクターポリペプチドを提示する例示的Ｔ細胞エピトープの毒素エフ
ェクター機能の保持について試験し、本明細書で「野生型」又は「ＷＴ」と呼ばれる、野生型毒素ポリペプチド配列を含む毒素エフェクターポリペプチドと比較し、毒素エフェクター領域にいかなる内部改変又は変異も起こらなかった。
本発明の志賀毒素由来ポリペプチドを提示する例示的ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープについての以下の実施例は、ＭＨＣクラスＩ提示のためのＴ細胞エピトープの送達及び、１又は２以上の志賀毒素エフェクター機能の保持を同時に提供する方法を証明する。さらに、本発明の例示的ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを提示する及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素由来ポリペプチドについての以下の実施例は、１）ＭＨＣクラスＩ提示のためのＴ細胞エピトープの送達、２）１又は２以上の毒素エフェクター機能の保持、３）毒素エフェクター領域の脱免疫化を同時に提供する方法を証明する。
標的生体分子に結合する本発明の例示的細胞標的化分子は標的細胞タイプによって発現し、標的細胞に進入した。本発明の内在化された例示的細胞標的化タンパク質は、効果的に脱免疫化毒素エフェクター領域を細胞質ゾルに届け、標的細胞のＭＨＣクラスＩ経路に免疫原性Ｔ細胞エピトープを効果的に送達した結果、標的細胞領域の表面にＴ細胞エピトープペプチドが提示された。
細胞標的化分子のポリペプチド成分内へのＴ細胞エピトープの組み込み又は挿入
本実施例において、Ｔ細胞エピトープ配列はヒトウイルスタンパク質から選択され、志賀毒素エフェクターポリペプチドに組み込まれ又は挿入された。いくつかのバリアントにおいて、Ｔ細胞エピトープは、天然由来のＢ細胞エピトープを破壊するためにＢ細胞エピトープ領域に組み込まれ又は挿入された。他のバリアントにおいて、Ｔ細胞エピトープは、いかなるＢ細胞エピトープも含まれることが予測されない領域に組み込まれ、従って、これらの改変がいかなる主なＢ細胞エピトープも破壊することは予測されない。いくつかの上記のバリアントにおいて、Ｔ細胞エピトープは触媒活性を破壊することが予測される領域に組み込まれる。
Ａ．組み込み又は挿入のためのＴ細胞エピトープペプチドの選択
本実施例において、既知のＴ細胞エピトープペプチドが、細胞質ゾルに細胞内に届ける固有の能力を有する志賀毒素エフェクター領域に組み込む又は挿入するために選択された。例えば、多くの既知の免疫原性ウイルスタンパク質、並びにヒトインフルエンザＡウイルス及びヒトＣＭＶウイルスなどのヒトウイルスのウイルスタンパク質のペプチド成分がある。ヒトＭＨＣクラスＩ分子と結合及び／又はヒトＣＴＬ介在応答を誘発することができる免疫原性ウイルスペプチドが選択された。
免疫エピトープデーターベース（ＩＥＤＢ、Immune Epitope Database）分析資源ＭＨ
Ｃ－Ｉ結合予測コンセンサスツール及び推奨されるパラメーター（Kim Y et al., AcidsRes40:W252-30 (2012)）を用いて、ヒト個体群により多く見られる対立遺伝子にコードされる共通のヒトＭＨＣクラスＩヒト白血病抗原（ＨＬＡ、human leukocyte antigen）バリアントに結合する能力について、Ｔ細胞エピトープ（配列番号４～１０）と予測される７つのペプチドを評価した。ＩＥＤＢ ＭＨＣ－Ｉ結合予測分析は「ＡＮＮ親和性」を予測した。「ＡＮＮ親和性」は入力されたペプチドと選択されたヒトＨＬＡバリアント間での推定される結合親和性であり、５０ナノモル（ｎＭ）未満であるＩＣ５０値が高親和性とみなされ、５０～５００ｎＭのＩＣ５０値が中程度の親和性とみなされ、５００～５０００ｎＭのＩＣ５０値が低親和性とみなされる。ＩＥＤＢ ＭＨＣ－Ｉ結合予測分析では、最も低いパーセンタイル順位が、最も良いバインダーであることを示した。表１は、選択されたヒトＨＬＡバリアントに結合する、７つの被検Ｔ細胞エピトープペプチド（配列番号４～１０）の、ＩＥＤＢ ＭＨＣ－Ｉ結合予測パーセンタイル順位及び予測される結合親和性を示す。
Figure 2023062014000004


ＩＥＤＢ ＭＨＣ－Ｉ結合予測分析の結果は、いくつかのペプチドは複数のヒトＭＨＣクラスＩ分子と高親和性で結合することが予測された一方で、他のペプチドは分析されたヒトＭＨＣクラスＩ分子とより中間（more moderate）の親和性で結合することが予測さ
れたことを示す。
Ｂ．毒素及び毒素エフェクターポリペプチド中のＢ細胞エピトープ領域の同定
プロテアソーム送達に適する固有の細胞内ルーティング特性を有する毒素由来ポリペプ
チドは、例えば抗毒素抗体の産生などの、脊索動物への投与後の望ましくない免疫応答の可能性を下げるために、脱免疫化のために選択された。毒素及び毒素由来ポリペプチドのアミノ酸配列を分析し、抗原性及び／又は免疫原性Ｂ細胞エピトープをコンピューターで予測した。
志賀毒素及びジフテリア毒素由来のポリペプチドエフェクターを、Ｂ細胞エピトープについて分析した。
志賀毒素由来エフェクターポリペプチド
初めに、志賀毒素Ａサブユニット内のＢ細胞エピトープ領域を同定した。計算法を利用して、投与後の哺乳類の免疫システムによる応答を誘発する可能性がある志賀毒素Ａサブユニット配列中の抗原性及び／又は免疫原性Ｂ細胞エピトープを予測した。
ポリペプチド配列、志賀様毒素Ａ鎖の３Ｄ構造データ（PDB番号：１ＤＭ０＿Ａ）及びProImmune社（Sarasota,FL, U.S.）が提供するREVEAL（登録商標）システムを使って、志
賀毒素のＡサブユニット内の直鎖状Ｂ細胞エピトープを予測した。同時に、BcePredウェ
ブサーバー（Saha S, Raghava G, Lecture Notes in ComputSci3239: 197-204 (2004)
）、Bepipred直鎖状エピトープ予測（Larsen J et al., Immunome Res 2: 2 (2006)）、ElliPro抗体エピトープ予測（HasteAndersen P etal., Protein Sci 15: 2558-67 (2006)
、Ponomarenko J, Bourne P, BMC StructBiol7: 64 (2007)）、及び／又はEpitopiaサー
バー（Rubinstein N et al., BMC Bioinformatics 10: 287 (2009)）を用いて、志賀毒素のＡサブユニットのアミノ酸配列内のＢ細胞エピトープを予測した。Epitopiaサーバー予測を使って、免疫原性Ｂ細胞エピトープを同定し、Epitopiaの免疫原性スケールで多数の残基を含む直鎖状アミノ酸残基の範囲を「高」（４又は５のスコア）とした。様々な計算法によって、３つの典型的な志賀毒素Ａサブユニットで、Ｂ細胞エピトープ領域についての同様の予測が明らかになった（表２～４）。
Figure 2023062014000005


Figure 2023062014000006


Figure 2023062014000007


細胞内在化を誘導し、細胞質ゾルへの細胞内ルーティングを誘導することができる、志賀毒素由来毒素エフェクターポリペプチドに加えて、他のタンパク質からの細胞質ゾルルーティングエフェクター領域は、例えば他のタンパク質毒素などの、本発明のポリペプチドの改変のためのポリペプチド源として選択することができる。
ジフテリア毒素由来エフェクターポリペプチド
ジフテリア毒素は、抗毒素及びリガンド毒素融合分子を設計するために用いられており、ジフテリア由来成分は細胞内在化及び細胞質ゾルルーティングエフェクター機能を提供することができる。計算法を利用して、哺乳類の免疫システムによる応答を誘発する可能性があるジフテリア毒素Ａサブユニット中の抗原性及び／又は免疫原性Ｂ細胞エピトープを予測した。BcePredウェブサーバー（Saha S, Raghava G, Lecture Notes in Comput Sci 3239: 197-204 (2004)）を使って、ジフテリア毒素のＡサブユニット（配列番号４４）中のＢ細胞エピトープ領域を予測した。この計算法で、典型的なジフテリア毒素Ａサブユニット中に７つの推定されるＢ細胞エピトープ領域があることが明らかになった（表５）。さらに、米国立アレルギー感染病調査所（ＮＩＡＩＤ、National Institutes of Allergy and Infectious Diseases of the U.S.）が管理する免疫エピトープデーターベース（ＩＥＤＢ）は、全ての実験で特徴づけられたジフテリア毒素のＢ細胞及びＴ細胞エピトープを提供すると言われている。現在、ＩＥＤＢは、本実施例で使用されるジフテリア毒素Ａサブユニット及びジフテリア毒素エフェクターポリペプチド配列番号４４に関連するペプチドエピトープに関する少なくとも１つの陽性測定を有する７つのエピトープを提供する（表５、並びに配列番号４４の領域１８２～２０１及び２２５～２３８を参照されたい）。
Figure 2023062014000008


Ｃ．毒素及び毒素エフェクターポリペプチド中のＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域の同定
志賀毒素ＡサブユニットにいかなるＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープが存在するか分析した。
Ｔ細胞エピトープを、ProImmune社（Sarasota, FL, U.S.）によるREVEAL（商標）免疫原
性システム（ＩＳ、immunogenicity System）Ｔ細胞アッセイによって、志賀様毒素１の
成熟Ａサブユニット（配列番号１）について予測した。このアッセイは、対象タンパク質の複数の重複するペプチド配列を使って、ＣＤ８＋Ｔ細胞が枯渇された健康なドナーの細胞試料のＣＤ４＋Ｔ細胞による免疫応答の誘発について試験した。以下の天然に配置されるアミノ酸残基群で同定された７つのＴ細胞エピトープ領域をこのアッセイで使用した：ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域＃１：４～３３、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域＃２：３４～７８、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域＃３：７７～１０３、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域＃４：１２８～１６８、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域＃５：１６０～１８３、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域＃６：２３６～２５８、及びＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域＃７：２７４～２９３。
本実施例において、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドの生成のための元のポリペプチドとして用いられるジフテリア毒素Ａサブユニット及び野生型ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドを、Ｔ細胞エピトープについてＮＩＡＤのＩＥＤＢで調査した。現在、ＩＥＤＢは、本実施例のジフテリア毒素Ａサブユニット及びジフテリア毒素エフェクターポリペプチドに関連するＴ細胞免疫原性に関する少なくとも１つの陽性測定を有する２５を超えるペプチドエピトープを提供する。ＩＥＤＢによって、ジフテリア毒素中で同定された、いくつかのＴ細胞エピトープ領域は、例えば、配列番号４５のポリペプチドのアミノ酸残基の位置で重複する免疫原性ペプチドに対応する以下の領域などである：２～２１、２２～４１、３２～７１、７２～９１、８２～２２１、２１２～２３１、２３２～２５１、及び２５１～３０１。
Ｄ．内因性Ｂ細胞エピトープ領域及び／又は内因性ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域を破壊する、組み込まれた又は挿入されたＴ細胞エピトープを有する毒素エフェクターポリペプチドの生成
本発明の例示的毒素由来エフェクターポリペプチドは、志賀毒素及びジフテリア毒素を用いて作製した。
志賀毒素由来エフェクターポリペプチド
志賀毒素エフェクター領域、及び細胞標的化のための免疫グロブリン型結合領域を含む細胞毒性タンパク質をコードする核酸は、当技術分野で既知の技術を用いて産生した。本実施例の元の細胞毒性タンパク質中の志賀毒素エフェクター領域は配列番号１のアミノ酸１～２５１を含んでいた。
当技術分野で既知の標準的な技術を用いて、元の細胞毒性タンパク質をコードする核酸に一連の変異を加工し、元の細胞毒性タンパク質と比較して複数のアミノ酸置換を含む細胞毒性タンパク質のバリアントを産生した。変異を選択し、表１に記載の少なくとも１つのＴ細胞エピトープペプチドを組み込むことによって、表２に記載の少なくとも１つの予測されたＢ細胞エピトープ領域を破壊した。本実施例に記載される本発明の多くの例示的ポリペプチドに対して、各Ｔ細胞エピトープのアミノ酸配列を、バリアント中のコードされるアミノ酸残基の総数が元の細胞毒性タンパク質のアミノ酸残基の総数から変化しないように、核酸を操作することによって組み込んだ。異なる本発明の例示的志賀毒素エフェクターポリペプチド成分を含む異なる本発明の例示的細胞毒性、細胞標的化タンパク質をコードする、１０個の異なるポリヌクレオチドを生成した。これらの例示的ポリヌクレオチドを使って、当技術分野で既知の標準的な技術を使用して、１０個の本発明の例示的細胞毒性、細胞標的化タンパク質を産生した。いくつかの実験において、本実施例の細胞毒性タンパク質の全長コード配列は、Strep-tag（登録商標）IIをコードするポリヌクレオ
チドで開始又は終止し、検出及び精製を容易にした。タンパク質は当業者に既知の方法を用いて精製した。
１１個の細胞毒性タンパク質は元の細胞毒性タンパク質に由来し、それぞれ本発明の例示的志賀毒素エフェクターポリペプチド（配列番号１１～２１から選択される）を含み、表１に記載のＴ細胞エピトープを用いて表２の少なくとも１つの予測されたＢ細胞エピトープ領域が破壊された。各１１個の細胞毒性タンパク質についての、元の志賀毒素エフェクターポリペプチドへの正確な改変は表６に示される。表６には、各組み込まれたＴ細胞エピトープの配列、改変がある志賀毒素Ａサブユニットの天然の位置、及びＢ細胞エピトープ領域の破壊されたアミノ酸の範囲が列挙されている。
Figure 2023062014000009


最初の９つの細胞毒性タンパク質はそれぞれ、組み込まれたＴ細胞エピトープを含む志賀毒素エフェクターポリペプチドを含んでいた（表６を参照されたい）、これは元の細胞毒性タンパク質の志賀毒素エフェクターポリペプチド成分のアミノ酸残基全体の総数が変化していないことを意味する。表６に列挙されたそれぞれの最初の９つの改変は、Ｂ細胞エピトープ領域を破壊する、組み込まれたＴ細胞エピトープを例示している。これら９つの改変は正確な置換であるので、Ｔ細胞エピトープ配列及び破壊されたＢ細胞エピトープ領域配列は長さが同じであり、列挙された各アミノ酸と、アミノ末端からカルボキシ末端へ順に１対１で一致している。表６の１０番目の志賀毒素エフェクターポリペプチドである５３－６１－Ｆ２は、一部の置換と、位置６１の１つのアミノ酸が挿入され、残りのカルボキシ末端がＷＴから１つの位置ずつアミノ酸残基が移動している。表６の１１番目の志賀毒素エフェクターポリペプチドは、天然に配置されるアミノ酸残基２４５及び２４６の間にＴ細胞エピトープ全体が完全に挿入されている。この挿入は、ＳＬＴ－１Ａのアミ
ノ酸２４３～２５９に天然に配置されるＢ細胞エピトープ領域＃９内にある。
コンピューターによる計算分析は、野生型志賀毒素に存在する少なくとも１つのＢ細胞エピトープが、８つのＴ細胞エピトープが組み込まれた又は挿入された志賀毒素エフェクターポリペプチドバリアントから削除されたことを予測し、表６のいかなる例示的志賀毒素エフェクターポリペプチド中の組み込まれた又は挿入されたＴ細胞エピトープによっても、新しいＢ細胞エピトープが生成されなかったことが予測された（以下の実施例３を参照されたい）。
さらに、配列番号１１～１７及び１９～２１で表される志賀毒素エフェクターポリペプチド全てで予測された内因性ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープが破壊されている。
ジフテリア毒素由来エフェクターポリペプチド
上記改変と同様に、志賀毒素由来ポリペプチド、Ｔ細胞エピトープはプロテアソーム送達エフェクター機能を有するジフテリア毒素由来ポリペプチドに組み込まれ、本発明のＴ細胞エピトープが組み込まれた、例示的ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドが作製された。Ｔ細胞エピトープは表１のペプチドから選択され、表５に記載される少なくとも１つの予測されるＢ細胞エピトープ領域を破壊するために組み込まれた。
本実施例の全てのジフテリア毒素由来ポリペプチドは、ジフテリア毒素Ｂサブユニットの転移ドメインに連結するジフテリア毒素Ａサブユニットの触媒ドメイン、毒素エフェクターポリペプチド領域に由来する、Ａ及びＢサブユニット間のフリン切断モチーフ、及び毒素エフェクターポリペプチド領域に由来する、Ａ及びＢサブユニットのシステイン間で予測されるジスルフィド結合を含んでいた。従って、本実施例におけるジフテリア毒素由来ポリペプチドは、プロテアソーム送達エフェクター領域及びリボ毒素エフェクターポリペプチドの両方を含む。本発明の例示的Ｔ細胞エピトープが組み込まれたジフテリア毒素エフェクターポリペプチドのポリペプチド配列は、配列番号４６、４７、及び４８として示される。
標準的な技術を用いて、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドに一連の変異が作製され、予測されたＢ細胞エピトープ領域が重複する位置にＴ細胞エピトープを組み込んだ（表５を参照されたい）。表７は、Ｔ細胞エピトープが組み込まれたジフテリア毒素エフェクターポリペプチドの例が、配列番号４４の天然ジフテリア毒素ポリペプチド配列を基にした組み込まれたＴ細胞エピトープの位置、Ｔ細胞エピトープ名、Ｔ細胞エピトープペプチド配列、破壊された、予測されたＢ細胞エピトープ領域、及び天然ジフテリア毒素ポリペプチド配列中の置換されたアミノ酸配列によって示されている。
Figure 2023062014000010


Ｔ細胞エピトープが組み込まれたジフテリア毒素エフェクターポリペプチドバリアント（配列番号４６、４７、及び４８）を、上記のように、予測されたＢ細胞エピトープの変化について分析した。全ての３つのＴ細胞エピトープが組み込まれたジフテリア毒素エフェクターポリペプチドバリアントにおいて、野生型ジフテリア毒素アミノ酸配列中の予測されたＢ細胞エピトープは削除されており、新しいＢ細胞エピトープは予測されなかった（表７）。
３つのＴ細胞エピトープが組み込まれたジフテリア毒素エフェクターポリペプチドバリアント（配列番号４６、４７、及び４８）、及び野生型毒素アミノ酸配列（配列番号４５）のみを含む元のジフテリア毒素エフェクターポリペプチドはそれぞれ、発現及び精製を容易にするために、アミノ末端メチオニン及びカルボキシ末端ポリヒスチジンタグ（６×Ｈｉｓタグ）と共に設計された。本発明の例示的Ｔ細胞エピトープが組み込まれたジフテリア毒素エフェクターポリペプチドバリアント及び野生型毒素アミノ酸配列のみを含む元のジフテリア毒素エフェクターポリペプチド共に当技術分野で既知の細菌系によって産生し、例えばニッケル－ニトリロ三酢酸（Ｎｉ－ＮＴＡ、nickel-nitrilotriacetic acid）樹脂クロマトグラフィーなどの当技術分野で既知の条件の下で精製した。
Ｅ．いかなるＢ細胞エピトープ領域も破壊しない、組み込まれたＴ細胞エピトープを有する志賀毒素エフェクターポリペプチドの生成
本実施例に記載の全ての方法からの全てのＢ細胞エピトープ領域予測からみて（表２）、いかなるＢ細胞エピトープも含むことが予測されなかったＳＬＴ－１Ａの領域を同定した。表１からのＴ細胞エピトープペプチド配列は、表８に示される本発明の３つの異なる例示的志賀毒素エフェクターポリペプチドを作製するために、天然アミノ酸を置換してＢ細胞エピトープが欠損していると同定された領域に組み込まれる。表８は、成熟かつ天然ＳＬＴ－１Ａポリペプチド配列の同定された領域及びＴ細胞エピトープ配列の置換は、志賀毒素エフェクターポリペプチドに構築されたことを示している（配列番号２２～３９を参照されたい）。
Figure 2023062014000011


正確な置換として、表８の組み込まれたＴ細胞エピトープを含む志賀毒素エフェクターポリペプチド配列を、BcePredプログラムを用いて分析した。正確な置換として、表８の
組み込まれたＴ細胞エピトープのいずれも、そのプログラムによって予測された６つのエピトープ領域を破壊しなかった。表８の組み込まれたＴ細胞エピトープ置換配列の１つである、バリアント７５－８３－Ｆ３は、新しいＢ細胞エピトープの予測をもたらした。領域（６６～７４）及び／又は（１５７～１６５）の近くに組み込まれているＴ細胞エピトープは、ＳＬＴ－１Ａ触媒活性に必要であると知られている少なくとも１つのアミノ酸（例えば、Ｙ７７及びＥ１６７）に近接していることより、志賀毒素エフェクター機能である触媒活性を妨げることができる。
さらに、配列番号２２～３９で表される志賀毒素エフェクターポリペプチドは全て、位置２２１～２２９に組み込まれた異種Ｔ細胞エピトープを有するポリペプチド（配列番号２６、３２及び３８で表される）を除いて、予測された内因性ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープが破壊されている。
Ｆ．毒素触媒機能を破壊する組み込まれたＴ細胞エピトープを有する毒素エフェクターポ
リペプチドの生成
志賀毒素Ａサブユニットの酵素活性に最も重要な残基としてチロシン７７（Ｙ７７）及びグルタミン酸１６７（Ｅ１６７）を含む（Di, Toxicon 57: 535-39 (2011)）。表１の
Ｔ細胞エピトープペプチド配列は、志賀毒素エフェクターポリペプチドに組み込まれ、Ｙ７７又はＥ１６７の一方が志賀毒素酵素活性を減らす又は削除するために変異される。触媒アミノ酸残基を破壊する異種Ｔ細胞エピトープを含む、６つの異なる本発明の例示的志賀毒素エフェクターポリペプチドが表９に示される。表９は、成熟かつ天然ＳＬＴ－１Ａポリペプチド配列の組み込まれたＴ細胞エピトープの位置、組み込まれた置換Ｔ細胞エピトープ配列、成熟かつ天然ＳＬＴ－１Ａポリペプチド配列の置換された配列、及び生じた触媒残基の破壊（配列番号２３、２９、４０、４１、４２、及び４３も参照されたい）を示す。
Figure 2023062014000012


配列番号２３、２９、４０、４２、及び４３で表される志賀毒素エフェクターポリペプチドは全て、予測された内因性ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープが破壊されている。さらに、表８に示される、いかなるＢ細胞エピトープ領域も破壊しない組み込まれたＴ細胞エピトープを有する例示的志賀毒素エフェクターポリペプチドの中で、少なくとも８つが志賀毒素エフェクター領域の触媒アミノ酸残基を破壊する（配列番号２３、２５、２９、３１、３５、及び３７を参照されたい）。
さらに、単一箇所への組み込み及び挿入のために、ＭＨＣクラスＩ提示のための複数の免疫原性Ｔ細胞エピトープが、同じ志賀毒素由来ポリペプチド又はジフテリア毒素由来ポリペプチド内に組み込まれ及び／又は挿入され、例えば最初に組み込まれたＴ細胞エピトープでＢ細胞エピトープ領域を破壊する、２番目に組み込まれたＴ細胞エピトープで毒素触媒機能を破壊するなど、同時に複数のＴ細胞エピトープを標的送達するために用いられる。しかしながら、注目すべきは、単一の組み込まれたＴ細胞エピトープは、Ｂ細胞エピトープ領域及び毒素触媒機能を同時に破壊することができることである。
リボ毒素エフェクター機能の保持についての毒素由来エフェクターポリペプチドの試験
本発明の例示的毒素由来エフェクターポリペプチドを、リボ毒素エフェクター機能の保
持について試験した。
志賀毒素由来エフェクターポリペプチドのリボ毒素の保持
１又は２以上のＴ細胞エピトープを組み込み又は挿入後、元の志賀毒素エフェクターポリペプチドの酵素活性の保持は、リボソーム阻害アッセイを用いて決定した。本実施例において、このアッセイの結果は細胞毒性タンパク質の成分としての各志賀毒素エフェクターポリペプチドでのアッセイの実施を基にした。異なる志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む異なる細胞毒性タンパク質の特異的な細胞毒性は、組織培養細胞に基づく毒性試験を用いて測定した。本発明の例示的細胞毒性、細胞標的化タンパク質の酵素及び細胞毒性活性は、元の志賀毒素エフェクターポリペプチドのみ（細胞標的化結合領域なし）、及び野生型志賀毒素エフェクター領域を含む同じ細胞標的化ドメイン（例えば、細胞外標的生体分子と高親和性で結合することができる免疫グロブリン型結合領域を含む結合領域）を含む「ＷＴ」細胞毒性タンパク質と比較した。
組み込まれた又は挿入されたＴ細胞エピトープを含む細胞毒性タンパク質のリボソームの不活性化能力は、TNT（登録商標）Quick Coupled Transcription/Translationキット（L1170Promega社、Madison、WI、U.S.）を用いた無細胞の、インビトロでのタンパク質翻訳アッセイを用いて決定した。このキットには、Luciferase T7 Control DNA（L4821 Promega社、Madison、WI、U.S.）及びTNT（登録商標）Quick Master Mixが含まれる。リボソーム活性反応は製造業者の説明書に従って調製した。変異した志賀毒素エフェクターポリペプチド領域又はＷＴ領域の一方を含む、被検タンパク質の１０倍希釈系列は適切な緩衝液中で調製し、同一のTNT反応混合物成分系列を各希釈液について作製した。希釈系列中の各試料は、Luciferase T7 Control DNAと共に各TNT反応混合物と合わせた。被験試料を３０℃で１．５時間インキュベートした。インキュベーション後、Luciferase Assay試薬（E1483 Promega社、Madison、WI、U.S.）を全ての被験試料に添加し、ルシフェラーゼタンパク質翻訳量を製造業者の説明書に従って発光により測定した。翻訳阻害のレベルを、相対発光単位に対する総タンパク質の対数変換された濃度の非線形回帰分析により決定した。統計ソフトウェア（GraphPad Prism社、San Diego、CA、U.S.）を用いて、見出し用量応答阻害の下でｌｏｇ（阻害剤）対応答（３つのパラメータ）のPrismソフトウェア関数［Ｙ＝最低値＋（（最高値－最低値）／（１＋１０＾（Ｘ－ＬｏｇＩＣ５０）））］を用いて最大半量阻害濃度（ＩＣ５０）値を各試料について計算した。Ｂ細胞エピトープ置換／破壊志賀毒素エフェクターポリペプチド領域を含む脱免疫化タンパク質及び野生型志賀毒素エフェクター領域を含む対照タンパク質それぞれのＩＣ５０値を計算した。
表１０に示したように、本発明の例示的志賀毒素エフェクターポリペプチド領域は、野生型志賀毒素エフェクターポリペプチドに匹敵するリボソーム阻害を示した。表１０に報告されるように、野生型志賀毒素エフェクター領域を含む陽性対照構築物の１０倍以内のＩＣ５０を示した、本発明の志賀毒素エフェクターポリペプチドを含むいかなる構築物も、野生型に匹敵するリボソーム阻害活性を示すとみなされた。
Figure 2023062014000013


Ｔ細胞エピトープの組み込み／挿入後の、本発明の例示的志賀毒素エフェクターポリペプチドによる細胞毒性の保持を、細胞毒性タンパク質の成分としての志賀毒素エフェクターポリペプチドのコンテキストの細胞殺滅アッセイによって決定した。組み込まれた又は挿入されたＴ細胞エピトープを含む、志賀毒素エフェクターポリペプチドを含むタンパク質の細胞毒性レベルを、細胞外標的発現細胞を使用して、標的生体分子の細胞毒性タンパク質の結合領域を発現しない細胞と比較して決定した。細胞を３８４ウェルプレート中の２０μＬの細胞培養液に播種した（接着細胞はウェル当たり２×１０３細胞、タンパク質追加の前の日に播種し、浮遊細胞はウェル当たり７．５×１０３細胞、タンパク質追加と同じ日に播種した）。試験対象の変異志賀毒素エフェクターポリペプチド領域を含む各タンパク質の１０倍希釈系列を適切な緩衝液で調製し、５μＬの希釈液又は緩衝液対照を細胞に加えた。培地のみを含む対照のウェルを、ベースライン補正に用いた。細胞試料を、タンパク質又は緩衝液のみと共に、３７℃で３日間、５％二酸化炭素（ＣＯ２）の雰囲気中でインキュベートした。全細胞生存又は生存率を、製造業者の説明書に従って、CellTiter-Glo（登録商標）Luminescent Cell Viability Assay（G7573Promega社、Madison、WI、U.S.）を用いる発光読み出しを用いて決定した。
実験ウェルの生存率を、以下の式：（試験ＲＬＵ－平均培地ＲＬＵ）／（平均細胞ＲＬＵ－平均培地ＲＬＵ）＊１００を用いて計算した。Ｌｏｇポリペプチド濃度対生存率を、Prism（GraphPad Prism社、San Diego、CA、U.S.）中にプロットし、ｌｏｇ（阻害剤）対応答（３つのパラメーター）分析を用いて、被検タンパク質に関する最大半量細胞毒性濃度（ＣＤ５０）値を決定した。ＣＤ５０を表１０の本発明の例示的志賀毒素エフェクターポリペプチド、野生型志賀毒素エフェクター領域を含む陽性対照細胞毒性タンパク質、Ｓ
ＬＴ－１のＡサブユニットのみ（標的ドメインを含まない）を含む各タンパク質について計算した。
表１０に示されるように、本発明の例示的志賀毒素エフェクターポリペプチドを含むタンパク質は、野生型志賀毒素エフェクターポリペプチドに匹敵する細胞特異的な細胞毒性を示した。表１０で報告されるように、特異的な細胞毒性に関して、「ＷＴに匹敵」は組み込まれた又は挿入されたＴ細胞エピトープを含む志賀毒素エフェクターポリペプチドを含むタンパク質であり、標的陽性細胞集団に対するＣＤ５０が野生型志賀毒素エフェクター領域を含むタンパク質の１０倍以内及び／又はＳＬＴ－１Ａサブユニットのみの５０倍未満であるタンパク質であることを意味する。
さらに、本発明の例示的志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む同じタンパク質構築物は、生体分子標的陰性細胞（すなわち、細胞表面で、タンパク質構築物の細胞標的結合領域の生体分子標的を発現しない細胞）と比較して、生体分子標的陽性細胞に対して特異的な細胞毒性を示した。従って、表１０の例示的志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む全てのタンパク質は、野生型に匹敵する志賀毒素エフェクター機能を示す細胞毒性タンパク質であり、各細胞毒性タンパク質は、１又は２以上の予測されたＢ細胞エピトープ領域が破壊された。
リボ毒素のジフテリア毒素由来エフェクターポリペプチドの保持
例示的Ｔ細胞エピトープが組み込まれたジフテリア毒素エフェクターポリペプチドの触媒活性を、本明細書で「野生型」又は「ＷＴ」と呼ばれる、野生型アミノ酸配列のみを含むジフテリア毒素エフェクターポリペプチドと比較した。Ｔ細胞エピトープが組み込まれたジフテリア毒素エフェクターポリペプチドバリアントは共に、リボソームの不活性化活性を保持していた。
細胞標的化分子のコンテキスト中に組み込まれたＴ細胞エピトープを有するジフテリア毒素エフェクターポリペプチドバリアントの酵素活性の保持について、リボソーム阻害アッセイを用い、野生型ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドを陽性対照として、試験した。これらの毒素エフェクターポリペプチドのリボソームの不活性化能力を、特に断りのない限り、上記のように、TNT（登録商標）Quick CoupledTranscription/Translationキット（L1170 Promega社、Madison、WI、U.S.）を用いた無細胞のインビトロでのタンパク質翻訳アッセイを用いて決定した。初めに、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドを標準的な条件下で、フリン（New England Biolabs社、Ipswich、MA、U.S.）を用いて、インビトロで切断した。そして切断したタンパク質を緩衝液で希釈し、各試料の希釈系列を作製した。各希釈系列は上記のように、Luciferase T7 Control DNAと共にTNT反応混合物と組み合わせ、リボソームの不活性化活性について試験した。
上記のように、ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドのＩＣ５０を計算した。図２及び表１１は、本発明の例示的、Ｔ細胞が組み込まれたジフテリア毒素エフェクターポリペプチドによるジフテリアリボ毒素エフェクター機能の保持についての、このインビトロでのアッセイの結果を示す。ＩＣ５０値が野生型ジフテリア毒素エフェクターポリペプチド対照の１０倍以内であったので、Ｔ細胞が組み込まれたジフテリア毒素エフェクターポリペプチドの活性が野生型陽性対照に匹敵した（図２、表１１）。
Figure 2023062014000014


Ｔ細胞エピトープが組み込まれた毒素エフェクターポリペプチド中のＢ細胞エピトープ領域及びＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域の破壊による脱免疫化効果の試験
組み込まれた又は挿入されたＴ細胞エピトープを用いた、志賀毒素エフェクターポリペプチド中のＢ細胞エピトープ領域の破壊を、野生型アミノ酸配列のみを含む野生型志賀毒素エフェクターポリペプチドと比較した抗原性及び／又は免疫原性のレベルを調査することによって、脱免疫化について試験した。
ウェスタン分析による脱免疫化の試験
脱免疫化を分析するために、志賀毒素エフェクターポリペプチドの抗原性又は免疫原性のレベルを、コンピューター及び野生型志賀毒素エフェクターポリペプチドを認識する予め形成された抗体を用いたウェスタンブロッティングで試験した。
表６に記載の各志賀毒素エフェクターポリペプチド（配列番号１１～２１）を、以下のパラメーターを用いたBcePredウェブサーバーを用いて予測されたＢ細胞エピトープの破
壊について確認した：親水性の初期設定と共に読み出された柔軟性２、接近可能性２、露出面２．４、抗原性傾向１．８、柔軟性１．９、回転１．９、極性２．３、及び結合１．９（Saha S, Raghava G,Lecture Notes in ComputSci3239: 197-204 (2004)）。他の
プログラムによって野生型ＳＬＴ－１Ａサブユニット内で同定された３つの予測された免疫原性エピトープ領域（表２を参照されたい）は、初期設定でのBcePred柔軟性アプロー
チによって予測されず、分析できなかった。
配列番号１１～２１の、本発明のＴ細胞エピトープが組み込まれている又は挿入されている例示的志賀毒素エフェクターポリペプチドは、いかなるデノボでのエピトープ（ネオエピトープ）も導入されず、破壊されたと考えられる予測されたＢ細胞エピトープが削除された（表１２）。試験された本発明の例示的志賀毒素エフェクターポリペプチドは、BcePred柔軟性アプローチによっていかなるデノボでの予測されたＢ細胞エピトープも生成しなかった（表１２）。初期設定でのBcePred柔軟性アプローチで予測されなかったいかなるＢ細胞エピトープ領域も「同定されなかった」と示され、Ｔ細胞エピトープの組み込み又は挿入後の結果は、「該当なし（not applicable）」を意味する「Ｎ／Ａ」で示した。
Figure 2023062014000015


志賀毒素エフェクターポリペプチドの相対抗原性レベルを、予め形成された抗体である、配列番号１のアミノ酸１～２５１を含む野生型志賀毒素エフェクターポリペプチドを認識するポリクローナル及びモノクローナル抗体の両方を用いたウェスタンブロッティングによって、脱免疫化について試験した。
野生型志賀毒素配列のみ又はＴ細胞エピトープとの置換によるＢ細胞エピトープ領域が破壊された様々な改変志賀毒素配列の１つ（配列番号１１～１９）を含む細胞毒性タンパク質についてウェスタンブロッティングを行った。これらの細胞毒性タンパク質は複製するために等量を４～２０％ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ、sodium dodecyl sulfate）ポリアミドアクリルゲル（Lonza社、Basel、CH）にロードし、変性条件下で電気泳動した。得られたゲルはクマシー染色により分析するか、製造業者の説明書に従って、iBlot（登録商標）（Life Technologies社、Carlsbad、CA、U.S.）システムを用いてポリビニルジフルオライド（ＰＶＤＦ、polyvinyl difluoride）膜に転写した。得られた膜は以下の抗体を用いた標準的な条件下でプローブした：Streptag（登録商標）IIとして既知の、ポリペプチドNWSHPQFEKを認識するウサギポリクローナルα－NWSHPQFEK（A00626, Genscript社、Piscataway、NJ、U.S.）、マウスモノクローナルα－Ｓｔｘ（ｍＡｂ１又は抗ＳＬＴ－１Ａ ｍＡｂ１）（BEI NR-867 BEI Resources社、Manassas、VA、U.S.：志賀毒素及び志賀様毒素１Ａサブユニットと交差反応性を有する）、ウサギポリクローナル抗体α－ＳＬＴ－１Ａ（ｐＡｂ１又は抗ＳＬＴ－１Ａ ｐＡｂ１）（Harlan Laboratories社、Indianapolis、IN、U.S.、ＳＬＴ－１Ａアミノ酸１～２５１に対する注文によって産生され
た抗体）、及びペプチドRGIDPEEGRFNN及びHGQDSVRVGRに対するウサギポリクローナル抗体α－ＳＬＴ－１Ａ（ｐＡｂ２又は抗ＳＬＴ－１Ａ ｐＡｂ２）（Genscript社、Piscataway、NJ、U.S.、注文によって産生された抗体）。ペプチド配列RGIDPEEGRFNNはＳＬＴ－１Ａ及びＳｔｘＡのアミノ酸５５～６６に位置して予測されたＢ細胞エピトープにわたり、ペプチド配列HGQDSVRVGRはＳＬＴ－１Ａ及びＳｔｘＡの２１４～２２３に位置して予測されたＢ細胞エピトープにわたる。
抗体に結合した膜は標準的な条件下で検出し、適切な場合は西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ、horseradishperoxidase）合成二次抗体（ヤギ抗ウサギＨＲＰ又はヤギ抗マ
ウスＨＲＰ、ThermoScientific社、Rockford、IL、U.S.）を用いた。図３～４は、ゲル
及び／又は膜のレーンに番号が付けられたウェスタンブロットの画像と、同じそれぞれの番号についての図の説明が示され、志賀毒素エフェクターポリペプチドは各レーンにロードされた細胞毒性タンパク質試料の成分だった。各ゲルに対し、クマシー染色及び／又は抗streptag IIウェスタンブロットシグナルは総細胞毒性タンパク質ロード対照とする。
全ての改変された志賀毒素エフェクターポリペプチドは、野生型ＳＬＴ－１Ａを認識することができる１又は２以上の抗体による認識が減少又は破壊され、抗原性が減少し、脱免疫化が成功したことを示している。図３及び４に示されるウェスタンブロット分析の結果は表１３で要約する。
Figure 2023062014000016


ＣＤ４＋Ｔ細胞脱免疫化の試験
ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域で予測される破壊を、体外から投与されたポリペプチドの存在下でのヒトＣＤ４＋Ｔ細胞増殖アッセイ、及び投与されたポリペプチドで処理されたヒト単球存在下でのヒトＣＤ４＋樹状Ｔ細胞刺激アッセイを用いて、ＣＤ４＋Ｔ細胞免疫原性の減少について試験する。
当業者に既知のＴ細胞増殖アッセイを用いて、予測されたＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープに組み込まれた又は挿入されたＴ細胞エピトープを含む例示的毒素エフェクターポリペプチドでのＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープの脱免疫化の有効性を試験した。本実施例のＴ細胞増殖アッセイには、ＣＤ４＋Ｔ細胞を標識し、フローサイトメトリー法を用いて、異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープ（例えば、配列番号１１～４３）を組み込み又は挿入する方法を用いたポリペプチドの脱免疫化、又はそれと関連がない、いかなる異種Ｔ細胞エピトープも含まない参照ポリペプチドに由来する、異なるペプチドの投与に応答する増殖の変化を測定
することを含む。
ポリペプチドに由来する一連の重複するペプチドを合成し、ＣＦＳＥ ＣＤ４＋Ｔ細胞増殖アッセイ（ProImmune社, Sarasota、FL、U.S）で試験した。ＣＦＳＥで標識した、ヒトＣＤ８＋Ｔ細胞を枯渇させた末梢血単核細胞（ＰＢＭＣｓ、peripheral blood mononuclear cells）を各５μＭの所望のペプチドと共に７日間、６つの複製ウェルで培養する。各アッセイプレートには未処理対照ウェルのセットを含む。このアッセイには既知のＭＨＣIIクラス抗原として既知の合成ペプチドを含む参照抗体対象も組み込まれている。
投与されたペプチドによって増幅される、ＣＤ８＋Ｔ細胞が枯渇されたＰＢＭＣは、フローサイトメトリーによって直接測定されるＣＦＳＥ蛍光強度が減少され得る。薬を投与していないＴ細胞分析について、各刺激された試料についてのバックグラウンド以上の刺激割合は、蛍光シグナルに対して、陰性、弱い、又は高いと順位をつけるなど、未刺激試料と比較することによって決定する。各試料のＣＤ４＋Ｔ細胞のＣＦＳＥが弱い集団の数は全ＣＤ４＋Ｔ細胞集団の割合として表す。再現値をバックグラウンド以上の刺激割合を計算するために用いる（抗原刺激によるＣＤ４＋Ｔ細胞のＣＦＳＥが弱い細胞の割合、抗原刺激なしのＣＤ４＋Ｔ細胞のＣＦＳＥが弱い細胞の負の割合）。平均及び平均の標準誤差を再現値から計算する。バックグラウンド以上の刺激割合が０．５より大きく、バックグラウンド以上の標準誤差が２倍以上大きい場合、結果は「陽性」とみなされる。ペプチドを比較できるように、応答項目を計算する。この項目は各ペプチドについての応答の大きさ（バックグラウンド以上の刺激割合）に各ペプチドに対して応答するドナーの数（抗原性の割合）を乗じることを基にしている。
相対ＣＤ４＋Ｔ細胞免疫原性の決定
本発明の例示的全長ポリペプチドの相対ＣＤ４＋Ｔ細胞免疫原性を以下の樹状細胞（ＤＣ、dendriticcell）Ｔ細胞増殖アッセイを用いて決定する。このＤＣ Ｔ細胞アッセイ
は、体外から投与されたポリペプチド又はタンパク質に応答するＣＤ４＋Ｔ細胞を測定する。ＤＣ Ｔ細胞アッセイはProImmune社のＤＣ Ｔ細胞アッセイサービスを用いて行い
、ポリペプチド、タンパク質、及び本発明の細胞標的化分子間のＣＤ４＋Ｔ細胞誘導免疫原性の相対レベルを、いかなる異種Ｔ細胞エピトープも付加されていない出発原料である元のポリペプチド、タンパク質、又は細胞標的化分子と比較することによって決定する。本実施例のＤＣ Ｔ細胞アッセイは、投与されたポリペプチド、タンパク質、又は細胞標的化分子試料に由来するペプチドの抗原提示についてヒト樹状細胞を試験することを含む。
簡単に述べると、健康的なヒトドナー組織を用いて、高分解能（high-resolution）Ｍ
ＨＣクラスII組織分類を基に分類される試料を単離する。２０、４０又は５０名のドナーのコホートを使用する。最初に、ヒトドナーＰＢＭＣから得られた単球を規定の培地で培養し、未成熟樹状細胞を生成する。そして、未成熟樹状細胞を特定の対照抗原で刺激し、規定の培地でさらに培養することによって成熟表現型を誘導する。次に、同じヒトドナー試料のＣＤ８＋Ｔ細胞を枯渇させたドナーのＰＢＭＣをＣＦＳＥで標識する。ＣＦＳＥで標識された、ＣＤ８＋Ｔ細胞を枯渇させたＰＢＭＣを、抗原に感作された樹状細胞と共に７日間培養し、ＣＤ４＋樹状細胞を刺激し、各試料の８つの複製を試験する。陰性対象として、各樹状細胞培養系列には、未処理樹状細胞のセットを含む。陽性対照として、このアッセイには、全長タンパク質を含む２つの特定の参照抗原が組み込まれている。
免疫原性に基づく樹状細胞を評価するため、ドナー細胞応答の数をコホート研究で分析する。このアッセイの陽性応答は、インビボでのＣＤ４＋Ｔ細胞応答の可能性を示しているとみなされる。バックグラウンド以上の刺激割合として測定された陽性応答は、２又は３以上の独立したドナー試料で０．５％より大きい割合と定義される。陽性ドナー細胞応
答の強度を、各試料の許容されたドナーから得られたバックグラウンド以上の平均刺激割合を考慮して決定する。応答項目を、各試料のＣＤ４＋Ｔ細胞免疫原性レベルを決定するため、応答強度の値に応答するドナーの数を乗じて計算する。さらに、相対ＣＤ４＋Ｔ細胞免疫原性を表す応答項目を、予測されたＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ領域に組み込まれたＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを含む２つの試料、及び同じ予測されたＣＤ４＋Ｔ細胞領域でいかなる破壊もない、第２のバリアントの結果を比較することによって、破壊がヒトドナー細胞のＣＤ４＋Ｔ細胞応答を減少するかを決定する。
インビボでの相対免疫原性による脱免疫化の試験
志賀毒素エフェクターポリペプチドの相対免疫原性レベルを、ヒト免疫システムの哺乳類モデルを用いて、脱免疫化について試験する。マウスに細胞毒性タンパク質、又は野生型若しくは脱免疫化型の志賀毒素エフェクターポリペプチド成分を含むポリペプチドを週に３回、２週間以上静脈内投与する。注射されたマウスから血液試料を回収し、細胞毒性タンパク質及び／又は志賀毒素エフェクターポリペプチドの反応性について酵素結合免疫吸着検査法（ＥＬＩＳＡ、enzyme-linked immunosorbent assay）で試験した。減少した
免疫原性応答が、野生型志賀毒素エフェクターポリペプチド又はそのポリペプチドを含む組成物のみを注射したマウスと比較して、脱免疫化志賀毒素エフェクターポリペプチド又はそのポリペプチドを含む組成物を注射したマウスで誘発され得る。比較的減少した免疫原性応答は、哺乳類に投与後の減少した免疫原性の可能性及び哺乳類の免疫システムの応答に関し、脱免疫化志賀毒素エフェクターポリペプチドは脱免疫化されることを示し得る。
さらに、本発明のジフテリア毒素エフェクターポリペプチド（例えば、配列番号４６～４８）を、組み込まれた又は挿入されたＴ細胞エピトープを含む各ジフテリア毒素エフェクターポリペプチドでの１又は２以上のＢ細胞エピトープ領域の破壊を検証するために、本実施例の方法を用いて、脱免疫化について試験する。
本発明の例示的志賀毒素エフェクターポリペプチドによる、標的細胞の表面に組み込まれたＴ細胞エピトープの内在化、細胞内ルーティング及び提示の試験
本実施例において、標的細胞の表面への提示のための、標的細胞のＭＨＣクラスＩ経路のＴ細胞エピトープの送達のための、本発明の例示的志賀毒素エフェクターポリペプチドをそれぞれ含む、本発明の例示的細胞標的化タンパク質の能力を調査した。さらに、本発明のジフテリア毒素エフェクターポリペプチドを含む細胞標的化タンパク質（例えば、配列番号４６～４８）を、本実施例の方法を用いて、ＭＨＣクラスＩ提示系への組み込まれたＴ細胞エピトープを送達する能力を検証するために試験した。
当技術分野で既知の標準的な技術を用いて、本発明の様々な例示的細胞標的化タンパク質が作製され、それらは細胞型標的領域及び本発明の志賀毒素エフェクターポリペプチドをそれぞれ含む（例えば、国際公開第２０１４／１６４６８０号パンフレット及び国際公開第２０１４／１６４６９３号パンフレットを参照されたい）。本発明の細胞標的化タンパク質は本発明の志賀毒素エフェクターポリペプチド、及び特異的な細胞型の表面に物理的に結合する細胞外標的生体分子に高親和性で結合することができる細胞標的化結合領域を含む。本発明の細胞標的化タンパク質は、標的生体分子の細胞標的化結合領域に発現する細胞を選択的に標的化して、これらの標的細胞に内在化することができる。
フローサイトメトリー法を用いて、標的細胞の表面でＭＨＣクラスＩ分子と複合体を形成するＴ細胞エピトープ（志賀毒素エフェクター領域に挿入された又は組み込まれた）の送達及び細胞外提示を証明した。このフローサイトメトリー法において、異なるエピトープとヒトＨＬＡとの複合体と高親和性で結合する、可溶ヒトＴ細胞受容体（ＴＣＲ、T-ce
ll receptor）多量体試薬（SolubleT-Cell AntigenReceptor STAR（商標）Multimer、AltorBioscience社、Miramar、FL、U.S.）を利用する。
各STAR（商標）ＴＣＲ多量体試薬は、特異的なＴ細胞受容体に由来し、特定のＭＨＣクラスＩ分子のコンテキストに存在する特異的なペプチドを認識するために選択されたＴＣＲの能力を基に、特異的なペプチドとＭＨＣとの複合体を検出することができる。ＴＣＲ多量体はビオチン化及び多量体化した組み換えヒトＴＣＲ、並びにストレプトアビジンで構成される。ＴＣＲ多量体をフィコエリスリン（ＰＥ、phycoerythrin）で標識する。こ
れらのＴＣＲ多量体試薬は、各可溶性ＴＣＲ多量体タイプは多様な条件下で特異的なペプチドとＭＨＣとの複合体を認識し安定して結合するので、ヒト細胞の表面に提示される特異的なペプチドとＭＨＣクラスＩとの複合体を検出することができる（Zhu X et al., J Immunol 176: 3223-32 (2006)）。これらのＴＣＲ多量体試薬は細胞の表面に存在するペ
プチドとＭＨＣクラスＩとの複合体の、フローサイトメトリーによる同定及び定量を可能にする。
本実施例において、ＴＣＲ ＣＭＶ－ｐｐ６５－ＰＥ ＳＴＡＲ（商標）多量体試薬（AltorBioscience社、Miramar、FL、U.S.）を使用した。ＨＬＡ－Ａ２を発現するヒト細
胞によるＣＭＶ Ｃ２ペプチド（NLVPMVATV）のＭＨＣクラスＩ経路提示は、ＴＣＲ Ｃ
ＭＶ－ｐｐ６５－ＰＥ ＳＴＡＲ（商標）多量体試薬で検出することができ、ヒトＨＬＡ－Ａ２と複合体を形成するＣＭＶ－ｐｐ６５エピトープペプチド（残基４９５～５０３、NLVPMVATV）を高親和性で認識し、ＰＥで標識する。
本実施例において用いた標的細胞は、ATCC（ManassasVA、U.S.）から得られるヒトが
ん細胞で不死化した。当技術分野で既知の標準フローサイトメトリー法を使用して、ＨＬＡ－Ａ２ ＭＨＣクラスＩ分子及び本実施例において用いられる細胞外標的生体分子のタンパク質の両方が細胞表面で発現されるか標的細胞を確かめた。
標的細胞を、予測されたＢ細胞エピトープ領域に組み込まれたＴ細胞エピトープを含む異なる志賀毒素エフェクターポリペプチドをそれぞれ含む、本発明の例示的細胞標的化タンパク質で処理した。各本発明の例示的細胞標的化タンパク質の１つは、本実施例において、以下の志賀毒素エフェクターポリペプチドの１つを含んでいた：４３－５１－Ｃ２（配列番号１３）、５３－６１－Ｃ２（配列番号１７）、及び１０４－１１２－Ｃ２（配列番号１８）。標的細胞のセットは、本発明の異なる例示的細胞標的化タンパク質を、志賀毒素への細胞型特異的な感受性を考慮した濃度と同様の濃度での外因性投与によって処理した（例えば、Noakes K et al., FEBS Lett 453: 95-9 (1999)を参照されたい）。処理した細胞は、３７℃で５％二酸化炭素の雰囲気下での標準的な条件で６時間インキュベートし、志賀毒素エフェクター領域の媒介による中毒化を引き起こした。そして細胞を細胞培養液で洗浄し、新しい細胞培養液に再懸濁し、ＴＣＲ ＣＭＶ－ｐｐ６５－ＰＥ ＳＴＡＲ（商標）多量体試薬での染色前に２０時間インキュベートした。
対照として、標的細胞のセットを３つの条件で処理した：１）処理なし（「未処理」）、いかなる外因性分子も加わっていないことを意味する、２）体外から投与されたＣＭＶ
Ｃ２ペプチド（ＣＭＶ－ｐｐ６５、アミノ酸４９５～５０３：配列NLVPMVATV、BioSynthesis社、Lewisville、TX、U.S.によって合成された）で処理、及び３）体外から投与されたPeptide Loading Enhancer（「ＰＬＥ」、 Altor Biosicence社、Miramar、FL）と組み合わせたＣＭＶ Ｃ２ペプチド（上記のNLVPMVATV）で処理。ＰＬＥと組み合わせたＣ２ペプチド処理は、外因性ペプチドローディングを可能にし、陽性対照とした。適切なＭＨＣクラスＩハプロタイプを提示する細胞は、細胞外空間（すなわち、適用されるペプチドの細胞内在化の非存在下）から又はＰＬＥの存在下での適切な細胞外からの適用されるペプチドのロードを強制的に行うことができ、Ｂ２－ミクログロブリン及び他の成分との
混合物である。
処理後、細胞セット全てを洗浄し、ＴＣＲ ＣＭＶ－ｐｐ６５－ＰＥ ＳＴＡＲ多量体試薬と共に氷上で１時間インキュベートした。細胞を洗浄し、試料の蛍光をAccuri（商標）C6 flowcytometer（BD Biosciences社、SanJose、CA、U.S.）を使ったフローサイト
メトリーによって測定し、集団中の細胞に結合したＴＣＲ ＣＭＶ－ｐｐ６５－ＰＥ ＳＴＡＲ（商標）多量体の存在を検出し、定量した（ときどき本明細書において「染色（staining）」と呼ばれる）。
一連の異なる処理細胞のフローサイトメトリー分析結果は図５及び表１４に示される。未処理対照を用いて、ゲートを利用して陽性及び陰性細胞集団を同定し、「陽性」ゲートの未処理対照から１％未満の細胞が得られた（バックグラウンドシグナルで表す）。そして同じゲートを他の試料に適用し、各試料の陽性集団を特徴づけた。図５において、フローサイトメトリーヒストグラムのＹ軸は数（細胞数）を示し、Ｘ軸（ｌｏｇスケール）は相対蛍光単位（ＲＦＵ、relative fluorescent unit）を示す。全てのヒストグラムの灰色の線は、未処理細胞のプロファイルを示し、示された処理に従って処理された細胞のプロファイルを示す。表１４において、Ｃ２エピトープペプチドとＨＬＡ－Ａ２との複合体に対しての染色が陽性だった処理セットにおける細胞の割合を示す。このアッセイにおける陽性細胞は、ＴＣＲ－ＣＭＶ－ｐｐ６５－ＰＥ ＳＴＡＲ試薬に結合した細胞であり、上記の陽性ゲートとしてカウントされた。表１４はまた、各セットの対応する、インデックス化平均蛍光強度（ｉＭＦＩ、indexed, mean, fluorescent intensity）（陽性の割合で乗じた陽性集団の蛍光）をＲＦＵで示している。
Figure 2023062014000017


４３－５１－Ｃ２、５３－６１－Ｃ２、及び１０４－１１２－Ｃ２を含む外因性タンパク質が投与された細胞では、それぞれＣ２ペプチドとＨＬＡ－Ａ２との複合体が７．６％
、４．５％、及び６．７％の陽性シグナルで細胞表面に示された。対照的に、「未処理」及び「Ｃ２ペプチドのみ」で処理した細胞集団は、１％未満の陽性細胞を含んでいた（それぞれ０．９６及び０．９５パーセント）。測定されなかった処理効率及び動態によって、「細胞標的化タンパク質」処理試料中の一点で検出されたＣ２ペプチドとＨＬＡ－Ａ２との複合体の存在割合は、これらの本発明の例示的細胞標的化タンパク質によって、正確に最大提示可能性に影響を与えない可能性がある。
陽性対照である「Ｃ２ペプチド及びＰＬＥ」集団は、３６．７％の陽性細胞を含んでいたが、細胞外空間（「細胞外（exogenously）」）からのみ表面にペプチドをロードでき
、ＰＬＥの存在下では、「Ｃ２ペプチドのみ」と比較すると、未処理対照と同様のバックグラウンド染色レベル（０．９５％）であった。
中毒性標的細胞の細胞表面のヒトＭＨＣクラスＩ分子と複合体を形成する、体外から投与された、組み込まれたＴ細胞エピトープＣ２（Ｃ２エピトープペプチド／ＨＬＡ－Ａ２）の検出によって、例示的志賀毒素エフェクター領域４３－５１－Ｃ２、５３－６１－Ｃ２、又は１０４－１１２－Ｃ２を含む細胞標的化タンパク質は、標的細胞に進入し、十分な細胞内ルーティングを行い、標的細胞の表面での表面提示のために、ＭＨＣクラスＩ経路への十分な組み込まれたＴ細胞エピトープの送達をすることができることが証明された。
中毒性標的細胞の細胞毒性Ｔ細胞媒介細胞崩壊、及び本発明のタンパク質による送達されたＴ細胞エピトープのＭＨＣクラスＩ提示によって引き起こされた他の免疫応答の試験
本実施例において、当技術分野で既知の標準アッセイを用いて、本発明の例示的細胞標的化タンパク質によって送達されたＴ細胞エピトープのＭＨＣクラスＩ提示による機能結果を調査する。調査する機能結果には、ＣＴＬ活性化、ＣＴＬ介在標的細胞殺滅、及びＣＴＬによるＣＴＬサイトカイン放出が含まれる。
ＣＴＬに基づく細胞毒性アッセイを用いて、エピトープ提示による結果を査定する。このアッセイには、組織培養された標的細胞及びＴ細胞を含む。標的細胞は実施例４に記載されるように、中毒化される。簡単に述べると、標的細胞は異なる体外から投与されたタンパク質と共に、標準的な条件で６時間インキュベートし、いくつかのタンパク質は本発明の志賀毒素エフェクターポリペプチド又は本発明のジフテリア毒素エフェクターポリペプチドを含む。次にＣＴＬを中毒性標的細胞に加えてインキュベーションし、Ｔ細胞がエピトープペプチド／ＭＨＣクラスＩ複合体を示すいかなる標的細胞も認識及び結合できるようにする。そして、いくつかの機能的結果は、標的細胞へのＣＴＬ結合、ＣＴＬ介在細胞崩壊による標的細胞殺滅、及びＥＬＩＳＡ又はＥＬＩｓｐｏｔによるインターフェロンガンマ又はインターロイキンなどのサイトカインの放出を含む、当業者に既知の標準方法を用いて調査する。
エピトープペプチド／ＭＨＣクラスＩ複合体を示す標的細胞によるＣＴＬの活性化は、市販のＣＴＬ応答アッセイ、例えば、CytoTox96（登録商標）非放射性アッセイ（Promega社、Madison、WI、U.S.）、グランザイムＢ ＥＬＩＳｐｏｔアッセイ（Mabtech社、Cincinnati、OH、U.S.）、カスパーゼ活性アッセイ、及びＬＡＭＰ－１転移フローサイトメトリーアッセイを用いて定量する。詳細に標的細胞のＣＴＬ介在殺滅をモニターするために、カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル（ＣＦＳＥ、carboxyfluoresceinsuccinimidyl ester）を標的細胞に使用し、当技術分野に記載されるように（例えば、DurwardM et al., J Vis Exp 45 pii 2250(2010)を参照されたい）、インビトロ及びインビボでの調査を行う。
Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチド、並びにＣＤ２０に特異的な結合領域を含む細胞毒性タンパク質（ＳＬＴ－１Ａと融合したαＣＤ２０）
本実施例において、Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素エフェクター領域は、上記のように、志賀様毒素１のＡサブユニット（ＳＬＴ－１Ａ）に由来する。免疫グロブリン型結合領域αＣＤ２０抗原は、ヒトＣＤ２０を認識する免疫グロブリン型ドメインに由来し（例えば、Haisma et al.,Blood 92: 184-90(1999)、Geng S et al., Cell Mol Immunol 3:439-43 (2006)、Olafesn T et al.,Protein EngDes Sel 23:243-9 (2010)を参照されたい）、ＣＤ２０の細胞外部分に結合することができる免疫グロブリン型結合領域を含む。ＣＤ２０は、例えば、Ｂ細胞リンパ腫細胞、有毛細胞白血病細胞、Ｂ細胞慢性リンパ球性白血病細胞、及びメラノーマ細胞などの複数のがん細胞型で発現する。さらに、ＣＤ２０はいくつかの自己免疫疾患、障害、及び過活動Ｂ細胞を含む状態を治療するための治療学への魅力的な標的である。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＤ２０の構築、産生、及び精製
免疫グロブリン型結合領域αＣＤ２０及び志賀毒素エフェクター領域（例えば、配列番号１１～４３など）を共に連結した。例えば、融合タンパク質は、αＣＤ２０抗原結合タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＤ２０をコードするポリヌクレオチドを発現させることによって産生される（例えば、配列番号４９、５０、及び５１を参照されたい）。細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＤ２０の発現を、前記の実施例において上記のように、細菌及び／又は無細胞のいずれかのタンパク質翻訳系を用いて達成する。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＤ２０のインビトロでの特性の決定
ＣＤ２０＋細胞及びＣＤ２０－細胞に対する、本実施例の細胞毒性タンパク質の結合特性、最大特異的結合（Ｂｍａｘ）及び平衡結合定数（ＫＤ）は、蛍光に基づくフローサイトメトリーにより決定する。ＣＤ２０＋細胞へのＳＬＴ－１Ａ：：αＣＤ２０のＢｍａｘは約５０，０００～２００，０００ＭＦＩ、ＫＤは０．０１～１００ｎＭである一方、このアッセイにおいてはＣＤ２０－細胞への有意な結合はない。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＤ２０のリボソーム不活性化能力を、前記の実施例において上記のように、無細胞のインビトロでのタンパク質翻訳において決定する。無細胞タンパク質合成に対する本実施例の細胞毒性タンパク質の阻害効果は有意である。この無細胞アッセイにおけるタンパク質合成に対するＳＬＴ－１Ａ：：αＣＤ２０のＩＣ５０は約０．１～１００ｐＭである。
ＣＤ２０＋細胞殺滅アッセイを用いた細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＤ２０の細胞毒性の決定
ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＤ２０の細胞毒性特性を、ＣＤ２０＋細胞を用いて前記の実施例において上記のように、一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。さらに、ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＤ２０の選択的細胞毒性特性を、ＣＤ２０＋細胞と比較してＣＤ２０－細胞を用いる同じ一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。本実施例の細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞株に応じて、ＣＤ２０＋細胞について約０．０１～１００ｎＭである。細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞表面上にＣＤ２０を発現する細胞と比較して細胞表面上にＣＤ２０を発現しない細胞について約１０～１０，０００倍高い（細胞毒性が低い）。さらに、ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＤ２０の細胞毒性を、Ｔ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。
動物モデルを使用した細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＤ２０のインビボでの効
果の決定
動物モデルを用いて、新生物細胞に対する細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＤ２０のインビボでの効果を決定する。様々なマウス株を用いて、細胞表面上にＣＤ２０を発現するヒト新生物細胞のマウスへの注射から得られるマウスにおける異種移植腫瘍に対する静脈内投与後の細胞毒性タンパク質の効果を試験する。細胞殺滅をＴ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。
Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチド、並びにＨＥＲ２に特異的な結合領域を含む細胞毒性タンパク質（「ＳＬＴ－１Ａと融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」）
本実施例において、ＣＤ８＋Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素エフェクター領域は、上記のように、志賀様毒素１のＡサブユニット（ＳＬＴ－１Ａ）に由来する。免疫グロブリン型結合領域は、米国特許出願第２０１１／００５９０９０号に記載される、ラクダ抗体の単ドメイン可変領域（ＶＨＨ）であるタンパク質５F７に由来するαＨＥＲ２ ＶＨＨである。
細胞毒性タンパク質「ＳＬＴ－１Ａと融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」の構築、産生、及び精製
免疫グロブリン型結合領域及び志賀毒素エフェクター領域（例えば、配列番号１１～４３など）は共に連結して、融合タンパク質を形成した（例えば、配列番号５２、５３、及び５４を参照されたい）。本実施例において、タンパク質５Ｆ７に由来するαＨＥＲ２－ＶＨＨ可変領域をコードするポリヌクレオチドは、当技術分野で既知のリンカーをコードするポリヌクレオチドを有するフレーム、及び配列番号１１～４３のアミノ酸を含む志賀毒素エフェクター領域をコードするポリヌクレオチドを有するフレームにクローニングすることができる。細胞毒性タンパク質「ＳＬＴ－１Ａと融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」のバリアントは、結合領域を志賀毒素エフェクター領域のアミノ末端の隣に配置していてもよく、カルボキシ末端にＫＤＥＬファミリーの小胞体シグナルモチーフを含んでいてもよいように作製した。細胞毒性タンパク質バリアント「ＳＬＴ－１Ａと融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」の発現を、前記の実施例において記載したように、細菌及び／又は無細胞のいずれかのタンパク質翻訳系を用いて達成する。
細胞毒性タンパク質「ＳＬＴ－１Ａと融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」のインビトロでの特性の決定
ＨＥＲ２＋細胞及びＨＥＲ２－細胞に対する、本実施例の細胞毒性タンパク質の結合特性は、蛍光に基づくフローサイトメトリーにより決定する。ＨＥＲ２＋細胞への「ＳＬＴ－１Ａと融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」のＢｍａｘは約５０，０００～２００，０００ＭＦＩ、ＫＤは０．０１～１００ｎＭである一方、このアッセイにおいてはＨＥＲ２－細胞への有意な結合はない。
細胞毒性タンパク質「ＳＬＴ－１Ａと融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」のリボソーム不活性化能力を、前記の実施例において上記のように、無細胞のインビトロでのタンパク質翻訳において決定する。無細胞タンパク質合成に対する本実施例の細胞毒性タンパク質の阻害効果は有意である。この無細胞アッセイにおけるタンパク質合成に対する「ＳＬＴ－１Ａと融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」のＩＣ５０は約０．１～１００ｐＭである。
ＨＥＲ２＋細胞殺滅アッセイを用いた細胞毒性タンパク質「ＳＬＴ－１Ａと融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」の細胞毒性の決定
「ＳＬＴ－１Ａと融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」バリアントの細胞毒性特性を、ＨＥＲ
２＋細胞を用いて前記の実施例において上記のように、一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。さらに、「ＳＬＴ－１Ａと融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」の選択的細胞毒性特性を、ＨＥＲ２＋細胞と比較してＨＥＲ２－細胞を用いる同じ一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。本実施例の細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞株に応じて、ＨＥＲ２＋細胞について約０．０１～１００ｎＭである。細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞表面上にＨＥＲ２を発現する細胞と比較して細胞表面上にＨＥＲ２を発現しない細胞について約１０～１０，０００倍高い（細胞毒性が低い）。さらに、「ＳＬＴ－１Ａと融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」の細胞毒性を、Ｔ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。
動物モデルを使用した細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａと融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨのインビボでの効果の決定
動物モデルを用いて、新生物細胞に対する細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａと融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨのインビボでの効果を決定する。様々なマウス株を用いて、細胞表面上にＨＥＲ２を発現するヒト新生物細胞のマウスへの注射から得られるマウスにおける異種移植腫瘍に対する静脈内投与後の細胞毒性タンパク質の効果を試験する。細胞殺滅をＴ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。
Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチド、並びに抗体αエプスタイン・バー抗原に由来する結合領域を含む細胞毒性タンパク質
本実施例において、ＣＤ８＋Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素エフェクター領域は、上記のように、志賀様毒素１のＡサブユニット（ＳＬＴ－１Ａ）に由来する。免疫グロブリン型結合領域αエプスタイン・バー抗原は、エプスタイン・バー抗原に対するモノクローナル抗体（Fang C et al., J Immunol Methods 287: 21-30 (2004)）に由来し、エプスタイン・バーウイルスに感染したヒト細胞又はエプスタイン・バー抗原を発現する形質転換細胞に結合することができる免疫グロブリン型結合領域を含む。エプスタイン・バー抗原は、エプスタイン・バーウイルスに感染した細胞やがん細胞（例えば、リンパ腫及び上咽頭がん細胞）などの複数の細胞型で発現する。さらに、エプスタイン・バー感染は、他の疾患、例えば、多発性硬化症を伴う。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αエプスタイン・バー：：ＫＤＥＬの構築、産生、及び精製
免疫グロブリン型結合領域αエプスタイン・バー抗原及び志賀毒素エフェクター領域を共に連結し、カルボキシ末端にＫＤＥＬを付加し、タンパク質を形成する。例えば、融合タンパク質は、αエプスタイン・バー抗原結合タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αエプスタイン・バー：：ＫＤＥＬをコードするポリヌクレオチドを発現させることによって産生される。細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αエプスタイン・バー：：ＫＤＥＬの発現を、前記の実施例において記載したように、細菌及び／又は無細胞のいずれかのタンパク質翻訳系を用いて達成する。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αエプスタイン・バー：：ＫＤＥＬのインビトロでの特性の決定
エプスタイン・バー抗原陽性細胞及びエプスタイン・バー抗原陰性細胞に対する、本実施例の細胞毒性タンパク質の結合特性は、蛍光に基づくフローサイトメトリーにより決定する。エプスタイン・バー抗原陽性細胞へのＳＬＴ－１Ａ：：αエプスタイン・バー：：ＫＤＥＬのＢｍａｘは約５０，０００～２００，０００ＭＦＩ、ＫＤは０．０１～１００ｎＭである一方、このアッセイにおいてはエプスタイン・バー抗原陰性細胞への有意な結
合はない。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αエプスタイン・バー：：ＫＤＥＬのリボソーム不活性化能力を、前記の実施例において上記のように、無細胞のインビトロでのタンパク質翻訳において決定する。無細胞タンパク質合成に対する本実施例の細胞毒性タンパク質の阻害効果は有意である。この無細胞アッセイにおけるタンパク質合成に対するＳＬＴ－１Ａ：：αエプスタイン・バー：：ＫＤＥＬのＩＣ５０は約０．１～１００ｐＭである。
細胞殺滅アッセイを用いた細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αエプスタイン・バー：：ＫＤＥＬの細胞毒性の決定
ＳＬＴ－１Ａ：：αエプスタイン・バー：：ＫＤＥＬの細胞毒性特性を、エプスタイン・バー抗原陽性細胞を用いて、前記の実施例において上記のように、一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。さらに、ＳＬＴ－１Ａ：：αエプスタイン・バー：：ＫＤＥＬの選択的細胞毒性特性を、エプスタイン・バー抗原陽性細胞と比較してエプスタイン・バー抗原陰性細胞を用いる同じ一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。本実施例の細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞株に応じて、エプスタイン・バー抗原陽性細胞について約０．０１～１００ｎＭである。細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞表面上にエプスタイン・バー抗原を発現する細胞と比較して細胞表面上にエプスタイン・バー抗原を発現しない細胞について約１０～１０，０００倍高い（細胞毒性が低い）。さらに、ＳＬＴ－１Ａ：：αエプスタイン・バー：：ＫＤＥＬの細胞毒性を、Ｔ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。
動物モデルを使用した細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αエプスタイン・バー：：ＫＤＥＬのインビボでの効果の決定
動物モデルを用いて、新生物細胞に対する細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αエプスタイン・バー：：ＫＤＥＬのインビボでの効果を決定する。様々なマウス株を用いて、細胞表面上にエプスタイン・バー抗原を発現するヒト新生物細胞のマウスへの注射から得られるマウスにおける異種移植腫瘍に対する静脈内投与後の細胞毒性タンパク質の効果を試験する。細胞殺滅をＴ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。
Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチド、並びに抗体αリーシュマニア抗原に由来する結合領域を含む細胞毒性タンパク質
本実施例において、志賀毒素エフェクター領域は、上記のように、志賀様毒素１のＡサブユニット（ＳＬＴ－１Ａ）に由来する、ＣＤ８＋Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチドである。免疫グロブリン型結合領域αリーシュマニア抗原は、当技術分野で既知の技術を用いて生成された、細胞内トリパノソーマ原虫を保有するヒト細胞に存在する細胞表面のリーシュマニア抗原への抗体に由来する（Silveira T et al., Int J Parasitol31:1451-8 (2001)、Kenner
J et al., J CutanPathol26: 130-6 (1999)、BermanJ and Dwyer, Clin Exp Immunol44: 342-348 (1981)を参照されたい）。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αリーシュマニア：：ＫＤＥＬの構築、産生、及び精製
免疫グロブリン型結合領域αリーシュマニア抗原及び志賀毒素エフェクター領域を共に連結し、カルボキシ末端にＫＤＥＬを付加し、タンパク質を形成する。例えば、融合タンパク質は、リーシュマニア抗原結合タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αリーシュマニア：：Ｋ
ＤＥＬをコードするポリヌクレオチドを発現させることによって産生される。細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αリーシュマニア：：ＫＤＥＬの発現を、前記の実施例において記載したように、細菌及び／又は無細胞のいずれかのタンパク質翻訳系を用いて達成する。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αリーシュマニア：：ＫＤＥＬのインビトロでの特性の決定
リーシュマニア抗原陽性細胞及びリーシュマニア抗原陰性細胞に対する、本実施例の細胞毒性タンパク質の結合特性は、蛍光に基づくフローサイトメトリーにより決定する。リーシュマニア抗原陽性細胞へのＳＬＴ－１Ａ：：αリーシュマニア：：ＫＤＥＬのＢｍａｘは約５０，０００～２００，０００ＭＦＩ、ＫＤは０．０１～１００ｎＭである一方、このアッセイにおいてはリーシュマニア抗原陰性細胞への有意な結合はない。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αリーシュマニア：：ＫＤＥＬのリボソーム不活性化能力を、前記の実施例において上記のように、無細胞のインビトロでのタンパク質翻訳において決定する。無細胞タンパク質合成に対する本実施例の細胞毒性タンパク質の阻害効果は有意である。この無細胞アッセイにおけるタンパク質合成に対するＳＬＴ－１Ａ：：αリーシュマニア：：ＫＤＥＬのＩＣ５０は約０．１～１００ｐＭである。
細胞殺滅アッセイを用いた細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αリーシュマニア：：ＫＤＥＬの細胞毒性の決定
ＳＬＴ－１Ａ：：αリーシュマニア：：ＫＤＥＬの細胞毒性特性を、リーシュマニア抗原陽性細胞を用いて前記の実施例において上記のように、一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。さらに、ＳＬＴ－１Ａ：：αリーシュマニア：：ＫＤＥＬの選択的細胞毒性特性を、リーシュマニア抗原陽性細胞と比較してリーシュマニア抗原陰性細胞を用いる同じ一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。本実施例の細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞株に応じて、リーシュマニア抗原陽性細胞について約０．０１～１００ｎＭである。細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞表面上にリーシュマニア抗原を発現する細胞と比較して細胞表面上にリーシュマニア抗原を発現しない細胞について約１０～１０，０００倍高い（細胞毒性が低い）。さらに、ＳＬＴ－１Ａ：：αリーシュマニア：：ＫＤＥＬの細胞毒性を、Ｔ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。
Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチド、並びに免疫グロブリン型結合領域αニューロテンシン受容体に由来する結合領域を含む細胞毒性タンパク質
本実施例において、志賀毒素エフェクター領域は、上記のように、志賀様毒素１のＡサブユニット（ＳＬＴ－１Ａ）に由来する、ＣＤ８＋Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチドである。免疫グロブリン型結合領域αニューロテンシン受容体は、DARPin（商標）（GenBank受託番号：２
Ｐ２Ｃ＿Ｒ）又はヒトニューロテンシン受容体と結合するモノクローナル抗体（Ovigne Jet al., Neuropeptides 32: 247-56 (1998)）に由来する。ニューロテンシン受容体は、
乳がん、結腸がん、肺がん、メラノーマ、及び膵臓がん細胞など様々ながん細胞で発現する。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αニューロテンシンＲ：：ＫＤＥＬの構築、産生、及び精製
免疫グロブリン型結合領域αニューロテンシンＲ及び志賀毒素エフェクター領域を共に連結した、カルボキシ末端にＫＤＥＬを付加し、タンパク質を形成する。例えば、融合タ
ンパク質は、ニューロテンシン受容体結合タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αニューロテンシンＲ：：ＫＤＥＬをコードするポリヌクレオチドを発現させることによって産生される。細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αニューロテンシンＲ：：ＫＤＥＬの発現を、前記の実施例において記載したように、細菌及び／又は無細胞のいずれかのタンパク質翻訳系を用いて達成した。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αニューロテンシンＲ：：ＫＤＥＬのインビトロでの特性の決定
ニューロテンシン受容体陽性細胞及びニューロテンシン受容体陰性細胞に対する、本実施例の細胞毒性タンパク質の結合特性は、蛍光に基づくフローサイトメトリーにより決定する。ニューロテンシン受容体陽性細胞へのＳＬＴ－１Ａ：：αニューロテンシンＲ：：ＫＤＥＬのＢｍａｘは約５０，０００～２００，０００ＭＦＩ、ＫＤは０．０１～１００ｎＭである一方、このアッセイにおいてはニューロテンシン受容体陰性細胞への有意な結合はない。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αニューロテンシンＲ：：ＫＤＥＬのリボソーム不活性化能力を、前記の実施例において上記のように、無細胞のインビトロでのタンパク質翻訳において決定する。無細胞タンパク質合成に対する本実施例の細胞毒性タンパク質の阻害効果は有意である。この無細胞アッセイにおけるタンパク質合成に対するＳＬＴ－１Ａ：：αニューロテンシンＲ：：ＫＤＥＬのＩＣ５０は約０．１～１００ｐＭである。
細胞殺滅アッセイを用いた細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αニューロテンシンＲ：：ＫＤＥＬの細胞毒性の決定
ＳＬＴ－１Ａ：：αニューロテンシンＲ：：ＫＤＥＬの細胞毒性特性を、ニューロテンシン受容体陽性細胞を用いて、前記の実施例において上記のように、一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。さらに、ＳＬＴ－１Ａ：：αニューロテンシンＲ：：ＫＤＥＬの選択的細胞毒性特性を、ニューロテンシン受容体陽性細胞と比較してニューロテンシン受容体陰性細胞を用いる同じ一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。本実施例の細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞株に応じて、ニューロテンシン受容体陽性細胞について約０．０１～１００ｎＭである。細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞表面上にニューロテンシン受容体を発現する細胞と比較して細胞表面上にニューロテンシン受容体を発現しない細胞について約１０～１０，０００倍高い（細胞毒性が低い）。さらに、ＳＬＴ－１Ａ：：αニューロテンシンＲ：：ＫＤＥＬの細胞毒性を、Ｔ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。
動物モデルを使用した細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αニューロテンシンＲ：：ＫＤＥＬのインビボでの効果の決定
動物モデルを用いて、新生物細胞に対する細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αニューロテンシンＲ：：ＫＤＥＬのインビボでの効果を決定する。様々なマウス株を用いて、細胞表面上にニューロテンシン受容体を発現するヒト新生物細胞のマウスへの注射から得られるマウスにおける異種移植腫瘍に対する静脈内投与後の細胞毒性タンパク質の効果を試験する。細胞殺滅をＴ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。
Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチド、並びに免疫グロブリン型結合領域αＥＧＦＲに由来する結合領域を含む細胞毒性タンパク質
本実施例において、志賀毒素エフェクター領域は、志賀様毒素１のＡサブユニット（Ｓ
ＬＴ－１Ａ）に由来する、ＣＤ８＋Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素エフェクター領域である。結合領域αＥＧＦＲは、AdNectin（商標）（GenBank受託番号：３ＱＷＱ＿Ｂ）、Affibody（商標）（GenBank受託番号：２ＫＺＩ＿Ａ；米国特許第８，５９８，１１３号明細書）、又は、その全てが１又は２以上のヒト上皮増殖因子受容体に結合する抗体に由来する。上皮増殖因子受容体の発現は、例えば、肺がん細胞、乳がん細胞、及び結腸がん細胞などのヒトがん細胞と関連がある。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＥＧＦＲ：：ＫＤＥＬの構築、産生、及び精製
免疫グロブリン型結合領域αＥＧＦＲ及び志賀毒素エフェクター領域を共に連結し、カルボキシ末端にＫＤＥＬを付加し、タンパク質を形成する。例えば、融合タンパク質は、ＥＧＦＲ結合タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＥＧＦＲ：：ＫＤＥＬをコードするポリヌクレオチドを発現させることによって産生される。細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＥＧＦＲ：：ＫＤＥＬの発現を、前記の実施例において記載したように、細菌及び／又は無細胞のいずれかのタンパク質翻訳系を用いて達成する。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＥＧＦＲ：：ＫＤＥＬのインビトロでの特性の決定
ＥＧＦＲ＋細胞及びＥＧＦＲ－細胞に対する、本実施例の細胞毒性タンパク質の結合特性は、蛍光に基づくフローサイトメトリーにより決定する。ＥＧＦＲ＋細胞へのＳＬＴ－１Ａ：：αＥＧＦＲ：：ＫＤＥＬのＢｍａｘは約５０，０００～２００，０００ＭＦＩ、ＫＤは０．０１～１００ｎＭである一方、このアッセイにおいてはＥＧＦＲ－細胞への有意な結合はない。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＥＧＦＲ：：ＫＤＥＬのリボソーム不活性化能力を、前記の実施例において上記のように、無細胞のインビトロでのタンパク質翻訳において決定する。無細胞タンパク質合成に対する本実施例の細胞毒性タンパク質の阻害効果は有意である。この無細胞アッセイにおけるタンパク質合成に対するＳＬＴ－１Ａ：：αＥＧＦＲ：：ＫＤＥＬのＩＣ５０は約０．１～１００ｐＭである。
細胞殺滅アッセイを用いた細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＥＧＦＲ：：ＫＤＥＬの細胞毒性の決定
ＳＬＴ－１Ａ：：αＥＧＦＲ：：ＫＤＥＬの細胞毒性特性を、ＥＧＦＲ＋細胞を用いて、前記の実施例において上記のように、一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。さらに、ＳＬＴ－１Ａ：：αＥＧＦＲ：：ＫＤＥＬの選択的細胞毒性特性を、リーシュマニア抗原陽性細胞と比較してＥＧＦＲ－細胞を用いる同じ一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。本実施例の細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞株に応じて、ＥＧＦＲ＋細胞について約０．０１～１００ｎＭである。細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞表面上にＥＧＦＲを発現する細胞と比較して細胞表面上にＥＧＦＲを発現しない細胞について約１０～１０，０００倍高い（細胞毒性が低い）。さらに、ＳＬＴ－１Ａ：：αＥＧＦＲ：：ＫＤＥＬの細胞毒性を、Ｔ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。
動物モデルを使用した細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＥＧＦＲ：：ＫＤＥＬのインビボでの効果の決定
動物モデルを用いて、新生物細胞に対する細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＥＧＦＲ：：ＫＤＥＬのインビボでの効果を決定する。様々なマウス株を用いて、細胞表面上にＥＧＦＲを発現するヒト新生物細胞のマウスへの注射から得られるマウスにおける異種移植腫瘍に対する静脈内投与後の細胞毒性タンパク質の効果を試験する。細胞殺滅をＴ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。
Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチド、並びに抗体αＣＣＲ５に由来する結合領域を含む細胞毒性タンパク質
本実施例において、志賀毒素エフェクター領域は、志賀様毒素１のＡサブユニット（ＳＬＴ－１Ａ）に由来する、ＣＤ８＋Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチドである。免疫グロブリン型結合領域αＣＣＲ５は、ヒトＣＣＲ５（ＣＤ１９５）に対するモノクローナル抗体（Bernstone L etal., Hybridoma 31: 7-19 (2012)）に由来する。ＣＣＲ５は主に、Ｔ細胞、マクロ
ファージ、樹状細胞、及びミクログリアで発現する。さらに、ＣＣＲ５はヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ、humanimmunodeficiency virus）の発症及び蔓延に影響を与える。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＣＲ５：：ＫＤＥＬの構築、産生、及び精製
免疫グロブリン型結合領域αＣＣＲ５及び志賀毒素エフェクター領域を共に連結し、カルボキシ末端にＫＤＥＬを付加し、タンパク質を形成する。例えば、融合タンパク質は、αＣＣＲ５結合タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＣＲ５：：ＫＤＥＬをコードするポリヌクレオチドを発現させることによって産生される。細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＣＲ５：：ＫＤＥＬの発現を、前記の実施例において記載したように、細菌及び／又は無細胞のいずれかのタンパク質翻訳系を用いて達成する。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＣＲ５のインビトロでの特性の決定
ＣＣＲ５＋細胞及びＣＣＲ５－細胞に対する、本実施例の細胞毒性タンパク質の結合特性は、蛍光に基づくフローサイトメトリーにより決定する。ＣＣＲ５＋陽性細胞へのＳＬＴ－１Ａ：：αＣＣＲ５：：ＫＤＥＬのＢｍａｘは約５０，０００～２００，０００ＭＦＩ、ＫＤは０．０１～１００ｎＭである一方、このアッセイにおいてはＣＣＲ５－細胞への有意な結合はない。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＣＲ５：：ＫＤＥＬのリボソーム不活性化能力を、前記の実施例において上記のように、無細胞のインビトロでのタンパク質翻訳において決定する。無細胞タンパク質合成に対する本実施例の細胞毒性タンパク質の阻害効果は有意である。この無細胞アッセイにおけるタンパク質合成に対するＳＬＴ－１Ａ：：αＣＣＲ５：：ＫＤＥＬのＩＣ５０は約０．１～１００ｐＭである。
細胞殺滅アッセイを用いた細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＣＲ５：：ＫＤＥＬの細胞毒性の決定
ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＣＲ５：：ＫＤＥＬの細胞毒性特性を、ＣＣＲ５＋細胞を用いて前記の実施例において上記ように、一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。さらに、ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＣＲ５：：ＫＤＥＬの選択的細胞毒性特性を、ＣＣＲ５＋細胞と比較してＣＣＲ５－細胞を用いる同じ一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。本実施例の細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞株に応じて、ＣＣＲ５＋細胞について約０．０１～１００ｎＭである。細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞表面上にＣＣＲ５を発現する細胞と比較して細胞表面上にＣＣＲ５を発現しない細胞について約１０～１０，０００倍高い（細胞毒性が低い）。さらに、ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＣＲ５：：ＫＤＥＬの細胞毒性を、Ｔ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。
動物モデルを使用した細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＣＲ５：：ＫＤＥＬのインビボでの効果の決定
動物モデルを用いて、ドナー材料のＴ細胞を枯渇し（Tsirigotis P et al., Immunothe
rapy 4: 407-24 (2012)を参照されたい）、細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＣ
Ｒ５：：ＫＤＥＬのインビボでの効果を決定する。非ヒト霊長類を用いて、ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＣＲ５のインビボでの効果を決定する。ドナー臓器をＳＬＴ－１Ａ：：αＣＣＲ５：：ＫＤＥＬで前処理したとき（Weaver T et al., Nat Med 15: 746-9 (2009)を参照
されたい）、腎臓移植後のアカゲザルの移植片対宿主病について分析する。異なる用量のＳＬＴ－１Ａ：：αＣＣＲ５：：ＫＤＥＬの非経口投与後、霊長類カニクイザルの末梢血Ｔリンパ球のインビボでの枯渇を観察する。細胞殺滅をＴ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。ＳＬＴ－１Ａ：：αＣＣＲ５：：ＫＤＥＬを使用したＨＩＶ感染の阻害は、サル免疫不全ウイルス（ＳＩＶ、simian immunodeficiency virus）にさらされたときに循環す
るＴ細胞を大きく枯渇させるために、非ヒト霊長類に急性用量のＳＬＴ－１Ａ：：αＣＣＲ５：：ＫＤＥＬを与えることによって試験する（Sellier P et al., PLoS One 5: e10570(2010)を参照されたい）。
Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチド、並びに抗Ｅｎｖ免疫グロブリンドメインに由来する結合領域を含む細胞毒性タンパク質
本実施例において、志賀毒素エフェクター領域は、志賀毒素のＡサブユニット（ＳｔｘＡ）に由来する、ＣＤ８＋Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチドである。免疫グロブリン型結合領域αＥｎｖは、ＧＰ４１、ＧＰ１２０、ＧＰ１４０、又はＧＰ１６０（例えば、Chen W et al., JMol Bio 382: 779-89 (2008)、Chen W et al., Expert Opin Biol Ther 13: 657-71 (2013)、van denKerkhof T et al., Retrovirology 10: 102 (2013)を参照されたい）など
のＨＩＶエンベロープ糖タンパク質（Ｅｎｖ）に結合する既存の抗体、又は標準的な技術を用いて生成された抗体（Prabakaran et al., FrontMicrobiol3:277 (2012)を参照さ
れたい）に由来する。ＥｎｖはＨＩＶ複製中のＨＩＶ感染細胞の細胞表面に提示される、ＨＩＶ表面タンパク質である。Ｅｎｖは、主に感染細胞のエンドソーム区画に発現するが、本発明の強力な細胞毒性を有する細胞標的化タンパク質によって、十分な量のＥｎｖが標的とされる細胞表面に存在させることができる。さらに、Ｅｎｖ標的細胞毒性タンパク質は、ＨＩＶビリオンと結合でき、ビリオンと宿主細胞が融合する間に、感染細胞に新たに進入することができる。
ＨＩＶが高割合の変異を提示するので、複数株のＨＩＶのＥｎｖに結合する広域中和抗体（van denKerkhof T et al., Retrovirology 10: 102 (2013)）などの、Ｅｎｖの機能
的束縛部分に結合する免疫グロブリンドメインを使用することが好ましい。感染細胞の表面に存在するＥｎｖは立体的に制限されたエピトープを提示するとされているので（ChenW et al., J Virol 88: 1125-39 (2014)）、ｓｄＡｂ又はＶＨＨドメインなどの１００
ｋＤより小さい、理想的には２５ｋＤより小さいものを使用することが好ましい。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＥｎｖ：：ＫＤＥＬの構築、産生、及び精製
免疫グロブリン型結合領域αＥｎｖ及び志賀毒素エフェクター領域を共に連結し、カルボキシ末端にＫＤＥＬを付加し、細胞毒性タンパク質を形成する。例えば、融合タンパク質は、αＥｎｖ結合タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＥｎｖ：：ＫＤＥＬをコードするポリヌクレオチドを発現させることによって産生される。細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＥｎｖ：：ＫＤＥＬの発現を、前記の実施例において記載したように、細菌及び／又は無細胞のいずれかのタンパク質翻訳系を用いて達成する。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＥｎｖ：：ＫＤＥＬのインビトロでの特性の決定
Ｅｎｖ＋細胞及びＥｎｖ－細胞に対する、本実施例の細胞毒性タンパク質の結合特性は
、蛍光に基づくフローサイトメトリーアッセイにより決定する。Ｅｎｖ＋陽性細胞へのＳＬＴ－１Ａ：：αＥｎｖ：：ＫＤＥＬのＢｍａｘは約５０，０００～２００，０００ＭＦＩ、ＫＤは０．０１～１００ｎＭである一方、このアッセイにおいてはＥｎｖ－細胞への有意な結合はない。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＥｎｖ：：ＫＤＥＬのリボソーム不活性化能力を、前記の実施例において上記のように、無細胞のインビトロでのタンパク質翻訳において決定する。無細胞タンパク質合成に対する本実施例の細胞毒性タンパク質の阻害効果は有意である。この無細胞アッセイにおけるタンパク質合成に対するＳＬＴ－１Ａ：：αＥｎｖ：：ＫＤＥＬのＩＣ５０は約０．１～１００ｐＭである。
細胞殺滅アッセイを用いた細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＥｎｖ：：ＫＤＥＬの細胞毒性の決定
ＳＬＴ－１Ａ：：αＥｎｖ：：ＫＤＥＬの細胞毒性特性を、Ｅｎｖ＋細胞を用いて前記の実施例において上記のように、一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。さらに、ＳＬＴ－１Ａ：：αＥｎｖ：：ＫＤＥＬの選択的細胞毒性特性を、Ｅｎｖ＋細胞と比較してＥｎｖ－細胞を用いる同じ一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。本実施例の細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞株及び／又は細胞に感染して、細胞をＥｎｖ＋にするのに使用されるＨＩＶ株に応じて、Ｅｎｖ＋細胞について約０．０１～１００ｎＭである。細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞表面上にＥｎｖを発現する細胞と比較して細胞表面上にＥｎｖを発現しない細胞について約１０～１０，０００倍高い（細胞毒性が低い）。さらに、ＳＬＴ－１Ａ：：αＥｎｖ：：ＫＤＥＬの細胞毒性を、Ｔ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。
動物モデルを使用した細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＥｎｖ：：ＫＤＥＬのインビボでの効果の決定
ＳＬＴ－１Ａ：：αＥｎｖ：：ＫＤＥＬを使用したＨＩＶ感染の阻害は、サル免疫不全ウイルス（ＳＩＶ）に感染した非ヒト霊長類（Sellier P et al., PLoS One 5: e10570(2010)を参照されたい）に、ＳＬＴ－１Ａ：：αＥｎｖ：：ＫＤＥＬを投与することによ
って試験する。細胞殺滅をＴ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。
Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチド、並びに抗体αＵＬ１８抗体に由来する結合領域を含む細胞毒性タンパク質
本実施例において、志賀毒素エフェクター領域は、志賀様毒素１のＡサブユニット（ＳＬＴ－１Ａ）に由来する、ＣＤ８＋Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチドである。免疫グロブリン型結合領域αＵＬ１８は、当技術分野で既知の技術を用いて、細胞表面サイトメガロウイルスタンパク質ＵＬ１８に生成され、サイトメガロウイルスに感染したヒト細胞に存在する（YangZ, Bjorkman P,Proc Natl Acad Sci USA 105: 10095-100(2008)）。ヒトサイトメガロウ
イルス感染は、様々ながん及び炎症性障害を伴う。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＵＬ１８：：ＫＤＥＬの構築、産生、及び精製
免疫グロブリン型結合領域αＵＬ１８及び志賀毒素エフェクター領域を共に連結し、カルボキシ末端にＫＤＥＬを付加し、タンパク質を形成する。例えば、融合タンパク質は、αＵＬ１８結合タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＵＬ１８：：ＫＤＥＬをコードするポリヌクレオチドを発現させることによって産生される。細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：
αＵＬ１８：：ＫＤＥＬの発現を、前記の実施例において記載したように、細菌及び／又は無細胞のいずれかのタンパク質翻訳系を用いて達成する。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＵＬ１８：：ＫＤＥＬのインビトロでの特性の決定
サイトメガロウイルスＵＬ１８陽性細胞及びサイトメガロウイルスＵＬ１８陰性細胞に対する、本実施例の細胞毒性タンパク質の結合特性は、蛍光に基づくフローサイトメトリーにより決定する。サイトメガロウイルスタンパク質ＵＬ１８陽性細胞へのＳＬＴ－１Ａ：：αＵＬ１８：：ＫＤＥＬのＢｍａｘは約５０，０００～２００，０００ＭＦＩ、ＫＤは０．０１～１００ｎＭである一方、このアッセイにおいてはサイトメガロウイルスタンパク質ＵＬ１８陰性細胞への有意な結合はない。
細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＵＬ１８：：ＫＤＥＬのリボソーム不活性化能力を、前記の実施例において上記のように、無細胞のインビトロでのタンパク質翻訳において決定する。無細胞タンパク質合成に対する本実施例の細胞毒性タンパク質の阻害効果は有意である。この無細胞アッセイにおけるタンパク質合成に対するＳＬＴ－１Ａ：：αＵＬ１８：：ＫＤＥＬのＩＣ５０は約０．１～１００ｐＭである。
細胞殺滅アッセイを用いた細胞毒性タンパク質ＳＬＴ－１Ａ：：αＵＬ１８：：ＫＤＥＬの細胞毒性の決定
ＳＬＴ－１Ａ：：αＵＬ１８：：ＫＤＥＬの細胞毒性特性を、サイトメガロウイルスタンパク質ＵＬ１８陽性細胞を用いて、前記の実施例において上記のように、一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。さらに、ＳＬＴ－１Ａ：：αＵＬ１８：：ＫＤＥＬの選択的細胞毒性特性を、サイトメガロウイルスタンパク質ＵＬ１８陽性細胞と比較してサイトメガロウイルスタンパク質ＵＬ１８陰性細胞を用いる同じ一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。本実施例の細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞株に応じて、サイトメガロウイルスタンパク質ＵＬ１８陽性細胞について約０．０１～１００ｎＭである。細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞表面上にサイトメガロウイルスタンパク質ＵＬ１８を発現する細胞と比較して細胞表面上にサイトメガロウイルスタンパク質ＵＬ１８を発現しない細胞について約１０～１０，０００倍高い（細胞毒性が低い）。さらに、ＳＬＴ－１Ａ：：αＵＬ１８：：ＫＤＥＬの細胞毒性を、Ｔ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。
Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化されたジフテリア毒素エフェクターポリペプチド、並びにＣＤ２０に特異的な結合領域を含む細胞毒性タンパク質（ジフテリア毒素と融合したαＣＤ２０）
本実施例において、ＣＤ８＋Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化されたジフテリア毒素エフェクター領域は、上記のように、ジフテリア毒素１のＡサブユニットに由来する。免疫グロブリン型結合領域αＣＤ２０抗原は、ヒトＣＤ２０を認識する免疫グロブリン型ドメインに由来し（例えば、Haisma et al.,Blood 92: 184-90 (1999)、Geng S et al., Cell Mol Immunol3:439-43 (2006)、Olafesn T et al.,Protein EngDesSel 23:243-9 (2010)を参照されたい）、ＣＤ２０の細胞外部分に結合することができる免疫グロブリン型結合領域を含む。ＣＤ２０は、例えば、Ｂ細胞リンパ腫細胞、有毛細胞白血病細胞、Ｂ細胞慢性リンパ球性白血病細胞、及びメラノーマ細胞などの複数のがん細胞型で発現する。さらに、ＣＤ２０はいくつかの自己免疫疾患、障害、及び過活動Ｂ細胞を含む状態を治療するための治療学への魅力的な標的である。
細胞毒性タンパク質ジフテリア毒素：：αＣＤ２０の構築、産生、及び精製
免疫グロブリン型結合領域αＣＤ２０及びジフテリア毒素エフェクター領域（例えば、
配列番号４６、４７、及び４８など）を共に連結した。例えば、融合タンパク質は、αＣＤ２０抗原結合タンパク質ジフテリア毒素：：αＣＤ２０をコードするポリヌクレオチドを発現させることによって産生される（例えば、配列番号５５、５６、及び５７を参照されたい）。細胞毒性タンパク質ＳＬＴジフテリア毒素：：αＣＤ２０の発現を、前記の実施例において記載したように、細菌及び／又は無細胞のいずれかのタンパク質翻訳系を用いて達成した。
細胞毒性タンパク質ジフテリア毒素：：αＣＤ２０のインビトロでの特性の決定
ＣＤ２０＋細胞及びＣＤ２０－細胞に対する、本実施例の細胞毒性タンパク質の結合特性は、前記の特許に記載のように、蛍光に基づくフローサイトメトリーアッセイにより決定する。ＣＤ２０＋細胞へのジフテリア毒素：：αＣＤ２０のＢｍａｘは約５０，０００～２００，０００ＭＦＩ、ＫＤは０．０１～１００ｎＭである一方、このアッセイにおいてはＣＤ２０－細胞への有意な結合はない。
細胞毒性タンパク質ジフテリア毒素：：αＣＤ２０のリボソーム不活性化能力を、前記の実施例において上記のように、無細胞のインビトロでのタンパク質翻訳において決定する。無細胞タンパク質合成に対する本実施例の細胞毒性タンパク質の阻害効果は有意である。この無細胞アッセイにおけるタンパク質合成に対するジフテリア毒素：：αＣＤ２０のＩＣ５０は約０．１～１００ｐＭである。
ＣＤ２０＋細胞殺滅アッセイを用いた細胞毒性タンパク質ジフテリア毒素：：αＣＤ２０の細胞毒性の決定
ジフテリア毒素：：αＣＤ２０の細胞毒性特性を、ＣＤ２０＋細胞を用いて前記の実施例において上記のように、一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。さらに、ジフテリア毒素：：αＣＤ２０の選択的細胞毒性特性を、ＣＤ２０＋細胞と比較してＣＤ２０－細胞を用いる同じ一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。本実施例の細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞株に応じて、ＣＤ２０＋細胞について約０．０１～１００ｎＭである。細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞表面上にＣＤ２０を発現する細胞と比較して細胞表面上にＣＤ２０を発現しない細胞について約１０～１０，０００倍高い（細胞毒性が低い）。さらに、ジフテリア毒素：：αＣＤ２０の細胞毒性を、Ｔ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。
動物モデルを使用した細胞毒性タンパク質ジフテリア毒素：：αＣＤ２０のインビボでの効果の決定
動物モデルを用いて、新生物細胞に対する細胞毒性タンパク質ジフテリア毒素：：αＣＤ２０のインビボでの効果を決定する。様々なマウス株を用いて、細胞表面上にＣＤ２０を発現するヒト新生物細胞のマウスへの注射から得られるマウスにおける異種移植腫瘍に対する静脈内投与後の細胞毒性タンパク質の効果を試験する。細胞殺滅をＴ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。
Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化されたジフテリア毒素エフェクターポリペプチド、並びにＨＥＲ２に特異的な結合領域を含む細胞毒性タンパク質（「ジフテリア毒素と融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」）
本実施例において、ＣＤ８＋Ｔ細胞が高度免疫化された及びＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化されたジフテリア毒素エフェクター領域は、上記のように、ジフテリア毒素のＡサブユニットに由来する。免疫グロブリン型結合領域は、米国特許出願第２０１１／００５９０９０号に記載されるように、ラクダ抗体の単ドメイン可変領域（ＶＨＨ）であるタンパク質に由来するαＨＥＲ２ ＶＨＨである。
細胞毒性タンパク質「ジフテリア毒素と融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」の構築、産生、及び精製
免疫グロブリン型結合領域及びジフテリア毒素エフェクター領域を共に連結し、融合タンパク質を形成した（例えば、配列番号５８、５９、６０など）。本実施例において、タンパク質５Ｆ７に由来するαＨＥＲ２－ＶＨＨ可変領域をコードするポリヌクレオチドは、当技術分野で既知のリンカーをコードするポリヌクレオチドを有するフレーム、及び配列番号４６、４７、又は４８のアミノ酸を含むジフテリア毒素エフェクター領域をコードするポリヌクレオチドを有するフレームにクローニングすることができる。細胞毒性タンパク質「ジフテリア毒素と融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」のバリアントは、結合領域をジフテリア毒素エフェクター領域のアミノ末端の隣に位置していてもよく、カルボキシ末端にＫＤＥＬファミリーの小胞体シグナルモチーフを含んでいてもよいように作製した。細胞毒性タンパク質「ジフテリア毒素と融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」の発現を、前記の実施例において記載したように、細菌及び／又は無細胞のいずれかのタンパク質翻訳系を用いて達成した。
細胞毒性タンパク質「ジフテリア毒素と融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」のインビトロでの特性の決定
ＨＥＲ２＋細胞及びＨＥＲ２－細胞に対する、本実施例の細胞毒性タンパク質の結合特性は、前記の特許に記載のように、蛍光に基づくフローサイトメトリーアッセイにより決定する。ＨＥＲ２＋細胞への「ジフテリア毒素と融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」のＢｍａｘは約５０，０００～２００，０００ＭＦＩ、ＫＤは０．０１～１００ｎＭである一方、このアッセイにおいてはＨＥＲ２－細胞への有意な結合はない。
細胞毒性タンパク質「ジフテリア毒素と融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」のリボソーム不活性化能力を、前記の実施例において上記のように、無細胞のインビトロでのタンパク質翻訳において決定する。無細胞タンパク質合成に対する本実施例の細胞毒性タンパク質の阻害効果は有意である。この無細胞アッセイにおけるタンパク質合成に対する「ジフテリア毒素と融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」のＩＣ５０は約０．１～１００ｐＭである。
ＨＥＲ２＋細胞殺滅アッセイを用いた細胞毒性タンパク質「ジフテリア毒素と融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」の細胞毒性の決定
「ジフテリア毒素と融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」の細胞毒性特性を、ＨＥＲ２＋細胞を用いて前記の実施例において上記のように、一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。さらに、「ジフテリア毒素と融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」の選択的細胞毒性特性を、ＨＥＲ２＋細胞と比較してＨＥＲ２－細胞を用いる同じ一般的な細胞殺滅アッセイにより決定する。本実施例の細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞株に応じて、ＨＥＲ２＋細胞について約０．０１～１００ｎＭである。細胞毒性タンパク質のＣＤ５０は、細胞表面上にＨＥＲ２を発現する細胞と比較して細胞表面上にＨＥＲ２を発現しない細胞について約１０～１０，０００倍高い（細胞毒性が低い）。さらに、「ジフテリア毒素と融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」の細胞毒性を、Ｔ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。
動物モデルを使用した細胞毒性タンパク質「ジフテリア毒素と融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」のインビボでの効果の決定
動物モデルを用いて、新生物細胞に対する細胞毒性タンパク質「ジフテリア毒素と融合したαＨＥＲ２－ＶＨＨ」のインビボでの効果を決定する。様々なマウス株を用いて、細胞表面上にＨＥＲ２を発現するヒト新生物細胞のマウスへの注射から得られるマウスにおける異種移植腫瘍に対する静脈内投与後の細胞毒性タンパク質の効果を試験する。細胞殺
滅をＴ細胞エピトープの送達による直接細胞毒性及び間接細胞毒性の両方、並びにＣＴＬ介在細胞毒性を導く提示について調査する。
様々な細胞型を標的とする、Ｔ細胞が高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素由来細胞毒性タンパク質
本実施例において、志賀毒素エフェクター領域は、１又は２以上の組み込まれた又は挿入されたＴ細胞エピトープを介して、１又は２以上の上記Ｂ細胞エピトープ領域が破壊された、志賀様毒素１、志賀毒素、及び／又は志賀様毒素２のＡサブユニット（ＳＬＴ－１Ａ、ＳｔｘＡ、ＳＬＴ－２Ａ）に由来する、Ｔ細胞が高度免疫化された及び／又はＢ細胞／ＣＤ４＋Ｔ細胞が脱免疫化された志賀毒素エフェクターポリペプチドを含む。結合領域は表１５の第１列から選択される分子の免疫グロブリンドメインに由来し、表１５の第２列に示される細胞外標的生体分子と結合する。本実施例の例示的細胞毒性タンパク質は、カルボキシ末端にＫＤＥＬ型シグナルモチーフを有し及び／又は当技術分野で既知の試薬及び技術を用いて作製していてもよい。本実施例の例示的細胞毒性タンパク質は、前記の実施例において記載したように、適切な細胞外標的生体分子を発現する細胞を用いて試験される。本実施例の例示的タンパク質は、例えば、表１５の第３列に示される疾患、状態、及び／又は障害を診断及び治療するために用いることができる。



Figure 2023062014000018


Figure 2023062014000019


Figure 2023062014000020



Figure 2023062014000021



Figure 2023062014000022



Figure 2023062014000023



本発明のいくつかの実施形態を例示によって説明してきたが、本発明を多くの改変、変更及び適合化と共に実行することができ、本発明の精神から逸脱するか、又は特許請求の範囲を超えることなく、いくつかの等価物又は代替的な解決法の使用が当業者の範囲内に
あることが明らかである。
全ての刊行物、特許、及び特許出願は、あたかもそれぞれ個々の刊行物、特許又は特許出願の全体が参照により組み込まれると具体的かつ個別的に示されたのと同程度に、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。米国仮特許出願第６１／７７７，１３０号明細書、第６１／９３２，０００号明細書、第６１／９５１，１１０号明細書、第６１／９５１，１２１号明細書、第６２／０１０，９１８号明細書、及び第６２／０４９，３２５号明細書の開示はそれぞれ、その全体が参照により組み込まれる。米国特許出願第２００７／０２９８４３４Ａ１号明細書、米国特許出願第２００９／０１５６４１７Ａ１号明細書、及び米国特許出願第２０１３／０１９６９２８Ａ１号明細書の開示はそれぞれ、その全体が参照により組み込まれる。国際出願第ＰＣＴ／ＵＳ２０１４／０２３２３１号及び国際出願第ＰＣＴ／ＵＳ２０１４／０２３１９８号の開示はそれぞれ、その全体が参照により組み込まれる。本明細書で引用されるアミノ酸及び核酸配列に関するGenBank（National Center for BiotechnologyInformation、U.S.）からの全ての電子的に利用可能な生
物学的配列情報の完全な開示は、その全体が参照により組み込まれる。

Claims (14)

  1. ｉ）細胞の表面に物理的に結合される細胞外標的生体分子に特異的に結合することができる結合領域であって、前記細胞外標的生体分子が、ＨＥＲ２／ｎｅｕ／ＥｒｂＢ２、ＣＤ３８、ＣＤ２０、ＳＬＡＭＦ７、ＣＴＬＡ－４又はＴＮＦＲＳＦ１７である、前記結合領域と、
    ii）配列番号１のアミノ酸１～２５１に対して少なくとも９０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む志賀毒素エフェクターポリペプチドであって、前記アミノ酸配列が、配列番号１のアミノ酸残基の位置５３～６１に組み込まれ、かつ、前記位置５３～６１にわたる異種ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープを含み、前記エピトープが、配列番号１と比較して変異した残基Ｖ５４Ｉ、Ｒ５５Ｌ、Ｉ５７Ｆ、Ｐ５９Ｆ、Ｅ６０Ｔ及びＥ６１Ｌを有する、前記志賀毒素エフェクターポリペプチドと
    を含む細胞標的化分子であって、
    前記アミノ酸配列が、配列番号１の７５位に対応するアミノ酸残基にアスパラギン、配列番号１の７７位に対応するアミノ酸残基にチロシン、配列番号１の１１４位に対応するアミノ酸残基にチロシン、配列番号１の１６７位に対応するアミノ酸残基にグルタミン酸、配列番号１の１７０位に対応するアミノ酸残基にアルギニン、配列番号１の１７６位に対応するアミノ酸残基にアルギニン、及び配列番号１の２０３位に対応するアミノ酸残基にトリプトファンを含む、
    前記細胞標的化分子。
  2. 志賀毒素エフェクターポリペプチドが、配列番号１のアミノ酸１～２５１に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項１に記載の細胞標的化分子。
  3. 志賀毒素エフェクターポリペプチドが、配列番号１６に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項１に記載の細胞標的化分子。
  4. 結合領域が、志賀毒素エフェクターポリペプチドのカルボキシ末端に融合し、単一の連続ポリペプチドを形成する、請求項１～３のいずれかに記載の細胞標的化分子。
  5. 結合領域が、免疫ブロブリン型結合領域を含む、請求項１～４のいずれかに記載の細胞標的化分子。
  6. 免疫グロブリン型結合領域が、
    シングルドメイン抗体断片、一本鎖可変断片、抗体可変断片、相補性決定領域３断片、拘束ＦＲ３－ＣＤＲ３－ＦＲ４ポリペプチド、Ｆｄ断片、抗原結合断片、フィブロネクチンから得られる第１０フィブロネクチンIII型ドメイン、テネイシンIII型ドメイン、アンキリン反復モチーフドメイン、低密度リポタンパク質受容体由来Ａドメイン、リポカリン、Kunitzドメイン、プロテインＡ由来Ｚドメイン、ガンマ－Ｂ結晶由来ドメイン、ユビキチン由来ドメイン、Ｓａｃ７ｄ由来ポリペプチド、Ｆｙｎ由来ＳＨ２ドメイン、ミニタンパク質、Ｃ型レクチン様ドメイン足場、ラクダ化動物に由来する重鎖抗体ドメイン（ＶＨＨ断片）、軟骨魚類に由来する重鎖抗体ドメイン、免疫グロブリン新規抗原受容体（ＩｇＮＡＲ）、ＶＮＡＲ断片、多量体化ｓｃＦｖ断片（ダイアボディ、トリアボディ、テトラボディ）、二価ナノボディ、二重特異性タンデムｓｃＦｖ断片、又は二重特異性ミノボディ、
    から選択されるポリペプチドを含む、請求項５に記載の細胞標的化分子。
  7. リンカーペプチド（ＧｘＳ）ｎ（式中、ｘは１～６であり、ｎは１～３０である）を含む、請求項１～６のいずれかに記載の細胞標的化分子。
  8. ｘが４であり、かつｎが１である、請求項７に記載の細胞標的化分子。
  9. 請求項１～８のいずれかに記載の細胞標的化分子と、薬学的に許容される賦形剤又は担体とを含む、医薬組成物。
  10. 請求項１～８のいずれかに記載の細胞標的化分子をコードするポリヌクレオチド、又はその相補物。
  11. 請求項１０に記載のポリヌクレオチドを含む発現ベクター。
  12. 請求項１０に記載のポリヌクレオチド又は請求項１１に記載の発現ベクターを含む、宿主細胞。
  13. 請求項１～８のいずれかに記載の細胞標的化分子又は請求項９に記載の医薬組成物を含む、患者におけるがん、腫瘍、増殖異常、免疫障害、若しくは微生物感染の治療剤。
  14. がん、腫瘍、増殖異常、免疫障害、若しくは微生物感染を治療又は予防するための医薬品の製造における、請求項１～８のいずれかに記載の細胞標的化分子又は請求項９に記載の医薬組成物の使用。
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