JP2019520055A - ブチリデンフタリドの用途 - Google Patents
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Abstract
Description
A1.条件培地の調製
DMEM培地(ブランド名:GIBCO、製品番号:11965092)が基本培地として用いられ、ロシグリタゾン(濃度:0.5μM、溶媒:ジメチルスルホキシド(DMSO))、インスリン(濃度:170nM、溶媒:培養培地)、3−イソブチル−1−メチルキサンチン(IBMX、濃度:0.5μM、溶媒:DMSO)及びデキサメタゾン(濃度:1μM、溶媒:DMSO)が外部からそこに添加され、条件培地とされた。
B1−1.脂肪幹細胞の前培養
脂肪幹細胞(ADSC)が37℃、5%CO2で5日間、DMEM/F12培地において培養された。上記前培養された細胞の形態が顕微鏡でいくつかの倍率(40倍、100倍及び200倍を含む)で観察され、写真に撮影された。結果が図1に示されている(すなわち、脂肪幹細胞(未分化))。
脂肪細胞に分化させるために、実施例B1−1で得られた上記の前培養脂肪幹細胞が37℃、5%CO2で7日間、実施例A1で得られた条件培地で培養された。上記のように得られた細胞の形態が顕微鏡でいくつかの倍率(40倍、100倍及び200倍を含む)で観察され、写真に撮影された。結果が図1に示されている(すなわち、脂肪幹細胞(分化))。
実施例B1−2で得られた脂肪細胞が7つの群に分けられ、独立して以下の処理を施された。
(1)対照群:A1で得られた条件培地で細胞が7日間培養された。
(2)BP−2群:ブチリデンフタリド(BP)が外部から添加された(終濃度2μg/mL)条件培地で細胞が7日間培養された(ブチリデンフタリド(BP)はECHO CHEMICAL社(台湾)から購入され、製品番号はA10353である)。
(3)BP−10群:ブチリデンフタリド(BP)が外部から添加された(終濃度10μg/mL)条件培地で細胞が7日間培養された。
(4)BP−50群:ブチリデンフタリド(BP)が外部から添加された(終濃度50μg/mL)条件培地で細胞が7日間培養された。
(5)トファシチニブ群:トファシチニブが外部から添加された(終濃度2μM)条件培地で細胞が7日間培養された(トファシチニブはUNI−ONWARD社(台湾)から購入され、製品番号はPZ0017である)。
(6)アデノシン群:アデノシンが外部から添加された(終濃度1μM)条件培地で細胞が7日間培養された(アデノシンはUNI−ONWARD社(台湾)から購入され、製品番号はA4036である)。そして、
(7)プロアントシアニジン群:プロアントシアニジンが外部から添加された(終濃度10μM)条件培地で細胞が7日間培養された(アデノシンはHong Jing社(台湾)から購入され、製品番号はsc−344976である)。
上述のように、白色脂肪細胞との違い、褐色様脂肪細胞/褐色脂肪細胞の形態は、(i)多数の脂肪滴を含み、(ii)多くのミトコンドリアを含み、(iii)高度に発現した脱共役タンパク質1(UCP1)を有することで特徴付けられる。多くのミトコンドリアを含むために、褐色様脂肪細胞/褐色脂肪細胞は、白色脂肪細胞と比較して高い酸素消費速度及び予備呼吸容量を有する(予備呼吸容量は、最大酸素消費速度と基礎酸素消費速度との間の差を意味し、ATPの産生に用いられない酸素消費を表す)。このため、褐色様脂肪細胞/褐色脂肪細胞の個数及び割合は、細胞内の脂肪滴の個数、脂肪細胞の酸素消費速度並びにUCP1の遺伝子及びタンパク質の発現を調べることで評価できる。
まず、実施例B1−1、B1−2及びB1−3で撮影された写真における各群の細胞の形態を観察した。図1に示すように、実施例B1−1で得られた脂肪幹細胞(未分化)及び実施例B1−2で得られた脂肪細胞(分化)と比較して、実施例B1−3で得られた“BP−10群”における脂肪細胞がより多くの脂肪滴を含んでいた。この結果は、BPの使用によって脂肪幹細胞の褐色様脂肪細胞への分化が効率的に促進されることを示す。
実施例B1−1で得られた脂肪幹細胞(未分化)、実施例B1−2で得られた脂肪細胞(分化)、実施例B1−3で得られた“BP−2群”、“BP−10群”及び“BP−50群”における脂肪細胞が独立してXF24ウェル細胞培養プレート(Seahorse Bioscienceから購入)に1.65×104細胞/ウェルで播種され、37℃で24時間、緩衝成分(すなわち、2mM GlutaMAX、1mMピルビン酸ナトリウム、1.85g/L NaCl、25mMグルコースを含む培地)を含まないDMEM培地で培養された。培地が新たな培地に交換された後、細胞が続けて37℃で1時間培養された。そして、各群の細胞のミトコンドリア生合成が、25μMオリゴマイシン、0.5μM FCCP及び5μMロテノン/アンチマイシンAそれぞれで連続して阻害され、上述の阻害を行う前及び行っている間、ミトコンドリア生合成がXF24細胞外流動分析装置(Seahorse Bioscienceから購入)によって継続的に検出された。酸素消費速度及び予備呼吸容量をさらに計算するために、培養培地の酸素圧及び酸性化の度合いが、調整されたプローブで検出された。酸素消費速度の結果が図3Aに示されており、基礎酸素消費速度及び予備呼吸容量の結果が図3Bに示されている。
実施例B1−3で得られた各群の細胞が独立して回収され、細胞の総RNA及びタンパク質が次の実験で個別に抽出された。
A2.実験動物としてのマウスモデルの作製
C57BL/6マウス(台湾のNational Laboratory Animal Centerから購入)が中国医科大学(台湾)の実験動物センターで4週齢になるまで飼育された(条件:ケージごとに3匹を飼育、飼育室の温度は20℃から24℃の範囲、相対湿度は50%から70%の範囲、照明サイクルが12時間、毎日十分な水と通常食を与えた)。続いて、マウスが7つの群に無作為に分けられ(1群あたり6匹)、個別に次の処理及び実験を行った。
1.通常食群(すなわち“ND”群):マウスは18週齢になるまで通常食で継続的に飼育された。
2.高脂肪食群(すなわち、“HFD”群):マウスは18週齢になるまで高脂肪食で継続的に飼育され、他の処理を受けていない。
3.ブチリデンフタリド(BP)の経口投与群(すなわち“HFD+BP”群):マウスは18週齢になるまで高脂肪食で継続的に飼育されるとともに、第9週の初めに経口でブチリデンフタリド(BP)が投与された(投与量:毎日、250mg/kg体重)。
4.脂肪幹細胞の細胞注入群(すなわち“HFD+ADSC”群):マウスは18週齢になるまで高脂肪食で継続的に飼育されるとともに、第11週の初めに静脈注射で脂肪幹細胞が投与された(投与量:2週間ごと、100〜150μLの生理食塩水に懸濁された4×105細胞、合計で4回注射)。
5.脂肪幹細胞の細胞注入と組み合わせたブチリデンフタリド(BP)の経口投与群(すなわち“HFD+BP+ADSC”群):マウスは18週齢になるまで高脂肪食で継続的に飼育されるとともに、第9週の初めに経口でブチリデンフタリド(BP)が投与され(投与量:毎日、250mg/kg体重)、かつさらに第11週の初めに静脈注射で脂肪幹細胞が投与された(投与量:2週間ごと、100〜150μLの生理食塩水に懸濁された4×105細胞、合計で4回注射)。
6.褐色様脂肪細胞の細胞注入群(すなわち“HFD+BLC”群):マウスは18週齢になるまで高脂肪食で継続的に飼育されるとともに、第11週の初めに静脈注射によって実施例1で得られた褐色様脂肪細胞が投与された(投与量:2週間ごと、100〜150μLの生理食塩水に懸濁された4×105細胞、合計で4回注射)。
7.褐色様脂肪細胞の細胞注入と組み合わせたブチリデンフタリド(BP)の経口投与群(すなわち“HFD+BP+BLC”群):マウスは18週齢になるまで高脂肪食で継続的に飼育されるとともに、第9週の初めに経口でブチリデンフタリド(BP)が投与され(投与量:毎日、250mg/kg体重)、かつさらに第11週の初めに静脈注射で実施例1で得られた褐色様脂肪細胞が投与された(投与量:2週間ごと、100〜150μLの生理食塩水に懸濁された4×105細胞、合計で4回注射)。
B2−1.上記実施例A2の作製方法において、マウスが18週齢になるまでマウスの体重変化が毎週記録された。
褐色脂肪細胞には多数の小さい脂肪滴があることが知られている。ブチリデンフタリド(BP)が動物の体内で脂肪褐色化の発生の促進に有効であるか否かを明らかにするために、実施例B2−3で得られた皮下の脂肪組織及び内臓の脂肪組織がホルマリンで固定され、ワックスで加工され、薄い切片に切断された。当該切片がヘマトキシリン−エオシン染色(H&E染色)によって染色され、各群のマウスの脂肪組織における細胞の形態が観察された。その結果が図5A(皮下脂肪)及び5B(内臓脂肪)に示されている。
ブチリデンフタリド(BP)が白色脂肪の蓄積を軽減するか否かを明らかにするために、実施例B2−3で記録された各群のマウスの肝臓、心臓、腎臓、皮下の脂肪組織及び内臓の脂肪組織の外観の写真が図6Aに示されている。実施例B2−3で記録された各群のマウスの皮下の脂肪組織及び内臓の脂肪組織の重量がそれぞれ平均化された。その結果は、表1、図6B及び6Cに示されている。
4−1.マウスの体重変化
ブチリデンフタリド(BP)が体重増加の抑制に有効であるか否かを明らかにするために、実施例B2−1の各群のマウスの記録された体重の平均値が毎週取得された。その結果は図7に示されている。図7に示されたように、“HFD+BP”群、“HFD+ADSC”群、“HFD+BP+ADSC”群、“HFD+BLC”群及び“HFD+BP+BLC”群のマウスの体重の増加は、“HFD”群のそれと比較して有意に抑えられた。一方、“HFD+BP+ADSC”群のマウスの体重の増加は、“HFD+BP”群又は“HFD+ADSC”群のそれと比較して有意に抑えられた。さらに、“HFD+BP+BLC”群のマウスの体重の増加は、“HFD+BP”群又は“HFD+BLC”群のそれと比較して有意に抑えられた。
ブチリデンフタリド(BP)が血中のグルコース、トリグリセリド及び総コレステロールの含量の低減に有効であるか否かを明らかにするために、実施例B2−2で得られた各群のマウスの血液試料がSYSMEX K−1000及びTOSHIBA TBA200FA 自動血液分析装置で解析され、マウスの血中のグルコース、トリグリセリド及び総コレステロールの含量が解析された。各群の結果が平均化された。その結果は表2及び図8A〜8Cに示されている“HFD”群の結果に基づいて、各群のグルコース、トリグリセリド及び総コレステロールの相対的な含量が算出された。その結果も表2に示されている。
(付記1)
(1)基本培地及び幹細胞の脂肪細胞への分化を誘導することができる成分を含む条件培地と、
(2)ブチリデンフタリド(BP)と、
を構成成分として含む、幹細胞の褐色様脂肪細胞への分化を促進するためのキット。
前記成分は、ロシグリタゾン、インスリン、3−イソブチル−1−メチルキサンチン(IBMX)、デキサメタゾン、及びそれらの組み合わせからなる群から選択される、付記1に記載のキット。
白色脂肪の蓄積を阻害し、白色脂肪の褐色脂肪への転換を促進し、体重増加を抑制し、及び/又は血中のトリグリセリド、グルコース及び総コレステロールの含量を低減するために用いられる薬剤の製造におけるブチリデンフタリド(BP)の使用。
前記薬剤は、抗肥満及び/又は肥満に関連するメタボリック症候群の予防のために用いられる、付記3に記載の使用。
前記メタボリック症候群は、糖尿病、脳血管疾患、循環器疾患、高血圧症及び腎症の少なくとも1つである、付記4に記載の使用。
前記薬剤は、間葉幹細胞及び褐色様脂肪細胞の少なくとも1つとともに投与される、付記3から5のいずれか一つに記載の使用。
前記間葉幹細胞は、脂肪幹細胞である、付記6に記載の使用。
前記薬剤は、1日あたりBPとして30mg/kg体重からBPとして2000mg/kg体重までの範囲の量で投与される、付記3から5のいずれか一つに記載の使用。
前記薬剤は、1日あたりBPとして30mg/kg体重からBPとして2000mg/kg体重までの範囲の量で投与される、付記6に記載の使用。
Claims (9)
- (1)基本培地及び幹細胞の脂肪細胞への分化を誘導することができる成分を含む条件培地と、
(2)ブチリデンフタリド(BP)と、
を構成成分として含む、幹細胞の褐色様脂肪細胞への分化を促進するためのキット。 - 前記成分は、ロシグリタゾン、インスリン、3−イソブチル−1−メチルキサンチン(IBMX)、デキサメタゾン、及びそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項1に記載のキット。
- 白色脂肪の蓄積を阻害し、白色脂肪の褐色脂肪への転換を促進するために用いられる薬剤の製造におけるブチリデンフタリド(BP)の使用。
- 白色脂肪の蓄積を阻害し、白色脂肪の褐色脂肪への転換を促進し、体重増加を抑制し、及び/又は血中のトリグリセリド、グルコース及び総コレステロールの含量を低減するために用いられ、間葉幹細胞及び褐色様脂肪細胞の少なくとも一方とともに投与される薬剤の製造におけるブチリデンフタリド(BP)の使用。
- 前記薬剤は、抗肥満及び/又は肥満に関連するメタボリック症候群の予防のために用いられる、請求項4に記載の使用。
- 前記メタボリック症候群は、糖尿病、脳血管疾患、循環器疾患、高血圧症及び腎症の少なくとも1つである、請求項5に記載の使用。
- 前記間葉幹細胞は、脂肪幹細胞である、請求項4から6のいずれか一項に記載の使用。
- 前記薬剤は、1日あたりBPとして30mg/kg体重からBPとして2000mg/kg体重までの範囲の量で投与される、請求項3に記載の使用。
- 前記薬剤は、1日あたりBPとして30mg/kg体重からBPとして2000mg/kg体重までの範囲の量で投与される、請求項4から6のいずれか一項に記載の使用。
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