JP2018150282A - 口腔用組成物 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】本発明によれば、カカオ豆抽出物を含んでなる、口腔用組成物が提供される。本発明の口腔用組成物は、歯周病菌の動物細胞への付着阻害剤や、歯周病菌の線毛発現抑制剤等として用いることができる。
【選択図】なし
Description
[1]カカオ豆抽出物を含んでなる、口腔用組成物。
[2]歯周病菌の動物細胞への付着阻害剤である、上記[1]に記載の組成物。
[3]歯周病菌の線毛発現抑制剤である、上記[1]に記載の組成物。
[4]カカオ豆抽出物が未発酵のカカオ豆抽出物である、上記[1]に記載の組成物。
[5]歯周病菌および/または口臭原因菌に対する抗菌剤である、上記[4]に記載の組成物。
[6]歯周病およびその関連疾患の治療、予防または改善に用いるための、上記[4]または[5]に記載の組成物。
[7]口臭抑制に用いるための、上記[4]または[5]に記載の組成物。
[8]歯周病菌が、ポルフィロモナス・ジンジバリス、プレボテラ・インターメディア、プレボテラ・ニグレセンス、トレポネーマ・デンティコーラ、タンネレラ・フォーサイセンシス、アグリゲイティバクター・アクチノミセテムコミタンス、カンピロバクター・レクタスおよびフロバクテリウム・ヌクレイタムからなる群から選択される1種または2種以上である、上記[2]、[3]または[5]に記載の組成物。
[9]口臭原因菌が、フソバクテリウム・ヌクレアタムおよびベイロネラ・ディスパー並びに上記[8]に記載された歯周病菌からなる群から選択される1種または2種以上である、上記[5]に記載の組成物。
[10]食品組成物である、上記[1]〜[9]のいずれかに記載の組成物。
(1)未発酵カカオ豆抽出物含有培地の調製
被検試料として、カカオ豆抽出物(ポリフェノール濃度82質量%、以下「CBP」という)(株式会社明治製)およびHPカカオエキスPW(ポリフェノール濃度17質量%、以下「HP−PW」という)(株式会社明治製)を用いた。CBPおよびHP−PWは、それぞれ抽出方法の異なる未発酵カカオ豆抽出物である。CBP粉末およびHP−PW粉末はそれぞれ50%エタノール溶解液に溶解し、CBP含有50%エタノール溶解液およびHP−PW含有50%エタノール溶解液とした。BHI−YHK培地は、ブレインハートインフュージョン培地(ベクトンディキンソン社製、以下「BHI培地」という)に5mg/mLの酵母エキス(ベクトンディキンソン社製)、5μg/mLのヘミン(和光純薬社製)および0.5μg/mLのビタミンK1(和光純薬社製)を添加して調製した(以下、同様)。次いで、表1に示すCBPおよびHP−PW濃度となるように、BHI−YHK培地にCBP含有50%エタノール溶解液およびHP−PW含有50%エタノール溶解液をそれぞれ添加することにより、CBPを含有するBHI−YHK培地およびHP−PWを含有するBHI−YHK培地を調製した。また、対照群として、BHI−YHK培地にCBP含有50%エタノール溶解液およびHP−PW含有50%エタノール溶解液のいずれも添加しない試験区を設けた。
歯周病菌として、ポルフィロモナス・ジンジバリス(Porphyromonas gingivalis ATCC 33277株、以下同様)を用いた。ポルフィロモナス・ジンジバリスをBHI−YHK培地に接種し、嫌気ガス(70%N2、15%H2、15%CO2)を満たしたAnaerobox(テーハー式・アナエロ・ボックスANX-3型、株式会社ヒラサワ社製)内で、37℃で18時間培養した。培養後、遠心分離処理により集菌し、550nmの波長で吸光度1.0であるポルフィロモナス・ジンジバリス菌液を調製した。
上記(1)で調製したCBP含有BHI−YHK培地およびHP−PW含有BHI−YHK培地に、上記(2)で調製したポルフィロモナス・ジンジバリス菌液10μLを接種し、嫌気条件下、室温で1時間または24時間作用させた後、培養後の各BHI−YHK培地を線毛発現阻害測定試験に供した。具体的には、培養後の各BHI−YHK培地に1mLのSDSサンプルバッファーを添加して100℃、5分間保持し各溶菌液サンプルを調製した。各溶菌液サンプルをSDSポリアクリルアミドゲル電気泳動に供し、FimA(41kDa)およびMfa1(67kDa)の各線毛タンパク質の発現を調べた。
結果は図1に示される通りであった。図1の結果より、0.01mg/mLおよびこれよりも高い濃度のCBP含有BHI−YHK培地はFimAおよびMfa1線毛の発現に対して阻害作用を有することが確認された。また、0.01mg/mLおよびこれよりも高い濃度のHP−PW含有BHI−YHK培地はMfa1線毛の発現に対して阻害作用を有すること、0.1mg/mLおよびこれよりも高い濃度のHP−PW含有BHI−YHK培地はFimA線毛の発現に対して阻害作用を有することが確認された。
(1)カカオ豆抽出物含有培地の調製
CBP含有BHI−YHK培地およびHP−PW含有BHI−YHK培地は、例1(1)に記載の手順に従って、CBPとHP−PWの最終培地濃度がそれぞれ0.001、0.01、0.1mg/mLであるBHI−YHK培地と、対照群としてCBPおよびHP−PWのいずれも添加しないBHI−YHK培地を調製した。また、被験試料として、Natsume et al., Biosci Biotechnol Biochem., 64, 2581-2587(2000)に記載された手順で調製した発酵カカオ豆抽出物であるCLPr(ポリフェノール濃度71質量%)を用いて、例1(1)に記載の手順に従ってCLPr含有50%エタノール溶解液を調製し、次いでCLPrの最終培地濃度がそれぞれ0.001、0.01、0.1mg/mLであるCLPr含有BHI−YHK培地を調製した。
歯周病菌は、550nmの波長で吸光度0.3であるポルフィロモナス・ジンジバリス菌液(109CFU/mL)とした以外は、例1(2)に記載の手順に従って調製した。
動物細胞として、ヒト歯肉上皮細胞(HGEC細胞)を用いた。ヒト歯肉上皮細胞を24ウェルプレートに1ウェルあたり1mLのKGM培地(LONZA社製)を用いて5%CO2・37℃の条件下で48時間培養した。培養後のヒト歯肉上皮細胞に、上記(1)で調製したCBP含有BHI−YHK培地、HP−PW含有BHI−YHK培地およびCLPr含有BHI−YHK培地を0.0001mg/mL、0.001mg/mL、0.01mg/mL、0.1mg/mLのカカオ豆抽出物濃度となるように添加し、次いで上記(2)で調製したポルフィロモナス・ジンジバリス菌液10μLを接種し、5%CO2・37℃の条件下で1時間処理した。処理後のヒト歯肉上皮細胞をPBSで3回洗浄後、水1mLで室温下20分放置することで上皮細胞を破壊して調製したポルフィロモナス・ジンジバリス菌液を適当に希釈し、希釈液0.1mLをBHI血液寒天培地に塗抹し、37℃で5日間培養後、生菌数を測定した。BHI血液寒天培地はBHI−YHK培地に1.5%バクトアガー(ベクトンディキンソン社製)を添加して滅菌後、5%羊脱繊血(日本バイオテスト研究所)を加えて作製した。
結果は図2に示される通りであった。図2の結果より、CBP、HP−PWおよびCLPrは歯周病菌であるポルフィロモナス・ジンジバリスの動物細胞への付着に対して阻害効果を有することが確認された。
(1)未発酵カカオ豆抽出物含有培地の調製
CBP含有BHI−YHK培地およびHP−PW含有BHI−YHK培地は、例1(1)に記載の手順に従って、CBPおよびHP−PWの最終培地濃度がそれぞれ0.01、0.1、1.0、10mg/mLであるBHI−YHK培地と、対照群としてCBPおよびHP−PWのいずれも添加しないBHI−YHK培地を調製した。
歯周病菌は、例1(2)に記載の手順に従って調製した。
上記(1)で調製したCBP含有BHI−YHK培地およびHP−PW含有BHI−YHK培地に、上記(2)で調製したポルフィロモナス・ジンジバリス菌液10μLを入れ、嫌気条件下、室温で1時間処理した後、処理後の各BHI−YHK培地を生菌数測定試験に供した。具体的には、処理後の各BHI−YHK培地を適当に希釈した希釈液0.1mLを、実施例2で用いたBHI血液寒天培地に塗抹し、37℃で5日間培養後、生菌数を測定し、下記式(1)に従って生残率を求めた。
結果は図3および図4に示される通りであった。図3および図4の結果より、CPBおよびHP−PWは歯周病菌であるポルフィロモナス・ジンジバリスに対して殺菌効果を有することが確認された。
(1)未発酵カカオ豆抽出物含有培地の調製
CBP含有BHI−YHK培地およびHP−PW含有BHI−YHK培地は、例1(1)に記載の手順に従って、CBPおよびHP−PWの最終培地濃度がそれぞれ0.1、1.0、10mg/mLであるBHI−YHK培地と、対照群としてCBPおよびHP−PWのいずれも添加しないBHI−YHK培地を調製した。
BHI−YHK培地1mLを添加した24ウェルマイクロプレートに円形カバーガラスを入れ、これに例1(2)で調製したポルフィロモナス・ジンジバリス菌液10μLを接種し、嫌気条件下、37℃で16.5時間培養した。培養後、リン酸緩衝液(pH7.2)でウェル内の浮遊菌を除去し、新鮮なBHI−YHK培地に交換し、37℃で24時間培養して、カバーガラス上にポルフィロモナス・ジンジバリスのバイオフィルムを形成させた。
結果は図5に示される通りであった。図5の結果より、CBPおよびHP−PW(図5中では「PW−VE−R」と表記)をそれぞれ作用させたポルフィロモナス・ジンジバリスのバイオフィルムでは、CBPおよびHP−PWの濃度に依存してバイオフィルム形成細菌の死滅が観察された。すなわち、CBPおよびHP−PWを添加しない「Control」では観察面全体が緑色に染色され、CBPおよびHP−PWをそれぞれ0.1mg/mL添加すると赤色にやや染色された部分が観察面に出現し、CBPおよびHP−PWをそれぞれ1.0mg/mL添加すると赤色に染色された部分が観察面に複数箇所出現し、CBPおよびHP−PWをそれぞれ1.0mg/mL添加すると観察面全体が赤色に染色された。また、写真全体面積に対する緑色面積(図5では白ないし灰色で示された部分)の割合(生菌の割合)も、未発酵カカオ豆抽出物の添加濃度が増加するにつれて減少傾向を示した。以上から、CBPおよびHP−PWは歯周病菌であるポルフィロモナス・ジンジバリスのバイオフィルムに対して殺菌効果を有することが確認された。
(1)実験的歯周炎モデルの作製
3週齢のSprague−Dawley雄ラット(日本クレア社より入手)を群分けした。具体的には、コントロール群(以下、「I群」という)、ポルフィロモナス・ジンジバリス感染群(以下、「II群」という)、未発酵カカオ豆抽出物摂取群(以下、「III群」という)および未発酵カカオ豆抽出物摂取かつポルフィロモナス・ジンジバリス感染群(以下、「IV群」という)の4群(各群n=6)に分けた。未発酵カカオ豆抽出物はCBPを用いた。口腔常在菌を減少させる目的で、各群に最終濃度1mg/mLのサルファメトキサゾールと200μg/mLのトリメトプリムをイオン交換水中に混合したものを飲料水として4日間与え、その後3日間は抗生物質を含まないイオン交換水を与えた後、1日目、3日目、5日目に以下の処理を行った。すなわち、I群は5%カルボキシメチルセルロース溶液(以下、「CMC」)という)を、II群は5%CMCで調製したポルフィロモナス・ジンジバリス菌液(109CFU/mL)を、それぞれラット口腔内へ投与した。I群とII群の投与を行った2時間後に、III群は最終濃度が10mg/mLとなるように5%CMCで調製したCBP溶液をI群の処理を行ったラット口腔内へ投与し、IV群は最終濃度が10mg/mLとなるように5%CMCで調製したCBP溶液をII群の処理を行ったラット口腔内に投与した。すべてのラットは、食事および飲料水を自由に摂取できるようにし、温度23℃、湿度60%および明暗12時間のサイクルの環境下で飼育した。また、体重をポルフィロモナス・ジンジバリス感染直後(4週齢)、ポルフィロモナス・ジンジバリス感染1週間後(5週齢)および屠殺時(11週齢)に測定し、各群の体重の平均値を求めた。最終投与日より40日目にすべてのラットをエーテル麻酔下で断頭潟血により屠殺した。本動物感染実験は神奈川歯科大学実験動物倫理委員会の承認を得て実施した。
歯槽骨の吸収量は、上記(1)で屠殺したラットの上顎臼歯部のセメントエナメル境から歯槽骨頂までの距離を7か所測定して行った。具体的には、頭蓋骨を2気圧下で10分間加熱後、3%次亜塩素酸ナトリウム溶液に浸漬して軟組織を除去後、1%メチレンブルー溶液で歯槽骨を染色乾燥させたものを試料として、実体顕微鏡下、倍率40倍で測定した。7か所の測定値の平均値を個体あたりの骨吸収量とし、各群6匹の平均値を各実験群の骨吸収量としてミリメートルで表し標準偏差(SD)を求めた。統計学的分析は、Tukey法を用いて行った。
ラット口腔内のプラーク細菌の採取は、水で湿らせた綿棒でラット口腔内を拭って行い、水0.5ml中で綿棒についた菌を懸濁させ、遠心分離(15000rpm、21,500×gで3分間、)して得られる沈殿画分をプラーク細菌とした。ポルフィロモナス・ジンジバリス標準菌株および採取したプラーク細菌からのDNA抽出は、ISOPLANT(ニッポン・ジーン社製)を用い、添付の手順書に従って実施した。抽出したDNAを30μLのT10E1溶液に溶解して保存した。PCR反応には、ポルフィロモナス・ジンジバリス 16S rRNA遺伝子から作製されたAshimoto等(Ashimoto A. et al., Oral Microbiol Immunol. 1996;11(4):266-73)が報告したプライマー(5’−AGG CAG CTT GCC ATA CTG CG−3’(配列番号1)および5’−ACT GTT AGC AAC TAC CGA TGT−3’(配列番号2)、増幅断片長は404bp)を用いた。DNAの増幅は、95℃5分間加熱した後、95℃30秒、60℃1分、72℃1分を36サイクル行った。PCR試薬はGoTaq(商標名) Green Master Mix Gene(Promega社製)を使用し、遺伝子の増幅はiCycler(Bio−Rad社製)を用いて行った。PCR反応終了後のDNAサンプルおよび分子量マーカーとしてSmart Ladder(和光純薬工業社製)を1.5%アガロースゲル電気泳動後、写真撮影を行い、増幅DNA断片を検出した。
結果は図6および7に示される通りであった。図6の結果より、歯周病菌感染群(II群)は歯周病菌未投与群(I群)に比較して有意な歯槽骨吸収が確認されたが、歯周病菌感染後に未発酵カカオ豆抽出物を投与した群(IV群)では、歯槽骨吸収量が抑制され、未発酵カカオ豆抽出物投与群(III群)とほぼ同様の骨吸収量となることが確認された。また、図7の結果より、歯周病菌感染後に未発酵カカオ豆抽出物を投与した群(IV群)では、歯周病菌感染群(II群)と比較して口腔内の歯周病菌が低減されることが確認された。なお、実験期間中の各群の体重には違いは認められなかった(データ示さず)。
Claims (10)
- カカオ豆抽出物を含んでなる、口腔用組成物。
- 歯周病菌の動物細胞への付着阻害剤である、請求項1に記載の組成物。
- 歯周病菌の線毛発現抑制剤である、請求項1に記載の組成物。
- カカオ豆抽出物が未発酵のカカオ豆抽出物である、請求項1に記載の組成物。
- 歯周病菌および/または口臭原因菌に対する抗菌剤である、請求項4に記載の組成物。
- 歯周病およびその関連疾患の治療、予防または改善に用いるための、請求項4または5に記載の組成物。
- 口臭抑制に用いるための、請求項4または5に記載の組成物。
- 歯周病菌が、ポルフィロモナス・ジンジバリス、プレボテラ・インターメディア、プレボテラ・ニグレセンス、トレポネーマ・デンティコーラ、タンネレラ・フォーサイセンシス、アグリゲイティバクター・アクチノミセテムコミタンス、カンピロバクター・レクタスおよびフロバクテリウム・ヌクレイタムからなる群から選択される1種または2種以上である、請求項2、3または5に記載の組成物。
- 口臭原因菌が、フソバクテリウム・ヌクレアタムおよびベイロネラ・ディスパー並びに請求項8に記載された歯周病菌からなる群から選択される1種または2種以上である、請求項5に記載の組成物。
- 食品組成物である、請求項1〜9のいずれか一項に記載の組成物。
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