JP2017160171A - がん細胞におけるＰｐＩＸ蓄積増強剤 - Google Patents

Abstract

【課題】ＡＬＡ−ＰＤＴ又はＡＬＡ−ＰＤＤにおいて、がん細胞へのＰｐＩＸの蓄積を高める。【解決手段】ＡＬＡ類および細胞増殖を阻害する薬剤を含むことを特徴とする、がん細胞におけるＰｐＩＸ蓄積増強用の組み合わせ医薬を提供する。【選択図】図１８

Description

本発明は、がん細胞におけるＰｐＩＸ蓄積増強剤に関する。

抗がん剤治療や放射線療法とは異なるがん治療の選択肢の１つとして、光線力学的治療（Ｐｈｏｔｏｄｙｎａｍｉｃ ｔｈｅｒａｐｙ；ＰＤＴ）が挙げられる。ＰＤＴによるがん治療は、がん細胞に集積する性質を有する光感受性物質（光増感剤）を対象に投与し、がん組織に特定の波長の光を照射することによりがんの治療を行う治療方法であり、低侵襲かつ治療跡が残りにくい治療法であるため、近年注目を集めている。

また、近年、がん、イボ、ニキビのような疾患組織の診断方法として、光線力学的診断（Ｐｈｏｔｏｄｙｎａｍｉｃ ｄｉａｇｎｏｓｉｓ、以下、ＰＤＤと略す）が注目されている。ＰＤＤは、標的組織に集積する性質を有する光感受性物質（光増感剤）を対象に投与し、特定の波長の光を照射することにより標的箇所の特定を行う診断方法であり、これまでの診断法と比較して、低侵襲で副作用が少ないため、患者に対する負担が少ないという利点がある。

上述のとおり、ＰＤＴやＰＤＤにおいては、治療または検出の対象となる組織に集積する性質をもつ、光に反応する化合物（光増感剤）を利用する。ＰＤＴやＰＤＤにおいて好適に用いられる光増感剤については、様々なものが検討されているが、近年、ポルフィリンの前駆物質であり、生体物質である５−アミノレブリン酸類（本明細書において、「ＡＬＡ類」ともいう）を対象に投与し、ＰＤＴまたはＰＤＤと組み合わせる、「ＡＬＡ−ＰＤＴ」または「ＡＬＡ−ＰＤＤ」が注目されている（例えば、特許文献１）。

ＡＬＡ類それ自体には光感受性はないものの、ＡＬＡ類は、細胞内で、ヘム生合成経路の一連の酵素群により代謝活性化されてポルフィリン（主としてプロトポルフィリンＩＸ（ＰｐＩＸ））となる。ポルフィリン類は腫瘍細胞に取り込まれて蓄積される性質を有し、また、ＰｐＩＸは、４１０ｎｍ、５１０ｎｍ、５４５ｎｍ、５８０ｎｍ、６３０ｎｍ等にピークを有する光増感剤であるため、ＰＤＴまたはＰＤＤに利用することができる。ＡＬＡは生体内で代謝され、４８時間以内に排泄されるため、全身の光感受性にはほとんど影響しないという特徴がある。

特開平１１−１２１９７号公報

ＡＬＡ−ＰＤＴまたはＡＬＡ−ＰＤＤにおいては、対象にＡＬＡ類を投与し、がん細胞にＰｐＩＸが蓄積することにより、光線力学的反応を用いたがんの治療又は検出が可能となる。しかし、ＡＬＡ−ＰＤＤにおいては、がん細胞へのＰｐＩＸの蓄積が少ない場合には、がんの辺縁部（正常組織とがん組織の境界）の視認が困難である。また、ＡＬＡ−ＰＤＴにおいても、がん細胞へのＰｐＩＸの蓄積が少ない場合には、十分な治療効果を得ることができない。そこで、ＡＬＡ−ＰＤＴまたはＡＬＡ−ＰＤＤにおいて、がん細胞へのＰｐＩＸの蓄積を高めることが課題となっていた。

休眠がん細胞は腫瘍内の微小環境などの影響によって、細胞増殖が抑制されたがん細胞である。休眠がんは化学療法や放射線療法の多くに対して、治療抵抗性であることが知られているが、休眠がん細胞の詳細な特徴については未解明のままである。

本発明者らは、ｉｎ ｖｉｔｒｏにおける休眠がん細胞のモデルを作成し、その特徴を解析したところ、驚くべきことに、休眠がん細胞（すなわち、細胞増殖が抑制されたがん細胞）においては、通常のがん細胞と比較して、ＡＬＡ適用時のＰｐＩＸの蓄積が増強されており、ＡＬＡ−ＰＤＴまたはＡＬＡ−ＰＤＤに対する感受性が向上していることを見出した（例えば本願明細書の実施例１−５を参照のこと）。

本発明者らは、上記の知見に基づき、非休眠がん細胞（すなわち、細胞の増殖が抑制されていない通常のがん細胞）においても、細胞の増殖を抑制させることにより、がん細胞へのＡＬＡ投与時のＰｐＩＸの蓄積を増強させ、ＡＬＡ−ＰＤＴまたはＡＬＡ−ＰＤＤに対する感受性を高めることができることを見出し、本発明を完成させるに到った（例えば本願明細書の実施例６を参照のこと）。

すなわち本発明は、一実施形態において、がん細胞におけるＰｐＩＸ蓄積増強用組み合わせ医薬であって、前記医薬は、順次または同時に適用される、
（ａ）下記式（Ｉ）で示される化合物：
（式中、Ｒ^１は、水素原子又はアシル基を表し、Ｒ^２は、水素原子、直鎖若しくは分岐状アルキル基、シクロアルキル基、アリール基又はアラルキル基を表す）
又はその塩、および、
（ｂ）細胞増殖を阻害する薬剤、
を含むことを特徴とする、
医薬に関する。

また、本発明の一実施形態においては、前記細胞増殖を阻害する薬剤は、アルキル化薬、白金製剤、タンパク質合成阻害薬、代謝拮抗薬、トポイソメラーゼ阻害薬、微小管重合阻害剤、微小管脱重合阻害薬、トポイソメラーゼ阻害剤、抗腫瘍性抗生物質、細胞周期を調節する因子に対する分子標的薬、アロマターゼ阻害剤、および、ホルモン剤からなる群から選択される薬剤であることを特徴とする。

また、本発明の一実施形態においては、前記タンパク質合成阻害薬が、シクロヘキシミドまたはその誘導体であることを特徴とする。

また、本発明の一実施形態においては、前記（ｂ）の適用の後に、前記（ａ）が適用されることを特徴とする。

また、本発明の一実施形態においては、前記組み合わせの態様が、配合剤であることを特徴とする。

また、本発明の一実施形態においては、前記組み合わせの態様が、キットであることを特徴とする。

また、本発明の一実施形態においては、前記「がん細胞におけるＰｐＩＸ蓄積増強」が、前記（ａ）の単独投与の場合のがん細胞におけるＰｐＩＸの蓄積に比較して、ＰｐＩＸの蓄積が増強されていることを特徴とする。

また、本発明の他の一実施形態は、がんに対する光線力学的治療用医薬または光線力学的診断用医薬であって、前記医薬は、
（ａ）下記式（Ｉ）で示される化合物：
（式中、Ｒ^１は、水素原子又はアシル基を表し、Ｒ^２は、水素原子、直鎖若しくは分岐状アルキル基、シクロアルキル基、アリール基又はアラルキル基を表す）
又はその塩、を含み、
前記医薬は、
（ｂ）がん細胞において、上記化合物から誘導されるＰｐＩＸの蓄積を増強するための、細胞増殖を阻害する薬剤と併用される
ことを特徴とする、医薬に関する。

また、本発明の他の実施形態は、がん細胞におけるＰｐＩＸ蓄積増強用医薬であって、前記医薬は、
（ｂ）細胞増殖を阻害する薬剤を含み、
前記医薬は、
（ａ）下記式（Ｉ）で示される化合物：
（式中、Ｒ^１は、水素原子又はアシル基を表し、Ｒ^２は、水素原子、直鎖若しくは分岐状アルキル基、シクロアルキル基、アリール基又はアラルキル基を表す）
又はその塩
と併用されることを特徴とする、医薬に関する。

また、本発明の他の実施態様は、がん患者のがん細胞においてＰｐＩＸの蓄積を増強させる方法であって、
（Ａ）治療上有効量の、下記式（Ｉ）で示される化合物を前記がん患者に投与するステップ、
（式中、Ｒ^１は、水素原子又はアシル基を表し、Ｒ^２は、水素原子、直鎖若しくは分岐状アルキル基、シクロアルキル基、アリール基又はアラルキル基を表す）
又はその塩、および、
（Ｂ）治療上有効量の、細胞増殖を阻害する薬剤を前記がん患者に投与するステップ、
を前記がん患者に適用するステップ、を含む、方法に関する。

また、本発明の一実施態様においては、前記ステップ（Ｂ）の後に、前記ステップ（Ａ）が実行されることを特徴とする。

また、上記に挙げた本発明の一または複数の特徴を任意に組み合わせた発明も本発明の範囲に含まれる。

図１は、ＥＺＳＰＨＥＲＥ（商標）におけるＰＣ−３がん細胞のスフェロイド形成を示した図である。スフェロイドに関してはＰＣ−３細胞をＥＺＳＰＨＥＲＥ（商標）で培養した。２次元培養に関しては４．２×１０^３ｃｅｌｌｓ／ｃｍ^２で播種した。どちらも４日間培養した。図１（ａ）：２次元培養およびＳ５００スフェロイドの位相差顕微鏡写真（２次元培養：４．２×１０^３ｃｅｌｌｓ／ｃｍ^２，３次元培養：Ｓ５００．Ｓｃａｌｅ ｂａｒ，１００μｍ．）。図１（ｂ）：Ｓ５００スフェロイドの核染色下における共焦点レーザー顕微鏡写真（Ｈｏｅｃｈｓｔ ３３３４２，１μＭ． Ｓｃａｌｅ ｂａｒ，２０μｍ．）。図１（ｃ）：形成したスフェロイドの直径（Ｓ１２５：１．２５×１０^５，Ｓ２５０：２．５０×１０^５，Ｓ５００：５．００×１０^５ｃｅｌｌｓ／３５−ｍｍ ｄｉｓｈ． ｎ＞４０．）。 図２は、がん細胞をそれぞれ異なる細胞密度環境で培養した結果を示す。それぞれの播種数においては４日間培養後、０．１ＭのＮａＯＨ水溶液を用いて細胞を溶解して細胞内のタンパク質を回収した。図２（ａ）：位相差顕微鏡写真（Ｓｃａｌｅ ｂａｒ，５００μｍ．）。図２（ｂ）：タンパク質定量（Ｂｒａｄｆｏｒｄ法，ｎ＝３．）。 図３は、がん細胞スフェロイドおよび２次元培養したがん細胞における細胞増殖を評価した結果を示す。それぞれの播種数で４日間培養した後、測定した。図３（ａ）：Ｋｉ−６７およびｐ２１のタンパク質発現解析（Ｗｅｓｔｅｒｎ ｂｌｏｔｔｉｎｇ）。図３（ｂ）：Ｋｉ−６７およびｐ２１のバンド強度。 図４は、がん細胞スフェロイドおよび２次元培養したがん細胞における細胞増殖の評価を示す。それぞれの播種数で４日間培養した後、測定した。図４（ａ）：異なる細胞密度下におけるＢｒｄＵ免疫染色（Ｓｃａｌｅ ｂａｒ，５０μｍ．）。図４（ｂ）：異なる細胞密度下におけるＢｒｄＵ陽生率（ｎ＝３．Ｏｖｅｒ ４００ ｃｅｌｌｓ ｗｅｒｅ ｃｏｕｎｔｅｄ．） 図５は、２次元培養したがん細胞およびがん細胞スフェロイドにおける細胞生存率を比較したグラフである。それぞれの播種数で４日間培養した。２次元培養はトリプシンを用いて細胞を回収し、スフェロイドはピペッティングによって細胞を回収した。（ｎ＝３．） 図６は、がん細胞スフェロイドおよびがん細胞の高密度な２次元培養における２−ＮＢＤＧ取り込みを評価した結果を示す。ＦＢＳおよびグルコース非含有の培地で２４時間培養後に、１００μＭの２−ＮＢＤＧを添加し、２５分培養した。共焦点レーザー顕微鏡を用いて測定した（Ｓｃａｌｅ ｂａｒ，２０μｍ．）。図６（ａ）：２次元培養における２−ＮＢＤＧの取り込み。図６（ｂ）：スフェロイドにおける２−ＮＢＤＧの取り込み。図６（ｃ）：２次元培養における２−ＮＢＤＧの輝度解析（ｎ＝３．）。図６（ｄ）：スフェロイドにおける２−ＮＢＤＧの輝度解析（ｎ＝３．）。 図７は、がん細胞スフェロイドの再増殖を評価した結果したグラフである。４．２×１０^３ｃｅｌｌｓ／ｃｍ^２で培養した２次元培養およびＳ５００スフェロイドを用いた。４日間培養後の細胞数がほぼ同じであることを確認し、４．２×１０^３ｃｅｌｌｓ／ｃｍ^２で２次元培養した。その後、１１日間にわたって細胞数をトリパンブルー染色によって測定した。（ｎ＝３．） 図８は、２次元培養したがん細胞における抗がん剤（ＣＤＤＰ）の細胞毒性を評価した結果を示す（ＭＴＴ法）。薬剤添加７２時間後に細胞生存率を測定した。図８（ａ）：全濃度における細胞生存率（ｎ＝６．）。図８（ｂ）：６．２５μＭにおける細胞生存率（計算値［％］，^＊；ｐ＜０．００１． ｎ＝６．）。図８（ｃ）：６．２５μＭにおける細胞生存率（ｎ＝６．）。 図９は、２次元培養したがん細胞における抗がん剤（５−ＦＵ）の細胞毒性を評価した結果を示す（ＭＴＴ法）。図９（ａ）：全濃度における細胞生存率（ｎ＝６．）。図９（ｂ）：５０μＭにおける細胞生存率（計算値［％］，^＊；ｐ＜０．００１． ｎ＝６．）。図９（ｃ）：５０μＭにおける細胞生存率（ｎ＝６．）。 図１０は、がん細胞の休眠性とＰｐＩＸの蓄積について解析した結果を示す。各細胞を、１ｍＭ ＡＬＡで２４時間培養した。ＨＢＳＳ（＋）中で共焦点レーザー顕微鏡による生細胞観察を行った。０．１Ｍ ＮａＯＨ溶液で溶解した後にＨＰＬＣによって定量した（Ｓｃａｌｅ ｂａｒ，２０μｍ．）。図１０（ａ）：共焦点レーザー顕微鏡による２次元培養下のＰｐＩＸ蓄積解析。図１０（ｂ）：ＨＰＬＣによる２次元培養下のＰｐＩＸ蓄積解析（ｎ＝３．）。 図１１は、がん細胞の休眠性とＰｐＩＸの蓄積について解析した結果を示す。各細胞を、１ｍＭ ＡＬＡで２４時間培養した。ＨＢＳＳ（＋）中で共焦点レーザー顕微鏡による生細胞観察を行った。０．１Ｍ ＮａＯＨ溶液で溶解した後にＨＰＬＣによって定量した（Ｓｃａｌｅ ｂａｒ， ２０ μｍ．）。図１１（ａ）：共焦点レーザー顕微鏡による３次元培養下のＰｐＩＸ蓄積解析。図１１（ｂ）：ＨＰＬＣによる３次元培養下のＰｐＩＸ蓄積解析（ｎ＝３．）。 図１２は、がん細胞の休眠性とＡＬＡ−ＰＤＴの効果との相関について解析した結果を示す。１ｍＭ ＡＬＡで２４時間培養後に赤色光を５分間照射した。一晩培養後に、ＭＴＴ法によって細胞生存率を測定した。Ｃｅｌｌ ｖｉａｂｉｌｉｔｙ［％］は、「ｈν＋／ｈν−×１００」で算出した。図１２（ａ）：２次元培養におけるＡＬＡ−ＰＤＴの殺細胞効果（ｎ＝６．）。図１２（ｂ）：３次元培養におけるＡＬＡ−ＰＤＴの殺細胞効果（ｎ＝３．）。 図１３は、休眠がん細胞においてＰｐＩＸ蓄積に関するトランスポーターの発現解析を行った結果を示す。全ての細胞は４日間培養した後にＬｙｓｉｓ ｂｕｆｆｅｒで溶解させた。図１３（ａ）：２次元培養におけるトランスポーターの発現解析（Ｗｅｓｔｅｒｎ ｂｌｏｔｔｉｎｇ）。図１３（ｂ）：２次元培養におけるバンド強度。 図１４は、休眠がん細胞においてＰｐＩＸ蓄積に関するトランスポーターの発現解析を行った結果を示す。全ての細胞は４日間培養した後にＬｙｓｉｓ ｂｕｆｆｅｒで溶解させた。図１４（ａ）：３次元培養におけるトランスポーターの発現解析（Ｗｅｓｔｅｒｎ ｂｌｏｔｔｉｎｇ）。図１４（ｂ）：３次元培養におけるバンド強度。 図１５は、休眠がん細胞におけるＰｐＩＸ蓄積に関するトランスポーターの発現傾向を示した図である。 図１６は、ＭＴＸまたはＣＨＸによって非休眠がん細胞の細胞増殖が抑制されたことを示す。タンパク質発現は１０μＭ Ｍｅｔｈｏｔｒｅｘａｔｅ（ＭＴＸ）および１０μｇ／ｍｌ Ｃｙｃｌｏｈｅｘｉｍｉｄｅ（ＣＨＸ）を４８時間添加した細胞を用いて解析した。ＰｐＩＸ蓄積は、細胞増殖抑制剤を２４時間添加した後にＡＬＡを２４時間添加した細胞を用いて解析した。図１６（ａ）：細胞内タンパク質量（Ｂｒａｄｆｏｒｄ法，ｎ＝３．）。図１６（ｂ）：遺伝子発現解析（Ｗｅｓｔｅｒｎ ｂｌｏｔｔｉｎｇ）。図１６（ｃ）：Ｋｉ−６７およびＡＢＣＧ２のバンド強度。 図１７は、非休眠がん細胞を細胞増殖抑制下に置いた場合のＰｐＩＸ蓄積を解析した結果を示す。タンパク質発現は１０μＭ Ｍｅｔｈｏｔｒｅｘａｔｅ（ＭＴＸ）および１０μｇ／ｍｌ Ｃｙｃｌｏｈｅｘｉｍｉｄｅ（ＣＨＸ）を４８時間添加した細胞を用いて解析した。ＰｐＩＸ蓄積は、細胞増殖抑制剤を２４時間添加した後にＡＬＡを２４時間添加した細胞を用いて解析した。図１７（ａ）：共焦点レーザー顕微鏡によるＰｐＩＸ蓄積解析（Ｓｃａｌｅ ｂａｒ，２０μｍ．）。図１７（ｂ）：ＨＰＬＣによるＰｐＩＸ蓄積解析（^＊；ｐ＜０．００５． ｎ＝ ３．）。 図１８は、非休眠がん細胞を細胞増殖抑制下に置いた場合のＡＬＡ−ＰＤＴによる殺細胞効果を解析した結果を示す（^＊；ｐ＜０．００３．ｎ＝３．）。

本明細書において、ＡＬＡ類とは、ＡＬＡ若しくはその誘導体又はそれらの塩をいう。

本明細書において、ＡＬＡは、５−アミノレブリン酸を意味する。ＡＬＡは、δ−アミノレブリン酸ともいい、アミノ酸の１種である。

ＡＬＡの誘導体としては、下記式（Ｉ）で表される化合物を例示することができる。式（Ｉ）において、Ｒ^１は、水素原子又はアシル基を表し、Ｒ^２は、水素原子、直鎖若しくは分岐状アルキル基、シクロアルキル基、アリール基又はアラルキル基を表す。なお、式（Ｉ）において、ＡＬＡは、Ｒ^１及びＲ^２が水素原子の場合に相当する。

ＡＬＡ類は、生体内で式（Ｉ）のＡＬＡ又はその誘導体の状態で有効成分として作用すればよく、生体内の酵素で分解されるプロドラッグ（前駆体）として投与することもできる。

式（Ｉ）のＲ^１におけるアシル基としては、ホルミル、アセチル、プロピオニル、ブチリル、イソブチリル、バレリル、イソバレリル、ピバロイル、ヘキサノイル、オクタノイル、ベンジルカルボニル基等の直鎖又は分岐状の炭素数１〜８のアルカノイル基や、ベンゾイル、１−ナフトイル、２−ナフトイル基等の炭素数７〜１４のアロイル基を挙げることができる。

式（Ｉ）のＲ^２におけるアルキル基としては、メチル、エチル、プロピル、イソプロピル、ブチル、イソブチル、ｓｅｃ−ブチル、ｔｅｒｔ−ブチル、ペンチル、イソペンチル、ネオペンチル、ヘキシル、ヘプチル、オクチル基等の直鎖又は分岐状の炭素数１〜８のアルキル基を挙げることができる。

式（Ｉ）のＲ^２におけるシクロアルキル基としては、シクロプロピル、シクロブチル、シクロペンチル、シクロヘキシル、シクロヘプチル、シクロオクチル、シクロドデシル、１−シクロヘキセニル基等の飽和、又は一部不飽和結合が存在してもよい、炭素数３〜８のシクロアルキル基を挙げることができる。

式（Ｉ）のＲ^２におけるアリール基としては、フェニル、ナフチル、アントリル、フェナントリル基等の炭素数６〜１４のアリール基を挙げることができる。

式（Ｉ）のＲ^２におけるアラルキル基としては、アリール部分は上記アリール基と同じ例示ができ、アルキル部分は上記アルキル基と同じ例示ができ、具体的には、ベンジル、フェネチル、フェニルプロピル、フェニルブチル、ベンズヒドリル、トリチル、ナフチルメチル、ナフチルエチル基等の炭素数７〜１５のアラルキル基を挙げることができる。

好ましいＡＬＡ誘導体としては、Ｒ^１が、ホルミル、アセチル、プロピオニル、ブチリル基等である化合物が挙げられる。また、好ましいＡＬＡ誘導体としては、上記Ｒ^２が、メチル、エチル、プロピル、ブチル、ペンチル基等である化合物が挙げられる。また、好ましいＡＬＡ誘導体としては、上記Ｒ^１とＲ^２の組合せが、（ホルミルとメチル）、（アセチルとメチル）、（プロピオニルとメチル）、（ブチリルとメチル）、（ホルミルとエチル）、（アセチルとエチル）、（プロピオニルとエチル）、（ブチリルとエチル）の各組合せである化合物が挙げられる。

ＡＬＡ類のうち、ＡＬＡ又はその誘導体の塩としては、薬理学的に許容される酸付加塩、金属塩、アンモニウム塩、有機アミン付加塩等を挙げることができる。酸付加塩としては、例えば塩酸塩、臭化水素酸塩、ヨウ化水素酸塩、リン酸塩、硝酸塩、硫酸塩等の各無機酸塩、ギ酸塩、酢酸塩、プロピオン酸塩、トルエンスルホン酸塩、コハク酸塩、シュウ酸塩、乳酸塩、酒石酸塩、グリコール酸塩、メタンスルホン酸塩、酪酸塩、吉草酸塩、クエン酸塩、フマル酸塩、マレイン酸塩、リンゴ酸塩等の各有機酸付加塩を例示することができる。金属塩としては、リチウム塩、ナトリウム塩、カリウム塩等の各アルカリ金属塩、マグネシウム、カルシウム塩等の各アルカリ土類金属塩、アルミニウム、亜鉛等の各金属塩を例示することができる。アンモニウム塩としては、アンモニウム塩、テトラメチルアンモニウム塩等のアルキルアンモニウム塩等を例示することができる。有機アミン塩としては、トリエチルアミン塩、ピペリジン塩、モルホリン塩、トルイジン塩等の各塩を例示することができる。なお、これらの塩は使用時において溶液としても用いることができる。

以上のＡＬＡ類のうち、もっとも望ましいものは、ＡＬＡ、及び、ＡＬＡメチルエステル、ＡＬＡエチルエステル、ＡＬＡプロピルエステル、ＡＬＡブチルエステル、ＡＬＡペンチルエステル等の各種エステル類、並びに、これらの塩酸塩、リン酸塩、硫酸塩である。とりわけ、ＡＬＡ塩酸塩、ＡＬＡリン酸塩を特に好適なものとして例示することができる。

上記ＡＬＡ類は、例えば、化学合成、微生物による生産、酵素による生産など公知の方法によって製造することができる。また、上記ＡＬＡ類は、水和物又は溶媒和物を形成していてもよく、またＡＬＡ類を単独で又は２種以上を適宜組み合わせて用いることもできる。

上記ＡＬＡ類を水溶液として調製する場合には、ＡＬＡ類の分解を防ぐため、水溶液がアルカリ性とならないように留意する必要がある。アルカリ性となってしまう場合は、酸素を除去することによって分解を防ぐことができる。

本明細書において、ＡＬＡ−ＰＤＴとはＡＬＡ類を用いる光線力学的治療（ＰＤＴ）を意味し、最も典型的には、ＡＬＡを用いるＰＤＴを意味する。また、ＡＬＡ−ＰＤＤとはＡＬＡ類を用いる光線力学的診断（ＰＤＤ）を意味し、最も典型的には、ＡＬＡを用いるＰＤＤを意味する。

上記ＡＬＡ−ＰＤＴは、標的組織に集積する性質を有する光感受性物質（光増感剤）を対象に投与し、特定の波長の光線を照射することにより標的箇所を治療するＰＤＴを行う際に、それ自身は光増感作用を有さないＡＬＡ類を対象へ投与する。対象の体内において、色素生合成経路を経てＡＬＡ類から誘導されたポルフィリン（主にＰｐＩＸ）を標的箇所に集積させ、集積したＰｐＩＸを励起させることで、周囲の酸素分子を光励起させる。その結果生成する一重項酸素が、その強い酸化力による殺細胞効果を有する。ＡＬＡ−ＰＤＴには、例えば、４００ｎｍ〜４２０ｎｍにピークを持つ光線、又は、６００ｎｍ〜６５０ｎｍにピークを持つ光線を用いるのが好ましい。

一方、上記ＡＬＡ−ＰＤＤは、標的組織に集積する性質を有する光感受性物質（光増感剤）を対象に投与し、光線を照射することにより標的箇所を治療するＰＤＤを行う際に、それ自身は光増感作用を有さないＡＬＡ類を対象へ投与する。対象の体内において、色素生合成経路を経てＡＬＡ類から誘導されたポルフィリン（主にＰｐＩＸ）を標的箇所に集積させ、集積したＰｐＩＸを励起させて蛍光を検出することで、標的組織の存在の有無を検出もしくは診断する。ＡＬＡ−ＰＤＤには、例えば、４００ｎｍ〜４２０ｎｍにピークを持つ光線を用いるのが好ましい。

本発明において用いられる、細胞増殖を阻害する薬剤は、直接的または間接的にがん細胞の増殖を阻害する作用を有する薬剤であれば、限定されない。例えば、細胞増殖を阻害する薬剤は、直接的または間接的にがん細胞の細胞周期を阻害する薬剤であってもよい。本発明において用いられる細胞増殖を阻害する薬剤は、例えば抗がん剤であってもよいが、がん細胞の増殖を阻害する作用を有する薬剤である限り、抗がん剤に限定されない。

本発明において用いられる、細胞増殖を阻害する薬剤の例として、例えば、アルキル化薬、白金製剤、タンパク質合成阻害薬、代謝拮抗薬、トポイソメラーゼ阻害薬、微小管重合阻害剤、微小管脱重合阻害薬、トポイソメラーゼ阻害剤、抗腫瘍性抗生物質、細胞周期を調節する因子に対する分子標的薬、アロマターゼ阻害剤、または、ホルモン剤であってよい。本発明において、細胞増殖を阻害する薬剤としてはタンパク質合成阻害薬を用いることが好ましく、タンパク質合成阻害薬のうちシクロヘキシミドまたはその誘導体を用いることがさらに好ましい。シクロヘキシミドの誘導体としては、例えばＪ Ｍｅｄ Ｃｈｅｍ．１９９９ Ｓｅｐ ９；４２（１８）：３６１５−２２． Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ａｎｄ ｃｙｔｏｔｏｘｉｃ ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｏｆ ｃｙｃｌｏｈｅｘｉｍｉｄｅ ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓ ａｓ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ ｏｆ ＦＫＢＰ１２ ｗｉｔｈ ｎｅｕｒｏｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｖｅ ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ．に記載の化合物を用いることができる。

本発明は、ＡＬＡ類と細胞増殖を阻害する薬剤との組み合わせに関するが、その組み合わせの態様は特に限定されず、ＰＤＴまたはＰＤＤの実施態様に応じて、当業者が様々な方法でＡＬＡ類と細胞増殖を阻害する薬剤とを組み合わせることができる。

本発明において、ＡＬＡ類または細胞増殖を阻害する薬剤のそれぞれの投与経路は限定されず、当業者が薬剤の種類、疾患の状態、患者の健康状態等に応じて適宜選択することができる。例えば、対象（生体等）への投与経路としては、全身投与であっても、局所投与であってもよい。限定はされないが、舌下投与も含む経口投与、あるいは吸入投与、カテーテルによる、標的組織又は臓器に対する直接投与、点滴を含む静脈内投与、貼付剤等による経皮投与、座薬、又は、経鼻胃管、経鼻腸管、胃ろうチューブ若しくは腸ろうチューブを用いる強制的経腸栄養法による投与等の非経口投与などを挙げることができる。もちろん、ＡＬＡ類と細胞増殖を阻害する薬剤とは異なる経路から対象へ投与されてよい。

本発明において、ＡＬＡ類を対象へ投与する場合の剤型、細胞増殖を阻害する薬剤を対象へ投与する場合の剤型、および、ＡＬＡ類と細胞増殖を阻害する薬剤を含む配合剤として用いる場合の剤型は、前記投与経路に応じて当業者が適宜決定することができる。例えば、剤型の例として、注射剤、点滴剤、錠剤、カプセル剤、細粒剤、散剤、液剤、シロップ等に溶解した水剤、貼付剤、座薬剤等を挙げることができる。

本発明に係る医薬は、必要に応じて他の薬効成分、栄養剤、担体等の他の任意成分を加えることができるのは言うまでもない。任意成分として、例えば結晶性セルロース、ゼラチン、乳糖、澱粉、ステアリン酸マグネシウム、タルク、植物性及び動物性脂肪、油脂、ガム、ポリアルキレングリコール等の、薬学的に許容される通常の担体、結合剤、安定化剤、溶剤、分散媒、増量剤、賦形剤、希釈剤、ｐＨ緩衝剤、崩壊剤、可溶化剤、溶解補助剤、等張剤などの各種調剤用配合成分を添加することができる。

本発明における、ＡＬＡ類の対象への投与量は、ＰＤＴまたはＰＤＤの実施態様に応じて、当業者（例えば薬理学者や臨床医）が適宜決定することができる。限定はされないが、ＡＬＡ換算で対象の体重１ｋｇあたり、１ｍｇ〜１，０００ｍｇ、好ましくは５ｍｇ〜１００ｍｇ、より好ましくは１０ｍｇ〜３０ｍｇ、さらに好ましくは１５ｍｇ〜２５ｍｇ投与することができる。

ＡＬＡ類の投与期間は、例えば、対象の症状又は状態等を考慮して、当業者（例えば薬理学者や臨床医）が適宜決定することができる。

本発明において、細胞増殖を阻害する薬剤は、ＡＬＡ類が代謝されて生成されるＰｐＩＸのがん細胞への蓄積を増強させる目的で投与されることから、ＡＬＡ類を投与する前に対称へ投与することが好ましい。

本発明の適用対象となるがんの種類は限定されないが、例えば、脳腫瘍、脊髄腫瘍、上顎洞癌、膵液腺癌、歯肉癌、舌癌、口唇癌、上咽頭癌、中咽頭癌、下咽頭癌、喉頭癌、甲状腺癌、副甲状腺癌、肺癌、胸膜腫瘍、癌性腹膜炎、癌性胸膜炎、食道癌、胃癌、大腸癌、胆管癌、胆嚢癌、膵臓癌、肝癌、腎臓癌、膀胱癌、前立腺癌、陰茎癌、精巣腫瘍、副腎癌、子宮頸癌、子宮体癌、膣癌、外陰癌、卵巣癌、骨腫瘍、乳癌、皮膚癌、メラノーマ、基底細胞腫、リンパ腫、白血病、ホジキン病、形質細胞腫、骨肉腫、軟骨肉腫、脂肪肉腫、横紋筋肉腫及び線維肉腫、等を例示することができる。

本発明の適用対象は、典型的にはヒトであるが、愛玩動物、実験動物、家畜など非ヒト動物である場合も含む。また、好ましくない場合には、対象からヒトを除いてもよい。

本明細書において用いられる用語は、特に定義されたものを除き、特定の実施態様を説明するために用いられるのであり、発明を限定する意図ではない。

また、本明細書において用いられる「含む」との用語は、文脈上明らかに異なる理解をすべき場合を除き、記述された事項（部材、ステップ、要素、数字など）が存在することを意図するものであり、それ以外の事項（部材、ステップ、要素、数字など）が存在することを排除しない。

異なる定義が無い限り、ここに用いられるすべての用語（技術用語及び科学用語を含む。）は、本発明が属する技術の当業者によって広く理解されるのと同じ意味を有する。ここに用いられる用語は、異なる定義が明示されていない限り、本明細書及び関連技術分野における意味と整合的な意味を有するものとして解釈されるべきであり、理想化され、又は、過度に形式的な意味において解釈されるべきではない。

以下において、本発明を、実施例を参照してより詳細に説明する。しかしながら、本発明はいろいろな態様により具現化することができ、ここに記載される実施例に限定されるものとして解釈されてはならない。

実施例１：ｉｎ ｖｉｔｒｏでの休眠がんモデルの作成および評価
５．０×１０^５個のＰＣ−３細胞を３５ｍｍのＥＺＳＰＨＥＲＥ（商標）に播種し、４日間培養することによってがん細胞スフェロイドを形成した。１つの培養皿に２，３００個のスフェロイドが形成され、それらの平均直径は、１８９±３０．１μｍであった（図１（ａ））。細胞の播種数を減らすことで、培養４日後にＥＺＳＰＨＥＲＥ（商標）とほぼ同じ細胞数が存在するように調整した２次元培養体と比較すると、スフェロイドの細胞密度の高さが際立った（図１（ａ））。さらに、スフェロイドの全体像を得るためにＨｏｅｃｈｓｔを用いて核染色を行い、共焦点レーザー顕微鏡にてＺ軸断面を取得した。形成されたスフェロイドはＸＹ断面においては円状、ＸＺ断面もしくはＹＺ断面においては緩やかな三日月状であった（図１（ｂ））。このことから、スフェロイドの全体像はお椀型であると示唆された。同様にして、ＥＺＳＰＨＥＲ（商標）に播種する細胞数を減らすことにより、最も大きいスフェロイドであるＳ５００に加えてＳ２５０、Ｓ１２５の合計３段階の大きさのスフェロイドを形成した（図１（ｃ））。

続いて、２次元培養においても異なる細胞密度環境を構築するために、様々な細胞播種数の下で細胞を培養した。なお、細胞の培養期間はスフェロイドと同じである４日間に統一し、培養容器はＥＺＳＰＨＥＲ（商標）と同じ大きさである３５−ｍｍの平面皿を用いた。培養４日後に位相差顕微鏡にて細胞密度を確認したところ、播種数依存的に細胞密度が高くなった（図２（ａ））。Ｂｒａｄｆｏｒｄ法によるタンパク質定量の結果からも、このことが確かめられた（図２（ｂ））。最も大きいスフェロイドであるＳ５００よりも高密度な２次元培養を行った方が、タンパク質量の増加が認められた。このことから、ＥＺＳＰＨＥＲ（商標）に存在する細胞数は２次元培養と比較して顕著に多くないことが示唆された。従って、細胞数が多すぎることによって培地が劣化し、そのために細胞の形質変化が生じる可能性は低い。

上記の方法で調製したがん細胞スフェロイド、および、２次元培養において細胞密度を向上させたがん細胞について、休眠がん細胞の特徴である“Ｎｏ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ”，“Ｎｏ ｄｅａｔｈ”，“Ｍｅｔａｂｏｌｉｃ ｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ”，“Ｒｅｃｏｖｅｒｙ ｔｏ ａｃｔｉｖｅ ｓｔａｔｕｓ”の４項目をそれぞれ検証した。

１つ目の特徴である“Ｎｏ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ”を調査するために、Ｋｉ−６７およびｐ２１の遺伝子発現解析とブロモデオキシウリジン（ＢｒｄＵ）染色を行った。Ｋｉ−６７はＧ０期以外で発現するタンパク質であり、この性質を利用して細胞増殖マーカーとして用いられている。ｐ２１はＲｂのリン酸化を阻害することにより、細胞周期がＧ１期からＳ期へ移行することを抑制するタンパク質である。ＢｒｄＵはチミジンのアナログであり、Ｓ期において新たに合成されたＤＮＡに組み込まれる。このことから、ＢｒｄＵの陽性率は細胞増殖の活発度合を示す指標として用いられている。２次元培養およびスフェロイドにおいてＫｉ−６７の発現は、細胞密度依存的に低下した（図３（ａ）（ｂ））。一方で、ｐ２１の発現はスフェロイドにおいてのみ認められ、２次元培養においては認められなかった（図３（ａ））。さらに、ＢｒｄＵの陽性率は２次元培養において細胞密度依存的に低下した（図４（ａ）（ｂ））。以上のことから、３次元培養したスフェロイドおよび高密度な２次元培養において、細胞増殖が抑制されることが示唆された。つまり、これらの細胞は休眠がん細胞の特徴である“Ｎｏ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ”を満たしたと言える。

続いて、休眠がん細胞の２つ目の特徴である“Ｎｏ ｄｅａｔｈ”を調査した。細胞の生存率を測定するために、トリパンブルー染色を用いた。トリパンブルーは、死細胞のみを青く染色する試薬である。このことから、顕微鏡観察において生細胞は染色されないため白く、死細胞は青く観測される。異なる大きさのスフェロイドであるＳ１２５，Ｓ２５０，Ｓ５００をそれぞれ形成し、ピペッティングによってスフェロイドを分解後にトリパンブルー染色を行った。その結果、全てのスフェロイドにおいて２次元培養と比較して顕著な細胞死は認められなかった（図５）。このことから、スフェロイドにおいて細胞死はほとんど生じておらず、休眠がん細胞の特徴である“Ｎｏ ｄｅａｔｈ”を満たすことが示唆された。

引き続き、休眠がん細胞の３つ目の特徴である“Ｍｅｔａｂｏｌｉｃ ｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ”を調査した。代謝の抑制を測定するために、２−（Ｎ−（７−Ｎｉｔｒｏｂｅｎｚ−２−ｏｘａ−１，３−ｄｉａｚｏｌ−４−ｙｌ）Ａｍｉｎｏ）−２−Ｄｅｏｘｙｇｌｕｃｏｓｅ（２−ＮＢＤＧ）の細胞内取り込み量を評価した。２−ＮＢＤＧはグルコースに蛍光分子が結合した試薬であり、グルコースと同様の機構で細胞内に取り込まれる。そのため、２−ＮＢＤＧの細胞内取り込み量は糖代謝の活発度や細胞の生死判定に用いられる。２次元培養およびスフェロイドにおいて２−ＮＢＤＧの取り込み量を共焦点レーザー顕微鏡で測定した。その結果、どちらにおいても細胞密度依存的に取り込み量が減少した（図６）。また、特にスフェロイドにおいては顕著に取り込みが抑制されていた。このことは、細胞密度依存的に糖代謝が抑制された結果であると考えられる。さらに、３次元培養スフェロイドおよび高密度な２次元培養は、休眠がん細胞の特徴である“Ｍｅｔａｂｏｌｉｃ ｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ”を満たすことが示唆された。

最後に、休眠がん細胞の４つ目の特徴である“Ｒｅｃｏｖｅｒｙ ｔｏ ａｃｔｉｖｅ ｓｔａｔｕｓ”を調査した。再活性化を測定するために、最も大きいスフェロイドであるＳ５００をピペッティングによって分解し、２次元培養下における再増殖を評価した。Ｓ５００形成後に２次元培養された細胞は、２次元培養された細胞よりも増殖が少し遅れたものの、最終的には同程度の細胞数まで増殖した（図７）。また、細胞増殖の最高速度を示すグラフの傾きは、２次元培養と３次元培養とでは大きな差がなかった。このことは、細胞増殖が抑制された状態から活発に細胞増殖を行う状態に変化したことを示す。つまり、休眠がん細胞の特徴である“Ｒｅｃｏｖｅｒｙ ｔｏ ａｃｔｉｖｅ ｓｔａｔｕｓ”を満たすことが示唆された。

以上の４項目の検証から、高密度な培養環境においてがん細胞が休眠状態に移行することが示された。このため以降の実験では、スフェロイドを含む高密度培養がん細胞を休眠がん細胞のモデルとして使用した。

実施例２：休眠がん細胞における抗がん剤の細胞毒性評価
休眠がん細胞に対する一般的な抗がん剤（ＤＮＡ合成を阻害する薬剤）の効能を調査するために、シスプラチン（ＣＤＤＰ）および５−フルオロウラシル（５−ＦＵ）を用いた。ＣＤＤＰは２本鎖ＤＮＡのグアニン同士を架橋することで、ＤＮＡ複製を阻害する薬剤である。一方で、５−ＦＵはチミジル酸シンターゼを阻害することでチミジンの合成を抑制し、ＤＮＡ合成を阻害する薬剤である。２次元培養の異なる細胞密度下において薬剤をそれぞれ７２時間添加し、ＭＴＴ法にて細胞生存率を測定した。全ての濃度のＣＤＤＰにおいて、細胞密度依存的に殺細胞効果が低下した（図８（ａ））。特に、６．２５ μＭではその差が顕著であった（図８（ｂ）（ｃ））。同様に、５−ＦＵ ５０μＭにおいても細胞密度依存的な殺細胞効果の低下が認められた（図９）。細胞密度が高い環境下では休眠がん細胞の割合も高いと考えられるため、休眠がん細胞に対して一般的な抗がん剤の効果が現れにくいことが明らかとなった。

なお、ＣＤＤＰはＴｏｋｙｏ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｉｎｄｕｓｔｒｙ Ｃｏ．， Ｌｔｄ．（東京）より、５−ＦＵはＮａｃａｌａｉ Ｔｅｓｑｕｅ（京都）よりそれぞれ購入した。３．６×１０^３ｃｅｌｌｓ／ｃｍ^２、７．１×１０^３ｃｅｌｌｓ／ｃｍ^２、１４×１０^３ｃｅｌｌｓ／ｃｍ^２の細胞密度にそれぞれ薬剤を添加し、７２時間培養した。その後、下記のＭＴＴ法にて細胞生存率を測定した。ＭＴＴ試薬（５ｍｇ／ｍｌ）を培養液に添加後、４時間培養した。その後、培養液と同量の１０％（ｗ／ｖ）ＳＤＳを加え一晩培養した。ＭＴＴ代謝物であるホルマザンは測定波長５７０ｎｍ、基準波長６５５ｎｍにおける吸光度をＭｕｌｔｉｓｋａｎ ＦＣ吸光マイクロプレートリーダ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，Ｓａｎ Ｊｏｓｅ，ＣＡ）により測定した。薬剤非添加群の吸光度を分母に、薬剤添加群の吸光度を分子として計算し、１００分率で表したものを細胞生存率［％］と定義した。

実施例３：休眠がん細胞におけるＰｐＩＸ蓄積の評価
ＡＬＡ添加後のＰｐＩＸ蓄積と休眠性との関係性を検証するために、共焦点レーザー顕微鏡およびＨＰＬＣを用いてＰｐＩＸ蓄積を解析した。ＡＬＡを添加する濃度・時間は１ｍＭ・２４時間とし、がん患者にＡＬＡを投与する場合と比較して特異な条件にならないよう配慮した。生細胞内のＰｐＩＸ蓄積を解析するために正立の共焦点レーザー顕微鏡を用い、観察のための検出プログラムを作成した。作成したプログラムはＺ軸に対して０．７μｍの厚みで写真を撮影するため、細胞の大きさ（約１０μｍ）と比較しても十分な薄さを確保できた。一般的に共焦点レーザー顕微鏡によるスフェロイドの観察は細胞を有機溶媒で固定してから行うことが多い。しかし、固定を行うと疎水性であるＰｐＩＸは細胞外へ流出してしまうため、ＰｐＩＸ蓄積を観察するためには生細胞で行う必要がある。一方で、他の３次元培養法であるマトリゲルなどでは、スフェロイドに対して対物レンズが十分に接近できない。これらのことをふまえ、本研究では３次元培養法としてＥＺＳＰＨＥＲ（商標）を選択し、正立の共焦点レーザー顕微鏡を用いて培養皿の上部から撮影を行うことで、上記の問題を克服した。

スフェロイド用に作成した共焦点レーザー顕微鏡の検出プログラムを用いて、２次元培養における異なる細胞密度環境下のＰｐＩＸ蓄積を解析した。共焦点レーザー顕微鏡の写真より、細胞密度依存的にＰｐＩＸの発光が強く認められることが明らかになった（図１０（ａ））。さらに、細胞をＮａＯＨ水溶液で溶解し、ＨＰＬＣを用いて細胞内ＰｐＩＸの定量を行った（図１０（ｂ））。なお、縦軸は回収した細胞のタンパク質量で補正したため、細胞密度が異なっていても単位細胞あたりのＰｐＩＸ蓄積量として比較することができる。ＨＰＬＣによる定量結果から、最も細胞密度が低い２次元培養に対してスフェロイドではＰｐＩＸ蓄積が２３倍も増加した。同一細胞株であるにもかかわらず、ＰｐＩＸ蓄積が２３倍も増加することは特異な現象である。実施例１より、細胞密度依存的にがん細胞が休眠状態へ移行することが明らかになっていることから、がんの休眠性とＡＬＡ添加後のＰｐＩＸ蓄積は正の相関を示すことが示唆された。

同様に、異なる大きさのスフェロイドにおいても共焦点レーザー顕微鏡およびＨＰＬＣを用いてＰｐＩＸ蓄積を解析した（図１１（ａ）（ｂ））。こちらにおいても細胞密度依存的なＰｐＩＸ蓄積の増加が認められた。以上のことから、３次元培養においてもがんの休眠性とＡＬＡ添加後のＰｐＩＸ蓄積は正の相関を示した。同時に、休眠がん細胞に対してＡＬＡ−ＰＤＤ、ＡＬＡ−ＰＤＴが効果的であることが示唆された。

実施例４：休眠がん細胞におけるＡＬＡ−ＰＤＴ効果の評価
休眠がん細胞におけるＡＬＡ−ＰＤＴの殺細胞効果を検証するために、ＰｐＩＸ蓄積後の細胞に赤色光を照射した。アポトーシスを待つために、光照射後はインキュベーターで一晩培養し、ＭＴＴ法によって細胞生存率を算出した。２次元培養において細胞密度依存的に、細胞生存率が低下した（図１２（ａ））。同様に３次元培養においても、スフェロイドの大きさ依存的に細胞生存率が低下した（図１２（ｂ））。これらの結果は、細胞内のＰｐＩＸ蓄積量が細胞密度依存的に増加したためであると考えられる。以上のことから、休眠がん細胞に対してＡＬＡ−ＰＤＴは特に有効な治療法であると示唆された。

実施例５：休眠がん細胞におけるトランスポーターの発現解析
ＡＬＡ添加後のＰｐＩＸ蓄積と強い相関がある３つのトランスポーター、ＰＥＰＴ１，ＡＢＣＢ６，ＡＢＣＧ２の発現をタンパク質レベルで解析した。なお、発現解析は細胞にＡＬＡを添加せずに行った。２次元培養において、細胞密度依存的にＰＥＰＴ１およびＡＢＣＢ６の発現は亢進し、ＡＢＣＧ２の発現は低下した（図１３（ａ）（ｂ））。スフェロイドにおいても、細胞密度依存的に上記の傾向が認められた（図１４（ａ）（ｂ））。すなわち、細胞密度が高い休眠がん細胞はＡＬＡを取り込みやすく、中間体であるＣＰｇｅｎＩＩＩのミトコンドリアへの輸送も速い一方で、ＡＢＣＧ２によるＰｐＩＸの排出は遅いため細胞内のＰｐＩＸ蓄積が増加したと考えられる（図１５）。このことは、休眠性依存的にＰｐＩＸ蓄積が増加したことやＡＬＡ−ＰＤＴ効果が亢進したことと一致する。

実施例６：非休眠がん細胞におけるＡＬＡ−ＰＤＴ効果の亢進
これまでの実験結果より、「細胞密度依存的にがん細胞の細胞増殖が抑制され、休眠状態へ移行すること」および「休眠性の高いがん細胞においてはＰｐＩＸ蓄積が多く、ＡＬＡ−ＰＤＴ効果も顕著に現れること」の２つを明らかにした。そこで、細胞密度が低い非休眠がん細胞に対して細胞増殖を抑制した擬似的な休眠状態にすることで、ＡＬＡ添加後のＰｐＩＸ蓄積を増加させることができるという仮説を立てた。本仮説を検証するために、ＰＣ−３細胞の細胞周期をＧ０／Ｇ１期で止める薬剤として報告されているＭｅｔｈｏｔｒｅｘａｔｅ（ＭＴＸ）およびＣｙｃｌｏｈｅｘｉｍｉｄｅ（ＣＨＸ）を用いた。非休眠がん細胞モデルは、２次元培養において細胞密度を低くすることで構築した。

まず始めに、ＭＴＸおよびＣＨＸによって細胞増殖が抑制されることを確かめるために、Ｋｉ−６７を含む遺伝子の発現解析を行った。なお、細胞密度は薬剤添加４８時間後の回収時に同じになるように細胞播種数を調整した（図１６（ａ））。Ｋｉ−６７はＭＴＸ・ＣＨＸの両方で発現が低下した（図１６（ｂ）（ｃ））。このことから、細胞増殖が抑制されることが確かめられた。また、薬剤添加によってＰＥＰＴ１およびＡＢＣＢ６の発現は変化しなかったが、ＡＢＣＧ２の発現はＭＴＸ・ＣＨＸの両方で低下した（図１６（ｂ）（ｃ））。このことから、細胞内にＰｐＩＸが蓄積しやすくなると予想される。

次にＡＬＡ添加後のＰｐＩＸ蓄積を解析した。共焦点レーザー顕微鏡による観察から、ＡＬＡのみを添加したＣｏｎｔｒｏｌに比べてＡＬＡとＭＴＸもしくはＣＨＸの共添加群では、ＰｐＩＸの発光が強く認められた（図１７（ａ））。ＨＰＬＣによるＰｐＩＸ定量より、共添加群はＣｏｎｔｒｏｌに対してＰｐＩＸ蓄積が約４倍増加することが明らかになった（図１７（ｂ））。これは、細胞増殖抑制剤によって細胞が擬似的な休眠状態になったためであると考えられる。最後に、共添加群においてＡＬＡ−ＰＤＴ効果を検証した。その結果、共添加群はＣｏｎｔｒｏｌに比べて顕著に細胞生存率が低下した（図１８）。ＭＴＸの単独添加においても約５０％の細胞死が認められたが、ＣＨＸの単独添加においては著しい細胞死が認められなかった。このことから、ＡＬＡ−ＰＤＴ効果の顕著な亢進は薬剤自体の毒性ではなく、がん細胞が擬似的な休眠状態になりＰｐＩＸ蓄積が増加したためであると考えられる。

以上のことから、非休眠がん細胞においても、細胞の増殖を抑制させる薬剤の適用によって、細胞内のＰｐＩＸ蓄積量を増加させ、ＡＬＡ−ＰＤＴに対する感受性を向上させることができることが示された。

Claims (11)

1. がん細胞におけるＰｐＩＸ蓄積増強用組み合わせ医薬であって、
   前記医薬は、順次または同時に適用される、
   （ａ）下記式（Ｉ）で示される化合物：
   （式中、Ｒ^１は、水素原子又はアシル基を表し、Ｒ^２は、水素原子、直鎖若しくは分岐状アルキル基、シクロアルキル基、アリール基又はアラルキル基を表す）
   又はその塩、および、
   （ｂ）細胞増殖を阻害する薬剤、
   を含むことを特徴とする、
   医薬。
2. 請求項１に記載の組み合わせ医薬であって、
   前記細胞増殖を阻害する薬剤は、アルキル化薬、白金製剤、タンパク質合成阻害薬、代謝拮抗薬、トポイソメラーゼ阻害薬、微小管重合阻害剤、微小管脱重合阻害薬、トポイソメラーゼ阻害剤、抗腫瘍性抗生物質、細胞周期を調節する因子に対する分子標的薬、アロマターゼ阻害剤、および、ホルモン剤からなる群から選択される薬剤であることを特徴とする、
   組み合わせ医薬。
3. 請求項２に記載の組み合わせ医薬であって、
   前記タンパク質合成阻害薬が、シクロヘキシミドまたはその誘導体であることを特徴とする、
   組み合わせ医薬。
4. 請求項１〜３に記載の組み合わせ医薬であって、
   前記（ｂ）の適用の後に、前記（ａ）が適用されることを特徴とする、
   組み合わせ医薬。
5. 請求項１〜３に記載の組み合わせ医薬であって、
   前記組み合わせの態様が、配合剤であることを特徴とする、
   組合せ医薬。
6. 請求項１〜３に記載の組み合わせ医薬であって、
   前記組み合わせの態様が、キットであることを特徴とする、
   組合せ医薬。
7. 請求項１〜３に記載の組合せ医薬であって、
   前記「がん細胞におけるＰｐＩＸ蓄積増強」が、前記（ａ）の単独投与の場合のがん細胞におけるＰｐＩＸの蓄積に比較して、ＰｐＩＸの蓄積が増強されている
   ことを特徴とする、
   組合せ医薬。
8. がんに対する光線力学的治療用医薬または光線力学的診断用医薬であって、
   前記医薬は、
   （ａ）下記式（Ｉ）で示される化合物：
   （式中、Ｒ^１は、水素原子又はアシル基を表し、Ｒ^２は、水素原子、直鎖若しくは分岐状アルキル基、シクロアルキル基、アリール基又はアラルキル基を表す）
   又はその塩、を含み、
   前記医薬は、
   （ｂ）がん細胞において、上記化合物から誘導されるＰｐＩＸの蓄積を増強するための、細胞増殖を阻害する薬剤と併用される
   ことを特徴とする、
   医薬。
9. がん細胞におけるＰｐＩＸ蓄積増強用医薬であって、
   前記医薬は、（ｂ）細胞増殖を阻害する薬剤を含み、
   前記医薬は、（ａ）下記式（Ｉ）で示される化合物：
   （式中、Ｒ^１は、水素原子又はアシル基を表し、Ｒ^２は、水素原子、直鎖若しくは分岐状アルキル基、シクロアルキル基、アリール基又はアラルキル基を表す）
   又はその塩
   と併用されることを特徴とする、
   医薬。
10. がん患者のがん細胞においてＰｐＩＸの蓄積を増強させる方法であって、
    （Ａ）治療上有効量の、下記式（Ｉ）で示される化合物を前記がん患者に投与するステップ、
    （式中、Ｒ^１は、水素原子又はアシル基を表し、Ｒ^２は、水素原子、直鎖若しくは分岐状アルキル基、シクロアルキル基、アリール基又はアラルキル基を表す）
    又はその塩、および、
    （Ｂ）治療上有効量の、細胞増殖を阻害する薬剤を前記がん患者に投与するステップ、
    を前記がん患者に適用するステップ、を含む、
    方法。
11. 請求項１０に記載の方法であって、
    前記ステップ（Ｂ）の後に、前記ステップ（Ａ）が実行される
    ことを特徴とする、
    方法。