JP2016519068A - T細胞増殖をコントロールするための方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本技術は、概して免疫学の分野に関し、部分的には、T細胞、例えば、治療用T細胞の増殖をコントロールするための組成物および方法に関する。それらの方法は、被験体において免疫応答を誘導するための組成物および方法にさらに関する。
優先権は、2013年3月14日に出願され、「T細胞増殖をコントロールするための方法」との表題の米国特許出願第61/783,445号(これは、その全体が全て本明細書に言及され、参考として援用される)に対して主張される。
T細胞の活性化は、病原微生物(例えば、ウイルス、細菌および寄生生物)、外来タンパク質および環境内の有害な化学物質に対する防御免疫において重要な工程である。T細胞は、その表面上に、抗原提示細胞の表面上に提示された抗原を認識するレセプター(すなわち、T細胞レセプター)を発現している。正常な免疫応答では、これらの抗原がT細胞レセプターに結合することにより、細胞内の変化が惹起され、T細胞の活性化に至る。
例えば、免疫応答を誘導するためまたは増大させるために使用され得る、CIDによって誘導可能なキメラシグナル伝達分子(CSM)が、部分的に提供される。CSMは、単独でまたはキメラ抗原レセプター(CAR)と組み合わせて使用され得、特定の腫瘍細胞に対する免疫応答を特異的に生じさせる。コントロールされたT細胞活性化の方法は、以前のCARに基づく処置の有毒な副作用の多くを回避する。
一般に、T細胞治療は、注入された細胞のインビボでの拡大が不良であるという困難を伴っていた。この問題に対処する1つの方法は、高用量のIL−2を患者に投与することによるものである。この治療は、T細胞の成長および抗腫瘍機能を助けるが、患者にとって非常に有毒でもある。高用量のIL−2は、メラノーマに対する標準治療法(standard−of−care therapy)であると考えられているので、これは、その疾患において広く使用されてきた。他のほとんどのT細胞治療の適用は、有毒作用に起因して、T細胞治療とともにIL−2を使用してこなかった。T細胞治療において生じている別の問題は、注入されたT細胞の生着および存続が不良であること(インビボでの増殖の機能)であり、これは、T細胞を注入する前にリンパ球枯渇前処置(lymphodepleting conditioning)を行うことによって対処されてきた。研究者らは、これを達成するために化学療法(特にシクロホスファミド)を広く使用するが、一部の研究者は、Campathを含む抗体を使用する。前処置は、リンパ系の「空間」を作り出すことならびに増殖因子および生存因子について競合する調節性の免疫細胞を枯渇させることによって、T細胞治療を大いに促進するとみられる。しかしながら、それは、患者にとって非常に有毒であり、正常な免疫細胞(例えば、病原体特異的)を完全に除去するので、いくつかのタイプの癌または高齢患者に対して容易に使用できない。さらに、リンパ球枯渇レジメンの使用は、T細胞治療を独立型の治療ではなく「一連の手順」に押し進め得る。
発現構築物は、共刺激ポリペプチドおよびリガンド結合ドメインをコードし、これらはすべて、作動可能に連結されている。一般に、用語「作動可能に連結された」は、プロモーター配列が第2の配列に機能的に連結されていることを示すと意味され、ここで、そのプロモーター配列は、第2の配列に対応するDNAの転写を開始し、媒介する。より詳細には、2つ以上のリガンド結合ドメインが、発現構築物において使用される。なおもさらに、発現構築物は、膜標的化配列を含む。適切な発現構築物は、上記のFKBPリガンド結合エレメントのいずれかの側に共刺激ポリペプチドエレメントを含み得る。発現構築物は、ベクター、例えば、ウイルスベクターまたはプラスミドに挿入され得る。提供される方法の工程は、任意の好適な方法を使用して行われ得、これらの方法としては、本明細書中に提示される抗原提示細胞に核酸を形質導入する方法、形質転換する方法または別途提供する方法が挙げられるが、これらに限定されない。
共刺激ポリペプチド分子は、細胞の生存および増殖に関与するシグナル伝達経路の活性化によって細胞媒介性の免疫応答を増幅することができる。企図される共刺激タンパク質としては、例えば、腫瘍壊死因子レセプター(TNFR)ファミリーのメンバー(すなわち、CD40、RANK/TRANCE−R、OX40、4−1BB)およびCD28ファミリーのメンバー(CD28、ICOS)が挙げられるが、これらに限定されない。共刺激タンパク質には、例えば、CD28、4−1BB、OX40およびCD3ゼータ鎖、または例えばそれらの細胞質領域が含まれ得る。2つ以上の共刺激ポリペプチドまたは共刺激ポリペプチドの細胞質領域が、本明細書中で論じられる誘導可能なキメラシグナル伝達分子において使用され得る。例えば、誘導可能なCSMは、CD28細胞質ポリペプチドおよび4−1BB細胞質ポリペプチドを含み得る。または、例えば、誘導可能なCSMは、CD28細胞質ポリペプチドおよびOX40細胞質ポリペプチドを含み得る。または、例えば、誘導可能なCSMは、CD3ゼータドメインポリペプチドをさらに含み得る。
発現構築物のリガンド結合(「二量体化」)ドメインは、天然または非天然のリガンド、例えば、非天然の合成リガンドを使用して誘導を可能にし得る任意の好都合なドメインであり得る。多量体化領域またはリガンド結合ドメインは、構築物の性質およびリガンドの選択に応じて、細胞膜に対して内側または外側であり得る。上に示された細胞質領域と会合されるリガンド結合タンパク質を含むレセプターをはじめとした多種多様のリガンド結合タンパク質が公知である。本明細書中で使用されるとき、用語「リガンド結合ドメインは、用語「レセプター」と相互交換可能であり得る。リガンド(例えば、小さい有機リガンド)が公知であるかまたは容易に生成され得るリガンド結合タンパク質が、特に興味深い。これらのリガンド結合ドメインまたはレセプターには、FKBPおよびシクロフィリンレセプター、ステロイドレセプター、テトラサイクリンレセプター、上に示された他のレセプターなど、ならびに抗体から得ることができる「非天然の」レセプター、特に、重鎖または軽鎖サブユニット、その変異された配列、確率論的手順、コンビナトリアル合成などによって得られるランダムアミノ酸配列が含まれる。ある特定の実施形態において、リガンド結合領域は、FKBPリガンド結合領域、シクロフィリンレセプターリガンド結合領域、ステロイドレセプターリガンド結合領域、シクロフィリンレセプターリガンド結合領域およびテトラサイクリンレセプターリガンド結合領域からなる群より選択される。しばしば、リガンド結合領域は、FvFvls配列を含む。時折、Fv’Fvls配列は、さらなるFv’配列をさらに含む。例としては、例えば、Kopytek,S.J.ら、Chemistry & Biology 7:313−321(2000)およびGestwicki,J.E.ら、Combinatorial Chem.& High Throughput Screening 10:667−675(2007);Clackson T(2006)Chem Biol Drug Des 67:440−2;Clackson,T.,in Chemical Biology:From Small Molecules to Systems Biology and Drug Design(Schreiber,s.ら、eds.,Wiley,2007))において論じられているものが挙げられる。
形質導入されるシグナルは、通常、キメラタンパク質分子のリガンド媒介性のオリゴマー化によって、すなわち、リガンドが結合した後のオリゴマー化の結果として、生じ得るが、他の結合事象、例えば、アロステリックな活性化が、シグナルを惹起するために使用され得る。キメラタンパク質の構築物は、様々なドメインの順序および個々のドメインの反復の数に関して、変動し得る。
F36V−FKPBと同一のポリペプチド配列をコードするが、ヌクレオチドレベルでは62%の相同性しか有しない。F36V’−FKBPは、レトロウイルスベクターにおける組換えを減少させるようにデザインされた(Schellhammer,P.F.ら、J.Urol.157,1731−5(1997))。F36V’−FKBPは、PCRアセンブリ手順によって構築された。その導入遺伝子は、1コピーのF36V−FKBPに直接連結された1コピーのF36V’−FKBPを含む。
分子量:1411.65)である。ある特定の実施形態において、リガンドは、AP20187である。ある特定の実施形態において、リガンドは、AP20187アナログ、例えば、AP1510である。いくつかの実施形態において、ある特定のアナログは、FKBP12に対して適切であり得、ある特定のアナログは、FKBP12のゆらぎバージョンに対して適切であり得る。ある特定の実施形態において、1つのリガンド結合領域が、キメラタンパク質に含められる。他の実施形態において、2つ以上のリガンド結合領域が、含められる。例えば、リガンド結合領域が、FKBP12である場合、これらの領域の2つが含められる場合、一方は、例えば、ゆらぎバージョンであり得る。
膜標的化配列は、細胞表面膜へのキメラタンパク質の輸送を提供し、ここで、同じ配列または他の配列が、細胞表面膜へのキメラタンパク質の結合をコードし得る。細胞膜と会合した分子は、膜会合を容易にするある特定の領域を含み、そのような領域は、キメラタンパク質分子に組み込まれることにより、膜標的化分子をもたらし得る。例えば、いくつかのタンパク質は、アシル化される配列をN末端またはC末端に含み、これらのアシル部分は、膜会合を容易にする。そのような配列は、アシルトランスフェラーゼによって認識され、特定の配列モチーフに一致することが多い。ある特定のアシル化モチーフは、単一のアシル部分(その後に、陰イオン性脂質頭部基との会合を改善するいくつかの正に帯電した残基(例えば、ヒトc−Src:M−G−S−N−K−S−K−P−K−D−A−S−Q−R−R−R)が続くことが多い)によって修飾されることができ、他のものは、複数のアシル部分によって修飾されることができる。例えば、タンパク質チロシンキナーゼSrcのN末端配列は、単一のミリストイル部分を含み得る。二重アシル化領域は、ある特定のタンパク質キナーゼ(例えば、Srcファミリーメンバーのサブセット(例えば、Yes、Fyn、Lck)およびGタンパク質アルファサブユニット)のN末端領域内に配置されている。そのような二重アシル化領域は、そのようなタンパク質の最初の18アミノ酸の中に配置されることが多く、それは、配列モチーフMet−Gly−Cys−Xaa−Cysに一致し、ここで、Metは、切断され、Glyは、N−アシル化され、Cys残基のうちの1つは、S−アシル化される。Glyは、ミリストイル化されることが多く、Cysは、パルミトイル化され得る。配列モチーフCys−Ala−Ala−Xaa(いわゆる「CAAXボックス」)に一致するアシル化領域は、Gタンパク質ガンマサブユニットのC末端由来のC15またはC10イソプレニル部分によって修飾され得、他のタンパク質(例えば、ワールドワイドウェブアドレスebi.ac.uk/interpro/DisplayIproEntry?ac=IPR001230)もまた使用され得る。これらのおよび他のアシル化モチーフとしては、例えば、Gauthier−Campbellら、Molecular Biology of the Cell 15:2205−2217(2004);Glabatiら、Biochem.J.303:697−700(1994)およびZlakineら、J.Cell Science 110:673−679(1997)において論じられているものが挙げられ、そのモチーフは、膜局在化を誘導するためにキメラ分子に組み込まれ得る。ある特定の実施形態において、アシル化モチーフを含むタンパク質由来の天然の配列が、キメラタンパク質に組み込まれる。例えば、いくつかの実施形態において、Lck、FynもしくはYesのN末端部分またはGタンパク質アルファサブユニット(例えば、最初の25個のN末端アミノ酸またはそのようなタンパク質由来のそれより少ないアミノ酸(例えば、随意の変異を有する、その天然の配列の約5〜約20アミノ酸、約10〜約19アミノ酸または約15〜約19アミノ酸))が、キメラタンパク質のN末端の中に組み込まれ得る。ある特定の実施形態において、CAAXボックスモチーフ配列を含むGタンパク質ガンマサブユニット由来の約25アミノ酸以下のC末端配列(例えば、随意の変異を有する、天然の配列の約5〜約20アミノ酸、約10〜約18アミノ酸または約15〜約18アミノ酸)が、キメラタンパク質のC末端に連結され得る。
ある特定の実施形態において、発現構築物は、その発現構築物にマーカーを含めることによってその発現がインビトロまたはインビボにおいて識別される核酸構築物を含む。そのようなマーカーは、その発現構築物を含む細胞の容易な識別を可能にする識別可能な変化を細胞にもたらし得る。通常、薬物選択マーカーを含めることが、クローニングおよび形質転換体の選択に役立つ。例えば、ネオマイシン、ピューロマイシン、ハイグロマイシン、DHFR、GPT、ゼオシンおよびヒスチジノールに対する抵抗性を付与する遺伝子は、有用な選択マーカーである。あるいは、単純ヘルペスウイルスのチミジンキナーゼ(tk)などの酵素が使用される。細胞外の非シグナル伝達ドメインまたは様々なタンパク質(例えば、CD34、CD19、LNGFR)を含む免疫学的表面マーカーもまた使用され得、それにより、磁性抗体または蛍光抗体によって媒介される選別のための直接的方法が可能になる。使用される選択マーカーは、遺伝子産物をコードする核酸と同時に発現されることができる限り、重要であると考えられない。選択マーカーのさらなる例としては、例えば、レポーター(例えば、GFP、EGFP、ベータ−galまたはクロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ(CAT))が挙げられる。ある特定の実施形態において、マーカータンパク質、例えば、CD19は、例えば、免疫磁気選択において、移入するための細胞の選択のために使用される。
1.プロモーター
目的のポリヌクレオチド配列の発現をコントロールするために使用される特定のプロモーターは、標的化された細胞においてそのポリヌクレオチドの発現を指示することができる限り、重要であると考えられない。したがって、ヒト細胞が標的化される場合、ポリヌクレオチド配列コード領域は、例えば、ヒト細胞において発現されることができるプロモーターに隣接しておよびそのプロモーターの支配下に配置され得る。一般的に言えば、そのようなプロモーターは、ヒトプロモーターまたはウイルスプロモーターを含み得る。
エンハンサーは、同じDNA分子上の離れた位置に配置されたプロモーターからの転写を増加させる遺伝的エレメントである。初期の例としては、コード配列に隣接し、かついくつかのイントロンの中に存在する、免疫グロブリンおよびT細胞レセプターに関連するエンハンサーが挙げられる。多くのウイルスプロモーター(例えば、CMV、SV40およびレトロウイルスLTR)は、エンハンサーの活性と密接に関連し、単一エレメントのように扱われることが多い。エンハンサーは、ほぼプロモーターのように組織化される。すなわち、エンハンサーは、多くの個々のエレメントから構成され、その各々が、1つ以上の転写性タンパク質に結合する。エンハンサーとプロモーターとの基本的な区別は、操作上のものである。エンハンサー領域は概して、少し離れて、しばしば向きに関係なく、転写を刺激する;これは、プロモーター領域またはその構成要素エレメントには必ずしも当てはまらない。他方で、プロモーターは、特定の部位において特定の向きでRNA合成の開始を指示する1つ以上のエレメントを有するのに対し、エンハンサーは、これらの特異性を欠く。プロモーターおよびエンハンサーは、しばしば重複し、近接することから、しばしば非常によく似たモジュール構成を有するようである。エンハンサーのサブセットには、転写活性を増加させ得るだけでなく、ゲノムにインテグレートされたとき、隣接する配列から転写性エレメントを(インスレーターエレメントとともに)隔離するのを助け得る、遺伝子座調節領域(LCR)が含まれる。
cDNAインサートが使用される場合、遺伝子転写産物の適切なポリアデニル化をもたらすためにポリアデニル化シグナルを含めることが通常望ましいだろう。ポリアデニル化シグナルの性質は、本方法の実施の成功にとって重大であるとは考えられておらず、任意のそのような配列(例えば、ヒトまたはウシの成長ホルモンおよびSV40のポリアデニル化シグナルならびにLTRポリアデニル化シグナル)が、使用される。1つの非限定的な例は、pCEP3プラスミド(Invitrogen,Carlsbad,California)に存在するSV40ポリアデニル化シグナルである。ターミネーターもまた、発現カセットのエレメントとして企図される。これらのエレメントは、メッセージレベルを高めるため、およびそのカセットから他の配列への読み過ごしを最小限にするために役立ち得る。終止シグナル配列またはポリ(A)シグナル配列は、例えば、mRNAの3’末端における保存配列(AAUAAA)から約11〜30ヌクレオチド下流に位置し得る(Montgomery,D.L.ら、1993.DNA Cell Biol.12:777−83;Kutzler,M.A.,and Weiner,D.B.,2008.Nature Rev.Gen.9:776−88)。
特定の開始シグナルもまた、コード配列の効率的な翻訳に必要とされることがある。これらのシグナルは、ATG開始コドンまたは隣接する配列を含む。ATG開始コドンをはじめとした外来性翻訳調節シグナルが、提供される必要があり得る。開始コドンは、インサート全体の翻訳を確実にするために、所望のコード配列の読み枠とインフレームで配置される。外来性翻訳調節シグナルおよび開始コドンは、天然または合成であり得る。発現の効率は、適切な転写エンハンサーエレメントを含めることによって上昇し得る。
タンパク質産生は、導入遺伝子におけるコドンを最適化することによっても増加され得る。タンパク質産生を増加させるために、種特異的コドンの変更が用いられ得る。また、コドンが最適化されることにより、最適化されたRNAが生成され得、それにより、より効率的な翻訳がもたらされ得る。RNAに組み込まれるコドンを最適化することによって、不安定性を引き起こす二次構造をもたらすエレメント、例えばリボソーム結合を阻害し得るmRNA二次構造、またはmRNAの核外輸送を阻害し得るクリプティック(cryptic)配列などのエレメントが、除去され得る(Kutzler,M.A.,and Weiner,D.B.,2008.Nature Rev.Gen.9:776−88;Yan.,J.ら、2007.Mol.Ther.15:411−21;Cheung,Y.K.ら、2004.Vaccine 23:629−38;Narum.,D.L.ら、2001.69:7250−55;Yadava,A.,and Ockenhouse,C.F.,2003.Infect.Immun.71:4962−69;Smith.,J.M.ら、2004.AIDS Res.Hum.Retroviruses 20:1335−47;Zhou,W.ら、2002.Vet.Microbiol.88:127−51;Wu,X.ら、2004.Biochem.Biophys.Res.Commun.313:89−96;Zhang,W.ら、2006.Biochem.Biophys.Res.Commun.349:69−78;Deml,L.A.ら、2001.J.Virol.75:1099−11001;Schneider,R.M.ら、1997.J.Virol.71:4892−4903;Wang,S.D.ら、2006.Vaccine 24:4531−40;zur Megede,J.ら、2000.J.Virol.74:2628−2635)。例えば、FBP12または他の多量体化領域ポリペプチド、共刺激ポリペプチド細胞質シグナル伝達領域およびCD19配列が、コドンの変更によって最適化され得る。
リーダー配列は、mRNAの安定性を高めるためおよびより効率的な翻訳をもたらすために付加され得る。リーダー配列は、通常、mRNAを小胞体に標的化することに関与する。例としては、自身の切断を遅延させる、HIV−1エンベロープ糖タンパク質(Env)に対するシグナル配列、およびIgE遺伝子リーダー配列が挙げられる(Kutzler,M.A.,and Weiner,D.B.,2008.Nature Rev.Gen.9:776−88;Li,V.ら、2000.Virology 272:417−28;Xu,Z.L.ら、2001.Gene 272:149−56;Malin,A.S.ら、2000.Microbes Infect.2:1677−85;Kutzler,M.A.ら、2005.J.Immunol.175:112−125;Yang.,J.S.ら、2002.Emerg.Infect.Dis.8:1379−84;Kumar.,S.ら、2006.DNA Cell Biol.25:383−92;Wang,S.ら、2006.Vaccine 24:4531−40)。IgEリーダーは、小胞体への挿入を高めるために使用され得る(Tepler,Iら(1989)J.Biol.Chem.264:5912)。
本明細書中で使用される「核酸」は、一般に、核酸塩基を含む、DNA、RNAまたはその誘導体もしくはアナログの分子(1本、2本またはそれ以上の鎖)のことを指す。核酸塩基には、例えば、DNA(例えば、アデニン「A」、グアニン「G」、チミン「T」またはシトシン「C」)またはRNA(例えば、A、G、ウラシル「U」またはC)に見られる天然に存在するプリンまたはピリミジン塩基が含まれる。用語「核酸」は、用語「オリゴヌクレオチド」および「ポリヌクレオチド」を包含し、その各々は、用語「核酸」の亜属として包含される。核酸は、少なくとも、多くとも、または約3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74、75、76、77、78、79、80、81、82、83、84、85、86、87、88、89、90、91、92、93、94、95、96、97、98、99、100、101、102、103、104、105、106、107、108、109、110、120、130、140、150、160、170、180、190、200、210、220、230、240、250、260、270、280、290、300、310、320、330、340、350、360、370、380、390、400、410、420、430、440、441、450、460、470、480、490、500、510、520、530、540、550、560、570、580、590、600、610、620、630、640、650、660、670、680、690、700、710、720、730、740、750、760、770、780、790、800、810、820、830、840、850、860、870、880、890、900、910、920、930、940、950、960、970、980、990もしくは1000ヌクレオチド長、またはこの中の導き出せる任意の範囲の長さであり得る。
下記で論じられる修飾のいずれかが、核酸に適用され得る。修飾の例としては、RNAもしくはDNAの骨格、糖または塩基、およびそれらの様々な組み合わせに対する変更が挙げられる。核酸における任意の好適な数の骨格結合、糖および/または塩基が、修飾され得る(例えば、独立して、約5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、最大100%)。修飾されていないヌクレオシドは、ベータ−D−リボ−フラノースの1’炭素に結合された塩基アデニン、シトシン、グアニン、チミンまたはウラシルのうちのいずれか1つである。
いくつかの実施形態において、例えば、アッセイまたは治療薬において、コントロールまたは標準物質として使用するための核酸が、提供される。核酸は、当該分野で公知の任意の手法(例えば、化学合成、酵素的生成または生物学的生成)によって作製され得る。核酸は、生物学的サンプルから回収され得るかまたは単離され得る。核酸は、組換えであり得るか、または天然であり得るかもしくは細胞にとって内因性であり得る(細胞のゲノムから産生され得る)。生物学的サンプルは、小さい核酸分子の回収率を高めるような方法で処理され得ることが企図される。一般に、方法は、グアニジニウムおよび界面活性剤を有する溶液で細胞を溶解する工程を含み得る。
細胞内での導入遺伝子発現の効果を媒介するために、発現構築物を細胞に移行させる必要があり得る。そのような移行は、ウイルスによる遺伝子移入方法またはウイルスによらない遺伝子移入方法を使用し得る。この項では、遺伝子移入の方法および組成物の考察が提供される。
細胞、例えば、T細胞をトランスフェクトするためもしくは形質転換するため、または本方法のヌクレオチド配列もしくは組成物を投与するために、任意の適切な方法が使用され得る。ある特定の例が、本明細書中に提示され、それらの例としてはさらに、カチオン性ポリマー、脂質様分子およびある特定の市販品、例えば、IN−VIVO−JET PEIを使用した送達などの方法が挙げられる。
生物から取り出された血管細胞および血管組織をエキソビボの環境においてトランスフェクトするために、様々な方法が利用可能である。例えば、イヌ内皮細胞は、インビトロにおけるレトロウイルス遺伝子移入によって遺伝的に変更され、イヌに移植された(Wilsonら、Science,244:1344−1346,1989)。別の例では、ユカタンミニブタ内皮細胞を、インビトロにおいてレトロウイルスでトランスフェクトし、ダブルバルーンカテーテルを使用して動脈に移植した(Nabelら、Science,244(4910):1342−1344,1989)。したがって、細胞または組織が、取り出され、本明細書中に提示されるポリヌクレオチドを使用してエキソビボにおいてトランスフェクトされ得ることが企図される。特定の態様において、移植された細胞または組織は、生物の中に配置され得る。例えば、動物由来の樹状細胞が、発現ベクターでその細胞をトランスフェクトし、次いで、トランスフェクトされたまたは形質転換された細胞をその動物に投与して戻す。
ある特定の実施形態において、抗原提示細胞または核酸ベクターもしくはウイルスベクターは、1つ以上の注射(すなわち、針による注射)、例えば、皮下、皮内、筋肉内、静脈内、前立腺内(intraprotatic)、腫瘍内、腹腔内(intrintraperitoneal)などを介して、細胞小器官、細胞、組織または生物に送達され得る。注射の方法としては、例えば(foe example)、食塩水溶液を含む組成物の注射が挙げられる。さらなる実施形態は、直接マイクロインジェクションによるポリヌクレオチドの導入を含む。使用される発現ベクターの量は、抗原の性質、ならびに使用される細胞小器官、細胞、組織または生物に応じて変動し得る。
ある特定の実施形態において、ポリヌクレオチドは、エレクトロポレーションを介して細胞小器官、細胞、組織または生物に導入される。エレクトロポレーションは、細胞およびDNAの懸濁液を高圧放電に曝露することを含む。この方法のいくつかの変法では、ある特定の細胞壁分解酵素(例えば、ペクチン分解酵素)を使用して、標的レシピエント細胞を、未処理の細胞よりもエレクトロポレーションによる形質転換に対してより感受性にする(参照により本明細書中に援用される米国特許第5,384,253号)。
他の実施形態では、リン酸カルシウム沈殿を用いて、ポリヌクレオチドが細胞に導入される。この手法を用いて、ヒトKB細胞が、アデノウイルス5DNAでトランスフェクトされた(Graham and van der Eb,(1973)Virology,52,456−467)。また、この様式において、マウスL(A9)、マウスC127、CHO、CV−1、BHK、NIH3T3およびHeLa細胞が、ネオマイシンマーカー遺伝子でトランスフェクトされ(Chen and Okayama,Mol.Cell Biol.,7(8):2745−2752,1987)、ラット肝細胞が、種々のマーカー遺伝子でトランスフェクトされた(Rippeら、Mol.Cell Biol.,10:689−695,1990)。
別の実施形態では、DEAE−デキストランの後にポリエチレングリコールを使用して、ポリヌクレオチドが細胞に送達される。この様式において、レポータープラスミドが、マウス骨髄腫細胞および赤白血病細胞に導入された(Gopal,T.V.,Mol Cell Biol.1985 May;5(5):1188−90)。
さらなる実施形態は、直接音波負荷(direct sonic loading)によるポリヌクレオチドの導入を含む。LTK線維芽細胞が、音波処理負荷によってチミジンキナーゼ遺伝子でトランスフェクトされた(Fechheimerら(1987)Proc.Nat’l Acad.Sci.USA,84,8463−8467)。
さらなる実施形態において、ポリヌクレオチドは、脂質複合体、例えば、リポソームの中に閉じ込められ得る。リポソームは、リン脂質二重層膜および内側の水性媒質を特徴とする小胞構造である。多重膜リポソームは、水性媒質によって隔てられた複数の脂質層を有する。それらは、リン脂質が過剰量の水溶液に懸濁されると、自発的に形成する。それらの脂質成分は、自己再配列を起こした後、閉鎖構造を形成し、水および溶解した溶質を脂質二重層の間に閉じ込める(Ghosh and Bachhawat,(1991)In:Liver Diseases,Targeted Diagnosis and Therapy Using Specific Receptors and Ligands.pp.87−104)。Lipofectamine(Gibco BRL)またはSuperfect(Qiagen)と複合体化されたポリヌクレオチドも企図される。
なおもさらに、ポリヌクレオチドは、レセプター媒介性送達ビヒクルを介して標的細胞に送達され得る。これらは、標的細胞において生じているレセプター媒介性エンドサイトーシスによる高分子の選択的取り込みを利用する。様々なレセプターの細胞型特異的分布に照らして、この送達方法は、別の特異性の程度を付加する。
微粒子銃法は、ポリヌクレオチドを少なくとも1つの細胞小器官、細胞、組織または生物に導入するために使用され得る(米国特許第5,550,318号;米国特許第5,538,880号;米国特許第5,610,042号;およびPCT出願WO94/09699;これらの各々は、参照により本明細書中に援用される)。この方法は、DNAでコーティングされた微小発射体が高速度に加速して、それらが細胞膜を貫通し、細胞を殺傷せずにそれらの細胞に入ることを可能にする能力に依存する(Kleinら(1987)Nature,327,70−73)。当該分野で公知の多種多様の微粒子銃法が存在し、それらの多くは、本方法に適用可能である。
被験体内の細胞がヌクレオチド配列によってコードされる遺伝子を発現し得るようにそのヌクレオチド配列またはそのヌクレオチド配列を含む組成物をその細胞またはその被験体に投与するのに適した任意のウイルスベクターが、本方法において使用され得る。ある特定の実施形態において、導入遺伝子は、細胞への遺伝子移入を媒介するウイルス粒子に組み込まれる。代表的には、そのウイルスは、単純に、適切な宿主細胞に生理学的条件下で曝露されることにより、ウイルスの取り込みが可能になり得る。本方法は、下記で論じられるように、種々のウイルスベクターを使用して都合よく使用される。
アデノウイルスは、その中程度のサイズのDNAゲノム、操作の容易性、高力価、広範囲な標的細胞および高感染力を理由に、遺伝子トランスファーベクターとして使用するのに特に適している。およそ36kbのウイルスゲノムは、ウイルスDNAの複製およびパッケージングに必要なシス作用性エレメントを含む100〜200塩基対(bp)の末端逆位配列(ITR)によって境界されている。異なる転写単位を含む、ゲノムの初期(E)領域および後期(L)領域は、ウイルスDNA複製の開始によって分割される。
レトロウイルスは、そのRNAを逆転写のプロセスによって感染細胞において二本鎖DNAに変換する能力を特徴とする一本鎖RNAウイルスの群である(Coffin,(1990)In:Virology,ed.,New York:Raven Press,pp.1437−1500)。次いで、得られたDNAは、プロウイルスとして細胞染色体内に安定に組み込み、ウイルスタンパク質の合成を指示する。その組み込みにより、レシピエント細胞およびその子孫においてウイルス遺伝子配列が保持される。レトロウイルスゲノムは、3つの遺伝子、それぞれキャプシドタンパク質、ポリメラーゼ酵素およびエンベロープ成分をコードするgag、polおよびenvを含む。psiと呼ばれる、gag遺伝子から上流に見られる配列は、ゲノムをビリオンにパッケージングするためのシグナルとして機能する。2つの長い末端反復(LTR)配列が、ウイルスゲノムの5’および3’末端に存在する。これらは、強力なプロモーター配列およびエンハンサー配列を含み、宿主細胞ゲノムへの組み込みにも必要である(Coffin,1990)。したがって、例えば、本技術は、例えば、細胞を形質導入するために使用されるポリヌクレオチドがその細胞のゲノムに組み込まれた細胞を含む。
AAVは、約4700塩基対の直鎖状の一本鎖DNAを使用する。末端逆位配列は、ゲノムに隣接している。2つの遺伝子が、ゲノム内に存在し、いくつかの異なる遺伝子産物を生じる。第1に、cap遺伝子は、VP−1、VP−2およびVP−3と命名された3つの異なるビリオンタンパク質(VP)を生成する。第2に、rep遺伝子は、4つの非構造タンパク質(NS)をコードする。これらのrep遺伝子産物の1つ以上は、AAV転写のトランス活性化に関与する。
他のウイルスベクターも、本発明の方法および組成物において発現構築物として用いられる。ワクシニアウイルス(Ridgeway,(1988)In:Vectors:A survey of molecular cloning vectors and their uses,pp.467−492;Baichwal and Sugden,(1986)In,Gene Transfer,pp.117−148;Couparら、Gene,68:1−10,1988)カナリアポックスウイルスおよびヘルペスウイルスなどのウイルスに由来するベクターが使用される。これらのウイルスは、様々な哺乳動物細胞への遺伝子移入において使用するためのいくつかの特徴を提供する。
本方法は、疾患を処置するかまたは予防する方法も包含し、ここで、例えば注入による細胞の投与が、有益であり得る。
リガンド誘導物質の投与量および投与スケジュールは、処置される疾患または状態のレベルを測定することによって最適化され得る。例えば、任意の残存している固形腫瘍のサイズ、または標的化される細胞、例えば、患者の中に残存している可能性がある腫瘍細胞またはCD19発現B細胞のレベルが、測定され得る。
臨床適用が企図される場合、薬学的組成物(発現構築物、発現ベクター、融合タンパク質、形質導入された細胞、活性化T細胞、形質導入されたT細胞)を、意図される用途にとって適切な形態で調製する必要があり得る。一般に、これは、発熱物質ならびにヒトまたは動物にとって有害であり得る他の不純物を本質的に含まない組成物を調製することを伴い得る。
本方法は、病原微生物によって引き起こされる疾患および/または過剰増殖性疾患の処置または予防の方法も包含する。
ある特定の実施形態において、共刺激ポリペプチド(例えば、本明細書中で論じられるもの)を提供することができる発現構築物が、細胞に、および例えばT細胞において提供される。発現ベクターおよびその中に使用される遺伝的エレメントに関する長い考察が、参照によりこの項に援用される。ある特定の例では、発現ベクターは、ウイルスベクター(例えば、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス、ヘルペスウイルス、ワクシニアウイルスおよびレトロウイルス)であり得る。別の例では、ベクターは、リソソームによって被包された発現ベクターであり得る。
企図される別の治療は、形質導入されたT細胞の投与である。それらのT細胞は、インビトロにおいて形質導入され得る。薬学的に許容され得る組成物としての製剤は、本明細書中で論じられる。
本明細書中に提示される発現ベクターの有効性を高めるために、これらの組成物および方法をその疾患の処置において有効な作用物質と組み合わせることが、望ましい場合がある。
ベクターの構築および発現の確認
ヒトFK506結合タンパク質(FKBP)、例えば、FKBP12v36に融合されたシグナル伝達分子を含む、治療薬としての使用に適した発現ベクターを構築する。これらの方法は、1つ以上の共刺激ポリペプチドを発現するためにも使用され得る。誘導可能なCSMは、小分子医薬を使用して二量体化(または多量体化)され得る。誘導可能なCSMをコードする核酸を、リガンド結合ドメインをコードする核酸に融合し、蛍光マーカーであるGFPの発現も可能にする、SFGレトロウイルスベクターまたはpLenti7.3レンチウイルスベクターに挿入する。
細胞株
癌細胞株LNCaP、PC3、DU145およびA549、ならびにヒト胎児腎細胞株HEK−293Tを、American Type Culture Collection(Rockville,MD)から入手する。細胞を、37℃における5%二酸化炭素(CO2)を含む加湿雰囲気において、10%ウシ胎児血清(Hyclone,Waltham,MA)および2mM L−グルタミンを含む完全IMDM(Sigma,St Louis,MO)中で維持する。形質導入されたT細胞およびPHA芽球を、100U/ml IL−2(Cellgenix)が補充されたCellgenix DC(Cellgenix)培地中で維持する。
拡大および形質導入のためのT細胞の活性化は、可溶性αCD3およびαCD28(Miltenyi Biotec,Auburn,CA)を使用して行われる。PBMCを、100U/ml IL−2(Cellgenix)が補充されたCellgenix DC培地に、1×106細胞/mlで再懸濁し、0.2μg/ml αCD3および0.5μg/ml αCD28可溶性抗体で刺激する。次いで、細胞を37℃、5%CO2において4日間培養する。4日目に、IL−2を含む1mlの新鮮培地を加える。7日目に、形質導入に向けて、細胞を収集し、Cellgenix DC培地に再懸濁する。
PSMA、PSCA、MUC1およびHer2/Neuを標的化するコドン最適化された一本鎖可変フラグメントを含む誘導可能なCSM(iCSM)およびCAR−CD3ゼータ構築物は、Blue Heron Bio(Bothell,WA)によって合成される。iCSM構築物は、T細胞レセプターのCD28、4−1BBおよびCD3ゼータ鎖を含む共刺激内部ドメインにインフレームで連結されたFKBP12v36ドメインからなる。CAR構築物は、ヒトIgG1−Ch2Ch3ドメインおよびCD3−ゼータ鎖をインフレームで含むscFvフラグメントをクローニングすることによって作製される。iCSM構築物とCAR−CD3ゼータ構築物の両方を、エメラルドGFPを共発現する、SFGレトロウイルス骨格またはpLenti7.3レンチウイルス骨格(Invitrogen)にサブクローニングする。iCSMの刺激作用および共刺激作用、ならびにCAR−CD3ゼータの細胞傷害性の評価を、これらの導入遺伝子をコードするレトロウイルスまたはレンチウイルスでT細胞を個別にまたは同時に形質導入することによって行う。
レトロウイルスの一過性の生成のために、GeneJuiceトランスフェクション試薬(Novagen,Madison,WI)を使用して、gag−polおよびRD114エンベロープをコードするプラスミドとともに、iCSM構築物で293T細胞をトランスフェクトする。トランスフェクションの48〜72時間後にウイルスを収集し、急速凍結し、使用するまで約80℃で保存する。レンチウイルスの一過性の生成のために、GeneJuiceを使用して、プラスミドpLP1(gag/pol)、pLP2(rev)およびpLP/VSVG(VSVG env)とともに、iCAR構築物で293T細胞をトランスフェクトする。トランスフェクションの48〜72時間後にウイルスを収集し、急速凍結し、使用するまで約80℃で保存する。大規模なレトロウイルスの生成のために、一過性VSV−Gシュードタイプ化レトロウイルス上清を用いた複数回の形質導入によって、安定なFLYRD18由来レトロウイルス産生株を作製する。導入遺伝子発現が最も高いFLYRD18細胞を、単一細胞ソーティングし、最も高いウイルス力価をもたらすクローンを拡大し、リンパ球形質導入のためのウイルスを作製するために使用する。このクローンの導入遺伝子発現、機能およびレトロウイルス力価を、8週間超にわたる連続培養中、維持する。組織培養用の処理が行われていない24ウェルプレートを、37℃において1時間または4℃において一晩、7μg/ml Retronectin(TakaraBio,Otsu,Shiga,Japan)でコーティングする。それらのウェルを、リン酸緩衝食塩水(PBS)で洗浄し、次いで、37℃において30分間、プレートを1.5mlの上清とともにインキュベートすることによって、レトロウイルス上清でコーティングする。続いて、T細胞芽球を、100U/ml IL−2が補充されたウイルス上清において1ウェルあたり5×105細胞でプレーティングする。60時間にわたって形質導入を行う。形質導入後、細胞を収集し、フローサイトメトリーによってCD19またはGFPの発現について表現型分析を行う。
形質導入された各T細胞株の細胞傷害活性を、以前に提示されたような、標準的な4時間の51Cr放出アッセイにおいて評価する。iCSM、PSMA CAR−CD3ゼータ、またはiCSMウイルスとCARウイルスの両方で形質導入されたT細胞を、フィトヘマグルチニン(PHA)によって刺激された自家リンパ球(PHA芽球)、LNCaP、PC3またはDU145およびA549癌細胞株、ならびにヒトPSMAを発現するトランスジェニックA549(A549−PSMA)を含む、Cr51で標識された標的細胞に対して比較する。完全培地または1%Triton X−100(Sigma,St Louis,MO)中でインキュベートされた標的細胞をそれぞれ自発的なおよび最大の51Cr放出を測定するために使用する。3つ組ウェルの特異的溶解の平均パーセンテージを、100×(実験による放出−自発的な放出)/(最大放出−自発的な放出)として計算した。クロム放出アッセイに加えて、共培養実験を行う。ここでは、細胞株LNCaP、PC3、DU145、A549およびA549−PSMAを、蛍光性mOrangeを発現するように形質導入し、標的細胞として使用する。mOrangeを発現している腫瘍細胞を、完全培地中、IL−2(50U/ml)の存在下において、形質導入されていないT細胞またはCARによって改変されたT細胞とともに、腫瘍細胞とT細胞とが1:10という比で共培養する。24時間後、iCARを有するT細胞を100nM AP1903で刺激する。72時間後、細胞を捕集し、カウントし、T細胞を検出するためにCD3で標識し、mOrange腫瘍細胞のパーセンテージをフローサイトメトリー(LSRII;BD)によって解析する。
iCARを形質導入されたT細胞の細胞表面の表現型を、以下のモノクローナル抗体を使用して調べる:CD3、CD4、CD8、CD19、CD25、CD27、CD28、CD44、CD45RA、CD45RO、CD62L、CD80、CD83、CD86、CD127、CD134、CD137、HLA−ABCおよびHLA−DR。iCSM刺激剤として10〜100nM AP1903を用いておよび用いずに、表現型分析を行う。適切なアイソタイプマッチコントロールを各実験において使用し、LSRIIフローサイトメーター(BD)を用いて細胞を解析する。抗F(ab’)2(Jackson ImmunoResearch Laboratories,West Grove,PA)を使用して、CARの発現を評価した。
100nM AP1903による刺激の前および後(24時間)のT細胞培養上清中のインターフェロン−γ(IFN−γ)、IL−2、IL−4、IL−5、IL−10および腫瘍壊死因子−α(TNFα)の濃度を、ヒトTh1/Th2サイトカインサイトメトリビーズアレイ(BD Pharmingen)を使用して計測する。培養上清中の誘導されたサイトカイン産生を、製造者の指示書に従って酵素結合免疫吸着測定法(ELISA;R&D Systems,Minneapolis,MN)によって検証する。
iCSMを介したAP1903誘導性シグナル伝達の増殖効果を、AP1903に曝露した後の、形質導入されたT細胞および形質導入されていないT細胞の細胞成長を計測することによって評価する。T細胞を、37℃において10分間、10μMカルボキシフルオレセインジアセテート、スクシンイミジルエステル(CFSE)で標識する。インキュベーション後、細胞をPBS中で洗浄し、次いで、Cellgenix DC培地に再懸濁する。その後、1×106個のCFSEで標識されたiCSM改変T細胞または形質導入されていないT細胞を、Cellgenix DC培地のみにおいて培養するか、または100nM AP1903で刺激する。5日後、細胞を収集し、CD3−PerCP.Cy5.5およびCD19−PEで標識し、CFSE希釈についてフローサイトメトリーによって解析する。
6〜8週齢の非肥満糖尿病重症複合免疫不全(NOD/SCID)マウスを照射し(250rad)、Matrigel(BD Bioscience)に再懸濁された10×106〜15×106個のLNCaP腫瘍細胞を、そのマウスの右側腹部の皮下に注射する。2週間後、直径がおよそ0.5cmの腫瘍を有するマウスの尾静脈に、形質導入されていないT細胞またはiCSM/CARを形質導入されたT細胞(合計15×106個)を注射した。それらのマウスを、ランダムに2群に分ける:T細胞を拡大するために、1群には、CID(50〜125μg AP1903、腹腔内、1週間に2回)を投与し、もう1群には、キャリアのみ(16.7%プロパンジオール、22.5%PEG400および1.25%Tween80、腹腔内、1週間に2回)を投与する。21日間にわたるノギス計測によって、腫瘍の成長についてマウスを評価する。末梢血サンプルを、7、14および21日目に後眼窩出血によって採取することにより、ヒトCD3/ヒトCD19発現T細胞に対するフローサイトメトリー解析を用いて、iCSMまたはコントロールT細胞の残留および拡大を計測する。
誘導可能なCSMの発現が、T細胞の特色を変化させないことを確実にするために、形質導入されていないまたは非機能性の誘導可能なCAR(PSMA CAR−CD3ゼータのみ)の表現型、抗原特異性、増殖能および機能を、iCSM/CARを形質導入されたT細胞と比較する。形質導入された細胞および形質導入されていない細胞におけるCD4+、CD8+、CD56+およびTCRα/β+細胞の数を比較し、IFN−γ、TNFα、IL−10、IL−4、IL−5およびIL−2を含むサイトカインの産生産生も同様に比較する。指数関数的に増えるCTLの成長の特色、ならびに増殖に対する抗原およびIL−2への依存性を評価し、抗原刺激の際のタイプTH1およびTH2サイトカインの表現型データおよび分泌データも同様に評価する。
発現構築物、およびヒト細胞においてその発現構築物を使用する方法が、この実施例に提示される。
遺伝子改変されたT細胞の大規模産生
T細胞は、標準的な方法を用いて健常志願者から作製される。簡潔には、健常ドナーまたは癌患者由来の末梢血単核球(PBMC)を、可溶性αCD3およびαCD28(Miltenyi Biotec,Auburn,CA)を使用して、拡大および形質導入のために活性化する。PBMCを、100U/ml IL−2(Cellgenix)が補充されたCellgenix DC培地に、1×106細胞/mlで再懸濁し、0.2μg/ml αCD3および0.5μg/ml αCD28可溶性抗体で刺激する。次いで、細胞を37℃、5%CO2において4日間培養する。4日目に、IL−2を含む1mlの新鮮培地を加える。7日目に、形質導入に向けて、細胞を収集し、Cellgenix DC培地に再懸濁する。
SFGプラスミドは、切断可能な2A様配列を介して切断型ヒトCD19に連結された誘導可能なCSMからなる。その誘導可能なCSMは、F36V変異を有し、Ser−Gly−Gly−Gly−Serリンカーを介してヒトCSMに接続された、ヒトFK506結合タンパク質(FKBP12;GenBank AH002818)からなる。そのF36V変異は、合成ホモ二量体化剤(homodimerizer)AP20187またはAP1903に対するFKBP12の結合親和性を高める。その2A様配列は、Thosea asigna昆虫ウイルス由来の20アミノ酸ペプチドをコードし、それは、グリシンと末端プロリン残基との間での>95%の切断を媒介して、iCSMのC末端に19個の追加のアミノ酸およびCD19のN末端に1つの追加のプロリン残基をもたらす。CD19は、細胞質内ドメインを242アミノ酸から19アミノ酸に短縮し、リン酸化に対する潜在的な部位である保存されたすべてのチロシン残基を除去する、アミノ酸333(TDPTRRF)で切断される、完全長CD19(GenBank NM001770)からなる。
T細胞の活性化および拡大のための培養液は、100U/ml IL−2(Cellgenix)が補充された無血清Cellgenix DC培地(Cellgenix)である。レトロウイルスベクターで形質導入する前の7日間にわたって、T細胞を可溶性抗CD3および抗CD28(Miltenyi Biotec)によって活性化する。必要であれば、ΔCD19の免疫磁気選択を形質導入後の4日目に行い;陽性画分をさらに2日間にわたって拡大し、凍結保存する。
臨床適用のための形質導入プロセスのスケールアップでは、10mlの抗CD3 0.5μg/mlおよび抗CD28 0.2μg/mlまたは10mlのフィブロネクチン7μg/mlで4℃において一晩コーティングされた、組織培養用に処理されていないT75フラスコ(Nunc,Rochester,NY)を使用する。高細胞粘着性のためにコロナ処理されたフッ化エチレンプロピレンバッグ(2PF−0072AC,American Fluoroseal Corporation,Gaithersburg,MD)も使用する。PBMCを、抗CD3、抗CD28によってコーティングされたフラスコに、100U/ml IL−2が補充された培地中、1×106細胞/mlで播種する。レトロウイルス形質導入に向けて、レトロネクチンでコーティングされたフラスコまたはバッグを、10mlのレトロウイルス含有上清で2〜3時間、一度負荷する。活性化T細胞を、レトロウイルスベクター含有新鮮培地と100U/ml IL−2が補充されたT細胞培養液とが3:1の中に1×106細胞/mlで播種する。細胞を、翌朝収集し、組織培養用に処理されたT75またはT175フラスコ内、100U/ml IL−2が補充された培養液中で、約5×105細胞/ml〜8×105細胞/mlの播種密度で拡大する。
CD19に対する免疫磁気選択は、1つの例において、形質導入の4日後に行われ得る。細胞を、モノクローナルマウス抗ヒトCD19抗体(Miltenyi Biotech,Auburn,CA)に結合体化された常磁性マイクロビーズで標識し、小規模実験ではMSまたはLSカラムにおいて、および大規模実験ではCliniMacs Plus自動選択デバイスにおいて、選択する。CD19によって選択された細胞を、さらに4日間拡大し、形質導入後の8日目に凍結保存する。これらの細胞は、「遺伝子改変細胞」と称される。
フローサイトメトリー解析(FACSCaliburおよびCellQuestソフトウェア;Becton Dickinson)を、以下の抗体を使用して行う:CD3、CD4、CD8、CD19、CD25、CD27、CD28、CD45RA、CD45RO、CD56およびCD62L。CD19−PE(クローン4G7;Becton Dickinson)は、最適な染色をもたらすと見出されており、その後のすべての解析において使用された。形質導入されていないコントロールを、CD19に対するネガティブゲートを設定するために使用する。CAR発現を、抗F(ab’)2(Jackson ImmunoResearch Laboratories,West Grove,PA)を使用して評価する。
対応のある両側スチューデントt検定を使用して、サンプル間の差の統計的有意性を判定する。すべてのデータを平均値±1標準偏差として表す。
目的:2つのFKBPv36分子に連結されたシグナル伝達分子をコードするレトロウイルスベクターで初代T細胞を形質導入することにより、そのT細胞のAP1903活性化を可能にすること。この実験では、二量体化に応答したサイトカインの産生を、マルチプレックスサイトカインビーズアレイを使用して計測した。
誘導可能なT細胞分子のデザインおよびクローニング:
1.2つのSFGベースのレトロウイルスベクターを、Gibsonクローニングによって構築した(ここで、PCR産物を、pAd1127−02−iMCから増幅し、LFv1.Fv2L DNAフラグメントの代わりにpBP0320−SFG−Myr.LFv1.Fv2L.2A.ΔCD19構築物に挿入した)。
2.一過性のトランスフェクション法によってレトロウイルスを作製し、ここで、HEK293T細胞を以下のプラスミドでトランスフェクトした:
a.SFGレトロウイルスプラスミド(pBP0171またはpBP0172;それぞれRV−171またはRV−172)
b.レトロウイルスエンベローププラスミド(RD114)
c.Gag/polプラスミド(pEQ−PAM−E) 。
5.T細胞のAP1903依存性T細胞活性化を評価するために、1×105個の形質導入されていない(NT)T細胞またはコントロールレトロウイルス(RV−171)もしくはiMCを含むレトロウイルス(RV−172)で形質導入されたT細胞を、96ウェルプレートに3つ組でプレーティングし、培地のみまたは10nM AP1903を含む培地を用いて37℃、5%CO2において培養した。
a.塩基性FGF、G−CSF、GM−CSF、IFN−ガンマ、IL−1Ra、IL−1ベータ、IL−2、IL−4、IL−5、IL−6、IL−8、IL−7、IL−8、IL−9、IL−10、IL−12p70、IL−13、IL−15、IL−17RA、エオタキシン、IP10、MCP−1、MIP−1アルファ、MIP−1ベータ、PDGF−bb、RANTES、TNF−アルファおよびVEGF。
形質導入効率:
1.2人の健常ドナー由来のT細胞を、レトロウイルスで形質導入し、48時間後、CD3+CD19+同時発現についてフローサイトメトリーによって測定された効率は、以下のとおりだった:
a.ドナー063
i.NT=6.54%
ii.RV−171=73.9%
iii.RV−172=54.6%
b.ドナー707
i.NT=2.16%
ii.RV−171=85.2%
iii.RV−172=73.6% 。
3.サイトカインおよびケモカインの分泌の解析から、AP1903二量体化に対する顕著な依存性が示された。T細胞によって産生された以下のサイトカインおよびケモカインは、24時間にわたって誘導を示したが、コントロールベクターで形質導入されたT細胞または形質導入されていないT細胞からは誘導されなかった:
a.GM−CSF、IFN−ガンマ、IL−13、IL−4、IL−5、IL−6、IL−8、IL−1ベータ、IL−12p70、IP10、MIP−1アルファ、MIP−1ベータ、RANTESおよびTNF−アルファ 。
a.塩基性FGF、G−CSF、IL−1Ra、IL−2、IL−7、IL−9、IL−10、IL−15、IL−17RA、エオタキシン、MCP−1、PDGF−bbおよびVEGF。
RV0171=SFG−Myr.Fv’.Fv.2A.ΔCD19;RV0172=SFG=Myr.MyD88/CD40.Fv’.Fv.2A.ΔCD19。
目的:2つのFKBPv36分子に連結されたシグナル伝達分子をコードするレトロウイルスベクターで初代T細胞を形質導入することにより、そのT細胞のAP1903活性化を可能にすること。この実験では、AP1903活性化の2つの態様を調べた。第1に、T細胞が、腫瘍細胞の近位に存在する場合、それらの活性化によって腫瘍細胞の殺傷が誘導されるのか?第2に、T細胞が、AP1903を介して活性化される場合、それらは増殖するのか?
方法:
誘導可能なT細胞分子のデザインおよびクローニングならびにレトロウイルスの産生
1.方法は、上記の実施例4において論じられた方法と本質的に同じである。同じ細胞をこのアッセイのために使用した。
2.CAPAN−1をATCCから購入した。続いて、EGFP/ホタルルシフェラーゼ融合タンパク質に対する遺伝子、ならびに安定にトランスフェクトされた細胞が、G418抗生物質とともに培養することによって長い時間にわたって選択されるのを可能にするネオマイシン耐性遺伝子を含むpBP0168−pcDNA3.1−EGFPlucプラスミドによるトランスフェクションによって、その細胞株を遺伝子改変した。培養後、高いGFP発現を有するクローンを選択し、>95%GFPを有する細胞株が得られるまで継代培養した。
3.形質導入されていないT細胞またはRV−171(コントロールベクター)もしくはRV−172(iMCベクター)で形質導入された細胞を、10nM AP1903ありまたはなしで50U/ml IL−2が補充された培地中においてT細胞と腫瘍細胞とが5:1の比で培養した。次いで、共培養物を37℃および5%CO2において72時間インキュベートした。続いて、蛍光顕微鏡法によって、および0.25%トリプシン/EDTAを用いて培養物を収集し、培養物中のGFP+CD3−腫瘍細胞の頻度をフローサイトメトリーによって計測することによって、GFP+腫瘍細胞の存在について培養物を解析した。
4.共培養物のウェルを調べたところ、両方のドナーにおいて、AP1903で刺激されたRV−172(iMC含有ベクター)で形質導入されたT細胞は、大きなT細胞芽球コロニーによって明らかであるように、増殖していることが明らかだった。さらに、蛍光顕微鏡法によって、AP1903を投与されたRV−172を形質導入されたT細胞を含む共培養物は、非常に少ない生存可能なGFP+腫瘍細胞しか示さなかった。これらの最初の観察の後、T細胞および腫瘍細胞を収集し、フローサイトメトリーによって解析することにより、残存しているCAPAN−1 GFP+腫瘍細胞の頻度を測定した。
ヒトを治療するために、改変されたT細胞を使用する方法が、この実施例に提示される。この実施例では、共刺激ポリペプチドの細胞質領域は、CD40およびMyD88に由来する。これらの方法は、他の細胞、例えば、NKおよびNKT細胞、ならびに腫瘍浸潤リンパ球に対して適合され得、本明細書中で論じられるような他の共刺激ポリペプチド細胞質領域を含む誘導可能なCSMに対しても適合され得る。
遺伝子改変されたT細胞の大規模産生
T細胞は、標準的な方法を用いて健常志願者から作製される。簡潔には、健常ドナーまたは癌患者由来の末梢血単核球(PBMC)を、可溶性αCD3およびαCD28(Miltenyi Biotec,Auburn,CA)を使用して、拡大および形質導入のために活性化する。PBMCを、100U/ml IL−2(Cellgenix)が補充されたCellgenix DC培地に、1×106細胞/mlで再懸濁し、0.2μg/ml αCD3および0.5μg/ml αCD28可溶性抗体で刺激する。次いで、細胞を37℃、5%CO2において4日間培養する。4日目に、IL−2を含む1mlの新鮮培地を加える。7日目に、形質導入に向けて、細胞を収集し、Cellgenix DC培地に再懸濁する。
SFGプラスミドは、切断可能な2A様配列を介して切断型ヒトCD19に連結された誘導可能なCSMからなる。その誘導可能なCSMは、F36V変異を有し、Ser−Gly−Gly−Gly−Serリンカーを介してヒトCSMに接続された、ヒトFK506結合タンパク質(FKBP12;GenBank AH002818)からなる。そのF36V変異は、合成ホモ二量体化剤AP20187またはAP1903に対するFKBP12の結合親和性を高める。その2A様配列は、Thosea asigna昆虫ウイルス由来の20アミノ酸ペプチドをコードし、それは、グリシンと末端プロリン残基との間での>99%の切断を媒介して、誘導可能なCSMのC末端に19個の追加のアミノ酸およびCD19のN末端に1つの追加のプロリン残基をもたらす。CD19は、細胞質内ドメインを242アミノ酸から19アミノ酸に短縮し、リン酸化に対する潜在的な部位である保存されたすべてのチロシン残基を除去する、アミノ酸333(TDPTRRF)で切断される、完全長CD19(GenBank NM001770)からなる。
T細胞の活性化および拡大のための培養液は、100U/ml IL−2(Cellgenix)が補充された無血清Cellgenix DC培地(Cellgenix)である。レトロウイルスベクターで形質導入する前の7日間にわたって、T細胞を可溶性抗CD3および抗CD28(Miltenyi Biotec)によって活性化する。必要であれば、ΔCD19の免疫磁気選択を形質導入後の4日目に行い;陽性画分をさらに2日間にわたって拡大し、凍結保存する。
臨床適用のための形質導入プロセスのスケールアップでは、10mlの抗CD3 0.5μg/mlおよび抗CD28 0.2μg/mlまたは10mlのフィブロネクチン7μg/mlで4℃において一晩コーティングされた、組織培養用に処理されていないT75フラスコ(Nunc,Rochester,NY)を使用する。高細胞粘着性のためにコロナ処理されたフッ化エチレンプロピレンバッグ(2PF−0072AC,American Fluoroseal Corporation,Gaithersburg,MD)も使用する。PBMCを、抗CD3、抗CD28によってコーティングされたフラスコに、100U/ml IL−2が補充された培地中、1×106細胞/mlで播種する。レトロウイルス形質導入に向けて、レトロネクチンでコーティングされたフラスコまたはバッグを、10mlのレトロウイルス含有上清で2〜3時間、一度負荷する。活性化T細胞を、レトロウイルスベクター含有新鮮培地と100U/ml IL−2が補充されたT細胞培養液とが3:1の中に1×106細胞/mlで播種する。細胞を、翌朝収集し、組織培養用に処理されたT75またはT175フラスコ内、100U/ml IL−2が補充された培養液中で、約5×105細胞/ml〜8×105細胞/mlの播種密度で拡大する。
必要であれば、CD19に対する免疫磁気選択を、形質導入の4日後に行う。細胞を、モノクローナルマウス抗ヒトCD19抗体(Miltenyi Biotech,Auburn,CA)に結合体化された常磁性マイクロビーズで標識し、小規模実験ではMSまたはLSカラムにおいて、および大規模実験ではCliniMacs Plus自動選択デバイスにおいて、選択する。CD19によって選択された細胞を、さらに4日間拡大し、形質導入後の8日目に凍結保存する。これらの細胞は、「遺伝子改変細胞」と称される。
本願の方法を使用して、進行した治療抵抗性白血病を有する白血病患者を処置する本実施例は、他の状態または疾患、例えば、他の過剰増殖性疾患または固形腫瘍にも適用され得る。これらの方法は、標的抗原に応じて一本鎖可変フラグメントが変化し得るという理解の下で、本質的には論じられるように使用され得る。
目的:2つのFKBPv36分子に連結されたシグナル伝達分子をコードするレトロウイルスベクターで初代T細胞を形質導入することにより、そのT細胞のAP1903活性化を可能にすること。この実験は、切断型MyD88およびCD40ポリペプチドを含む誘導可能な共刺激分子が、CAPAN−1腫瘍細胞上に高度に発現される前立腺幹細胞抗原(PSCA)を認識するCARで形質導入されたT細胞によるGFP改変CAPAN−1(膵臓腺癌)細胞の殺傷を改善するかを調べるためにデザインされる。
誘導可能なT細胞分子のデザインおよびクローニング:
1.T細胞の形質導入は、RV−172(SFG−Myr.MyD88/CD40.Fv.Fv’.2A.ΔCD19)およびRV−89(SFG.PSCAscFv.CH2CH3.CD28.ゼータ)を用いて行う。そのscFvは、ヒト化モノクローナル抗体1G8(US2012077962A1におけるヒト化抗PSCAから得られる)由来のscFvを使用してPSCAを標的化する。これは、ヒトIgG1のCH2CH3領域に連結され、それは続いて、その分子の膜貫通部分と細胞質部分の両方を含むCD28に連結される。CD28は、CD3ゼータの細胞質部分に連結される。
2.本質的には、前の実施例と同じである。
3.CAPAN−1をATCCから購入する。続いて、EGFP/ホタルルルシフェリン融合タンパク質に対する遺伝子、ならびに安定にトランスフェクトされた細胞が、G418抗生物質とともに培養することによって長い時間にわたって選択されるのを可能にするネオマイシン耐性遺伝子を含むpBP0168−pcDNA3.1−EGFPlucによるトランスフェクションによって、その細胞株を遺伝子改変する。培養後、高いGFP発現を有するクローンを選択し、>95%GFPを有する細胞株が得られるまで継代培養する。
4.形質導入されていないT細胞またはRV−89(PSCA CAR)およびRV−172(iMCベクター)で同時形質導入された細胞を、10nM AP1903ありまたはなしで50U/ml IL−2が補充された培地中においてT細胞と腫瘍細胞とが5:1の比で培養する。次いで、共培養物を37℃および5%CO2において72時間インキュベートする。続いて、蛍光顕微鏡法によって、および0.25%トリプシン/EDTAを用いて培養物を回収し、培養物中のGFP+CD3−腫瘍細胞の頻度をフローサイトメトリーによって計測することによって、GFP+腫瘍細胞の存在について培養物を解析する。
1.培養物を蛍光顕微鏡法によって調べることにより、誘導可能な共刺激分子およびキメラ抗原レセプターを形質導入されたT細胞を含むウェルおよびAP1903を投与されたウェルにおける腫瘍細胞殺傷の改善を評価する。
以下の配列は、誘導可能なキメラシグナル伝達分子(CSM)配列のために使用されたヌクレオチド配列およびアミノ酸配列の例を順番に提供する。
配列番号1、ミリストイル化(Myristolation)nt
ATGGGGAGTAGCAAGAGCAAGCCTAAGGACCCCAGCCAGCGC
配列番号2、ミリストイル化 aa
MGSSKSKPKDPSQR
配列番号3、リンカー配列(MyrとFv1との間)nt
CTCGAGTCTGGCGGTGGATCCGGAG
配列番号4、リンカー配列(MyrとFv1との間)aa
LESGGGSG
配列番号5、FKBPv36(Fv1)nt
GGCGTTCAAGTAGAAACAATCAGCCCAGGAGACGGAAGGACTTTCCCCAAACGAGGCCAAACATGCGTAGTTCATTATACTGGGATGCTCGAAGATGGAAAAAAAGTAGATAGTAGTAGAGACCGAAACAAACCATTTAAATTTATGTTGGGAAAACAAGAAGTAATAAGGGGCTGGGAAGAAGGTGTAGCACAAATGTCTGTTGGCCAGCGCGCAAAACTCACAATTTCTCCTGATTATGCTTACGGAGCTACCGGCCACCCCGGCATCATACCCCCTCATGCCACACTGGTGTTTGACGTCGAATTGCTCAAACTGGAA
配列番号6、FKBPv36(Fv1)aa
GVQVETISPGDGRTFPKRGQTCVVHYTGMLEDGKKVDSSRDRNKPFKFMLGKQEVIRGWEEGVAQMSVGQRAKLTISPDYAYGATGHPGIIPPHATLVFDVELLKLE
配列番号7、リンカー配列(Fv1とFv2との間)nt
GTCGAG
配列番号8、リンカー配列(Fv1とFv2との間)aa
VE
配列番号9、FKBPv36(Fv2)nt
GGAGTGCAGGTGGAGACGATTAGTCCTGGGGATGGGAGAACCTTTCCAAAGCGCGGTCAGACCTGTGTTGTCCACTACACCGGTATGCTGGAGGACGGGAAGAAGGTGGACTCTTCACGCGATCGCAATAAGCCTTTCAAGTTCATGCTCGGCAAGCAGGAGGTGATCCGGGGGTGGGAGGAGGGCGTGGCTCAGATGTCGGTCGGGCAACGAGCGAAGCTTACCATCTCACCCGACTACGCGTATGGGGCAACGGGGCATCCGGGAATTATCCCTCCCCACGCTACGCTCGTATTCGATGTGGAGCTCTTGAAGCTTGAG
配列番号10、FKBPv36(Fv2)aa
GVQVETISPGDGRTFPKRGQTCVVHYTGMLEDGKKVDSSRDRNKPFKFMLGKQEVIRGWEEGVAQMSVGQRAKLTISPDYAYGATGHPGIIPPHATLVFDVELLKLE
配列番号11、リンカー配列(Fv2とCD28との間)nt
TCTGGCGGTGGATCCGGAGTCGAG
配列番号12、リンカー配列(MyrとCD28との間)aa
SGGGSGVE
配列番号13、CD28 nt
TTCTGGGTACTGGTTGTAGTCGGTGGCGTACTTGCTTGTTATTCTCTTCTTGTTACCGTAGCCTTCATTATATTCTGGGTCCGATCAAAGCGCTCAAGACTCCTCCATTCCGATTATATGAACATGACACCTCGCCGACCTGGTCCTACACGCAAACATTATCAACCCTACGCACCCCCCCGAGACTTCGCTGCTTATCGATCC
配列番号14、CD28 aa
FWVLVVVGGVLACYSLLVTVAFIIFWVRSKRSRLLHSDYMNMTPRRPGPTRKHYQPYAPPRDFAAYRS
配列番号15、リンカー配列(CD28と4−1BBとの間)nt
GGATCC
配列番号16、リンカー配列(CD28と4−1BBとの間)aa
GS
配列番号17、4−1BB nt
AGTGTAGTTAAAAGAGGAAGAAAAAAGTTGCTGTATATATTTAAACAACCATTTATGAGACCAGTGCAAACCACCCAAGAAGAAGACGGATGTTCATGCAGATTCCCAGAAGAAGAAGAAGGAGGATGTGAATTG
配列番号18、4−1BB aa
SVVKRGRKKLLYIFKQPFMRPVQTTQEEDGCSCRFPEEEEGGCEL
配列番号19、リンカー配列(4−1BBとCD3ゼータとの間)nt
ACGCGT
配列番号20、リンカー配列(4−1BBとCD3ゼータとの間)aa
TR
配列番号21、CD3ゼータ nt
CGGGTCAAATTCAGCCGGAGTGCTGACGCCCCAGCATACCAACAGGGACAAAACCAACTCTACAACGAGCTCAACCTGGGTAGACGCGAGGAGTACGACGTTCTGGATAAGAGGCGGGGCCGGGACCCAGAGATGGGGGGCAAACCTCAGCGGCGGAAGAACCCGCAGGAGGGTCTTTATAACGAGCTCCAGAAGGACAAGATGGCGGAAGCCTATTCAGAAATTGGGATGAAAGGCGAGAGACGCAGGGGAAAAGGTCACGATGGTCTGTATCAAGGACTGTCAACCGCCACCAAAGACACTTACGATGCGCTCCACATGCAGGCCCTCCCTCCCCGC
配列番号22、CD3ゼータ aa
RVKFSRSADAPAYQQGQNQLYNELNLGRREEYDVLDKRRGRDPEMGGKPQRRKNPQEGLYNELQKDKMAEAYSEIGMKGERRRGKGHDGLYQGLSTATKDTYDALHMQALPPR
配列番号23、リンカー配列(CD3ゼータとフューリンとの間)nt
GTCGAC
配列番号24、リンカー配列(CD3ゼータとフューリンとの間)aa
VD
配列番号25、フューリン nt
CGCGCAAAGCGT
配列番号26、フューリン aa
RAKR
配列番号27、V5エピトープタグ nt
GGAAAACCTATACCTAATCCATTGCTGGGCTTAGACTCAACA
配列番号28、V5エピトープタグ aa
GKPIPNPLLGLDST
配列番号29、リンカー配列(V5とP2Aとの間)nt
GGCAGCGGAAGC
配列番号30、リンカー配列(V5とP2Aとの間)aa
GSGS
配列番号31、ブタテッショウウイルス−1 2A(P2A)nt
GCAACGAATTTTTCCCTGCTGAAACAGGCAGGGGACGTAGAGGAAAATCCTGGTCCT
配列番号32、ブタテッショウウイルス−1 2A(P2A)aa
ATNFSLLKQAGDVEENPGP
配列番号33、リンカー配列(P2AとΔCD19との間)nt
ACGCGT
配列番号34、リンカー配列(P2AとΔCD19との間)aa
TR
配列番号35、ΔCD19 nt
ATGCCCCCTCCTAGACTGCTGTTTTTCCTGCTCTTTCTCACCCCAATGGAAGTTAGACCTGAGGAACCACTGGTCGTTAAAGTGGAAGAAGGTGATAATGCTGTCCTCCAATGCCTTAAAGGGACCAGCGACGGACCAACGCAGCAACTGACTTGGAGCCGGGAGTCCCCTCTCAAGCCGTTTCTCAAGCTGTCACTTGGCCTGCCAGGTCTTGGTATTCACATGCGCCCCCTTGCCATTTGGCTCTTCATATTCAATGTGTCTCAACAAATGGGTGGATTCTACCTTTGCCAGCCCGGCCCCCCTTCTGAGAAAGCTTGGCAGCCTGGATGGACCGTCAATGTTGAAGGCTCCGGTGAGCTGTTTAGATGGAATGTGAGCGACCTTGGCGGACTCGGTTGCGGACTGAAAAATAGGAGCTCTGAAGGACCCTCTTCTCCCTCCGGTAAGTTGATGTCACCTAAGCTGTACGTGTGGGCCAAGGACCGCCCCGAAATCTGGGAGGGCGAGCCTCCATGCCTGCCGCCTCGCGATTCACTGAACCAGTCTCTGTCCCAGGATCTCACTATGGCGCCCGGATCTACTCTTTGGCTGTCTTGCGGCGTTCCCCCAGATAGCGTGTCAAGAGGACCTCTGAGCTGGACCCACGTACACCCTAAGGGCCCTAAGAGCTTGTTGAGCCTGGAACTGAAGGACGACAGACCCGCACGCGATATGTGGGTAATGGAGACCGGCCTTCTGCTCCCTCGCGCTACCGCACAGGATGCAGGGAAATACTACTGTCATAGAGGGAATCTGACTATGAGCTTTCATCTCGAAATTACAGCACGGCCCGTTCTTTGGCATTGGCTCCTCCGGACTGGAGGCTGGAAGGTGTCTGCCGTAACACTCGCTTACTTGATTTTTTGCCTGTGTAGCCTGGTTGGGATCCTGCATCTTCAGCGAGCCCTTGTATTGCGCCGAAAAAGAAAACGAATGACTGACCCTACACGACGATTCTGA
配列番号36、ΔCD19 aa
MPPPRLLFFLLFLTPMEVRPEEPLVVKVEEGDNAVLQCLKGTSDGPTQQLTWSRESPLKPFLKLSLGLPGLGIHMRPLAIWLFIFNVSQQMGGFYLCQPGPPSEKAWQPGWTVNVEGSGELFRWNVSDLGGLGCGLKNRSSEGPSSPSGKLMSPKLYVWAKDRPEIWEGEPPCLPPRDSLNQSLSQDLTMAPGSTLWLSCGVPPDSVSRGPLSWTHVHPKGPKSLLSLELKDDRPARDMWVMETGLLLPRATAQDAGKYYCHRGNLTMSFHLEITARPVLWHWLLRTGGWKVSAVTLAYLIFCLCSLVGILHLQRALVLRRKRKRMTDPTRRF
以下は、キメラ抗原レセプター(CAR)配列のためのヌクレオチド配列およびアミノ酸配列の例である(順番に、scFvフラグメントなしで)
配列番号37、シグナルペプチド nt
ATGGAGTTTGGGCTGTCATGGCTGTTCCTCGTGGCCATTCTCAAAGGGGTCCAGTGTTCTCGC
配列番号38、シグナルペプチド aa
MGFGLSWLFLVAILKGVQCSR
配列番号39、可動性リンカー配列 nt
GGGGGAGGAGGTTCTGGAGGCGGCGGGAGCGGAGGAGGAGGCAGC
配列番号40、可動性リンカー配列 aa
GGGGSGGGGSGGGGS
配列番号41、リンカー配列(scFvとCH2CH3との間)nt
GGATCC
配列番号42、リンカー配列(scFvとCH2CH3との間)aa
GS
配列番号43、IgG1 Ch2Ch3 nt
GATCCAGCCGAACCCAAATCCCCCGATAAAACACATACTTGCCCCCCTTGTCCCGCACCAGAATTGCTTGGCGGACCTTCCGTTTTTCTTTTTCCCCCCAAACCTAAAGATACCCTGATGATTTCCCGAACCCCTGAAGTTACGTGCGTAGTCGTAGATGTGTCTCACGAAGATCCAGAAGTAAAATTTAACTGGTACGTAGATGGAGTCGAAGTTCACAACGCAAAGACGAAGCCCCGAGAAGAACAATATAATTCCACATACCGAGTAGTTAGCGTTCTCACCGTACTGCATCAGGACTGGCTTAACGGCAAAGAATATAAATGTAAGGTCTCAAACAAAGCACTCCCAGCCCCTATCGAAAAGACTATCTCCAAAGCTAAAGGACAACCCCGCGAACCCCAGGTCTATACACTTCCCCCCTCACGCGATGAACTCACTAAAAATCAGGTTTCCCTTACTTGTCTTGTCAAAGGCTTCTACCCTAGCGATATCGCAGTCGAATGGGAATCCAATGGCCAGCCCGAAAACAACTATAAAACAACCCCACCTGTCCTCGATTCAGATGGCTCATTCTTTCTCTATTCCAAACTGACTGTAGACAAATCCCGATGGCAACAAGGTAACGTGTTCTCTTGCTCAGTCATGCATGAAGCGCTTCATAACCATTACACACAAAAATCTCTCTCACTGTCTCCCGGAAAGAAGGACCCC
配列番号44、IgG1 CH2CH3 aa
DPAEPKSPDKTHTCPPCPAPELLGGPSVFLFPPKPKDTLMISRTPEVTCVVVDVSHEDPEVKFNWYVDGVEVHNAKTKPREEQYNSTYRVVSVLTVLHQDWLNGKEYKCKVSNKALPAPIEKTISKAKGQPREPQVYTLPPSRDELTKNQVSLTCLVKGFYPSDIAVEWESNGQPENNYKTTPPVLDSDGSFFLYSKLTVDKSRWQQGNVFSCSVMHEALHNHYTQKSLSLSPGKKDP
配列番号45、リンカー配列(scFvとCH2CH3との間)nt
CTCGAG
配列番号46、リンカー配列(scFvとCH2CH3との間)aa
LE
配列番号47、CD3ゼータ膜貫通 nt
AAACTGTGTTACCTCCTCGATGGCATCCTCTTTATTTATGGCGTGATTCTGACCGCATTGTTTCTCCGAGTAAAATTCTCTAGATCCGCAGACGCTCCCGCATATCAGCAAGGACAAAATCAGCTTTATAACGAACTTAACCTCGGCAGACGCGAAGAATACGATGTACTGGACAAGAGAAGAGGAAGAGATCCCGAAATGGGCGGAAAACCCCAGAGAAGAAAGAATCCCCAAGAAGGTCTTTATAACGAACTGCAGAAAGATAAAATGGCCGAAGCGTACAGTGAAATTGGTATGAAAGGAGAAAGAAGACGCGGAAAAGGACATGACGGACTCTACCAAGGACTCTCAACTGCTACTAAAGATACATACGACGCCCTTCATATGCAAGCCCTCCCCCCGAGATAA
配列番号48、CD3ゼータ膜貫通 aa
KLCYLLDGILFIYGVILTALFLRVKFSRSADAPAYQQGQNQLYNELNLGRREEYDVLDKRRGRDPEMGGKPQRRKNPQEGLYNELQKDKMAEAYSEIGMKGERRRGKGHDGLYQGLSTATKDTYDALHMQALPPR
さらなるキメラシグナル伝達分子の配列
配列番号49、OX40 nt
GTTGCCGCCATCCTGGGCCTGGGCCTGGTGCTGGGGCTGCTGGGCCCCCTGGCCATCCTGCTGGCCCTGTACCTGCTCCGGGACCAGAGGCTGCCCCCCGATGCCCACAAGCCCCCTGGGGGAGGCAGTTTCCGGACCCCCATCCAAGAGGAGCAGGCCGACGCCCACTCCACCCTGGCCAAGATC
配列番号50、OX40 aa
VAAILGLGLVLGLLGPLAILLALYLLRRDQRLPPDAHKPPGGGSFRTPIQEEQADAHSTLAKI
配列番号51、5‘LTR配列の配列番号22ヌクレオチド配列
TGAAAGACCCCACCTGTAGGTTTGGCAAGCTAGCTTAAGTAACGCCATTTTGCAAGGCATGGAAAAATACATAACTGAGAATAGAAAAGTTCAGATCAAGGTCAGGAACAGATGGAACAGCTGAATATGGGCCAAACAGGATATCTGTGGTAAGCAGTTCCTGCCCCGGCTCAGGGCCAAGAACAGATGGAACAGCTGAATATGGGCCAAACAGGATATCTGTGGTAAGCAGTTCCTGCCCCGGCTCAGGGCCAAGAACAGATGGTCCCCAGATGCGGTCCAGCCCTCAGCAGTTTCTAGAGAACCATCAGATGTTTCCAGGGTGCCCCAAGGACCTGAAATGACCCTGTGCCTTATTTGAACTAACCAATCAGTTCGCTTCTCGCTTCTGTTCGCGCGCTTATGCTCCCCGAGCTCAATAAAAGAGCCCACAACCCCTCACTCGGGGCGCCAGTCCTCCGATTGACTGAGTCGCCCGGGTACCCGTGTATCCAATAAACCCTCTTGCAGTTGCATCCGACTTGTGGTCTCGCTGTTCCTTGGGAGGGTCTCCTCTGAGTGATTGACTACCCGTCAGCGGGGGTCTTTCA
さらなる配列
配列番号52 キャプシドタンパク質前駆体ヌクレオチド配列からのThosea asignaウイルス−2A
GCCGAGGGCAGGGGAAGTCTTCTAACATGCGGGGACGTGGAGGAAAATCCCGGGCCC
配列番号53、キャプシドタンパク質前駆体アミノ酸配列からのThosea asignaウイルス−2A
AEGRGSLLTCGDVEENPGP
配列番号54、3’LTRヌクレオチド配列
TGAAAGACCCCACCTGTAGGTTTGGCAAGCTAGCTTAAGTAACGCCATTTTGCAAGGCATGGAAAAATACATAACTGAGAATAGAGAAGTTCAGATCAAGGTCAGGAACAGATGGAACAGCTGAATATGGGCCAAACAGGATATCTGTGGTAAGCAGTTCCTGCCCCGGCTCAGGGCCAAGAACAGATGGAACAGCTGAATATGGGCCAAACAGGATATCTGTGGTAAGCAGTTCCTGCCCCGGCTCAGGGCCAAGAACAGATGGTCCCCAGATGCGGTCCAGCCCTCAGCAGTTTCTAGAGAACCATCAGATGTTTCCAGGGTGCCCCAAGGACCTGAAATGACCCTGTGCCTTATTTGAACTAACCAATCAGTTCGCTTCTCGCTTCTGTTCGCGCGCTTCTGCTCCCCGAGCTCAATAAAAGAGCCCACAACCCCTCACTCGGGGCGCCAGTCCTCCGATTGACTGAGTCGCCCGGGTACCCGTGTATCCAATAAACCCTCTTGCAGTTGCATCCGACTTGTGGTCTCGCTGTTCCTTGGGAGGGTCTCCTCTGAGTGATTGACTACCCGTCAGCGGGGGTCTTTCA
配列番号55、(XhoI/SalI部位を有するリンカー−Fv1−Fv2−リンカーのヌクレオチド配列(Fv2の中の小文字はゆらいだコドン))
CTCGAGTCTGGCGGTGGATCCGGAGGCGTTCAAGTAGAAACAATCAGCCCAGGAGACGGAAGGACTTTCCCCAAACGAGGCCAAACATGCGTAGTTCATTATACTGGGATGCTCGAAGATGGAAAAAAAGTAGATAGTAGTAGAGACCGAAACAAACCATTTAAATTTATGTTGGGAAAACAAGAAGTAATAAGGGGCTGGGAAGAAGGTGTAGCACAAATGTCTGTTGGCCAGCGCGCAAAACTCACAATTTCTCCTGATTATGCTTACGGAGCTACCGGCCACCCCGGCATCATACCCCCTCATGCCACACTGGTGTTTGACGTCGAATTGCTCAAACTGGAAGTCGAGGGaGTgCAgGTgGAgACgATtAGtCCtGGgGAtGGgAGaACcTTtCCaAAgCGcGGtCAgACcTGtGTtGTcCAcTAcACcGGtATGCTgGAgGAcGGgAAgAAgGTgGActcTtcacGcGAtCGcAAtAAgCCtTTcAAgTTcATGcTcGGcAAgCAgGAgGTgATccGGGGgTGGGAgGAgGGcGTgGCtCAgATGTCgGTcGGgCAaCGaGCgAAgCTtACcATcTCaCCcGAcTAcGCgTAtGGgGCaACgGGgCAtCCgGGaATtATcCCtCCcCAcGCtACgCTcGTaTTcGAtGTgGAgcTcttgAAgCTtGagTCTGGCGGTGGATCCGGAGTCGAC
配列番号56、(FV’FVLSアミノ酸配列)
LESGGGSGGVQVETISPGDGRTFPKRGQTCVVHYTGMLEDGKKVDSSRDRNKPFKFMLGKQEVIRGWEEGVAQMSVGQRAKLTISPDYAYGATGHPGIIPPHATLVFDVELLKLEVEGVQVETISPGDGRTFPKRGQTCVVHYTGMLEDGKKVDSSRDRNKPFKFMLGKQEVIRGWEEGVAQMSVGQRAKLTISPDYAYGATGHPGIIPPHATLVFDVELLKLESGGGSGVD
配列番号57、FKBPv36(Fv1)ヌクレオチド配列
GGCGTTCAAGTAGAAACAATCAGCCCAGGAGACGGAAGGACTTTCCCCAAACGAGGCCAAACATGCGTAGTTCATTATACTGGGATGCTCGAAGATGGAAAAAAAGTAGATAGTAGTAGAGACCGAAACAAACCATTTAAATTTATGTTGGGAAAACAAGAAGTAATAAGGGGCTGGGAAGAAGGTGTAGCACAAATGTCTGTTGGCCAGCGCGCAAAACTCACAATTTCTCCTGATTATGCTTACGGAGCTACCGGCCACCCCGGCATCATACCCCCTCATGCCACACTGGTGTTTGACGTCGAATTGCTCAAACTGGAA
配列番号58、FKBPv36(Fv1)アミノ酸配列
GVQVETISPGDGRTFPKRGQTCVVHYTGMLEDGKKVDSSRDRNKPFKFMLGKQEVIRGWEEGVAQMSVGQRAKLTISPDYAYGATGHPGIIPPHATLVFDVELLKLE
配列番号59、FKBPv36(Fv2)ヌクレオチド配列
GGaGTgCAgGTgGAgACgATtAGtCCtGGgGAtGGgAGaACcTTtCCaAAgCGcGGtCAgACcTGtGTtGTcCAcTAcACcGGtATGCTgGAgGAcGGgAAgAAgGTgGActcTtcacGcGAtCGcAAtAAgCCtTTcAAgTTcATGcTcGGcAAgCAgGAgGTgATccGGGGgTGGGAgGAgGGcGTgGCtCAgATGTCgGTcGGgCAaCGaGCgAAgCTtACcATcTCaCCcGAcTAcGCgTAtGGgGCaACgGGgCAtCCgGGaATtATcCCtCCcCAcGCtACgCTcGTaTTcGAtGTgGAgcTcttgAAgCTtGag
配列番号60、FKBPv36(Fv2)アミノ酸配列
GVQVETISPGDGRTFPKRGQTCVVHYTGMLEDGKKVDSSRDRNKPFKFMLGKQEVIRGWEEGVAQMSVGQRAKLTISPDYAYGATGHPGIIPPHATLVFDVELLKLE
誘導可能なMyD88/CD40キメラポリペプチドに対するさらなる配列
配列番号81、ミリストイル化ポリペプチドのヌクレオチド配列
ATGGGGAGTAGCAAGAGCAAGCCTAAGGACCCCAGCCAGCGC
配列番号82、ミリストイル化ポリペプチドのアミノ酸配列
MGSSKSKPKDPSQR
配列番号83、リンカーヌクレオチド配列(リンカー1)
CTCGAG
配列番号84、リンカーアミノ酸配列(リンカー1)
LE
配列番号85、切断型MyD88ポリペプチドのヌクレオチド配列
ATGGCCGCTGGGGGCCCAGGCGCCGGATCAGCTGCTCCCGTATCTTCTACTTCTTCTTTGCCGCTGGCTGCTCTGAACATGCGCGTGAGAAGACGCCTCTCCCTGTTCCTTAACGTTCGCACACAAGTCGCTGCCGATTGGACCGCCCTTGCCGAAGAAATGGACTTTGAATACCTGGAAATTAGACAACTTGAAACACAGGCCGACCCCACTGGCAGACTCCTGGACGCATGGCAGGGAAGACCTGGTGCAAGCGTTGGACGGCTCCTGGATCTCCTGACAAAACTGGGACGCGACGACGTACTGCTTGAACTCGGACCTAGCATTGAAGAAGACTGCCAAAAATATATCCTGAAACAACAACAAGAAGAAGCCGAAAAACCTCTCCAAGTCGCAGCAGTGGACTCATCAGTACCCCGAACAGCTGAGCTTGCTGGGATTACTACACTCGACGACCCACTCGGACATATGCCTGAAAGATTCGACGCTTTCATTTGCTATTGCCCCTCTGACATA
配列番号86、切断型MyD88ポリペプチドのアミノ酸配列
MAAGGPGAGSAAPVSSTSSLPLAALNMRVRRRLSLFLNVRTQVAADWTALAEEMDFEYLEIRQLETQADPTGRLLDAWQGRPGASVGRLLDLLTKLGRDDVLLELGPSIEEDCQKYILKQQQEEAEKPLQVAAVDSSVPRTAELAGITTLDDPLGHMPERFDAFICYCPSDI
配列番号87、ΔCD40ポリペプチドのヌクレオチド配列
AAGAAAGTTGCAAAGAAACCCACAAATAAAGCCCCACACCCTAAACAGGAACCCCAAGAAATCAATTTCCCAGATGATCTCCCTGGATCTAATACTGCCGCCCCGGTCCAAGAAACCCTGCATGGTTGCCAGCCTGTCACCCAAGAGGACGGAAAAGAATCACGGATTAGCGTACAAGAGAGACAA
配列番号88、ΔCD40ポリペプチドのアミノ酸配列
KKVAKKPTNKAPHPKQEPQEINFPDDLPGSNTAAPVQETLHGCQPVTQEDGKESRISVQERQ
配列番号89、リンカーヌクレオチド配列(リンカー2)
GTCGAGTCTGGCGGTGGATCCGGA
配列番号90、リンカーアミノ酸配列(リンカー2)
VESGGGSG
配列番号91、FKBPv36(Fv1)ヌクレオチド配列
GGCGTTCAAGTAGAAACAATCAGCCCAGGAGACGGAAGGACTTTCCCCAAACGAGGCCAAACATGCGTAGTTCATTATACTGGGATGCTCGAAGATGGAAAAAAAGTAGATAGTAGTAGAGACCGAAACAAACCATTTAAATTTATGTTGGGAAAACAAGAAGTAATAAGGGGCTGGGAAGAAGGTGTAGCACAAATGTCTGTTGGCCAGCGCGCAAAACTCACAATTTCTCCTGATTATGCTTACGGAGCTACCGGCCACCCCGGCATCATACCCCCTCATGCCACACTGGTGTTTGACGTCGAATTGCTCAAACTGGAA
配列番号92、FKBPv36(Fv1)アミノ酸配列
GVQVETISPGDGRTFPKRGQTCVVHYTGMLEDGKKVDSSRDRNKPFKFMLGKQEVIRGWEEGVAQMSVGQRAKLTISPDYAYGATGHPGIIPPHATLVFDVELLKLE
配列番号93、リンカーヌクレオチド配列(リンカー3)
GTCGAG
配列番号94、リンカーアミノ酸配列(リンカー3)
VE
配列番号95、FKBPv36(Fv2)ヌクレオチド配列
GGaGTgCAgGTgGAgACgATtAGtCCtGGgGAtGGgAGaACcTTtCCaAAgCGcGGtCAgACcTGtGTtGTcCAcTAcACcGGtATGCTgGAgGAcGGgAAgAAgGTgGActcTtcacGcGAtCGcAAtAAgCCtTTcAAgTTcATGcTcGGcAAgCAgGAgGTgATccGGGGgTGGGAgGAgGGcGTgGCtCAgATGTCgGTcGGgCAaCGaGCgAAgCTtACcATcTCaCCcGAcTAcGCgTAtGGgGCaACgGGgCAtCCgGGaATtATcCCtCCcCAcGCtACgCTcGTaTTcGAtGTgGAgcTcttgAAgCTtGag
配列番号95、FKBPv36(Fv2)アミノ酸配列
GVQVETISPGDGRTFPKRGQTCVVHYTGMLEDGKKVDSSRDRNKPFKFMLGKQEVIRGWEEGVAQMSVGQRAKLTISPDYAYGATGHPGIIPPHATLVFDVELLKLE
配列番号96、リンカーヌクレオチド配列(リンカー4)
TCTGGCGGTGGATCCGGAGTCGAC
配列番号97、リンカーアミノ酸配列(リンカー4)
SGGGSGVD
配列番号98、フューリンプロテアーゼコンセンサス切断部位のヌクレオチド配列
CGCGCAAAGCGT
配列番号99、フューリンプロテアーゼコンセンサス切断部位のアミノ酸配列
RAKR
配列番号100、V5エピトープヌクレオチド配列
GGAAAACCTATACCTAATCCATTGCTGGGCTTAGACTCAACA
配列番号101、V5エピトープヌクレオチド配列
GKPIPNPLLGLDST
配列番号102、リンカーヌクレオチド配列(リンカー5)
GGCAGCGGAAGC
配列番号103、リンカーアミノ酸配列(リンカー5)
GSGS
配列番号104、P2Aヌクレオチド配列
GCAACGAATTTTTCCCTGCTGAAACAGGCAGGGGACGTAGAGGAAAATCCTGGTCCT
配列番号105、P2Aアミノ酸配列
ATNFSLLKQAGDVEENPGP
配列番号106、リンカーヌクレオチド配列(リンカー6)
ACGCGT
配列番号107、リンカーアミノ酸配列(リンカー6)
TR
配列番号108、ΔCD19ヌクレオチド配列
ATGCCCCCTCCTAGACTGCTGTTTTTCCTGCTCTTTCTCACCCCAATGGAAGTTAGACCTGAGGAACCACTGGTCGTTAAAGTGGAAGAAGGTGATAATGCTGTCCTCCAATGCCTTAAAGGGACCAGCGACGGACCAACGCAGCAACTGACTTGGAGCCGGGAGTCCCCTCTCAAGCCGTTTCTCAAGCTGTCACTTGGCCTGCCAGGTCTTGGTATTCACATGCGCCCCCTTGCCATTTGGCTCTTCATATTCAATGTGTCTCAACAAATGGGTGGATTCTACCTTTGCCAGCCCGGCCCCCCTTCTGAGAAAGCTTGGCAGCCTGGATGGACCGTCAATGTTGAAGGCTCCGGTGAGCTGTTTAGATGGAATGTGAGCGACCTTGGCGGACTCGGTTGCGGACTGAAAAATAGGAGCTCTGAAGGACCCTCTTCTCCCTCCGGTAAGTTGATGTCACCTAAGCTGTACGTGTGGGCCAAGGACCGCCCCGAAATCTGGGAGGGCGAGCCTCCATGCCTGCCGCCTCGCGATTCACTGAACCAGTCTCTGTCCCAGGATCTCACTATGGCGCCCGGATCTACTCTTTGGCTGTCTTGCGGCGTTCCCCCAGATAGCGTGTCAAGAGGACCTCTGAGCTGGACCCACGTACACCCTAAGGGCCCTAAGAGCTTGTTGAGCCTGGAACTGAAGGACGACAGACCCGCACGCGATATGTGGGTAATGGAGACCGGCCTTCTGCTCCCTCGCGCTACCGCACAGGATGCAGGGAAATACTACTGTCATAGAGGGAATCTGACTATGAGCTTTCATCTCGAAATTACAGCACGGCCCGTTCTTTGGCATTGGCTCCTCCGGACTGGAGGCTGGAAGGTGTCTGCCGTAACACTCGCTTACTTGATTTTTTGCCTGTGTAGCCTGGTTGGGATCCTGCATCTTCAGCGAGCCCTTGTATTGCGCCGAAAAAGAAAACGAATGACTGACCCTACACGACGATTCTGA
配列番号109、ΔCD19アミノ酸配列
MPPPRLLFFLLFLTPMEVRPEEPLVVKVEEGDNAVLQCLKGTSDGPTQQLTWSRESPLKPFLKLSLGLPGLGIHMRPLAIWLFIFNVSQQMGGFYLCQPGPPSEKAWQPGWTVNVEGSGELFRWNVSDLGGLGCGLKNRSSEGPSSPSGKLMSPKLYVWAKDRPEIWEGEPPCLPPRDSLNQSLSQDLTMAPGSTLWLSCGVPPDSVSRGPLSWTHVHPKGPKSLLSLELKDDRPARDMWVMETGLLLPRATAQDAGKYYCHRGNLTMSFHLEITARPVLWHWLLRTGGWKVSAVTLAYLIFCLCSLVGILHLQRALVLRRKRKRMTDPTRRF* 。
本技術のある特定の実施形態の例を、この後に提供する。
A10.3.前記プロモーターが、活性化T細胞において活性化される、実施形態A10に記載の組成物。
前記多量体結合領域に結合する多量体リガンドを投与する指示、その多量体リガンドのその後の投与量を維持する指示、またはその被験体において特定された状態もしくは疾患の存在、不在もしくはステージに基づいてその患者に投与される多量体リガンドのその後の投与量を調整する指示を伝える工程
をさらに含む、実施形態B43〜B74のいずれか1つに記載の方法。
腫瘍サイズの増加および/または腫瘍細胞数の増加の存在が決定された場合に、その被験体にさらなる用量の多量体リガンドを投与する工程
を含む、実施形態B78に記載の方法。
その被験体におけるCD19発現B細胞の増加の存在が決定された場合に、その被験体にさらなる用量の多量体リガンドを投与する工程
を含む、実施形態B77に記載の方法。
C2.1.前記細胞質CD40ポリペプチドが、配列番号88のアミノ酸配列またはその機能的フラグメントを有する、実施形態C1.1またはC1.2のいずれかに記載の組成物。
AP20187である、実施形態C67またはC68に記載の方法。
前記多量体結合領域に結合する多量体リガンドを投与する指示、その多量体リガンドのその後の投与量を維持する指示、またはその被験体において特定された状態もしくは疾患の存在、不在もしくはステージに基づいてその患者に投与される多量体リガンドのその後の投与量を調整する指示を伝える工程
をさらに含む、実施形態C43〜C74のいずれか1つに記載の方法。
腫瘍サイズの増加および/または腫瘍細胞数の増加の存在が決定された場合に、その被験体にさらなる用量の多量体リガンドを投与する工程
を含む、実施形態C78に記載の方法。
その被験体におけるCD19発現B細胞の増加の存在が決定された場合に、その被験体にさらなる用量の多量体リガンドを投与する工程
を含む、実施形態C77に記載の方法。
Claims (83)
- 誘導可能なキメラシグナル伝達分子をコードするポリヌクレオチドを含む核酸を含む組成物であって、ここで、前記誘導可能なキメラシグナル伝達分子は、膜標的化領域、多量体化領域、ならびにCD27、CD28、ICOS、4−1BB、CD40、RANK/TRANCE−R、CD3ゼータ鎖およびOX40からなる群より選択される共刺激ポリペプチド細胞質シグナル伝達領域を含む、組成物。
- 前記膜標的化領域が、レセプター由来の、ミリストイル化標的化配列、パルミトイル化標的化配列、プレニル化配列(すなわち、ファルネシル化、ゲラニル−ゲラニル化、CAAX Box)、タンパク質間相互作用モチーフおよび膜貫通配列(シグナルペプチドを利用する)からなる群より選択される、請求項1に記載の組成物。
- 前記膜標的化領域が、ミリストイル化標的化配列である、請求項1または2に記載の組成物。
- 前記誘導可能なキメラシグナル伝達分子が、CD27、CD28、ICOS、4−1BB、CD40、RANK/TRANCE−R、CD3ゼータ鎖およびOX40からなる群より選択される第2の共刺激ポリペプチド細胞質シグナル伝達領域をさらに含む、請求項1〜3のいずれか1項に記載の組成物。
- 前記共刺激ポリペプチド細胞質シグナル伝達領域が、CD28細胞質シグナル伝達領域および4−1BB細胞質シグナル伝達領域を含む、請求項1〜4のいずれか1項に記載の組成物。
- 前記共刺激ポリペプチド細胞質シグナル伝達領域が、OX40細胞質シグナル伝達領域ポリペプチドおよび4−1BB細胞質シグナル伝達領域ポリペプチドを含む、請求項1〜5のいずれか1項に記載の組成物。
- 前記誘導可能なキメラシグナル伝達分子が、CD3ζポリペプチドをさらに含む、請求項1〜6のいずれか1項に記載の組成物。
- 前記多量体化領域が、FKBP、シクロフィリンレセプター、ステロイドレセプター、テトラサイクリンレセプター、重鎖抗体サブユニット、軽鎖抗体サブユニットおよびそれらの変異された配列からなる群より選択される、請求項1〜7のいずれか1項に記載の組成物。
- 前記多量体化領域が、FKBP12領域である、請求項1〜8のいずれか1項に記載の組成物。
- 前記FKB12領域が、FKB12v36領域である、請求項1〜8のいずれか1項に記載の組成物。
- 前記多量体化領域が、Fv’Fvlsである、請求項1〜8のいずれか1項に記載の組成物。
- 前記多量体化領域が、FK506二量体および二量体のFK506アナログリガンドからなる群より選択されるリガンドに結合する、請求項1〜8のいずれか1項に記載の組成物。
- 前記リガンドが、AP1903またはAP20187である、請求項1〜12のいずれか1項に記載の組成物。
- 前記多量体化領域が、配列番号58のアミノ酸配列またはその機能的フラグメントを有する、請求項1〜13のいずれか1項に記載の組成物。
- 前記多量体化領域が、配列番号57の中のヌクレオチド配列またはその機能的フラグメントによってコードされる、請求項1〜14のいずれか1項に記載の組成物。
- 前記多量体化領域が、配列番号60のアミノ酸配列を有するポリペプチドまたはその機能的フラグメントをさらに含む、請求項14に記載の組成物。
- 前記多量体化領域が、配列番号59の中のヌクレオチド配列によってコードされるポリペプチドまたはその機能的フラグメントをさらに含む、請求項15に記載の組成物。
- 前記多量体化領域が、配列番号60のアミノ酸配列を有するポリペプチドまたはその機能的フラグメントをさらに含む、請求項14または16に記載の組成物。
- 前記多量体化領域が、配列番号59の中のヌクレオチド配列によってコードされるポリペプチドまたはその機能的フラグメントをさらに含む、請求項15または17に記載の組成物。
- 前記多量体化領域が、配列番号58もしくは配列番号60のアミノ酸配列を有するポリペプチドまたはその機能的フラグメントをさらに含む、請求項14、16または18のいずれか1項に記載の組成物。
- 前記多量体化領域が、配列番号57もしくは配列番号59の中のヌクレオチド配列によってコードされるポリペプチドまたはその機能的フラグメントをさらに含む、請求項15、17または19のいずれか1項に記載の組成物。
- 前記核酸が、前記ポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーター配列を含む、請求項1〜21のいずれか1項に記載の組成物。
- 前記核酸が、ウイルスベクター内に含まれている、請求項1〜22のいずれか1項に記載の組成物。
- 前記ウイルスベクターが、レトロウイルスベクターである、請求項23に記載の組成物。
- 前記レトロウイルスベクターが、マウス白血病ウイルスベクターである、請求項24に記載の組成物。
- 前記マウス白血病ウイルスベクターが、MoMLVベクターである、請求項25に記載の組成物。
- 前記レトロウイルスベクターが、SFGベクターである、請求項26に記載の組成物。
- 前記ウイルスベクターが、アデノウイルスベクターまたはレンチウイルスベクターである、請求項23に記載の組成物。
- 前記核酸が、プラスミド内に含まれている、請求項1〜22のいずれか1項に記載の組成物。
- 請求項1〜29のいずれか1項に記載の組成物で形質転換されたまたはトランスフェクトされた、細胞。
- 前記細胞が、T細胞、腫瘍浸潤リンパ球、B細胞、NK細胞またはNK−T細胞である、請求項30に記載の細胞。
- 前記細胞が、T細胞である、請求項30に記載の細胞。
- 前記細胞が、骨髄から得られるかまたは調製される、請求項30に記載の細胞。
- 前記細胞が、臍帯血から得られるかまたは調製される、請求項30に記載の細胞。
- 前記細胞が、末梢血から得られるかまたは調製される、請求項30に記載の細胞。
- 前記細胞が、末梢血単核球から得られるかまたは調製される、請求項30に記載の細胞。
- 前記細胞が、ヒト細胞である、請求項30〜36のいずれか1項に記載の細胞。
- 前記細胞が、シグナルペプチド、一本鎖可変フラグメント、CH2−CH3ヒンジ領域およびCD3ζポリペプチドを含むキメラポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む核酸でさらに形質転換されるかまたは形質導入される、請求項30〜37のいずれか1項に記載の細胞。
- 前記一本鎖可変フラグメントが、腫瘍細胞上の抗原に結合する、請求項38に記載の細胞。
- 前記一本鎖可変フラグメントが、過剰増殖性疾患に関与する細胞上の抗原に結合する、請求項39に記載の細胞。
- 前記一本鎖可変フラグメントが、αPSMA、αPSCA、αMUC1、αCD19、αROR1、αメソテリン、αGD2、αCD123、αMUC16およびαHer2/Neu一本鎖可変フラグメントからなる群より選択される、請求項38〜40のいずれか1項に記載の細胞。
- 前記一本鎖可変フラグメントが、αCD19一本鎖可変フラグメントである、請求項38〜40のいずれかに記載の細胞。
- 免疫応答を誘導するための方法であって、インビトロまたはエキソビボにおいて、請求項1〜29のいずれか1項に記載の組成物で細胞をトランスフェクトするかまたは形質導入する工程を含む、方法。
- 誘導可能なキメラシグナル伝達分子の多量体化をもたらす多量体化領域に結合するリガンドと前記細胞を接触させる工程をさらに含む、請求項43に記載の方法。
- 前記リガンドが、二量体である、請求項44に記載の方法。
- 前記リガンドが、二量体のFK506または二量体のFK506様アナログである、請求項44に記載の方法。
- 前記リガンドが、AP1903またはAP20187である、請求項44に記載の方法。
- トランスフェクトされたまたは形質転換された前記細胞を被験体に投与する工程をさらに含む、請求項43〜47のいずれか1項に記載の方法。
- 前記細胞が、静脈内投与によって前記被験体に投与される、請求項48に記載の方法。
- インビボにおいて免疫応答を誘導するための方法であって、請求項1〜29のいずれか1項に記載の組成物を被験体に投与する工程を含む、方法。
- 誘導可能なキメラシグナル伝達分子の多量体化をもたらす多量体化領域に結合するリガンドを含む組成物を前記被験体に投与する工程をさらに含む、請求項50に記載の方法。
- 前記リガンドが、二量体である、請求項51に記載の方法。
- 前記リガンドが、二量体のFK506または二量体のFK506様アナログである、請求項51に記載の方法。
- 前記リガンドが、AP1903またはAP20187である、請求項51に記載の方法。
- 前記被験体が、過剰増殖性疾患と診断されている、請求項48〜54のいずれか1項に記載の方法。
- 前記被験体が、腫瘍と診断されている、請求項48〜54のいずれか1項に記載の方法。
- 前記被験体が、癌を有する、請求項48〜54のいずれか1項に記載の方法。
- 前記被験体が、固形腫瘍を有する、請求項48〜54のいずれか1項に記載の方法。
- 前記細胞が、腫瘍浸潤リンパ球またはT細胞である、請求項58に記載の方法。
- 前記細胞が、腫瘍床に送達される、請求項58または59に記載の方法。
- 前記癌が、前記被験体の血液中または骨髄中に存在する、請求項57に記載の方法。
- 前記被験体が、血液または骨髄の疾患を有する、請求項48〜54のいずれか1項に記載の方法。
- 前記被験体が、幹細胞移植によって緩和され得る任意の状態または障害と診断されている、請求項48〜54のいずれか1項に記載の方法。
- 前記被験体が、鎌状赤血球貧血または異染性白質ジストロフィーと診断されている、請求項48〜54のいずれか1項に記載の方法。
- 前記被験体が、原発性免疫不全障害、血球貪食リンパ組織球増多症(HLH)または他の血球貪食障害、遺伝性骨髄不全障害、異常ヘモグロビン症、代謝障害および破骨細胞障害からなる群より選択される状態と診断されている、請求項48〜54のいずれか1項に記載の方法。
- 前記被験体が、重症複合免疫不全症(SCID)、複合免疫不全症(CID)、先天性T細胞欠損/欠損症、分類不能型免疫不全症(CVID)、慢性肉芽腫症、IPEX(免疫不全、多腺性内分泌障害、腸疾患、X連鎖)またはIPEX様、ウィスコット・オールドリッチ症候群、CD40リガンド欠損症、白血球接着不全、DOCK8欠損症、IL−10欠損症/IL−10レセプター欠損症、GATA2欠損症、X連鎖リンパ球増殖性疾患(XLP)、軟骨毛髪形成不全、シュバッハマン・ダイアモンド症候群、ダイアモンドブラックファン貧血、先天性角化異常症、ファンコニー貧血、先天性好中球減少症、鎌状赤血球症、サラセミア、ムコ多糖症、スフィンゴリピドーシスおよび大理石骨病からなる群より選択される状態と診断されている、請求項48〜54のいずれか1項に記載の方法。
- 被験体における白血病を処置するための方法であって、前記被験体に請求項38に記載の組成物を投与する工程および多量体リガンドを投与する工程を含む、方法。
- 一本鎖可変フラグメントが、CD19に結合する、請求項67に記載の方法。
- 前記多量体リガンドが、AP1903またはAP20187である、請求項67または68に記載の方法。
- 前記細胞が、T細胞である、請求項67〜69のいずれかに記載の方法。
- 前記被験体が、ヒトである、請求項43〜70のいずれか1項に記載の方法。
- さらなる用量の前記多量体リガンドが、前記被験体に投与されるべきであるか否かを決定する工程をさらに含む、請求項43〜71のいずれか1項に記載の方法。
- 前記被験体にさらなる用量の前記多量体リガンドを投与する工程をさらに含み、ここで、前記疾患または状態の症状が、症状が減少した後に残っているかまたは検出される、請求項43〜72のいずれか1項に記載の方法。
- 前記被験体が、請求項1〜42のいずれか1項に記載の組成物または細胞を投与する前に、疾患または状態と診断されており、前記多量体リガンドを投与した後に、前記疾患または状態が検出され、さらなる用量の前記多量体リガンドが、前記被験体に投与される、請求項73に記載の方法。
- 被験体における状態もしくは疾患の存在、不在もしくはステージを特定する工程、および
前記多量体結合領域に結合する多量体リガンドを投与する指示、前記多量体リガンドのその後の投与量を維持する指示、または前記被験体において特定された前記状態もしくは疾患の存在、不在もしくはステージに基づいて前記患者に投与される前記多量体リガンドのその後の投与量を調整する指示を伝える工程
をさらに含む、請求項43〜74のいずれか1項に記載の方法。 - 前記状態が、癌である、請求項72〜75のいずれか1項に記載の方法。
- 前記状態が、白血病である、請求項72〜75のいずれか1項に記載の方法。
- 前記状態が、固形腫瘍である、請求項72〜75のいずれか1項に記載の方法。
- 前記多量体リガンドの投与後の腫瘍サイズおよび/または腫瘍細胞数と比べたときの、被験体における腫瘍サイズの増加および/または腫瘍細胞数の増加の存在または不在を決定する工程、ならびに
腫瘍サイズの増加および/または腫瘍細胞数の増加の存在が決定された場合に、前記被験体にさらなる用量の前記多量体リガンドを投与する工程
を含む、請求項78に記載の方法。 - 前記多量体リガンドの投与後のCD19発現B細胞のレベルと比べたときの、前記被験体におけるCD19発現B細胞の増加の存在または不在を決定する工程、ならびに
前記被験体におけるCD19発現B細胞の増加の存在が決定された場合に、前記被験体にさらなる用量の前記多量体リガンドを投与する工程
を含む、請求項77に記載の方法。 - 前記腫瘍サイズおよび/または前記腫瘍細胞数が、前記多量体リガンドの投与前の腫瘍サイズおよび/または腫瘍細胞数と比べて、前記多量体リガンドの投与後に減少する、請求項79に記載の方法。
- 前記多量体リガンドの投与後のCD19発現B細胞のレベルが、前記多量体リガンドの投与前のCD19発現B細胞のレベルと比べて減少している、請求項80に記載の方法。
- 前記被験体が、HIV、インフルエンザ、疱疹、ウイルス性肝炎、エプスタイン・バー、ポリオ、ウイルス性脳炎、麻疹、水痘、サイトメガロウイルス(CMV)、アデノウイルス(ADV)、HHV−6(ヒトヘルペスウイルス6,I)およびパピローマウイルスからなる群より選択されるウイルス病因の感染症と診断されているか、または肺炎、結核および梅毒からなる群より選択される細菌病因の感染症と診断されているか、またはマラリア、トリパノソーマ症、リーシュマニア症、トリコモナス症およびアメーバ症からなる群より選択される寄生生物病因の感染症と診断されている、請求項48〜74のいずれか1項に記載の方法。
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