JP2014111605A - Tweak及びfn14活性を調節するための方法及び組成物 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】抗TWEAK抗体、抗TWEAKレセプター抗体、及びTWEAKレセプターイムノアドヘシンなる群から選択されTWEAKレセプターの細胞内シグナル伝達をブロックする又は妨げることによって哺乳動物における先天性TH1応答又は活性を亢進し、癌を治療する薬剤又は分子及び、前記薬剤又は分子を投与する治療方法。
【選択図】なし
Description
この出願は、出典明記によりその内容が本明細書に援用される、2005年3月7日出願の米国特許仮出願番号第60/659,339号の優先権を主張する。
本発明は、TWEAK及びTWEAKレセプターの活性を調節するアゴニスト及びアンタゴニストを提供する。より具体的には、本発明は、癌や免疫関連疾患などの疾患の治療のため、並びに、免疫細胞上のTWEAK及び/又はTWEAKレセプターの活性を調節するために用いられうる方法、組成物及びキットを提供する。
腫瘍壊死因子(TNF)スーパーファミリーに属する様々なリガンド及びレセプターが当分野で同定されている。そのようなリガンドの中には、腫瘍壊死因子-α(「TNF-α」)、腫瘍壊死因子-β(「TNF-β」又は「リンホトキシン-α」)、リンホトキシン-β(「LT-β」)、CD30リガンド、CD27リガンド、CD40リガンド、OX-40リガンド、4-1BBリガンド、LIGHT、Apo-1リガンド(Fasリガンド又はCD95リガンドとも称される)、Apo-2リガンド(Apo2L又はTRAILとも称される)、TWEAK(Apo-3リガンドとも称される)、APRIL、OPGリガンド(RANKリガンド、ODF又はTRANCEとも称される)、及びTALL-1(BlyS、BAFF又はTHANKとも称される)が含まれる。[例えば、Ashkenazi, Nature Review, 2:420-430 (2002);Ashkenazi及びDixit, Science, 281:1305-1308 (1998);Ashkenazi及びDixit, Curr. Opin. Cell Biol., 11:255-260 (2000);Golstein, Curr. Biol., 7:750-753 (1997) Wallach, Cytokine Reference, Academic Press, 2000, pages 377-411;Locksley 等, Cell, 104:487-501 (2001);Gruss及びDower, Blood, 85:3378-3404 (1995);Schmid 等, Proc. Natl. Acad. Sci., 83:1881 (1986);Dealtry 等, Eur. J. Immunol., 17:689 (1987);Pitti 等, J. Biol. Chem., 271:12687-12690 (1996);Wiley 等, Immunity, 3:673-682 (1995);Browning 等, Cell, 72:847-856 (1993);Armitage 等 Nature, 357:80-82 (1992);1997年1月16日公開の国際公開公報97/01633;1997年7月17日公開の国際公開公報97/25428;Marsters等, Curr. Biol., 8:525-528(1998);Chicheportiche等, Biol. Chem., 272:32401-32410(1997);Hahne等, J. Exp. Med., 188:1185-1190(1998);1998年7月2日公開の国際公開公報98/28426;1998年10月22日公開の国際公開公報98/46751;1998年5月7日公開の国際公開公報/98/18921;Mooreら, Science, 285:260-263(1999);Shu等, J. Leukocyte Biol., 65:680(1999);Schneiderら, J. Exp. Med., 189:1747-1756(1999);Mukhopadhyay等, J. Biol. Chem., 274:15978-15981(1999)参照]。
TNFリガンドファミリーメンバーのそれらのそれぞれのレセプター(一又は複数)との相互作用は、免疫系内の様々な機能に影響しうる。このようなリガンド/レセプター相互作用の例には、例えばB細胞の抗体産生細胞への分化を促進するためのCD40レセプターと結合するCD40リガンド(Grewal 等, Immunol. Res., 16:59-70 (1997))、例えば濾胞性樹状細胞の分化状態を制御することによる体液性免疫応答に影響するためのリンホトキシン-βレセプターと結合するリンホトキシン-βリガンド(Mackay 及び Browning, Nature, 395:26-27 (1998))、及び、例えばT細胞シグナルへのB細胞の応答を制御するためのOX40レセプターを結合するOX40リガンド(Flynn 等, J. Exp. Med., 188:297-304 (1998))がある。免疫系における働きが報告されている他のリガンド/レセプター対には、TNF-α/TNFR-1やFasリガンド/Fasがある。
TWEAKの推定されるレセプターは文献において、既に記載された(Marsters 等, Curr. Biol. 8: 525-528 (1998))。TRAMP、Apo-3、WSL-1、DR3、又はLARDと称されるこのレセプターは、TNFRファミリーのメンバーである。TRAMPの活性化は、NF-kBシグナル伝達経路を介する細胞の活性化ないしはカスペース依存性細胞死シグナル伝達経路の何れかを連動させることによって、アポトーシスを誘導することが報告された(Ashkenazi及びDixit, Science, 281:1305-1308 (1998))。現在、TRAMP/Apo-3/DR3が実際はTWEAKの生理学的な、高親和性レセプターでないと思われている。
また、Fn-14と呼ばれているTWEAKを結合する他のレセプターが同定された。Fn-14は、線維芽細胞増殖因子誘導性の14kDaのタンパク質であり(Wiley 等, Immunity, 15:837-846 (2001))、細胞内ドメインのTRAF結合モチーフとともに、細胞外ドメインのシステインリッチドメインを1つだけ含有する、離れて関連するTNFRファミリーメンバーである。このレセプターを介して働くTWEAKは、NF-KB2p100プロセシングと長く続くNF-KB活性化を誘導する(Saitoh 等, J. Biol. Chem., 278:36005-36012 (2003))。
TNFリガンドファミリーメンバーであるTWEAKは、炎症誘発性サイトカインとして作用すると考えられている。下記の実施例に示すように、TWEAKは、先天性炎症応答並びに先天性免疫からTH1適応免疫への移行を抑制する際に重要な役割を果たすことが明らかにされた。したがって、アゴニスト的様式又はアンタゴニスト的様式の何れかでこのような活性(一又は複数)を調整することによって、様々な疾患、例として癌又は免疫関連疾患が治療されうる。
本発明は、TWEAK及び/又はTWEAKレセプターを結合して、例えば、アゴニスト的様式又はアンタゴニスト的様式で、TWEAK及び/又はTWEAKレセプターの活性を調整する組成物を提供する。TWEAK又はTWEAKレセプターアンタゴニストは、例えば、TWEAK及び/又はTWEAKレセプターの活性をブロックする又は中和するために用いられうる。このような組成物及び該組成物を用いた方法は、癌及び自己免疫性疾患を含む様々な疾患を治療するために使用されてもよい。例として、TWEAKを結合して、免疫細胞上のTWEAKの活性を中和する又はブロックするアンタゴニスト抗体は、過剰な先天性及び/又は適応の免疫系疾患と関係する症状を阻害するために哺乳動物のナチュラルキラー(NK)細胞の数と作用を亢進するために用いられうる。本発明の組成物は、TWEAK及び/又はTWEAKレセプターを結合するモノクローナル抗体、可溶性TWEAK-レセプター-Ig融合タンパク質、又はTWEAK及び/又はTWEAKレセプターの活性を拮抗しうる他の分子を含む。
本発明は、有効量のTWEAKアンタゴニストと、場合によって、薬学的に有効な担体を含有してなる組成物が投与されることを含む、哺乳動物の先天性TH1応答又は活性を亢進するための方法を更に含む。
更なる実施態様では、例えば、TWEAK及び/又はTWEAKレセプターの活性を刺激するか又は亢進するために、TWEAK又はTWEAKレセプターアゴニストが用いられうる。本発明は、TWEAK及び/又はTWEAKレセプターを結合して、TWEAK及び/又はTWEAKレセプターの活性を刺激するか又は亢進する組成物を提供する。このような組成物及び該組成物を用いた方法は、自己免疫性疾患などの免疫関連疾患を含む様々な疾患を治療するために使用されうる。例として、TWEAKレセプターを結合して、TWEAKレセプターの活性を刺激するか又は亢進するアゴニスト抗体は、TH1作動性自己免疫性疾患、例としてクローン病、炎症性腸疾患、多発性硬化症及び関節炎を寛解するために用いられうる。
本発明は、治療的有効量のTWEAK又はTWEAKレセプターアゴニストと受容可能な担体を含有してなる組成物が投与されることを含む、免疫関連症状の治療方法を提供する。TWEAKアゴニストは、TWEAKレセプターに対する抗体でありうる。好ましい実施態様では、抗体はモノクローナル抗体である。より好ましい実施態様では、モノクローナル抗体はTWEAKレセプターに対するものである。
1. 哺乳動物の癌細胞を有効量のアンタゴニスト分子に曝すことを含む癌の治療方法であって、該アンタゴニストは、
a) 抗TWEAK抗体;
b) 抗TWEAKレセプター抗体;
c) TWEAKレセプターイムノアドヘシン;及び
d) TWEAKレセプターの細胞内シグナル伝達をブロックする又は妨げる薬剤又は分子
からなる群から選択されるものである、治療方法。
2. 前記TWEAKレセプターイムノアドヘシンが免疫グロブリンのFc領域に融合したTWEAKレセプター配列を含んでなる、請求項1に記載の方法。
3. 前記TWEAKレセプター配列がFN14レセプターの細胞外ドメイン配列を含んでなる、請求項2に記載の方法。
4. 前記抗TWEAK抗体が、図11のアミノ酸94−249を含んでなるヒトTWEAKポリペプチドを結合する、請求項1に記載の方法。
5. 前記抗TWEAK抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体又はヒト抗体である、請求項4に記載の方法。
6. 前記抗TWEAKレセプター抗体が、図12のアミノ酸配列を含んでなるヒトFN14レセプターポリペプチドを結合する、請求項1に記載の方法。
7. 前記抗TWEAKレセプター抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体又はヒト抗体である、請求項6に記載の方法。
8. 前記哺乳動物の癌細胞が、化学療法剤、放射線、プロドラッグ、細胞障害性剤又は増殖阻害剤にも曝される、請求項1に記載の方法。
e) 抗TWEAK抗体;
f) 抗TWEAKレセプター抗体;
g) TWEAKレセプターイムノアドヘシン;及び
h) TWEAKレセプターの細胞内シグナル伝達をブロックする又は妨げる薬剤又は分子
からなる群から選択されるものである、方法。
10. 前記TWEAKレセプターイムノアドヘシンが免疫グロブリンのFc領域に融合したTWEAKレセプター配列を含んでなる、請求項9に記載の方法。
11. 前記TWEAKレセプター配列がFN14レセプターの細胞外ドメイン配列を含んでなる、請求項10に記載の方法。
12. 前記抗TWEAK抗体が、図11のアミノ酸94−249を含んでなるヒトTWEAKポリペプチドを結合する、請求項9に記載の方法。
13. 前記抗TWEAK抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体又はヒト抗体である、請求項12に記載の方法。
14. 前記抗TWEAKレセプター抗体が、図12のアミノ酸配列を含んでなるヒトFN14レセプターポリペプチドを結合する、請求項9に記載の方法。
15. 前記抗TWEAKレセプター抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体又はヒト抗体である、請求項14に記載の方法。
i) 抗TWEAK抗体;
j) 抗TWEAKレセプター抗体;
k) TWEAKレセプターイムノアドヘシン;及び
l) TWEAKレセプターの細胞内シグナル伝達をブロックする又は妨げる薬剤又は分子
からなる群から選択されるものである、方法。
17. 前記TWEAKレセプターイムノアドヘシンが免疫グロブリンのFc領域に融合したTWEAKレセプター配列を含んでなる、請求項16に記載の方法。
18. 前記TWEAKレセプター配列がFN14レセプターの細胞外ドメイン配列を含んでなる、請求項17に記載の方法。
19. 前記抗TWEAK抗体が、図11のアミノ酸94−249を含んでなるヒトTWEAKポリペプチドを結合する、請求項16に記載の方法。
20. 前記抗TWEAK抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体又はヒト抗体である、請求項19に記載の方法。
21. 前記抗TWEAKレセプター抗体が、図12のアミノ酸配列を含んでなるヒトFN14レセプターポリペプチドを結合する、請求項16に記載の方法。
22. 前記抗TWEAKレセプター抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体又はヒト抗体である、請求項21に記載の方法。
m) 抗TWEAK抗体;
n) 抗TWEAKレセプター抗体;
o) TWEAKレセプターイムノアドヘシン;及び
p) TWEAKレセプターの細胞内シグナル伝達をブロックする又は妨げる薬剤又は分子
からなる群から選択されるものである、方法。
24. 前記TWEAKレセプターイムノアドヘシンが免疫グロブリンのFc領域に融合したTWEAKレセプター配列を含んでなる、請求項23に記載の方法。
25. 前記TWEAKレセプター配列がFN14レセプターの細胞外ドメイン配列を含んでなる、請求項24に記載の方法。
26. 前記抗TWEAK抗体が、図11のアミノ酸94−249を含んでなるヒトTWEAKポリペプチドを結合する、請求項23に記載の方法。
27. 前記抗TWEAK抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体又はヒト抗体である、請求項26に記載の方法。
28. 前記抗TWEAKレセプター抗体が、図12のアミノ酸配列を含んでなるヒトFN14レセプターポリペプチドを結合する、請求項23に記載の方法。
29. 前記抗TWEAKレセプター抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体又はヒト抗体である、請求項28に記載の方法。
30. 前記TH2媒介性疾患がアレルギー又は喘息である、請求項23に記載の方法。
a) 抗TWEAKレセプター抗体;
b) TWEAKポリペプチド;及び
c) TWEAKポリペプチド変異体
からなる群から選択されるものである、方法。
32. 前記抗TWEAKレセプター抗体が、図12のアミノ酸配列を含んでなるヒトFN14レセプターポリペプチドを結合する、請求項31に記載の方法。
33. 前記抗TWEAKレセプター抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体又はヒト抗体である、請求項32に記載の方法。
34. 前記免疫関連疾患が自己免疫性疾患である、請求項31に記載の方法。
35. 前記自己免疫性疾患が、クローン病、炎症性腸疾患、多発性硬化症又は関節炎である、請求項34に記載の方法。
本明細書中に記載又は参照の技術及び手順は一般的に十分理解されるものであり、例えばSambrook 等, Molecular Cloning: A Laboratory Manual 2nd. edition (1989) Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y.に記載の広く利用される分子クローニング方法論などの、当分野の技術者による従来の方法論を用いて通常行われるものである。好ましくは、市販のキットや試薬の使用を伴う手順は、特に明記しない限り、プロトコール及び/又はパラメータを定義する製造者に従って一般的に行われる。
本方法及びアッセイを開示する前に、本発明は、ここに記載の特定の方法論、プロトコール、細胞株、動物種や属、コンストラクト及び試薬に限定されるものではなく、変更されてもよいことを理解されたい。また、本明細書中で用いる用語は特定の実施態様のみを開示するためのものであり、添付の特許請求の範囲によってのみ限定される本発明の権利範囲を限定するものでないことを理解されたい。
本明細書中で引用するすべての出版物は、該出版物が引用される方法及び/又は材料を開示及び記載するために、出典明記によって本明細書中に組み込まれる。本明細書中で引用する出版物は、本出願の提出日前の開示について言及するものである。早い優先日又はより前の発明日によって刊行物に先行する権利が発明者にはないことを自認していると解釈されるべきではない。さらに、実際の出版日は明記されているものと異なり、個々に実証が必要であろう。
「TWEAK」又は「TWEAKリガンド」なる用語は、図11のアミノ酸残基1−249、図11のアミノ酸残基47−249又は図11のアミノ酸残基94−249を含有してなるポリペプチド配列、並びに、生物学的に活性な断片、上記の配列の欠失、挿入ないしは置換した変異体を包括的に指すために、本明細書において使われる。一実施態様では、ポリペプチド配列は、図11の残基47−249を含んでなり、場合によって、図11の残基94−249から成る。他の実施態様では、前記の断片ないし変異体は生物学的に活性であり、上記した配列の何れか一と少なくともおよそ80%のアミノ酸配列同一性、好ましくは少なくとも90%の配列同一性及びさらにより好ましくは少なくとも95%、96%、97%、98%又は99%の配列同一性を有する。場合によって、TWEAKポリペプチドは、TWEAKコード化ポリヌクレオチド配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズするヌクレオチド配列によってコードされる。また、この定義には、TWEAK供与源から単離されたか又は組換え法ないし合成方法により調製された天然配列のTWEAKを包含する。特別に言及しない限り、TWEAK配列において、指し示すアミノ酸残基のすべての番号付けは図11に記載の番号付けを使用する。
「TWEAKリガンド」又は「TWEAK」なる用語は、TWEAK単量体、重合体、又はそのヘテロマーないしその誘導体を指す。
場合によっては、本発明のTWEAK抗体は、BIAcore結合アッセイで測定されるように、約0.1nMから約20mMの範囲の濃度でTWEAKリガンドに結合する。場合によっては、本発明のTWEAK抗体は、BIAcore結合アッセイで測定されるように、約0.6nMから約18mMのIC50値を示す。
場合によって、本発明のTWEAKレセプター抗体は、BIAcore結合アッセイで測定されるように、約0.1nMから約20mMの範囲の濃度でTWEAKレセプターに結合する。場合によって、本発明のTWEAKレセプター抗体は、BIAcore結合アッセイで測定されるように、約0.6nMから約18mMのIC50値を示す。
「核酸」は、任意のDNA又はRNAを含むことを意味する。例えば、染色体性核酸、ミトコンドリア核酸、ウイルス核酸及び/又は細菌性核酸が組織試料中に存在する。「核酸」なる用語は、二本鎖の核酸分子の何れか又は両鎖を包含し、原型の核酸分子の任意の断片又は部分を包含する。
本明細書中で用いられる「標識」なる用語は、核酸プローブや抗体などの試薬に直接的又は間接的にコンジュゲートないしは融合され、コンジュゲートないしは融合した試薬の検出を容易にする化合物又は組成物を指す。標識自体が検出可能なもの(例えば放射性標識又は蛍光性標識)であってもよく、酵素標識の場合、検出可能な基質化合物ないしは組成物の化学的変化を触媒するものであってもよい。
「抗体断片」は、無傷の抗体の一部、好ましくはその抗原結合又は可変領域を含む。抗体断片の例には、Fab、Fab'、F(ab')2及びFv断片;ダイアボディ;線形抗体;一本鎖抗体分子;及び抗体断片から形成された多特異性抗体が含まれる。
「天然抗体」は、通常、2つの同一の軽(L)鎖及び2つの同一の重(H)鎖からなる、約150,000ダルトンのヘテロ四量体糖タンパク質である。各軽鎖は一つの共有ジスルフィド結合により重鎖に結合しており、ジスルフィド結合の数は、異なった免疫グロブリンアイソタイプの重鎖の中でばらつきがある。また各重鎖と軽鎖は、規則的に離間した鎖間ジスルフィド結合を有している。各重鎖は、多くの定常ドメインが続く可変ドメイン(VH)を一端に有する。各軽鎖は、一端に可変ドメイン(VL)を、他端に定常ドメインを有する;軽鎖の定常ドメインは重鎖の第一定常ドメインと整列し、軽鎖の可変ドメインは重鎖の可変ドメインと整列している。特定のアミノ酸残基が、軽鎖及び重鎖可変ドメイン間の界面を形成すると考えられている。
「Fv」は、完全な抗原認識及び抗原結合部位を含む最小抗体断片である。この領域は、堅固な非共有結合をなした一つの重鎖及び一つの軽鎖可変ドメインの二量体からなる。この配置において、各可変ドメインの3つの高頻度可変領域は相互に作用してVH-VL二量体表面に抗原結合部位を形成する。集合的に、6つの高頻度可変領域が抗体に抗原結合特異性を付与する。しかし、単一の可変ドメイン(又は抗原に対して特異的な3つの高頻度可変領域のみを含むFvの半分)でさえ、全結合部位よりも親和性が低くなるが、抗原を認識して結合する能力を有している。
任意の脊椎動物種からの抗体(イムノグロブリン)の「軽鎖」には、その定常ドメインのアミノ酸配列に基づいて、カッパ(κ)及びラムダ(λ)と呼ばれる2つの明確に区別される型の何れかに分類される。
重鎖の定常ドメインのアミノ酸配列に基づいて、抗体は異なるクラスに分類される。無傷の抗体には5つの主なクラスがある:IgA、IgD、IgE、IgG及びIgM、更にそれらは、IgG1、IgG2、IgG3、IgG4、IgA、及びIgA2等のサブクラス(アイソタイプ)に分かれる。抗体の異なるクラスに対応する重鎖定常ドメインはそれぞれα、δ、ε、γ、及びμと呼ばれる。イムノグロブリンの異なるクラスのサブユニット構造及び三次元立体配位はよく知られている。
「ダイアボディ」なる用語は、二つの抗原結合部位を持つ小さい抗体断片を指し、その断片は同一のポリペプチド鎖(VH−VL)内で軽鎖可変ドメイン(VL)に重鎖可変ドメイン(VH)が結合してなる。非常に短いために同一鎖上で二つのドメインの対形成が可能であるリンカーを使用して、ドメインを他の鎖の相補ドメインと強制的に対形成させ、二つの抗原結合部位を創製する。ダイアボディは、例えば、欧州特許第404,097号;国際公報93/11161;及びHollingerら, Proc.Natl.Acad.Sci. USA 90:6444-6448 (1993)に更に詳細に記載されている。
抗体の「Fcドメイン」なる用語は、ヒンジ、CH2及びCH3ドメインを含むが、抗原結合部位を欠失してる分子の一部を指す。また、この用語は、IgM又は他の抗体アイソタイプの等価領域を包含することを意味する。
ここでの目的のための「免疫療法」とは、抗体を用いた哺乳動物(好ましくはヒト患者)の治療方法を意味し、この抗体はコンジュゲートされたもの又は「ありのままの(裸の)」抗体でもよく、又は一又は複数の細胞障害性剤などの薬剤やヘテロ分子とコンジュゲート又は融合して、それによって「免疫コンジュゲート」を生成してもよい。
ここで使用される「処置する」又は「処置」又は「治療」とは、治癒的治療、予防的治療又は防止的治療を称する。連続的治療又は投与とは、一又は複数の日数、治療を中断することなく、少なくとも毎日であることを基本とし治療を行うことを称する。断続的治療又は投与、もしくは断続的な方法での治療又は投与とは、連続させることなく、むしろ事実的には周期的に治療することを称する。
「癌」、「癌性」又は「悪性」という用語は、典型的には調節されない細胞成長を特徴とする、哺乳動物における生理学的状態を称するか記述する。癌の例には、これらに限定されるものではないが、癌腫、リンパ腫、白血病、芽細胞腫、及び肉腫が含まれる。このような癌のより具体的な例には、扁平上皮細胞癌、骨髄腫、小細胞肺癌、非小細胞肺癌、神経膠腫、消化器系(管)癌、腎臓癌、卵巣癌、肝臓癌、リンパ芽球性白血病、リンパ性白血病、結腸直腸癌、子宮内膜癌、腎臓癌、前立腺癌、甲状腺癌、神経芽細胞腫、膵臓癌、多形成膠芽腫、子宮頸癌、脳癌、胃癌、膀胱癌、肝細胞腫(hepatoma)、乳癌、結腸癌、及び頭部及び頸部の癌が含まれる。
本明細書中で用いる「Tヘルパー(Th)細胞」なる用語は、細胞障害性T細胞の生成を促して、B細胞と協働して抗体産生を刺激するT細胞の機能的なサブクラスを指す。ヘルパーT細胞は、クラスII MHC分子と共同して抗原を認識し、エフェクター細胞に接触依存性及び接触非依存性の(サイトカイン及びケモカイン)シグナルを与える。
「Th1」なる用語は、TNF、インターフェロンγ及びIL-2(及び他のサイトカイン)を産生するTヘルパー細胞のサブクラスを指すものであって、抗原刺激に対する細胞性の、すなわち非免疫グロブリンの応答に関連する炎症反応を誘発する。
「Th2」なる用語は、IL-4、IL-5、IL-6、IL-10、及び他のサイトカインを産生するTヘルパー細胞のサブクラスを指すものであって、免疫抗原刺激に対する免疫グロブリン(体液性)応答と関係している。
ここで使用される場合の「タグ化」なる用語は、「タグポリペプチド」に融合した、抗体又はポリペプチドを含有するキメラ分子を称す。タグポリペプチドは、その抗体が産生するエピトープを提供するか、又はオリゴマー化(例えば、ロイシンジッパードメインを有するペプチドにより生じる)等の他のいくつかの機能を提供するのに十分な残基を有しているが、その長さは、一般的に抗体又はポリペプチドの活性を阻害しないよう十分に短い。また、タグポリペプチドは、好ましくは、タグ特異性抗体が他のエピトープと実質的に交差反応をしないようにかなり独特である。適切なタグポリペプチドは、一般に、少なくとも6のアミノ酸残基、通常は約8〜約50のアミノ酸残基(好ましくは約10〜約20のアミノ酸残基)を有する。
「中程度のストリンジェント条件」は、Sambrook等, Molecular Cloning:A Laboratory Manual, New York:Cold Spring Harbor Press, 1989に記載されているように同定され、20%ホルムアミド、5×SSC(150mMのNaCl、15mMのクエン酸三ナトリウム)、50mMリン酸ナトリウム(pH7.6)、5×デンハート液、10%デキストラン硫酸、及び20mg/mLの変性剪断サケ精子DNAを含む溶液中にて37℃で終夜インキュベーションの後、1×SSC中にておよそ37−50℃でフィルターの洗浄を含む。当業者であれば、プローブ長等の因子に適合させる必要に応じて、どのようにして温度、イオン強度等を調節するかを認識するであろう。
「コントロール配列」という用語は、特定の宿主生物において作用可能に結合したコード配列を発現するために必要なDNA配列を称す。例えば原核生物に好適なコントロール配列は、プロモーター、場合によってはオペレータ配列、及びリボソーム結合部位を含む。真核生物の細胞は、プロモーター、ポリアデニル化シグナル及びエンハンサーを利用することが知られている。
核酸は、他の核酸配列と機能的な関係にあるときに「作用可能に結合し」ている。例えば、プレ配列あるいは分泌リーダーのDNAは、ポリペプチドの分泌に寄与するプレタンパク質として発現されているなら、そのポリペプチドのDNAに作用可能に結合している;プロモーター又はエンハンサーは、配列の転写に影響を及ぼすならば、コード配列に作用可能に結合している;又はリボソーム結合部位は、もしそれが翻訳を容易にするような位置にあるなら、コード配列と作用可能に結合している。一般的に、「作用可能に結合している」とは、結合したDNA配列が近接しており、分泌リーダーの場合には近接していて読みフェーズにあることを意味する。しかし、エンハンサーは近接している必要はない。結合は簡便な制限部位でのライゲーションにより達成される。そのような部位が存在しない場合は、従来の手法に従って、合成オリゴヌクレオチドアダプターあるいはリンカーが使用される。
「ヒトエフェクター細胞」とは、1つ又は複数のFcRを発現し、エフェクター機能を実行する白血球のことである。好ましくは、その細胞が少なくともFcγRIIIを発現し、ADCCエフェクター機能を実行する。ADCCを媒介するヒト白血球の例として、末梢血液単核細胞(PBMC)、ナチュラルキラー(NK)細胞、単球、細胞障害性T細胞及び好中球が含まれるが、PBMCとNK細胞が好適である。
感染に対する宿主の防御には、哺乳動物の先天性免疫系及び適応免疫系の調整された機能が関与する。NK細胞、樹状細胞、マクロファージ及び好中球を含む先天性免疫系は、感染に対する初期応答だけでなく、T及びB細胞ベースの適応免疫への移行を導く際にも重要な役割を果たす(Diefenbach及びRaulet, Immunol. Rev., 188:9-21 (2002))。先天性免疫細胞は、感染細胞の直接的な死滅及び除去を媒介し、その後、それらは樹状細胞との物理学的な相互作用による適応機能の発達を促し、その結果特定のサイトカインの分泌を促す(Diefenbach及びRaulet, Immunol. Rev., 181:170-184 (2001)、Fernandez 等, Eur. Cytokine Netw., 13:17-27 (2002)、Ikeda 等, Cytokine Growth Factor Rev., 13:95-109 (2002))。INF-γ及びIL-12はTH1サブタイプに対するヘルパーCD4+T細胞の発達を極性化して、CD8+エフェクターT細胞応答を活性化する一方、IL-4はTH2クラスを誘導して、B細胞媒介性の抗体応答を刺激する(上掲のDiefenbach 及び Raulet, 2002、上掲のFernandez 等, 2002、上掲のIkeda 等, 2002)。
下記の実施例の項目にて説明されるように、作製されたTWEAKノックアウトマウスが生存して健康であったことから、TWEAKは正常な発達に重要でないことが示唆される。しかしなから、TWEAK−/−マウスは、年齢が一致した野生型同腹仔と比較して、NK細胞の有意な集積があったことから、NK細胞の生成及び/又は死の制御にTWEAKが関係している。TWEAK遺伝子欠失により骨髄中のNK細胞の量が変化しなかったことから、TWEAK欠失下ではNK細胞形成が変化しないことが示唆される。逆にいえば、TWEAKの中和により、TNFα、LPS又はIFN-γによるアポトーシスの誘導からヒトのNK細胞が保護された。これらの所見から、生成の増加ではなくむしろAICDの減少によって、TWEAK−/−マウスのNK細胞蓄積が生じることが示唆される。ゆえに、TWEAKの免疫調節における一つの役割は、免疫学的分解の際に活性化されたNK細胞の欠失をサポートすることによって、有害となりうる過剰な先天性応答の発達の予防を助けることでありうる。
更なる実施態様では、TWEAKアゴニストは、様々な免疫関連の症状を治療する際に使用されてもよい。このようなTWEAKアゴニストには、TWEAKレセプター抗体及びTWEAKポリペプチドがある。TWEAKアゴニストはインビボ並びにエクスビボで使われてもよい。場合によって、以下に詳述するように、TWEAKアゴニストは医薬組成物の形態で用いられる。
下記の説明において、様々な方法及び技術を記述する。これらの方法及び技術が様々なTWEAKアゴニスト及びアンタゴニストを調製するために同様に用いられうることが考慮される。
TWEAKポリペプチドの変異は、例えば、米国特許第5,364,934号に記載されている保存的及び非保存的変異についての任意の技術及び指針を用いてなすことができる。変異は、結果として天然配列ポリペプチドと比較してアミノ酸配列が変化するポリペプチドをコードする一又は複数のコドンの置換、欠失又は挿入であってよい。場合によっては、変異は少なくとも一のアミノ酸が、TWEAKポリペプチドの一又は複数のドメインにおいて任意の他のアミノ酸によって置換されることである。いずれのアミノ酸残基が所望の活性に悪影響を与えることなく挿入、置換又は欠失されるかの指針は、TWEAKポリペプチドの配列を相同性のある既知のタンパク質分子の配列と比較し、相同性の高い領域内でなされるアミノ酸配列変化を最小にすることによって見出される。アミノ酸置換は、ロイシンのセリンでの置換のような一のアミノ酸の類似した構造及び/又は化学特性を持つ他のアミノ酸での置換、即ち保存的アミノ酸置換の結果とすることができる。挿入及び欠失は、場合によっては1から5のアミノ酸の範囲内とすることができる。許容される変異は、配列においてアミノ酸の挿入、欠失又は置換を系統的に作成し、得られた変異体を完全長又は成熟天然タンパク質によって提示された活性について試験することにより決定される。
TWEAKポリペプチド断片は、多くの従来技術の任意のものによって調製してよい。所望のペプチド断片は化学合成してもよい。代替的方法は、酵素的消化、例えば特定のアミノ酸残基によって決定される部位のタンパク質を切断することが知られた酵素でタンパク質を処理することにより、或いは適当な制限酵素でDNAを消化して所望の断片を単離することによるポリペプチド断片の生成を含む。更に他の好適な技術は、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)により、所望のポリペプチド断片をコードするDNA断片を単離し増幅することを含む。DNA断片の所望の末端を決定するオリゴヌクレオチドは、PCRの5'及び3'プライマーで用いられる。
具体的な実施態様では、対象とする保存的置換を、好ましい置換と題する以下の表に示す。このような置換が生物学的活性の変化をもたらす場合、以下の表に例示的置換と名前を付けた又は以下にアミノ酸分類で更に記載するように、より実質的な変化が導入され生成物がスクリーニングされる。
(1)疎水性:ノルロイシン, met, ala, val, leu, ile;
(2)中性の親水性:cys, ser, thr;
(3)酸性:asp, glu;
(4)塩基性:asn, gln, his, lys, arg;
(5)鎖配向に影響する残基:gly, pro;及び
(6)芳香族:trp, tyr, phe。
非保存的置換は、これらの分類の一つのメンバーを他の分類に交換することを必要とするであろう。また、そのように置換された残基は、保存的置換部位、好ましくは残された(非保存)部位に導入されうる。
また、隣接配列に沿って一つ又は複数のアミノ酸を同定するのにスキャンニングアミノ酸分析を用いることができる。好ましいスキャンニングアミノ酸は比較的小さく、中性のアミノ酸である。そのようなアミノ酸は、アラニン、グリシン、セリン、及びシステインを含む。アラニンは、ベータ炭素を越える側鎖を排除し変異体の主鎖構造を変化させにくいので、この群の中で典型的に好ましいスキャンニングアミノ酸である[Cunningham及びWells, Science, 244:1081-1085 (1989)]。また、アラニンは最もありふれたアミノ酸であるため典型的には好ましい。更に、それは埋もれた及び露出した位置の両方に見られることが多い[Creighton, The Proteins, (W.H. Freeman & Co., N.Y.);Chothia, J. Mol. Biol., 150:1(1976)]。アラニン置換が十分な量の変異体を生じない場合は、アイソテリック(isoteric)アミノ酸を用いることができる。
以下の説明は、主として、TWEAKポリペプチドコード化核酸を含むベクターで形質転換又は形質移入された細胞を培養することによりTWEAKポリペプチドを生産する方法に関する。もちろん、当該分野においてよく知られている他の方法を用いて本明細書中で考慮される様々なTWEAKアゴニスト及びTWEAKアンタゴニストを調製することができると考えられる。例えば、適切なアミノ酸配列、又はその一部は、固相技術を用いた直接ペプチド合成によって生産してもよい[例えば、Stewart等, Solid-Phase Peptide Synthesis, W.H. Freeman Co., サン フランシスコ, カリフォルニア (1969);Merrifield, J. Am. Chem. Soc., 85:2149-2154 (1963)参照]。手動技術又は自動によるインビトロタンパク質合成を行ってもよい。自動合成は、例えば、アプライド・バイオシステムズ・ペプチド合成機(フォスターシティー、カリフォルニア)を用いて、製造者の指示により実施してもよい。TWEAKポリペプチドの種々の部分は、別々に化学的に合成され、化学的又は酵素的方法を用いて結合させて所望のTWEAKポリペプチドを生産してもよい。本明細書に記載する方法及び技術は、TWEAK変異体、TWEAKの修飾形態及びTWEAK抗体の生産にも同様に適用可能である。
TWEAKポリペプチドをコードするDNAは、TWEAKポリペプチドmRNAを保有していてそれを検出可能なレベルで発現すると考えられる組織から調製されたcDNAライブラリから得ることができる。従って、ヒトTWEAKポリペプチドDNAは、ヒトの組織から調製されたcDNAライブラリから簡便に得ることができる。またTWEAKポリペプチド-コード化遺伝子は、ゲノムライブラリから又は既知の合成手順(例えば、自動核酸合成)により得ることもできる。
ライブラリは、対象となる遺伝子或いはその遺伝子によりコードされるタンパク質を同定するために設計されたプローブ(少なくとも約20−80塩基のオリゴヌクレオチド等)によってスクリーニングできる。選択されたプローブによるcDNA又はゲノムライブラリのスクリーニングは、例えばSambrook等, Molecular Cloning: A Laboratory Manual (New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989)に記載されている標準的な手順を使用して実施することができる。TWEAKポリペプチドをコードする遺伝子を単離する他の方法はPCR法を使用するものである[Sambrook等,上掲;Dieffenbach等, PCR Primer: A Laboratory Manual (Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1995)]。
このようなライブラリのスクリーニング法において同定された配列を、GenBankのような公的データベース又はその他の私的な配列データベースに登録されて使用可能な他の既知の配列と比較し、整列させることができる。分子又は完全長配列の定義領域内における配列同一性(アミノ酸又はヌクレオチドのレベルで)を、当技術分野において既知の、本明細書に記載する方法を用いて決定することができる。
タンパク質コード化配列を有する核酸は、初めてここで開示された推定アミノ酸配列を使用し、また必要ならば、cDNAに逆転写されていないmRNAの生成中間体及び先駆物質を検出する上掲のSambrook等,に記述されているような従来のプライマー伸長法を使用して選択されたcDNA又はゲノムライブラリをスクリーニングすることによって得られる。
宿主細胞を、ここに記載したTWEAKポリペプチド生産のための発現又はクローニングベクターで形質移入又は形質転換し、プロモーターを誘導し、形質転換体を選択し、又は所望の配列をコードする遺伝子を増幅するために適当に修正された常套的栄養培地で培養する。培養条件、例えば培地、温度、pH等々は、過度の実験をすることなく当業者が選ぶことができる。一般に、細胞培養の生産性を最大にするための原理、プロトコール、及び実用技術は、Mammalian Cell Biotechnology: a Practical Approach, M.Butler編(IRL Press, 1991)及びSambrook等, 上掲に見出すことができる。
真核細胞の形質移入及び原核細胞の形質転換の方法、例えば、CaCl2、CaPO4、リポソーム媒介及びエレクトロポレーションは当業者に知られている。用いられる宿主細胞に応じて、その細胞に対して適した標準的な方法を用いて形質転換はなされる。前掲のSambrook等,に記載された塩化カルシウムを用いるカルシウム処理又はエレクトロポレーションが、一般的に、原核生物に対して用いられる。アグロバクテリウム・トゥメファシエンス(Agrobacterium tumefaciens)による感染が、Shaw等, Gene, 23:315 (1983)及び1989年6月29日公開のWO89/05859に記載されているように、或る種の植物細胞の形質転換に用いられる。このような細胞壁のない哺乳動物の細胞に対しては、Graham及びvan der Eb, Virology, 52:456-457 (1978)のリン酸カルシウム沈降法が好ましい。哺乳動物細胞の宿主系形質移入の一般的な態様は米国特許第4,399,216号に記載されている。酵母菌中への形質転換は、典型的には、Van Solingen等, J. Bact., 130:946 (1977)及びHsiao等, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 76:3829 (1979)の方法に従って実施される。しかしながら、DNAを細胞中に導入する他の方法、例えば、核マイクロインジェクション、エレクトロポレーション、無傷の細胞との細菌プロトプラスト融合、又は、例えばポリブレン、ポリオルニチン等のポリカチオンもまた用いることもできる。哺乳動物細胞を形質転換するための種々の技術については、Keown等, Methods in Enzymology, 185:527-537 (1990)及び Mansour等, Nature, 336:348-352 (1988)を参照のこと。
しかしながら、脊椎動物細胞に最も関心が向けられており、培養物(組織培養物)における脊椎動物細胞の増殖は常套的手順となっている。有用な哺乳動物宿主細胞株の例は、SV40によって形質転換されたサル腎臓CV1株(COS-7,ATCC CRL 1651);ヒト胚腎臓株(懸濁培養での増殖のためにサブクローン化された293又は293細胞、Graham等, J. Gen Virol., 36:59 (1977));仔ハムスターの腎臓細胞(BHK、ATCC CCL 10);チャイニーズハムスター卵巣細胞/-DHFR(CHO, Urlaub等、Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 77:4216 (1980));マウスのセルトリ細胞(TM4,Mather, Biol. Reprod., 23:243-251 (1980));サル腎臓細胞(CV1 ATCC CCL 70);アフリカミドリザル腎臓細胞(VERO−76、ATCC CRL−1587);ヒト子宮頸癌細胞(HELA、ATCC CCL 2);イヌ腎臓細胞(MDCK、ATCC CCL 34);バッファローラット肝細胞(BRL 3A、ATCC CRL 1442);ヒト肺細胞(W138、ATCC CCL 75);ヒト肝細胞 (Hep G2、HB 8065);マウス乳房腫瘍細胞(MMT 060562、ATCC CCL51);TRI細胞(Mather等、Annals N.Y. Acad. Sci. 383:44-68 (1982));MRC 5細胞;FS4細胞;及びヒト肝細胞腫株(Hep G2)を含む。
宿主細胞を、TWEAKポリペプチド生成のために上記発現ベクター又はクローニングベクターで形質転換し、プロモーターの誘発、形質転換体の選択、又は所望の配列をコードする遺伝子の増幅に適するように修正した従来の栄養培地で培養する。
TWEAKポリペプチドをコードする核酸(例えば、cDNA又はゲノムDNA)は、クローニング(DNAの増幅)又は発現のために複製可能なベクター内に挿入される。様々なベクターが公的に入手可能である。ベクターは、例えば、プラスミド、コスミド、ウイルス粒子、又はファージの形態とすることができる。適切な核酸配列が、種々の手法によってベクターに挿入される。一般に、DNAはこの分野で周知の技術を用いて適当な制限エンドヌクレアーゼ部位に挿入される。ベクター成分としては、一般に、これらに制限されるものではないが、一つ又は複数のシグナル配列、複製開始点、一つ又は複数のマーカー遺伝子、エンハンサーエレメント、プロモーター、及び転写終結配列を含む。これらの成分の一つ又は複数を含む適当なベクターの作成には、当業者に知られた標準的なライゲーション技術を用いる。
TWEAKポリペプチドは組換え手法によって直接生産されるだけではなく、シグナル配列又は、成熟タンパク質ないしポリペプチドのN-末端に特異的切断部位を有する他のポリペプチドである異種性ポリペプチドとの融合ペプチドとしても生産される。一般に、シグナル配列はベクターの成分であるか、ベクターに挿入されるTWEAKポリペプチド-コード化DNAの一部である。シグナル配列は、例えばアルカリホスファターゼ、ペニシリナーゼ、lpp或いは熱安定性エンテロトキシンIIリーダーの群から選択された原核生物シグナル配列であってよい。酵母の分泌に関しては、シグナル配列は、酵母インベルターゼリーダー、アルファ因子リーダー(サッカロミセス(Saccharomyces)及びクルイベロマイシス(Kluyveromyces)α因子リーダーを含み、後者は米国特許第5,010,182号に記載されている)、又は酸ホスファターゼリーダー、カンジダ・アルビカンス(C.albicans)グルコアミラーゼリーダー(1990年4月4日発行のEP362179)、又は1990年11月15日に公開された国際公開公報90/13646に記載されているシグナルであり得る。哺乳動物細胞の発現においては、哺乳動物シグナル配列は、同一或いは関連ある種の分泌ポリペプチド由来のシグナル配列並びにウイルス分泌リーダーのようなタンパク質の直接分泌に使用してもよい。
発現及びクローニングベクターは、典型的には、選択マーカーとも称される選択遺伝子を含む。典型的な選択遺伝子は、(a)アンピシリン、ネオマイシン、メトトレキセート或いはテトラサイクリンのような抗生物質或いは他の毒素に耐性を与え、(b)栄養要求性欠陥を補い、又は(c)例えば桿菌のD-アラニンラセマーゼをコードしている遺伝子のような、複合培地から得られない重要な栄養素を供給する、タンパク質をコードする。
発現及びクローニングベクターは、通常、TWEAKポリペプチドコード化核酸配列に作用可能に結合し、mRNA合成を制御するプロモーターを含む。種々の可能な宿主細胞により認識される好適なプロモーターが知られている。原核生物宿主での使用に好適なプロモーターはβ-ラクタマーゼ及びラクトースプロモーター系[Chang等, Nature, 275:615 (1978); Goeddel等, Nature, 281:544 (1979)]、アルカリホスファターゼ、トリプトファン(trp)プロモーター系[Goeddel, Nucleic Acids Res., 8:4057 (1980);EP 36,776]、及びハイブリッドプロモーター、例えばtacプロモーター[deBoer 等, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 80:21-25 (1983)]を含む。細菌系で使用するプロモーターもまたTWEAKポリペプチドをコードするDNAと作用可能に結合したシャイン-ダルガーノ(S.D.)配列を有する。
他の酵母プロモーターとしては、成長条件によって転写が制御される付加的効果を有する誘発的プロモーターであり、アルコールデヒドロゲナーゼ2、イソチトクロムC、酸ホスファターゼ、窒素代謝と関連する分解性酵素、メタロチオネイン、グリセルアルデヒド-3-リン酸デヒドロゲナーゼ、及びマルトース及びガラクトースの利用を支配する酵素のプロモーター領域がある。酵母菌での発現に好適に用いられるベクターとプロモーターはEP73,657に更に記載されている。
より高等の真核生物による所望のTWEAKポリペプチドをコードするDNAの転写は、ベクター中にエンハンサー配列を挿入することによって増強され得る。エンハンサーは、通常は約10から300塩基対で、プロモーターに作用してその転写を増強するDNAのシス作動要素である。哺乳動物遺伝子由来の多くのエンハンサー配列が現在知られている(グロビン、エラスターゼ、アルブミン、α-フェトプロテイン及びインスリン)。しかしながら、典型的には、真核細胞ウイルス由来のエンハンサーが用いられるであろう。例としては、複製起点の後期側のSV40エンハンサー(100−270塩基対)、サイトメガロウイルス初期プロモーターエンハンサー、複製起点の後期側のポリオーマエンハンサー及びアデノウイルスエンハンサーが含まれる。エンハンサーは、TWEAKポリペプチドコード化配列の5'又は3'位でベクター中にスプライシングされ得るが、好ましくはプロモーターから5'位に位置している。
組換え脊椎動物細胞培養でのTWEAKポリペプチドの合成に適応化するのに適切な他の方法、ベクター及び宿主細胞は、Gething等, Nature, 293:620-625 (1981);Mantei等, Nature, 281:40-46 (1979);EP117,060;及びEP117,058に記載されている。
本発明のTWEAKポリペプチドを産生するために用いられる宿主細胞は種々の培地において培養することができる。市販培地の例としては、ハム(Ham)のF10(シグマ)、最小必須培地((MEM)、(シグマ)、RPMI-1640(シグマ)及びダルベッコの改良イーグル培地((DMEM)、シグマ)が宿主細胞の培養に好適である。また、Hamら, Meth. Enz. 58:44 (1979年), Barnesら, Anal. Biochem. 102:255 (1980年), 米国特許第4,767,704号;同4,657,866号;同4,927,762号;同4,560,655号;又は同5,122,469号;国際公開第90/03430号;国際公開第87/00195号;又は米国再発行特許第30,985号に記載された何れの培地も宿主細胞に対する培地として使用できる。これらの培地には何れもホルモン及び/又は他の増殖因子(例えばインスリン、トランスフェリン、又は上皮増殖因子)、塩類(例えば、塩化ナトリウム、カルシウム、マグネシウム及びリン酸塩)、バッファー(例えばHEPES)、ヌクレオチド(例えばアデノシン及びチミジン)、抗生物質(例えば、GENTAMYCINTM薬)、微量元素(最終濃度がマイクロモル範囲で通常存在する無機化合物として定義される)及びグルコース又は等価なエネルギー源を必要に応じて補充することができる。任意の他の必要な補充物質もまた当業者に知られている適当な濃度で含むことができる。培養条件、例えば温度、pH等々は、発現のために選ばれた宿主細胞について既に用いられているものであり、当業者には明らかであろう。
遺伝子の増幅及び/又は発現は、ここで提供された配列に基づき、適切に標識されたプローブを用い、例えば、従来よりのサザンブロット法、mRNAの転写を定量化するノーザンブロット法[Thomas, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 77:5201-5205 (1980)]、ドットブロット法(DNA分析)、半定量的PCR、DNAアレイ遺伝子発現分析又はインサイツハイブリダイゼーション法によって、直接的に試料中で測定することができる。或いは、DNA二本鎖、RNA二本鎖及びDNA-RNAハイブリッド二本鎖又はDNA-タンパク二本鎖を含む、特異的二本鎖を認識することができる抗体を用いることもできる。次いで、抗体を標識し、アッセイを実施することができ、ここで二本鎖は表面に結合しており、その結果表面での二本鎖の形成の時点でその二本鎖に結合した抗体の存在を検出することができる。
或いは、遺伝子の発現は、遺伝子産物の発現を直接的に定量する免疫学的な方法、例えば細胞又は組織切片の免疫組織化学的染色及び細胞培養又は体液のアッセイによって、測定することもできる。試料液の免疫組織化学的染色及び/又はアッセイに有用な抗体は、モノクローナルでもポリクローナルでもよく、任意の哺乳動物で調製することができる。簡便には、抗体は、天然配列TWEAKポリペプチドに対して、又はここで提供されるDNA配列をベースとした合成ペプチドに対して、又はTWEAK DNAに融合し特異的抗体エピトープをコードする外因性配列に対して調製され得る。
TWEAKポリペプチドの形態(一又は複数)は、培地又は宿主細胞の溶菌液から回収することができる。膜結合性であるならば、適切な洗浄液(例えばトリトン(登録商標)-X100)又は酵素的切断を用いて膜から引き離すことができる。TWEAKポリペプチドの発現に用いられる細胞は、凍結融解サイクル、超音波処理、機械的破壊、又は細胞溶解剤などの種々の化学的又は物理的手段によって破壊することができる。
TWEAKポリペプチドを、組換え細胞タンパク質又はポリペプチドから精製することが望ましい。適切な精製手順の例である次の手順により精製される:すなわち、イオン交換カラムでの分画;エタノール沈殿;逆相HPLC;シリカ又はカチオン交換樹脂、例えばDEAEによるクロマトグラフィー;クロマトフォーカシング;SDS-PAGE;硫酸アンモニウム沈殿;例えばセファデックスG-75を用いるゲル濾過;IgGのような汚染物を除くプロテインAセファロースカラム;及びTWEAKポリペプチドのエピトープタグ形態を結合させる金属キレート化カラムである。この分野で知られ、例えば、Deutscher, Methodes in Enzymology, 182 (1990);Scopes, Protein Purification: Principles and Practice, Springer-Verlag, New York (1982)に記載された多くのタンパク質精製方法を用いることができる。選ばれる精製過程は、例えば、用いられる生産方法及び特に生産される特定のTWEAKポリペプチドの性質に依存する。
最も単純で最も直接的なイムノアドヘシン設計は、アドヘシン(例えばTWEAKないしTWEAKレセプター)の結合ドメインと免疫グロブリン重鎖のFc領域を組み合わせる。通常、本発明のイムノアドヘシンを調整する場合、アドヘシンの結合ドメインをコードする核酸をC末端でイムノグロブリン定常ドメイン配列のN末端をコードする核酸に融合させるが、N末端融合は不可能である。
好ましい実施態様では、アドヘシン配列が免疫グロブリンG1(IgG1)のFc領域のN末端に融合される。アドヘシン配列に重鎖定常領域全体を融合させることができる。しかし、より好ましくは、IgGのFcを化学的に定めるパパイン切断部位の直ぐ上流のヒンジ領域に始まる配列(すなわち、重鎖定常領域の最初の残基を114として残基216)、又は他の免疫グロブリンの類似部位が融合において使用される。特に好適な実施態様では、アドヘシンアミノ酸配列はIgG重鎖の(a)ヒンジ領域及びCH2及びCH3又は(b)CH1、ヒンジ、CH2及びCH3ドメインに融合される。
ここに記載した範囲内の様々な組み立てられたイムノアドヘシンの例は以下に概略的に模式化される:
(a)ACL-ACL;
(b)ACH-(ACH, ACL-ACH, ACL-VHCH, 又はVLCL-ACH);
(c)ACL-ACH-(ACL-ACH, ACL-VHCH, VLCL-ACH, 又はVLCL-VHCH);
(d)ACL-VHCH-(ACH, 又はACL-VHCH, 又はVLCL-ACH);
(e)VLCL-ACH-(ACL-VHCH, 又はVLCL-ACH);及び
(f)(A-Y)n-(VLCL-VHCH)2;
ここで、各Aは同一又は異なったアドヘシンアミノ酸配列を示し;
VLは免疫グロブリン軽鎖可変ドメインであり;
VHは免疫グロブリン重鎖可変ドメインであり;
CLは免疫グロブリン軽鎖定常ドメインであり;
CHは免疫グロブリン重鎖定常ドメインであり;
nは1より大きい整数であり;
Yは共有結合架橋剤の残基を示す。
或いは、アドヘシン配列は、キメラ重鎖を含んでなる免疫グロブリンが得られるように、免疫グロブリン重鎖と軽鎖配列の間に挿入することができる。この実施態様では、アドヘシン配列は免疫グロブリンの各アームの免疫グロブリンの重鎖の3'末端に、ヒンジとCH2ドメインの間、又はCH2とCH3ドメインの間の何れかで融合される。同様な作成物がHoogenboom等, Mol.Immunol.28:1027-1037(1991)によって報告されている。
イムノアドヘシンは最も簡便には免疫グロブリンcDNA配列にインフレームでアドヘシン部分をコードするcDNA配列を融合させることにより構築される。しかし、ゲノム免疫グロブリン断片への融合もまた使用することができる(例えば、Aruffo等,Cell61:1303-1313(1990);及びStamenkovic等,Cell66:1133-1144(1991)を参照されたい)。融合の後者のタイプは、発現に対してIg調節配列の存在を必要とする。IgG重鎖定常領域をコードするcDNAは、脾臓又は抹消血リンパ球から取り出されたcDNAライブラリーからの公開されている配列に基づいて、ハイブリダイゼーションにより、又はポリメラーゼ鎖反応(PCR)法により単離することができる。「アドヘシン」をコードするcDNAとイムノアドヘシンの免疫グロブリンが、選ばれた宿主細胞において効率的な発現を指示するプラスミドベクター内にタンデムに挿入される。
また、これらの分子のロイシンジッパー形態も本発明によって考慮される。「ロイシンジッパー」は当該技術分野において、その融合相手(例えば、ロイシンジッパーが融合するか、又は連結する配列又は分子)の二量体化又は三量体化を増強し、促進し、又は引き起こすロイシンに富む配列のことを意味するために使用される語句である。様々なロイシンジッパーポリペプチドは当該分野において記述されている。例えば、Landschulz等, Science 240:1759 (1988);米国特許第5,716,805号;国際公開公報94/10308;Hoppe等, FEBS Letters 344:1991 (1994);Maniateis等, Nature, 341:24 (1989);Maniatis等, Nature 341:24 (1989)を参照されたい。当業者であれば、ロイシンジッパー配列を前記分子の5'末端又は3'末端に融合しうることは理解するであろう。
モノクローナル抗体は、Kohler及びMilstein, Nature, 256:495 (1975)等により記載されたハイブリドーマ法によって調製することができる。ハイブリドーマ法においては、免疫剤を用いてマウス、ハムスター又はその他の適当な宿主動物通常通りに免疫し、免疫剤と特異的に結合する抗体を産生するか、又は産生することのできるリンパ球を導き出す。別法として、リンパ球をインビトロで免疫することもできる。
好ましい不死化株化細胞は、効率的に融合し、選択された抗体生成細胞による安定した高レベルの抗体発現を支援し、HAT培地のような培地に対して感受性である。より好ましい不死化株化細胞はマウス骨髄腫株であり、これは例えばカリフォルニア州サンディエゴのSalk Institute Cell Distribution Centerやヴァージニア州マナッサスのアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクションより入手可能である。ヒトモノクローナル抗体を生成するためのヒト骨髄腫及びマウス-ヒト異種骨髄腫株化細胞も開示されている[Kozbor, J. Immunol., 133:3001 (1984)、Brodeurら, Monoclonal Antibody Production Techniques and Applications, Marcel Dekker, Inc., ニューヨーク, (1987) pp. 51-63]。
所望のハイブリドーマ細胞が同定された後、クローンを限界希釈法によりサブクローニングし、標準的な方法で増殖させることができる[Goding, 上掲]。この目的のための適当な培地には、例えば、ダルベッコの改変イーグル培地又はRPMI-1640倍地が含まれる。或いは、ハイブリドーマ細胞は哺乳動物においてインビボで腹水として増殖させることもできる。
サブクローンによって分泌されたモノクローナル抗体は、例えばプロテインA−セファロース法、ヒドロキシルアパタイトクロマトグラフィー法、ゲル電気泳動法、透析法又はアフィニティークロマトグラフィー等の従来の免疫グロブリン精製方法によって培養培地又は腹水液から単離又は精製される。
このような非免疫グロブリンポリペプチドは、本発明の抗体の定常ドメインに置換でき、或いは本発明の抗体の1つの抗原結合部位の可変ドメインに置換でき、TWEAKないしTWEAKレセプターの特異性を持つ1つの抗原結合部位、及び異なる抗原に対する特異性を持つ部位を有するキメラ性二価抗体を生成する。
一本鎖Fv断片を、Iliades等, FEBS Letters, 409:437-441 (1997)に記載に従って生産できる。様々なリンカーを使用したこのような一本鎖断片の結合は、Kortt等, Protein Engineering, 10:423-433 (1997)に開示されている。抗体の組換え生産及び操作の様々な技術が当技術分野において既知である。当業者によって利用されるそのような技術の例示的実施例を以下に詳述する。
一般的に、ヒト化抗体には非ヒト由来の一又は複数のアミノ酸残基が導入される。これら非ヒトアミノ酸残基は、しばしば、典型的には「移入」可変ドメインから得られる「移入」残基と称される。ヒト化は、基本的に、ウィンター(Winter)及び共同研究者(Jonesら, Nature, 321:522-525 (1986);Riechmannら, Nature, 332:323-327 (1988);Verhoeyenら, Science, 239:1534-1536 (1988))の方法に従って、齧歯類CDR又はCDR配列をヒト抗体の対応する配列に置換することにより実施される。
よって、このような「ヒト化」抗体は、無傷のヒト可変ドメインより実質的に少ない分が非ヒト種由来の対応する配列で置換されたキメラ抗体である。実際には、ヒト化抗体は典型的には幾つかのCDR残基及び場合によっては幾つかのFR残基が齧歯類抗体の類似する部位からの残基によって置換されたヒト抗体である。
ヒトモノクローナル抗体はハイブリドーマ法により作成することができる。ヒトモノクローナル抗体の生成のためのヒト骨髄腫及びマウス−ヒト異種骨髄腫の細胞株は、例えば、Kozbor, J. Immunol. 133, 3001 (1984), 及びBrodeur他, Monoclonal Antibody Production Techniques and Applications, pp.51-63 (Marcel Dekker, Inc., ニューヨーク, 1987)に記載されている。
内在性の免疫グロブリン産生がない状態で、免疫化によりヒト抗体のレパートリーを産生することのできるトランスジェニック動物(例えば、マウス)を作ることが現在では可能である。例えば、キメラ及び生殖系列突然変異体マウスにおける抗体重鎖結合領域(JH)遺伝子の同型接合除去が内因性抗体産生の完全な阻害をもたらすことが記載されている。このような生殖系列突然変異体マウスにおけるヒト生殖系列免疫グロブリン遺伝子列の移入は、抗原刺激時にヒト抗体の産生をもたらす。Jakobovitsら, Proc.Natl.Acad.Sci.USA, 90:2551 (1993);Jakobovitsら, Nature 362:255-258 (1993)を参照のこと。
二重特異性抗体は、少なくとも2つの異なる抗原に対して結合特異性を有するモノクローナル抗体、好ましくはヒトもしくはヒト化抗体である。本発明の場合、結合特異性の一方はTWEAKないしTWEAKレセプターに対するものである。
二重特異性抗体を作成する方法は当該技術分野において周知である。伝統的には、二重特異性抗体の組換え生産は、二つの重鎖が異なる特異性を持つ二つの免疫グロブリン重鎖/軽鎖対の発現に基づく。Millstein及びCuello, Nature, 305:537-539 (1983)。免疫グロブリンの重鎖と軽鎖を無作為に取り揃えるため、これらハイブリドーマ(クアドローマ)は10種の異なる抗体分子の潜在的混合物を生成し、その内一種のみが正しい二重特異性構造を有する。正しい分子の精製は、アフィニティークロマトグラフィー工程によって通常達成されるが、幾分扱いにくく、生産性が低い。同様の手順が1993年5月13日公開の国際公開公報 93/08829、及びTrauneckerら, EMBO,10:3655-3659 (1991)に開示されている。
二重特異性抗体を作成するための更なる詳細については、例えばSureshら, Methods in Enzymology, 121:210(1986)を参照されたい。
ヘテロ抱合抗体も本発明の範囲に含まれる。ヘテロ抱合抗体は、2つの共有結合した抗体からなる。このような抗体は、例えば、免疫系細胞を不要な細胞に対してターゲティングさせるため(米国特許第4,676,980号)及びHIV感染の治療のために(国際公開公報91/00360;国際公開公報92/200373;欧州特許第03089号)提案されている。ヘテロ抱合抗体は、任意の簡便な架橋法を使用して、調製することができる。適切な架橋剤は当技術分野において既知であり、複数の架橋技術と共に、米国特許第4,676,980号に開示されている。
一部の実施態様においては、抗TWEAKないし抗TWEAKレセプター抗体(マウス抗体、ヒト抗体、ヒト化抗体、及び抗体変異体を含む)は抗体断片である。抗体断片を生産するために様々な技術が開発されている。伝統的には、これらの断片は、無傷の抗体のタンパク分解性消化を介して誘導されている(例えば、Morimotoら, J. Biochem. Biophys. Methods 24:107-117 (1992)及びBrennanら, Science, 229:81(1985)を参照されたい)。しかし、これらの断片は、現在は組換え宿主細胞により直接生産することができる。例えば、Fab'-SH断片は大腸菌から直接回収することができ、化学的に結合してF(ab')2断片を形成することができる(Carterら, Bio/Technology 10:163-167(1992))。他の実施態様では、ロイシンジッパーGCN4を使用してF(ab')2を形成し、F(ab')2分子の構築を促進する。別の実施態様では、組換え宿主細胞の培地からFv、Fab又はF(ab')2断片を直接分離することができる。抗体断片を生産するための他の技術は当業者には明らかである。例えば、パパインを使用して消化を行うことができる。パパイン消化の例は、1994年12月22日公開の国際公開公報94/29348及び米国特許第4,342,566号に開示されている。抗体のパパイン消化は、通常、Fab断片と呼ばれる2つの同一の抗原結合断片を生成する。各Fab断片は単一の抗原結合部位、及び残存性Fc断片を持つ。ペプシン処理により、2つ抗原結合部位を持ち、抗原に架橋結合する能力のあるF(ab')2が生成される。
抗原消化で生成されるFab断片は、軽鎖の定常ドメイン及び重鎖の第一定常ドメイン(CH1)も含む。Fab'断片は、それに加えて、抗原ヒンジ領域由来の1以上のシステインを含む重鎖のCH1ドメインのカルボキシ末端に少数の残基を持つ点においてFab断片と異なる。本発明では、定常ドメインのシステイン残基が遊離チオール基を持つFab'として、ここではFab'-SHと記載する。F(ab')2抗体断片は、もともとそれらの間にヒンジシステインを有するFab'断片の対として生成されたものである。抗体断片の他の化学的結合も知られている。
抗体のグリコシル化変異体は、抗体のグリコシル化のパターンが変更された変異体である。変更するとは、抗体に見られる1以上の炭水化物部分を除去し、抗体に1以上の炭水化物部分を加え、グリコシル化の組成(グリコシル化パターン)、グリコシル化の範囲、その他を変更することを意味する。グリコシル化変異体は、例えば、抗体をコードする核酸配列について、1以上のグリコシル化部位の、除去、変更、及び/又は付加を行うことにより調製することができる。
抗体へのグリコシル化部位の付加は、(N−結合グリコシル化部位について)上述のトリペプチド配列の1又は複数を有するようにアミノ酸配列を変更することにより常套的に達成される。変更は、また、(O−結合グリコシル化部位について)元の抗体の配列に対して1以上のセリン又はスレオニン残基を付加又は置換することにより行ってもよい。
三重特異性抗体も本発明の範囲に含まれる。そのような抗体は、例えばIliades等、上掲のKortt等, 上掲に記載されている。
ADEPTに有用な免疫コンジュゲートの酵素成分には、より活性な細胞毒形態に転化するように、プロドラッグに作用し得る任意の酵素が含まれる。限定するものではないが、この発明の方法に有用な酵素には、ホスファート含有プロドラッグを遊離の薬剤に転化するのに有用なアルカリ性ホスファターゼ;スルファート含有プロドラッグを遊離の薬剤に転化するのに有用なアリールスルファターゼ;非毒性5-フルオロシトシンを抗ガン剤5-フルオロウラシルに転化するのに有用なシトシンデアミナーゼ;プロテアーゼ、例えばセラチアプロテアーゼ、サーモリシン、サブチリシン、カルボキシペプチダーゼ及びカテプシン(例えば、カテプシンB及びL)で、ペプチド含有プロドラッグを遊離の薬剤に転化するのに有用なもの;カスパーゼ−3などのカスパーゼ;D-アミノ酸置換基を含有するプロドラッグの転化に有用なD-アラニルカルボキシペプチダーゼ;炭水化物切断酵素、例えばグリコシル化プロドラッグを遊離の薬剤に転化するのに有用なノイラミニダーゼ及びβガラクトシダーゼ;βラクタムで誘導体化された薬剤を遊離の薬剤に転化させるのに有用なβラクタマーゼ;及びペニシリンアミダーゼ、例えばそれぞれフェノキシアセチル又はフェニルアセチル基で、それらのアミン性窒素において誘導体化された薬剤を遊離の薬剤に転化するのに有用なペニシリンVアミダーゼ又はペニシリンGアミダーゼが含まれる。或いは、「アブザイム」としてもまた公知の、酵素活性を有する抗体を、遊離の活性薬剤に本発明のプロドラッグを転化させるために使用することもできる(例えば、Massey, Nature 328:457-458(1987)を参照)。抗体-アブザイムコンジュゲートは、ここで記載されているようにして、腫瘍細胞群にアブザイムを送達するために調製することができる。
さらなる抗体の修飾を考慮する。例えば、抗体を様々な非タンパク質様ポリマー、例えばポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、ポリオキシアルキレン、又はポリエチレングリコール及びポリプロピレングリコールのコポリマー、或いはポリグルタミン酸等のその他の分子の1つに結合させることができる。または抗体を、例えばコアセルベーション技術又は界面重合(例えばそれぞれヒドロキシメチルセルロース又はゼラチンマイクロカプセル及びポリ−(メチルメタクリル酸)マイクロカプセル)により、コロイド性薬剤送達系(例えばリポソーム、アルブミン微粒子、マイクロエマルジョン、ナノ粒子及びナノカプセル)に調製したマイクロカプセルに封入することができる。このような技術はRemington's Pharmaceutical Sciences, 16th edition, Osol, A., Ed., (1980)に開示されている。抗体の血清半減期を増加させるため、例えば、米国特許第5,739,277号に記載のように、サルベージレセプター結合エピトープを抗体(特に抗体断片)に包含してもよい。ここで使用する「サルベージレセプター結合エピトープ」という用語は、インビボでIgG分子の血清半減期を増加させるIgG分子(例えばIgG1、IgG2、IgG3、又はIgG4)のFc領域のエピトープを指す。
本発明の抗体は重合によって安定しうる。これは、多官能価のポリマーを介して直接的又は間接的に、多官能性架橋剤にて単量体鎖を架橋することによって達成しうる。通常、2つの実質的に同一のポリペプチドは、二機能性架橋剤によってそれらのC-又はN-末端で架橋される。薬剤は、末端アミノ及び/又はカルボキシル基を架橋するために用いられる。通常、両方の末端カルボキシル基又は両方の末端アミノ基は互いに架橋されるが、適当な架橋剤の選別によって、一方のポリペプチドのαアミノは他方のポリペプチドの末端カルボキシル基に架橋される。好ましくは、ポリペプチドはそのC末端でシステイン置換される。公知技術の条件下で、ジスルフィド結合が末端システインの間に形成され、それによって、ポリペプチド鎖を架橋する。例えば、遊離システインの金属触媒性酸化によって、又は、適切に修飾されたシステイン残基の求核置換によってジスルフィド架橋が都合よく形成される。架橋剤は、ポリペプチドに存在するアミノ酸の作用側鎖の同一性に依存して選択する。例えば、ポリペプチド内のシステインがC末端以外の付加部位に存在する場合、ジスルフィド架橋は好ましくない。また、メチレン基架橋によって架橋されるペプチドも包含される。
ある実施態様では、アンタゴニスト又はアゴニストと、溶解度及び/又は安定性を高めるのに十分なイオン強度を付与する賦形剤を含有する組成物が提供され、その組成物は6(又は約6)〜9(又は約9)のpHを有する。アンタゴニスト又はアゴニストは、例えば上述した方法のような、所望の純度を達成するのに適した任意の方法で調製され得る。ある実施態様では、アンタゴニスト又はアゴニストは、宿主細胞において組換え的に発現されるか、化学的合成法により調製される。製剤中のアンタゴニスト又はアゴニストの濃度は、例えば製剤の意図される用途に応じて変わりうる。当業者であれば、過度の実験をすることなく、アンタゴニスト又はアゴニストの所望の濃度を決定することができる。
組成物は、好ましくは6(又は約6)〜9(又は約9)、より好ましくは約6.5〜約8.5、さらに好ましくは約7〜約7.5のpHを有する。この実施態様の好ましい側面では、組成物は、組成物のpHを少なくとも約6〜約8に保持するためのバッファーをさらに含有する。使用され得るバッファーの例には、限定されるものではないが、Tris、HEPES及びヒスチジンが含まれる。Trisを使用する場合、pHは、場合によっては約7〜約8.5に調節され得る。Hepes又はヒスチジンを使用する場合は、pHは、場合によっては約6.5〜7に調節され得る。場合によっては、バッファーは、製剤中で約5mM〜約50mMの濃度で使用される。
本発明の製剤は、アンタゴニスト又はアゴニストに加えて、上述した成分、さらには種々の例えばの賦形剤又は成分を含有していてもよい。場合によっては、製剤は、非経口投与のために、製薬的又は非経口的に許容可能な担体、すなわち使用される濃度及び用量で受容者に対して毒性がなく、製剤の他の成分と融和性のあるものを含有してよい。場合によっては、担体は非経口用担体、例えば受容者の血液と等張な溶液である。このような担体ビヒクルの例には、水、生理食塩水、又は緩衝溶液、例えばリン酸緩衝液(PBS)、リンガー液及びデキストロース液が含まれる。種々の任意の製薬的に許容可能な担体、賦形剤又は安定剤は、Remington's Pharmaceutical Sciences, 16th, Osol, A.編(1980)に、さらに記載されている。
本発明の組成物は、TWEAKアンタゴニスト又はTWEAKアゴニストが結晶又は非晶質の沈殿物の形態をした、液体製剤(液状溶液又は液状懸濁液)、及び凍結乾燥製剤、並びに懸濁製剤でありうる。
治療投与に使用される製剤は無菌でなければならない。滅菌は、滅菌濾過膜(例えば0.2ミクロンの膜)を通した濾過により容易に達成される。治療用組成物は、一般的に無菌のアクセスポート、例えば、皮下注射針で貫通可能なストッパーを有する静脈内溶液バッグ又はバイアルを具備する容器に配されている。
組成物は通常、単位毎又は多数回用量容器、例えば封入されたアンプル又はバイアルに、水溶液、又は再構成用の凍結乾燥された製剤として貯蔵される。容器は、当該分野で任意の入手可能な容器で、常法を用いて充填されるものであってよい。場合によっては、製剤は、注射ペン装置(又は、ペン装置に嵌合するカートリッジ)、例えば製剤の治療的送達に適した、当該分野で入手可能なもの(例えば、米国特許第5,370,629号を参照)に収容されうる。注射用溶液は、例えば注射用の水を使用し、凍結乾燥されたアンタゴニスト又はアゴニスト製剤を再構成することにより調製することができる。
そのような疾患を治療する本発明の方法では、アンタゴニスト又はアゴニストの製剤は、注入又は注射を含む任意の適切な技術により、哺乳動物に直接投与することができる。特定の投与経路は、アンタゴニスト又はアゴニストの使用による、知覚又は予想される任意の副作用を含む、患者の医薬履歴、及び是正する特定の疾患などに依存するであろう。非経口投与の例には、組成物の皮下、筋肉内、静脈内、動脈内及び腹膜内投与が含まれる。製剤は、好ましくは繰り返し静脈内(i.v.)、皮下(s.c.)、又は筋肉内(i.m.)注射又は注入、頭蓋内注入として、あるいは鼻内又は肺内送達に適したエアロゾル製剤として投与される(肺内送達については、例えば欧州特許第257,956号を参照)。
注射の浸透圧は、皮下及び筋肉内注射において重要であり得る。注射用溶液が低張又は高張であると、注入時に、患者に痛みが生じるおそれがある。通常、ここで治療用の注射用製剤は、注射用溶液の相対浸透圧が約300mosm〜約600mosmになるようにされることが好ましい。
さらに付加的な治療が本方法において使用され得ることを考慮する。一又は複数の他の治療には、限定されるものではないが、放射線治療、サイトカイン(類)、増殖阻害剤(類)、化学治療剤(類)、細胞障害剤(類)、チロシンキナーゼインヒビター、rasファルネシルトランスフェラーゼインヒビター、血管新生阻害剤、サイクリン依存性キナーゼインヒビター、及びヒストンアセチラーゼインヒビター及び/又はメチル化インヒビターなどのクロマチン組織修復剤など、当該分野で公知であり、更に上記に定義されるものであり、TWEAKアンタゴニスト又はTWEAKアゴニストと組み合わせて(例えば、同時に又は連続して)投与しうるものの投与が含まれる。さらに、治療は、CD20抗体(RituxanTMを含む)又はHerレセプター抗体(HerceptinTMを含む)等の腫瘍又は他の細胞抗原を標的にする治療用抗体、並びに抗-血管新生抗体、例えば抗VEGF、又はEGFR(TarcevaTMなど)などの他のレセプターを標的にするか、腫瘍ワクチン接種と組み合わせて用いるための抗体をベースにしている。
また、他の抗原に対する抗体、例えばCD20、CD11a、CD18、CD40、ErbB2、EGFR、ErbB3、ErbB4、血管内皮因子(VEGF)、又は他のTNFRファミリーのメンバー(例えば、OPG、DR4、DR5、TNFR1、TNFR2)に結合する抗体を投与することも好ましい。別法として、あるいは付加的に、ここに開示した同一の又は二又はそれ以上の異なる抗原に結合する二又はそれ以上の抗体を患者に同時投与してもよい。しばしば、患者に一又は複数のサイトカインを投与することも有利である。
上記したように、本発明のアンタゴニスト及びアゴニストは様々な有用性を有する。例えば、TWEAKアンタゴニストは、癌などの哺乳動物の病的状態の治療方法に用いてもよい。TWEAKアゴニストは哺乳動物の免疫関連疾患の治療に用いてもよい。ここで記載されている様々な病的状態の哺乳動物の診断は、熟練した専門家によってなされることができる。診断用技術は、例えば、哺乳動物の癌又は免疫関連疾患の診断ないし検出をする分野において有用である。例えば、癌は、限定するものではないが、触診、血液分析、X線、NMRなどを含む技術により同定してもよい。また、免疫関連疾患は直ちに同定されうる。全身エリテマトーデスにおいて、疾患の中心的媒体は、自己タンパク質/組織に対する自己応答性抗体の生成と続いて起こる免疫媒介性炎症である。腎臓、肺、筋骨格系、皮膚粘膜、目、中枢神経系、心血管系、消化管、骨髄及び血液を含む多数の器官及び系が、臨床的に影響を受ける。
脊椎関節症は、いくつかの共通した臨床的特徴とHLA-B27遺伝子産物の発現との共通の関連性を持つ疾患のグループである。該疾患には:バセドウ氏病(ankylosing sponylitis)、ライター症候群(反応性関節炎)、炎症性大腸疾患に関連した関節炎、乾癬に関連した脊椎炎、若年発生脊椎関節症及び未分化脊椎関節症が含まれる。顕著な特徴には、脊椎炎を伴うか伴わない仙腸関節炎;炎症非対称性関節炎;HLA-B27(クラスI MHCのHLA-B座位にある血清学的に定義された対立遺伝子)との関連;眼の炎症、及び他のリウマチ疾患に関連した自己抗体の不在が含まれる。疾患の誘導に対する鍵として最も関わっている細胞はCD8+Tリンパ球で、クラスI MHC分子により提示される抗原を標的としている細胞である。CD8+T細胞は、MHCクラスI分子により発現された外来ペプチドであるかのように、クラスI MHC対立遺伝子HLA-B27に対して反応する。HLA-B27のエピトープが細菌性又は他の微生物の抗原性エピトープを模倣し、よってCD8+細胞の反応を誘発すると仮定されている。
皮膚筋炎、多発性筋炎及び他のものを含む特発性炎症ミオパシーは病因がよく知られていない慢性筋肉炎症疾患であり、筋肉の弱化に至る。筋肉損傷/炎症は多くの場合対照的で進行性である。自己抗体は多くの形態と関連している。これらの筋炎特異的自己抗体は、タンパク質合成に関与する成分、タンパク質及びRNAに対して産生されその機能を阻害する。
全身性血管炎症は一次病巣が炎症で、続いて血管にダメージを受け、結果として冒された脈管により供給される組織に虚血/壊死/変性が生じ、いくつかのケースでは最終的な末端器官機能障害になるといった疾患である。また、血管炎(vasculitides)は他の免疫炎症媒介疾患、例えばリウマチ様関節炎、全身性硬化症等、特に免疫複合体の生成に関連した疾患等の続発症として又は二次病変として生じる場合がある。原発性全身性血管炎症グループの疾患には:全身壊死性血管炎:多動脈炎結節(polyarteritis nodosa)、アレルギー性脈管炎及び肉芽腫症、多脈管炎:ヴェゲナー肉芽腫症;リンパ腫様肉芽腫症:及び巨細胞動脈炎が含まれる。その他の血管炎には:粘膜皮膚リンパ節症候群(MLNS又は川崎病)、隔離されたCNS血管炎、ベヘット(Behet's)病、閉塞性血栓性血管炎(バージャー病)及び皮膚壊死性細静脈炎(venulitis)が含まれる。列挙した血管炎のほとんどの種類の発病メカニズムは、主に脈管壁に免疫グロブリン複合体が付着し、続いてADCC、補体活性又は双方を介して炎症反応が誘発されることによると考えられている。
自己免疫性溶血性貧血、免疫再生不良性貧血、及び発作性夜間血色素尿を含む自己免疫溶性血性貧血は、赤血球(いくつかの場合においては血小板もまた含む他の血液細胞)表面で発現した抗原と反応する抗体が産出される結果によるものであり、補体媒介溶解及び/又はADCC/Fc-レセプター-媒介メカニズムを介して、その抗体被覆細胞の除去に反映される。
他の臨床的環境における血小板減少性紫斑病及び免疫仲介血小板減少を含む自己免疫性血小板減少では、血小板破壊/除去が、抗体又は補体が血小板に接合し、続いて補体溶解、ADCC又はFc-レセプター-媒介メカニズムにより除去される結果として生じる。
I型真性糖尿病又はインスリン依存性糖尿病は膵臓ランゲルハンス島β細胞の自己免疫破壊であり;この破壊は自己抗体及び自己反応性T細胞により媒介される。また、インスリン又はインスリン様レセプターに対する抗体は、インスリン-非反応性の表現型をつくりだすことができる。
糸球体腎炎及び尿細管間質性腎炎を含む免疫仲介腎疾患は、腎抗原に対する自己反応性抗体又はT細胞が産生される結果として直接的に、又は他の非腎抗原に対して反応性である、腎臓中の抗体及び/又は免疫複合体の沈着の結果として間接的に、腎組織に抗体又はT細胞媒介傷害が生じることによるものである。よって、免疫複合体の生成をもたらす他の免疫媒介疾患により、間接的続発症として免疫媒介腎疾患も誘発しうる。直接的及び間接的免疫メカニズムの双方により、結果として、器官機能が損なわれ、いくつかの場合では腎臓機能不全に進行する、病巣発達を腎組織に生じさせ/誘発する炎症反応が生じる。体液及び細胞免疫メカニズムの双方が障害の発病に関与しうる。
好球性肺炎;特発性肺線維症及び過敏性肺炎を含む炎症及び線維症の肺疾患には、調節されない免疫炎症反応が関連している。その反応の阻害は治療的に有益であろう。
水疱性皮膚疾患、多形性紅斑及び接触性皮膚炎を含む自己免疫又は免疫媒介皮膚疾患は自己抗体により媒介され、その発病はTリンパ球依存性である。
乾癬はTリンパ球媒介炎症疾患である。病巣にはTリンパ球、マクロファージ及び抗原プロセシング細胞及びある種の好中球の浸潤が含まれる。
拒絶反応及び移植片対宿主疾患(GVHD)を含む移植関連疾患はTリンパ球依存性であり;Tリンパ球の機能を阻害することで改善される。
免疫及び/又は炎症反応への介在が有益である他の疾患は、限定するものではないがウィルス感染(限定するものではないがAIDS、A型、B型、C型、D型、E型肝炎)、細菌感染、真菌感染、原生動物感染及び寄生虫感染(MLRを刺激する分子(又は誘導体/アゴニスト)を治療に利用し、感染要因に対する免疫反応性を増強することができる)を含む感染疾患、MLRを刺激し、治療に利用し、遺伝性、獲得性、感染誘発性(例えばHIV感染)、又は医原性(即ち、化学療法からのもの)免疫不全の状態に対する免疫反応を増強するために治療上用いることが可能な免疫不全疾患(分子/誘導体/アゴニスト)、及び異常増殖である。
実施例において、指される市販の試薬は、特に明記しない限り製造業者の指示に従って用いた。以下の実施例及び本明細書の全体にわたってATCC寄託番号により示されるそれらの細胞の供与源は、アメリカ培養細胞保存機関, Manassas, VAである。特に明記しない限り、本発明は、本明細書中で上記するもの及び以下の教本に記載されるものなどの組換えDNA技術の標準的方法を使用する:Sambrook 等, Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Press N.Y., 1989、Ausubel 等, Current Protocols in Molecular Biology, Green Publishing Associates and Wiley Interscience, N.Y., 1989、Innis 等, PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications, Academic Press, Inc., N.Y., 1990、Harlow 等, Antibodies: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Press, Cold Spring Harbor, 1988、Gait, M.J., Oligonucleotide Synthesis, IRL Press, Oxford, 1984、R.I. Freshney, Animal Cell Culture, 1987、Coligan 等, Current Protocols in Immunology, 1991。
ヒトのPBMCにおけるTWEAK及びFn14の発現分析。
ヒトの末梢血液単核細胞(PBMC)は、製造業者の指示に従って、リンパ球分離メディウム(ICN)にて50mlのヒトのドナー全血液から単離した。細胞は、炎症性刺激の存在及び非存在下にてブレフェルジンA(5ug/mL)を添加した完全なIscoves培地に再懸濁して24時間置いた。刺激後、Fcレセプターは、2ug/mLのFcブロック(Miltenyi Biotec, Auburn, CA)にて室温に20分置いて遮断した。次いで、細胞を、CD3、CD4、CD8、CD11b、CD11c、CD14、CD20、CD45、CD56、HLA-DR、Lin1 FITC (BD Biosciences, San Jose, CA)及びFN14 (e-Biosciences)に対する蛍光コンジュゲートモノクローナル抗体とともに室温に30分置いて表面を染色して、製造業者の指示に従ってBD FACS溶解溶液にて処理して、−70℃に一晩貯蔵した。
細胞を透過させて、室温に30分置いて、TWEAK (e-Biosciences)について染色した。洗浄の後、FACS Calibur(BD Biosciences)にて細胞を分析した。
2.5kbの第一及び5つの下流エキソンすべてを包含するTWEAK遺伝子をPGK-neoカセットに置換して、TNLOX1-3ベクター(Gerber 等, Development, 126:1149-1159(1999))ベースのTWEAKターゲッティングベクターを構築した。コンストラクトは、マウスゲノム由来の以下の2つのDNA範囲を含有した:neoカセットの5'を置き換えたTWEAKの第六及び第七エクソンとTWEAKのエクソン1の一部を包含する3.1kb断片、及びPGK-neoカセットの3'を置換した第一及び第二のSMT3IP1エクソンを包含する4.1kbの断片。
R1胚性幹細胞(Nagy 等, Gene Targeting:A Practical Approach, A.L. Joyner, ed., Oxford University Press, Oxford, England, pp. 147-179 (1993))を、エレクトロポレーションによって線状にしたベクターを形質移入して、G418-耐性クローンを5'-及び3'-特異的DNAプローブを用いたサザンブロット分析により予想される組換え現象の有無についてスクリーニングした(図8に示す)。2つの独立したTWEAK−/−細胞株をC57BL/6胚細胞にマイクロインジェクションした。C57BL/6雌とキメラ雄を交雑して産出したマウスの生殖細胞系の伝達は毛色で検出して、以下の外部(E)及び内部(I)プライマーセットを用いて2ステップゲノムPCR(図8)によって、確認した:E フォワード、TGCCCTAAGCCAGTCTACACCCAGTATTCCTTC (配列番号3)、E リバース、TGGCCTGAAAGAAATGCTCACACTATCACCAAC (配列番号4)、I フォワード、CTTAGAACCAGCCGTAGGAAGGATT (配列番号5)、I リバース、GTGCCAGGGCGTCCAGTACATACAA (配列番号6)。
TWEAKノックアウト動物は、C57BL/6バックグラウンドに最低6回戻し交配した。
定量的RT-PCRによるいくつかの組織の分析から、TWEAK−/−マウスはTWEAK転写産物を発現しなかったのに対して、ノックアウトでは2つの近傍遺伝子であるAPRIL及びSMT31P1のmRNA発現は変化しなかった。(Varfolomeev 等, Mol. Cell. Biol., 24:997-1006 (2004))、図9。
網篩と注射器のゴム栓にて単離した組織を解離することによって、造血器官からの単細胞懸濁液を8週齢のマウスから採取した。単細胞懸濁液をFcブロッキング抗体(2ug/mL、BD Biosciences)とともにインキュベートして、その後、B220、CD3、CD4、CD8、CD11b、CD11c、CD19、CD45、DX5、Lin1 FITC(BD Biosciences, San Jose, CA)、CD161及びF4/80(e-Biosciences)に対する系統特異的コンジュゲートモノクローナル抗体とともに室温で30分間置いて染色した。表面染色後、製造業者の指示に従って、RBCをACK溶解バッファ(Biosource International)にて溶解して、残りの細胞を固定した。TRUカウントビーズ(BD Biosciences)を定量化のためにチューブに加えた。細胞に関連する蛍光を、FACS Calibur計測器及び関連するCell Quest ソフトウェア(BD Biosciences)にて分析した。
100mLのヒトのドナー全血液からヒトのPBMCを単離して、抗TWEAK mAb(CARL-1、e-Biosciences)又はFN14-Fc(図12のアミノ酸1−129を含有してなる融合タンパク質)(Genentech)の存在又は非存在下において、TNF-α(500ng/mL)、LPS(5μg/L)又はIFN-γ(500ng/mL)にて24時間刺激した。刺激後、NK細胞をMiltenyi CD56+ビーズを用いて単離して、Maecker 等, Cancer Cell, 2:139-148(2002)の記載のように、sub-G1 DNA含有量について染色した。
1グループ当たり10匹のTWEAK−/−マウスとTWEAK+/+マウスの腹膜内(i.p.)にLPS(大腸菌055:B5、Sigma)を注射した。100mg/kgから10mg/kgの範囲のLPS用量を滅菌水に溶解した。5日間にわたって1時間ごとにマウスの生存度をモニターした。1グループ当たり10匹のマウスに30mg/kgのLPSを腹腔内投与して、24時間後に血液と脾臓を単離することによって、マウスのサイトカイン分析を行った。単細胞浮遊液を、ブレフェルジンA(5μg/mL)の存在下にて6時間インキュベートした。細胞は、このインキュベーションの最後の20分間でFcブロック(2μg/mL、BD Biosciences)して、系統特異的コンジュゲートモノクローナル抗体であるDX5(NK細胞を識別するため)、CD11b及びF4/80(マクロファージを識別するため)並びにCD45(一般的な白血球抗原)とともに室温で30分間置いて染色した。表面染色後、上記の通りにRBCを溶解した。細胞を透過させて、IFN-γ、IL-12又はIL-10に対する抗体で染色して、FACS Calibur(BD Biosciences)にて分析した。4人の別々のヒトドナーからPBMCを単離することによって、ヒトのサイトカイン分析を行った。ドナーPBMCを、1μg/mLのLPSの存在又は非存在下において、インビトロで16時間インキュベートした。刺激の最後の6時間に、ブレフェルジンAを、5μg/mLの終濃度で細胞に加えた。ヒトのPBMCを、Fcブロック(Miltneyi)にて室温に20分間置いてブロックして、室温に30分間置いて表面染色した(CD3、CD56、CD14、CD45、BD Biosciences)。表面染色後、製造業者の指示に従ってRBCを細胞内染色のために溶解した。細胞を固定して、透過させて、IFN-γ又はIL-12抗体で染色して、FACS Caliburにて分析した。
それぞれMiltenyi CD56+及びCD11b+ビーズを用いてヒトのドナーの脾臓からNK細胞及びマクロファージを単離した。1.0×106個のNK細胞/0.5mLは、1.0×106個のマクロファージ/0.5mL マクロファージ-SFMメディウム(Invitrogen)とともにインキュベートした。細胞を無血清培地中に12時間静置し、その後1μg/mLのLPSにて刺激した。Perez 及び Nolan (Krutzik 等, Clin. Immunol., 110:206-221 (2004)、Perez 等, Meth. Mol. Biol., 263:67-94 (2004)、Perez and Nolan, Nat. Biotechnol., 20:155-162 (2002))により概説されるように、12時間後、細胞をCD56及びCD11bについて表面染色した後に、ホスホ-STAT-1について細胞内染色した。
NK細胞及びマクロファージは、それぞれMiltenyi CD56+及びCD11b+ビーズを用いてドナーのヒト脾臓から単離した。5.0×106個のNK細胞を、測定時ごとに5mLのマクロファージ-SFMメディウム中で5.0×106個のマクロファージとともにインキュベートした。細胞を12時間静置し、TWEAK(100ng/mL)又はTNF-α(100ng/mL)にて刺激した。溶解物(20μg総タンパク)及び免疫沈降物(50μg総タンパク)は、製造業者の指示に従って(Cell Signaling, Beverly, MA)調製した。その後のイムノブロット及び免疫沈降のためにすべての抗体をCell Signalingから購入して、そのプロトコールに従って実験を行った。
3、6及び12月齢の雄のTWEAK−/−マウス及びTWEAK+/+マウスの組織は、重さを量り、固定し、切片化し、病理学的状態について分析した。ヘマトキシリン‐エオジン染色した切片は、全体の組織学的異常について分析した。ナンキンマメ凝集素(Vector Research, Burlingame, CA)で染色した凍結切片は、胚中心の構造について分析した。12か月齢の雄マウスから5つのTWEAK−/−脾臓及びTWEAK+/+脾臓を分離して、染色して、製造業者の指示に従ってTruCountビーズ(BD Biosciences)を用いてリンパ球細胞実質の数量化を行った。
10匹のTWEAK−/−マウス及びTWEAK+/+マウスの右の後横腹に、0.1〜0.5×106細胞/0.1mL滅菌生理食塩水を皮下投与(s.c.)した。毎日マウスをモニターし、4週間(B16.BL6研究)又は6週間(B16.F10研究)1日おきに腫瘍の測定を行った。研究終了時に腫瘍を取り出して、重さを量り、まず網篩に通して分離した後に、非酵素的な細胞解離バッファ(Sigma)にて5分間処理して、単細胞浮遊液を作製した。腫瘍を注入したマウスから脾細胞を入手し、ブレフェルジンAの存在下にて滅菌生理食塩水ないしは腫瘍細胞浮遊液の何れかとともにインキュベートして、細胞内サイトカイン産生を測定した。
様々な造血組織のTWEAK発現は既に報告された(Chicheportiche 等, 上掲、Marsters 等, 上掲)が、TWEAKを発現するとして既に報告されたリンパ系細胞は単球だけである(Nakayama 等, J. Exp. Med., 192:1373-1380 (2000))。TWEAKの免疫学的標的をさらに説明するために、様々な炎症性刺激の後に、多くのリンパ系集団をTWEAK及びそのレセプターであるFN14の発現について分析した(図1A及び1B)。
TWEAK及びそのレセプターであるFN14は、先天性免疫系の細胞により発現されることが示された(図1を参照)。NK細胞、マクロファージ及び樹状細胞だけがTWEAK(図1A)及びそのレセプターであるFN14(図1B)を発現することが明らかになった。さらに、レセプターとリガンドの表面発現は、IFN-γ又はPMAによる刺激の後に上方制御された。NKT細胞はTWEAKを発現したがFN14は発現せず、また何れもIFN-γ又はPMAによって上方制御されなかった。T細胞及びB細胞を含む他のリンパ系の細胞型は、TWEAK又はFN14を有意なレベルで発現しなかった(データは示さない)。
Claims (35)
- 哺乳動物の癌細胞を有効量のアンタゴニスト分子に曝すことを含む癌の治療方法であって、該アンタゴニストは、
q) 抗TWEAK抗体;
r) 抗TWEAKレセプター抗体;
s) TWEAKレセプターイムノアドヘシン;及び
t) TWEAKレセプターの細胞内シグナル伝達をブロックする又は妨げる薬剤又は分子
からなる群から選択されるものである、治療方法。 - 前記TWEAKレセプターイムノアドヘシンが免疫グロブリンのFc領域に融合したTWEAKレセプター配列を含んでなる、請求項1に記載の方法。
- 前記TWEAKレセプター配列がFN14レセプターの細胞外ドメイン配列を含んでなる、請求項2に記載の方法。
- 前記抗TWEAK抗体が、図11(配列番号1)のアミノ酸94−249を含んでなるヒトTWEAKポリペプチドを結合する、請求項1に記載の方法。
- 前記抗TWEAK抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体又はヒト抗体である、請求項4に記載の方法。
- 前記抗TWEAKレセプター抗体が、図12(配列番号2)のアミノ酸配列を含んでなるヒトFN14レセプターポリペプチドを結合する、請求項1に記載の方法。
- 前記抗TWEAKレセプター抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体又はヒト抗体である、請求項6に記載の方法。
- 前記哺乳動物の癌細胞が、化学療法剤、放射線、プロドラッグ、細胞障害性剤又は増殖阻害剤にも曝される、請求項1に記載の方法。
- 哺乳動物に有効量のアンタゴニスト分子が投与されることを含む、哺乳動物のNK細胞活性を亢進する方法であって、該アンタゴニストは、
u) 抗TWEAK抗体;
v) 抗TWEAKレセプター抗体;
w) TWEAKレセプターイムノアドヘシン;及び
x) TWEAKレセプターの細胞内シグナル伝達をブロックする又は妨げる薬剤又は分子
からなる群から選択されるものである、方法。 - 前記TWEAKレセプターイムノアドヘシンが免疫グロブリンのFc領域に融合したTWEAKレセプター配列を含んでなる、請求項9に記載の方法。
- 前記TWEAKレセプター配列がFN14レセプターの細胞外ドメイン配列を含んでなる、請求項10に記載の方法。
- 前記抗TWEAK抗体が、図11(配列番号1)のアミノ酸94−249を含んでなるヒトTWEAKポリペプチドを結合する、請求項9に記載の方法。
- 前記抗TWEAK抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体又はヒト抗体である、請求項12に記載の方法。
- 前記抗TWEAKレセプター抗体が、図12(配列番号2)のアミノ酸配列を含んでなるヒトFN14レセプターポリペプチドを結合する、請求項9に記載の方法。
- 前記抗TWEAKレセプター抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体又はヒト抗体である、請求項14に記載の方法。
- 哺乳動物に有効量のアンタゴニスト分子が投与されることを含む、哺乳動物の先天性TH1応答又は活性を亢進する方法であって、該アンタゴニストは、
y) 抗TWEAK抗体;
z) 抗TWEAKレセプター抗体;
aa) TWEAKレセプターイムノアドヘシン;及び
bb) TWEAKレセプターの細胞内シグナル伝達をブロックする又は妨げる薬剤又は分子
からなる群から選択されるものである、方法。 - 前記TWEAKレセプターイムノアドヘシンが免疫グロブリンのFc領域に融合したTWEAKレセプター配列を含んでなる、請求項16に記載の方法。
- 前記TWEAKレセプター配列がFN14レセプターの細胞外ドメイン配列を含んでなる、請求項17に記載の方法。
- 前記抗TWEAK抗体が、図11(配列番号1)のアミノ酸94−249を含んでなるヒトTWEAKポリペプチドを結合する、請求項16に記載の方法。
- 前記抗TWEAK抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体又はヒト抗体である、請求項19に記載の方法。
- 前記抗TWEAKレセプター抗体が、図12(配列番号2)のアミノ酸配列を含んでなるヒトFN14レセプターポリペプチドを結合する、請求項16に記載の方法。
- 前記抗TWEAKレセプター抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体又はヒト抗体である、請求項21に記載の方法。
- 哺乳動物に有効量のアンタゴニスト分子が投与されることを含む、哺乳動物の先天性TH2媒介性疾患の治療方法であって、該アンタゴニストは、
cc) 抗TWEAK抗体;
dd) 抗TWEAKレセプター抗体;
ee) TWEAKレセプターイムノアドヘシン;及び
ff) TWEAKレセプターの細胞内シグナル伝達をブロックする又は妨げる薬剤又は分子
からなる群から選択されるものである、方法。 - 前記TWEAKレセプターイムノアドヘシンが免疫グロブリンのFc領域に融合したTWEAKレセプター配列を含んでなる、請求項23に記載の方法。
- 前記TWEAKレセプター配列がFN14レセプターの細胞外ドメイン配列を含んでなる、請求項24に記載の方法。
- 前記抗TWEAK抗体が、図11(配列番号1)のアミノ酸94−249を含んでなるヒトTWEAKポリペプチドを結合する、請求項23に記載の方法。
- 前記抗TWEAK抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体又はヒト抗体である、請求項26に記載の方法。
- 前記抗TWEAKレセプター抗体が、図12(配列番号2)のアミノ酸配列を含んでなるヒトFN14レセプターポリペプチドを結合する、請求項23に記載の方法。
- 前記抗TWEAKレセプター抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体又はヒト抗体である、請求項28に記載の方法。
- 前記TH2媒介性疾患がアレルギー又は喘息である、請求項23に記載の方法。
- 哺乳動物に有効量のアゴニスト分子が投与されることを含む、免疫関連疾患の治療方法であって、該アゴニストは、
a) 抗TWEAKレセプター抗体;
b) TWEAKポリペプチド;及び
c) TWEAKポリペプチド変異体
からなる群から選択されるものである、方法。 - 前記抗TWEAKレセプター抗体が、図12(配列番号2)のアミノ酸配列を含んでなるヒトFN14レセプターポリペプチドを結合する、請求項31に記載の方法。
- 前記抗TWEAKレセプター抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体又はヒト抗体である、請求項32に記載の方法。
- 前記免疫関連疾患が自己免疫性疾患である、請求項31に記載の方法。
- 前記自己免疫性疾患が、クローン病、炎症性腸疾患、多発性硬化症又は関節炎である、請求項34に記載の方法。
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