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JP2011000040A - せん断力影響評価方法 - Google Patents

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JP2011000040A
JP2011000040A JP2009145220A JP2009145220A JP2011000040A JP 2011000040 A JP2011000040 A JP 2011000040A JP 2009145220 A JP2009145220 A JP 2009145220A JP 2009145220 A JP2009145220 A JP 2009145220A JP 2011000040 A JP2011000040 A JP 2011000040A
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shear force
microchannel
cells
shearing force
liquid
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JP2009145220A
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Kosuke Ishii
浩介 石井
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IHI Corp
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IHI Corp
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Publication date
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Abstract

【課題】従来よりも簡単にせん断力が細胞へ与える影響を評価することができるせん断力影響評価方法を提供することを目的とする。
【解決手段】せん断力影響評価方法が、細胞が配置されたマイクロ流路に所定の流速の液体を流入させることによって、細胞へのせん断力を発生させるせん断力発生工程と、せん断力発生工程においてマイクロ流路に液体が流入された後の細胞が、液体の流入によるせん断力に応じて破砕されたか否か評価する細胞破砕評価工程と、を具備する。
【選択図】図2

Description

本発明は、せん断力が細胞へ与える影響を評価するせん断力影響評価方法に関する。
混合槽での混合操作は、化学工業等において重要な操作の一つである。すなわち、食品、化粧品、医薬、製薬、塗料等の現場では、反応・抽出・吸収・混合などの種々の処理において、混合操作が活用されている。例えば、混合操作の1つとして、バイオリアクタ等の動物細胞培養槽では、槽内に供給した酸素供給源の気泡及び栄養源等を均一に混合する為に、槽内を撹拌することが行われている。
このような動物細胞培養槽では、特に培養槽が大きくなり、鉛直方向の高さが高くなると、槽内をより均一に混合するために、撹拌によって培養槽内に大きな軸流を生じさせることで高い混合度を得る必要がある。また、一般に密度差のある材料を均一に混合したい場合に、これら材料は、その密度差によって上下に分離し易いため、やはり撹拌によって混合槽内に大きな軸流を生じさせる必要がある。特に、固液混合の場合では、密度差が大きくなって固形分が沈降し易いため、撹拌により軸流を生じさせ、この軸流によって槽内を鉛直方向に撹拌することが一層必要になる。
そして、混合槽では、高い混合度を得る為に、撹拌装置として高性能のものを用いる必要がある。しかしながら、動物細胞培養槽では、撹拌装置の攪拌翼によって生じるせん断力によって動物細胞が破壊/死滅してしまう為に、攪拌効率とせん断力とのバランスを量る必要がある。そして、攪拌装置では、攪拌翼の回転数の上限を決定する為に、任意の回転数で攪拌翼を回転した場合の細胞の増殖率を測定したり、また顕微鏡観察により全体の細胞に対する破砕された細胞や径の小さな細胞の割合を測定することで、攪拌翼の回転数毎の細胞へのせん断力の影響が判断されている。
このように、流体によって生じるせん断力を測定するものとして、下記特許文献1には、液体中に、表面に伝熱面を形成した平板を鉛直に吊し、伝熱面を一様熱流束加熱することで生じる流体の平板周りの自然対流によって平板に作用するせん断力を電子天秤で計測し、該計測値、平板の寸法、発熱量、および流体の熱物性値から演算により液体の粘度を測定する粘度測定装置が開示されている。
特開2003−149114号公報
ところで、上記従来技術では、攪拌翼の回転数の上限を決定する為に、任意の回転数で攪拌翼を回転した場合の細胞の増殖率を測定したり、また顕微鏡観察により全体の細胞に対する破砕された細胞や径の小さな細胞の割合を測定することで、攪拌翼の回転数毎のせん断力が判断されている。しかしながら、この方法では、攪拌装置の回転数を変えながら、回転数毎に、細胞の増殖率を測定したり、また破砕された細胞や径の小さな細胞の割合を測定しなければならない為に、攪拌翼の回転数毎の細胞へのせん断力の影響が判断されるまでに非常に大きな労力を要すると共にせん断力の判断結果が得られるまでに長い時間がかかってしまう。
また、上記特許文献1では、物理的な方法によってせん断力を測定しているが、せん断力が細胞に与える影響を測定することは、困難である。
本発明は、上述した事情に鑑みてなされたものであり、従来よりも簡単にせん断力が細胞へ与える影響を評価することができるせん断力影響評価方法を提供することを目的とする。
上記目的を達成するために、本発明では、せん断力影響評価方法に係る第1の解決手段として、細胞が配置されたマイクロ流路に所定の流速の液体を流入させることによって、前記細胞へのせん断力を発生させるせん断力発生工程と、前記せん断力発生工程において前記マイクロ流路に前記液体が流入された後の前記細胞が、前記液体の流入によるせん断力に応じて破砕されたか否か評価する細胞破砕評価工程と、を具備するという手段を採用する。
本発明では、せん断力影響評価方法に係る第2の解決手段として、上記第1の解決手段において、前記せん断力発生工程では、細胞が付着した細胞培養担体を前記マイクロ流路に配置するという手段を採用する。
本発明では、せん断力影響評価方法に係る第3の解決手段として、第2の解決手段において、前記せん断力発生工程では、流入された前記液体の流れに対して並列になるように複数の前記細胞培養担体が前記マイクロ流路に配置されているという手段を採用する。
本発明では、せん断力影響評価方法に係る第4の解決手段として、第1の解決手段において、せん断力発生工程では、流入された前記液体の流れに対して並列になるように複数の細胞単体が前記マイクロ流路に配置されているという手段を採用する。
本発明では、せん断力影響評価方法に係る第5の解決手段として、上記第1〜第4いずれかの解決手段において、前記せん断力発生工程では、前記液体に膜電位変化検出色素を溶解し、細胞破砕評価工程では、前記膜電位変化検出色素によって細胞膜の電位の変化を検出することで、細胞の破砕を評価するという手段を採用する。
本発明では、せん断力影響評価方法に係る第6の解決手段として、上記第1〜第5いずれかの解決手段において、前記せん断力発生工程では、シリンジポンプによって前記液体を前記マイクロ流路に流入させるという手段を採用する。
本発明によれば、せん断力影響評価方法が、細胞が配置されたマイクロ流路に所定の流速の液体を流入させることによって、細胞へのせん断力を発生させるせん断力発生工程と、せん断力発生工程においてマイクロ流路に液体が流入された後の細胞が、液体の流入によるせん断力に応じて破砕されたか否か評価する細胞破砕評価工程と、を具備する。
このように、せん断力影響評価方法では、動物細胞培養槽の攪拌装置の回転数を変えながら、回転数毎に、細胞の増殖率を測定したり、また破砕された細胞や径の小さな細胞の割合を測定する必要がない為、従来よりも簡単にせん断力が細胞へ与える影響を評価することができる。
本発明の一実施形態に係るせん断力影響評価方法のせん断力発生工程のマイクロキャリア1及びマイクロ流路2の配置を示す斜視図である。 本発明の一実施形態に係るせん断力影響評価方法のせん断力発生工程のマイクロキャリア1、マイクロ流路2及びシリンジポンプ3の位置を示す平面図である。
以下、図面を参照して、本発明の一実施形態について説明する。本実施形態は、せん断力が細胞へ与える影響を評価するせん断力影響評価方法に関する。
本実施形態に係るせん断力影響評価方法における工程について、説明する。
本実施形態に係るせん断力影響評価方法は、動物細胞培養槽の攪拌翼の回転等によって生じるせん断力が細胞へ与える影響を評価する方法であり、せん断力発生工程と、細胞破砕評価工程とを備える。
せん断力影響評価方法における、各工程について、手順に沿って説明する。
まず、せん断力影響評価方法では、せん断力発生工程において、複数(約10個程度)の細胞Cを付着させたマイクロキャリア(細胞培養担体)1を上面側の空いたマイクロ流路2に配置し、図1に示すように、その上を透明平板2aによって覆うことでマイクロ流路2の上面側を閉塞する。図1は、本実施形態に係るせん断力影響評価方法のせん断力発生工程のマイクロキャリア1及びマイクロ流路2の配置を示す斜視図である。
マイクロキャリア1は、細胞を培養する為の担体として細胞培養において用いられるものであり、50μm〜200μm程度のマイクロメートルレベルの微細なビーズ形状をしている。せん断力発生工程では、付着させる細胞の数に応じて各大きさのマイクロキャリア1を適宜使い分ける。なお、1つの細胞あたりの大きさは、10μm〜20μm程度である。
そして、マイクロキャリア1は、ガラスビーズ、プラスチックビーズ又はこれらに陰イオン交換基を結合させたものが基材ビーズとして用いられている。さらに、マイクロキャリア1として、上記基材ビーズの表面をセルロース、コラーゲン、ヒドロキシアパタイトで被覆したものも存在する。
マイクロ流路2は、動物細胞培養に用いる培養液Lに不活性部材製の基板によって構成されている。この不活性材料とは、培養液Lの溶媒、溶質及び化学反応によって生成する化合物に反応性を持たない材料であり、例えば、ガラス、石英、シリカ、マグネシア、ジルコニア、アルミナ、アパタイト、窒化ケイ素、ケイ素、チタン、アルミニウム、イットリウム及びタングステンのような金属の酸化物、炭化物、窒化物、ホウ化物及びケイ化物等のセラミック部材である。また、このほか、不活性材料である限り、金属、プラスチック等をマイクロ流路2の基板として用いることができる。
そして、マイクロ流路2では、その両側壁は不透明部材を用いてもよいが、下面は、上面と同様に透明平板2aを用いる。これは、後述する細胞破砕評価工程において、蛍光顕微鏡によってマイクロキャリア1に付着した細胞を観察する為である。マイクロ流路2では、上面及び下面の透明平板2aによって圧迫することでマイクロキャリア1を固定している。
そして、マイクロキャリア1の両脇に培養液Lを流す為、培養液Lを流す空間を形成することが可能な幅を有するマイクロ流路2を用いる。また、マイクロ流路2の上面及び下面の透明平板2aの圧迫によってマイクロキャリア1をマイクロ流路2に固定する為、マイクロキャリア1の高さに応じた適切な高さ有するマイクロ流路2を用いる。
そして、せん断力発生工程では、マイクロ流路2の上面を透明平板2aによって覆った後に、図2に示すように、シリンジポンプ3の送液口をマイクロ流路2の流入口に差込むと共にマイクロ流路2の排出口に廃液貯めを配設し、所望の流速でシリンジポンプ3によって、ローダミン123(膜電位変化検出色素)を溶解させた培養液Lをマイクロ流路2に流入させる。すると、せん断力発生工程では、流入された培養液Lがマイクロキャリア1の両脇を流れ、培養液Lの流速に応じたせん断力が発生する。
図2は、本実施形態に係るせん断力影響評価方法のせん断力発生工程のマイクロキャリア1、マイクロ流路2及びシリンジポンプ3の位置を示す平面図である。なお、図2における矢印が、シリンジポンプ3による培養液Lのマイクロ流路2への流入方向Fを示している。
シリンジポンプ3とは、脈流が無くかつ高精度に極微量を送液する為のものである。シリンジポンプ3では、予め設定された単位時間辺りの送液量に基づいて、CPU(Central Processing Unit)が注射器(シリンジ)のプランジャを一定速度でモータに押圧させることで、高精度に極微量を送液する。
ローダミン123は、細胞透過性を有する陽イオン蛍光色素であり、負の膜電位である細胞Cの細胞膜に取り込まれる、すなわち破砕またはストレスによって膜電位が変化していない正常な箇所の細胞膜に取り込まれる。そして、ローダミン123は、細胞毒性を引き起こすことなく、さらに比較的速やかに細胞Cの細胞膜に取り込まれる。
そして、上記せん断力発生工程が終了すると、次に、せん断力影響評価方法の細胞破砕評価工程(図示せず)において、せん断力発生工程においてマイクロ流路2に培養液Lが流入された後のマイクロ流路2を蛍光顕微鏡に取り付け、波長495nmの青色の励起光をマイクロ流路2上のマイクロキャリア1に付着する細胞Cへ蛍光顕微鏡に照射させることによって、ローダミン123によって染色された細胞Cを波長520nmの緑色の蛍光を発光させる。
上記せん断力発生工程によって作製した標本を蛍光顕微鏡によって観察すると、マイクロ流路2に流入された培養液Lによって生じるせん断力によって、細胞Cの細胞膜の所定の個所に破損やストレスによる膜電位の変化が生じる場合には、細胞膜の当該所定の個所がローダミン123によって染色されていないことを確認することができる。
細胞破砕評価工程では、細胞Cの細胞膜のローダミン123の染色の有無によって、せん断力に応じて細胞Cの細胞膜が破砕されたか否か評価する。なお、せん断力は、せん断力発生工程におけるマイクロ流路2に流入された培養液Lの流速、培養液Lの流量、マイクロ流路2の形状、マイクロ流路2の大きさ、マイクロキャリア1の形状、マイクロキャリア1の大きさ、細胞Cの形状及び細胞Cの大きさ等に基づいて、算出される。
そして、せん断力発生工程において様々なせん断力を発生させることで、細胞破砕評価工程において、細胞Cが、様々なせん断力に応じて破砕されたか否か評価する。
以上のように、本実施形態に係るせん断力影響評価方法では、せん断力発生工程において、細胞Cを付着させたマイクロキャリア1をマイクロ流路2に配置し、当該マイクロ流路2へシリンジポンプ3にローダミン123を溶解した培養液Lを流入させることによってせん断力を発生させ、細胞破砕評価工程において、細胞Cの細胞膜のローダミン123の染色の有無によって、せん断力に応じて細胞Cの細胞膜が破砕されたか否か評価することで、せん断力による細胞Cへの影響を評価する。
このように、せん断力影響評価方法では、動物細胞培養槽の攪拌装置の回転数を変えながら、回転数毎に、細胞の増殖率を測定したり、また破砕された細胞や径の小さな細胞の割合を測定する必要がない為、従来よりも簡単にせん断力が細胞へ与える影響を評価することができる。
以上、本発明の一実施形態について説明したが、本発明は上記実施形態に限定されることなく、例えば以下のような変形が考えられる。
(1)上記実施形態では、せん断力発生工程において、複数の細胞Cを付着したマイクロキャリア1をマイクロ流路2に配置したが、本発明はこれに限定されない。
例えば、マイクロキャリア1の幅を広くして、マイクロ流路2に流入された培養液Lの流れに対して並列になるように複数のマイクロキャリア1を配置するようにしてもよい。これにより、より多くの細胞Cへのせん断力の影響を評価することができる。また、マイクロ流路2に流入された培養液Lの流れに対して縦列になるように複数のマイクロキャリア1を配置するようにしてもよい。
また、1つの細胞Cを配置できる大きさのマイクロ流路2に1つの細胞Cを配置し、透明平板2aの圧迫によって細胞Cをマイクロ流路2に固定し、当該マイクロ流路2に培養液Lを流入させることによって、せん断力を発生させるようにしてもよい。また、マイクロ流路2に流入された培養液Lの流れに対して並列になるように複数の細胞Cを配置するようにしてもよい。また、マイクロ流路2に流入された培養液Lの流れに対して縦列になるように複数の細胞Cを配置するようにしてもよい。
(2)上記実施形態では、せん断力発生工程において、直線のマイクロ流路2に培養液Lを流すことによって層流を発生させ、当該層流によってせん断力を発生させたが、本発明はこれに限定されない。
例えば、マイクロ流路2に乱流を発生させる乱流発生板を設けることで、マイクロ流路2に乱流を発生させ、当該層流によってせん断力を発生させるようにしてもよい。また、マイクロ流路2は、直線だけでなく、曲線によって構成されていてもよい。
(3)上記実施形態では、せん断力発生工程において、培養液Lをマイクロ流路2に流入したが、本発明はこれに限定されない。
例えば、培養液Lの代わりに、水をマイクロ流路2に流すようにしてもよい。すなわち、細胞Cの形質に影響を与えない液体であればよい。しかしながら、動物細胞培養槽の攪拌装置の攪拌翼の回転によって生じるせん断力を評価するという観点からは、動物細胞培養槽に貯留されている培養液Lを用いることが好ましい。
(4)上記実施形態では、せん断力発生工程において、膜電位変化検出色素としてローダミン123を用いたが、本発明はこれに限定されない。
例えば、ローダミン123の代わりに、膜の完全性を評価する色素としてトリパンブルーを培養液Lに溶解するようにしてもよい。
1…マイクロキャリア、2…マイクロ流路、2a…透明平板、3…シリンジポンプ

Claims (6)

  1. 細胞が配置されたマイクロ流路に所定の流速の液体を流入させることによって、前記細胞へのせん断力を発生させるせん断力発生工程と、
    前記せん断力発生工程において前記マイクロ流路に前記液体が流入された後の前記細胞が、前記液体の流入によるせん断力に応じて破砕されたか否か評価する細胞破砕評価工程と、
    を具備することを特徴とするせん断力影響評価方法。
  2. 前記せん断力発生工程では、細胞が付着した細胞培養担体を前記マイクロ流路に配置することを特徴とする請求項1に記載のせん断力影響評価方法。
  3. 前記せん断力発生工程では、流入された前記液体の流れに対して並列になるように複数の前記細胞培養担体が前記マイクロ流路に配置されていることを特徴とする請求項2に記載のせん断力影響評価方法。
  4. せん断力発生工程では、流入された前記液体の流れに対して並列になるように複数の細胞単体が前記マイクロ流路に配置されていることを特徴とする請求項1に記載のせん断力影響評価方法。
  5. 前記せん断力発生工程では、前記液体に膜電位変化検出色素を溶解し、
    細胞破砕評価工程では、前記膜電位変化検出色素によって細胞膜の電位の変化を検出することで、細胞の破砕を評価することを特徴とする請求項1〜4のいずれかに記載のせん断力影響評価方法。
  6. 前記せん断力発生工程では、シリンジポンプによって前記液体を前記マイクロ流路に流入させることを特徴とする請求項1〜5のいずれかに記載のせん断力影響評価方法。
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* Cited by examiner, † Cited by third party
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JP2014504733A (ja) * 2011-02-07 2014-02-24 バイオカーティス ソシエテ アノニム 改良コード化マイクロキャリア、それらを用いるアッセイシステム、およびアッセイの実施方法
JP2014516582A (ja) * 2011-06-15 2014-07-17 ザ チャールズ スターク ドレイパー ラボラトリー インク 生体模倣環境において細胞を培養するためのデバイスおよび方法
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