JP2011047871A - Blocking agent - Google Patents
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Abstract
【課題】本発明は、蛍光色素で標識した試料中の抗原を、抗原抗体反応を利用して測定する方法において、抗体と未反応蛍光色素の非特異反応自体を抑制するためのブロッキング剤を提供することを課題とする。
【解決手段】蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制するためのブロッキング剤であって、エチルアセチミデート、エチルアセチミデートの塩、トリス塩酸、グリシン、又はリン酸水素ナトリウムのいずれか1以上を含むことを特徴とするブロッキング剤を提供する。
【選択図】図１[PROBLEMS] To provide a blocking agent for suppressing a nonspecific reaction between an antibody and an unreacted fluorescent dye itself in a method for measuring an antigen in a sample labeled with a fluorescent dye using an antigen-antibody reaction. The task is to do.
A blocking agent for suppressing a non-specific reaction between a fluorescent dye and an antibody, which is any one of ethyl acetimidate, a salt of ethyl acetimidate, tris hydrochloride, glycine, or sodium hydrogen phosphate. The blocking agent characterized by including the above is provided.
[Selection] Figure 1
Description
本発明は、標識試薬と抗体との非特異的な反応を抑制するブロッキング剤に関する。さらに詳しくは、蛍光色素で標識した試料中の抗原を、抗原抗体反応を利用して検出する方法において、蛍光色素と抗体との非特異的な反応を抑制するためのブロッキング剤に関する。また、本発明は、前記ブロッキング剤を用いたタンパク質検出方法及びタンパク質検出装置に関する。 The present invention relates to a blocking agent that suppresses nonspecific reaction between a labeling reagent and an antibody. More specifically, the present invention relates to a blocking agent for suppressing a nonspecific reaction between a fluorescent dye and an antibody in a method of detecting an antigen in a sample labeled with a fluorescent dye using an antigen-antibody reaction. The present invention also relates to a protein detection method and protein detection apparatus using the blocking agent.
免疫反応を利用して試料中の目的抗原を検出する方法において、試料を蛍光色素と結合させて、試料中の目的抗原を蛍光標識し、抗原抗体複合体の標識蛍光色素を検出することにより、試料中の目的抗原を定性的にあるいは定量的に測定する方法が知られている。本方法において、試料中の抗原と結合しなかった蛍光色素（未反応蛍光色素）が試料中に残存すると、抗体に未反応蛍光色素が非特異的に結合し、バックグラウンドが高くなることが知られている。このような蛍光色素と抗体との非特異反応を防止し、蛍光検出時のバックグラウンドを低減するため、従来、当該未反応蛍光色素をゲル濾過カラムにより取り除き、試料の精製を行っていた。しかし、ゲルろ過カラムを用いて試料を精製すると時間がかかるうえに、工程も増えるという問題があり、測定の簡略化、スピード化が求められていた。
ここで、非特異的な反応によるバックグラウンドの低減を目的とする技術として次のような従来技術が知られている。特許文献１には、ＤＮＡマイクロアレイにおける非特異的に吸着した蛍光色素付ＤＮＡ及び未精製蛍光色素誘導体などの影響を受けずに、消光剤を用いて従来よりも検出感度と再現性を向上させる方法が開示されている。そして、消光剤としては、蛍光共鳴エネルギー転移により蛍光を消光させる物質を用いるとあり、具体的には、ＤＮＰ、テトラメチルローダミンなどが挙げられている。特許文献２には、ハイブリダイゼーション用の特定の固体支持体を調製し、非特異的バックグラウンドを低減する方法が開示されている。
しかし、抗体と未反応蛍光色素の非特異反応自体をブロックするようなブロッキング剤についてはなんら開示も示唆もされていない。
In the method of detecting a target antigen in a sample using an immune reaction, the sample is bound with a fluorescent dye, the target antigen in the sample is fluorescently labeled, and the labeled fluorescent dye of the antigen-antibody complex is detected, A method for measuring a target antigen in a sample qualitatively or quantitatively is known. In this method, it is known that if the fluorescent dye that has not bound to the antigen in the sample (unreacted fluorescent dye) remains in the sample, the unreacted fluorescent dye binds non-specifically to the antibody and the background increases. It has been. In order to prevent such non-specific reaction between the fluorescent dye and the antibody and reduce the background during fluorescence detection, conventionally, the unreacted fluorescent dye has been removed by a gel filtration column and the sample has been purified. However, when a sample is purified using a gel filtration column, there is a problem in that it takes time and the number of steps increases, and there has been a demand for simplification and speeding up of the measurement.
Here, the following conventional techniques are known as techniques for reducing the background due to non-specific reactions. Patent Document 1 discloses a method for improving detection sensitivity and reproducibility by using a quencher without being affected by nonspecifically adsorbed DNA with fluorescent dye and unpurified fluorescent dye derivative in a DNA microarray. Is disclosed. As a quencher, a substance that quenches fluorescence by fluorescence resonance energy transfer is used, and specifically, DNP, tetramethylrhodamine, and the like are mentioned. Patent Document 2 discloses a method for preparing a specific solid support for hybridization and reducing non-specific background.
However, there is no disclosure or suggestion of a blocking agent that blocks the non-specific reaction itself between the antibody and the unreacted fluorescent dye.
本発明は、抗原抗体反応を利用して蛍光色素で標識した試料中の抗原を検出する方法において、抗体と未反応蛍光色素の非特異反応自体を抑制するためのブロッキング剤を提供することを課題とする。また、本発明は、前記ブロッキング剤を用いたタンパク質検出方法及びタンパク質検出装置の提供も課題とする。 An object of the present invention is to provide a blocking agent for suppressing nonspecific reaction itself between an antibody and an unreacted fluorescent dye in a method for detecting an antigen in a sample labeled with a fluorescent dye using an antigen-antibody reaction. And Another object of the present invention is to provide a protein detection method and a protein detection apparatus using the blocking agent.
本発明は、上記課題を解決するために、さまざまな化合物や緩衝液について、未反応蛍光色素の免疫反応に対する非特異反応抑制効果を検討したところ、驚くべきことに、エチルアセチミデート、エチルアセチミデートの塩、トリス塩酸、グリシン、又はリン酸水素ナトリウムのいずれか１以上を用いた場合に、前記非特異反応を抑制できることをつきとめ、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は以下の構成を有する。
〔１〕蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制するためのブロッキング剤であって、エチルアセチミデート、エチルアセチミデートの塩、トリス塩酸、グリシン、又はリン酸水素ナトリウムのいずれか1以上を含むことを特徴とするブロッキング剤。
〔２〕蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制するためのブロッキング剤であって、エチルアセチミデート及び／又はエチルアセチミデートの塩を含むことを特徴とするブロッキング剤。
〔３〕抗原抗体反応を利用し蛍光色素で標識した試料中の抗原を検出するタンパク質検出方法において、〔１〕又は〔２〕に記載のブロッキング剤を用いることを特徴とするタンパク質検出方法。
〔４〕抗原抗体反応が、基板に抗体が固定化されている抗体チップを用いた反応である〔３〕に記載のタンパク質検出方法。
〔５〕〔３〕又は〔４〕に記載のタンパク質検出方法を使用するタンパク質自動検出装置であって、以下の手段を有する検出装置。
（１）試料からタンパク質を抽出する手段
（２）（１）で得られたタンパク質と蛍光色素を反応させ蛍光色素標識タンパク質を作製する手段
（３）〔１〕又は〔２〕に記載のブロッキング剤を用いて蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制する手段
（４）（２）で得られた蛍光色素標識タンパク質を抗体チップと反応させる手段
（５）（４）の反応後の抗体チップの蛍光色素を検出する手段
In order to solve the above-mentioned problems, the present invention has studied surprisingly the non-specific reaction inhibitory effect on the immune reaction of unreacted fluorescent dyes for various compounds and buffers, and surprisingly, ethyl acetimidate, ethyl acetylate When one or more of a salt of midate, Tris-HCl, glycine, or sodium hydrogen phosphate was used, it was found that the non-specific reaction could be suppressed, and the present invention was completed.
That is, the present invention has the following configuration.
[1] A blocking agent for suppressing non-specific reaction between a fluorescent dye and an antibody, and any one or more of ethyl acetimidate, ethyl acetimidate salt, Tris-HCl, glycine, or sodium hydrogen phosphate The blocking agent characterized by including.
[2] A blocking agent for suppressing non-specific reaction between a fluorescent dye and an antibody, which contains ethyl acetimidate and / or a salt of ethyl acetimidate.
[3] A protein detection method using the blocking agent according to [1] or [2] in a protein detection method for detecting an antigen in a sample labeled with a fluorescent dye using an antigen-antibody reaction.
[4] The protein detection method according to [3], wherein the antigen-antibody reaction is a reaction using an antibody chip in which an antibody is immobilized on a substrate.
[5] A protein automatic detection apparatus using the protein detection method according to [3] or [4], comprising the following means.
(1) Means for extracting a protein from a sample (2) Means for producing a fluorescent dye-labeled protein by reacting the protein obtained in (1) with a fluorescent dye (3) The blocking agent according to [1] or [2] Means for suppressing non-specific reaction between fluorescent dye and antibody using (4) Means for reacting fluorescent dye-labeled protein obtained in (2) with antibody chip (5) of antibody chip after reaction of (4) Means for detecting fluorescent dyes
本発明のブロッキング剤によれば、抗原抗体反応を阻害することなく、抗体と未反応蛍光色素との非特異反応のみを抑制し、バックグラウンドを抑えることができた。
また、本発明のブロッキング剤を用いた検出方法により、従来の検出方法ではサンプルの標識反応から測定まで約３時間程度かかっていたところ、１／２〜１／３程度まで時間を短縮することができた。
According to the blocking agent of the present invention, only the non-specific reaction between the antibody and the unreacted fluorescent dye was suppressed without inhibiting the antigen-antibody reaction, and the background could be suppressed.
Further, according to the detection method using the blocking agent of the present invention, the conventional detection method takes about 3 hours from the labeling reaction of the sample to the measurement, but the time can be shortened to about 1/2 to 1/3. did it.
本発明のブロッキング剤は、蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制するためのブロッキング剤であって、エチルアセチミデート、その塩、トリス塩酸、グリシン、又はリン酸水素ナトリウムのいずれか１以上を含むことを特徴としている。
本発明のブロッキング剤が抑制する非特異反応とは、蛍光色素と抗体との非特異反応であり、測定対象である抗原を蛍光色素で標識した場合に、余剰の未反応蛍光色素が測定用の抗体と起こす反応のことをいう。
The blocking agent of the present invention is a blocking agent for suppressing a nonspecific reaction between a fluorescent dye and an antibody, and is any one or more of ethyl acetimidate, a salt thereof, Tris-HCl, glycine, or sodium hydrogen phosphate It is characterized by including.
The non-specific reaction suppressed by the blocking agent of the present invention is a non-specific reaction between a fluorescent dye and an antibody. When an antigen to be measured is labeled with a fluorescent dye, excess unreacted fluorescent dye is used for measurement. A reaction that occurs with an antibody.
抗原を標識する蛍光色素としては、本発明のブロッキング剤が未反応蛍光色素と抗体との非特異反応抑制効果を発揮できるような蛍光色素であればどのようなものでもよく、タンパク質検出方法に用いられる蛍光色素が対象とされる。例えば、Ｃｙａｎｉｎｅ類、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ類、ＤｙＬｉｇｈｔ類等のタンパク質のアミノ基に結合する蛍光試薬が挙げられる。Ｃｙａｎｉｎｅ類としては、Ｃｙａｎｉｎｅ３、３．５、５、５．５、７、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ類としてはＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ３５０、５５５、ＤｙＬｉｇｈｔ類としてはＤｙＬｉｇｈｔ ５４９、６４９等が挙げられる。 As the fluorescent dye for labeling the antigen, any fluorescent dye can be used as long as the blocking agent of the present invention can exhibit the effect of suppressing the non-specific reaction between the unreacted fluorescent dye and the antibody. Fluorescent dyes to be used are targeted. Examples thereof include fluorescent reagents that bind to amino groups of proteins such as Cyanines, Alexa Fluors, and DyLights. Examples of Cyanines include Cyanines 3, 3.5, 5, 5.5, 7, Alexa Fluors include Alexa Fluor 350, 555, and DyLights include DyLight 549, 649.
本発明のブロッキング剤は、抗原を蛍光色素で標識して蛍光検出するような免疫反応であればいずれの免疫反応にも用いることができる。従って、測定対象の抗原もさまざまなものが挙げられるが、例えば、Ｇ３ＰＤＨ、ＡｎｎｅｘｉｎＩＩ、Ａｒｇｉｎａｓｅ−１、Ｋｅｒａｔｉｎ２ｅ、Ｋｅｒａｔｉｎ７、Ｋｅｒａｔｉｎ１５、Ｐｒｏｆｉｌｉｎ−１、ＳＣＣＡ２、ｕＰＡ、ＢＬＭＨ、ＭＭＰ２、ＨＳＰ７０、β−Ｃａｔｅｎｉｎ、Ａｐｏｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎ Ａ１、ｍａｓｐｉｎ、ＩｇＥ、ＨＳＰ２７、ＦＡＢＰ−５、ｇａｌｅｃｔｉｎ−７、ＫＬＫ７、ｅｎｏｌａｓｅ−１、Ｃａｔｈｅｐｓｉｎ Ｄ、β−ａｃｔｉｎ等が挙げられる。 The blocking agent of the present invention can be used for any immune reaction as long as it is an immune reaction in which an antigen is labeled with a fluorescent dye and fluorescence is detected. Accordingly, there are various antigens to be measured. For example, G3PDH, Annexin II, Arginase-1, Keratin2e, Keratin7, Keratin15, Profilin-1, SCCA2, uPA, BLMH, MMP2, HSP70, β-Catenin, Apolipoprotein A1, maspin, IgE, HSP27, FABP-5, galectin-7, KLK7, enolase-1, Cathepsin D, β-actin and the like.
本発明のブロッキング剤が抑制する非特異反応において、抗体は、固相に固定化されて用いられる。抗体が固定化される固相としては、ストリップ状の試験片、プラスチック基板、粒子、ニトロセルロース膜、ＰＶＤＦ膜などが挙げられ、固相への抗体の固定化はそれ自体周知の方法によって行うことができる。また、プラスチック基板に抗体が固定化されている例としては、プラスチック基板に抗体が点状にスポットされ固定化された抗体チップや抗体アレイが挙げられる。 In the non-specific reaction that the blocking agent of the present invention suppresses, the antibody is used after being immobilized on a solid phase. Examples of the solid phase on which the antibody is immobilized include a strip-shaped test piece, a plastic substrate, particles, a nitrocellulose membrane, a PVDF membrane, and the like. Immobilization of the antibody to the solid phase should be performed by a method known per se. Can do. Examples of the antibody immobilized on the plastic substrate include an antibody chip and an antibody array in which the antibody is spotted and immobilized on the plastic substrate in the form of dots.
本発明のブロッキング剤の免疫反応への適用方法としては、（１）固相に固定化される抗体側をあらかじめブロッキング剤によって処理する方法や、（２）蛍光色素で標識した抗原と抗体を反応させる前に未反応蛍光色素をブロッキング剤で処理することにより、未反応蛍光色素と抗体との非特異反応を防ぐ方法や、（３）未反応蛍光色素が抗体に結合できないように蛍光色素と試料を反応させた後溶液中のｐＨを中性にする方法が挙げられる。（１）の抗体側のブロッキングは、（１−１）抗体が固相に固定化された後に、固相にブロッキング剤を供給して、抗体をブロッキング処理する方法と、（１−２）抗体が固相に固定化される前に、溶液中で遊離した状態の抗体にブロッキング剤を供給して、抗体をブロッキング処理し、これを固相に供給して、ブロッキングされた状態の抗体を固相に固定化する方法が挙げられる。
また、用いられるブロッキング剤としては、（１）の方法にはエチルアセチミデート及び／又はその塩が好ましく用いられ、（２）の方法には、トリス塩酸、グリシン、（３）の方法にはリン酸水素ナトリウムが好ましく用いられる。ここで、エチルアセチミデート（Ethyl acetimidate）はＣ４Ｈ９ＮＯの元素組成を有する次式の化合物であり、ＣＡＳ ＲＮは２２０８−０７−３である。エチルアセチミデートは、溶解性の点で塩を用いることが好ましく、例えば、エチルアセチミデート塩酸塩（Ethyl acetimidate hydrochroride）が挙げられる。
The method of applying the blocking agent of the present invention to an immune reaction includes (1) a method in which the antibody side immobilized on the solid phase is previously treated with a blocking agent, and (2) a reaction between an antigen labeled with a fluorescent dye and an antibody. Before treatment, by treating the unreacted fluorescent dye with a blocking agent to prevent non-specific reaction between the unreacted fluorescent dye and the antibody, or (3) the fluorescent dye and the sample so that the unreacted fluorescent dye cannot bind to the antibody. The method of making pH in a solution neutral after making it react is mentioned. (1) Antibody-side blocking includes (1-1) a method in which a blocking agent is supplied to the solid phase after the antibody is immobilized on the solid phase, and (1-2) the antibody is blocked. Before the antibody is immobilized on the solid phase, a blocking agent is supplied to the antibody released in the solution to block the antibody, and this is supplied to the solid phase to fix the blocked antibody. A method of fixing to a phase can be mentioned.
As the blocking agent used, ethyl acetimidate and / or a salt thereof is preferably used in the method (1), tris-hydrochloric acid, glycine is used in the method (2), and the method (3) is used. Sodium hydrogen phosphate is preferably used. Here, ethyl acetylimidate (Ethyl acetimidate) is a compound of the following formula having an elemental composition of C 4 H 9 NO, and CAS RN is 2208-07-3. Ethyl acetimidate is preferably a salt in terms of solubility, and examples thereof include ethyl acetimidate hydrochloride (Ethyl acetimidate hydrochroride).
前記、ブロッキング剤の免疫反応への適用方法のうち、（１）の方法によれば、ブロッキング剤によって抗体側をブロッキング処理しておくため、免疫反応時に全溶液の容量が増えず、（２）、（３）の方法に比べ抗体との反応性が上がる。 Among the methods for applying the blocking agent to the immune reaction, according to the method (1), since the antibody side is blocked with the blocking agent, the volume of the whole solution does not increase during the immune reaction, (2) The reactivity with the antibody is increased as compared with the method (3).
本発明のブロッキング剤としては、エチルアセチミデート及び／又はその塩、トリス塩酸、グリシン、又はリン酸水素ナトリウム緩衝液のいずれか１以上を用いることができ、使用濃度としては、エチルアセチミデート及び／又はその塩は、濃度１０〜１０００ｍＭの範囲で用いられ、好ましくは濃度３０〜３００ｍＭの範囲で用いられる。トリス塩酸、グリシン、又はリン酸水素ナトリウムは０．１〜３Ｍ（終濃度：０．０４〜１．２Ｍ）の範囲で用いられ、好ましくは０．１〜２Ｍ（終濃度：０．０４〜０．８Ｍ）、さらに好ましくは０．５〜２Ｍ（終濃度：０．２〜０．８Ｍ）の範囲で用いられる。 As the blocking agent of the present invention, any one or more of ethyl acetimidate and / or its salt, Tris-HCl, glycine, or sodium hydrogen phosphate buffer can be used, and the concentration used is ethyl acetimidate. And / or a salt thereof is used in a concentration range of 10 to 1000 mM, preferably in a concentration range of 30 to 300 mM. Tris-HCl, glycine, or sodium hydrogen phosphate is used in the range of 0.1 to 3M (final concentration: 0.04 to 1.2M), preferably 0.1 to 2M (final concentration: 0.04 to 0). 0.8M), more preferably 0.5 to 2M (final concentration: 0.2 to 0.8M).
本発明のブロッキング剤は、蛍光色素で標識した試料中の抗原について抗原抗体反応を利用して検出するタンパク質検出方法に用いることができ、当該タンパク質検出方法において、バックグラウンドを低減することができる。また、本発明の検出方法により、従来の測定方法ではサンプルの標識反応から測定まで約３時間程度かかっていたものを、１／２〜１／３程度まで時間を短縮することができた。
また、本発明のタンパク質検出方法は、定量的な検出、定性的な検出のいずれにも用いることができる。
The blocking agent of the present invention can be used in a protein detection method for detecting an antigen in a sample labeled with a fluorescent dye using an antigen-antibody reaction, and the background can be reduced in the protein detection method. Further, according to the detection method of the present invention, in the conventional measurement method, the time from the labeling reaction of the sample to the measurement was about 3 hours, but the time could be shortened to about 1/2 to 1/3.
The protein detection method of the present invention can be used for either quantitative detection or qualitative detection.
また、本発明の蛍光検出方法を使用するタンパク質検出装置としては、少なくとも以下の（１）〜（５）の手段を有する検出装置が挙げられる。
（１）試料からタンパク質を抽出する手段
（２）（１）で得られたタンパク質と蛍光色素を反応させ蛍光色素標識タンパク質を作製する手段
（３）本発明のブロッキング剤を用いて蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制する手段
（４）（２）で得られた蛍光色素標識タンパク質を抗体チップと反応させる手段
（５）（４）の反応後の抗体チップの蛍光色素を検出する手段
Moreover, as a protein detection apparatus using the fluorescence detection method of this invention, the detection apparatus which has a means of at least the following (1)-(5) is mentioned.
(1) Means for extracting a protein from a sample (2) Means for producing a fluorescent dye-labeled protein by reacting the protein obtained in (1) with a fluorescent dye (3) Fluorescent dye and antibody using the blocking agent of the present invention Means for suppressing nonspecific reaction with (4) Means for reacting fluorescent dye-labeled protein obtained in (2) with antibody chip (5) Means for detecting fluorescent dye of antibody chip after reaction of (4)
本発明の具体的な実施方法について以下説明するが、本発明は、これに限定されるものではない。
〔実施例１〕
本発明のブロッキング剤の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、Ｇ３ＰＤＨ抗体チップを用いて確認を行った。
（１）材料
（１−１）試料
０、２００、４００、８００ｎｇ のＧ３ＰＤＨ 精製タンパク質（ＡｂＦＲＯＮＴＩＥＲ社：ＬＦ−Ｐ０００８）
（１−２）抗体チップ
抗Ｇ３ＰＤＨ抗体（ＡｂＦＲＯＮＴＩＥＲ社：ＬＦ−ＭＡ００３８）が最終濃度０．１、０．３、０．５、１．０ｍｇ／ｍｌとなるように、基板に固定化されたＧ３ＰＤＨ抗体チップを用いた。
１つの抗体チップには、８個のウェルが載置され、各ウェルには、２０個の抗体スポットが固定化されている。抗体の各濃度について１ウェルにつき５スポットずつ固定した抗体チップを用いて試験を行った。各試料濃度について各１ウェルに適用し測定した。なお、抗体チップの作製は、住友ベークライト株式会社に依頼して行った（以下の実施例においても同様）。
（１−３）蛍光色素
Ｃｙａｎｉｎｅ５（製品名：Ｃｙ５ ｍｏｎｏｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｄｙe 、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社製（ＰＡ２５００１）、以下単にＣｙ５と省略することがある。）
（１−４）ブロッキング剤
エチルアセチミデート塩酸塩（Ａｌｆａ ａｅｓａｒ社：２２０８−０７−０３）を用いた。
（２）試験方法
以下の手順により、測定を行った。
（i）５０ｍＭ エチルアセチミデート塩酸塩（１００μｌ）を抗体チップ基板と２５℃で２時間処理した。
（ii）抗体チップ基板を２０ｍＭ ＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．５）で３回洗浄した。
（iii）各濃度の試料と０．１Ｍ Ｎａ２ＣＯ３（１５μｌ）とを混合し、１分間室温で放置した。
（iv）Ｃｙ５（１ｍｇ分のタンパク質ラベルに必要な量の１／２０量）に試料（５０μｌ）を加えて３７℃で１０分間反応させた。
（v）抗体チップの各ｗｅｌｌに試料を（６５μｌ）添加し３７℃で３０分間反応させi）室温下、Ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒ（０．１％Ｔｗｅｅｎ ２０／ＰＢＳ）で抗体チップを５回洗浄した。
（vii）室温下、超純水で抗体チップを２回洗浄した。
（viii）以下の蛍光測定機器及び条件により、蛍光強度を測定した。
蛍光測定機器：Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ社製 ＧｅｎｅＰｉｘ ４０００Ｂ
測定条件：ＰＭＴ Ｇａｉｎ（光電子増倍管の感度）を６００に設定してレーザースキャンを行い、スキャン後、それぞれのスポットに対するシグナル値を出し、ｎ＝５での平均値を算出した。
（３）試験結果
測定結果を図１に示す。抗体濃度１．０ｍｇ／ｍｌにおいて、バックグラウンドが抑えられ、試料濃度依存性が見られた。
Although the specific implementation method of this invention is demonstrated below, this invention is not limited to this.
[Example 1]
The inhibitory effect of the blocking agent of the present invention on the binding of the unreacted fluorescent dye to the antibody was confirmed using a G3PDH antibody chip.
(1) Material (1-1) Samples 0, 200, 400, and 800 ng of purified G3PDH protein (Abfrontier: LF-P0008)
(1-2) G3PDH immobilized on a substrate such that the antibody chip anti-G3PDH antibody (AbFRONTIER: LF-MA0038) has a final concentration of 0.1, 0.3, 0.5, 1.0 mg / ml An antibody chip was used.
Eight wells are placed on one antibody chip, and 20 antibody spots are immobilized on each well. Each antibody concentration was tested using an antibody chip in which 5 spots were fixed per well. Each sample concentration was applied to one well and measured. The antibody chip was produced by requesting Sumitomo Bakelite Co., Ltd. (the same applies to the following examples).
(1-3) Fluorescent dye Cyanine 5 (Product name: Cy5 monofunctional dye, manufactured by GE Healthcare (PA25001), hereinafter may be simply abbreviated as Cy5).
(1-4) The blocking agent ethyl acetimidate hydrochloride (Alfa aesar: 2208-07-03) was used.
(2) Test method Measurement was performed according to the following procedure.
(I) 50 mM ethyl acetimidate hydrochloride (100 μl) was treated with an antibody chip substrate at 25 ° C. for 2 hours.
(Ii) The antibody chip substrate was washed 3 times with 20 mM HEPES (pH 7.5).
(Iii) Each concentration sample and 0.1 M Na 2 CO 3 (15 μl) were mixed and allowed to stand at room temperature for 1 minute.
(Iv) A sample (50 μl) was added to Cy5 (1/20 of the amount required for 1 mg of protein label) and reacted at 37 ° C. for 10 minutes.
(V) A sample (65 μl) was added to each well of the antibody chip and allowed to react for 30 minutes at 37 ° C. i) The antibody chip was washed 5 times with Wash buffer (0.1% Tween 20 / PBS) at room temperature.
(Vii) The antibody chip was washed twice with ultrapure water at room temperature.
(Viii) The fluorescence intensity was measured with the following fluorescence measuring instrument and conditions.
Fluorescence measuring instrument: GenePix 4000B manufactured by Molecular Devices
Measurement conditions: PMT Gain (sensitivity of photomultiplier tube) was set to 600, laser scanning was performed, and after scanning, a signal value for each spot was obtained, and an average value at n = 5 was calculated.
(3) Test results The measurement results are shown in FIG. At an antibody concentration of 1.0 mg / ml, the background was suppressed and sample concentration dependency was observed.
〔実施例２〕
本発明のブロッキング剤（トリス塩酸）の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、Ｇ３ＰＤＨ抗体チップを用いて確認を行った。
（１）材料
ブロッキング剤としてエチルアセチミデート塩酸塩の代わりにトリス塩酸（ｐＨ７．４）（和光純薬）を用いた以外は実施例１と同じ材料を用いた。
（２）試験方法
以下の手順により、測定を行った。
（i）１．５ｍｌ容量のプラスチックチューブ（以下チューブとする）に各濃度の試料（５０μl）と０．１Ｍ Ｎａ２ＣＯ３（１５μｌ）とを混合し、１分間、室温で放置した。
（ii）Ｃｙ５を入れたチューブ前記混合試料を加えて３７℃で１０分間反応させた。
（iii）１Ｍ トリス塩酸を（ii）で反応させた試料に４０μｌ加える。
（iv）抗体チップの各ウェルに試料を添加し３７℃で３０分間反応させた。
（v）室温下、Ｗａｓｈ ｂｕｆｆｅｒで抗体チップを５回洗浄した。
（vi）室温下、超純水で抗体チップを２回洗浄した。
（vii）蛍光強度を測定した。蛍光強度の測定機器及び条件は実施例１と同じ。
（３）試験結果
測定結果を図２に示す。抗体濃度１．０ｍｇ／ｍｌにおいて、バックグラウンドが抑えられ、試料濃度依存性が見られた。
[Example 2]
The inhibitory effect of the blocking agent (Tris-HCl) of the present invention on the binding of the unreacted fluorescent dye to the antibody was confirmed using a G3PDH antibody chip.
(1) The same material as in Example 1 was used except that tris-hydrochloric acid (pH 7.4) (Wako Pure Chemical Industries) was used instead of ethyl acetimidate hydrochloride as a material blocking agent.
(2) Test method Measurement was performed according to the following procedure.
(I) Each concentration sample (50 μl) and 0.1 M Na 2 CO 3 (15 μl) were mixed in a 1.5 ml plastic tube (hereinafter referred to as a tube) and left at room temperature for 1 minute.
(Ii) Tube containing Cy5 The mixed sample was added and reacted at 37 ° C. for 10 minutes.
(Iii) 40 μl of 1M Tris-HCl is added to the sample reacted in (ii).
(Iv) A sample was added to each well of the antibody chip and reacted at 37 ° C. for 30 minutes.
(V) The antibody chip was washed 5 times with a wash buffer at room temperature.
(Vi) The antibody chip was washed twice with ultrapure water at room temperature.
(Vii) The fluorescence intensity was measured. The fluorescence intensity measuring device and conditions are the same as in Example 1.
(3) Test results The measurement results are shown in FIG. At an antibody concentration of 1.0 mg / ml, the background was suppressed and sample concentration dependency was observed.
〔実施例３〕
本発明のブロッキング剤（グリシン）の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、Ｇ３ＰＤＨ抗体チップを用いて確認を行った。
（１）材料及び試験方法
ブロッキング剤としてトリス塩酸（ｐＨ７．４）の代わりにグリシン（和光純薬）を用いた以外は実施例２と同じ材料及び試験方法に従った。
（２）試験結果
測定結果を図３に示す。抗体濃度１．０ｍｇ／ｍｌにおいて、バックグラウンドが抑えられ、試料濃度依存性が見られた。
Example 3
The inhibitory effect of the blocking agent (glycine) of the present invention on the binding of the unreacted fluorescent dye to the antibody was confirmed using a G3PDH antibody chip.
(1) Material and Test Method The same material and test method as in Example 2 were followed except that glycine (Wako Pure Chemical Industries) was used instead of Tris-HCl (pH 7.4) as a blocking agent.
(2) Test results The measurement results are shown in FIG. At an antibody concentration of 1.0 mg / ml, the background was suppressed and sample concentration dependency was observed.
〔実施例４〕
本発明のブロッキング剤（リン酸水素ナトリウム）の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、Ｇ３ＰＤＨ抗体チップを用いて確認を行った。
（１）材料及び試験方法
ブロッキング剤としてトリス塩酸（ｐＨ７．４）の代わりにリン酸水素ナトリウム（ｐＨ４．１）（和光純薬）を用いた以外は実施例２と同じ材料及び試験方法に従った。
（２）試験結果
測定結果を図４に示す。
抗体濃度１．０ｍｇ／ｍｌにおいて、バックグラウンドが抑えられ、試料濃度依存性が見られた。
実施例１〜４の結果によれば、エチルアセチミデート塩酸塩の方が、トリス塩酸、グリシン、リン酸水素ナトリウムに比べ、 得られるシグナル値が高く、感度の高い測定が可能であることがわかった。
Example 4
The inhibitory effect of the blocking agent (sodium hydrogen phosphate) of the present invention on the binding of the unreacted fluorescent dye to the antibody was confirmed using a G3PDH antibody chip.
(1) Material and test method The same material and test method as in Example 2 were used except that sodium hydrogen phosphate (pH 4.1) (Wako Pure Chemical Industries) was used instead of Tris-HCl (pH 7.4) as a blocking agent. It was.
(2) Test results The measurement results are shown in FIG.
At an antibody concentration of 1.0 mg / ml, the background was suppressed and sample concentration dependency was observed.
According to the results of Examples 1 to 4, ethyl acetimidate hydrochloride has a higher signal value and can be measured with higher sensitivity than Tris-HCl, glycine, and sodium hydrogen phosphate. all right.
〔実施例５〕
本発明のブロッキング剤の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、ＡｎｎｅｘｉｎＩＩ抗体チップを用いて確認を行った。
（１）材料
（１−１）試料
０、７．８１、１５．６、３１．２、６２．４、１２５、２５０、５００ ｎｇのＡｎｎｅｘｉｎＩＩ 精製タンパク質（ＡｍＰｒｏｘ社：Ｎｏ．８１６８−１０）
（１−２）抗体チップ
抗ＡｎｎｅｘｉｎＩＩ 抗体（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ社：ｓｃ−４７６９６）が最終濃度０．１、０．３、０．５、１．０ｍｇ／ｍｌとなるように、基板に固定化されたＡｎｎｅｘｉｎＩＩ抗体チップを用いた。
（１−３）蛍光色素
実施例１と同じものを用いた。
（１−４）ブロッキング剤
エチルアセチミデート塩酸塩（Ａｌｆａ ａｅｓａｒ社）を用いた。
（２）試験方法
実施例１のエチルアセチミデート塩酸塩の場合と同じ試験方法に従った。
（３）試験結果
測定結果を図５に示す。
Example 5
The inhibitory effect of the blocking agent of the present invention on the binding of the unreacted fluorescent dye to the antibody was confirmed using an Annexin II antibody chip.
(1) Material (1-1) Samples 0, 7.81, 15.6, 31.2, 62.4, 125, 250, 500 ng of Annexin II purified protein (AmProx: No. 8168-10)
(1-2) Antibody chip anti-Annexin II antibody (Santa Cruz: sc-47696) was immobilized on the substrate so that the final concentration was 0.1, 0.3, 0.5, 1.0 mg / ml An Annexin II antibody chip was used.
(1-3) Fluorescent dye The same one as in Example 1 was used.
(1-4) The blocking agent ethyl acetimidate hydrochloride (Alfa aesar) was used.
(2) Test method The same test method as in the case of ethyl acetimidate hydrochloride of Example 1 was followed.
(3) Test results The measurement results are shown in FIG.
〔実施例６〕
本発明のブロッキング剤の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、Ａｒｇｉｎａｓｅ−１抗体チップを用いて確認を行った。
（１）材料
（１−１）試料
０、５０、１００、２５０、５００、１０００、２０００、５０００ｎｇのテープストリッピングサンプル（テープストリッピングサンプルは、皮膚からテープで採取したサンプルのことであり、精製タンパク質が市販されていない場合に用いた）
（１−２）抗体チップ
抗Ａｒｇｉｎａｓｅ−１抗体（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ社：ｓｃ−４７７１５）が最終濃度０．１、０．３、０．５、１．０ｍｇ／ｍｌとなるように、基板に固定化されたＡｒｇｉｎａｓｅ−１抗体チップを用いた。
（１−３）蛍光色素及びブロッキング剤
実施例１と同じものを用いた。
（２）試験方法
実施例１と同じ試験方法に従った。
（３）試験結果
測定結果を図６に示す。
Example 6
The inhibitory effect of the blocking agent of the present invention on the binding of the unreacted fluorescent dye to the antibody was confirmed using an Arginase-1 antibody chip.
(1) Material (1-1) Samples 0, 50, 100, 250, 500, 1000, 2000, and 5000 ng of tape stripping samples (tape stripping samples are samples taken with tape from the skin, and purified protein is Used when not commercially available)
(1-2) Antibody chip Anti-Arginase-1 antibody (Santa Cruz: sc-47715) was immobilized on the substrate so that the final concentrations were 0.1, 0.3, 0.5, and 1.0 mg / ml. Arginase-1 antibody chip was used.
(1-3) Fluorescent dye and blocking agent The same one as in Example 1 was used.
(2) Test method The same test method as in Example 1 was followed.
(3) Test results The measurement results are shown in FIG.
〔実施例７〕
本発明のブロッキング剤の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、Ｋｅｒａｔｉｎ２ｅ抗体チップを用いて確認を行った。
（１）材料
（１−１）試料
０、５０、１００、２５０、５００、１０００、２０００、５０００ｎｇのテープストリッピングサンプル
（１−２）抗体チップ
抗Ｋｅｒａｔｉｎ２ｅ抗体（Ｐｒｏｇｅｎ社：Ｎｏ．６５１９１）が最終濃度０．１、０．３、０．５、１．０ｍｇ／ｍｌとなるように、基板に固定化されたＫｅｒａｔｉｎ２ｅ抗体チップを用いた。
（１−３）蛍光色素及びブロッキング剤
実施例１と同じものを用いた。
（２）試験方法
実施例１と同じ試験方法に従った。
（３）試験結果
測定結果を図７に示す。
Example 7
The inhibitory effect of the blocking agent of the present invention on the binding of the unreacted fluorescent dye to the antibody was confirmed using a Keratin2e antibody chip.
(1) Material (1-1) Sample 0, 50, 100, 250, 500, 1000, 2000, 5000 ng of tape stripping sample (1-2) Antibody chip anti-Keratin2e antibody (Progen: No. 65191) is the final concentration A keratin 2e antibody chip immobilized on a substrate was used so as to be 0.1, 0.3, 0.5, and 1.0 mg / ml.
(1-3) Fluorescent dye and blocking agent The same one as in Example 1 was used.
(2) Test method The same test method as in Example 1 was followed.
(3) Test results The measurement results are shown in FIG.
〔実施例８〕
本発明のブロッキング剤の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、Ｋｅｒａｔｉｎ７抗体チップを用いて確認を行った。
（１）材料
（１−１）試料
０、５０、１００、２５０、５００、１０００、２０００、５０００ｎｇのテープストリッピングサンプル
（１−２）抗体チップ
抗Ｋｅｒａｔｉｎ７抗体（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ社：ｓｃ−１７１１８）が最終濃度０．１、０．３、０．５、１．０ｍｇ／ｍｌとなるように、基板に固定化されたＫｅｒａｔｉｎ７抗体チップを用いた。
（１−３）蛍光色素及びブロッキング剤
実施例１と同じものを用いた。
（２）試験方法
実施例１と同じ試験方法に従った。
（３）試験結果
測定結果を図８に示す。
Example 8
The inhibitory effect of the blocking agent of the present invention on the binding of the unreacted fluorescent dye to the antibody was confirmed using a Keratin 7 antibody chip.
(1) Material (1-1) Sample 0, 50, 100, 250, 500, 1000, 2000, 5000 ng of tape stripping sample (1-2) Antibody chip anti-Keratin7 antibody (Santa Cruz: sc-17118) A keratin 7 antibody chip immobilized on a substrate was used so that the concentration was 0.1, 0.3, 0.5, or 1.0 mg / ml.
(1-3) Fluorescent dye and blocking agent The same one as in Example 1 was used.
(2) Test method The same test method as in Example 1 was followed.
(3) Test results The measurement results are shown in FIG.
〔実施例９〕
本発明のブロッキング剤の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、Ｋｅｒａｔｉｎ１５抗体チップを用いて確認を行った。
（１）材料
（１−１）試料
０、１２５、２５０、５００、１０００、２０００、４０００、８０００ｎｇのテープストリッピングサンプル
（１−２）抗体チップ
抗Ｋｅｒａｔｉｎ１５抗体（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社：ＣＢＬ２７２）が最終濃度０．１、０．３、０．５、１．０ｍｇ／ｍｌとなるように、基板に固定化されたＫｅｒａｔｉｎ１５抗体チップを用いた。
（１−３）蛍光色素及びブロッキング剤
実施例１と同じものを用いた。
（２）試験方法
実施例１と同じ試験方法に従った。
（３）試験結果
測定結果を図９に示す。
Example 9
The inhibitory effect of the blocking agent of the present invention on the binding of the unreacted fluorescent dye to the antibody was confirmed using a Keratin 15 antibody chip.
(1) Material (1-1) Sample 0, 125, 250, 500, 1000, 2000, 4000, 8000 ng of tape stripping sample (1-2) Antibody chip anti-Keratin15 antibody (Millipore: CBL272) has a final concentration of 0. A Keratin15 antibody chip immobilized on a substrate was used so as to be 1, 0.3, 0.5, and 1.0 mg / ml.
(1-3) Fluorescent dye and blocking agent The same one as in Example 1 was used.
(2) Test method The same test method as in Example 1 was followed.
(3) Test results The measurement results are shown in FIG.
〔実施例１０〕
本発明のブロッキング剤の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、Ｐｒｏｆｉｌｉｎ−１抗体チップを用いて確認を行った。
（１）材料
（１−１）試料
０、２５、５０、１００、２００、４００、８００、１２００ｎｇのＰｒｏｆｉｌｉｎ−１精製タンパク質（Ａｂｎｏｖａ社：Ｈ００００５２１６−Ｐ０１）
（１−２）抗体チップ
抗Ｐｒｏｆｉｌｉｎ−１抗体（Ａｂｎｏｖａ社：Ｈ００００５２１６−Ａ０１）が最終濃度０．１、０．３、０．５、１．０ｍｇ／ｍｌとなるように、基板に固定化されたＰｒｏｆｉｌｉｎ−１抗体チップを用いた。
（１−３）蛍光色素及びブロッキング剤
実施例１と同じものを用いた。
（２）試験方法
実施例１と同じ試験方法に従った。
（３）試験結果
測定結果を図１０に示す。
Example 10
The inhibitory effect of the blocking agent of the present invention on the binding of the unreacted fluorescent dye to the antibody was confirmed using a Profilin-1 antibody chip.
(1) Material (1-1) Sample 0, 25, 50, 100, 200, 400, 800, 1200 ng of Profilin-1 purified protein (Abnova: H0000005216-P01)
(1-2) Antibody chip anti-Profilin-1 antibody (Abnova: H0000005216-A01) was immobilized on a substrate so that the final concentration was 0.1, 0.3, 0.5, 1.0 mg / ml. Profilin-1 antibody chip was used.
(1-3) Fluorescent dye and blocking agent The same one as in Example 1 was used.
(2) Test method The same test method as in Example 1 was followed.
(3) Test results The measurement results are shown in FIG.
〔実施例１１〕
本発明のブロッキング剤の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、ＳＣＣＡ２抗体チップを用いて確認を行った。
（１）材料
（１−１）試料
０、１００、２５０、５００、１０００、２０００、５０００ｎｇのテープストリッピングサンプル
（１−２）抗体チップ
抗ＳＣＣＡ２抗体（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ社：ｓｃ−２１７９３）が最終濃度０．１、０．３、０．５、１．０ｍｇ／ｍｌとなるように、基板に固定化されたＳＣＣＡ２抗体チップを用いた。
（１−３）蛍光色素及びブロッキング剤
実施例１と同じものを用いた。
（２）試験方法
実施例１と同じ試験方法に従った。
（３）試験結果
測定結果を図１１に示す。
Example 11
The inhibitory effect of the blocking agent of the present invention on the binding of the unreacted fluorescent dye to the antibody was confirmed using an SCCA2 antibody chip.
(1) Material (1-1) Sample 0, 100, 250, 500, 1000, 2000, 5000 ng of tape stripping sample (1-2) Antibody chip anti-SCCA2 antibody (Santa Cruz: sc-21793) has a final concentration of 0 The SCCA2 antibody chip immobilized on the substrate was used so as to be 0.1, 0.3, 0.5, and 1.0 mg / ml.
(1-3) Fluorescent dye and blocking agent The same one as in Example 1 was used.
(2) Test method The same test method as in Example 1 was followed.
(3) Test results The measurement results are shown in FIG.
〔実施例１２〕
本発明のブロッキング剤の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、ｕＰＡ抗体チップを用いて確認を行った。
（１）材料
（１−１）試料
０、２５、５０、１００、２００、４００、８００、１２００ｎｇのｕＰＡ精製タンパク質（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社：ＣＣ４０００）
（１−２）抗体チップ
抗ｕＰＡ抗体（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社：ＭＡＢ７７７６）が最終濃度０．１、０．３、０．５、１．０ｍｇ／ｍｌとなるように、基板に固定化されたｕＰＡ抗体チップを用いた。
（１−３）蛍光色素及びブロッキング剤
実施例１と同じものを用いた。
（２）試験方法
実施例１と同じ試験方法に従った。
（３）試験結果
測定結果を図１２に示す。
Example 12
The binding inhibitory effect of the blocking agent of the present invention on the antibody of the unreacted fluorescent dye was confirmed using a uPA antibody chip.
(1) Material (1-1) Samples 0, 25, 50, 100, 200, 400, 800, 1200 ng of uPA purified protein (Millipore: CC4000)
(1-2) Antibody chip Anti-uPA antibody (Millipore: MAB7776) uPA antibody chip immobilized on a substrate so as to have final concentrations of 0.1, 0.3, 0.5, and 1.0 mg / ml Was used.
(1-3) Fluorescent dye and blocking agent The same one as in Example 1 was used.
(2) Test method The same test method as in Example 1 was followed.
(3) Test results The measurement results are shown in FIG.
〔実施例１３〕
本発明のブロッキング剤の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、ＢＬＭＨ抗体チップを用いて確認を行った。
（１）材料
（１−１）試料
０、５０、１００、２５０、５００、１０００、２０００、５０００ｎｇのテープストリッピングサンプル
（１−２）抗体チップ
抗ＢＬＭＨ抗体（Ａｂｎｏｖａ社：Ｈ０００００６４２−Ａ０１）が最終濃度０．１、０．３、０．５、１．０ｍｇ／ｍｌとなるように、基板に固定化されたＢＬＭＨ抗体チップを用いた。
（１−３）蛍光色素及びブロッキング剤
実施例１と同じものを用いた。
（２）試験方法
実施例１と同じ試験方法に従った。
（３）試験結果
測定結果を図１３に示す。
実施例５〜１３によれば、本発明のブロッキング剤は、免疫反応の種類を問わず、汎用的に非特異反応の抑制効果を奏することが判明した。
Example 13
The inhibitory effect of the blocking agent of the present invention on the binding of the unreacted fluorescent dye to the antibody was confirmed using a BLMH antibody chip.
(1) Material (1-1) Sample 0, 50, 100, 250, 500, 1000, 2000, 5000 ng of tape stripping sample (1-2) Antibody chip anti-BLMH antibody (Abnova: H000000642-A01) final concentration A BLMH antibody chip immobilized on a substrate was used so as to be 0.1, 0.3, 0.5, and 1.0 mg / ml.
(1-3) Fluorescent dye and blocking agent The same one as in Example 1 was used.
(2) Test method The same test method as in Example 1 was followed.
(3) Test results The measurement results are shown in FIG.
According to Examples 5-13, it turned out that the blocking agent of this invention has the suppression effect of a nonspecific reaction universally regardless of the kind of immune reaction.
〔実施例１４〕
未反応蛍光色素の抗体への結合阻害試薬（濃度）の検討（トリス塩酸）
本発明のブロッキング剤（トリス塩酸）の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、有効濃度範囲の検討を行った。
（１）材料
（１−１）試料
ＢＬＭＨ精製タンパク質（Ａｂｎｏｖａ社：Ｈ０００００６４２−Ｑ０１） ０ｎｇ（試料なし）、１２５ｎｇ（試料あり）
（１−２）抗体チップ
抗ＢＬＭＨ抗体（Ａｂｎｏｖａ社：Ｈ０００００６４２−Ａ０１）が最終濃度０．５、１．０ｍｇ／ｍｌとなるように、基板に固定化されたＢＬＭＨ抗体チップを用いた。１つの抗体チップには、１０個のウェルが載置され、各ウェルには、２０個の 抗体スポットが固定化されている。抗体の各濃度について１ウェルにつき５スポットずつ固定した抗体チップを用いて試験を行った。各ブロッキング剤濃度について試料を各１ウェルに適用し測定した。
（１−３）蛍光色素
実施例１と同じものを用いた。
（１−４）ブロッキング剤
０、０．１、０．５、１、２Ｍのトリス塩酸（ｐＨ７．４、和光純薬工業）を用いた。
（２）試験方法
実施例２の試験方法に同じ。
（３）試験結果
抗ＢＬＭＨ抗体濃度が１Ｍの場合の結果を図１４に示す。これによれば、トリス塩酸 １Ｍの場合に、サンプルありの測定値とサンプルなしの測定値の差が最大であり、本濃度での感度が最大であることがわかった。
Example 14
Examination of reagent (concentration) for inhibiting binding of unreacted fluorescent dye to antibody (Tris-HCl)
The effective concentration range was examined for the inhibitory effect of the unreacted fluorescent dye on the antibody of the blocking agent (Tris-HCl) of the present invention.
(1) Material (1-1) Sample BLMH purified protein (Abnova: H000000642-Q01) 0 ng (no sample), 125 ng (with sample)
(1-2) Antibody chip A BLMH antibody chip immobilized on a substrate was used so that the anti-BLMH antibody (Abnova: H000000642-A01) had a final concentration of 0.5 and 1.0 mg / ml. Ten wells are placed on one antibody chip, and 20 antibody spots are immobilized on each well. Each antibody concentration was tested using an antibody chip in which 5 spots were fixed per well. Samples were applied to each well for each blocking agent concentration and measured.
(1-3) Fluorescent dye The same one as in Example 1 was used.
(1-4) Blocking agents 0, 0.1, 0.5, 1, 2M Tris-HCl (pH 7.4, Wako Pure Chemical Industries) were used.
(2) Test method Same as the test method of Example 2.
(3) Test results The results when the anti-BLMH antibody concentration is 1M are shown in FIG. According to this, in the case of Tris-HCl 1M, it was found that the difference between the measured value with the sample and the measured value without the sample was the maximum, and the sensitivity at this concentration was the maximum.
〔実施例１５〕
未反応蛍光色素の抗体への結合阻害試薬（濃度）の検討（トリス塩酸）
本発明のブロッキング剤（トリス塩酸）の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、有効濃度範囲の検討を行った。
試料として、ＢＬＭＨ精製タンパク質の代わりにＡｎｎｅｘｉｎＩＩ精製タンパク質（ＡｍＰｒｏｘ社：Ｎｏ．８１６８−１０）、抗体として抗ＢＬＭＨ抗体の代わりに抗ＡｎｎｅｘｉｎＩＩ抗体（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ社：ｓｃ−４７６９６）を用いた以外は、実施例１４と同様に行った。抗ＡｎｎｅｘｉｎＩＩ抗体濃度が１Ｍの場合の結果を図１５に示す。これによれば、抗体チップが変わってもトリス塩酸が１Ｍでサンプルありの測定値とサンプルなしの測定値の差が最大であり、本濃度での感度が最大であることがわかった。
Example 15
Examination of reagent (concentration) for inhibiting binding of unreacted fluorescent dye to antibody (Tris-HCl)
The effective concentration range was examined for the inhibitory effect of the unreacted fluorescent dye on the antibody of the blocking agent (Tris-HCl) of the present invention.
The procedure was performed except that Annexin II purified protein (AmProx: No. 8168-10) was used instead of BLMH purified protein as a sample, and Anti-Annexin II antibody (Santa Cruz: sc-47696) was used instead of anti-BLMH antibody as an antibody. Performed as in Example 14. The results when the anti-Annexin II antibody concentration is 1M are shown in FIG. According to this, it was found that even when the antibody chip was changed, the difference between the measured value with the sample at 1 M and the measured value without the sample was the maximum, and the sensitivity at this concentration was the maximum.
〔実施例１６〕
未反応蛍光色素の抗体への結合阻害試薬（濃度）の検討（グリシン）
本発明のブロッキング剤（グリシン）の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、有効濃度範囲の検討を行った。
ブロッキング剤として、トリス塩酸の代わりにグリシンを用いた以外は、実施例１４と同様に行った。抗ＢＬＭＨ抗体濃度が１Ｍの場合の結果を図１６に示す。これによれば、グリシンが１Ｍでサンプルありの測定値とサンプルなしの測定値の差が最大であり、本濃度での感度が最大であることがわかった。
Example 16
Examination of reagent (concentration) that inhibits binding of unreacted fluorescent dye to antibody (glycine)
The effective concentration range was examined for the inhibitory effect of the blocking agent (glycine) of the present invention on the binding of the unreacted fluorescent dye to the antibody.
The same procedure as in Example 14 was performed except that glycine was used instead of Tris-HCl as a blocking agent. The results when the anti-BLMH antibody concentration is 1M are shown in FIG. According to this, it was found that the difference between the measured value with glycine at 1M and the measured value without the sample was the maximum, and the sensitivity at this concentration was the maximum.
〔実施例１７〕
未反応蛍光色素の抗体への結合阻害試薬（濃度）の検討（グリシン）
本発明のブロッキング剤（グリシン）の未反応蛍光色素の抗体への結合阻害効果について、有効濃度範囲の検討を行った。ブロッキング剤として、トリス塩酸の代わりにグリシンを用いた以外は、実施例１５と同様に行った。抗ＡｎｎｅｘｉｎＩＩ抗体濃度が１Ｍの場合の結果を図１７に示す。これによれば、抗体チップが変わってもグリシンが１Ｍでサンプルありの測定値とサンプルなしの測定値の差が最大であり、本濃度での感度が最大であることがわかった。
Example 17
Examination of reagent (concentration) that inhibits binding of unreacted fluorescent dye to antibody (glycine)
The effective concentration range was examined for the inhibitory effect of the blocking agent (glycine) of the present invention on the binding of the unreacted fluorescent dye to the antibody. The same procedure as in Example 15 was performed except that glycine was used instead of Tris-HCl as a blocking agent. The results when the anti-Annexin II antibody concentration is 1M are shown in FIG. According to this, even when the antibody chip was changed, it was found that the difference between the measured value with 1 M glycine and the measured value without the sample was the maximum, and the sensitivity at this concentration was the maximum.
本発明のブロッキング剤によれば、蛍光色素で標識した試料中の抗原を、抗原抗体反応を利用して測定する方法において、抗原抗体反応を阻害することなく、非特異反応を抑制し、バックグラウンドを抑えることができる。従って、従来よりも非常に簡易な方法、短時間で正確かつ高感度の測定をすることが可能となり、抗体を多数固定化した抗体チップを用いた測定方法・測定装置にも適用が可能である。 According to the blocking agent of the present invention, in a method for measuring an antigen in a sample labeled with a fluorescent dye using an antigen-antibody reaction, a non-specific reaction is suppressed without inhibiting the antigen-antibody reaction, and the background Can be suppressed. Therefore, it is possible to perform an extremely simple method, accurate and highly sensitive measurement in a short time as compared with the conventional method, and can be applied to a measurement method and measurement apparatus using an antibody chip in which a large number of antibodies are immobilized. .
Claims (5)
（１）試料からタンパク質を抽出する手段
（２）（１）で得られたタンパク質と蛍光色素を反応させ蛍光色素標識タンパク質を作製する手段
（３）請求項１又は２に記載のブロッキング剤を用いて蛍光色素と抗体との非特異反応を抑制する手段
（４）（２）で得られた蛍光色素標識タンパク質を抗体チップと反応させる手段
（５）（４）の反応後の抗体チップの蛍光色素を検出する手段 5. A protein automatic detection apparatus using the protein detection method according to claim 3 or 4, wherein the detection apparatus has the following means.
(1) Means for extracting a protein from a sample (2) Means for producing a fluorescent dye-labeled protein by reacting the protein obtained in (1) with a fluorescent dye (3) Using the blocking agent according to claim 1 or 2 Means for suppressing nonspecific reaction between fluorescent dye and antibody (4) Means for reacting fluorescent dye-labeled protein obtained in (2) with antibody chip (5) Fluorescent dye of antibody chip after reaction in (4) Means to detect
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Cited By (1)
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|---|---|---|---|---|
| CN105203772A (en) * | 2015-09-16 | 2015-12-30 | 宁波瑞源生物科技有限公司 | Application of glycine in weakening quenching phenomenon during marking of D-dimer antibody through fluorescein FITC |
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|---|---|---|---|---|
| JP2007178142A (en) * | 2005-12-27 | 2007-07-12 | Tokuyama Corp | Method for producing immobilized antibody |
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2009
- 2009-08-28 JP JP2009198176A patent/JP2011047871A/en active Pending
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| CN105203772A (en) * | 2015-09-16 | 2015-12-30 | 宁波瑞源生物科技有限公司 | Application of glycine in weakening quenching phenomenon during marking of D-dimer antibody through fluorescein FITC |
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