JP2008504010A - 新規のプロスタグランジン受容体タンパク質をコードする核酸およびその使用方法 - Google Patents
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Abstract
【選択図】 図2
Description
胞増殖を誘導することが示されている。また、肝臓での糖原形成も、DP受容体で調節される可能性がある(Ito等,1989年)。DP受容体は眼内に見出され、アゴニストが眼圧を減少させることから、緑内障における役割が示唆されている。血小板はDP受容体を含み、さらに、PGD2は、血小板凝集を阻害することが示されており、これは、血栓症のような血液疾患の調節におけるDP受容体に関する役割を支持している(Armstrong,1996年)。従って、異なる臓器および組織における様々なDP受容体の発現は、DP受容体は、様々な治療分野にとって魅力的な標的となり得ることを示唆している。
図1は、本発明の受容体の核酸配列を示す(配列番号1)。
図2は、本発明の受容体のアミノ酸配列を示す(配列番号2)。
図3は、多数の種間のDP受容体のコード配列のアライメントを示す。網掛けをつけた残基は、正確に、モルモットの残基に相当する。Hs=ヒト;Rn=ラット;Mm=マウス;および Cp=モルモット。
図4は、多数の種間のDP受容体のアミノ酸配列のアライメントを示す。網掛けをつけた残基は、正確に、モルモットの残基に相当する。Hs=ヒト;Rn=ラット;Mm=マウス;Cp=モルモット。
図5は、モルモット(Cavia porcellus)のDP受容体のゲノムDNAフラグメントの、ノーザンブロット解析を示す。レーン1:インビトロジェン(Invitrogen)の0.24〜9.5KbのRNAラダー;レーン2:攻撃されていないモルモット由来の肺トータルRNA;レーン3:オボアルブミンで攻撃されたモルモット由来の肺トータルRNA。
図6は、安定してトランスフェクションされたHEK−293−Gα16細胞で発現された組換えモルモットDP受容体の、マウスのDP受容体を用いて作製された同等の細胞系および親細胞系と比較したPGD2で誘導されたカルシウム動員の例を示す。
図7は、SPAcAMP分析を用いた、安定してトランスフェクションされたHEK−293−Gα16細胞で発現された組換えモルモットDP受容体のPGD2の用量反応曲線の例を示す。マウスのDP受容体を用いて作製された同等の細胞系および親細胞系との比較を含む。
本明細書で用いられる「核酸分子」は、リボヌクレオシド(アデノシン、グアノシン、ウリジンまたはシチジン;「RNA」)、またはデオキシリボヌクレオシド(デオキシアデノシン、デオキシグアノシン、デオキシチミジンまたはデオキシシチジン;「DNA」)、またはそれらのあらゆるリン酸エステル類似体、例えばホスホロチオエート、およびチオエステルのリン酸エステルの多量体型を意味し、一本鎖型または二本鎖へリックス型のいずれかである。このような核酸分子としては、デオキシリボ核酸分子(DNA)、例えばゲノムDNA、および相補的DNA(cDNA)(これらは、コードまたは非コード一本鎖または二本鎖である)、合成DNA、リボ核酸(RNA)分子(これらは、一本鎖でもよいし、または二本鎖でもよい)、およびヌクレオチド類似体を用いて作製されたDNAおよびRNAの類似体が挙げられる。二本鎖DNA:DNA、DNA:RNA、およびRNA:RNAヘリックスが考えられる。
より低く開始されるか、または膜へのGTPの結合を減少させる。
本発明の一形態は、本発明の受容体タンパク質、またはそれらの一部をコードする単離または精製された核酸分子に関する。本発明の核酸分子、またはその核酸配列の相補物は、標準的な分子生物学的な技術や、本発明で示される配列情報を用いて単離することができる。配列番号1の核酸配列の全部または一部をハイブリダイゼーションプローブとして用いて、標準的なハイブリダイゼーションおよびクローニング技術を用いて本発明の核酸分子を単離することができる(Sambrook等,1989年)。配列番号1に対応するオリゴヌクレオチド、またはそれらの一部は、標準的な合成技術によって、例えば自動DNAシンセサイザーを用いて製造することができる。本発明の核酸分子、またはその一部は、標準的なPCR増幅技術に従って、cDNA、mRNAまたはゲノムDNAをテンプレートとして用いて、さらに適切なオリゴヌクレオチドプライマーを用いて増幅することができる。
フェニルアラニン(PheまたはF) UUUまたはUUC
ロイシン(LeuまたはL) UUAまたはUUGまたはCUUまたはCUCまたはCUAまたはCUG
イソロイシン(IleまたはI) AUUまたはAUCまたはAUA
メチオニン(MetまたはM) AUG
バリン(ValまたはV) GUUまたはGUCまたはGUAまたはGUG
セリン(SerまたはS) UCUまたはUCCまたはUCAまたはUCGまたはAGUまたはAGC
プロリン(ProまたはP) CCUまたはCCCまたはCCAまたはCCG
スレオニン(ThrまたはT) ACUまたはACCまたはACAまたはACG
アラニン(AlaまたはA) GCUまたはGCGまたはGCAまたはGCG
チロシン(TyrまたはY) UAUまたはUAC
ヒスチジン(HisまたはH) CAUまたはCAC
グルタミン(GlnまたはQ) CAAまたはCAG
アスパラギン(AsnまたはN) AAUまたはAAC
リシン(LysまたはK) AAAまたはAAG
アスパラギン酸(AspまたはD) GAUまたはGAC
グルタミン酸(GluまたはE) GAAまたはGAG
システイン(CysまたはC) UGUまたはUGC
アルギニン(ArgまたはR) CGUまたはCGCまたはCGAまたはCGGまたはAGA、またはAGG
グリシン(GlyまたはG) GGUまたはGGCまたはGGAまたはGGG
トリプトファン(TrpまたはW) UGG
終止コドン UAAまたはUAGまたはUGA。
適切な温度および溶液のイオン強度の条件下で、核酸分子の一本鎖型が、その他の核酸分子にアニールできる場合、その核酸分子は、その他の核酸分子(例えばcDNA、ゲノムDNA、またはRNA)に「ハイブリダイゼーション可能」である(上記のSambrook等を参照)。温度およびイオン強度条件により、ハイブリダイゼーションの「ストリンジェンシー」が決定される。低いストリンジェンシーのハイブリダイゼーション条件は、Tmが55℃(例えば、5×塩化ナトリウム/クエン酸ナトリウム(SSC)、0.1%SDS、0.25%ミルク、およびホルムアミドなし;または30%ホルムアミド、5×SSC、0.5%SDS)に相当する。中度のストリンジェンシーのハイブリダイゼーション条件は、より高いTm(例えば、40%ホルムアミド、5×または6×SSCで)に相当する。高いストリンジェンシーのハイブリダイゼーション条件は、最も高いTm(例えば、50%ホルムアミド、5×または6×SSCで)に相当する。ハイブリダイゼーションは、2つの核酸が相補配列を含むことが必要だが、ハイブリダイゼーションのストリンジェンシーに応じて、塩基間のミスマッチが存在してもよい。核酸のハイブリダイゼーションに適切なストリンジェンシーは、核酸の長さ、および相補性の程度依存し、これらはこの技術分野で周知の可変値である。2つのヌクレオチド配列間の類似性または相同性の程度が大きければ大きいほど、その配列を有する核酸のハイブリッドに関するTm値もますます大きくなる。核酸のハイブリダイゼーションの、相対的な安定性(より高いTmに相当する)は、RNA:RNA、DNA:RNA、DNA:DNAの順で減少する。長さが100個より大きいヌクレオチドのハイブリッドについて、Tmを計算するための方程式が、得られている(上記のSambrook等,9.50〜9.51を参照)。より短い核酸、すなわちオリゴヌクレオチドを用いたハイブリダイゼーションについて、ミスマッチの位置がより重要なり、オリゴヌクレオチドの長さがその特異性を決定する(上記のSambrook等,11.7〜11.8を参照)。ハイブリダイゼーション可能な核酸分子の最小限の長さは、少なくとも約20個のヌクレオチド;具体的には少なくとも約30個のヌクレオチド;より具体的には少なくとも約40個のヌクレオチド、さらにより具体的には約50個のヌクレオチド、およびさらにより具体的には少なくとも約60個のヌクレオチドである。
しくは、配列番号1の配列、またはそれらの相補物にストリンジェントな条件下でハイブリダイゼーションする本発明の単離された核酸分子は、天然に存在する核酸分子に相当する。本明細書で用いられる「天然に存在する」核酸分子は、天然に存在するヌクレオチド配列(例えば、天然タンパク質をコードする)を有するRNAまたはDNA分子を意味する。当業者であれば当然と思われるが、このような条件は、配列特異的な可変値(例えば、長さ、G−Cの豊富さなど)に応じて改変されていてもよい。その他の実施形態において、配列番号1の配列の一部にストリンジェントな条件下でハイブリダイゼーションする本発明の単離された核酸分子は、プローブまたはプライマーとして用いることができる。このようなプローブ/プライマーは、典型的には、実質的に精製されたオリゴヌクレオチドを含む。このようなオリゴヌクレオチドは、典型的には、配列番号1のセンスまたはアンチセンス配列、または配列番号1の天然に存在する突然変異体の、少なくとも約12、好ましくは約25、より好ましくは約50、75、100、125、150、175、200、250、300、350、または400個の連続するヌクレオチドにストリンジェントな条件下でハイブリダイゼーションするヌクレオチド配列の領域を含む。
本発明は、アンチセンス核酸分子を包含し、すなわち、タンパク質をコードするセンス核酸に相補的な(例えば、二本鎖cDNA分子のコード鎖に相補的な、またはmRNA配列に相補的な)分子を包含する。アンチセンス核酸は、センス核酸に水素結合できる。アンチセンス核酸は、配列番号1の核酸配列全体に相補的でもよいし、またはそれらの部分に相補的でもよい。本明細書で開示されたコード鎖配列(例えば、配列番号1)の場合、本発明のアンチセンス核酸は、ワトソンとクリックの塩基対形成の規則に従って設計することができる。アンチセンスオリゴヌクレオチドは、例えば、長さが約5、10、15、20、25、30、35、40、45または50個のヌクレオチドであり得る。本発明のアンチセンス核酸は、この技術分野で既知の手法を用いた化学合成、および酵素によるライゲーション反応を用いて構築することができる。例えば、アンチセンス核酸(例えば、アンチセンスオリゴヌクレオチド)は、天然に存在するヌクレオチド、または分子の生物学的な安定性を高める、またはアンチセンスとセンス核酸とで形成された二重鎖の物理的な安定性を高めるように設計された様々な化学的に修飾されたヌクレオチドを用いて化学合成することができ、例えば、ホスホロチオエート誘導体、ホスホン酸誘導体、およびアクリジンで置換されたヌクレオチドを用いることができる。
本発明はまた、リボザイムも包含する。リボザイムは、リボザイムにハイブリダイゼーションする一本鎖の核酸(例えばmRNA)を切断することができるリボヌクレアーゼ活性を有する触媒性のRNA分子である。従って、リボザイム(例えばハンマーヘッド型リボザイム(Haselhoff等,Nature(1988年)334:585〜591)で説明されている)を用いて、核酸転写物を触媒的に切断することによって配列番号1に対応するmRNAの翻訳を阻害することができる。配列番号1の核酸への特異性を有するリボザイムを、配列番号1のヌクレオチドの配列に基づいて設計することができる。例えば、テトラヒメナL−19IVS RNAの誘導体は、報告されている配列番号1の核酸配列(米国特許第4,987,071号、および5,116,742号、この開示は、参照により開示に加入させる)に基づき、活性部位のヌクレオチド配列が切断しようとするヌクレオチド配列に相補的になるように構築することができる。あるいは、配列番号1の核酸配列を用いて、RNA分子のプールから特異的なリボヌクレアーゼ活性を有する触媒性のRNAを選択することができる。(Bartel等,Science(1993年)261:1411〜1418。
本発明はまた、三重らせん構造を形成する核酸分子も包含する。例えば、配列番号1の調節領域(例えば、プロモーター、および/またはエンハンサー領域)に相補的なヌク
レオチド配列を標的にして、標的細胞における遺伝子の転写を妨害する三重らせん構造を形成することによって、遺伝子発現を阻害することができ、一般的には、Helene,Anticancer Drug Des(1991年)6(6):569;Helene Ann NY Acad Sci(1992年)660:27;および Maher,Bioassays(1992年)14(12):807を参照。
RNA干渉(RNAi)または核酸干渉(NAi)は、短鎖干渉RNA(siRNA)、または短鎖干渉核酸(siNA)が介在する配列特異的な転写後遺伝子サイレンシングのプロセスである。このプロセスは、進化上保存された防御メカニズムと考えられており、それによって、例えばウイルス感染の結果として、二本鎖RNA(dsRNA)または二本鎖核酸(dsNA)が生産され、ダイサーと称されるリボヌクレアーゼIII酵素の活性を刺激する(Berstein等,2001年,Nature 409:363)。例えば、ダイサーは、dsRNAをsiRNAに加工する。ダイサーは、翻訳の制御に関与する21および22ヌクレオチドからなる低分子の一時的なRNA(stRNA)の切り出しに関与する可能性もある。また、RNAi応答は、siRNAのアンチセンス鎖に相補的な配列を有する標的の一本鎖RNAを切断する、エンドヌクレアーゼ複合体、RNAで誘導されたサイレンシング複合体(RISC)にも関与する(Elbashir等,2001年,Genes Dev.,15:188)。効率的なRNAiまたはNaiに関する長さ、構造、化学組成および配列に基づく、siRNA、dsRNA、siNAまたはdsNAの最適な設計は当業者既知である(例えば、以下を参照:ChiuおよびRana等,2003年,RNA 9:1034〜48;Elbashir等,2001年;Parish等,2000年;PCT公開番号WO03/070744、WO01/75164、WO01/68836、WO01/49844、WO01/36646、WO01/29058、WO00/44914、WO00/01846、WO99/32619、WO99/07409、WO99/53050;カナダ国特許出願第2,359,180号、この開示は、参照により開示に加入させる)。活性を改善するための、siNAまたはdsNAへの可能性のある改変のいくつかとしては、これらに限定されないが、以下が挙げられる:3’末端ジヌクレオチドのオーバーハング、siNA鎖の一方または両方の2’−デオキシヌクレオチド(2’−H)での置換、siNA二重鎖の3’末端ヌクレオチドのオーバーハングしたセグメントのデオキシリボヌクレオチドでの置換、リン酸−糖主鎖、またはヌクレオシドのいずれかを修飾して、dsRNAコンストラクト中に、窒素または硫黄ヘテロ原子、2’−アミノまたは2’−O−メチルヌクレオチド、および2’−Oまたは4’−Cメチレン架橋を含むヌクレオチドを少なくとも1つを含ませること、センスおよびアンチセンス鎖中の5−ブロモウラシル、5−ヨードウラシル、および3−(アミノアリル)ウラシルを置換すること。PCT公開番号WO01/68836では、内因的に誘導されたdsRNAを用いて遺伝子発現を弱める方法が説明されている。さらに、RNAiを目的としたmRNAは、1つの細胞型における遺伝子を標的とする新しいdsRNAの5’から3’への合成のためのテンプレートとして作用し、別個の細胞型で発現された第二の遺伝子のRNAi介在サイレンシング(二次的な(transitive)RNAiという現象)を引き起こす可能性があることが示唆されている(Alder等,2003年 rna 9:25)。
本発明は、配列番号2のアミノ酸配列を含む単離されたポリペプチド、それらの変異体、それらのフラグメント、またはそれらの類似体もしくは誘導体も包含する。
上述したように、本発明はさらに、配列番号1および配列番号2の変異体も包含する。例えば、突然変異は、標準的な技術(例えば部位特異的変異誘発、およびPCRによって媒介される変異誘発)を用いて、配列番号1のアミノ酸配列に導入することができる。その上、保存的アミノ酸置換は、1またはそれ以上の推定の非必須のアミノ酸残基で作製することができる。「同類アミノ酸置換」の一つは、アミノ酸残基が、類似の側鎖を有するアミノ酸残基で置換されている置換である。例えば、1またはそれ以上のアミノ酸が、機能的な等価体として作用し、サイレントな変化を生じる類似の極性を有するその他のアミノ酸で置換されていてもよい。本発明のポリペプチドのアミノ酸配列内でのアミノ酸の置換は、そのアミノ酸が属するクラスのその他のものから選択されてもよい。例えば、非極性(疎水性)アミノ酸としては、アラニン、ロイシン、イソロイシン、バリン、プロリン、フェニルアラニン、トリプトファン、およびメチオニンが挙げられる。芳香環構造を含むアミノ酸は、フェニルアラニン、トリプトファン、およびチロシンである。極性で中性のアミノ酸としては、グリシン、セリン、スレオニン、システイン、チロシン、アスパラギン、およびグルタミンが挙げられる。正電荷を有する(塩基性)アミノ酸としては、アルギニン、リシン、およびヒスチジンが挙げられる。負電荷を有する(酸性)アミノ酸としては、アスパラギン酸、およびグルタミン酸が挙げられる。このような変更は、ポリアクリルアミドゲル電気泳動または等電点で決定されるような見かけの分子量に影響を与えないと思われる。
−Argの代わりにLys(逆もまた同様)、これは、正電荷を維持することができる;−Aspの代わりにGlu(逆もまた同様)、これは、負電荷を維持することができる;−Thrの代わりにSer、これは、遊離の−OHを維持することができる;および
−Asnの代わりにGln、これは、遊離のNH2を維持することができる。
さらに本発明は、化学修飾によって生産された本発明のタンパク質の誘導体または類似体も含む。本発明のタンパク質は、1またはそれ以上の化学成分をタンパク質成分に結合させることによって誘導体化されてもよい。
本発明の単離されたタンパク質、またはそれらの部分もしくはフラグメントを免疫原として用いて、ポリクローナルおよびモノクローナル抗体製造のための標準的な技術を用いて本発明のタンパク質に結合する抗体を生成することができる。用語「抗体」は、本明細書で用いられる場合、免疫グロブリン分子、および免疫グロブリン分子の免疫学的に
活性な部分、すなわち、本発明のタンパク質またはそれらのフラグメントのような抗原に特異的な(すなわちそれらに結合する)抗原−結合部位を含む分子を意味する。本発明のタンパク質に特異的に結合する分子とは、サンプル中で、例えばもともと本発明のタンパク質を含む生物学的サンプル中で、本発明のタンパク質には結合するが、実質的にその他の分子とは結合しない分子である。免疫グロブリン分子の免疫学的に活性な部分の例としては、F(ab)、およびF(ab')2フラグメントが挙げられ、これらは、抗体をペプシンのよ
うな酵素で処理することによって生成させることができる。本発明は、免疫原として、本発明のタンパク質、それらの変異体、それらのフラグメント、またはそれらの類似体もしくは誘導体を有する、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体およびキメラ抗体を提供する。ヒトの病気または障害の治療に使用するためには、キメラ抗体が好ましく、これは、ヒト抗体またはヒト化抗体は、異種抗体に比べて、免疫反応(特にアレルギー性応答)をそれ自身極めて誘導しにくいためである。
場合により、本発明の単離された核酸分子、本発明のポリペプチド、および本発明の抗体、同様に、このような成分のフラグメントは、検出可能に標識されていてもよい。適切な標識としては、酵素、発蛍光団(極く一部の発蛍光団であるが例えば、フルオレセインイソチオシアネート(FITC)、フィコエリトリン(PE)、テキサスレッド(TR)、ローダミン、遊離の、またはキレート化ランタニド系の塩、特にEu3+)、発色団、放射性同位体、キレート剤、色素、コロイド金、ラテックス粒子、リガンド(例えばビオチン)、生物発光物質、および化学発光物質が挙げられる。コントロールマーカーが用られる場合、受容体とコントロールマーカーに同一または異なる標識を用いてもよい。
本発明のその他の形態は、配列番号1をコードする核酸またはその部分を含むベクター、好ましくは発現ベクターに関する。上述したように、一つのタイプのベクターは、「プラスミド」であり、これは、追加のDNAセグメントがライゲーション可能な環状の二本鎖DNAループを意味する。その他のタイプのベクターは、追加のDNAセグメントがウイルスゲノムにライゲーション可能なウイルスベクターである。ある種のベクターは、宿主細胞中で自律的な複製が可能である(例えば、細菌性の複製起点を有する細菌性ベクター、およびエピソームの哺乳動物ベクター)。その他のベクター(例えば、非エピソームの哺乳動物ベクター)は、宿主細胞への導入時に宿主細胞のゲノムに統合され、それによって、宿主ゲノムと同調して複製される。さらに、発現ベクターは、それらに機能するように連結した遺伝子の発現を指示することができる。一般的に、組換えDNA技術で有用な発現ベクターは、プラスミド(ベクター)の形態であることが多い。しかしながら、本発明は、このような発現ベクターの、同等の機能を提供するその他の形態、例えばウイルスベクター(例えば、複製欠損型レトロウイルス、アデノウイルス、およびアデノ随伴ウイルス)を含むものとする。
本発明の宿主細胞を用いて、非ヒトトランスジェニック動物を生産することもできる。例えば、一実施形態において、本発明の宿主細胞は、配列番号1に対応する配列が導入された受精させた卵母細胞または胚幹細胞である。次に、このような宿主細胞を用いて、ゲノムに外因性の配列が導入された非ヒトトランスジェニック動物、または内因性配列が改変された相同組換え動物を作製することができる。このような動物は、本発明のタンパク質の機能および/または活性を研究すること、および本発明のタンパク質の活性のモジュレーターを同定および/または評価するのに有用である。本明細書で用いられる「トランスジェニック動物」は、非ヒト動物、好ましくは哺乳動物、より好ましくはげっ歯類、例えばラットまたはマウスであり、これらは、動物の細胞の1個またはそれ以上にトランスジーンを含む。トランスジェニック動物のその他の例としては、非ヒト霊長類、ヒツジ、イヌ、ウシ、ヤギ、ニワトリ、両生類などが挙げられる。本発明の特定の実施形態は、本発明の受容体を過剰発現するモルモットであり、これは、アレルギー性鼻炎、気管支喘息または慢性閉塞性肺疾患の動物モデルとして有用性を有すると予測される。
本発明の核酸分子、タンパク質、タンパク質相同体、抗体およびこのような成分のフラグメントは、以下の方法の1またはそれ以上で用いてもよい:a)スクリーニング分析;b)検出分析(例えば、染色体マッピング、組織型別、法生物学);c)予測医学(例えば、診断分析、予後分析、モニタリング臨床試験、および薬理ゲノム学);およびd)治療方法(例えば、治療的および予防的な)。本発明のタンパク質は、その他の細胞タンパク質と相互作用するため、(i)細胞増殖の調節;(ii)細胞分化の調節;(iii)細胞生存の調節、および(iv)細胞機能の調節のために用いることができる。本発明の単離された核酸分子を用いて、本発明のタンパク質を発現させることができ(例えば、遺伝子治療用途において、宿主細胞中組換え発現ベクターを介して)、本発明のmRNAを検出することができ(例えば、生物学的サンプル中で)、または本発明の遺伝子中の遺伝的損傷を検出することができ、さらに、内因性mRNA、DNAまたはタンパク質の活性を調節することもできる。加えて、本発明のタンパク質を用いて、タンパク質活性または発現を調節する薬物または化合物、同様に、内因性タンパク質の不十分な、または過剰な生産を特徴とする障害を治療する薬物または化合物をスクリーニングすることができる。また、野生型タンパク質と比較して少ない活性または異常な活性を有するタンパク質型の生産をスクリーニングすることも本発明によって行うことができる。加えて、本発明の抗体を用いて、タンパク質を検出および単離し、さらに、タンパク質活性を調節することができる。本発明はさらに、上述のスクリーニング分析で同定された新規の作用物質、および本明細書で説明されるような治療のためのそれらの使用に関する。
内因性のリガンドの存在下でGタンパク質受容体が活性化されることによって、Gタンパク質受容体複合体が形成され、それにより、GTPをGタンパク質に結合させる。Gタンパク質のGTPアーゼドメインは、GTPをGDPにゆっくり加水分解し、正常な状態で、受容体の非活性化が起こる。しかしながら、構成的に活性化された受容体は、GDPをGTPに加水分解し続ける。
遺伝子の配列(またはその配列の一部)が単離されたら、その配列を用いて、染色体上での本発明の遺伝子の位置をマッピングすることができる。従って、本明細書で説明されている核酸分子またはそれらのフラグメントは、ゲノムにおける位置をマッピングするのに用いることができる。ゲノム(特にヒトゲノム)中の配列の位置のマッピングは、その配列を病気に関連する遺伝子に関連付けることにおける重要な第一工程である。
生物学的サンプルで本発明の核酸またはタンパク質の存在または非存在を検出する典型的な方法は、試験対象から生物学的サンプルを得ること、および生物学的サンプル中でそれらの存在が検出されるように、その生物学的サンプルと、タンパク質または核酸(例えばmRNAまたはゲノムDNA)を検出することができる化合物または作用物質とを接触させることを含む。mRNAまたはゲノムDNAを検出するのに好ましい作用物質は、本発明のmRNAまたはゲノムDNAにハイブリダイゼーション可能な標識された核酸プローブである。このような核酸プローブは、例えば全長核酸、例えば配列番号1の核酸またはそれらの部分が可能であり、例えば、長さが少なくとも15、30、50、100、250、または500個またはそれ以上のヌクレオチドからなり、さらに、mRNAまたはゲノムDNAにストリンジェントな条件下で特異的にハイブリダイゼーションするのに十分なオリゴヌクレオチドである。本発明の診断分析で使用するのに適したその他のプローブは、本明細書で説明されている。
本発明の核酸またはタンパク質の活性を調節することができる化合物のためのいずれの分析も、ハイスループットスクリーニングで処理することができる。ハイスループットスクリーニングシステムは市販されている(例えば、ザイマーク社(Zymark Corp.),ホプキントン,マサチューセッツ州;エアー・テクニカル・インダストリーズ(Air Technical Industries),メンター,オハイオ州;ベックマン・インスツルメンツ社(Beckman Instruments,Inc.),フラトン,カリフォルニア州;プレジション・システムズ社(Precision Systems,Inc.),ナティック,マサチューセッツ州などを参照)。これらのシステムは、典型的には、分析に適した検出器における、全てのサンプルおよび試薬のピペッティング、液体の分配、時間測定されたインキュベーション、および最終的なマイクロプレートの測定値などの全手順を自動化している。これらの設定可能なシステムは、ハイスループットで迅速なスタートアップ、同様に、高度なフレキシビリティーおよびカスタマイゼーションを提供する。このようなシステムの製造元は、様々なハイスループットプロトコールの詳細なプロトコールを提供している。従って、例えばザイマーク社は、遺伝子転写物の修飾、リガンド結合などを検出するためのスクリーニングシステムを説明する技術報告を提供している。
本発明はまた、生物学的サンプル(試験サンプル)中で本発明の核酸またはタンパク質の存在を検出するためのキットも包含する。このようなキットを用いて、対象が、異常な発現に関連する障害(例えば免疫疾患)に罹患しているかどうかまたはそれを発症させる危険が高いかどうか、を決定することができる。例えば、本キットは、生物学的サンプル中で本発明のタンパク質またはmRNAを検出することができる標識された化合物または作用物質、およびサンプル中の核酸またはタンパク質の量を決定するための手段(例えば、抗体またはオリゴヌクレオチドプローブ)を含んでいてもよい。また、キットを用いて、タンパク質またはmRNAの量が正常なレベルより高いか、または低い場合に、試験される対象が、本発明の核酸またはタンパク質の異常な発現に関連する障害に罹患しているかどうか、またはそれらを発症させる危険性があるかどうかを示す結果を得ることもできる。
本発明の核酸またはタンパク質の発現または活性に対する作用物質(例えば薬物または化合物)の影響(例えば、異常な細胞増殖、分化および/または機能を調節する能力)のモニタリングは、基本的な薬物スクリーニングだけでなく、臨床試験においても適用することができる。例えば、本明細書で説明されたようなスクリーニング分析によって決定されるような、遺伝子発現、タンパク質レベル、またはタンパク質活性を高める作用物質の有効性は、遺伝子発現、タンパク質レベルまたはタンパク質活性の減少を示す被験者の臨床試験でモニターすることができる。あるいは、スクリーニング分析によって決定されるような、遺伝子発現、タンパク質レベルまたはタンパク質活性を減少させる作用物質の有効性は、遺伝子発現、タンパク質レベルまたはタンパク質活性の増加を示す被験者の臨床試験でモニターすることができる。このような臨床試験において、発現または活性、好ましくは、例えば細胞の増殖障害に関与しているその他の遺伝子の発現または活性は、特定の細胞の免疫反応性を示すマーカーとして用いることができる。例えば、これらに限定されないが、本発明の核酸またはタンパク質の活性を調節する(例えば、本明細書で説明されているスクリーニング分析で同定されたような)作用物質(例えば、化合物、薬物または低分子物質)で処理することによって細胞中で調節される本発明の遺伝子などの遺伝子を同定することができる。従って、例えば臨床試験において、細胞の増殖障害に対する作用物質の作用を研究するために、細胞を単離し、RNAを調製し、本発明の核酸および上記障害に関与するその他の遺伝子の発現レベルについて解析することができる。遺伝子発現のレベル(すなわち、遺伝子発現パターン)は、本明細書で説明されたようなノーザンブロット解析またはRT−PCRによって、あるいは本明細書で説明された方法のいずれか1つによって生産されたタンパク質の量を測定することによって、または本発明の遺伝子、またはその他の遺伝子の活性のレベルを測定することによって定量することができる。このようにして、遺伝子発現パターンは、上記作用物質に対する細胞の生理学的な応答の指標となるマーカーとして役立たせることができる。従って、その応答状態は、上記物質で個体を治療する前、および治療中の様々な時点で決定することができる。
実施例1
モルモットDP受容体の初期のエキソンを有するDNAフラグメントのクローニング
モルモット(Caviaporcellus)DP受容体のcDNAのクローニングを、PCRを用いてDP受容体のエキソンを有するフラグメントをゲノムDNAからクローニングすることによって開始した。各種のPCRプライマーは、プログラムシーケンチャー(Sequencher)(ジーン・コード(Gene Codes),アナーバー,ミシガン州)を用いて並べられたヒト(U31332)、マウス(NM_008962)およびラット(NM_022241)DP受容体配列の保存された領域を用いて設計された。モルモットゲノムDNAを、CeMines(エバークリーン社)から購入した。モルモットのゲノムDNAの420bpのフラグメントを増幅するのに用いられたプライマーを、プライマー675_Topo_F3(配列番号3:GGGACACCCTTTCTTCTACAA)、および675_Topo_R2(配列番号4:GAACACATGGTGAAGAGCACTG)を用いて行った。PCR産物を、TOPO−TAクローニング(インビトロジェン,カールスバッド,カリフォルニア州)を用いてクローニングし、インサートを、ABI 3100 DNAシーケンサーで製造元の説明書に従って配列解析した。
得られたDNA配列を、ヒト、マウスおよびラットDP配列に並べた。このアライメントから、PCR産物の配列が、試験された種由来のDP受容体コンセンサスに相同であるが、それらとは別個のものであることが明らかになった(図3)。モルモットDP受容体のコンセンサスを用いて、DNA末端の迅速増幅(RACE)法を用いてクローニングされた配列を包含するように追加のプライマーを設計した。DP受容体転写物の3’末端を得るために、クロンテック(Clontech(BDバイオサイエンシズの子会社),パロアルト,カリフォルニア州)製のSMART RACEシステムを用いた。モルモットの肺のmRNAを、モルモットDP受容体のmRNA配列を含むようにcDNAテンプレートに変換されたプライマー675_GP_3’RACE_F(配列番号5:GTGCTCGTGGCGCCGGTGTG)を用いた。DP受容体のコード配列の完全な3’伸長を解明するために、RACE産物を、PCR4−Topo(インビトロジェン,カールスバッド,カリフォルニア州)にクローニングし、配列解析し、上述のように並べた。モルモットDP受容体のcDNAの5’末端を単離するために、SMART RACEを、プライマー675_Rev_P2(配列番号6:CACATGGTGAAGAGCACGGTCATGA)を用いて行い、1kbのPCR産物を得た。精製されたPCR産物を、プライマー675_RACE_R9(配列番号7:TCACCAGGCACTTGCCTAGCAGGTCTGT)を用いる5’ネステッドRACEのためのテンプレートとして用いた。DP受容体のコード配列の完全な5’伸長を解明するために、このRACE産物を、上述のようにPCR4−Topo(インビトロジェン)にクローニングし、配列解析し、並べた。
プログラム遺伝子構築キット(テクストコ(Textco),キーン,ニューハンプシャー州)を用いて、DP受容体のコード配列を同定した。ゲートウェイ(Gateway)クローニングに適合するプライマーを、コード配列の両端に合わせて設計し(GW675,フォワードプライマー配列番号8:AAAAGCAGGCTTAGGAATGTCCTTCTATCCCTGCAACAC;GW675,リバースプライマー配列番号9:AAGAAAGCTGGGTCTCACAGACTGGATTCCACGTTAG)、モルモットのオボアルブミンで刺激された肺細胞から得られたcDNAを用いたPCR反応で利用した。PFU Turbo(ストラタジーン(Stratagene),ラホヤ,カリフォルニア州)熱安定性ポリメラーゼ10ユニットおよびテンプレートcDNA100ngを用いてPCRを行った。1.1kbのDNAフラグメントを得て、キアクイック(QiaQuick)プロトコール(キアゲン(Qiagen))によるゲル電気泳動クロマトグラフィーによって精製し、ゲートウェイBPリコンビナーゼクローニング法(インビトロジェン)を用いてpDONR201ベクターにクローニングした。クローニング反応物を、E.コリDH5−アルファに形質転換し、得られたコロニー由来のミニプレップDNAを、DNA配列解析で処理し、完全なDP受容体コード配列のクローニングを確認した。
ノーザンブロット解析
ノーザンブロット解析を、モルモットDP受容体の最初のゲノムDNAフラグメントを用いて行った(図5)。オボアルブミンで攻撃されたまたはオボアルブミン処理を受けていない雄性ハートレーモルモットから、肺を単離した。攻撃されていないモルモット由来の肺トータルRNA発現(レーン2)を、オボアルブミンで攻撃されたモルモット由来の肺トータルRNA発現(レーン3)と比較した。ローディングされたRNAは、分光分析と18SRNAバンドの強度で測定されたものと同等であった。DP受容体に関するノーザンブロッティングで、モルモット肺中の3〜4kbのmRNAが同定され、サイズは、マウスおよびヒトDPについて報告されている転写物と一致していた(Hirata等,1994年;Boie等,1995年)。このmRNAは、オボアルブミンで感作され攻撃されたモルモットの肺で著しくアップレギュレートされており、この結果は、DP受容体は抗原で攻撃されたマウス肺でアップレギュレートされるというこれまで報告されている結果と同等であった(Matsuoka等,2000年)。これらのデータは、モルモット肺における喘息反応におけるDPの重要性を裏付けている。
オルソログDP受容体に対するモルモットの配列解析
モルモットDP受容体に関するヌクレオチド配列(図1)および推定アミノ酸配列(図2)を示す。モルモットDPのcDNAは、345個のアミノ酸タンパク質(計算された分子量38,250)をコードする1,032bpのオープンリーディングフレームを含む。
モルモットDPタンパク質は、2種の可能性のあるN−グリコシル化部位、アミノ末端中のAsn−7および第一の細胞外ループ中のAsn−86を含む。また、2種の可能性のあるプロテインキナーゼCリン酸化部位も存在し、それぞれ第一および第三の細胞質内ループに位置するSer−46およびThr−140である。
ヒト、ラットおよびマウスのDPの対応するの配列と比較した、モルモットDP受容体のヌクレオチドの配列を図1に示す。同様に、タンパク質レベルで、モルモットDP受容体に対する配列同一性は、ヒトDPでは66%、マウスのDPでは63%およびラッ
トDPでは65%であった(図2)。
pEAK10−gpDPおよびpEAK10−mDP哺乳動物発現ベクターの構築
マウスのDP受容体に関する全長cDNAをPCRにより得て、ゲートウェイBPリコンビナーゼクローニング方法を用いてpDONR201ベクターにクローニングした。これにより、上述のモルモットDPベクターに類似したマウスのDPベクターが得られた。DNA配列解析により、このマウスのDPのcDNAが、これまで説明されたマウスのDP配列(Genbank 登録番号NM_008962で定義される)に同一であることを確認した。発現の研究のために、マウスおよびモルモットDP受容体を、LR反応によって、予めゲートウェイに適合させたpEAK10発現ベクター(エッジ・バイオシステムズ(Edge Biosystems))にサブクローニングした。pEAK10ベクターのゲートウェイへの適合は、EcoRIで消化し、続いてベクターへゲートウェイカセットをクローニングするためにクレノーで充填することによって行われた。得られたベクターpEAK10−gpDPおよびpEAK10−mDPを、以下で説明するような安定な細胞系の生産のために用いた。
ヒトGα16をコードするcDNAを、説明されているようにしてクローニングした(Amatruda等,1991年)。簡単に言えば、HL−60ヒト前骨髄球性白血病細胞由来のトータルRNAを単離し、Gα16をコードするcDNAのPCRが介在する合成のためのテンプレートとして用いた。それにより生じたPCR産物を、単鎖抗体(sFv)も共発現する発現ベクターpHook−3(インビトロジェン)にクローニングし、ハプテンで被覆した磁気ビーズ(Chesnut等,1996年)を用いたパンニングプロトコールを用いてトランスフェクションされた細胞を適度に濃縮させた。HEK293細胞を、構築されたプラスミド(pGα16)でトランスフェクションし、ゼオシンで選択し、磁気ビーズを販売元が提供するプロトコールに従って用いてポジティブクローンを濃縮した。最終的な精製および選択のために、シングルクローンを個々に成長させ、元来Gαsにカップリングされる任意選択されたGPCR(GIP受容体)のための発現ベクターでアリコートをさらにトランスフェクションすることによってGα16の機能的な発現に関して分析し、続いて、モレキュラーデバイス社(Molecular Devices Corp)製のFLIPR装置を用いて、トランスフェクションされた細胞をカルシウムシグナル伝達に関して試験した。
pEAK10−gpDPおよびpEAK10−mDPベクターを、リポフェクトアミン2000(ギブコ)を製造元によって説明されているように用いて、HEK293−Gα16細胞系にトランスフェクションした。トランスフェクションされた細胞を、1μg/mlピューロマイシンおよび250μg/mlゼオシンを用いた選択下で5週間培養した。トランスフェクションされた細胞個体群で、PGD2刺激に応答した細胞内のカルシウムの放出を測定することによってDP受容体の発現をモニターした。
機能的な特徴付けのために、新たにクローニングされたモルモットDP受容体を、HEK293−Gα16細胞に安定してトランスフェクションさせ、比較のために、同等の細胞系を、マウスのDP受容体を用いて作製した。DP受容体を発現する細胞系、同様に、トランスフェクションされたDP受容体をまったく発現しない親細胞系の両方を、受容体をGα16へカップリングする力を用いてカルシウム応答を惹起させる第2メッセンジャー分析で評価した。細胞内カルシウム測定は、トランスフェクションされていないHEK293−Gα16細胞、またはpEAK10−gpDPもしくはpEAK10−mDP発現ベクターのいずれかでトランスフェクションされた細胞を用いて行われた。トランスフェクションされた細胞とトランスフェクションされていない細胞を、384ウェルプレートで、10,000細胞/ウェルで平板培養した。細胞をカルシウム分析緩衝液で3回洗浄した。次に、細胞を、4μMのカルシウムローディング色素Fura−4/AM(モレキュラープローブス)と共に37℃でx分インキュベートした。取り込まれなかったFura−4/AMを、カルシウム分析緩衝液でさらに3回洗浄することによって除去した。Fura−4/AMがローディングされた細胞をPGD2または緩衝液で刺激した後、FLIPR機器(モレキュラーデバイス社)を用いて細胞内カルシウムを測定した。図6に示すように、PGD2の刺激により、モルモットおよびマウスのDPを発現する細胞系の両方で細胞内カルシウム動員の強い増加が引き起こされた(EC50値はそれぞれ、1.4nM、および18nM)。両方の細胞系における最大カルシウム放出は同等であった。それに対して、親のHEK293−Gα16細胞系のみが、極めて高いPGD2濃度(すなわち、10μMを超えるPGD2)でカルシウム応答を示した。
SPAcAMP分析
新たにクローニングされたモルモットDP受容体の追加の機能的な特徴付けは、天然のDPに関するシグナル伝達経路、アデニレートシクラーゼによるcAMP生産の刺激を用いた。トランスフェクションされた細胞、またはトランスフェクションされていない細胞を、96ウェルプレートのウェルあたり40,000細胞で平板培養した。37℃で一晩インキュベートした後に、培地を換え、細胞をPGD2の定義された濃度で15分間刺激した。刺激された細胞におけるcAMPの蓄積を、cAMP SPAダイレクトスクリーニング分析システム(アマシャム)を製造元によって特定された手法に従って用いて測定した。図7に示すように、モルモットDP細胞系は、PGD2の刺激に対して優れたcAMP応答を示し、これは、マウスのDP受容体の応答と同等であった。EC50値は、モルモット、およびマウスのDP細胞系でそれぞれ、0.8nMおよび0.5nMであり、最大の応答は両方の受容体で同等であった。それに対して、親のHEK293−Gα16細胞系は、PGD2の刺激に応答した細胞内cAMPの増加を示さなかった。
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Claims (46)
- 配列番号1の核酸配列を含む、単離された核酸分子。
- 核酸は、配列番号2のポリペプチドをコードする、請求項1に記載の単離された核酸分子。
- 検出可能な標識をさらに含む、請求項1に記載の単離された核酸分子。
- 検出可能な標識は、酵素、放射性同位体、または蛍光を発する化学物質を含む、請求項3に記載の単離された核酸分子。
- 核酸配列は、RNA、合成RNA、ゲノムDNA、合成DNA、およびcDNAからなる群より選択される、請求項1に記載の単離された核酸分子。
- 配列番号1の核酸配列にハイブリダイゼーションする核酸配列を含む、単離された核酸分子。
- 核酸配列は、ストリンジェントな条件下でハイブリダイゼーションする、請求項6に記載の単離された核酸分子。
- ハイブリダイゼーションは、6×SSC中で約45℃で起こり、続いて、0.2×SSC、0.1%SDS中で、約50〜65℃で少なくとも1回洗浄する、請求項7に記載の単離された核酸分子。
- 配列番号2のアミノ酸配列を有するポリペプチドをコードする核酸を含む、単離された核酸分子。
- 遺伝子コードの縮重の結果として、配列番号1の核酸とは異なる、請求項9に記載の核酸分子。
- 配列番号1の核酸に少なくとも65%同一な核酸を含む、単離された核酸分子。
- 核酸は、配列番号1の核酸に少なくとも75%同一である、請求項11に記載の単離された核酸分子。
- 核酸は、配列番号1の核酸に少なくとも85%同一である、請求項11に記載の単離された核酸分子。
- 核酸は、配列番号1の核酸に少なくとも95%同一である、請求項11に記載の単離された核酸分子。
- 配列番号2のアミノ酸配列を含む、組換えポリペプチド。
- 検出可能な標識をさらに含む、請求項15に記載の組換えポリペプチド。
- 検出可能な標識は、酵素、放射性同位体、または蛍光を発する化学物質を含む、請求項16に記載の組換えポリペプチド。
- 配列番号2の配列に少なくとも65%同一なアミノ酸配列を含み、そして配列番号2のポリペプチドの機能を保持する、組換えポリペプチド。
- アミノ酸配列は、配列番号2の配列に少なくとも75%同一である、請求項18に記載の組換えポリペプチド。
- アミノ酸配列は、配列番号2の配列に少なくとも85%同一である、請求項18に記載の組換えポリペプチド。
- アミノ酸配列は、配列番号2の配列に少なくとも95%同一である、請求項18に記載の組換えポリペプチド。
- 請求項18に記載の組換えポリペプチドをコードする核酸配列を含む、単離された核酸分子。
- 請求項19に記載の組換えポリペプチドをコードする核酸配列を含む、単離された核酸分子。
- 請求項20に記載の組換えポリペプチドをコードする核酸配列を含む、単離された核酸分子。
- 請求項21に記載の組換えポリペプチドをコードする核酸配列を含む、単離された核酸分子。
- 請求項15に記載の組換えポリペプチドに特異的な抗体。
- 抗体は、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、およびキメラ抗体からなる群より選択される、請求項26に記載の抗体。
- 検出可能な標識をさらに含む、請求項26に記載の抗体。
- 検出可能な標識は、酵素、放射性同位体、蛍光を発する化学物質、または抗体によって認識可能な抗原性ペプチドタグを含む、請求項28に記載の抗体。
- 発現調節因子と機能するように結合されている請求項1に記載の単離された核酸分子を含む、発現ベクター。
- 発現調節因子は、構成的な調節配列、細胞特異的な調節配列、および誘導性の調節配列からなる群より選択される、請求項30に記載の発現ベクター。
- 発現調節因子は、プロモーターであり、該プロモーターは、hCMVの前初期プロモーター、SV40の初期プロモーター、アデノウイルスの初期プロモーター、ワクシニアの初期プロモーター、ポリオーマの初期プロモーター、SV40の後期プロモーター、アデノウイルスの後期プロモーター、ワクシニアの後期プロモーター、ポリオーマの後期プロモーター、lacシステム、trpシステム、TACシステム、TRCシステム、ファージラムダの主要なオペレーターおよびプロモーター領域、fdコートタンパク質の制御領域、3−ホスホグリセリン酸キナーゼプロモーター、酸性ホスファターゼプロモーター、または酵母α交配因子のプロモーターを含む、請求項30に記載の発現ベクター。
- 請求項30に記載の発現ベクターでトランスフェクションされた宿主細胞。
- 宿主細胞は、原核細胞または真核細胞を含む、請求項33に記載の宿主細胞。
- 宿主細胞は、E.コリ、シュードモナス属、バチルス属、ストレプトミセス属、酵母、CHO、R1.1、B−W、L−M、COS1、COS7、BSC1、BSC40、BMT10、またはSf9細胞を含む、請求項34に記載の宿主細胞。
- 発現調節因子と機能するように結合されている請求項6に記載の単離された核酸分子を含む、発現ベクター。
- 請求項36に記載の発現ベクターでトランスフェクションされた宿主細胞。
- 発現調節因子と機能するように結合されている請求項11に記載の単離された核酸分子を含む、発現ベクター。
- 請求項38に記載の発現ベクターでトランスフェクションされた宿主細胞。
- a)配列番号1の核酸;
b)配列番号2のアミノ酸をコードする核酸、
からなる群より選択される核酸に相補的なアンチセンスRNAを含む、単離された核酸分子。 - 配列番号1の単離された核酸を含むトランスジーンを含むゲノムを有する、トランスジェニック非ヒト動物。
- a)請求項19に記載の宿主細胞を、該組換えポリペプチドの発現をもたらす条件下で培養する工程;および
b)該組換えポリペプチドを回収する工程、
を含む、請求項15に記載の組換えポリペプチドを生産する方法。 - a)タンパク質と、請求項26に記載の抗体とを接触させる工程;および
b)該抗体と該タンパク質との相互作用を評価する工程、
を含む、タンパク質を検出する方法。 - a)アゴニスト候補と、配列番号2を発現する細胞とを接触させる工程;および
b)該アゴニスト候補の存在下において、配列番号2のシグナル伝達活性が、該アゴニスト候補の非存在下における配列番号2の活性に比べて増加しているかどうかを決定する工程、
を含む、配列番号2のアゴニストを同定する方法。 - a)インバースアゴニスト候補と、配列番号2を発現する細胞とを接触させる工程;および
b)該インバースアゴニスト候補の存在下において、配列番号2の活性が、該インバースアゴニスト候補の非存在下における配列番号2の活性に比べて減少しているかどうか、および内因性のリガンドまたはアゴニストの存在下において減少しているかどうか、を決定する工程、
を含む、配列番号2のインバースアゴニストを同定する方法。 - a)アンタゴニスト候補と、配列番号2を発現する細胞とを接触させる工程;および
b)該アンタゴニスト候補の存在下において、配列番号2のシグナル伝達活性が、内因性のリガンドまたはアゴニストの存在下における配列番号2の活性に比べて減少しているかどうかを決定する工程、
を含む、配列番号2のアンタゴニストを同定する方法。
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