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JP2006075140A - Drug screening method - Google Patents

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JP2006075140A
JP2006075140A JP2004266045A JP2004266045A JP2006075140A JP 2006075140 A JP2006075140 A JP 2006075140A JP 2004266045 A JP2004266045 A JP 2004266045A JP 2004266045 A JP2004266045 A JP 2004266045A JP 2006075140 A JP2006075140 A JP 2006075140A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
screening
adhesion
polymorphonuclear leukocytes
cell adhesion
cells
Prior art date
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Pending
Application number
JP2004266045A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
Kingo Suzuki
金吾 鈴木
Hideo Namiki
秀男 並木
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Waseda University
Original Assignee
Waseda University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Waseda University filed Critical Waseda University
Priority to JP2004266045A priority Critical patent/JP2006075140A/en
Publication of JP2006075140A publication Critical patent/JP2006075140A/en
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  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
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  • Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)

Abstract

【課題】動物を試験に用いることなく、安価かつ簡便に、多型核白血球の細胞接着及び/又は細胞移動を抑制する物質をスクリーニング可能な薬剤のスクリーニング方法を提供する。
【解決手段】固体支持体上にコーティングされた接着性基質に、少なくとも多型核白血球と、被験物質と、前記多型核白血球の活性化剤とを添加し、前記接着基質への前記多型核白血球の接着細胞を測定することにより、前記多型核白血球の細胞接着能を評価する。動物実験を行うことなく、安価で、短時間かつ簡便に、多型核白血球の細胞接着及び/又は細胞移動を抑制する物質をスクリーニングすることが可能であり、医薬の開発をより効率的に行うことができる。
【選択図】 なし
Disclosed is a method for screening a drug capable of screening a substance that suppresses cell adhesion and / or cell migration of polymorphonuclear leukocytes at low cost and in a simple manner without using an animal for a test.
At least polymorphonuclear leukocytes, a test substance, and an activator of the polymorphonuclear leukocytes are added to an adhesive substrate coated on a solid support, and the polymorphism to the adhesion substrate is added. The cell adhesion ability of the polymorphonuclear leukocytes is evaluated by measuring the adhesion cells of the nuclear leukocytes. It is possible to screen for a substance that suppresses cell adhesion and / or cell migration of polymorphonuclear leukocytes at low cost, in a short time and easily without conducting animal experiments, and more efficiently develop pharmaceuticals. be able to.
[Selection figure] None

Description

本発明は、細胞接着及び/又は細胞移動を抑制するのに有効な薬剤のスクリーニング方法に関する。   The present invention relates to a method for screening a drug effective for suppressing cell adhesion and / or cell migration.

多型核白血球(以下、PMNsと称す)は病原細菌・微生物などに対する感染防御の第一線を担う細胞であり、病原細菌感染などの様々な刺激によって細胞接着分子であるインテグリンを介して細胞接着を起こすことが知られている。また、こうしてインテグリンを介して接着したPMNsは細胞内アクチン骨格の再編成により伸展(spreading)し、これが基質への強固な接着や細胞移動(遊走)、および貪食の基盤となることが知られている。   Polymorphonuclear leukocytes (hereinafter referred to as PMNs) are the cells that play the first line of defense against pathogenic bacteria and microorganisms, and adhere to cells through integrins, which are cell adhesion molecules, by various stimuli such as infection with pathogenic bacteria. It is known to cause. In addition, PMNs adhered through integrins are spread by reorganization of the intracellular actin skeleton, which is known to serve as a basis for strong adhesion to the substrate, cell migration (migration), and phagocytosis. Yes.

具体的には、生体内に病原細菌や微生物等が侵入すると、血管内を循環しているPMNsがこれを感知して活性化し、(1)血管内皮への接着、(2)血管外への漏出、(3)炎症部位への遊走・集積、(4)細菌・微生物等の貪食、そして(5)殺菌、といった一連の過程を経て生体を防御している。この殺菌の工程では、PMNsが貪食された細菌に対して種々の顆粒内酵素や活性酸素を放出することによって、殺菌が行われている。また、これらの顆粒内酵素や活性酸素の作用は病原細菌に対して特異的なものではなく、宿主組織に対しても傷害作用を示すことが知られている。   Specifically, when pathogenic bacteria or microorganisms invade into the living body, PMNs circulating in the blood vessels sense and activate this, and (1) adhesion to the vascular endothelium, (2) outside the blood vessel It protects the living body through a series of processes such as leakage, (3) migration / accumulation at the site of inflammation, (4) phagocytosis of bacteria and microorganisms, and (5) sterilization. In this sterilization process, sterilization is performed by releasing various intragranular enzymes and active oxygen to bacteria engulfed by PMNs. In addition, the action of these intragranular enzymes and active oxygen is not specific to pathogenic bacteria, and is known to show damaging effects on host tissues.

このため、PMNsの機能は時間的・空間的に厳密に制御される必要がある。しかし、これらの制御が乱れると宿主組織へのPMNsの過剰な集積が生じる。そして、PMNsは自己の正常な細胞までを攻撃して様々な組織傷害を惹起し各種の炎症疾患、例えば、慢性関節リウマチなどの自己免疫疾患の他、喘息などのアレルギー疾患などをもたらす。さらに、医療用器具等の体内移植後のPMNsの細胞接着に起因した炎症反応をももたらしており、この炎症反応については、主にフィブリノーゲンなどの宿主タンパク質が移植器具をコーティングすることによって、PMNsの接着が誘導されるためと考えられている。   For this reason, the function of PMNs needs to be strictly controlled in time and space. However, disruption of these controls results in excessive accumulation of PMNs in the host tissue. PMNs attack even normal cells of the self to cause various tissue injuries and cause various inflammatory diseases, for example, autoimmune diseases such as rheumatoid arthritis and allergic diseases such as asthma. Furthermore, it also brings about an inflammatory reaction caused by cell adhesion of PMNs after transplantation in the body such as a medical device. About this inflammatory response, the host protein such as fibrinogen mainly coats the transplantation device, so that PMNs It is thought that adhesion is induced.

上述のPMNsの過剰な集積を対処するには、PMNsの細胞接着及び/又は細胞移動を抑制する必要があり、PMNsに対してこのような抑制効果を示す物質の発見や開発が望まれている。   In order to cope with the above excessive accumulation of PMNs, it is necessary to suppress cell adhesion and / or cell migration of PMNs, and discovery and development of substances exhibiting such inhibitory effect on PMNs are desired. .

一方、薬効物質のスクリーニング方法として、例えば特許文献1には、アトピー性皮膚炎モデル動物に対して、被験物質を投与し、アトピー性皮膚炎の改善効果を検定することを特徴とするアトピー性皮膚炎の治療用物質のスクリーニング方法が提案されている。このように、薬効物質のスクリーニングは、基本的に種々の物質を、薬効が評価できる病態モデル動物にランダムに投与してその効果を調べ、薬効を発揮する物質を選択していくというものであった。
特開2004−41123号公報
On the other hand, as a method for screening medicinal substances, for example, Patent Document 1 discloses that atopic dermatitis is characterized in that a test substance is administered to an atopic dermatitis model animal and the effect of improving atopic dermatitis is assayed. A screening method for a substance for treating inflammation has been proposed. In this way, screening for medicinal substances is basically a method in which various substances are randomly administered to disease state model animals whose medicinal effects can be evaluated, their effects are examined, and substances that exert their medicinal effects are selected. It was.
JP 2004-41123 A

しかしながら、病態モデル動物を用いた動物実験によるスクリーニング方法では、無数にある物質から薬効物質をスクリーニングするため、
かなりの手間と多額の費用を要するという問題があった。
However, in screening methods based on animal experiments using disease model animals, in order to screen medicinal substances from countless substances,
There was a problem that considerable labor and a large amount of money were required.

本発明は上記問題点を解決しようとするものであり、動物実験を行うことなく、安価かつ簡便に、多型核白血球の細胞接着及び/又は細胞移動を抑制する物質をスクリーニングできる薬剤のスクリーニング方法を提供することを目的とする。   The present invention is intended to solve the above-described problems, and a method for screening a drug capable of screening a substance that suppresses cell adhesion and / or cell migration of polymorphonuclear leukocytes at low cost and easily without performing animal experiments. The purpose is to provide.

上記課題を鑑みて鋭意検討した結果、多型核白血球(PMNs)の機能過剰によるとされる自己免疫疾患などの疾患への対策として、血管内へのPMNsの細胞接着及び/又は細胞移動を阻止又は抑制する薬剤を用いることが考えられる。そこで、血管壁を擬似的に再現したプレートを用いて、このプレートに、PMNsと、被験物質と、前記PMNsの活性化剤とを添加し、その後前記プレートに接着したPMNsの細胞数又は細胞量を測定することによって、安価かつ簡便に、しかも短時間に薬剤のPMN機能抑制効果を評価できることを見出し、本発明に想到した。   As a result of intensive studies in view of the above problems, PMNs are prevented from cell adhesion and / or cell migration in blood vessels as a countermeasure against diseases such as autoimmune diseases caused by excessive function of polymorphonuclear leukocytes (PMNs). Or it is possible to use the medicine which suppresses. Therefore, using a plate in which a blood vessel wall is simulated, PMNs, a test substance, and an activator of PMNs are added to the plate, and then the number of cells or the amount of PMNs adhered to the plate It has been found that the effect of suppressing the PMN function of a drug can be evaluated inexpensively, easily and in a short time, and the present invention has been made.

本発明の請求項1記載の薬剤のスクリーニング方法は、多型核白血球の細胞接着及び/又は細胞移動を抑制するのに有効な薬剤のスクリーニング方法であって、固体支持体上にコーティングされた接着性基質に、少なくとも多型核白血球と、被験物質と、前記多型核白血球の活性化剤とを添加し、前記接着基質への前記多型核白血球の接着細胞数又は接着細胞量を測定することにより、前記多型核白血球の細胞接着能を評価することを特徴とする。   The method for screening a drug according to claim 1 of the present invention is a method for screening a drug effective for suppressing cell adhesion and / or cell migration of polymorphonuclear leukocytes, wherein the adhesion is coated on a solid support. At least polymorphonuclear leukocytes, a test substance, and an activator of the polymorphonuclear leukocytes are added to the sex substrate, and the number of adherent cells or the amount of adherent cells of the polymorphonuclear leukocytes to the adhesion substrate is measured. Thus, the cell adhesion ability of the polymorphonuclear leukocytes is evaluated.

また、本発明の請求項2記載の薬剤のスクリーニング方法は、請求項1において、前記接着性基質がフィブリノーゲンであることを特徴とする。   The drug screening method according to claim 2 of the present invention is characterized in that, in claim 1, the adhesive substrate is fibrinogen.

さらに、本発明の請求項3記載の薬剤のスクリーニング方法は、請求項1又は2において、前記活性化剤がホルボールミリスチン酸アセテートであることを特徴とする。   Further, the drug screening method according to claim 3 of the present invention is characterized in that, in claim 1 or 2, the activator is phorbol myristic acid acetate.

また、本発明の請求項4記載の薬剤のスクリーニング方法は、請求項1又は2において、前記活性化剤がホルボールミリスチン酸アセテート及びマグネシウムイオンであることを特徴とする。   The drug screening method according to claim 4 of the present invention is characterized in that, in claim 1 or 2, the activator is phorbol myristate acetate and magnesium ion.

さらに、本発明の請求項5記載の薬剤のスクリーニング方法は、請求項1〜4のいずれか1項において、前記接着細胞数を、位相差顕微鏡を用いて測定することを特徴とする。   Furthermore, the drug screening method according to claim 5 of the present invention is characterized in that in any one of claims 1 to 4, the number of adherent cells is measured using a phase contrast microscope.

また、本発明の請求項6記載の薬剤のスクリーニング方法は、請求項1〜4のいずれか1項において、クリスタルバイオレットを含む水溶液により接着細胞を染色し、前記接着細胞量を分光光度計を用いて測定することを特徴とする。   The drug screening method according to claim 6 of the present invention is the method for screening a drug according to any one of claims 1 to 4, wherein the adherent cells are stained with an aqueous solution containing crystal violet, and the amount of the adherent cells is measured using a spectrophotometer. It is characterized by measuring.

本発明の請求項1記載の薬剤のスクリーニング方法によれば、動物実験を行うことなく、安価で、短時間かつ簡便に、多型核白血球の細胞接着及び/又は細胞移動を抑制する物質をスクリーニングすることが可能であり、医薬の開発をより効率的に行うことができる。また、多型核白血球の細胞接着に起因する疾患、例えば慢性関節リウマチ,喘息,アレルギー性疾患,炎症性皮膚疾患,アトピー性皮膚疾患,移植拒絶疾患,移植拒絶疾患などに対する薬剤をスクリーニングするのに有用である。   According to the drug screening method of claim 1 of the present invention, a substance that suppresses cell adhesion and / or cell migration of polymorphonuclear leukocytes can be screened inexpensively, in a short time, and easily without performing animal experiments. It is possible to develop a medicine more efficiently. In addition, to screen for drugs caused by cell adhesion of polymorphonuclear leukocytes such as rheumatoid arthritis, asthma, allergic diseases, inflammatory skin diseases, atopic skin diseases, transplant rejection diseases, transplant rejection diseases, etc. Useful.

本発明の請求項2記載の薬剤のスクリーニング方法によれば、血漿中に多量に存在し、調整が容易なフィブリノーゲンを用いて細胞接着能を評価するので、他の高価な接着性基質(例えば、フィブロネクチン,コラーゲン,ICAM−1など)に比べ多種類の検体のスクリーニングを安価に行うことが可能である。   According to the method for screening a drug according to claim 2 of the present invention, since cell adhesion ability is evaluated using fibrinogen which is present in a large amount in plasma and can be easily adjusted, other expensive adhesive substrates (for example, Compared with fibronectin, collagen, ICAM-1, etc.), it is possible to perform screening of many kinds of specimens at low cost.

本発明の請求項3記載の薬剤のスクリーニング方法によれば、ホルボールミリスチン酸アセテートにより、多型核白血球に発現するインテグリンを直接活性化させ、細胞接着を促すことができる。   According to the drug screening method of claim 3 of the present invention, cell adhesion can be promoted by directly activating integrin expressed in polymorphonuclear leukocytes by phorbol myristic acetate.

本発明の請求項4記載の薬剤のスクリーニング方法によれば、ホルボールミリスチン酸アセテートおよびマグネシウムイオンにより、多型核白血球に発現するインテグリンをより活性化させ、細胞接着を促すことができる。   According to the drug screening method of claim 4 of the present invention, phorbol myristic acid acetate and magnesium ions can activate integrin expressed in polymorphonuclear leukocytes and promote cell adhesion.

本発明の請求項5記載の薬剤のスクリーニング方法によれば、汎用の実験機器で、安価かつ短時間に測定可能である。   According to the method for screening a drug described in claim 5 of the present invention, it can be measured with a general-purpose laboratory instrument at a low cost in a short time.

本発明の請求項6記載の薬剤のスクリーニング方法によれば、汎用の実験機器で、安価かつ短時間に測定可能である。   According to the drug screening method of the sixth aspect of the present invention, it can be measured with a general-purpose experimental instrument at a low cost in a short time.

以下、本発明につき更に詳しく説明する。本発明の薬剤のスクリーニング方法は、多型核白血球の細胞接着及び/又は細胞移動を抑制するのに有効な薬剤のスクリーニング方法であって、固体支持体上にコーティングされた接着性基質に、少なくとも多型核白血球と、被験物質と、前記多型核白血球の活性化剤とを添加し、前記接着基質への前記多型核白血球の接着細胞を測定することにより、前記多型核白血球の細胞接着能を評価することを特徴とするものである。   Hereinafter, the present invention will be described in more detail. The method for screening a drug of the present invention is a method for screening a drug effective for suppressing cell adhesion and / or cell migration of polymorphonuclear leukocytes, wherein at least an adhesive substrate coated on a solid support is applied to at least By adding polymorphonuclear leukocytes, a test substance, and an activator of the polymorphonuclear leukocytes, and measuring the adherent cells of the polymorphonuclear leukocytes to the adhesion substrate, the cells of the polymorphonuclear leukocytes It is characterized by evaluating adhesive ability.

本発明でいう細胞接着とは、細胞が基質に付着(attachment)し、かつ基質に付着した後扁平に広がって伸展(spreading)を起こしている状態を意味する。なお、細胞が伸展するためには、細胞内アクチン骨格系の再編成が必要である。   The cell adhesion referred to in the present invention means a state in which a cell is attached to a substrate and spreads flatly after being attached to the substrate to cause spreading. In addition, in order for cells to extend, reorganization of the intracellular actin skeleton system is necessary.

本発明で使用される接着性基質とは、多型核白血球(PMNs)の細胞表面に発現している細胞接着分子の一つであるβ2−インテグリン(CD11b/CD18)と結合する種々の基質を包含する。具体的には、細胞外基質であるフィブリノーゲン,血管内皮細胞上に発現しているICAM−1,または補体C3の分解産物であるiC3bなどが挙げられる。   The adhesive substrate used in the present invention refers to various substrates that bind to β2-integrin (CD11b / CD18), which is one of cell adhesion molecules expressed on the cell surface of polymorphonuclear leukocytes (PMNs). Include. Specific examples include fibrinogen which is an extracellular matrix, ICAM-1 expressed on vascular endothelial cells, or iC3b which is a degradation product of complement C3.

また、本発明で使用される支持体とは、接着性基質を固定化するのに適した培養プレートなどを含む。   The support used in the present invention includes a culture plate suitable for immobilizing an adhesive substrate.

本発明で使用される多型核白血球の活性化剤とは、PMNsを刺激することによってβ2インテグリンは活性化し、β2インテグリンを介したPMNsの細胞接着を誘導する物質である。具体的には、ホルボールミリスチン酸アセテート(phorbol 12-myristate 13-acetate、PMA)やMg2+などが挙げられる。なお、PMAでプロテインキナーゼC(PKC)を直接活性化することによってインテグリンの活性化を誘導することが知られている(Fagerholm S, et al, J Biol Chem 277(3),1728-1738,2002)。また、Mg2+がCD11b鎖の細胞外領域のMg2+/Ca2+結合部位に結合することによって、基質結合能を大幅に増大することが知られている(Yan SR, et al,J Inflamm 45(4),297-311,1995)。さらに、Ca2+はインテグリンの基質結合に直接には関与しておらず、活性化インテグリン分子の構造維持に寄与していると考えられている。 The activator of polymorphonuclear leukocytes used in the present invention is a substance that activates β2 integrin by stimulating PMNs and induces cell adhesion of PMNs via β2 integrin. Specific examples include phorbol myristate acetate (phorbol 12-myristate 13-acetate, PMA), Mg 2+ and the like. It is known that the activation of integrin is induced by directly activating protein kinase C (PKC) with PMA (Fagerholm S, et al, J Biol Chem 277 (3), 1728-1738, 2002). ). It is also known that Mg 2+ significantly increases the substrate binding ability by binding to the Mg 2+ / Ca 2+ binding site in the extracellular region of the CD11b chain (Yan SR, et al, J Inflamm 45 (4), 297-311, 1995). Further, Ca 2+ is not directly involved in integrin substrate binding, and is thought to contribute to maintaining the structure of the activated integrin molecule.

本発明においては、接着基質へのPMNsの接着細胞を測定することにより、PMNsの細胞接着能を評価する。この接着細胞を測定し評価する方法としては、以下に示す2つの方法を挙げることができる。   In the present invention, the cell adhesion ability of PMNs is evaluated by measuring the adherent cells of PMNs to the adhesion substrate. Examples of methods for measuring and evaluating the adherent cells include the following two methods.

1.形態学的評価
固体支持体上にコーティングされた接着性基質に、被験物質,Mg2+,及びPMNsを添加し、細胞接着を誘導する。その後、細胞の形態的な変化を、例えば、位相差顕微鏡(例として、倍率:200−600倍)などの汎用の実験機器で観察し、接着性基質に接着して扁平している伸展した細胞数および接着していない細胞数を測定し、伸展(spreading)率を算出後、伸展評価を行う。
1. Morphological evaluation Test substances, Mg 2+ , and PMNs are added to an adhesive substrate coated on a solid support to induce cell adhesion. Thereafter, the morphological change of the cells is observed with a general-purpose experimental instrument such as a phase-contrast microscope (for example, magnification: 200-600 times), and stretched cells that are flattened by adhering to the adhesive substrate The number of cells and the number of unattached cells are measured, and the spreading rate is calculated, and then the spreading evaluation is performed.

2.クリスタルバイオレット染色法
固体支持体上にコーティングされた接着性基質に、被験物質,Mg2+,及びPMNsを添加し、細胞接着を誘導する。その後、HEPES緩衝液で洗浄して、非接着細胞を除去し、接着細胞が残存しているプレートに、クリスタルバイオレット染色を添加して細胞核を染色する。染色後、染色液を除去し、HEPES緩衝液で洗浄することによって、余分な染色液を除去する。次に、溶出液(Elution buffer)を添加後、攪拌してクリスタルバイオレットを溶出し、波長540nmの吸光度を測定し、相対接着率(%)を算出後、細胞接着の評価を行う。
2. Crystal Violet Staining Method A test substance, Mg 2+ , and PMNs are added to an adhesive substrate coated on a solid support to induce cell adhesion. Thereafter, the cells are washed with HEPES buffer to remove non-adherent cells, and crystal violet staining is added to the plate on which the adherent cells remain to stain cell nuclei. After staining, the staining solution is removed, and excess staining solution is removed by washing with HEPES buffer. Next, after adding an elution buffer, the mixture is stirred to elute crystal violet, the absorbance at a wavelength of 540 nm is measured, the relative adhesion rate (%) is calculated, and then cell adhesion is evaluated.

本発明の薬剤のスクリーニング方法は、動物実験を行うことなく、汎用の実験機器を用いて、安価で、短時間かつ簡便に、多型核白血球の細胞接着及び/又は細胞移動を抑制する物質をスクリーニングすることが可能である。さらに、短時間かつ簡便にスクリーニングできる特性を利用して、有効成分の詳細な分析を行うことができる。すなわち、有効成分を有する物質を精製後、得られた各フラクションを本発明のスクリーニング方法にかけることによって候補化合物を絞り込むことにより、有効成分を特定でき、薬剤の開発をより効率的に行うことができる。   The drug screening method of the present invention is a method that uses a general-purpose laboratory instrument, does not perform animal experiments, and inexpensively, in a short time and easily, a substance that suppresses cell adhesion and / or cell migration of polymorphonuclear leukocytes. It is possible to screen. Furthermore, the active ingredient can be analyzed in detail using the characteristics that can be screened in a short time and simply. In other words, after purifying a substance having an active ingredient, by applying the obtained fractions to the screening method of the present invention and narrowing down candidate compounds, the active ingredient can be identified and drug development can be performed more efficiently. it can.

また、本発明の薬剤のスクリーニング方法は、PMNsによる組織傷害を伴う疾患、例えば慢性関節リウマチ,喘息,アレルギー性疾患,炎症性皮膚疾患,アトピー性皮膚疾患,移植拒絶疾患などに対する薬剤をスクリーニングするのに有用である。   The drug screening method of the present invention screens drugs for diseases associated with tissue damage caused by PMNs, such as rheumatoid arthritis, asthma, allergic diseases, inflammatory skin diseases, atopic skin diseases, transplant rejection diseases, and the like. Useful for.

さらに、細胞と細胞外基質の接着に関与する細胞外マトリックス分子(例えば、フィブロネクチンなど)はガンの転移過程においてガン細胞の接着、細胞移動にも関与していることが知られている。そこで、ガン転移抑制剤として作用する薬剤の開発に、本発明のスクリーニング方法における多型核白血球をガン細胞に代替して用いてもよい。   Furthermore, it is known that extracellular matrix molecules (for example, fibronectin) involved in adhesion between cells and extracellular matrix are also involved in cancer cell adhesion and cell migration in the process of cancer metastasis. Therefore, polymorphonuclear leukocytes in the screening method of the present invention may be used in place of cancer cells for the development of drugs that act as cancer metastasis inhibitors.

なお、本発明は、上記実施形態に限定されるものではない。上記実施形態は、例示であり、本発明の特許請求の範囲に記載された技術的思想と実質的に同一な構成を有し、同様な作用効果を奏するものは、いかなるものであっても本発明の技術的範囲に包含される。   The present invention is not limited to the above embodiment. The above-described embodiment is an exemplification, and the present invention has substantially the same configuration as the technical idea described in the claims of the present invention, and any device that exhibits the same function and effect is the present invention. It is included in the technical scope of the invention.

以下に、実施例を挙げて、本発明をさらに具体的に説明するが、これによって本発明が限定されるものではない。   Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples. However, the present invention is not limited thereto.

PMNs細胞接着能試験による薬剤の抗炎症効果の評価:本評価法は、フィブリノーゲンコートを施した表面に対するPMNsの接着能を測定することにより、抗炎症効果を評価するものである。具体的には、被験物質を含む溶液にPMNsを懸濁し、PMNsの活性化剤であるMg2+とホルボールミリスチン酸アセテート(phorbol 12-myristate 13-acetate、PMA)による刺激で接着を誘導し、写真撮影による形態学的評価及び細胞のクリスタルバイオレット染色/染色液抽出による比色定量評価を行った。以下に作業手順を述べる。 Evaluation of anti-inflammatory effect of drug by PMNs cell adhesion ability test: This evaluation method evaluates the anti-inflammatory effect by measuring the adhesion ability of PMNs to the surface on which the fibrinogen coat is applied. Specifically, PMNs are suspended in a solution containing a test substance, and adhesion is induced by stimulation with Mg 2+ which is an activator of PMNs and phorbol myristate acetate (phorbol 12-myristate 13-acetate, PMA). Then, morphological evaluation by photography and colorimetric quantitative evaluation by crystal violet staining / staining liquid extraction of cells were performed. The work procedure is described below.

(1)フィブリノーゲンコートプレートの作成
フィブリノーゲンをHEPES緩衝液(5mM HEPES/150mM NaCl/5mM glucose)に溶解し、このフィブリノーゲン溶液(1mg/mL)を96穴プラスチックマイクロプレートに300μLずつ分注し、室温にて1時間以上静置後、溶液を捨て、HEPES緩衝液で3回洗浄し、フィブリノーゲンコートプレートを作成した。
(1) Preparation of fibrinogen-coated plate Fibrinogen was dissolved in HEPES buffer (5 mM HEPES / 150 mM NaCl / 5 mM glucose), and this fibrinogen solution (1 mg / mL) was dispensed into a 96-well plastic microplate in 300 μL portions at room temperature. After standing for 1 hour or longer, the solution was discarded and washed 3 times with HEPES buffer to prepare a fibrinogen-coated plate.

(2)接着能試験1:形態学的評価
上記(1)のように作製したフィブリノーゲンコートプレートに、被験物質,Mg2+(終濃度0.6mM),及びPMNs(終濃度3×106cells/mL)を添加し、HEPES緩衝液でメスアップして最終容量を100μLとした。次に、攪拌後、37℃で10分間プレインキュベーションし、PMAをHEPES緩衝液で50μg/mLに希釈して、このPMAをPMNsなどを添加したフィブリノーゲンコートプレートに終濃度1μg/mLとなるように添加した。さらに37℃で20分間インキュベートして細胞接着を誘導した。位相差顕微鏡による細胞の顕微鏡像をデジタルカメラで撮影し、写真よりそれぞれフィブリノーゲンに接着後扁平している伸展した細胞数および接着していない細胞数を測定して、伸展評価を行った。なお、伸展率は、伸展したPMNs数/全PMNs数×100(%)として、伸展率(Spreading)(%)を算出した。細胞数のカウントにおいては、ランダムに撮影したものについてそれぞれ行い、その平均値±標準偏差で示した。
(2) Adhesion ability test 1: morphological evaluation A test substance, Mg 2+ (final concentration 0.6 mM), and PMNs (final concentration 3 × 10 6 cells) were prepared on the fibrinogen-coated plate prepared as described in (1) above. / ML) and made up with HEPES buffer to a final volume of 100 μL. Next, after stirring, preincubate for 10 minutes at 37 ° C., and dilute PMA to 50 μg / mL with HEPES buffer so that this PMA is added to a fibrinogen-coated plate to which PMNs and the like are added to a final concentration of 1 μg / mL. Added. The cells were further incubated at 37 ° C. for 20 minutes to induce cell adhesion. Microscopic images of the cells with a phase contrast microscope were taken with a digital camera, and the number of stretched cells that were flattened after adhering to fibrinogen and the number of cells that were not adhered were measured from the photographs to evaluate the stretch. In addition, the extension rate (Spreading) (%) was computed as the extension rate as the number of extended PMNs / total number of PMNs × 100 (%). The number of cells was counted for each of the randomly photographed images, and the average value ± standard deviation was indicated.

(3)接着能試験2:クリスタルバイオレット染色法
上記(2)に示したように、PMAによる接着誘導後、100μLのHEPES緩衝液で3回洗浄して、非接着細胞を除去した。接着細胞が残存しているプレートに、クリスタルバイオレット染色の0.4wt/v%水溶液100μLを添加して細胞核を30分間染色した。染色後、染色液を除去し、HEPES緩衝液で洗浄することによって、余分な染色液を除去した。溶出液100μLを添加後、攪拌してクリスタルバイオレットを溶出し、波長540nmの吸光度を測定した。なお、細胞接着の評価は、フィブリノーゲンコートプレートに0.6mMのMg2+および1μg/mLのPMAを添加したときの細胞接着(ポジティブコントロール)を100%として、相対接着率(%)を算出した。
(3) Adhesive ability test 2: Crystal violet staining method As shown in (2) above, after induction of adhesion with PMA, the cells were washed three times with 100 μL of HEPES buffer to remove non-adherent cells. To the plate on which the adherent cells remained, 100 μL of a 0.4 wt / v% aqueous solution of crystal violet was added to stain the cell nucleus for 30 minutes. After staining, the staining solution was removed, and the excess staining solution was removed by washing with HEPES buffer. After adding 100 μL of the eluate, the mixture was stirred to elute crystal violet, and the absorbance at a wavelength of 540 nm was measured. For the evaluation of cell adhesion, relative adhesion rate (%) was calculated with the cell adhesion (positive control) when 0.6 mM Mg 2+ and 1 μg / mL PMA was added to the fibrinogen coated plate as 100%. .

(4)細胞外pHの影響
HEPES緩衝液のpHをそれぞれ7.2,6.9,6.6,6.3,6.0に変化させた時のPMNsの伸展率および相対接着率について調べた。なお、被験物質としては各pHのHEPES緩衝液を用いて、pH以外の条件は上述した接着能試験1および2と同様の方法で伸展率および相対接着率を算出した。
(4) Effect of extracellular pH The extension rate and relative adhesion rate of PMNs were examined when the pH of the HEPES buffer was changed to 7.2, 6.9, 6.6, 6.3, and 6.0, respectively. It was. In addition, as a test substance, the HEPES buffer solution of each pH was used, and the elongation ratio and the relative adhesion ratio were calculated by the same method as in the adhesion test 1 and 2 described above except for the pH.

その結果を図1〜3に示す。図1は、形態学的評価においてHEPES緩衝液のpHを(a)pH7.2,(b)pH6.9,(c)pH6.6,(d)pH6.3,(e)pH6.0に変化させたときの細胞の顕微鏡像を示す。図中、黒色の細胞はフィブリノーゲンに接着・扁平して伸展した細胞を示し、一方、白色の細胞は扁平していない細胞を示す。図2は、図1の写真から伸展したPMNs数および全PMNs数をカウントして伸展率(%)を算出し、伸展に対する細胞外pHの影響を示すグラフである。なお、検定は4回行いスタンダードエラー・バーを付した。図3は、細胞接着に対する細胞外pHの影響を示すグラフである。図1〜3に示すように、pHの低下にしたがって、細胞接着および接着後の伸展の減少が見られた。なお、図2の形態学的評価と図3のクリスタルバイオレット染色法とを比較すると、クリスタルバイオレット染色法によって得られた相対接着率の方が、形態学的評価から得られた伸展率よりもpHの影響が少なかった。これは、PMNs細胞が偏平まで至らないが、フィブリノーゲンに接着しているPMNsが存在するためであると考えられる。   The results are shown in FIGS. FIG. 1 shows that in the morphological evaluation, the pH of the HEPES buffer was changed to (a) pH 7.2, (b) pH 6.9, (c) pH 6.6, (d) pH 6.3, (e) pH 6.0. The microscope image of the cell when changing is shown. In the figure, black cells indicate cells that have adhered and flattened to fibrinogen, while white cells indicate non-flat cells. FIG. 2 is a graph showing the influence of extracellular pH on extension by calculating the extension rate (%) by counting the number of PMNs extended and the total number of PMNs from the photograph of FIG. The test was performed 4 times and a standard error bar was attached. FIG. 3 is a graph showing the effect of extracellular pH on cell adhesion. As shown in FIGS. 1 to 3, cell adhesion and decrease in extension after adhesion were observed as the pH decreased. In addition, when comparing the morphological evaluation of FIG. 2 and the crystal violet staining method of FIG. 3, the relative adhesion rate obtained by the crystal violet staining method is higher than the extension rate obtained from the morphological evaluation. There was little influence. This is probably because PMNs cells do not reach flatness but there are PMNs adhered to fibrinogen.

被験物質としてクレソン抽出物を用いた多型核白血球の細胞接着能試験:
クレソン粉末を熱湯抽出し、凍結乾燥によって抽出物を粉末後、更に100%メタノールで抽出したメタノール抽出物を回収した。その後、メタノール抽出物に含まれるメタノールを蒸発除去した。このメタノールを除去した抽出物をHEPES緩衝液(pH7.2)に溶解(100mg当量/mL)したものを被験物質として用いた。また、実施例1記載の形態学的評価法と同様の方法で伸展率(%)を算出した。なお、検定は4回行いスタンダードエラー・バーを付した。結果を図4に示す。さらに、実施例1記載のクリスタルバイオレット染色法と同様の方法で相対接着率(%)を算出した。なお、検定は3回行いスタンダードエラー・バーを付した。結果を図5に示す。
Cell adhesion ability test of polymorphonuclear leukocytes using watercress extract as test substance:
Watercress powder was extracted with hot water, the extract was powdered by freeze-drying, and then a methanol extract extracted with 100% methanol was recovered. Thereafter, methanol contained in the methanol extract was removed by evaporation. The extract from which methanol was removed was dissolved (100 mg equivalent / mL) in HEPES buffer (pH 7.2) and used as a test substance. Further, the stretch rate (%) was calculated by the same method as the morphological evaluation method described in Example 1. The test was performed 4 times and a standard error bar was attached. The results are shown in FIG. Further, the relative adhesion rate (%) was calculated by the same method as the crystal violet staining method described in Example 1. The test was performed three times and a standard error bar was attached. The results are shown in FIG.

図4に示されるように、クレソン抽出物を添加していないもの(濃度0mg当量/mL)は約78%が伸展を示したのに対し、クレソン抽出物を添加したもの(濃度100mg当量/mL)は約10%のみが伸展を示した。一方、図5に示されるように、クレソン抽出物を添加していないもの(濃度0mg当量/mL)はPMNs細胞が約100%フィブリノーゲンに接着し、クレソン抽出物を添加したもの(濃度100mg当量/mL)はPMNs細胞が約80%フィブリノーゲンに接着した。この結果より、有意にクレソン抽出成分が多型核白血球の伸展を抑制していることが認められた。また、細胞接着とは、細胞が基質に付着し、かつ伸展を起こしている状態を示すものであるため、クレソン抽出物は伸展のみを抑制し、付着は抑制していないと考えられる。また、クレソンは従来、喘息に効果があると言われており、本発明の方法においてもクレソン抽出物が多型核白血球の細胞伸展を抑制していることから、本発明の方法は喘息などのアレルギー疾患に有効な薬剤のスクリーニングに有用であると考えられる。   As shown in FIG. 4, the product without the watercress extract (concentration 0 mg equivalent / mL) showed an extension of about 78%, whereas the product with the watercress extract added (concentration 100 mg equivalent / mL). ) Only about 10% showed extension. On the other hand, as shown in FIG. 5, those without added watercress extract (concentration 0 mg equivalent / mL) were those with PMNs cells adhering to about 100% fibrinogen and added watercress extract (concentration 100 mg equivalent / mL). mL) PMNs cells adhered to about 80% fibrinogen. From this result, it was confirmed that the watercress extract component significantly suppressed the extension of polymorphonuclear leukocytes. Moreover, since cell adhesion shows the state which the cell has adhered to the substrate and has produced the extension, it is thought that the watercress extract suppresses only extension and does not suppress adhesion. In addition, watercress is conventionally said to be effective for asthma, and in the method of the present invention, since the watercress extract suppresses cell spreading of polymorphonuclear leukocytes, the method of the present invention is effective for asthma and the like. It is considered useful for screening for drugs effective for allergic diseases.

被験物質としてアクチンの重合阻害剤であるサイトカラシン(cytochalasin)Bを用いた多型核白血球の細胞接着能試験:
まず、実施例1記載の形態学的評価法と同様の方法で伸展率(%)を算出した。なお、検定は4回行いスタンダードエラー・バーを付した。結果を図6に示す。次に、実施例1記載のクリスタルバイオレット染色法と同様の方法で相対接着率(%)を算出した。なお、検定は3回行いスタンダードエラー・バーを付した。結果を図7に示す。
Cell adhesion ability test of polymorphonuclear leukocytes using cytochalasin B which is a polymerization inhibitor of actin as a test substance:
First, the extension ratio (%) was calculated by the same method as the morphological evaluation method described in Example 1. The test was performed 4 times and a standard error bar was attached. The results are shown in FIG. Next, the relative adhesion rate (%) was calculated by the same method as the crystal violet staining method described in Example 1. The test was performed three times and a standard error bar was attached. The results are shown in FIG.

図6に示されるように、サイトカラシンBを添加しないとき(濃度0μM)およびサイトカラシンBを添加したとき(濃度2μM)の伸展率は、それぞれ約77%および約21%であった。一方、図7に示されるように、サイトカラシンBを添加しないとき(濃度0μM)およびサイトカラシンBを添加したとき(濃度2μM)の相対接着率(%)はそれぞれ約109%および約118%であった。これより、細胞接着とは、細胞が基質に付着し、かつ伸展を起こしている状態を示すものであるため、サイトカラシンBは伸展のみを抑制し、付着は抑制していないと考えられる。また、細胞接着後の伸展が細胞内アクチン骨格系の再編成を必要とすることから、アクチンの重合阻害剤として知られているサイトカラシンBがアクチンの重合を阻害したことにより伸展が抑制されたことが本発明の方法により認められた。したがって、本発明の方法は、被験物質(薬剤など)の多型核白血球の機能抑制効果を評価し、さらに細胞接着のみならず細胞移動を抑制するのに有効な薬剤のスクリーニングが可能である。   As shown in FIG. 6, the stretch ratios when cytochalasin B was not added (concentration 0 μM) and when cytochalasin B was added (concentration 2 μM) were about 77% and about 21%, respectively. On the other hand, as shown in FIG. 7, the relative adhesion rate (%) when cytochalasin B was not added (concentration 0 μM) and when cytochalasin B was added (concentration 2 μM) was about 109% and about 118%, respectively. there were. Thus, cell adhesion refers to a state in which cells are attached to the substrate and cause extension, and thus it is considered that cytochalasin B only suppresses extension and does not suppress attachment. In addition, since the extension after cell adhesion requires reorganization of the intracellular actin skeleton, the extension was suppressed by the inhibition of actin polymerization by cytochalasin B, which is known as an actin polymerization inhibitor. This has been observed by the method of the present invention. Therefore, the method of the present invention can evaluate the function inhibitory effect of polymorphonuclear leukocytes of a test substance (drug etc.), and can screen for a drug effective for suppressing not only cell adhesion but also cell migration.

本発明の実施例1の形態学的評価においてHEPES緩衝液のpHを(a)pH7.2,(b)pH6.9,(c)pH6.6,(d)pH6.3,(e)pH6.0に変化させたときの細胞の顕微鏡像を示す。In the morphological evaluation of Example 1 of the present invention, the pH of the HEPES buffer was changed to (a) pH 7.2, (b) pH 6.9, (c) pH 6.6, (d) pH 6.3, (e) pH 6 The microscopic image of the cell when changed to 0.0 is shown. 本発明の実施例1の細胞伸展に対する細胞外pHの影響を示すグラフである。It is a graph which shows the influence of extracellular pH with respect to the cell extension of Example 1 of this invention. 本発明の実施例1の細胞接着に対するに対する細胞外pHの影響を示すグラフである。It is a graph which shows the influence of extracellular pH with respect to the cell adhesion of Example 1 of this invention. 本発明の実施例2のクレソン抽出物による細胞伸展の結果を示すグラフである。It is a graph which shows the result of the cell extension by the watercress extract of Example 2 of this invention. 本発明の実施例2のクレソン抽出物による細胞接着の結果を示すグラフである。It is a graph which shows the result of the cell adhesion by the watercress extract of Example 2 of this invention. 本発明の実施例3のサイトカラシンBによる細胞伸展の結果を示すグラフである。It is a graph which shows the result of the cell extension by cytochalasin B of Example 3 of this invention. 本発明の実施例3のサイトカラシンBによる細胞接着の結果を示すグラフである。It is a graph which shows the result of the cell adhesion by cytochalasin B of Example 3 of this invention.

Claims (6)

多型核白血球の細胞接着及び/又は細胞移動を抑制するのに有効な薬剤のスクリーニング方法であって、固体支持体上にコーティングされた接着性基質に、少なくとも多型核白血球と、被験物質と、前記多型核白血球の活性化剤とを添加し、前記接着基質への前記多型核白血球の接着細胞数又は接着細胞量を測定することにより、前記多型核白血球の細胞接着能を評価することを特徴とする薬剤のスクリーニング方法。   A method for screening a drug effective for suppressing cell adhesion and / or cell migration of polymorphonuclear leukocytes, comprising an adhesive substrate coated on a solid support, at least polymorphonuclear leukocytes, a test substance, The polymorphonuclear leukocyte activator is added, and the cell adhesion ability of the polymorphonuclear leukocyte is evaluated by measuring the number of adherent cells or the amount of adherent cells of the polymorphonuclear leukocyte to the adhesion substrate. A method for screening a drug characterized by comprising: 前記接着性基質が、フィブリノーゲンであることを特徴とする請求項1記載の薬剤のスクリーニング方法。   The method for screening a drug according to claim 1, wherein the adhesive substrate is fibrinogen. 前記活性化剤が、ホルボールミリスチン酸アセテートであることを特徴とする請求項1又は2記載の薬剤のスクリーニング方法。   The method for screening a drug according to claim 1 or 2, wherein the activator is phorbol myristic acetate. 前記活性化剤が、ホルボールミリスチン酸アセテート及びマグネシウムイオンであることを特徴とする請求項1又は2記載の薬剤のスクリーニング方法。   The method for screening a drug according to claim 1 or 2, wherein the activator is phorbol myristic acid acetate and magnesium ion. 前記接着細胞数を、位相差顕微鏡を用いて測定することを特徴とする請求項1〜4のいずれか1項記載の薬剤のスクリーニング方法。   The method for screening a drug according to any one of claims 1 to 4, wherein the number of adherent cells is measured using a phase contrast microscope. クリスタルバイオレットを含む水溶液により接着細胞を染色し、前記接着細胞量を分光光度計を用いて測定することを特徴とする請求項1〜4のいずれか1項記載の薬剤のスクリーニング方法。

The method for screening a drug according to any one of claims 1 to 4, wherein the adherent cells are stained with an aqueous solution containing crystal violet, and the amount of the adherent cells is measured using a spectrophotometer.

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