JP2004268014A - 抗原性物質を失活させる方法および装置 - Google Patents

Abstract

【課題】 本発明は、定期的なフィルタの交換等の煩雑さがなく、しかも抗体の個人差による影響を受ける等の予防法上の困難性を伴なうこともない、アレルギー疾患を低減させる有効な方法を提供することにある。
【解決手段】 本発明は、抗原性物質に対して正イオンと負イオンとを作用させることにより、抗原性物質を失活させる方法に関する。
【選択図】 図３

Description

本発明は、正負両イオンの作用等により抗原性物質（アレルゲンともいうが、本願では抗原性物質と記す。）を失活させる方法および装置に関するものである。さらに本発明は、該方法および装置を利用した空気調節装置（例えば、空気清浄機、空気調和機、除湿機、加湿器、電気ヒータ、石油ストーブ、ガスヒータ、クーラーボックス、及び冷蔵庫等）に関するものである。

近年、住環境の変化に伴い、人へのアレルギー疾患の原因となる花粉やダニ等の有害な空気中の浮遊物質を取り除き、健康で快適な生活を送りたいという要望が強くなっている。この要望に応えるため、各種のフィルタを備えた空気調節装置が開発されている（特許文献１〜４）。

しかしながら、このような空気調節装置では、空間の空気を吸引してフィルタにより有害な浮遊物質を吸着若しくはろ過する方式であるため、長期にわたる使用によりフィルタの交換等のメンテナンスが不可欠であり、しかもフィルタの特性が充分でないため満足のいく性能が得られない場合がある。

一方、ワクチンなどによる予防方法が提案されているが、人それぞれにより免疫の質および量が異なることから効果が発揮されない場合がある。

したがって、現在のところこれらの不都合や困難を伴うことなくアレルギー疾患を低減させる有効な方法は知られていない。
特開平６−１５４２９８号公報 特開平７−８０７号公報 特開平８−１７３８４３号公報 特開２０００−１１１１０６号公報

本発明は、このような状況に鑑みなされたものであって、その目的とするところは、定期的なフィルタの交換等の煩雑さがなく、しかも抗体の個人差による影響を受ける等の予防法上の困難性を伴なうこともない、アレルギー疾患を低減させる有効な方法および装置を提供することにある。

本発明者は、上記課題を解決するために鋭意研究を重ねたところ、アレルギー疾患を誘発する直接的な原因は花粉等自体ではなくそこに含まれている抗原性物質にあり、この抗原性物質を失活させることが最も有効であるとの知見を得、この知見に基づきさらに研究を続けたところ、ついに本発明を完成させるに至ったものである。

すなわち、本発明は、抗原性物質に対して正イオンと負イオンとを作用させることにより、抗原性物質を失活させる方法に関する。該抗原性物質は、タンパク質もしくは糖タンパク質からなるものであり、このような抗原性物質に対して正イオンと負イオンとを作用させると当該物質（特にその抗体反応部位）は変性ないし破壊され、これによりアレルギー反応性が失活し、以ってアレルギー疾患の誘発を低減させることが期待できる。

また、上記抗原性物質を失活させる方法は、正負両イオンの濃度が、それぞれ略５万個／ｃｍ³以上となる雰囲気中において、正イオンと負イオンとを作用させることにより実行することができる。このようなイオン濃度を設定することにより、正負両イオンの作用により抗原性物質を効果的に失活させることができる。なお、本明細書では、イオン濃度とは臨界移動度を１ｃｍ²／Ｖ・秒以上の小イオンの濃度を意味しており、該小イオンの濃度測定には、空気イオンイオンカウンター（たとえばダン科学製空気イオンカウンタ（品番８３−１００１Ｂ））を用いて行なう。

さらに、上記抗原性物質を失活させる方法は、正負両イオンの濃度が、それぞれ略１０万個／ｃｍ³以上となる雰囲気中において、正イオンと負イオンとを作用させることにより実行することができる。

また、上記抗原性物質を失活させる方法は、正負両イオンの濃度が、それぞれ略３０００個／ｃｍ³以上となる空間平均濃度において、正イオンと負イオンとを作用させることにより実行することができる。抗原性物質は、空間内を拡散、浮遊することから、正負両イオンを送出する装置の吹出し口付近のみの濃度で規定するよりも空間全体の濃度で規定する方が有効となる場合があるからである。

さらに、上記抗原性物質を失活させる方法は、正負両イオンの濃度が、それぞれ略１００００個／ｃｍ³以上となる空間平均濃度において、正イオンと負イオンとを作用させることにより実行することができる。

また、上記方法における正イオンは、Ｈ₃Ｏ⁺（Ｈ₂Ｏ）_n（ｎは０または自然数）であり、負イオンは、Ｏ₂ ^-（Ｈ₂Ｏ）_m（ｍは０または自然数）とすることができる。なお、ここで、正イオンとして記載したＨ₃Ｏ⁺（Ｈ₂Ｏ）_n（ｎは０または自然数）は、表記方法を変更するとＨ⁺（Ｈ₂Ｏ）_n（ｎは自然数）と記述することが可能であり、同等のイオンを示すものである。

また、上記正イオンと負イオンとは、化学反応することによって過酸化水素Ｈ₂Ｏ₂、二酸化水素ＨＯ₂またはヒドロキシラジカル・ＯＨの少なくとも１種を生成することができる。

なお、上記抗原性物質は、スギ抗原性物質とすることができる。また、上記抗原性物質は、ダニ抗原性物質またはダニ粉塵とすることができる。

さらに、本発明は、抗原性物質の抗体反応部位を電気的衝撃および／または化学反応により変性ないし破壊させることによって、抗原性物質を失活させる方法に関する。

一方、本発明は、抗原性物質に対して正イオンと負イオンとを作用させるために、正イオンと負イオンとを空気中に送出する機構を有することを特徴とする、抗原性物質を失活させる装置に関する。

また、上記装置は、過酸化水素Ｈ₂Ｏ₂、二酸化水素ＨＯ₂またはヒドロキシラジカル・ＯＨの少なくとも１種を生成することができる。

また、上記装置は、正負両イオンの濃度が、それぞれ略５万個／ｃｍ³以上となる雰囲気を提供するように、正イオンと負イオンとを空気中に送出することができる。

また、上記装置は、正負両イオンの濃度が、それぞれ略１０万個／ｃｍ³以上となる雰囲気を提供するように、正イオンと負イオンとを空気中に送出することができる。

また、上記装置は、正負両イオンの濃度が、それぞれ略３０００個／ｃｍ³以上となる空間平均濃度を提供するように、正イオンと負イオンとを空気中に送出することができる。

また、上記装置は、正負両イオンの濃度が、それぞれ略１００００個／ｃｍ³以上となる空間平均濃度を提供するように、正イオンと負イオンとを空気中に送出することができる。

また、上記装置は、抗原性物質がスギ抗原性物質であるものとすることができる。また、上記装置は、抗原性物質がダニ抗原性物質またはダニ粉塵であるものとすることができる。

さらに、本発明は、抗原性物質の抗体反応部位を電気的衝撃および／または化学反応により変性ないし破壊させるための放電機構を有することを特徴とする、抗原性物質を失活させる装置に関する。

なお、上記各装置は、空気調節機構を備えているものとすることができる。これにより、抗原性物質を失活させる能力をもった各種の空気調節装置（例えば、空気清浄機、空気調和機、除湿機、加湿器、電気ヒータ、石油ストーブ、ガスヒータ、クーラーボックス、及び冷蔵庫等）を提供することが可能となる。

本発明の方法によれば、定期的なフィルタの交換等の煩雑さがなく、しかも抗体の個人差による影響を受ける等の予防法上の困難性を伴なうこともなく、正負両イオンの作用により抗原性物質を失活させることができる。したがって、これによりアレルギー疾患を有効に低減させることが期待できる。また、抗原性物質に対して正負両イオンを作用させる際に、人体に有害な量のオゾン等の副生をともなうこともない。また、本発明の装置によれば、正負両イオンを空気中に送出し抗原性物質を失活させることができる。

したがって、本発明の方法または装置を利用した空気調節装置は、効率的に空気中の抗原性物質を失活させることができ、アレルギー疾患を低減させた快適な居住空間等を提供することができるものとなる。

＜抗原性物質＞
本発明が対象とする抗原性物質は、スギ、ヒノキ、ブタクサ等の花粉類やダニ等の生物に含まれる物質であって、生体に作用することにより抗原抗体反応の一種であるアレルギー反応を生ぜしめ、アレルギー疾患を誘発する物質をいうものとする。該抗原性物質は、通常、タンパク質もしくは糖タンパク質からなるものであるが、その形状または大きさは特に限定されず、それらのタンパク質や糖タンパク質自体の分子状のもの、あるいはそれらが集合して粒子状になったもの、またあるいはその分子状のものの一部である抗原決定基等が含まれるものとする。

このような抗原性物質の具体例としては、たとえばスギ抗原性物質やダニ抗原性物質を挙げることができる。

なお、ダニ抗原性物質は、ダニ自身の体内に含まれるものであるが、一般の生活環境においては、ダニ自身のみよりもむしろダニ粉塵中に含まれるものとして問題となることが多い。ここでダニ粉塵とは、ダニ自身をはじめ、ダニの死骸や身体の一部、およびダニの食物や排泄物を含んだ微粒状のものをいうものとする。本発明における抗原性物質とは、このようなダニ粉塵をも含むものとする。

＜抗体反応部位＞
抗体反応部位とは、抗原性物質に含まれる特定の部分であって、抗体と結合する部位をいう。抗原性物質は、この抗体反応部位が変性ないし破壊（分解）されると、抗体と結合することができなくなり、このためアレルギー反応を抑制することができる。

＜抗原性物質を失活させる方法＞
本発明に係る抗原性物質を失活させる方法は、抗原性物質に対して正イオンと負イオンとを作用させることにより達成されるものである。これらの正負両イオンは、正イオンもしくは負イオンそれぞれ単独では抗原性物質に対して格別の効果は示されない。しかし、これらのイオンが共存すると後述のような化学反応によって活性物質を発生し、この活性物質が抗原性物質を構成するタンパク質、とりわけその抗体反応部位を攻撃することによリ、該タンパク質を変性ないし破壊（分解）することによって抗原性物質を失活させるものと解せられる。

ここで、抗原性物質を失活させるとは、上述のように抗原性物質を変性ないし破壊（分解）することにより、抗原性物質を消滅させることのみならず、該抗原性物質の量を減少させたり、その活性度を低下させることをも含むものとする。

＜正負両イオンの濃度＞
抗原性物質に対して正イオンと負イオンとを作用させる雰囲気における正負両イオンの濃度は、該正負両イオンがそれぞれ２．５万個／ｃｍ³以上、好ましくは５万個／ｃｍ³以上、さらに好ましくは１０万個／ｃｍ³以上とすることが好適である。２．５万個／ｃｍ³未満の場合には、抗原性物質に対して十分に効果を発揮することができなくなると考えられるからである。

一方、正負両イオンの濃度の上限は特に限定されるものではないが、過度に高濃度のイオンを発生させると人体に有害な量のオゾンを発生することとなるため好ましくない。すなわち、後述するようにこれらの正負両イオンは通常放電により発生するが、正負両イオンを高濃度に発生させるためには高電圧の印加を要し、これによりオゾンが副生するおそれがある。そのため、正負両イオンの濃度が、それぞれ３００万個／ｃｍ³を超えない範囲に設定することで経時変化なども含めて、本技術を製品に組み込んだ場合に、送風口付近においてオゾン濃度が０．１ｐｐｍを超えることのないように設計できる。この０．１ｐｐｍという濃度は、わが国における産業衛生学会が８時間労働の際の許容濃度として定める基準濃度を超えるものとなり、また米国労働衛生専門官会議（ＡＣＧＩＨ）が定める許容濃度をも超えるものとなる。このため、正負両イオンの濃度の上限は、それぞれ３００万個／ｃｍ³未満、さらに十分な安全性を考慮して、好ましくは２００万個／ｃｍ³未満とすることができる。これにより、オゾン等の人体に有害な副生成物の濃度を十分な安全性の基準内に収めることが可能になる。なお、イオン濃度の上限を上記のように例示したが、放電方式を改善することにより、上記制限は緩和することが可能である。また、オゾン吸収性の物質、たとえば酸化銅あるいは活性炭などを配置し、オゾンを分解する構造を設ける対策により、同様に上記制限はさらに緩和することができる。特にオゾンのみを吸収する物質を使うと効果的である。

このように本発明の方法によれば、人体に有害な量のオゾン等を副生することなく抗原性物質を失活させられるという極めて有利な効果を示すことができる。なお、本発明における抗原性物質を失活させる雰囲気とは、正負両イオンの濃度が上述のような範囲にある雰囲気をいうが、たとえば正負両イオンを送出する装置の吹出し口から１０ｃｍ以内の範囲内において上述のイオン濃度が達成されていれば、そのような系は本発明でいう抗原性物質を失活させる雰囲気に該当するものとする。

また一方、抗原性物質を失活させるには、正負両イオンの空間平均濃度を、正負両イオンそれぞれについて略３０００個／ｃｍ³以上、さらに好ましくは略１００００個／ｃｍ³以上とすることが好適である。抗原性物質は、空間内を拡散、浮遊することから、正負両イオンを送出する装置の吹出し口付近のみの濃度で規定するよりも空間全体の濃度で規定する方が有効となる場合があるからである。

ここで、正負両イオンの空間平均濃度が、正負両イオンそれぞれについて略３０００個／ｃｍ³未満となる場合には、抗原性物質を有効に失活できない場合がある。なお、本発明における正負両イオンの空間平均濃度とは、ある体積を有する空間全体の平均濃度をいうものとし、たとえば適度に空気が滞留する室内の中心付近において互いに５０ｃｍ以上離れた５つのポイントにおける正負両イオンそれぞれの濃度をイオンカウンタ（たとえばアンデス電気製空気イオンカウンター、品番ＩＴＣ−２０１Ａ）を用いて測定し、その５つのポイントの平均濃度を求めることにより測定することができる。

＜正負両イオンの送出方法＞
本発明に係る正負両イオンは、主としてイオン発生素子の放電現象により発生するものであり、通常、正負の電圧を交互に印加させることにより正負両イオンをほぼ同時に発生させ空気中に送出することができる。しかしながら、本発明の正負両イオンの送出方法はこれのみに限られることはなく、正負いずれか一方の電圧のみを一定時間印加し正負いずれか一方のみのイオンを先に送出させた後、次に逆の電圧を一定時間印加しすでに送出されたイオンとは逆の電荷をもったイオンを送出させることもできる。なお、これらの正負両イオンの発生、送出に必要な印加電圧は、電極の構造にもよるが電極間のピークトゥーピーク（ｐｅａｋ ｔｏ ｐｅａｋ）電圧として２〜１０ｋＶ、好ましくは３〜７ｋＶの範囲とすることができる。

また、本発明の正イオンおよび負イオンは、２０〜９０％、好ましくは４０〜７０％の相対湿度の下で発生させることが好適である。後述の通り正負両イオンの発生は、空気中の水分子の存在と関係するからである。すなわち、相対湿度が２０％未満の場合は、イオンを中心に据えた水分子によるクラスター化が適切に進まず、イオン同士の再結合が起こりやすくなるので発生したイオンの寿命が短くなってしまう。また９０％を超える場合は、イオン発生素子の表面に水分が結露することによりイオンの発生効率が著しく低下するし、発生したイオンもクラスター化が進み過ぎて多くの水分子により取囲まれてしまうので、重量が増しあまり遠くへ放出されないまま沈降してしまうという状況となるおそれがある。したがって、このように極端な低湿度や高湿度でのイオンの発生はいずれの場合も好ましくない。

なお、本発明の正負両イオンの送出方法としては、上述のような放電現象のみにかかわらず、紫外線や電子線を放射するデバイス等を利用する方法を用いても良い。

＜正負イオンの同定＞
本発明の正イオンおよび負イオンは、放電素子の表面に存在する酸素分子および／または水分子を原料として発生させることができる。この発生方法によれば、特別な原料を必要としないためコスト的に有利であるばかりでなく、原料自体に有害性がなく、また他の有害なイオンや物質を発生することがないため好ましい。

上記のイオン発生素子の放電現象により発生した正負両イオンの組成は、主として正イオンとしてはプラズマ放電により空気中の水分子が電離して水素イオンＨ⁺が生成し、これが溶媒和エネルギーにより空気中の水分子とクラスタリングすることによりＨ₃Ｏ⁺（Ｈ₂Ｏ）_n（ｎは０または自然数）を形成したものである。水分子がクラスタリングしていることは、図２（ａ）において最小に観測されるピークが分子量１９の位置にあり、後のピークはこの分子量１９に対して水の分子量に相当する１８を順次足した位置に現れることから明らかである。すなわち、この結果は分子量１の水素イオンＨ⁺に分子量１８の水分子が一体となって水和していることを示している。一方、負イオンとしてはプラズマ放電により空気中の酸素分子または水分子が電離して酸素イオンＯ₂ ^-が生成し、これが溶媒和エネルギーにより空気中の水分子とクラスタリングすることによりＯ₂ ^-（Ｈ₂Ｏ）_m（ｍは０または自然数）を形成したものである。水分子がクラスタリングしていることは、図２（ｂ）において最小に観測されるピークが分子量３２の位置にあり、後のピークはこの分子量３２に対して水の分子量に相当する１８を順次足した位置に現れることから明らかである。すなわち、この結果は分子量３２の酸素イオンＯ₂ ^-に分子量１８の水分子が一体となって水和していることを示している。

そして、空間に送出されたこれらの正負両イオンは空気中に浮遊している抗原性物質を取り囲み、抗原性物質の表面で正負両イオンが以下のような化学反応（１）〜（２）によって活性種である過酸化水素Ｈ₂Ｏ₂、二酸化水素ＨＯ₂またはヒドロキシラジカル・ＯＨを生成する。

そして、このように正負両イオンが作用して生成した過酸化水素Ｈ₂Ｏ₂、二酸化水素ＨＯ₂またはヒドロキシラジカル・ＯＨは、抗原性物質の抗体反応部位を変性ないし破壊（分解）して抗原性物質と抗体との結合能力を喪失させることにより、効率的に空気中の抗原性物質を失活させることができるものと解される。

なお、上記の説明においては、正イオンとしてＨ₃Ｏ⁺（Ｈ₂Ｏ）_n（ｎは０または自然数）、負イオンとしてＯ₂ ^-（Ｈ₂Ｏ）_m（ｍは０または自然数）をそれぞれ中心に述べてきたが、本発明における正負イオンはこれらのみに限られるものではない。上記２種の正負イオンを主体としつつ、たとえば、正イオンとしてはＮ₂ ⁺、Ｏ₂ ⁺等を、負イオンとしてはＮＯ₂ ^-、ＣＯ₂ ^-等をそれぞれ例示することができ、これらを含んでいたとしても同様の効果が期待できる。

＜イオン発生素子＞
本発明のイオン発生素子は、正イオンと負イオンとを発生させるものであり、また後述のような電気的衝撃により直接的に抗原性物質のアレルギー反応を失活させることができるものともなり得る。このようなイオン発生素子は、その付設箇所は特に限定されないものの、通常は抗原性物質を失活させる装置の風路に付設されていることが好ましい。イオン発生素子により発生させられる正負両イオンは短時間で消失するため、これらの正負両イオンを効率良く空気中に拡散させることができるようにするためである。なお、イオン発生素子の設置個数は、１個であっても、２個以上であっても差し支えない。

このようなイオン発生素子としては、放電機構により正負両イオンを発生する従来公知のイオン発生素子が用いられる。特に、抗原性物質に対して正イオンと負イオンとを作用させる雰囲気中の正負両イオンの濃度が、それぞれ略５万個／ｃｍ³以上となるように正イオンと負イオンとを空気中に送出できるものであることが好ましく、また正負両イオンそれぞれの空間平均濃度が３０００個／ｃｍ³以上となるように正イオンと負イオンとを空気中に送出できるものであることが好ましい。

ここでいう放電機構とは、絶縁体を電極で挟み込んだ構造を持ち、片側に交流の高電圧を印加させるとともに、もう一方の電極は接地させ、高電圧を印加させることにより接地電極に接している空気層にプラズマ放電を形成し、空気中の水分子や酸素分子を電離または解離することにより正負両イオンを生成するような機構をいう。このような放電機構において、たとえば電極の形状を電圧印加側は板状またはメッシュ状とし、接地側電極をメッシュ状とした場合、高電圧を印加すると接地側電極のメッシュ端面部で電界が集中して沿面放電が起こりプラズマ領域が形成される。このプラズマ領域に空気を流し込むと正負両イオンが生成するだけでなくプラズマによる電気的衝撃が得られる。

このよう放電機構を有する素子としては、例えば沿面放電素子、コロナ放電素子、プラズマ放電素子等を挙げることができるがこれらのみに限られるものではない。また、放電素子の電極の形状や材質においても、上述のようなもののみに限られるものではなく、針型などを含め、あらゆる形状、材質のものを選択することができる。

このようなイオン発生素子としてより具体的には、図１に示すように誘電体１００３を板形状の電極１００２とメッシュ形状の電極１００４で挟み込み、電源１００１により板形状の電極に正極と負極の電圧を交互に印加することによって、メッシュ形状電極のメッシュ端面で電界が集中してプラズマ放電が起こりプラズマ領域１００５が形成され正負両イオンが生成されるような構造のものが特に好ましい。

なお、これらの正負両イオンの発生、送出に必要な印加電圧は、イオン発生素子の構造にもよるが電極間のピークトゥーピーク（ｐｅａｋ ｔｏ ｐｅａｋ）電圧として２〜１０ｋＶ、好ましくは３〜７ｋＶの範囲とすることができる。

＜その他の方法等＞
抗原性物質を失活させる方法は、上述のように化学反応ばかりではなく、抗原性物質の抗体反応部位を電気的衝撃により変性ないし破壊させることにより実行することも可能である。すなわち、抗原性物質の抗体反応部位は、正負両イオンを発生させる際の電圧印加によるプラズマ放電自体によっても変性ないし破壊され、以ってこのような電気的衝撃によっても抗原性物質と抗体との結合能力は喪失し、抗原性物質を失活させることができる。したがって、抗原性物質の抗体反応部位を電気的衝撃および／または化学反応により変性ないし破壊させることによって抗原性物質を失活させることができるものであり、特に上記の作用、すなわち電気的衝撃と化学反応の両者が相乗的に奏されることにより抗原性物質の失活を促進すると思われる。

以下、実施例を挙げて本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。

＜実施例１＞
本実施例は、スギ花粉の抗原性物質を用いて、正負両イオンの作用による抗原性物質の失活を確認したものである。以下、図３〜８を参照して説明する。

図３は、正イオンと負イオンの作用による抗原性物質を失活させる方法を実行するための装置の概略図である。図４〜５は、イライザ（ＥＬＩＳＡ）法によるスギ抗原性物質（略称ＣＪＰ）と、患者１９〜６０の計４２名の血清ＩｇＥとの反応性評価を示した図である。なお、図３の装置は、図１のイオン発生素子を備えており、これにより送出される正イオンおよび負イオンの質量スペクトルを図２に示す。

＜抗原性物質を失活させる方法を実行するための装置＞
まず、図３に示した装置では、イオン発生素子１０２１（図１に示したイオン発生素子と同じもの）として縦３７ｍｍ、横１５ｍｍの平板状の沿面放電素子を用いた。電極間に正と負の電圧を交互に印加することにより表面電極部で沿面放電を起こし、大気圧下での放電プラズマにより正イオン１０２２と負イオン１０２３をほぼ同時に生成し送出させた。印加した電圧は電極間のピークトゥーピーク（ｐｅａｋ ｔｏ ｐｅａｋ）電圧として３．３ｋＶ〜３．７ｋＶであり、この範囲の電圧において有害な量のオゾンが発生することはなかった。該イオン発生素子は、内径１４０ｍｍ、長さ５００ｍｍのアクリル製の円筒型密閉容器１０２７の内部に４個取り付け固定し、この容器の一方には抗原性物質を含んだ溶液を噴霧する注入口１０２８を、もう一方には抗原性物質を含んだ溶液の回収容器１０２５を取り付けるとともに、この容器の底部に脱気用の脱気口１０２６を設けた。

すなわち、この図３に示した装置において、抗原性物質は注入口１０２８から噴霧されて回収容器１０２５まで自然落下する間に正負両イオンに晒されてその作用を受けることになる。

＜スギ花粉および抗原性物質＞
抗原性物質としては、スギ花粉より抽出した抗原性物質を用いた。スギ花粉は広島県豊町に生育する日本杉（学名：Ｃｒｙｐｔｏｍｅｒｉａ ｊａｐｏｎｉｃａ）の枝より採取した。その際、メッシュを取り付けた掃除機を用い、その後ふるいにかけて収集した。収集後の保存は−３０℃のフリーザーを用いた。

また、スギ花粉より抗原性物質を抽出するために、スギ花粉８０ｇを２０ｍＭのリン酸緩衝溶液（ＰＢＳ、ｐＨ７．４）３．２Ｌ中で、温度４℃の下４時間攪拌した後、６０００ｒｐｍで３０分間遠心分離した。その後、上清に終濃度８０％飽和になるように硫酸アンモニウムを加え、６０００ｒｐｍで３０分間遠心分離した。この遠心分離後、６時間の透析を６回繰り返し行ない、続いて１００００ｒｐｍで３０分間遠心分離した。この遠心分離後、得られた上清を凍結乾燥し、スギ抗原性物質とした。なお、このスギ抗原性物質には、さらに抗原性物質であるクリジェイ１（Ｃｒｙ ｊ １）とクリジェイ２（Ｃｒｙ ｊ ２）が含まれている。

＜フォーリンローリー（Ｆｏｌｉｎ−Ｌｏｗｒｙ）法によるタンパク質の定量＞
スギ抗原性物質を含んだ溶液０．２ｍｌと下記Ｄ液１ｍｌとを混合し、１０分間放置した。つぎに、下記Ａ液を０．１ｍｌ加え３０分間放置した後７５０ｎｍで吸光度を測定した。また、牛血清タンパク質（ＢＳＡ）で標準系列を作成し、同手順で検量線を作成することにより、スギ抗原性物質のタンパク質の量をＢＳＡ換算量として定量した。その結果、そのタンパク質の濃度は２００ｎｇ／ｍｌであった。なお、ここで用いた各試薬は、以下の通りである。
（試薬）
Ａ液；フェノール試薬を酸として１Ｎとしたもの。
Ｂ液；２％Ｎａ₂ＣＯ₃＋０．１ＮのＮａＯＨ
Ｃ液；０．５％ＣｕＳＯ₄・５Ｈ₂Ｏ＋１％クエン酸ナトリウム
Ｄ液；Ｂ液：Ｃ液＝５０：１（ｖ／ｖ）
＜抗原性物質の噴霧と回収＞
このようにして得られた抗原性物質であるスギ抗原性物質を含んだ溶液（タンパク質濃度２００ｎｇ／ｍｌ）をネブライザー１０２４に８ｍｌ入れ、図３に示した装置の抗原性物質溶液噴霧用の注入口１０２８に接続した。一方、噴霧された抗原性物質を含んだ溶液を回収できるように、回収容器１０２５を円筒型密閉容器１０２７の底に設置した。

ネブライザーは、エアコンプレッサーと接続して、圧縮空気（流量５Ｌ／分）により注入口１０２８から抗原性物質を噴霧した。噴霧量は８．０ｍｌ（噴霧時間９０分）とした。９０分後円筒型密閉容器１０２７の底に沈降した抗原性物質を回収容器１０２５で回収した。なお、噴霧された抗原性物質は、円筒型密閉容器１０２７中を自然落下するのに約９０秒間かかった。

なお、このような抗原性物質の噴霧と回収は、イオン発生素子１０２１を作動させる場合（すなわちイオン処理の場合）と作動させない場合（すなわち未処理の場合）の２通りについて行なった。

イオン発生素子１０２１を作動させて抗原性物質に対して正イオンと負イオンとを作用させる場合、その雰囲気中（すなわち円筒型密閉容器１０２７中）の正負両イオンの濃度は、イオン発生素子１０２１を設置した円筒型密閉容器１０２７の抗原性物質溶液噴霧用の注入口１０２８よりエアコンプレッサーにより流量５Ｌ／分で空気を流し、抗原性物質溶液の回収容器１０２５にダン科学製空気イオンカウンタ（品番８３−１００１Ｂ）を設置し、正負両イオンの濃度を測定することにより求めた。その結果、該イオン発生素子１０２１に電極間のピークトゥーピーク（ｐｅａｋ ｔｏ ｐｅａｋ）電圧として３．３ｋＶ〜３．７ｋＶの電圧をそれぞれ印加した場合、円筒型密閉容器１０２７内の正負両イオンの濃度はそれぞれ１０万個／ｃｍ³であった。なお、空間雰囲気は温度２５℃、相対湿度６０％ＲＨであった。また、図２に示したように送出された正イオンはＨ₃Ｏ⁺（Ｈ₂Ｏ）_n（ｎは０または自然数）、負イオンはＯ₂ ^-（Ｈ₂Ｏ）_m（ｍは０または自然数）であり、これらの正負両イオンは前記の化学反応（１）〜（２）により過酸化水素Ｈ₂Ｏ₂、二酸化水素ＨＯ₂およびヒドロキシラジカル・ＯＨを生成しているものと推定された。

＜イライザ（ＥＬＩＳＡ）法による反応性の評価＞
次いで、このようにして捕集されたスギ抗原性物質と、花粉症の患者１９〜６０より採取した血清ＩｇＥ抗体との反応性をイライザ（ＥＬＩＳＡ：ｅｎｚｙｍｅ−ｌｉｋｅｄ ｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔ ａｓｓａｙ）法で測定した。なお、抗原性物質については、上記の通り正イオンと負イオンとを作用させたもの（イオン処理スギ抗原性物質）と未処理のもの（未処理スギ抗原性物質）とを比較することにより該反応性を評価した。

具体的には、イライザ用９６穴プレート（ＥＬＩＳＡ用９６−ｗｅｌｌ ｐｌａｔｅ）に炭酸水素ナトリウム緩衝溶液（Ｂｉｃａｒｂｏｎａｔｅ ｂｕｆｆｅｒ）で０．１μｇ／ｍｌに希釈したイオン処理スギ抗原性物質と未処理スギ抗原性物質とをウェル（ｗｅｌｌ）に５０μｌアプライした。同時にヒトＩｇＥ標準（ｈｕｍａｎ ＩｇＥ ｓｔａｎｄａｒｄ）を炭酸水素ナトリウム緩衝溶液で２００μｇ／ｍｌから２倍希釈を５回繰り返したものをそれぞれ５０μｌづつウェル（ｗｅｌｌ）にアプライし、室温で２時間静置した。洗浄用緩衝溶液（Ｗａｓｈｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒ）でプレートを３回洗浄後、ブロッキング用緩衝溶液（Ｂｌｏｃｋｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒ）を３００μｌアプライし、４℃で一晩静置した。

一晩静置後、プレートを３回洗浄し、（３％スキムミルク＋１％ＢＳＡ）／ＰＢＳＴでスギ花粉症の患者の血清を１０倍希釈し１時間インキュべートしたものをウェル（ｗｅｌｌ）に５０μｌアプライし、４時間静置した。プレートを３回洗浄後、（３％スキムミルク＋１％ＢＳＡ）／ＰＢＳＴで１０００倍希釈したビオチン標識抗ヒトＩｇＥ（Ｂｉｏｔｉｎ−ｌａｂｅｌｅｄ ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎ ＩｇＥ）をウェル（ｗｅｌｌ）に５０μｌアプライし２．５時間静置した。

該静置後、プレートを３回洗浄し、（３％スキムミルク＋１％ＢＳＡ）／ＰＢＳＴで１０００倍希釈したアルカリフォスファターゼ標識ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎを５０μｌアプライし、室温で１．５時間静置した。プレートを４回洗浄後、アトフォス（商標）基質緩衝溶液（Ａｔｔｏｐｈｏｓ（商標） ｓｕｂｓｔｒａｔｅ ｂｕｆｆｅｒ）をウェル（ｗｅｌｌ）に５０μｌアプライし、遮光の状態で発色するまで放置した。その蛍光強度を分光光度計（Ｃｙｔｏ（商標）ＦｌｕｏｒＩＩ）で測定した。その結果を図４と図５に示す。

図４と図５に示すように、イオン発生素子１０２１を作動させない場合（すなわち正負両イオンが発生せず未処理の状態）と、正負両イオンの濃度がそれぞれ１０万個／ｃｍ³となった場合とにおける、花粉症の患者の血清ＩｇＥ抗体とスギ抗原性物質との反応性（結合性）は、花粉症の患者１９〜６０の４２人中、患者４０、患者４９、患者５４および患者５７を除く３８人の患者において、前記イオン処理を行なった抗原と、上記患者の血清ＩｇＥ抗体との反応性が有意に低下していることが確認された（蛍光強度が低いほど、反応性が低いことを示している）。そして、このうち３３人の患者において、著しく抗体反応性が低下していることが分かった。なお、ここで用いた各試薬は、以下の通りである。
（試薬）
炭酸水素ナトリウム緩衝溶液；１００ｍＭのＮａＨＣＯ₃（ｐＨ９．２〜９．５）
リン酸緩衝溶液（ＰＢＳ）；４ｇのＮａＣｌ、０．１ｇのＮａ₂ＨＰＯ₄・１２Ｈ₂Ｏ、１．４５ｇのＫＣｌ、１ｇのＫＨ₂ＰＯ₄を蒸留水で５００ｍｌにメスアップ
ＰＢＳＴ；ＰＢＳ＋０．５％ツウィーン２０（Ｔｗｅｅｎ−２０）
ブロッキング用緩衝溶液；ＰＢＳ＋３％スキムミルク＋１％ＢＳＡ
洗浄用緩衝溶液；４３ｇのＮａ₂ＨＰＯ₄・１２Ｈ₂Ｏ、３．６ｇのＮａＨ₂ＰＯ₄、２６３ｇのＮａＣｌ、１５ｍｌのツウィーン２０（Ｔｗｅｅｎ−２０）を蒸留水で３Ｌにメスアップ
＜イライザ（ＥＬＩＳＡ）法によるモノクローナル抗体との反応性評価＞
ネブライザー１０２４で噴霧後、イオン発生素子１０２１を作動させない未処理の場合と、該素子に電極間のピークトゥーピーク（ｐｅａｋ ｔｏ ｐｅａｋ）電圧として３．３ｋＶ〜３．７ｋＶの電圧をそれぞれ印加して正負両イオンを送出し、円筒型密閉容器１０２７内の正負両イオンの濃度を正負両イオンがそれぞれ１０万個／ｃｍ³とした場合の抗原性物質Ｃｒｙ ｊ １およびＣｒｙ ｊ ２とそのモノクロ−ナル抗体との反応性の低下を調べた。

具体的には、イライザ用９６穴プレート（ＥＬＩＳＡ用９６−ｗｅｌｌ ｐｌａｔｅ）に炭酸水素ナトリウム緩衝溶液（Ｂｉｃａｒｂｏｎａｔｅ ｂｕｆｆｅｒ）で０．１μｇ／ｍｌに希釈したイオン処理Ｃｒｙ ｊ １、イオン処理Ｃｒｙ ｊ ２と未処理Ｃｒｙ ｊ １、未処理Ｃｒｙ ｊ ２とをウェル（ｗｅｌｌ）に５０μｌアプライした。洗浄用緩衝溶液（Ｗａｓｈｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒ）でプレートを３回洗浄後、ブロッキング用緩衝溶液（Ｂｌｏｃｋｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒ）を３００μｌアプライし、４℃で一晩静置した。

一晩静置後、プレートを３回洗浄し、（３％スキムミルク＋１％ＢＳＡ）／ＰＢＳＴでａｎｔｉ Ｃｒｙ ｊ １およびＣｒｙ ｊ ２ウサギ抗体を１０００倍希釈したものをそれぞれ５０μｌづつウェル（ｗｅｌｌ）に加え、１時間静置した。その後、プレートを３回洗浄後、（３％スキムミルク＋１％ＢＳＡ）／ＰＢＳＴでＨＲＰ標識抗ラビットＩｇＥ（ＨＲＰ標識 ａｎｔｉ−ｒａｂｂｉｔ ＩｇＥ）を１５００倍希釈したものをウェル（ｗｅｌｌ）に５０μｌアプライし１時間静置した。

該静置後、プレートを３回洗浄し、基質溶液（５００μｌのＡＢＴＳ（２０ｍｇ／ｍｌ）、１０μｌの３０％過酸化水素水、１ｍｌの０．１Ｍ クエン酸（ｐＨ４．２）および８．４９ｍｌの蒸留水からなるもの）をウェル（ｗｅｌｌ）に５０μｌアプライし、遮光の状態で発色するまで静置した。その蛍光強度を分光光度計（ＡＲＶＯ（商標）ＳＸ）で測定した。なお、試薬は、特に断りのない限り上記と同じものを各用いた。

上記で得られた結果を図６に示す。図６に示されているようにイオン発生素子を作動させない場合（すなわち未処理Ｃｒｙ ｊ １、未処理Ｃｒｙ ｊ ２）と、正負両イオンの濃度がそれぞれ１０万個／ｃｍ³となる雰囲気で作用させた場合（すなわちイオン処理Ｃｒｙ ｊ １、イオン処理Ｃｒｙ ｊ ２）とを比較すると、イオン処理をした場合において抗原性物質であるＣｒｙ ｊ １およびＣｒｙ ｊ ２とそのモノクロ−ナル抗体との反応性（結合性）は有意に低下していることが確認された。すなわち、Ｃｒｙ ｊ １とモノクローナル抗体との反応性は、未処理のものとイオン処理のものとの間で、約５分の１に低下しており、Ｃｒｙ ｊ ２においても約２分の１に低下していることが分かった。

＜イライザインヒビッション（ＥＬＩＳＡ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ）法による評価＞
また、イオン処理スギ抗原性物質および未処理スギ抗原性物質と、花粉症患者の血清ＩｇＥとの反応性を定量的に評価するためにイライザインヒビッション（ＥＬＩＳＡ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ：ｅｎｚｙｍｅ−ｌｉｋｅｄ ｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔ ａｓｓａｙ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ）法により確認した。

具体的には、噴霧後回収したスギ抗原性物質を、遠心分離機（Ｃｅｎｔｒｉｐｒｅｐ ＹＭ−１０）に入れ、２５００ｒｐｍで遠心濃縮した。さらに、この濃縮液を遠心分離機（ＵＬＴＲＡ ＦＬＥＥ−ＭＣ）に入れ７０００ｒｐｍで遠心濃縮した。濃縮したイオン処理スギ抗原性物質および未処理スギ抗原性物質をタンパク質濃度１１μｇ／ｍｌから５倍希釈を８回繰り返し行なった。希釈したそれぞれの抗原性物質５０μｌと１０倍希釈した患者血清ＩｇＥ５０μｌとを混合し４℃で一晩プレインキュベートした。

イライザ用９６穴プレート（ＥＬＩＳＡ用９６−ｗｅｌｌ ｐｌａｔｅ）に炭酸水素ナトリウム緩衝溶液（Ｂｉｃａｒｂｏｎａｔｅ ｂｕｆｆｅｒ）で１μｇ／ｍｌに希釈したスギ抗原性物質（噴霧も行なっていないもの）をウェル（ｗｅｌｌ）に５０μｌアプライし２時間静置した。洗浄用緩衝溶液（Ｗａｓｈｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒ）でプレートを３回洗浄後、ブロッキング用緩衝溶液（Ｂｌｏｃｋｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒ）を３００μｌアプライし、４℃で一晩静置した。

一晩静置後、プレートを３回洗浄し、プレインキュベートしていたサンプルをそれぞれ５０μｌウェルにアプライし、４時間静置した。プレートを３回洗浄後、（３％スキムミルク＋１％ＢＳＡ）／ＰＢＳＴで１０００倍希釈したビオチン標識抗ヒトＩｇＥ（Ｂｉｏｔｉｎ−ｌａｂｅｌｅｄ ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎ ＩｇＥ）をウェル（ｗｅｌｌ）に５０μｌアプライし２．５時間静置した。

該静置後、プレートを３回洗浄し、（３％スキムミルク＋１％ＢＳＡ）／ＰＢＳＴで１０００倍希釈したアルカリフォスファターゼ標識ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎを５０μｌアプライし、室温で１．５時間静置した。プレートを４回洗浄後、アトフォス（商標）基質緩衝溶液（Ａｔｔｏｐｈｏｓ（商標） ｓｕｂｓｔｒａｔｅ ｂｕｆｆｅｒ）をウェル（ｗｅｌｌ）に５０μｌアプライし、遮光の状態で発色するまで放置した。その蛍光強度を分光光度計（Ｃｙｔｏ（商標）ＦｌｕｏｒＩＩ）で測定した。なお、試薬は、特に断りのない限り上記と同じものを各用いた。

イオン発生素子を作動させない未処理の場合（すなわち未処理スギ抗原性物質）と、該素子に電極間のピークトゥーピーク（ｐｅａｋ ｔｏ ｐｅａｋ）電圧として３．３ｋＶ〜３．７ｋＶの電圧をそれぞれ印加して正負両イオンを送出し、円筒型密閉容器１０２７内の正負両イオンの濃度を正負両イオンそれぞれ１０万個／ｃｍ³とした場合（すなわちイオン処理スギ抗原性物質）についての、花粉症患者の血清ＩｇＥ抗体との反応性（結合性）を調べた。その結果を図７に示す。

図７に示したように、未処理スギ抗原性物質は、５０％阻害（スギ抗原性物質の血清ＩｇＥ抗体に対する反応性が５０％に低下すること）に必要なスギ抗原性物質量が２．５３×１０³ｐｇ／ｗｅｌｌであるのに対し、イオン処理スギ抗原性物質は、５０％阻害に必要なスギ抗原性物質量が１．３４×１０⁴ｐｇ／ｗｅｌｌとなり、反応失活率は８１％であることを確認した。なお、ここでいう反応失活率は、以下の式（１）により求めた。
反応失活率％＝（１−Ａ／Ｂ）×１００・・・（１）
Ａ：５０％阻害に必要な未処理スギ抗原性物質量
Ｂ：５０％阻害に必要なイオン処理スギ抗原性物質量
＜正負イオン濃度と反応失活率との関係＞
上記のイライザ（ＥＬＩＳＡ）法における患者１９の血清ＩｇＥを抗体として用い、抗原性物質（スギ抗原性物質）の濃度（タンパク質濃度として）を１００ｎｇ／ｍｌ、２００ｎｇ／ｍｌ、４００ｎｇ／ｍｌ、８００ｎｇ／ｍｌの４通りの濃度として、上記と同様（すなわち装置としては図３の装置を用い、イオン処理する場合は正負イオンそれぞれ１０万個／ｃｍ³の濃度とする）にしてイライザ法によりそれぞれ未処理スギ抗原性物質とイオン処理スギ抗原性物質の蛍光強度を求めた。そして、この蛍光強度から以下の式（２）に基づいてアレルギー反応の反応失活率を求めた。その結果を以下の表１に示す。

反応失活率％＝（１−Ｃ／Ｄ）×１００・・・（２）
Ｃ：イオン処理スギ抗原性物質の蛍光強度
Ｄ：未処理スギ抗原性物質の蛍光強度
続いて、上記抗原性物質の濃度が２００ｎｇ／ｍｌの場合を基準として選択し、イオン濃度と抗原性物質の濃度との間には以下の関係が成り立つとの前提の下、正負それぞれのイオン濃度と反応失活率との関係を求めた。すなわち、反応失活率が一定であれば、イオン濃度と抗原性物質濃度との間には一定の関係が成立すると考えられ、たとえばイオン濃度を一定にしておき抗原性物質濃度を半分にした状態と、抗原性物質濃度を一定にしておきイオン濃度を２倍にした状態とでは、同じ反応失活率が得られると考えられる。このため、上記実験におけるイオン濃度が正負イオンそれぞれ１０万個／ｃｍ³であることおよび上記抗原性物質の濃度が２００ｎｇ／ｍｌであることの２点を基準として、正負それぞれのイオン濃度と反応失活率との関係を図８に示した。すなわち、図８中の正負イオン濃度が２．５万個／ｃｍ³、５万個／ｃｍ³、１０万個／ｃｍ³、２０万個／ｃｍ³のデータは、それぞれ上記のイライザ法における抗原性物質濃度が８００ｎｇ／ｍｌ、４００ｎｇ／ｍｌ、２００ｎｇ／ｍｌ、１００ｎｇ／ｍｌの場合のデータに対応している（なお、図８の横軸は、正負イオンそれぞれの濃度を示している）。

図８より明らかな通り、正負イオン濃度が増加すれば反応失活率も向上しており、特に正負イオン濃度がそれぞれ５万個／ｃｍ³とすれば、７８％程度の反応失活率が達成され、抗原性物質の安定した失活効果を得ることができる。また、正負イオン濃度をそれぞれ１０万個／ｃｍ³とすれば、８３％の反応失活率を達成することができ、さらに正負イオン濃度をそれぞれ１５万個／ｃｍ³とすれば、約９０％の反応失活率を達成することができ、花粉症やダニアレルギー等のアレルギー疾患を効果的に抑制することが期待できる。

＜皮内反応試験＞
イオン処理スギ抗原性物質および未処理スギ抗原性物質を、それぞれ０．９％ＮａＣｌでタンパク質濃度０．５μｇ／ｍｌに希釈したものを、ツベルクリン用注射器で０．０２ｍｌスギ花粉症患者の前腕屈側皮内に注射した。約１５分後に現れた紅斑、膨疹の直径と短径を測定し、それらの平均径から反応性を評価した。その結果を表２に示す。

上記表２において、紅斑が１０ｍｍ未満の場合を「−」、紅斑が１０ｍｍ以上２０ｍｍ未満の場合を「±」、紅斑が２０ｍｍ以上３０ｍｍ未満であるか、または膨疹が１０ｍｍ未満の場合を「＋」、紅斑が３０ｍｍ以上４０ｍｍ未満であるか、または膨疹が１０ｍｍ以上１５ｍｍ未満の場合を「＋＋」、紅斑が４０ｍｍより以上か、または膨疹が１５ｍｍ以上の膨疹に偽足を呈している場合を「＋＋＋」とした。

表２に示すように、イオン発生素子を作動させない未処理の場合（すなわち正負両イオンが発生していない状態、未処理スギ抗原性物質）と、正負両イオンの濃度がそれぞれ１０万個／ｃｍ³である雰囲気中で処理した場合（イオン処理スギ抗原性物質）を比較すると、花粉症の患者Ａ〜Ｆの６名全員の皮内反応性が有意に低下していることが確認された。

＜結膜反応試験＞
イオン処理スギ抗原性物質および未処理スギ抗原性物質を、それぞれ０．９％ＮａＣｌでタンパク質濃度５μｇ／ｍｌに希釈したものをピペットマンで５μｌスギ花粉症患者Ａ〜Ｆの眼に滴下し、約１５分後結膜反応の有無として半月皮壁、眼瞼皮および球結膜の充血、痒み、流涙等を観察した。

判定は全く充血が認められない場合を「−」、わずかに充血が認められ痒み感のある場合を「±」、球結膜上部または下部の一方に充血の認められる場合を「＋」、球結膜の上部および下部のいずれにも充血の認められる場合を「＋＋」、球結膜全体に充血が認められる場合を「＋＋＋」、さらに眼瞼の浮腫等を認めた場合を「＋＋＋＋」として評価した。その結果を同じく上記表２に示す。

表２に示すように、イオン発生素子を作動させない未処理の場合（すなわち正負両イオンが発生していない状態、未処理スギ抗原性物質）と、正負両イオンの濃度がそれぞれ１０万個／ｃｍ³である雰囲気中で処理した場合（すなわちイオン処理スギ抗原性物質）とを比較すると、花粉症患者Ａ〜Ｆの６名のうち、患者Ａを除く５名において結膜反応性が有意に低下していることが確認された。

＜実施例２＞
本実施例は、ダニ粉塵の抗原性物質を用いて、正負両イオンの作用による抗原性物質の失活を確認したものである。以下、図９〜１０を参照して説明する。

図９は、正イオンと負イオンの作用による抗原性物質を失活させる方法を実行するための装置の概略図である。図１０は、イライザ（ＥＬＩＳＡ）法によるダニ抗原性物質（略称Ｄｅｒｆ）と、患者ａ〜ｒの計１８名の血清ＩｇＥとの反応性評価を示した図である。なお、図９の装置は、図３の装置と同様に、図１のイオン発生素子を備えており、これにより送出される正イオンおよび負イオンの質量スペクトルは、図２に示されたものとなる。

＜抗原性物質を失活させる方法を実行するための装置＞
まず、本実施例において使用する図９に示した装置は、図３に示した装置と同様のものであり（このため、図３と図９において同じ参照符号を付したものは同一部分または相当部分を示す）、ただオゾン濃度を減少させる装備を備えている点のみが異なっている。すなわち、図９の装置においては、一方の脱気口１０２６とネブライザー１０２４がフィルター１０２９を介して接続されている。該フィルター１０２９は、活性炭とモレキュラーシーブを含んでおり、円筒型密閉容器１０２７中で発生したオゾンを除去する作用を有するものである。このため、該円筒型密閉容器１０２７中のオゾン濃度は０．０２５ｐｐｍ以下に維持されている。

この図９に示した装置においては、図３の装置と同様に、抗原性物質１０３８は注入口１０２８から噴霧されて回収容器１０２５まで自然落下する間に正負両イオンに晒されてその作用を受けることになる。

＜ダニ粉塵および抗原性物質＞
抗原性物質としては、ダニ粉塵より抽出した抗原性物質を用いた。ダニ粉塵は一般家庭に存在するものを対象とし、座布団や絨毯からメッシュを取り付けた掃除機を用いて捕集し、その後ふるいにかけて収集した。収集後の保存は−３０℃のフリーザーを用いた。

また、ダニ粉塵より抗原性物質を抽出するために、ダニ粉塵０．１ｇを２０ｍＭのリン酸緩衝溶液（ＰＢＳ、ｐＨ７．４）１５ｍＬ中で、温度４℃の下１６時間攪拌した後、メンブレンフィルター（０．２μｍ）に通したものをダニ抗原性物質とした。なお、このダニ抗原性物質には、さらに抗原性物質であるデルエフ１（Ｄｅｒｆ １）とデルエフ２（Ｄｅｒｆ ２）が含まれている。

＜フォーリンローリー（Ｆｏｌｉｎ−Ｌｏｗｒｙ）法によるタンパク質の定量＞
ダニ抗原性物質を含んだ溶液０．２ｍｌと下記Ｄ液１ｍｌとを混合し、１０分間放置した。つぎに、下記Ａ液を０．１ｍｌ加え３０分間放置した後７５０ｎｍで吸光度を測定した。また、牛血清タンパク質（ＢＳＡ）で標準系列を作成し、同手順で検量線を作成することにより、ダニ抗原性物質のタンパク質の量をＢＳＡ換算量として定量した。その結果、そのタンパク質の濃度は９４．１μｇ／ｍｌであった。なお、ここで用いた各試薬は、以下の通りである。
（試薬）
Ａ液；フェノール試薬を酸として１Ｎとしたもの。
Ｂ液；２％Ｎａ₂ＣＯ₃＋０．１ＮのＮａＯＨ
Ｃ液；０．５％ＣｕＳＯ₄・５Ｈ₂Ｏ＋１％クエン酸ナトリウム
Ｄ液；Ｂ液：Ｃ液＝５０：１（ｖ／ｖ）
＜抗原性物質の噴霧と回収＞
このようにして得られた抗原性物質であるダニ抗原性物質を含んだ溶液（タンパク質濃度９４．１μｇ／ｍｌ）をネブライザー１０２４に８ｍｌ入れ、図９に示した装置の抗原性物質溶液噴霧用の注入口１０２８に接続した。一方、噴霧された抗原性物質を含んだ溶液を回収できるように、回収容器１０２５を円筒型密閉容器１０２７の底に設置した。

ネブライザーは、エアコンプレッサーと接続して、圧縮空気（流量５Ｌ／分）により注入口１０２８から抗原性物質１０３８を噴霧した。噴霧量は８．０ｍｌ（噴霧時間９０分）とした。９０分後円筒型密閉容器１０２７の底に沈降した抗原性物質を回収容器１０２５で回収した。なお、噴霧された抗原性物質１０３８は、円筒型密閉容器１０２７中を自然落下するのに約９０秒間かかった。

なお、このような抗原性物質１０３８の噴霧と回収は、イオン発生素子１０２１を作動させる場合（すなわちイオン処理の場合）と作動させない場合（すなわち未処理の場合）の２通りについて行なった。

イオン発生素子１０２１を作動させて抗原性物質に対して正イオンと負イオンとを作用させる場合、その雰囲気中（すなわち円筒型密閉容器１０２７中）の正負両イオンの濃度は、イオン発生素子１０２１を設置した円筒型密閉容器１０２７の抗原性物質溶液噴霧用の注入口１０２８よりエアコンプレッサーにより流量５Ｌ／分で空気を流し、抗原性物質溶液の回収容器１０２５にアンデス電気製空気イオンカウンター（品番ＩＴＣ−２０１Ａ）を設置し、正負両イオンの濃度を測定することにより求めた。その結果、該イオン発生素子１０２１に電極間のピークトゥーピーク（ｐｅａｋ ｔｏ ｐｅａｋ）電圧として３．３ｋＶ〜３．７ｋＶの電圧をそれぞれ印加した場合、円筒型密閉容器１０２７内の正負両イオンの濃度はそれぞれ１０万個／ｃｍ³となる雰囲気であった。なお、他の空間雰囲気は温度２５℃、相対湿度６０％ＲＨであった。また、図２に示したように送出された正イオンはＨ₃Ｏ⁺（Ｈ₂Ｏ）_n（ｎは０または自然数）、負イオンはＯ₂ ^-（Ｈ₂Ｏ）_m（ｍは０または自然数）であり、これらの正負両イオンは前記の化学反応（１）〜（２）により過酸化水素Ｈ₂Ｏ₂、二酸化水素ＨＯ₂およびヒドロキシラジカル・ＯＨを生成しているものと推定された。

＜イライザ（ＥＬＩＳＡ）法による反応性の評価＞
次いで、このようにして捕集されたダニ抗原性物質と、ダニアレルギーの患者ａ〜ｒより採取した血清ＩｇＥ抗体との反応性をイライザ（ＥＬＩＳＡ：ｅｎｚｙｍｅ−ｌｉｋｅｄ ｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔ ａｓｓａｙ）法で測定した。なお、抗原性物質については、上記の通り正イオンと負イオンとを作用させたもの（イオン処理ダニ抗原性物質）と未処理のもの（未処理ダニ抗原性物質）とを比較することにより該反応性を評価した。

具体的には、イライザ用９６穴プレート（ＥＬＩＳＡ用９６−ｗｅｌｌ ｐｌａｔｅ）に炭酸水素ナトリウム緩衝溶液（Ｂｉｃａｒｂｏｎａｔｅ ｂｕｆｆｅｒ）で０．１μｇ／ｍｌに希釈したイオン処理ダニ抗原性物質と未処理ダニ抗原性物質とをウェル（ｗｅｌｌ）に５０μｌアプライした。同時にヒトＩｇＥ標準（ｈｕｍａｎ ＩｇＥ ｓｔａｎｄａｒｄ）を炭酸水素ナトリウム緩衝溶液で２００μｇ／ｍｌから２倍希釈を５回繰り返したものをそれぞれ５０μｌづつウェル（ｗｅｌｌ）にアプライし、室温で２時間静置した。洗浄用緩衝溶液（Ｗａｓｈｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒ）でプレートを３回洗浄後、ブロッキング用緩衝溶液（Ｂｌｏｃｋｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒ）を３００μｌアプライし、４℃で一晩静置した。

一晩静置後、プレートを３回洗浄し、（３％スキムミルク＋１％ＢＳＡ）／ＰＢＳＴでダニアレルギーの患者の血清を２０倍希釈し１時間インキュべートしたものをウェル（ｗｅｌｌ）に５０μｌアプライし、４時間静置した。プレートを３回洗浄後、（３％スキムミルク＋１％ＢＳＡ）／ＰＢＳＴで１０００倍希釈したビオチン標識抗ヒトＩｇＥ（Ｂｉｏｔｉｎ−ｌａｂｅｌｅｄ ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎ ＩｇＥ）をウェル（ｗｅｌｌ）に５０μｌアプライし２時間静置した。

該静置後、プレートを４回洗浄し、（３％スキムミルク＋１％ＢＳＡ）／ＰＢＳＴで１０００倍希釈したアルカリフォスファターゼ標識ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎを５０μｌアプライし、室温で１時間静置した。プレートを５回洗浄後、アトフォス（商標）基質緩衝溶液（Ａｔｔｏｐｈｏｓ（商標） ｓｕｂｓｔｒａｔｅ ｂｕｆｆｅｒ）をウェル（ｗｅｌｌ）に５０μｌアプライし、遮光の状態で発色するまで放置した。その蛍光強度を分光光度計（Ｃｙｔｏ（商標）ＦｌｕｏｒＩＩ）で測定した。その結果を図１０に示す。

図１０に示すように、イオン発生素子１０２１を作動させない場合（すなわち正負両イオンが発生せず未処理の状態）と、正負両イオンの濃度がそれぞれ１０万個／ｃｍ³となった場合とにおける、ダニアレルギーの患者の血清ＩｇＥ抗体とダニ抗原性物質との反応性（結合性）は、ダニアレルギーの患者ａ〜ｒの１８人中、全１８人の患者において、前記イオン処理を行なった抗原と、上記患者の血清ＩｇＥ抗体との反応性が著しく低下していることが確認された（蛍光強度が低いほど、反応性が低いことを示している）。なお、ここで用いた各試薬は、以下の通りである。
（試薬）
炭酸水素ナトリウム緩衝溶液；１００ｍＭのＮａＨＣＯ₃（ｐＨ９．２〜９．５）
リン酸緩衝溶液（ＰＢＳ）；４ｇのＮａＣｌ、０．１ｇのＮａ₂ＨＰＯ₄・１２Ｈ₂Ｏ、１．４５ｇのＫＣｌ、１ｇのＫＨ₂ＰＯ₄を蒸留水で５００ｍｌにメスアップ
ＰＢＳＴ；ＰＢＳ＋０．５％ツウィーン２０（Ｔｗｅｅｎ−２０）
ブロッキング用緩衝溶液；ＰＢＳ＋３％スキムミルク＋１％ＢＳＡ
洗浄用緩衝溶液；４３ｇのＮａ₂ＨＰＯ₄・１２Ｈ₂Ｏ、３．６ｇのＮａＨ₂ＰＯ₄、２６３ｇのＮａＣｌ、１５ｍｌのツウィーン２０（Ｔｗｅｅｎ−２０）を蒸留水で３Ｌにメスアップ
＜反応失活率＞
上記のイライザ（ＥＬＩＳＡ）法における患者ａ〜ｒの血清ＩｇＥを抗体として用い、イライザ法によりそれぞれ未処理ダニ抗原性物質とイオン処理ダニ抗原性物質の蛍光強度を求め、そして、この蛍光強度から以下の式（３）に基づいてアレルギー反応の反応失活率を求めた。その結果を以下の表３に示す。

反応失活率％＝（１−Ｅ／Ｆ）×１００・・・（３）
Ｅ：イオン処理ダニ抗原性物質の蛍光強度
Ｆ：未処理ダニ抗原性物質の蛍光強度
表３より明らかな通り、患者ａ〜ｒの平均反応失活率は５７．８％であり、ダニアレルギー疾患を効果的に抑制することが期待できる。

＜実施例３＞
本実施例は、ダニ粉塵を直接用いて、正負両イオンの作用によるダニ粉塵（中に含まれる抗原性物質）の失活を確認したものである。以下図１１〜１３を参照して説明する。なお、ダニ粉塵に含まれるダニ抗原性物質中のタンパク質量のフォーリンローリー法による定量は、実施例２と同じ操作により行なった。

＜ダニ粉塵の拡散と回収＞
ダニ粉塵の拡散と回収は、図１１に示した装置を用いて行なった（なお、図１１中他の図と同一の参照付号を付したものは、同一部分または相当部分を示す）。すなわち、該装置は、送風機１０３３と作業用の窓１０３４とを備えた密閉状態のボックス１０３０からなり、該送風機１０３３の空気噴出し口のところにはイオン発生素子１０２１が付設されている。

まず、イオン発生素子１０２１を作動させるとともに送風機１０３３も作動させた。その条件は、正負両イオンの空間平均濃度がそれぞれ３０００個／ｃｍ³となるように該イオン発生素子１０２１の電極間のピークトゥーピーク（ｐｅａｋ ｔｏ ｐｅａｋ）電圧を９０Ｖに調節し、また該送風機１０３３のファン風量を２ｍ³／分とした。

なお、該ボックス１０３０中の正負両イオンの空間平均濃度は、該ボックスの中心付近の互いに５０ｃｍ以上離れた５つのポイントにおける正負両イオンそれぞれの濃度をアンデス電気製空気イオンカウンター（品番ＩＴＣ−２０１Ａ）を用いて測定し、その平均が正負両イオンそれぞれについて３０００個／ｃｍ³となるようにした。また、該ボックス１０３０中の空間雰囲気は温度２５℃、相対湿度６０％ＲＨであった。また、図２に示したように送出された正イオンはＨ₃Ｏ⁺（Ｈ₂Ｏ）_n（ｎは０または自然数）、負イオンはＯ₂ ^-（Ｈ₂Ｏ）_m（ｍは０または自然数）であり、これらの正負両イオンは前記の化学反応（１）〜（２）により過酸化水素Ｈ₂Ｏ₂、二酸化水素ＨＯ₂およびヒドロキシラジカル・ＯＨを生成しているものと推定された。

次に、一旦該イオン発生素子１０２１と該送風機１０３３を停止させた。その後、該ボックス１０３０において、ダニ粉塵（２ｇ）を担持させた物品１０３２を配置させた後、再度上記と同一の条件でイオン発生素子１０２１と送風機１０３３を作動させた。

続いて、窓１０３４を介して拡散具１０３５を用いて物品１０３２を叩く等してダニ粉塵１０３１を拡散（散布、浮遊）させた。ここで、物品１０３２としては、たとえば布団、毛布、絨毯、畳、枕、座布団、クッション等を挙げることができるが、本実施例では座布団を用いた。また、拡散具１０３５としては、たとえば布団たたき、はたき、ほうき等を挙げることができるが、本実施例では布団たたきを用いた。また、拡散させる操作としては、物品１０３２を叩く以外にも振るったり落下させたりする方法を採用することができる。本実施例では、拡散具１０３５として布団たたきを用いて、５分間で合計２０回、物品１０３２である座布団を強く叩いた。

次いで、座布団を叩き終わったところで、該ボックス１０３０の上部に付設されている空気吸引ポンプ１０３７を作動させ、３０分間ボックス１０３０中の粉塵を回収フィルター１０３６により吸引捕集した。

続いて、３０分間経過後、空気吸引ポンプ１０３７を停止させ、再度物品１０３２である座布団を拡散具１０３５である布団たたきにより５分かけて２０回叩いた。その後、再度空気吸引ポンプ１０３７を作動させ、３０分間ボックス１０３０中の粉塵を回収フィルター１０３６により吸引捕集した。

上記のようにして、２回の吸引捕集により回収フィルター１０３６により捕集された粉塵量を秤量すると０．７ｍｇであった。

なお、以上の操作は、イオン発生素子１０２１を作動させてダニ粉塵に対して正イオンと負イオンを作用させたものであるが（すなわちこのように処理されたものをイオン処理ダニ粉塵と呼び、それから抽出されたものをイオン処理ダニ抗原性物質と呼ぶものとする）、比較のためにイオン発生素子１０２１を作動させないことを除きその他は全て上記と同じ操作を行なうことによりダニ粉塵を捕集した（すなわちこの比較のものを未処理ダニ粉塵と呼び、それから抽出されたものを未処理ダニ抗原性物質と呼ぶものとする）。

また、このような操作に用いられる装置としては、上記のような図１１に示した装置以外にも種々の装置を用いることができ、たとえば、図１２（図１１と同一の参照符号は同一部分または相当部分を示す）に示したように、図１１の空気吸引ポンプ１０３７と回収フィルター１０３６を付設する代わりに回収容器１０２５を設置し、自然落下してくる粉塵を捕集するようにしてもよい。

＜イライザインヒビッション（ＥＬＩＳＡ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ）法による評価＞
イオン処理ダニ抗原性物質および未処理ダニ抗原性物質と、ダニアレルギー患者の血清ＩｇＥとの反応性を定量的に評価するためにイライザインヒビッション（ＥＬＩＳＡ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ：ｅｎｚｙｍｅ−ｌｉｋｅｄ ｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔ ａｓｓａｙ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ）法により確認した。

具体的には、拡散後回収したダニ粉塵からダニ抗原性物質を抽出し、遠心分離機（Ｃｅｎｔｒｉｐｒｅｐ ＹＭ−１０）に入れ、２５００ｒｐｍで遠心濃縮した。さらに、この濃縮液を遠心分離機（ＵＬＴＲＡ ＦＬＥＥ−ＭＣ）に入れ７０００ｒｐｍで遠心濃縮した。濃縮したイオン処理ダニ抗原性物質および未処理ダニ抗原性物質をタンパク質濃度７．６６μｇ／ｍｌから５倍希釈を１１回繰り返し行なった。希釈したそれぞれの抗原性物質５０μｌと１０倍希釈した患者血清ＩｇＥ５０μｌとを混合し４℃で一晩プレインキュベートした。

イライザ用９６穴プレート（ＥＬＩＳＡ用９６−ｗｅｌｌ ｐｌａｔｅ）に炭酸水素ナトリウム緩衝溶液（Ｂｉｃａｒｂｏｎａｔｅ ｂｕｆｆｅｒ）で１μｇ／ｍｌに希釈したダニ抗原性物質（噴霧も行なっていないもの）をウェル（ｗｅｌｌ）に５０μｌアプライし２時間静置した。洗浄用緩衝溶液（Ｗａｓｈｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒ）でプレートを３回洗浄後、ブロッキング用緩衝溶液（Ｂｌｏｃｋｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒ）を３００μｌアプライし、４℃で一晩静置した。

一晩静置後、プレートを３回洗浄し、プレインキュベートしていたサンプルをそれぞれ５０μｌウェルにアプライし、４時間静置した。プレートを３回洗浄後、（３％スキムミルク＋１％ＢＳＡ）／ＰＢＳＴで１０００倍希釈したビオチン標識抗ヒトＩｇＥ（Ｂｉｏｔｉｎ−ｌａｂｅｌｅｄ ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎ ＩｇＥ）をウェル（ｗｅｌｌ）に５０μｌアプライし２．５時間静置した。

該静置後、プレートを４回洗浄し、（３％スキムミルク＋１％ＢＳＡ）／ＰＢＳＴで１０００倍希釈したアルカリフォスファターゼ標識ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎを５０μｌアプライし、室温で１．５時間静置した。プレートを５回洗浄後、アトフォス（商標）基質緩衝溶液（Ａｔｔｏｐｈｏｓ（商標） ｓｕｂｓｔｒａｔｅ ｂｕｆｆｅｒ）をウェル（ｗｅｌｌ）に５０μｌアプライし、遮光の状態で発色するまで放置した。その蛍光強度を分光光度計（Ｃｙｔｏ（商標）ＦｌｕｏｒＩＩ）で測定した。なお、試薬は、特に断りのない限り上記と同じものを各用いた。

イオン発生素子を作動させない未処理の場合（すなわち未処理ダニ抗原性物質）と、該素子を作動させて正負両イオンそれぞれの空間平均濃度が３０００個／ｃｍ³となる条件下でイオン処理した場合（すなわちイオン処理ダニ抗原性物質）についての、ダニアレルギー患者の血清ＩｇＥ抗体との反応性（結合性）を調べた。その結果を図１３に示す。

図１３に示したように、未処理ダニ抗原性物質は、５０％阻害（ダニ抗原性物質の血清ＩｇＥ抗体に対する反応性が５０％に低下すること）に必要なダニ抗原性物質量が５００ｎｇ／ｍｌであるのに対し、イオン処理ダニ抗原性物質は、５０％阻害に必要なダニ抗原性物質量が１９００ｎｇ／ｍｌとなり、反応失活率は７４％であることを確認した。なお、ここでいう反応失活率は、上記式（１）と同様の式により求めた。

このようにして、正負両イオンの作用は、抗原性物質に対して直接的に作用するばかりではなく、抗原性物質を含んだダニ粉塵に対しても及ぶことが確認された。しかも、正負両イオンそれぞれの空間平均濃度が３０００個／ｃｍ³となる場合において、抗原性物質を失活させるという効果が発揮されることを確認することができた。

＜実施例４＞
実施例３において、正負両イオンそれぞれの空間平均濃度を１００００個／ｃｍ³とすること（該イオン発生素子１０２１の電極間のピークトゥーピーク（ｐｅａｋ ｔｏ ｐｅａｋ）電圧を１００Ｖとし、該送風機１０３３のファン風量を８ｍ³／分とすること）を除き、その他は実施例３と全て同様にしてダニ粉塵に対する正負両イオンの作用を確認した。その結果を図１４に示す。

図１４に示したように、未処理ダニ抗原性物質は、６０％阻害（ダニ抗原性物質の血清ＩｇＥ抗体に対する反応性が６０％に低下すること）に必要なダニ抗原性物質量が３４５ｎｇ／ｍｌであるのに対し、イオン処理ダニ抗原性物質は、６０％阻害に必要なダニ抗原性物質量が３８２３ｎｇ／ｍｌとなり、反応失活率は９１％であることを確認した。なお、ここでいう反応失活率は、上記同様に式（１）により求めた。

このようにして、正負両イオンそれぞれの空間平均濃度が１００００個／ｃｍ³となる場合において、抗原性物質を失活させるという効果が発揮されることを確認することができた。

また、図１３と図１４を比較すると、５０％阻害と６０％阻害の差異は存するものの、図１３より判断して５０％阻害の場合と６０％阻害の場合とにおける反応失活率はほぼ同じと考えられるため、空間平均濃度が高くなる程反応失活率が高くなることが認められる。

このように本発明の方法によると、正負両イオンを作用させることにより抗原性物質を有効に失活させることができるため、この種の抗原性物質が原因となる花粉症やダニアレルギーなどの各種アレルギー疾患を有効に低減することが期待できる。

また、本発明の方法または装置を空気調節装置の内部または外部に用いることにより、抗原性物質の失活した空気の送風や、上記イオン放出による空中に浮遊する抗原性物質の直接失活が可能になる。

上記各実施の形態では、花粉およびダニに含まれるアレルゲンに特に注目して説明したが、花粉やダニ以外にカビなどに含まれるアレルゲンに対しても、本発明に基づく空気浄化装置は、効果を発揮すると考えられる。

今回開示された実施の形態および実施例はすべての点で例示であって制限的なものではないと考えられるべきである。本発明の範囲は上記した説明ではなくて特許請求の範囲によって示され、特許請求の範囲と均等の意味および範囲内でのすべての変更が含まれることが意図される。

イオン発生素子の構造の一例を示す概略図である。 イオン発生素子から生成される正イオンおよび負イオンの質量スペクトルを示した図である。 抗原性物質を失活させる方法を実行するための装置の一例を示す概略図である。 抗原性物質（スギ抗原性物質）をイオン処理した場合と未処理の場合とについて、花粉症患者１９〜４０の血清ＩｇＥ抗体とのアレルギー反応の関係を示した図である。 抗原性物質（スギ抗原性物質）をイオン処理した場合と未処理の場合とについて、花粉症患者４１〜６０の血清ＩｇＥ抗体とのアレルギー反応の関係を示した図である。 抗原性物質をイオン処理した場合と未処理の場合とについて、Ｃｒｙ ｊ １およびＣｒｙ ｊ ２とそのモノクロ−ナル抗体との反応性の関係を示した図である。 イライザインヒビッション（ＥＬＩＳＡ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ）法により、抗原性物質（スギ抗原性物質）をイオン処理した場合と未処理の場合とについて、抗原性物質と花粉症患者の血清ＩｇＥ抗体のアレルギー反応性の関係を示した図である。 正負両イオンのそれぞれの濃度と反応失活率との関係を示した図である。 抗原性物質を失活させる方法を実行するための装置の一例であって、オゾン濃度を減少させる装備を備えている装置を示す概略図である。 抗原性物質（ダニ抗原性物質）をイオン処理した場合と未処理の場合とについて、ダニアレルギー患者ａ〜ｒの血清ＩｇＥ抗体とのアレルギー反応の関係を示した図である。 抗原性物質を失活させる方法を実行するための装置の一例であって、送風機と回収フィルターとを備えている装置を示す概略図である。 抗原性物質を失活させる方法を実行するための装置の一例であって、送風機と回収容器とを備えている装置を示す概略図である。 正負両イオンの空間平均濃度（３０００個／ｃｍ³）の下、イライザインヒビッション（ＥＬＩＳＡ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ）法により、ダニ粉塵をイオン処理した場合と未処理の場合とについて、抗原性物質とダニアレルギー患者の血清ＩｇＥ抗体のアレルギー反応性の関係を示した図である。 正負両イオンの空間平均濃度（１００００個／ｃｍ³）の下、イライザインヒビッション（ＥＬＩＳＡ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ）法により、ダニ粉塵をイオン処理した場合と未処理の場合とについて、抗原性物質とダニアレルギー患者の血清ＩｇＥ抗体のアレルギー反応性の関係を示した図である。

符号の説明

１００１ 電源、１００２，１００４ 電極、１００３ 誘電体、１００４ 接地電極、１００５ プラズマ領域、１０２１ イオン発生素子、１０２２ 正イオン、１０２３ 負イオン、１０２４ ネブライザー、１０２５ 回収容器、１０２６ 脱気口、１０２７ 円筒型密閉容器、１０２８ 注入口、１０２９ フィルター、１０３０ ボックス、１０３１ ダニ粉塵、１０３２ 物品、１０３３ 送風機、１０３４ 窓、１０３５ 拡散具、１０３６ 回収フィルター、１０３７ 空気吸引ポンプ、１０３８ 抗原性物質。

Claims (18)

1. 抗原性物質に対して正イオンと負イオンとを作用させることにより、抗原性物質を失活させる方法。
2. 正負両イオンの濃度が、それぞれ略５万個／ｃｍ³以上となる雰囲気中において、正イオンと負イオンとを作用させることを特徴とする、請求項１記載の抗原性物質を失活させる方法。
3. 正負両イオンの濃度が、それぞれ略１０万個／ｃｍ³以上となる雰囲気中において、正イオンと負イオンとを作用させることを特徴とする、請求項１記載の抗原性物質を失活させる方法。
4. 正負両イオンの濃度が、それぞれ略３０００個／ｃｍ³以上となる空間平均濃度において、正イオンと負イオンとを作用させることを特徴とする、請求項１記載の抗原性物質を失活させる方法。
5. 正負両イオンの濃度が、それぞれ略１００００個／ｃｍ³以上となる空間平均濃度において、正イオンと負イオンとを作用させることを特徴とする、請求項１記載の抗原性物質を失活させる方法。
6. 正イオンがＨ₃Ｏ⁺（Ｈ₂Ｏ）_n（ｎは０または自然数）であり、負イオンがＯ₂ ^-（Ｈ₂Ｏ）_m（ｍは０または自然数）であることを特徴とする、請求項１〜５のいずれかに記載の抗原性物質を失活させる方法。
7. 正イオンと負イオンとが、化学反応することによって過酸化水素Ｈ₂Ｏ₂、二酸化水素ＨＯ₂またはヒドロキシラジカル・ＯＨの少なくとも１種を生成することを特徴とする、請求項１〜６のいずれかに記載の抗原性物質を失活させる方法。
8. 抗原性物質が、スギ抗原性物質であることを特徴とする、請求項１記載の抗原性物質を失活させる方法。
9. 抗原性物質が、ダニ抗原性物質またはダニ粉塵であることを特徴とする、請求項１記載の抗原性物質を失活させる方法。
10. 抗原性物質に対して正イオンと負イオンとを作用させるために、正イオンと負イオンとを空気中に送出する機構を有することを特徴とする、抗原性物質を失活させる装置。
11. 過酸化水素Ｈ₂Ｏ₂、二酸化水素ＨＯ₂またはヒドロキシラジカル・ＯＨの少なくとも１種を生成することを特徴とする、請求項１０記載の抗原性物質を失活させる装置。
12. 正負両イオンの濃度が、それぞれ略５万個／ｃｍ³以上となる雰囲気を提供するように、正イオンと負イオンとを空気中に送出することを特徴とする、請求項１０または１１記載の抗原性物質を失活させる装置。
13. 正負両イオンの濃度が、それぞれ略１０万個／ｃｍ³以上となる雰囲気を提供するように、正イオンと負イオンとを空気中に送出することを特徴とする、請求項１０または１１記載の抗原性物質を失活させる装置。
14. 正負両イオンの濃度が、それぞれ略３０００個／ｃｍ³以上となる空間平均濃度を提供するように、正イオンと負イオンとを空気中に送出することを特徴とする、請求項１０または１１記載の抗原性物質を失活させる装置。
15. 正負両イオンの濃度が、それぞれ略１００００個／ｃｍ³以上となる空間平均濃度を提供するように、正イオンと負イオンとを空気中に送出することを特徴とする、請求項１０または１１記載の抗原性物質を失活させる装置。
16. 抗原性物質が、スギ抗原性物質であることを特徴とする、請求項１０記載の抗原性物質を失活させる装置。
17. 抗原性物質が、ダニ抗原性物質またはダニ粉塵であることを特徴とする、請求項１０記載の抗原性物質を失活させる装置。
18. 空気調節機構を備えていることを特徴とする、請求項１０〜１７のいずれかに記載の抗原性物質を失活させる装置。

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