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JP2004037120A - Composition analysis method of organic film by time-of-flight secondary ion mass spectrometry - Google Patents

Composition analysis method of organic film by time-of-flight secondary ion mass spectrometry Download PDF

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JP2004037120A
JP2004037120A JP2002191354A JP2002191354A JP2004037120A JP 2004037120 A JP2004037120 A JP 2004037120A JP 2002191354 A JP2002191354 A JP 2002191354A JP 2002191354 A JP2002191354 A JP 2002191354A JP 2004037120 A JP2004037120 A JP 2004037120A
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JP
Japan
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secondary ion
organic
measured
ion mass
substance
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Application number
JP2002191354A
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Japanese (ja)
Inventor
Hiroyuki Hashimoto
橋本 浩行
Hiromitsu Takase
高瀬 博光
Hisashi Okamoto
岡本 尚志
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Canon Inc
Original Assignee
Canon Inc
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Abstract

【課題】膜状有機物質が基板上にマトリクス状に配置された有機デバイス(バイオチップなど)中の有機膜組成を、飛行時間型二次イオン質量分析(TOF−SIMS)法により、高い定量精度、また、再現性よく分析する方法の提供。
【解決手段】被測定物と、その外部にある標準物質とについて、TOF−SIMS装置の測定条件を同一に設定して、それぞれ二次イオン質量スペクトルを測定し、前記標準物質において測定される二次イオン質量スペクトルに基づく、「質量数 対 二次イオン強度」の関係から検出器効率の補正を行う方法を採用すると、検出系の経時変化に伴う絶対的な感度変動の影響を排除でき、高い定量精度、と再現性を達成できる。
【選択図】  なし
Highly accurate quantitative analysis of an organic film composition in an organic device (such as a biochip) in which a film-like organic substance is arranged in a matrix on a substrate by time-of-flight secondary ion mass spectrometry (TOF-SIMS). And a method of analyzing with good reproducibility.
The measurement conditions of a TOF-SIMS apparatus are set to be the same for an object to be measured and a standard substance outside the same, and a secondary ion mass spectrum is measured, respectively. By adopting a method of correcting the detector efficiency based on the relationship between “mass number vs. secondary ion intensity” based on the secondary ion mass spectrum, it is possible to eliminate the influence of the absolute sensitivity fluctuation due to the aging of the detection system, Quantitative accuracy and reproducibility can be achieved.
[Selection diagram] None

Description

【0001】
【発明の属する技術分野】
本発明は、有機物質からなる膜が基板上にマトリクス状に配置されている、有機デバイス中の該有機膜の組成分析方法に関し、特には、飛行時間型二次イオン質量分析法(Time−of−Flight Secondary Ion Mass Spectrometry、以下、TOF−SIMSと略す)を利用して、有機物質として、複数の生体関連物質が基板上にマトリクス状に配置されている、所謂、バイオチップ表面の各マトリクスの生体関連物質について組成分析を行う方法に関する。
【0002】
【従来の技術】
DNAチップ、プロテインチップ等、各種のプローブ分子を基板上にマトリクス状に配置したもの、所謂、バイオチップは、ゲノム解析、あるいは、遺伝子の発現解析などの目的に利用されるようななってきた。また、それらバイオチップを利用した解析の結果は、癌、遺伝病、生活習慣病、感染症等の診断、予後予想、治療方針の決定等に重要な指標を提供するものと期待されている。
【0003】
バイオチップの作製方法には、幾つかの手法が知られている。DNAチップを例にとって説明すると、フォトリソグラフィーを用いて、直接基板上にDNAプローブを逐次的に合成していく方法(米国特許第5405783公報等)、あるいは、予め合成したDNA、または、cDNA(コンプリメンタリーDNA)を、基板上に供給し結合する方法(米国特許第5601980公報、特開平11‐187900号公報、Science Vol.270, 467, 1995等)が代表的なDNAチップの作製法である。
【0004】
一般的には、前記二種の方法によってバイオチップは作製されるが、作製されたバイオチップを先に述べた用途に使用しようとする場合、解析の信頼性、すなわち、定量性、再現性を保証するためには、各マトリクスに存在するプローブ、すなわち、プローブに利用する生体関連物質の量、つまり、密度を知ることが重要である。また、実際にどのようなマトリクス形状(形状、サイズ、状態)で存在するかを知ること(イメージング)も、やはり、定量性、再現性の確保といった見地から重要である。しかし、バイオチップ上のプローブは、原理的には単分子膜レベルとされており、基本的に、マトリクス位置の顕影化を含めた生体関連物質の分析には、きわめて高感度な表面解析技術が必要となる。
【0005】
前記の要件を満足する高感度な表面解析技術の一つとして、プローブ自体にアイソトープラベルを施す方法が知られてはいるが、ラベル化の手法が煩雑であり、利用されるアイソトープラベル自体、被爆源となる危険性を有し、そのため、特殊な施設、装置が必要等の理由で、汎用性の観点で難点を有している。
【0006】
別の方法として、プローブを蛍光標識する方法、または、プローブと特異的に結合する物質に蛍光標識を施し、これとプローブを結合させる方法、すなわち、DNAチップにおいては、蛍光ハイブリダイゼーション法が考えられる。しかしながら、標識に利用する蛍光色素の安定性、蛍光クエンチング、あるいは、蛍光色素の基板表面への非特異的吸着、さらには、特異的結合(ハイブリダイゼーション)の定量性(安定性、再現性)等、高い定量性を達成する上では、種々の問題が存在しており、プローブ自体の存在量を定量的に把握するには、なお課題が残る。
【0007】
その他、一般的な検出対象に利用可能な高感度表面分析手段として、FT−IR(フーリエ変換赤外分光)法を用いたATR法、XPS(X線光電子分光)法等があるが、いずれも、生体関連物質である、バイオチップのプローブの定量的分析、あるいは、イメージングには十分な感度を有しているとはいえない。特に、バイオチップの作製用基板として、一般的なガラスを用いる場合には、例えば、FT−IR(ATR)法では、基板のガラス自体に起因する吸収の影響、また、XPS法では、ガラス自体は絶縁性材料であるため、チャージアップの影響等があり、有効な分析手段とはいえない。
【0008】
さらに高感度表面分析手段として、飛行時間型二次イオン質量分析法(TOF−SIMS)が知られている。
これに対して、同じく二次イオン質量分析法の一手法として知られている、飛行時間型二次イオン質量分析(TOF−SIMS)法は、固体試料の最表面にどのような原子または分子が存在するかを調べるための分析方法であり、下記する特長を持つ。ppmオーダー、すなわち、10atoms/cm(最表面1原子層の1/10に相当する量)の極微量成分の検出能があること、有機物、無機物のどちらにも適用できること、表面に存在するすべて成分の平面分布を測定可能なことなどの利点を有している。
【0009】
以下に、この飛行時間型二次イオン質量分析法の原理を簡単に説明する。
【0010】
高真空中において、高速のイオンビーム(一次イオン)を固体試料表面に照射すると、スパッタリング現象によって表面の構成成分が真空中に放出される。この過程で発生する正または負の電荷を帯びたイオン(二次イオン)を、電場によって一方向に収束し、一定距離だけ離れた位置で検出する。スパッタの際には、試料表面の組成に応じて、様々な質量をもった二次イオンが発生するが、一定の電界中では、質量の軽いイオンほど早く、反対に重いイオンほど遅い速度で飛行する。そのため、二次イオンが発生してから、検出器に到達するまでの時間(飛行時間)を測定することで、発生した二次イオンの質量を分析することができる。
【0011】
一方、従来のダイナミック二次イオン質量分析法(Dynamic SIMS)法では、イオン化の際、有機化合物は小さいフラグメントイオンまたは粒子にまで分解してしまうため、質量スペクトルから得られる化学構造情報、例えば、質量範囲は限定されるのに対し、TOF−SIMS法では、一次イオン照射量が著しく少ないため、有機化合物は化学構造を保った状態でイオン化され、幅の広い質量範囲で測定される質量スペクトルから有機化合物の構造をより直接的に知ることができる。加えて、固体試料表面の最も外側で発生した二次イオンのみが、真空中へ放出されるので、試料の最表面 (深さ数Å程度)の情報を、選択的に得ることができる。また、イオンを検出する方法は、電子や光を検出する方法と比べて感度がよいため、TOF−SIMS法では、表面に存在するppmオーダーの微量成分を検出することができる。さらに、TOF−SIMS法では、一次イオンビームを走査することによって、試料表面のイオン像(マッピング)を測定することもできる。
【0012】
TOF−SIMSを用いたDNAの測定例の報告としては、J.C.Feldnerらによる、PNAに対するDNAのハイブリダイゼーションの評価(SIMS XIII国際会議予稿集、2001年11月11日〜16日、奈良)などがある。
【0013】
さらには、TOF−SIMS法を用いた定量分析の試みとしては、異なる濃度の標準溶液を清浄なシリコン基板上に塗布、乾燥後、TOF−SIMS法で基板表面を測定し、二次イオンピーク強度から検量線を作成した上で、被分析試料の二次イオンピーク強度と比較する方法(C.M. John et al., SIMS VIII, p657, Wiley and Sons, 1992)や、シリコン基板上に微量金属元素をスピンコートした全反射蛍光X線分析用の標準試料を用いて、定量の基準とする方法(P. Lazzeri et al., Surface and Interface Analysis, Vol. 29, 798 (2000))などが知られている。
【0014】
【発明が解決しようとする課題】
しかしながら、従来のTOF−SIMS法による定量分析には、以下のような改善の余地があった。
【0015】
まず、一般的な問題点として、TOF−SIMS装置の一次イオン電流、二次イオン引き出し電圧などの測定条件を一定に設定した際、検出器の劣化やフライトチューブ内の二次イオンの透過率低下など、検出系の経時変化に起因する感度変動を補正することはできない。また、装置によっては、上記検出系の経時変化に伴う感度変動に関して、自動的に、または半自動的に補正する機能を具えた装置もあるものの、その補正は必ずしも完全なものではなく、高い信頼性には欠けている。従って、濃度が既知の標準試料を用いて、感度校正を行った上で、定量分析を行うのが一般的である。
【0016】
しかしながら、標準試料を用いた感度校正を利用する、TOF−SIMS法による定量分析にも、次のような問題点があった。
【0017】
例えば、Johnらが報告した、異なる濃度の標準溶液を清浄なシリコン基板上に塗布、乾燥後、TOF−SIMS法で前記標準試料を測定し、二次イオンピーク強度から検量線を得た上で、被分析試料の二次イオンピーク強度と比較する方法では、定量精度を向上させるためには、該標準溶液を毎回調製する必要があり、作業上の煩雑さがあるという問題点があった。つまり、上記シリコン基板上の標準試料も、一度作製した後、時間とともにハイドロカーボン等(コンタミネーション)が堆積したり、標準物質自体が化学変化したりするため、同一の標準試料を継続して使用することは、高い信頼性を達成する際、問題を有している。また、P. Lazzeriらが報告した、シリコン基板上に微量金属元素をスピンコートした全反射蛍光X線分析用の標準試料を利用して、検量線の作成、感度校正に用いる方法においても、標準試料を長期間保存する間に、同様に表面汚染や酸化などを生じることがあり、高い信頼性を達成する際、問題を有している。さらには、通常、該全反射蛍光X線分析用の標準試料は導電性があり、導電性の標準試料に対するTOF−SIMS測定条件と、導電性に乏しい有機膜に対する測定条件とは、一般に異なる(例えば、帯電中和用の使用の有無など)。従って、この測定条件の差異に起因して、場合によっては、定量誤差が生じてしまうという問題点もあった。
【0018】
本発明は、前記の課題を解決するもので、本発明の目的は、膜状の有機物質が基板上にマトリクス状に配置されている有機デバイス(バイオチップなど)中の該有機膜の組成を、TOF−SIMS法により、高い定量精度、また、再現性よく分析する方法を提供することにある。
【0019】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、前記の課題を解決すべく鋭意研究を進めたところ、検出系の経時変化に伴う感度変動を考慮に入れ、高い定量精度、また、再現性よくTOF−SIMS法による分析を行う上では、TOF−SIMS装置において、「質量数対 二次イオン強度」の関係で示される、検出器系の検出効率の二次イオン質量依存性を、その都度較正することが有効であることを見出した。その検出器効率の補正手段として、被測定物と、その外部にある標準物質とについて、飛行時間型二次イオン質量分析装置の測定条件を同一に設定して、それぞれ二次イオン質量スペクトルを測定し、前記標準物質において測定される二次イオン質量スペクトルに基づく、「質量数 対 二次イオン強度」の関係から検出器効率の補正を行う方法を採用すると、検出系の経時変化に伴う絶対的な感度変動の影響を排除でき、高い定量精度、と再現性を達成できることを確認し、これらの知見に基づき、本発明者らは、本発明を完成するに至った。
【0020】
すなわち、本発明にかかる有機膜の組成分析方法は、
有機デバイス上の有機物質からなる膜の組成を飛行時間型二次イオン質量分析法により分析する方法であって、
被測定物の有機物質からなる膜に関して、飛行時間型二次イオン質量分析法によりその組成を定量する際、
標準物質を、前記被測定物の外部に設け、
被測定物と、その外部にある標準物質とについて、飛行時間型二次イオン質量分析装置の測定条件を同一に設定して、それぞれ二次イオン質量スペクトルを測定し、
前記標準物質において測定される二次イオン質量スペクトルに基づく、「質量数 対 二次イオン強度」の関係から検出器効率の補正を行い、
その補正された検出器効率により、前記有機物質からなる膜の二次イオン質量スペクトルの各二次イオン強度測定値を規格化較正し、その規格化較正後の二次イオン強度により、前記有機物質からなる膜の組成を定量的に分析することを特徴とする有機膜の組成分析方法である。
【0021】
この本発明の方法は、被測定物の前記有機物質からなる膜は、該有機物質からなる単分子膜である際に好適に利用できる。さらに、前記有機デバイスは、例えば、前記有機物質からなる膜として、複数の生体関連物質が基板上にマトリクス状に配置されているバイオチップである場合、本発明の方法はより好ましいものとなる。
【0022】
一方、本発明の方法においては、前記標準物質として、数平均分子量が1000〜100,0000の範囲にある高分子を選択することが好ましい。その際、前記高分子は、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリスチレン、ポリエチレンテレフタレート、ナイロン、ポリカーボネート、ポリ塩化ビニル、ポリブテン、ポリアクリロニトリルからなる群より選択することがより好ましい。
【0023】
本発明の方法において、前記検出器効率の補正工程は、
外部に設ける前記標準物質の二次イオン質量スペクトル中に出現する、二点若しくは三点以上の質量数に対応する二次イオンピーク強度を用いて、「質量数 対
二次イオン強度」の関係を示す検量線を作成し、
該検量線を用いて、該飛行時間型二次イオン質量分析装置の検出器による二次イオンの検出効率を補正する工程であることがより好ましい。
【0024】
本発明の方法を利用する際、有機デバイス上に存在している、前記有機物質かららなる膜は、
直径が1μm〜1mmの範囲に選択される円状、若しくは、最も長い対角線の長さが1μm〜1mmの範囲に選択される多角形状であることができる。
【0025】
なお、被測定物と、その外部にある標準物質とについて測定を行う際、前記飛行時間型二次イオン質量分析装置の測定条件において、少なくとも、一次イオン電流または二次イオン引き出し電圧を同一条件に設定して、分析を行うことが好ましい。
【0026】
【発明の実施の形態】
以下に、本発明をより詳細に説明する。
【0027】
従来の標準試料を用いた感度校正を利用する、TOF−SIMS法による定量分析では、標準試料として、基材の表面に形成されている、面密度が一定の被膜層を利用しているが、本発明の方法では、組成に変動がない標準物質を検出器効率の補正に利用している。すなわち、本発明の方法は、有機膜の組成分析方法であり、使用するTOF−SIMS装置に関して、同時に検出器効率の補正を行った上で、かかる被測定物の有機物質について、TOF−SIMS法を利用して、発生する二次イオン種の質量数と、前記の効率補正により規格化、較正を施した、その二次イオン強度比に基づき、対象とする有機物質の組成を決定する方法である。
【0028】
具体的には、膜状の有機物質が基板上にマトリクス状に配置された有機デバイスに関して、その有機膜をTOF−SIMSにより分析する際、そのTOF−SIMS装置の測定条件、少なくとも、発生する二次イオン量と、検出系に導かれる二次イオンの比率を制御する条件である、一次イオン電流、二次イオン引き出し電圧などの測定条件を同一に設定して、有機膜と、外部に設ける標準物質とに関して、それぞれ二次イオン質量スペクトルを測定する。この外部標準物質は、既知の組成を有する物質であり、発生する二次イオン種に関して、その質量数と二次イオン量は、同じ測定条件下では、変動しないものとなる。従って、この標準物質の二次イオン質量スペクトルに基づき、実際に検出器で検出される二次イオン強度を、その質量数に対して、プロットすると、「質量数 対 二次イオン強度」の関係として、その時点における使用した装置の検出器効率を示す検量線が得られる。
【0029】
同時期に、同じ測定条件下で、同一のTOF−SIMS装置において、測定された有機デバイス中の膜状の有機物質に対する二次イオン質量スペクトル上でも、前記外部標準物質により作成される、装置の検出器効率を示す検量線と同じ「質量数 対 二次イオン強度」関係が成り立つ。そのため、この「質量数 対 二次イオン強度」の関係から検出器効率の補正を行った上で、有機膜のTOF−SIMS測定結果に対して、特定の質量数に対応する二次イオンピーク強度の規格化、較正を施すことで、検出系の経時変化に伴う絶対的な感度変動の影響を排除でき、高い定量精度と再現性で、該有機膜の組成を分析することが可能となる。
【0030】
特に、本発明の組成分析方法は、上記有機膜が、有機物質からなる単分子膜であり、その基板自体は、導電性を示さないガラス基板などを使用している有機デバイスへの応用に適している。例えば、基板上にマトリクス状に配置された有機デバイスが、複数の生体関連物質が基板上にマトリクス状に配置された、所謂、バイオチップである場合、組成分析に利用される二次イオンは、特定の質量数範囲に存在しており、それに適合する外部標準物質を容易に選択することができる。
【0031】
なお、被測定物が、バイオチップのように、導電性を示さないものである際には、外部標準物質にも、導電性を示さない物質を選択することが望ましく、加えて、前記の特定の質量数範囲に、かかる標準物質に由来する特徴的な二次イオン種を発生するものが利用できる。その観点から、外部標準物質として、1000から100万の数平均分子量範囲にある高分子を好適に利用することができる。利用可能な高分子としては、例えば、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリスチレン、ポリエチレンテレフタレート、ナイロン、ポリカーボネート、ポリ塩化ビニル、ポリブテン、ポリアクリロニトリルなどが挙げられる。これらのポリマーは、標準物質に由来する特徴的な二次イオン種として、その構成ユニット数の差異に起因する、所定の質量数差を示す、一連の分鎖状の二次イオン種を発生する。従って、前記の高分子を標準物質に採用することで、「質量数 対 二次イオン強度」の関係から検出器効率の補正を行う際、より確度の高い補正を行うことが可能となる。
【0032】
すなわち、上記検出器効率の補正は、外部標準物質の二次イオン質量スペクトルにおける二点若しくは三点以上の質量数に対応する二次イオンピーク強度から検量線を求め、この検量線を用いた補正とすることが好ましいが、その際に、利用可能な、二点若しくは三点以上の質量数に対応する二次イオンピークを、前記の高分子を標準物質に採用すること簡便に得られる。
【0033】
本発明の組成分析方法は、TOF−SIMS法を利用するため、一次イオンビームをスキャンすることで、ある程度の面積内のイメージングを行うことも可能となる。その際、本発明の組成分析方法は、被測定物である有機膜の形状や大きさに関しては、直径が1μm〜1mmの範囲にある円状、若しくは、最も長い対角線の長さが1μm〜1mmの範囲にある多角形状である際にも、その領域全体の分析に、高い定量性で適用することが可能である。
【0034】
なお、本発明の方法によって分析される生体関連物質は、特に限定されるものではなく、どのような物質であってもかまわないが、本発明者らの検討では、核酸、蛋白質であれば好適に分析し得る。核酸の例としては、オリゴデオキシヌクレオチド、ポリデオキシヌクレオチド、cDNA(コンプリメンタリーDNA)等のDNA、または、mRNA、tRNA、rRNA等のRNA、または骨格がペプチドで構成されるPNA(ペプチド核酸)で代表される核酸アナログが挙げられる。蛋白質の例としては、オリゴペプチド、ポリペプチド、酵素、抗体等を例として挙げることができる。
【0035】
【実施例】
以下に、実施例を挙げて、本発明をより具体的に説明する。なお、これら実施例は本発明にかかる最良の実施形態の一例ではあるものの、本発明はかかる形態に限定されるものではない。
【0036】
(実施例1)
核酸プローブアレイの作製
特開2001−066305号公報に開示した方法で、ガラス基板を利用する核酸プローブアレイを作製した。
【0037】
(1)基板洗浄
1インチ角のガラス板をラックに入れ、超音波洗浄用洗剤に一晩浸した。さらに、洗剤中で20分間超音波洗浄を行い、その後、水洗により洗剤を除去した。加えて、蒸留水ですすいだ後、蒸留水の入った容器中でさらに超音波処理を20分間行った。次に、予め80℃に加温した1N水酸化ナトリウム溶液中にガラス板を10分間浸した。引き続き水洗、蒸留水洗浄を行って、プローブアレイ用の洗浄済ガラス基板を用意した。
【0038】
(2)表面処理
アミノ基を結合したシラン化合物(N−β−(アミノエチル)−γ−アミノプロピルトリメトキシシラン)を含むシランカップリング剤(商品名:KBM603;信越化学工業(株)社製)の1wt%水溶液を室温下で2時間攪拌し、上記シラン化合物の分子内のメトキシ基を加水分解した。次いで、この溶液に、(1)で得た洗浄済ガラス基板を室温(25℃)で20分間浸した後、引き上げて、窒素ガスをガラス基板の両面に吹き付けて乾燥させた。次に、このガラス基板を、120℃に加熱したオーブン中で1時間ベークして、シランカップリング処理を完結させ、基板表面にアミノ基を導入した。
【0039】
次いで、N−マレイミドカプロイロキシスクシンイミド(N−(6−Maleimidocaproyloxy)succinimide;Dojin社製)(以降、EMCSと略す)を2.7mg秤量し、ジメチルスルホキシド(DMSO)/エタノールの1:1(容量比)混合溶媒に、最終濃度が0.3mg/mlとなる様に溶解して、EMCS溶液を用意した。前記のシランカップリング処理を行ったガラス基板を、EMCS溶液に室温で2時間浸して、シランカップリング処理によってガラス基板表面に担持されているアミノ基と、EMCS溶液のカルボキシ基を反応させた。この反応により、ガラス基板表面には、EMCS由来のマレイミド基が表面に存在することになる。EMCS溶液から引き上げたガラス基板を、上記のDMSO/エタノールの混合溶媒及びエタノールで順次洗浄した後、窒素ガス雰囲気下で乾燥させた。
【0040】
(3)プローブDNAの合成
DNA自動合成機を用いて、配列番号1の一本鎖核酸を合成した。なお、配列番号1の一本鎖DNAの5’末端に、DNA自動合成機による合成時に、チオールモディファイア(Thiol−Modifier)(グレンリサーチ(GlenResearch)社製)を用いて、スルファニル(SH)基を導入した。続いて、通常の脱保護を行い、DNAを回収し、高速液体クロマトグラフィーにて精製し、以下の実験でプローブDNAとして用いた。
配列番号:1
5’ HS−(CH−O−PO−O−ACTGGCCGTCGTTTTACA 3’
(4)BJプリンターによるDNA吐出、および基板への結合
配列番号1の一本鎖DNAを、最終濃度が約400mg/mlになるようにTE溶液(10mM Tris−HCl(pH8)/1mM EDTA水溶液)に溶解し、一本鎖DNA溶液を調製した(なお、DNA濃度は、吸収強度から算出した)。
【0041】
一方、グリセリン7.5wt%、尿素7.5wt%、チオジグリコール7.5wt%、及びアセチレンアルコール(商品名:アセチレノールEH;川研ファインケミカル(株)社製)1wt%を含む水溶液を用意し、前記DNA溶液に加え、一本鎖DNAの最終濃度が8μMとなるように調整した。この液体の表面張力は30〜50dyne/cmの範囲内であり、また、粘度は1.8cps(E型粘度計:東京計器(株)社製)であった。この液体を、バブルジェットプリンター(商品名:BJC620;キヤノン(株)社製)用インクタンクに充填し、バブルジェットヘッドに装着した。なお、利用するバブルジェットプリンター(商品名:BJC620;キヤノン(株)社製)は、平板上への印刷が可能な様に改造を施したものである。また、このバブルジェットプリンターは、360×720dpiの解像度で印字可能である。
【0042】
次いで、このプリンターに、(2)で表面処理したガラス基板を装着し、核酸プローブを含む液体を、ガラス基板表面にスポッティングした。その際、バブルジェットヘッドの液体吐出面と、液体付着面であるガラス基板表面との距離は、1.2〜1.5mmであった。また、マトリックス状のスポッティングは、360dpiの方向には、1回のスポッティング後、2回の空吐出を行い、720dpiの方向には、1回のスポッティング後、5回の空吐出を行う様に、スポッティング条件を設定した。スポッティング終了後、ガラス基板を30分間加湿チャンバー内に静置し、ガラス基板表面のマレイミド基と、核酸プローブ5’末端のスルファニル基とを反応させた。なお、上記プリンターによる1吐出動作当たりのDNAプローブ溶液吐出量は、約24plであった。
【0043】
なお、上記アセチレンアルコールは、下記一般式(I)で示される。
【0044】
【化1】

Figure 2004037120
【0045】
(式中、R1、R2、R3、R4は、アルキル基を表わし、mおよびnはそれぞれ0もしくは正の整数を表わし、m=0かつn=0、もしくは、1≦m+n≦30であって、m+n=1の場合は、mまたはnは0である。)
(5)ブロッキング反応
マレイミド基とスルファニル基との反応終了後、ガラス基板を1M NaCl/50mMリン酸緩衝液(pH7.0)溶液で洗浄し、ガラス基板表面のDNAを含む液体を完全に洗い流した。次いで、ガラス基板を、2%ウシ血清アルブミン水溶液中に浸して2時間放置し、表面のブロッキング反応を行った。
【0046】
(実施例2)
外部標準物質のTOF−SIMS測定と、検量線の作成
外部標準物質として、数平均分子量が約10000の棒状のポリエチレンをスライスし、その切断面を分析面とした。TOF−SIMSスペクトルの測定には、ION−TOF製のTOF−SIMS IV型装置を使用した。その測定条件は、一次イオン:Ga、一次イオン加速エネルギー:25keV、トータルドーズ量:1×1011ions/cmとした。これ以外の測定条件は、前記装置における標準的な条件を採用した。
【0047】
図1に、スライス直後の試料で得られたTOF−SIMSスペクトルを模式的に示し、また、図2に、同じ試料を、1月経過後に同条件で測定したTOF−SIMSスペクトルを模式的に示す。
【0048】
その測定結果を利用して、DNAの核酸塩基の親イオンに相当する二次イオンピークが出現する質量数範囲、すなわち、質量数が200〜300の範囲について、エチレンユニット数に相違を有する、一連の主要ピークに対する二次イオン強度を用いて、検量線を作成した。
【0049】
(実施例3)
核酸プローブアレイのTOF−SIMS測定と、ハイブリダイゼーションによる評価
実施例1で作製した核酸プローブアレイ表面のスポッティング部について、実施例2に記載する測定条件でTOF−SIMSスペクトルを測定した。1月後に、同じ条件で、再度TOF−SIMSスペクトルを測定した。
【0050】
これらのスペクトルについて、それぞれ、対応する検量線に基づき、二次イオン強度を規格化し、核酸骨格に起因するPO 等の二次イオン強度を比較した。その結果、1月間をおいて測定を行った、両スペクトルの対応する規格化済み二次イオン強度の相違は、±10%以内であった。
【0051】
同じ核酸プローブアレイ試料について、特開2001−066305号公報に開示したハイブリダイゼーション後の蛍光強度を測定し、その後、1月間をおいて再度測定し、両者の結果を比較したところ、測定される蛍光強度の相違は、±15%以内であった。
【0052】
(比較例1)
実施例3に記載するTOF−SIMSスペクトルに関して、検量線による二次イオン強度の規格化を行わず、測定された二次イオン強度を直接比較した場合、両者の強度相違は、±10%以上、但し、±20%以内でバラツキを示していた。
【0053】
(実施例4)
実施例3と同様に測定したTOF−SIMSスペクトルに関して、検量線による二次イオン強度の規格化を行った後、核酸骨格に起因するPO と、核酸塩基に起因する二次イオンの強度比を算出した。その後、1月間をおいて再度測定し、同じく、検量線による二次イオン強度の規格化を行った後、強度比を算出した。両測定における前記強度比を比較すると、その相違は、±20%以内であった。
【0054】
(比較例2)
実施例4に記載するTOF−SIMSスペクトルに関して、検量線による二次イオン強度の規格化を行わず、測定された二次イオン強度から直接強度比を算定した。その後、1月間をおいて再度測定し、同様に、測定された二次イオン強度から直接強度比を算定した。両測定における前記強度比を比較すると、その相違は、±30%以上、但し、±40%以内でバラツキを示していた。
【0055】
【発明の効果】
本発明の有機物質の組成分析方法においては、その組成分析に利用する有機物質のTOF−SIMSスペクトルにおいて、対応する二次イオン種に適合する、質量数毎に感度補正する手段として、組成に変動がない標準物質を検出器効率の補正に利用している。すなわち、本発明の方法は、使用するTOF−SIMS装置に関して、同時に標準物質を利用して検出器効率の補正を行った上で、かかる被測定物の有機物質について、TOF−SIMS法を利用して、発生する二次イオン種の質量数と、前記の効率補正により規格化、較正を施した、その二次イオン強度比に基づき、対象とする有機物質の組成を決定する方法であるため、測定装置の検出系の経時的な検出器効率の変化による影響を排除して、高い定量性を達成できる。
【図面の簡単な説明】
【図1】標準物質として利用される、ポリエチレンの切断直後の断面に対して測定される、TOF−SIMSスペクトルの一例を模式的に示す図である。
【図2】図1に示すスペクトルの測定後、1月の経過後、同一の測定条件でポリエチレン断面を再測定した際のTOF−SIMSスペクトルの一例を模式的に示し、測定装置の検出系の経時的な検出器効率の変化に起因する、「質量数 対 二次イオン強度」の関係の変化を説明する図である。[0001]
TECHNICAL FIELD OF THE INVENTION
The present invention relates to a method for analyzing the composition of an organic film in an organic device, in which films made of an organic substance are arranged in a matrix on a substrate, and in particular, to a time-of-flight secondary ion mass spectrometry (Time-of). -Flight \ Secondary \ Ion \ Mass \ Spectrometry (hereinafter abbreviated as TOF-SIMS), and a plurality of bio-related substances are arranged in a matrix on a substrate as an organic substance. The present invention relates to a method for performing a composition analysis on a biological substance.
[0002]
[Prior art]
Biochips in which various probe molecules such as DNA chips and protein chips are arranged in a matrix on a substrate, so-called biochips, have been used for the purpose of genomic analysis or gene expression analysis. In addition, the results of analysis using these biochips are expected to provide important indexes for diagnosis, prognosis prediction, treatment policy determination, and the like of cancer, genetic diseases, lifestyle-related diseases, infectious diseases, and the like.
[0003]
Several methods are known for producing biochips. Taking a DNA chip as an example, a method of sequentially synthesizing DNA probes directly on a substrate by using photolithography (US Pat. No. 5,405,783, etc.), or a method of synthesizing DNA or cDNA synthesized in advance A typical method for producing a DNA chip is a method of supplying and bonding (mental DNA) on a substrate (US Pat. No. 5,601,980, Japanese Patent Application Laid-Open No. 11-187900, Science, Vol. 270, # 467, $ 1995, etc.).
[0004]
In general, a biochip is produced by the above two methods, but when the produced biochip is to be used for the above-mentioned applications, the reliability of analysis, that is, quantitativeness, reproducibility, In order to assure, it is important to know the amount of the probe present in each matrix, that is, the amount of the biological substance used in the probe, that is, the density. It is also important to know what kind of matrix shape (shape, size, state) actually exists (imaging) from the viewpoint of securing quantitativeness and reproducibility. However, the probe on the biochip is in principle at the monomolecular film level, and basically, it is an extremely sensitive surface analysis technology for the analysis of biological substances, including the visualization of the matrix position. Is required.
[0005]
As one of high-sensitivity surface analysis techniques that satisfy the above requirements, a method of applying an isotope label to the probe itself is known, but the labeling method is complicated, and the used isotope label itself is exposed to radiation. It is a source danger and therefore has drawbacks in terms of versatility due to the need for special facilities and equipment.
[0006]
As another method, a method of fluorescently labeling a probe or a method of applying a fluorescent label to a substance that specifically binds to a probe and binding the substance to the probe, that is, a fluorescent hybridization method for a DNA chip can be considered. . However, the stability of the fluorescent dye used for labeling, fluorescence quenching, or non-specific adsorption of the fluorescent dye to the substrate surface, and the quantitativeness (stability, reproducibility) of specific binding (hybridization) For example, various problems exist in achieving high quantitative performance, and there remains a problem in quantitatively grasping the abundance of the probe itself.
[0007]
Other high-sensitivity surface analysis means that can be used for general detection targets include ATR using FT-IR (Fourier transform infrared spectroscopy), XPS (X-ray photoelectron spectroscopy), and the like. However, it cannot be said that it has sufficient sensitivity for quantitative analysis or imaging of a probe of a biochip which is a biological substance. In particular, when general glass is used as a substrate for producing a biochip, for example, in the FT-IR (ATR) method, the influence of absorption due to the glass itself of the substrate is used. In the XPS method, the glass itself is used. Since is an insulating material, it is not an effective analysis means due to the effects of charge-up and the like.
[0008]
A time-of-flight secondary ion mass spectrometry (TOF-SIMS) is known as a highly sensitive surface analysis means.
On the other hand, time-of-flight secondary ion mass spectrometry (TOF-SIMS), also known as one method of secondary ion mass spectrometry, is based on what kind of atoms or molecules are on the outermost surface of a solid sample. This is an analysis method for examining whether or not it exists, and has the following features. ppm order, ie, 109atoms / cm2(1/10 of the outermost one atomic layer5(Equivalent to (amount corresponding to)), the ability to detect trace components, the ability to apply to both organic and inorganic substances, and the ability to measure the planar distribution of all components present on the surface.
[0009]
Hereinafter, the principle of the time-of-flight secondary ion mass spectrometry will be briefly described.
[0010]
When the surface of a solid sample is irradiated with a high-speed ion beam (primary ions) in a high vacuum, the surface components are released into the vacuum by a sputtering phenomenon. The positively or negatively charged ions (secondary ions) generated in this process are converged in one direction by the electric field and detected at a position separated by a certain distance. During sputtering, secondary ions with various masses are generated according to the composition of the sample surface, but in a constant electric field, lighter ions fly faster and conversely heavier ions fly slower. I do. Therefore, the mass of the generated secondary ions can be analyzed by measuring the time (flight time) from the generation of the secondary ions to the arrival at the detector.
[0011]
On the other hand, in the conventional dynamic secondary ion mass spectrometry (Dynamic @ SIMS) method, an organic compound is decomposed into small fragment ions or particles during ionization, so that chemical structure information obtained from a mass spectrum, for example, mass While the range is limited, in the TOF-SIMS method, since the primary ion irradiation amount is extremely small, the organic compound is ionized while maintaining the chemical structure, and the organic spectrum is determined from the mass spectrum measured in a wide mass range. The structure of the compound can be known more directly. In addition, since only secondary ions generated on the outermost side of the solid sample surface are released into the vacuum, information on the outermost surface of the sample (about several Å in depth) can be selectively obtained. In addition, since the method for detecting ions has higher sensitivity than the method for detecting electrons and light, the TOF-SIMS method can detect trace components in the order of ppm existing on the surface. Further, in the TOF-SIMS method, an ion image (mapping) on a sample surface can be measured by scanning a primary ion beam.
[0012]
For a report on an example of measuring DNA using TOF-SIMS, see J. Am. C. Evaluation of hybridization of DNA to PNA by Feldner et al. (SIMS @ XIII International Conference Proceedings, November 11-16, 2001, Nara).
[0013]
Further, as an attempt of quantitative analysis using the TOF-SIMS method, standard solutions having different concentrations are applied on a clean silicon substrate, dried, and then the substrate surface is measured by the TOF-SIMS method, and the secondary ion peak intensity is measured. From a secondary ion peak intensity of a sample to be analyzed (CM John et al., SIMS VIII, p657, Wiley and Sons, 1992) or a trace amount on a silicon substrate. Using a standard sample for total reflection X-ray fluorescence analysis in which a metal element is spin-coated, a method for determining the amount of quantification (P. Lazzeri et al., Surface and Interface Analysis, Vol. 29, 798 (2000)), etc. Are known.
[0014]
[Problems to be solved by the invention]
However, there is room for the following improvements in the conventional TOF-SIMS quantitative analysis.
[0015]
First, as a general problem, when the measurement conditions such as the primary ion current and the secondary ion extraction voltage of the TOF-SIMS device are set to be constant, the detector deteriorates and the transmittance of the secondary ions in the flight tube decreases. For example, it is not possible to correct the sensitivity fluctuation caused by the time-dependent change of the detection system. In addition, some devices have a function of automatically or semi-automatically correcting the sensitivity fluctuation due to the change over time of the detection system, but the correction is not always perfect, and the reliability is high. Lacks. Therefore, it is common practice to perform sensitivity analysis using a standard sample with a known concentration and then perform quantitative analysis.
[0016]
However, quantitative analysis by TOF-SIMS method using sensitivity calibration using a standard sample also has the following problems.
[0017]
For example, as reported by John et al., Standard solutions of different concentrations were applied on a clean silicon substrate, dried, and then the standard sample was measured by TOF-SIMS method, and a calibration curve was obtained from the secondary ion peak intensity. However, in the method of comparing with the secondary ion peak intensity of the sample to be analyzed, it is necessary to prepare the standard solution every time in order to improve the quantitative accuracy, and there is a problem that the operation is complicated. In other words, once the standard sample on the silicon substrate is manufactured, the same standard sample is continuously used because hydrocarbons (contamination) are deposited with time and the standard substance itself is chemically changed with time. Doing so has problems in achieving high reliability. Also, P.I. Lazzeri et al. Reported that a standard sample for total reflection X-ray fluorescence analysis using a spin coating of a trace metal element on a silicon substrate was used to create a calibration curve and sensitivity calibration. During storage, surface contamination and oxidation may similarly occur, which poses a problem in achieving high reliability. Furthermore, the standard sample for the total reflection X-ray fluorescence analysis is usually conductive, and the TOF-SIMS measurement conditions for the conductive standard sample and the measurement conditions for the organic film having poor conductivity are generally different from each other ( For example, whether or not charge neutralization is used). Therefore, there is a problem that a quantitative error may occur due to the difference in the measurement conditions in some cases.
[0018]
An object of the present invention is to solve the above-mentioned problems, and an object of the present invention is to reduce the composition of an organic film in an organic device (such as a biochip) in which a film-like organic substance is arranged in a matrix on a substrate. It is an object of the present invention to provide a method for performing analysis with high quantitative accuracy and high reproducibility by the TOF-SIMS method.
[0019]
[Means for Solving the Problems]
The present inventors have conducted intensive studies to solve the above-mentioned problems. As a result, the analysis by TOF-SIMS method with high quantification accuracy and high reproducibility was considered in consideration of the sensitivity fluctuation due to the time-dependent change of the detection system. In performing this, it is effective to calibrate the secondary ion mass dependency of the detection efficiency of the detector system, which is indicated by the relationship of “mass number vs. secondary ion intensity”, in each case in the TOF-SIMS apparatus. Was found. As a means for correcting the detector efficiency, the measurement conditions of the time-of-flight secondary ion mass spectrometer are set to the same for the DUT and the standard substance outside thereof, and the respective secondary ion mass spectra are measured. Then, based on the secondary ion mass spectrum measured in the standard substance, when employing a method of correcting the detector efficiency from the relationship of "mass number vs. secondary ion intensity", the absolute with the change over time of the detection system It has been confirmed that the influence of a sensitive change in sensitivity can be eliminated, and high quantification accuracy and reproducibility can be achieved. Based on these findings, the present inventors have completed the present invention.
[0020]
That is, the method for analyzing the composition of an organic film according to the present invention comprises:
A method of analyzing the composition of a film made of an organic substance on an organic device by time-of-flight secondary ion mass spectrometry,
When quantifying the composition of a film made of an organic substance of an object to be measured by time-of-flight secondary ion mass spectrometry,
A standard substance is provided outside the measured object,
For the object to be measured and the standard substance outside the same, the measurement conditions of the time-of-flight secondary ion mass spectrometer were set to the same, and the secondary ion mass spectrum was measured,
Based on the secondary ion mass spectrum measured in the standard material, the detector efficiency is corrected from the relationship of `` mass number versus secondary ion intensity '',
With the corrected detector efficiency, each secondary ion intensity measurement value of the secondary ion mass spectrum of the film made of the organic material is normalized and calibrated, and the secondary ion intensity after the normalized calibration is used to obtain the organic material. The method for analyzing the composition of an organic film is characterized by quantitatively analyzing the composition of a film comprising:
[0021]
The method of the present invention can be suitably used when the film made of the organic substance of the object to be measured is a monomolecular film made of the organic substance. Furthermore, when the organic device is, for example, a biochip in which a plurality of biological substances are arranged in a matrix on a substrate as a film made of the organic substance, the method of the present invention is more preferable.
[0022]
On the other hand, in the method of the present invention, it is preferable to select a polymer having a number average molecular weight in the range of 1,000 to 100,0000 as the standard substance. At that time, it is more preferable that the polymer is selected from the group consisting of polyethylene, polypropylene, polystyrene, polyethylene terephthalate, nylon, polycarbonate, polyvinyl chloride, polybutene, and polyacrylonitrile.
[0023]
In the method of the present invention, the step of correcting the detector efficiency comprises:
Appearing in the secondary ion mass spectrum of the standard substance provided outside, using secondary ion peak intensities corresponding to the mass number at two or three or more points, the “mass number
Create a calibration curve showing the relationship of "secondary ion intensity",
More preferably, the step of correcting the secondary ion detection efficiency by the detector of the time-of-flight secondary ion mass spectrometer using the calibration curve.
[0024]
When utilizing the method of the present invention, a film comprising the organic substance, which is present on an organic device,
It may be a circle having a diameter selected in the range of 1 μm to 1 mm, or a polygon having a longest diagonal length selected in the range of 1 μm to 1 mm.
[0025]
In addition, when measuring the object to be measured and the standard substance outside thereof, in the measurement conditions of the time-of-flight secondary ion mass spectrometer, at least the primary ion current or the secondary ion extraction voltage under the same conditions. It is preferable to perform the analysis after setting.
[0026]
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION
Hereinafter, the present invention will be described in more detail.
[0027]
In the quantitative analysis by the TOF-SIMS method using sensitivity calibration using a conventional standard sample, a coating layer having a constant surface density formed on the surface of a substrate is used as a standard sample. In the method of the present invention, a standard material having no change in composition is used for correcting the detector efficiency. That is, the method of the present invention is a method for analyzing the composition of an organic film, and the TOF-SIMS method is used for the TOF-SIMS apparatus to be used after the detector efficiency is corrected at the same time. Utilizing, the mass number of the secondary ion species to be generated, standardized by the above-mentioned efficiency correction, subjected to calibration, based on the secondary ion intensity ratio, a method of determining the composition of the target organic substance is there.
[0028]
Specifically, regarding an organic device in which a film-like organic substance is arranged in a matrix on a substrate, when the organic film is analyzed by TOF-SIMS, the measurement conditions of the TOF-SIMS apparatus, at least, The measurement conditions such as the primary ion current and the secondary ion extraction voltage, which are the conditions for controlling the amount of the secondary ions and the ratio of the secondary ions guided to the detection system, are set to be the same, and the organic film and the standard provided outside are set. A secondary ion mass spectrum is measured for each substance. This external standard substance is a substance having a known composition. Regarding the generated secondary ion species, the mass number and the secondary ion amount do not fluctuate under the same measurement conditions. Therefore, based on the secondary ion mass spectrum of this standard substance, when the secondary ion intensity actually detected by the detector is plotted against the mass number, the relation of “mass number vs. secondary ion intensity” is obtained. Then, a calibration curve indicating the detector efficiency of the used apparatus at that time is obtained.
[0029]
At the same time, under the same measurement conditions, under the same TOF-SIMS apparatus, the secondary ion mass spectrum of the film-like organic substance in the measured organic device is also created by the external standard substance on the secondary ion mass spectrum. The same “mass number vs secondary ion intensity” relationship holds as the calibration curve indicating the detector efficiency. Therefore, after correcting the detector efficiency based on the relationship of “mass number vs secondary ion intensity”, the secondary ion peak intensity corresponding to a specific mass number is obtained for the TOF-SIMS measurement result of the organic film. By performing the standardization and calibration of the above, it is possible to eliminate the influence of the absolute sensitivity change due to the time-dependent change of the detection system, and to analyze the composition of the organic film with high quantitative accuracy and reproducibility.
[0030]
In particular, the composition analysis method of the present invention is suitable for application to an organic device in which the organic film is a monomolecular film made of an organic substance, and the substrate itself is a glass substrate that does not exhibit conductivity. ing. For example, an organic device arranged in a matrix on a substrate, a plurality of bio-related substances are arranged in a matrix on the substrate, so-called, if a so-called biochip, secondary ions used for composition analysis, An external standard substance existing in a specific mass number range and conforming thereto can be easily selected.
[0031]
In addition, when the DUT is non-conductive, such as a biochip, it is preferable to select a non-conductive substance also as the external standard substance. In the range of the mass number described above, one that generates a characteristic secondary ion species derived from such a standard substance can be used. From that viewpoint, a polymer having a number average molecular weight in the range of 1,000 to 1,000,000 can be suitably used as the external standard substance. Usable polymers include, for example, polyethylene, polypropylene, polystyrene, polyethylene terephthalate, nylon, polycarbonate, polyvinyl chloride, polybutene, polyacrylonitrile, and the like. These polymers generate, as characteristic secondary ionic species derived from the standard substance, a series of branched secondary ionic species exhibiting a predetermined mass number difference due to the difference in the number of constituent units. . Therefore, by adopting the polymer as the standard substance, it is possible to perform more accurate correction when correcting the detector efficiency based on the relationship of “mass number vs secondary ion intensity”.
[0032]
That is, the correction of the detector efficiency is performed by obtaining a calibration curve from the secondary ion peak intensities corresponding to two or three or more mass numbers in the secondary ion mass spectrum of the external standard substance, and correcting using this calibration curve. In this case, a secondary ion peak that can be used and corresponds to a mass number of two or three or more points can be easily obtained by employing the polymer as a standard substance.
[0033]
Since the composition analysis method of the present invention utilizes the TOF-SIMS method, it is possible to perform imaging within a certain area by scanning the primary ion beam. At this time, the composition analysis method of the present invention is configured such that the shape and size of the organic film as the object to be measured are circular with a diameter in the range of 1 μm to 1 mm, or the length of the longest diagonal is 1 μm to 1 mm. Can be applied with high quantitativeness to the analysis of the entire region even when the polygonal shape is within the range of.
[0034]
The biological substance analyzed by the method of the present invention is not particularly limited, and any substance may be used. However, in the study of the present inventors, nucleic acids and proteins are preferably used. Can be analyzed. Examples of the nucleic acid include DNA such as oligodeoxynucleotide, polydeoxynucleotide, and cDNA (complementary DNA), RNA such as mRNA, tRNA, and rRNA, or PNA (peptide nucleic acid) whose skeleton is composed of a peptide. Nucleic acid analogs to be used. Examples of proteins include oligopeptides, polypeptides, enzymes, antibodies and the like.
[0035]
【Example】
Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples. Although these examples are only examples of the best embodiments according to the present invention, the present invention is not limited to these embodiments.
[0036]
(Example 1)
Preparation of nucleic acid probe array
A nucleic acid probe array using a glass substrate was produced by the method disclosed in JP-A-2001-066305.
[0037]
(1) Substrate cleaning
A 1-inch square glass plate was placed in a rack and immersed in an ultrasonic cleaning detergent overnight. Further, ultrasonic cleaning was performed in a detergent for 20 minutes, and then the detergent was removed by water washing. In addition, after rinsing with distilled water, sonication was further performed for 20 minutes in a container containing distilled water. Next, the glass plate was immersed in a 1N sodium hydroxide solution preheated to 80 ° C. for 10 minutes. Subsequently, washing with water and washing with distilled water were performed to prepare a washed glass substrate for the probe array.
[0038]
(2) Surface treatment
1 wt% aqueous solution of a silane coupling agent (trade name: KBM603; manufactured by Shin-Etsu Chemical Co., Ltd.) containing a silane compound having an amino group bonded thereto (N-β- (aminoethyl) -γ-aminopropyltrimethoxysilane) Was stirred at room temperature for 2 hours to hydrolyze the methoxy group in the molecule of the silane compound. Next, the washed glass substrate obtained in (1) was immersed in the solution at room temperature (25 ° C.) for 20 minutes, pulled up, and dried by spraying nitrogen gas on both surfaces of the glass substrate. Next, the glass substrate was baked in an oven heated to 120 ° C. for 1 hour to complete the silane coupling treatment, and an amino group was introduced to the substrate surface.
[0039]
Next, 2.7 mg of N-maleimidocaproyloxysuccinimide (N- (6-maleimidocaproyloxy) succinimide; manufactured by Dojin Co.) (hereinafter abbreviated as EMCS) was weighed, and 2.7% of dimethyl sulfoxide (DMSO) / ethanol (1: 1 by volume). Ratio) The EMCS solution was prepared by dissolving in a mixed solvent so that the final concentration was 0.3 mg / ml. The glass substrate that had been subjected to the silane coupling treatment was immersed in an EMCS solution at room temperature for 2 hours to react an amino group carried on the surface of the glass substrate by the silane coupling treatment with a carboxy group of the EMCS solution. By this reaction, a maleimide group derived from EMCS is present on the surface of the glass substrate. The glass substrate pulled up from the EMCS solution was sequentially washed with the above mixed solvent of DMSO / ethanol and ethanol, and then dried under a nitrogen gas atmosphere.
[0040]
(3) Synthesis of probe DNA
Using an automatic DNA synthesizer, a single-stranded nucleic acid of SEQ ID NO: 1 was synthesized. In addition, at the 5 ′ end of the single-stranded DNA of SEQ ID NO: 1, a sulfanyl (SH) group was attached to the 5 ′ end of the single-stranded DNA using a thiol-modifier (Glen Research) during synthesis by an automatic DNA synthesizer. Was introduced. Subsequently, normal deprotection was performed, DNA was recovered, purified by high performance liquid chromatography, and used as probe DNA in the following experiments.
SEQ ID NO: 1
5 'HS- (CH2)6-O-PO2-O-ACTGGCCGTCGTTTTTACA '3'
(4) DNA ejection by BJ printer and binding to substrate
The single-stranded DNA of SEQ ID NO: 1 was dissolved in a TE solution (10 mM @ Tris-HCl (pH 8) / 1 mM @ EDTA aqueous solution) to a final concentration of about 400 mg / ml to prepare a single-stranded DNA solution ( , DNA concentration was calculated from the absorption intensity).
[0041]
On the other hand, an aqueous solution containing 7.5 wt% of glycerin, 7.5 wt% of urea, 7.5 wt% of thiodiglycol, and 1 wt% of acetylene alcohol (trade name: acetylenol EH; manufactured by Kawaken Fine Chemical Co., Ltd.) is prepared. In addition to the DNA solution, the final concentration of single-stranded DNA was adjusted to 8 μM. The surface tension of this liquid was in the range of 30 to 50 dyne / cm, and the viscosity was 1.8 cps (E-type viscometer: manufactured by Tokyo Keiki Co., Ltd.). This liquid was filled into an ink tank for a bubble jet printer (trade name: BJC620; manufactured by Canon Inc.), and attached to a bubble jet head. The bubble jet printer (trade name: BJC620; manufactured by Canon Inc.) has been modified so that printing on a flat plate is possible. The bubble jet printer can print at a resolution of 360 × 720 dpi.
[0042]
Next, the glass substrate surface-treated in (2) was mounted on the printer, and a liquid containing a nucleic acid probe was spotted on the surface of the glass substrate. At that time, the distance between the liquid ejection surface of the bubble jet head and the surface of the glass substrate as the liquid attachment surface was 1.2 to 1.5 mm. In addition, matrix spotting is performed in the 360 dpi direction such that once spotting is performed and then two empty ejections are performed in the direction of 360 dpi, and in the direction of 720 dpi, five empty ejections are performed after one spotting is performed. Spotting conditions were set. After the spotting, the glass substrate was allowed to stand in a humidified chamber for 30 minutes to react a maleimide group on the surface of the glass substrate with a sulfanyl group at the 5 'end of the nucleic acid probe. The amount of DNA probe solution ejected per ejection operation by the printer was about 24 pl.
[0043]
The acetylene alcohol is represented by the following general formula (I).
[0044]
Embedded image
Figure 2004037120
[0045]
(Wherein, R1, R2, R3, and R4 represent an alkyl group, m and n each represent 0 or a positive integer, and m = 0 and n = 0, or 1 ≦ m + n ≦ 30, When m + n = 1, m or n is 0.)
(5) Blocking reaction
After completion of the reaction between the maleimide group and the sulfanyl group, the glass substrate was washed with a 1 M NaCl / 50 mM phosphate buffer (pH 7.0) solution, and the liquid containing DNA on the surface of the glass substrate was completely washed away. Next, the glass substrate was immersed in a 2% bovine serum albumin aqueous solution and left for 2 hours to perform a surface blocking reaction.
[0046]
(Example 2)
TOF-SIMS measurement of external reference material and creation of calibration curve
A rod-shaped polyethylene having a number average molecular weight of about 10,000 was sliced as an external standard substance, and the cut surface was used as an analysis surface. For the measurement of the TOF-SIMS spectrum, a TOF-SIMS IV type device manufactured by ION-TOF was used. The measurement conditions are as follows: primary ion: Ga+, Primary ion acceleration energy: 25 keV, total dose: 1 × 1011ions / cm2And As other measurement conditions, standard conditions in the above-mentioned apparatus were adopted.
[0047]
FIG. 1 schematically shows a TOF-SIMS spectrum obtained from a sample immediately after slicing, and FIG. 2 schematically shows a TOF-SIMS spectrum of the same sample measured under the same conditions after one month. .
[0048]
Utilizing the measurement results, the mass number range in which the secondary ion peak corresponding to the parent ion of the nucleobase of DNA appears, that is, the mass number is in the range of 200 to 300, the number of ethylene units differs, A calibration curve was created using the secondary ion intensity for the main peak of.
[0049]
(Example 3)
TOF-SIMS measurement of nucleic acid probe array and evaluation by hybridization
The TOF-SIMS spectrum of the spotting portion on the surface of the nucleic acid probe array prepared in Example 1 was measured under the measurement conditions described in Example 2. One month later, the TOF-SIMS spectrum was measured again under the same conditions.
[0050]
For each of these spectra, the secondary ion intensity was normalized based on the corresponding calibration curve, and the PO attributed to the nucleic acid skeleton was determined.2 And the like. As a result, the difference between the corresponding standardized secondary ion intensities of both spectra measured one month later was within ± 10%.
[0051]
For the same nucleic acid probe array sample, the fluorescence intensity after hybridization disclosed in JP-A-2001-066305 was measured, and then measured again after one month, and the results were compared. Differences in strength were within ± 15%.
[0052]
(Comparative Example 1)
Regarding the TOF-SIMS spectrum described in Example 3, when the secondary ion intensity was not normalized by the calibration curve and the measured secondary ion intensity was directly compared, the difference in intensity between the two was ± 10% or more. However, variation was shown within ± 20%.
[0053]
(Example 4)
For the TOF-SIMS spectrum measured in the same manner as in Example 3, after normalizing the secondary ionic strength by a calibration curve, the PO2 And the intensity ratio of secondary ions due to the nucleic acid base was calculated. Thereafter, the measurement was performed again after one month, and similarly, the secondary ion intensity was normalized using a calibration curve, and then the intensity ratio was calculated. Comparing the intensity ratios in both measurements, the difference was within ± 20%.
[0054]
(Comparative Example 2)
Regarding the TOF-SIMS spectrum described in Example 4, the intensity ratio was calculated directly from the measured secondary ion intensity without normalizing the secondary ion intensity using a calibration curve. Thereafter, the measurement was performed again after one month, and the intensity ratio was calculated directly from the measured secondary ion intensity. Comparing the intensity ratios in the two measurements, the difference showed a variation within ± 30% or more, but within ± 40%.
[0055]
【The invention's effect】
In the method for analyzing the composition of an organic substance according to the present invention, in the TOF-SIMS spectrum of the organic substance used for the composition analysis, the composition varies as a means for correcting the sensitivity for each mass number, which is compatible with the corresponding secondary ion species. No reference material is used to correct the detector efficiency. That is, the method of the present invention uses the TOF-SIMS method for the TOF-SIMS method for the TOF-SIMS apparatus to be used after the detector efficiency is corrected by using the standard substance at the same time. Therefore, the mass number of the secondary ion species to be generated, standardized by the above-described efficiency correction, calibrated, based on the secondary ion intensity ratio, because it is a method of determining the composition of the target organic substance, High quantitativeness can be achieved by eliminating the influence of the change in the detector efficiency over time of the detection system of the measuring device.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a diagram schematically showing an example of a TOF-SIMS spectrum measured on a cross section immediately after cutting polyethylene, which is used as a standard substance.
FIG. 2 schematically shows an example of a TOF-SIMS spectrum when the section of polyethylene is re-measured under the same measurement conditions after one month from the measurement of the spectrum shown in FIG. FIG. 7 is a diagram illustrating a change in the relationship of “mass number vs secondary ion intensity” due to a change in detector efficiency over time.

Claims (8)

有機デバイス上の有機物質からなる膜の組成を飛行時間型二次イオン質量分析法により分析する方法であって、
被測定物の有機物質からなる膜に関して、飛行時間型二次イオン質量分析法によりその組成を定量する際、
標準物質を、前記被測定物の外部に設け、
被測定物と、その外部にある標準物質とについて、飛行時間型二次イオン質量分析装置の測定条件を同一に設定して、それぞれ二次イオン質量スペクトルを測定し、
前記標準物質において測定される二次イオン質量スペクトルに基づく、「質量数 対 二次イオン強度」の関係から検出器効率の補正を行い、
その補正された検出器効率により、前記有機物質からなる膜の二次イオン質量スペクトルの各二次イオン強度測定値を規格化較正し、その規格化較正後の二次イオン強度により、前記有機物質からなる膜の組成を定量的に分析することを特徴とする有機膜の組成分析方法。
A method of analyzing the composition of a film made of an organic substance on an organic device by time-of-flight secondary ion mass spectrometry,
When quantifying the composition of a film made of an organic substance of an object to be measured by time-of-flight secondary ion mass spectrometry,
A standard substance is provided outside the measured object,
For the object to be measured and the standard substance outside the same, the measurement conditions of the time-of-flight secondary ion mass spectrometer were set to be the same, and the secondary ion mass spectrum was measured, respectively.
Based on the secondary ion mass spectrum measured in the standard material, to correct the detector efficiency from the relationship of `` mass number versus secondary ion intensity '',
With the corrected detector efficiency, each secondary ion intensity measurement value of the secondary ion mass spectrum of the film made of the organic material is normalized and calibrated, and the secondary ion intensity after the normalized calibration is used to obtain the organic material. A method for analyzing the composition of an organic film, comprising quantitatively analyzing the composition of a film comprising:
被測定物の前記有機物質からなる膜は、該有機物質からなる単分子膜であることを特徴とする請求項1に記載の方法。The method according to claim 1, wherein the film made of the organic substance of the object to be measured is a monomolecular film made of the organic substance. 前記有機デバイスは、前記有機物質からなる膜として、複数の生体関連物質が基板上にマトリクス状に配置されているバイオチップであることを特徴とする請求項1に記載の方法。The method according to claim 1, wherein the organic device is a biochip in which a plurality of biological substances are arranged in a matrix on a substrate as a film made of the organic substance. 前記標準物質として、数平均分子量が1000〜100,0000の範囲にある高分子を選択することを特徴とする請求項1に記載の方法。The method according to claim 1, wherein a polymer having a number average molecular weight in a range of 1,000 to 100,0000 is selected as the standard substance. 前記高分子は、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリスチレン、ポリエチレンテレフタレート、ナイロン、ポリカーボネート、ポリ塩化ビニル、ポリブテン、ポリアクリロニトリルからなる群より選択されることを特徴とする請求項4に記載の方法。The method of claim 4, wherein the polymer is selected from the group consisting of polyethylene, polypropylene, polystyrene, polyethylene terephthalate, nylon, polycarbonate, polyvinyl chloride, polybutene, polyacrylonitrile. 前記検出器効率の補正工程は、
外部に設ける前記標準物質の二次イオン質量スペクトル中に出現する、二点若しくは三点以上の質量数に対応する二次イオンピーク強度を用いて、「質量数 対
二次イオン強度」の関係を示す検量線を作成し、
該検量線を用いて、該飛行時間型二次イオン質量分析装置の検出器による二次イオンの検出効率を補正する工程であることを特徴とする請求項1に記載の方法。
The step of correcting the detector efficiency includes:
Appearing in the secondary ion mass spectrum of the standard substance provided outside, using the secondary ion peak intensity corresponding to two or three or more mass numbers, the relationship of `` mass number versus secondary ion intensity '' Create a calibration curve that shows
2. The method according to claim 1, wherein the step of correcting the secondary ion detection efficiency by the detector of the time-of-flight secondary ion mass spectrometer using the calibration curve.
有機デバイス上に存在している、前記有機物質かららなる膜は、
直径が1μm〜1mmの範囲に選択される円状、若しくは、最も長い対角線の長さが1μm〜1mmの範囲に選択される多角形状であることを特徴とする請求項1に記載の方法。
The film comprising the organic substance, which is present on the organic device,
2. The method according to claim 1, wherein the diameter is a circle selected in a range of 1 [mu] m to 1 mm, or a polygonal shape whose longest diagonal length is selected in a range of 1 [mu] m to 1 mm.
被測定物と、その外部にある標準物質とについて測定を行う際、前記飛行時間型二次イオン質量分析装置の測定条件において、少なくとも、一次イオン電流または二次イオン引き出し電圧を同一条件に設定して、分析を行うことを特徴とする請求項1に記載の方法。When measuring an object to be measured and a standard substance outside the same, at least the primary ion current or the secondary ion extraction voltage is set to the same condition in the measurement conditions of the time-of-flight secondary ion mass spectrometer. The method of claim 1, wherein the analysis is performed.
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