JP2003159048A - γ−グルタミルシステイン産生酵母とそのスクリーニング法 - Google Patents
γ−グルタミルシステイン産生酵母とそのスクリーニング法Info
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- C12Q1/25—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving enzymes not classifiable in groups C12Q1/26 - C12Q1/66
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y603/00—Ligases forming carbon-nitrogen bonds (6.3)
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- C12Y603/02002—Glutamate-cysteine ligase (6.3.2.2)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y603/00—Ligases forming carbon-nitrogen bonds (6.3)
- C12Y603/02—Acid—amino-acid ligases (peptide synthases)(6.3.2)
- C12Y603/02003—Glutathione synthase (6.3.2.3)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
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-
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Abstract
γ−グルタミルシステインを産生する酵母菌株、及び、
同酵母菌株の簡便なスクリーニング方法、並びに、同酵
母菌株を利用したγ−グルタミルシステイン含有食品を
提供する。 【解決手段】 下記の各ステップにより、グルタチオン
合成酵素活性が弱化し、かつ、γ−グルタミルシステイ
ン産生能を有する酵母菌株をスクリーニングする: (a)酵母の集団から、一定の濃度範囲のMNNGに対
する耐性を有する酵母菌株を選択し、(b)選択された
菌株からグルタチオン合成酵素活性が弱化し、かつ、γ
−グルタミルシステイン産生能を有する菌株を選択す
る。
Description
ステインを産生する酵母菌株とそのスクリーニング法、
及び同酵母菌株の菌体を利用した食品に関するものであ
る。γ−グルタミルシステイン、及びそれから製造され
るシステインは、食品分野で有用である。
的に用いられている。システインの製法については蛋白
分解法や半合成法などが知られているが、現在主に用い
られている方法は蛋白分解法と半合成法である。システ
インを食品の風味改善に用いることを目的として、シス
テイン含量の高い天然食品素材が求められているが、そ
のような天然食品素材は従来ほとんど知られていなかっ
た。一方、γ−グルタミルシステインを含む酵母エキス
を加熱または酵素処理すれば、システインを高含有する
食品素材を得ることが可能であると報告されている(WO
00/30474)。
ミルシステイン合成酵素の働きによりシステインとグル
タミン酸を基質にして合成される。また、グルタチオン
はグルタチオン合成酵素の働きによりγ−グルタミルシ
ステインとグリシンを基質にして合成される。グルタチ
オン合成酵素遺伝子を破壊した酵母は、γ−グルタミル
システインを蓄積することが報告されている(Ohtake,
Y. et al., Agric. Biol. Chem., 54(12), 3145-3150,
1990)。
のスクリーニング方法として、メチルグリオキサール感
受性を指標とした知られている(Ohtake, Y. et al., A
gri.Biol. Chem., 54(12), 3145-3150, 1990)。この報
告によると、300個のメチルグリオキサール感受性株
の中から、グルタチオンを産生できない12株が選択さ
れた。更に解析を行った結果、8株はγ−グルタミルシ
ステイン合成酵素変異株であり、残り4株はグルタチオ
ン合成酵素変異株であったと述べられている。このスク
リーニング方法では、メチルグリオキサール感受性株7
5株のうち1株は、グルタチオン合成酵素の活性変異株
であったので、一見するとγ−グルタミルシステイン高
蓄積酵母の簡便なスクリーニング方法であるように思わ
れる。しかし、何株の変異酵母から前記300株のメチ
ルグリオキサール感受性酵母が選別されたか記載されて
いないので、メチルグリオキサール感受性を指標にした
スクリーニング法は、γ−グルタミルシステイン高含有
酵母の簡便なスクリーニング法であるとはいえない。更
に、メチルグリオキサール感受性を指標にする場合は、
レプリカという煩雑な操作が必要となるので、この点か
らも、到底簡便なスクリーニング方法とはいえない。
ニング方法としてMNNG(N−メチル−N’−ニトロ
−N−ニトロソグアニジン)耐性を利用する方法が知ら
れている(Kistler, M. et al., Mutation Research, 1
73 (1986) 117-120; Kistler, M. et al., Mutagenesi
s, 5(1) 39-44, 1990)が、それによると得られた酵母
はいずれもγ−グルタミルシステイン合成酵素を欠損し
ており、グルタチオン合成酵素活性が低下した株は得ら
れていない。また、グルタチオン欠損株をスクリーニン
グする他の方法として、ニトロプルシドナトリウムを利
用する方法も知られているが、やはり得られた酵母はす
べてγ−グルタミルシステイン合成酵素変異株であった
と報告している(Kistler, M. et al., Mutagenesis, 5
(1) 39-44,1990)。
背景の下に、グルタチオン合成酵素活性が弱化し、か
つ、γ−グルタミルシステインを産生する酵母菌株、及
び、同酵母菌株の簡便なスクリーニング方法、並びに、
同酵母菌株を利用したγ−グルタミルシステイン含有食
品を提供することを課題とする。
を解決するために鋭意検討を行った結果、一定濃度のM
NNGに対する耐性を指標とすることにより、グルタチ
オン合成酵素活性が弱化し、かつ、γ−グルタミルシス
テイン産生能を有する菌株を効率よく選択することがで
きることを見出し、本発明を完成するに至った。
テインを産生する酵母菌株。 (2)液体培地で前培養した酵母菌株を集菌し、660
nmにおける吸光度(OD660)が0.1となるように
30μg/mlのMNNGを含むYPD培地(MNNG
含有培地)及びMNNGを含まないYPD培地(MNN
G非含有培地)に植菌し、それぞれ好適な温度で静置培
養したとき、下記式で算出される生育度が0.03以上
である、(1)の酵母菌株。
た(1)又は(2)の酵母菌株。 (4)SD培地で培養したとき、対数増殖期の乾燥菌体
当たりのγ−グルタミルシステイン含量が1重量%以上
である(1)〜(3)のいずれかの酵母菌株。 (5)2倍性またはそれ以上の倍数性を有する(1)〜(4)
のいずれかの酵母菌株。 (6)サッカロマイセス属又はキャンディダ属に属する
(1)〜(5)のいずれかの酵母菌株。 (7)下記の各ステップを含む、グルタチオン合成酵素
活性が弱化し、かつ、γ−グルタミルシステイン産生能
を有する酵母菌株のスクリーニング法: (a)酵母の集団から、一定の濃度範囲のMNNGに対
する耐性を有する酵母菌株を選択し、(b)選択された
菌株からグルタチオン合成酵素活性が弱化し、かつ、γ
−グルタミルシステイン産生能を有する菌株を選択す
る。 (8)前記ステップ(a)において、前記酵母の集団
を、酵母親株を突然変異処理することにより調製する
(7)の方法。 (9)前記ステップ(a)において、一定の濃度範囲の
MNNGに耐性を有する酵母菌株を、MNNGの濃度勾
配が形成された寒天培地を用いて選択する、(7)又は(8)
の方法。 (10)前記ステップ(a)において、既に分離された
グルタチオン合成酵素活性が弱化し、かつ、γ−グルタ
ミルシステイン産生能を有する酵母モデル菌株を用意
し、同モデル菌株と同程度のMNNG耐性を有する酵母
菌株を選択する、(7)〜(9)のいずれかに記載の方法。 (11)(1)〜(6)のいずれかの酵母菌株を好適な条件で
培養して得られる培養物、もしくはγ−グルタミルシス
テインを含む前記培養物の分画物、又は熱処理によって
システインが生成したこれらの培養物もしくは分画物を
含む飲食品。 (12)飲食品がアルコール飲料、パン食品、又は発酵
食品調味料である(11)の飲食品。 (13)(1)〜(6)のいずれかの酵母菌株を好適な条件で
培養して得られる培養物を用いて製造された酵母エキ
ス。 (14)(1)〜(6)のいずれかの酵母菌株を好適な条件で
培養し、得られる培養物もしくはその分画物、又は加熱
処理した前記培養物又は分画物を、飲食品原料に混合
し、飲食品に加工することを特徴とする、γ−グルタミ
ルシステイン又はシステイン含有食品の製造法。
本発明の酵母菌株は、MNNG耐性を有し、かつ、γ−グル
タミルシステインを産生する菌株である。
は、ある濃度のMNNG存在下で野生株よりも生育がよいこ
とを意味するが、MNNG存在下とMNNG非存在下とで、同程
度の生育を示すことを要しない。言い換えれば、MNNG非
存在下に比べてMNNG存在下では生育が悪くても、MNNG存
在下で野生株よりも生育が良ければ、MNNG耐性を有す
る。典型的には、「MNNG耐性を有する」とは、液体培地
で前培養した酵母菌株を、660nmにおける吸光度(O
D660)が0.1となるように30μg/mlのMNNGを含むYPD培地
(MNNG含有培地)及びMNNGを含まないYPD培地(MNNG非
含有培地)で、それぞれ好適な温度で静置培養したと
き、下記式で算出される生育度が0.03以上、好ましくは
0.04以上、より好ましくは0.05以上であることをいう。
g/mlであるMNNG含有培地を用いることを除いて、上記と
同様にして算出される生育度が0.015以上、好ましくは
0.02以上、より好ましくは0.025以上である酵母菌株
は、MNNG耐性を有する。尚、MNNG耐性が高すぎると、γ
−グルタミルシステイン合成酵素を欠損している可能性
が高くなるので、MNNG耐性は必要以上に高すぎないこと
が好ましい。具体的には、例えば、MNNG濃度が30μg/ml
のときに、生育度が1.0以下、好ましくは0.2以下、より
好ましくは0.075以下であることが望ましい。
地が挙げられる。また、前培養は振盪培養でも静置培養
でもよいが、振盪培養が好ましい。本培養に用いる培地
としてはYPD培地が挙げられる。本培養は振盪培養でも
静置培養でもよいが、静置培養が好ましい。
によって異なるが、適当な培地、例えばYPD培地に酵母
を植菌し、種々の温度で培養して、増殖が良好である温
度範囲を調べることによって、決定することができる。
例えば、サッカロマイセス・セレビシエは、通常30℃
付近が好適である。また、培養時間は、特に制限されな
いが、対数増殖期を越えない培養期、好ましくは対数増
殖期の中期〜後期まで培養することが好ましい。具体的
には、通常、20〜40時間程度である。
ンを産生する」とは、酵母野生株よりも多量のγ−グル
タミルシステインを菌体内に蓄積することをいい、好ま
しくは、酵母菌株をSD培地で培養したとき、その対数増
殖期に乾燥酵母菌体当たり1%以上のγ−グルタミルシス
テインを蓄積することをいい、より好ましくは1.5%以上
のγ−グルタミルシステインを蓄積することをいい、特
に好ましくはγ−グルタミルシステインを蓄積し、か
つ、グルタチオンの蓄積量が0.1%以下であることをい
う。γ−グルタミルシステイン又はグルタチオンの蓄積
量は、菌体の固形成分、例えば、105℃で4時間加熱し
た後の菌体重量に対するγ−グルタミルシステイン又は
グルタチオンの含有量(%)をいう。また、「対数増殖
期」とは、培養中における酵母の細胞数が培養時間に対
して対数的に増加する時期をいう。
積量は、対数増殖期のすべてにわたって維持される必要
はなく、少なくとも対数増殖期の任意の時点において、
好ましくは、対数増殖期の次に述べる状態で、上記の値
を示せばよい。即ち、前記状態とは、対数増殖期から定
常状態になったときの培養液の吸光度の1/2以上の吸
光度を有する対数増殖期である。YPD培地及びSD培地の
組成は、以下のとおりである。
gen Base w/o Amino Acids and Ammonium Sulfate (Dif
co社)と5gの硫酸アンモニウムを混合したものを100mlの
滅菌水に溶解し、pHを5.2程度に調整し、フィルター濾
過滅菌したもの)
ステインを生産することができるものであれば特に制限
されないが、具体的にはサッカロマイセス・セレビシエ
等のサッカロマイセス属、キャンディダ・ユティリス等
のキャンディダ属、シゾサッカロマイセス・ポンベ等の
シゾサッカロマイセス属等に属する酵母が挙げられる。
また、本発明の酵母菌株は、2倍性またはそれ以上の倍
数性を有することが、生育が良好である点で好ましい。
2倍性またはそれ以上の倍数性を有する酵母は、それら
を変異処理しγ−グルタミルシステインを産生する株を
選択すること、或いはγ−グルタミルシステイン産生株
の育種に用いた1倍体酵母と、野生型グルタチオン合成
酵素保持株の1倍体を接合させ、得られた2倍体酵母を
胞子形成させることにより、グルタチオン合成酵素活性
が弱化し、γ−グルタミルシステインを産生する株を選
択し、相異なる接合型を有するγ−グルタミルシステイ
ン産生1倍体酵母2株を接合させることによって、取得
することができる。同様にして、3倍性又はそれ以上の
倍数性を有する酵母を取得することができる。
NG耐性を有し、かつ、γ−グルタミルシステインを産生
する。このような酵母菌株は、γ−グルタミルシステイ
ン合成酵素活性は欠損しておらず、かつ、グルタチオン
合成酵素活性は弱化している。その結果、γ−グルタミ
ルシステインを菌体内に蓄積する。尚、「グルタチオン
合成酵素活性が弱化した」とは、本発明の酵母菌株のグ
ルタチオン合成酵素活性が野生株の同活性に比べて低い
ことを意味し、同活性を欠損している場合も含まれる。
しかし、本発明の酵母菌株は、グルタチオン合成酵素活
性が欠損しているよりも、野生株より低い活性を保持し
ている方が好ましい。
て、スクリーニングすることができる。 (a)酵母の集団から、一定の濃度範囲のMNNGに対する
耐性を有する酵母菌株を選択し、(b)選択された菌株
からグルタチオン合成酵素活性が弱化し、かつ、γ−グ
ルタミルシステイン産生能を有する菌株を選択する。
菌株は、例えば、種々の濃度のMNNGを含有する液体培地
又は寒天培地で酵母を培養し、生育を調べることによっ
て、選択することができる。野生株に比べて生育がよい
株は、MNNG耐性を有する。また、MNNGの濃度勾配が形成
された寒天培地を用いて選択してもよい。MNNGの濃度勾
配は、寒天培地上にMNNG溶液、例えば1〜30mg/mlのMNNG
溶液を染み込ませたディスクを置くことによって、形成
させることができる。ディスクから遠ざかるにつれて、
培地中のMNNG濃度が低くなる。したがって、選択対象で
ある酵母の集団を寒天培地にまき、ディスクを培地の中
央に置いた後培養すると、多数の酵母について、種々の
濃度のMNNGに対する耐性を調べることができる。培地に
まく酵母の接種量は、出現するコロニーが互いに接触し
ないような量であることが好ましく、具体的にはプレー
ト当たり100〜200程度が好ましい。
する」とは、ある濃度のMNNG存在下では野生株よりも生
育がよいが、それよりも高い濃度のMNNG存在下では生育
できないことをいう。このように、MNNG耐性が高すぎ
ず、適度なMNNG耐性を有する菌株を選択することによっ
て、γ−グルタミルシステイン合成酵素を欠損せず、か
つ、グルタチオン合成酵素活性が弱化した菌株を効率良
く選択することができる。一定の濃度範囲のMNNGに対す
る耐性を有する酵母菌株は、MNNGの濃度勾配が形成され
た寒天培地上では、ディスクから一定の距離の位置にコ
ロニーを形成する。尚、選択される酵母菌株が耐性を示
すMNNGの濃度は、必ずしも同定する必要はなく、例えば
寒天培地上のディスクからの距離のような相対値であっ
てもよい。
母菌株は、既に分離されたグルタチオン合成酵素活性が
弱化し、かつ、γ−グルタミルシステイン産生能を有す
る酵母菌株をモデル菌株として用意し、モデル菌株と同
程度のMNNG耐性を有する酵母菌株を選択することによっ
て、取得することができる。MNNGの濃度勾配が形成され
た寒天培地を用いる場合は、ディスクとコロニーとの距
離がモデル菌株と同程度である菌株を選択する。このよ
うにモデル菌株を対照に用いることによって、酵母の集
団から、γ−グルタミルシステイン合成酵素活性は欠損
しておらず、かつ、グルタチオン合成酵素活性は野生株
に比べて弱化している酵母菌株を効率よく選択すること
ができる。
る、染色体上のグルタチオン合成酵素遺伝子によってコ
ードされるグルタチオン合成酵素が、370位のアルギ
ニン残基以降のC末端側の領域を欠失しているサッカロ
マイセス・セレビシエNα3株が挙げられる。同株は、
グルタチオン合成酵素活性が弱化している。また、グル
タチオン合成酵素活性が弱化し、かつ、γ−グルタミル
システイン産生能を有する酵母菌株が一旦得られれば、
同菌株のMNNG耐性を示すMNNGの濃度を指標として、モデ
ル菌株を用いずに選択を行うことができる。
数の酵母を含む集団であってもよいし、種々の変異株を
含む同種の酵母の集団であってもよい。また、選択され
る酵母菌株は、人為的な突然変異処理を施された菌株で
もよいし、自然突然変異株であってもよい。酵母の集団
は、好ましくは、酵母の野生株又は適当な変異を有する
変異株を親株として、これを突然変異処理することによ
り、調製される。また、酵母の集団は、特定の変異又は
ランダムな変異を導入したグルタチオン合成酵素遺伝子
を導入した酵母形質転換体であってもよい。
ング工程を組み合わせることにより、本発明の酵母菌株
を創出することができる。突然変異処理としては、紫外
線照射、または、MNNG、エチルメタンスルフォネート
(EMS)、メチルメタンスルフォネート(MMS)等の通常
変異処理に用いられている変異剤によって処理する方法
が挙げられる。
ルタチオン合成酵素活性が弱化し、かつ、γ−グルタミ
ルシステイン産生能を有する菌株を選択する。また、選
択された菌株のγ−グルタミルシステイン合成酵素活性
を測定し、同酵素活性を保持していることを確認してお
くことが好ましい。γ−グルタミルシステイン合成酵素
活性及びグルタチオン合成酵素性は、それぞれ、Jackso
nの方法(Jackson, R.C., Biochem. J., 111, 309 (196
9))、及びGushimaらの方法(Gushima, T. etal., J. A
ppl. Biochem., 5, 210 (1983))によって測定すること
ができる。また、γ−グルタミルシステインの産生を調
べることによっても、γ−グルタミルシステイン合成酵
素活性を保持し、かつ、グルタチオン合成酵素活性が弱
化していることを確認することができる。また、グルタ
チオンを含有しない培地での生育を調べることによっ
て、グルタチオン合成酵素活性が弱化しているか、欠損
していることか確認することができる。
システインを産生する酵母菌株を好適な条件で培養して
得られた培養物は、γ−グルタミルシステインを含有す
る。このような培養物又はその分画物は、γ−グルタミ
ルシステインを含有する。培養物は、酵母菌体を含む培
養液であってもよいし、それから採取された酵母菌体、
菌体破砕物、又は菌体抽出物(酵母エキス)であっても
よい。菌体破砕物又は酵母エキスから、γ−グルタミル
システインを含む画分を得てもよい。
物又はその分画物を加熱することにより、γ−グルタミ
ルシステインからシステインを遊離させることができ
る。培養に用いる培地は、本発明の酵母菌株が良好に生
育し、かつ、γ−グルタミルシステインを効率よく産生
するものであれば特に制限されない。特に、グルタチオ
ン合成酵素活性が弱化しているが、同活性を喪失してい
ない酵母菌株は、グルタチオンを含まない培地でも良好
に生育することができるので、通常、工業的に用いられ
る培地を用いることができる。尚、必要に応じて、用い
る菌株の形質にしたがって必要な栄養素を培地に添加す
る。
の酵母の培養、及び酵母エキスの調製尚と同様にして行
えばよい。酵母エキスは、酵母菌体を熱水抽出したもの
を処理したものでもよいし、酵母菌体を消化したものを
処理したものでもよい。
インを含む培養物又はその分画物は、飲食品の製造に用
いることができる。飲食品としては、アルコール飲料、
パン食品、又は発酵食品調味料が挙げられる。熱処理に
よるγ−グルタミルシステインからシステインの生成
は、飲食品の製造中、又は製造の後に行われてもよい。
上記飲食品は、γ−グルタミルシステイン又はシステイ
ンを含む培養物又はその分画物を、飲食品原料に混合
し、飲食品に加工することによって製造される。本発明
の飲食品は、前記培養物又は分画物を使用すること以外
は、通常の飲食品と同様の原料を用い、同様の方法によ
って製造することができる。このような原料としては、
例えばアルコール飲料では、米、大麦、コーンスターチ
等、パン食品では小麦粉、砂糖、食塩、バター、発酵用
酵母菌等が、発酵食品調味料では大豆、小麦等が挙げら
れる。
説明する。
素弱化株のスクリーニング <1>スクリーニングモデル株Nα3株の育種 (1)弱化型グルタチオン合成酵素遺伝子置換用カセッ
トの作製 自然界より単離したサッカロマイセス・セレビシエか
ら、常法に従って1倍体Nα1株(ウラシル要求性)を
取得した。Nα1株を用いて以下に記載する方法によ
り、弱化型グルタチオン合成酵素遺伝子を保持するモデ
ル株Nα3株を取得した。
列番号1))及びR1(AGAAGGAATGAGCCTAAAACAGC(配列
番号2))を用い、Pyrobest DNA Polymerase(宝酒
造)を用い、製造者の指示する条件に従い、サッカロマ
イセス・セレビシエS2株のグルタチオン合成酵素遺伝子
のORFの途中からORFの下流約120塩基対をコードする領
域をPCR法により増幅した。前記S2株は、次のようにし
て取得した。食品用途に用いられる市販のサッカロマイ
セス・セレビシエを胞子形成させ、1倍体パン酵母S株
(MATα)を取得した。さらに、S株から、ウラシルを含む
SDFOA寒天培地(2%精製寒天、最終濃度で50mg/Lのウラ
シル、及び1g/Lの5−フルオロオロチン酸−水和物を含
むSD培地)を用いて、ウラシル要求性株S2株を取得し
た。
製し、以下の条件で72℃で10分間酵素反応を行うことに
より、末端にAを付加した。
H2dash)を、常法によりプラスミドpGEM-T Easy(Prome
ga社)に連結して、プラスミドGSH2dash/pGEMを得た。
オン合成酵素遺伝子の370番目のアミノ酸に対応するコ
ドンを終止コドンに置換した。この操作は、QuikChange
TM Site-Directed Mutagenesis Kit(STRATAGENE社)を
用い、製造者のプロトコルに従って行った。プライマー
はGSH2M-F1(GGCAGGGAAGGCAAGTAGCTGGCATTAAGTGAGCCCTC
(配列番号3))、GSH2M-R1(GAGGGCTCACTTAATGCCAGCT
ACTTGCCTTCCCTGCC(配列番号4))を用いた。このよう
にしてプラスミドGSH2Mdash/pGEMを作製した。
から2μoriを除去したプラスミドを作製した。pYES2を
制限酵素SspI、NheIで切断し、切断末端を平滑化した
後、連結させ、プラスミドpYES2dashを得た。pYES2dash
及びGSH2Mdash/pGEMを、いずれも制限酵素SacI及びSphI
で切断し、pYES2dashからはURA3遺伝子を含む断片を、G
SH2Mdash/pGEMからは変異を有するグルタチオン合成酵
素遺伝子断片を切り出し、これらを連結した。このよう
にしてプラスミドGSH2Mdash/pYES2dashを作製した。GSH
2Mdash/pYES2dashを制限酵素MunIで切断し、遺伝子置換
用カセットを得た(図1)。
置換株の構築 上記のようにして作製したカセットを用いて、Nα1株の
グルタチオン合成酵素遺伝子の遺伝子置換を行った(図
2)。Nα1株を前培養した後に、培養物を50mlのYPD培
地に植え継ぎ、対数増殖期まで培養した。培養菌体を1
Mソルビトールに懸濁し、カセットを混和して、エレク
トロポレーションにより形質転換を行った。形質転換株
を1mMのグルタチオンを含むSDプレートで培養し、生育
する株を選択した。カセット2が染色体上の目的の位置
に組み込まれたことをPCRによって確認し、得られた株
をNα3中間体とした。
オン合成酵素遺伝子のみを染色体に残すため、以下の操
作を行った。Nα3中間体をYPD培地で培養し、培養産物
を1mMのグルタチオンを含むSDFOAプレートに蒔いた。プ
レート上に生育してきた株のグルタチオン合成酵素遺伝
子の配列を決定し、目的の部位の配列が正しく置換され
ていることを確認し、Nα3株を得た。
ルタミルシステインの産生 Nα3株の対数増殖期における単位時間あたりのγ−グ
ルタミルシステイン及びグルタチオンの生産量を調べ
た。Nα3株をYPD培地で前培養した後、培養物を50mlの
SD培地(必要量のウラシルを含む)に植え継ぎ、30℃で
振とう培養した。
ンの生産量は、次のようにして測定した。培養物を遠心
することにより菌体を取得し、この菌体を蒸留水で2回
洗浄した後、70℃で10分間の熱水抽出処理に付し、細胞
内容物を得た。これを遠心処理し、得られた上清中のγ
−グルタミルシステイン及びグルタチオン含量を測定し
た。また、一定培地中に含まれる酵母菌体を濾紙上に取
り、105℃で4時間加熱した後に残った菌体重量を測定
し、乾燥菌体重量とした。表1に、乾燥菌体重量当たり
のγ−グルタミルシステイン及びグルタチオンの含有量
を示す。
を30μlのDMSOに溶解させた溶液を全量、そのフィルタ
ーに染み込ませ、MNNG濃度が中心点から遠ざかるにつれ
て薄くなるMNNG濃度勾配寒天培地を作製した。この寒天
培地に、YPD液体培地で培養したN株及びNα3株をスプ
レッドした。30℃で70時間培養後、寒天培地の中心点
から酵母がコロニーを形成するまでの距離を測定した。
その結果、Nα1株は2.3cm、Nα3株は1.8cmであっ
た。
リーニング 食品用途に用いられているサッカロマイセス・セレビシ
エを、常法により胞子形成させて1倍体パン酵母MS株を
取得し、変異剤としてEMSを用いて変異処理を施した。
変異処理は、死滅率が90%になるような条件で行った。
変異処理は次のようにして行なった。MS株を50mlのYPD
培地で30℃で1日間振盪培養し、酵母菌体を集菌した。
酵母菌体を0.2Mリン酸ナトリウムバッファー(pH7.5)
で3回洗浄した。酵母菌体を0.2Mリン酸ナトリウムバッ
ファー(pH7.5)9.2ml、40% D-グルコース0.5ml、EMS 0.3
ml(ナカライテスク社Code155-19)を含む溶液に懸濁
し、30℃で90分間振盪培養した。10%チオ硫酸ナトリウ
ム(フィルター滅菌)を10ml加えて懸濁し、10分間室温
に放置して変異剤を中和した。酵母菌体を集菌し、0.2M
リン酸ナトリウムバッファー(pH7.5)で洗浄した。こ
のようにして酵母の変異処理を行なった。なお、このと
きの死滅率は90%であった。
を、MNNG濃度勾配寒天培地(YPD寒天プレートの中央に
フィルターを置き、1mgのMNNGを30μlのDMSOに溶解させ
た溶液を全量フィルターに染み込ませることにより作
製)に出現コロニー数が200個以下になるようにスプレ
ッドし、30℃で5日間静地培養した。グルタチオンを通
常量産生する酵母(Nα1株)は生育できない(寒天培地
の中心点から約2.3cm)が、γ−グルタミルシステイン
を産生し、グルタチオンを産生しないか又はほとんど産
生しない酵母(Nα3株)は生育可能(寒天培地の中心
点から約1.8cm)なMNNG濃度範囲で生育した酵母変異株
を単離した。それらの変異株93株についてγ−グルタ
ミルシステイン産生能を測定し、グルタチオン合成酵素
活性が弱化した変異株AJ14809株を取得した。
倍体酵母によるγ−グルタミルシステインの生産 <1>γ−グルタミルシステインを産生する2倍体酵母
の作製 グルタチオン合成酵素活性が弱化したサッカロマイセス
・セレビシエとして、市販のパン酵母(2倍体)を胞子
形成させ取得した1倍体酵母を変異処理し、MNNG濃度勾
配寒天培地を利用して取得した1倍体酵母(MATα)AJ1
4809株を用いた。同株は、上記のように、Nα3株を対
照として用い、Nα3株と同程度のMNNG耐性を有する株
として選択された。AJ14809株は、2001年10月1日に、独
立行政法人 産業技術総合研究所 特許生物寄託センター
(〒305-5466 日本国茨城県つくば市東1丁目1番地1
中央第6)に、FERM P-18546の受託番号で寄託されて
いる。一方、サッカロマイセス・セレビシエ野生株とし
て、AJ14810株(MATa)を用いた。同株は、2001年10月1
日に、独立行政法人 産業技術総合研究所 特許生物寄託
センターに、FERM P-18547の受託番号で寄託されてい
る。
試験管培地で30℃で振盪培養し、培養物をYPD試験管培
地で混合し、30℃で振盪培養した。顕微鏡でAJ14809株
とAJ14810株が接合していることを確認後、培養液をYPD
寒天培地にスプレッドし、30℃で培養した。寒天培地上
に生育してきた酵母の中から、AJ14809株由来のグルタ
チオン合成酵素遺伝子及びAJ14810株由来のグルタチオ
ン合成酵素遺伝子を有する2倍体を取得した。この2倍
体を胞子形成させ、ランダムスポア法により、MATaを保
持し、かつ、グルタチオン合成酵素活性が弱化し、SD培
地で培養したとき対数増殖期においてγ−グルタミルシ
ステインを乾燥酵母菌体あたり1%以上含有し、グルタチ
オンを0.1%以下蓄積する1倍体酵母を10株選抜した。こ
れら10株を各々AJ14809株と接合させ、グルタチオン合
成酵素活性が弱化し、SD培地で培養したとき、対数増殖
期においてγ−グルタミルシステインを乾燥酵母菌体あ
たり約1.5%蓄積する2倍体酵母AJ14800株を取得した。
対照として、AJ14809株とAJ14810株を接合させた2倍体
酵母から、野生型グルタチオン合成酵素を産生する株を
選択し、L株とした。
野生型グルタチオン合成酵素を産生する2倍体サッカロ
マイセス・セレビシエL株をYPD培地で培養して得た培
養液を、660nmでの吸光度が0.1になるように、30μg/ml
又は60μg/mlのMNNGを含むYPD培地あるいはYPD培地に植
菌した。30℃で26時間、静地培養した際の培地の660nm
での吸光度を測定し、生育度を測定した。その結果、表
2に示すように、グルタチオン合成酵素弱化株AJ14800
株は、野生型グルタチオン合成酵素保持株よりもMNNGに
耐性であった。
イン蓄積量の測定 AJ14800株をYPD培地で40時間培養した後、集菌した。こ
の菌体を、660nmでの吸光度が0.2になるようにSD培地に
植菌した。培養開始後8時間後の菌体内γ−グルタミル
システイン蓄積量を測定したところ、蓄積量は1.50%で
あった。
性が弱化し、かつ、γ−グルタミルシステインを産生す
る酵母菌株が提供される。本発明の菌株は、γ−グルタ
ミルシステイン含有食品又はシステイン含有食品の製造
に利用することができる。
セットを含むプラスミドGSH2Mdash/pYES2dashの構築を
示す図。
遺伝子の遺伝子置換を模式的に示す図。
Claims (14)
- 【請求項1】 MNNG耐性を有し、かつ、γ−グルタ
ミルシステインを産生する酵母菌株。 - 【請求項2】 液体培地で前培養した酵母菌株を集菌
し、660nmにおける吸光度(OD660)が0.1と
なるように30μg/mlのMNNGを含むYPD培地
(MNNG含有培地)及びMNNGを含まないYPD培
地(MNNG非含有培地)に植菌し、それぞれ好適な温
度で静置培養したとき、下記式で算出される生育度が
0.03以上である、請求項1記載の酵母菌株。 【数1】 - 【請求項3】 グルタチオン合成酵素活性が弱化した請
求項1又は2に記載の酵母菌株。 - 【請求項4】 SD培地で培養したとき、対数増殖期の
乾燥菌体当たりのγ−グルタミルシステイン含量が1重
量%以上である請求項1〜3のいずれか一項に記載の酵
母菌株。 - 【請求項5】 2倍性またはそれ以上の倍数性を有する
請求項1〜4のいずれか一項に記載の酵母菌株。 - 【請求項6】 サッカロマイセス属又はキャンディダ属
に属する請求項1〜5のいずれか一項に記載の酵母菌
株。 - 【請求項7】 下記の各ステップを含む、グルタチオン
合成酵素活性が弱化し、かつ、γ−グルタミルシステイ
ン産生能を有する酵母菌株のスクリーニング法: (a)酵母の集団から、一定の濃度範囲のMNNGに対
する耐性を有する酵母菌株を選択し、(b)選択された
菌株からグルタチオン合成酵素活性が弱化し、かつ、γ
−グルタミルシステイン産生能を有する菌株を選択す
る。 - 【請求項8】 前記ステップ(a)において、前記酵母
の集団を、酵母親株を突然変異処理することにより調製
する請求項7記載の方法。 - 【請求項9】 前記ステップ(a)において、一定の濃
度範囲のMNNGに耐性を有する酵母菌株を、MNNG
の濃度勾配が形成された寒天培地を用いて選択する、請
求項7又は8に記載の方法。 - 【請求項10】 前記ステップ(a)において、既に分
離されたグルタチオン合成酵素活性が弱化し、かつ、γ
−グルタミルシステイン産生能を有する酵母モデル菌株
を用意し、同モデル菌株と同程度のMNNG耐性を有す
る酵母菌株を選択する、請求項7〜9のいずれか一項に
記載の方法。 - 【請求項11】 請求項1〜6のいずれか一項に記載の
酵母菌株を好適な条件で培養して得られる培養物、もし
くはγ−グルタミルシステインを含む前記培養物の分画
物、又は熱処理によってシステインが生成したこれらの
培養物もしくは分画物を含む飲食品。 - 【請求項12】 飲食品がアルコール飲料、パン食品、
又は発酵食品調味料である請求項11記載の飲食品。 - 【請求項13】 請求項1〜6のいずれか一項に記載の
酵母菌株を好適な条件で培養して得られる培養物を用い
て製造された酵母エキス。 - 【請求項14】 請求項1〜6のいずれか一項に記載の
酵母菌株を好適な条件で培養し、得られる培養物もしく
はその分画物、又は加熱処理した前記培養物又は分画物
を、飲食品原料に混合し、飲食品に加工することを特徴
とする、γ−グルタミルシステイン又はシステイン含有
食品の製造法。
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