JP2003038170A - 前眼部関連細胞シート、3次元構造体、及びそれらの製造法 - Google Patents
前眼部関連細胞シート、3次元構造体、及びそれらの製造法Info
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Abstract
胞、基材間の基底膜様蛋白質が保持された状態で回収さ
れる構造欠陥の少ない前眼部関連細胞シートまたは3次
元構造体を提供すること。 【解決手段】 水に対する上限もしくは下限臨界溶解温
度が0〜80℃である温度応答性ポリマーで基材表面を
被覆した細胞培養支持体上で細胞を培養し、必要により
培養細胞層を重層化させ、その後(1)培養液温度を上
限臨界溶解温度以上または下限臨界溶解温度以下とし、
必要に応じ、(2)培養した前眼部関連細胞シートまた
は3次元構造体を高分子膜に密着させ、(3)そのまま
高分子膜と共に剥離することによって前眼部関連細胞シ
ートまたは3次元構造体を製造する。
Description
における前眼部関連細胞シート、3次元構造体、及びそ
れらの製造法及びそれらを利用した治療法に関する。
療困難となった臓器を他人の臓器と置き換えようとする
臓器移植が一般化してきた。対象となる臓器も皮膚、角
膜、腎臓、肝臓、心臓等と実に多様で、また、術後の経
過も格段に良くなり、医療の一技術としてすでに確立さ
れつつある。一例として角膜移植をあげると、約40年
前に日本にもアイバンクが設立され移植活動が始められ
た。しかしながら、未だにドナー数が少なく、国内だけ
でも角膜移植の必要な患者が年間約2万人出てくるのに
対し、実際に移植治療が行える患者は約1/10の20
00人程度でしかないといわれている。角膜移植という
ほぼ確立された技術があるにもかかわらず、ドナー不足
という問題のため、次なる医療技術が求められているの
が現状である。
替物や細胞を培養して組織化させたものをそのまま移植
しようという技術が注目されている。その代表的な例と
して、人工皮膚及び培養皮膚があげられよう。ここで、
合成高分子を用いた人工皮膚は拒絶反応等が生じる可能
性があり、移植用皮膚としては好ましくない。一方、培
養皮膚は本人の正常な皮膚の一部を所望の大きさまで培
養したものであるため、これを使用しても拒絶反応等の
心配がなく、最も自然なマスキング剤と言える。
上あるいは種々の処理を行った合成高分子の表面上にて
行われていた。例えば、ポリスチレンを材料とする表面
処理、例えばγ線照射、シリコーンコーティング等を行
った種々の容器等が細胞培養用容器として普及してい
る。このような細胞培養用容器を用いて培養・増殖した
細胞は、トリプシンのような蛋白分解酵素や化学薬品に
より処理することで容器表面から剥離・回収される。
て増殖した細胞を回収する場合、処理工程が煩雑にな
り、不純物混入の可能性が多くなること、及び増殖した
細胞が化学的処理により変成若しくは損傷し細胞本来の
機能が損なわれる例があること等の欠点が指摘されてい
た。かかる欠点を克服するために、これまでいくつかの
技術が提案されている。
生児由来角化表皮細胞を、ケラチン組織の膜が容器の表
面上に形成される条件下に、培養容器中で培養し、ケラ
チン組織の膜を酵素を用いて剥離させることを特徴とす
るケラチン組織の移植可能な膜を製造する方法、が記載
されている。具体的には、3T3細胞をフィーダーレイ
ヤーとして増殖、重層化させ、蛋白質分解酵素であるデ
ィスパーゼを用いて細胞シートを回収する技術が開示さ
れている。しかしながら、当該公報に記載されている方
法は次のような欠点を有していた。 (1)ディスパーゼは菌由来のものであり、回収された
細胞シートを十分に洗浄する必要性があること。 (2)培養された細胞ごとにディスパーゼ処理の条件が
異なり、その処理に熟練が必要であること。 (3)ディスパーゼ処理により培養された表皮細胞が病
理学的に活性化されること。 (4)ディスパーゼ処理により細胞外マトリックスが分
解されること。 (5)そのためその細胞シートを移植された患部は感染
され易いこと。
皮細胞、角膜内皮細胞、及び結膜上皮細胞などの前眼部
関連細胞は、皮膚細胞ほど細胞・細胞間の結合が強くな
く、上記ディスパーゼをもってしても、培養後、1枚の
シートとして剥離、回収することはできなかった。
ンジ層と上皮層を除去した羊膜上で、角膜上皮細胞や結
膜上皮細胞を培養、組織化させ、その羊膜ごと移植用細
胞片とする技術が考案された(特開2001−1613
53号)。羊膜が十分な膜強度を持っていること、さら
に抗原性を持っていないことから、移植用細胞片の支持
体として好都合だが、羊膜というものがもともと眼内に
なく、より精密に眼内組織を構築していくためには、や
はり眼内の細胞だけで十分な強度を持ったシートの作成
が望まれていた。
な従来技術の問題点を解決することを意図してなされた
ものである。すなわち、本発明は、細胞、細胞間のデス
モソーム構造、及び細胞、基材間の基底膜様蛋白質が保
持された状態で回収される構造欠陥の少ない前眼部関連
細胞シートまたは3次元構造体を提供することを目的と
する。また、本発明は、ディスパーゼのような酵素で処
理することなく環境温度を変化させることにより、培養
・増殖させた細胞を容易にかつ1枚のシートとして十分
に強度を持った状態で支持体表面からの剥離・回収が可
能となる方法を提供することを目的とする。
を解決するために、種々の角度から検討を加えて、研究
開発を行った。その結果、温度応答性ポリマーで基材表
面を被覆した細胞培養支持体上で前眼部関連細胞を培養
し、必要により培養細胞層を重層化させ、その後、培養
液温度を上限臨界溶解温度以上または下限臨界溶解温度
以下とし、培養した前眼部関連細胞シートまたは3次元
構造体を高分子膜に密着させ、そのまま高分子膜と共に
剥離することにより、構造欠陥の少ない前眼部関連細胞
シートまたは3次元構造体が得られることを見いだし
た。本発明はかかる知見に基づいて完成されたものであ
る。
モソーム構造、及び細胞、基材間の基底膜様蛋白質が保
持された状態で回収される構造欠陥の少ない前眼部関連
細胞シートまたは3次元構造体を提供する。
下限臨界溶解温度が0〜80℃である温度応答性ポリマ
ーで基材表面を被覆した細胞培養支持体上で細胞を培養
し、必要に応じて常法により培養細胞層を重層化させ、
その後(1)培養液温度を上限臨界溶解温度以上または
下限臨界溶解温度以下とし、(2)培養した前眼部関連
細胞シートまたは3次元構造体を高分子膜に密着させ、
及び(3)そのまま高分子膜と共に剥離することを特徴
とする前眼部関連細胞シートまたは3次元構造体の製造
法を提供する。
分子膜に密着した前眼部関連細胞シートまたは3次元構
造体を再び細胞培養支持体、温度応答性ポリマーで表面
を被覆した細胞培養支持体、高分子膜、或いは他の細胞
シート等に付着させ、その後、密着した高分子膜を剥が
す操作を繰り返すことで重層化させることを特徴とする
3次元構造体の製造法を提供する。
たは創傷した組織を治療するための上記前眼部関連細胞
シートまたは3次元構造体を提供する。更に加えて、本
発明は、深部まで欠損及び/または創傷した組織に対
し、上記前眼部関連細胞シートまたは3次元構造体を移
植することを特徴とする治療法を提供する。
物質、毒物、或いは医薬品の安全性評価用細胞として有
用な前眼部関連細胞シートまたは3次元構造体を提供す
る。
たは3次元構造体の作製に使用される好適な細胞として
角膜上皮細胞、角膜内皮細胞、結膜上皮細胞等、及び上
皮幹細胞が挙げられるが、その種類は、何ら制約される
ものではない。本発明において、前眼部関連細胞シート
とは、上記したように生体における前眼部を形成する各
種細胞が培養支持体上で単層状に培養され、その後、支
持体よる剥離されたシートを意味し、その3次元構造体
とは、その各種表皮培養細胞シートが単独若しくは組み
合わされた状態で重層化されたシートを意味する。
は3次元構造体は培養時にディスパーゼ、トリプシン等
で代表される蛋白質分解酵素に損傷を受けていないもの
である。そのため、基材から剥離された前眼部関連細胞
シートまたは3次元構造体は、細胞、細胞間のデスモソ
ーム構造が保持され、構造的欠陥が少なく、また強度の
高いものである。このことは、例えば、得られた前眼部
関連細胞シートまたは3次元構造体を移植等を目的に利
用した場合、本発明の前眼部関連細胞シートまたは3次
元構造体は十分に強度を持っているものであるため、患
部は外部と完全に隔離される。また、本発明のシートは
培養時に形成される細胞、基材間の基底膜様蛋白質も酵
素による破壊を受けていない。このことは、移植時にお
いて患部組織と良好に接着することができ、効率良い治
療を実施することができるようになる。以上のことを具
体的に説明すると、トリプシン等の通常の蛋白質分解酵
素を使用した場合、細胞、細胞間のデスモソーム構造及
び細胞、基材間の基底膜様蛋白質等は殆ど保持されてお
らず、従って、細胞は個々に分かれた状態となって剥離
される。その中で、蛋白質分解酵素であるディスパーゼ
に関しては、細胞、基材間の基底膜様蛋白質等を殆ど破
壊してしまうものの、デスモソーム構造については10
〜60%保持した状態で剥離させることができることで
知られているが、得られる細胞シートは強度の弱いもの
である。これに対して、本発明の細胞シートは、デスモ
ソーム構造、基底膜様蛋白質共に80%以上残存された
状態のものであり、上述したような種々の効果を得るこ
とができるものである。
は3次元構造体は、以上に示すように、細胞、細胞間の
デスモソーム構造、及び、細胞、基材間の基底膜様蛋白
質双方を兼ね備え、しかも強度の高いシートであり、従
来技術からでは全く得られなかったものである。
られる温度応答性ポリマーは、水溶液中で上限臨界溶解
温度または下限臨界溶解温度0℃〜80℃、より好まし
くは20℃〜50℃を有する。上限臨界溶解温度または
下限臨界溶解温度が80℃を越えると細胞が死滅する可
能性があるので好ましくない。また、上限臨界溶解温度
または下限臨界溶解温度が0℃より低いと一般に細胞増
殖速度が極度に低下するか、または細胞が死滅してしま
うため、やはり好ましくない。
ポリマー、コポリマーのいずれであってもよい。このよ
うなポリマーとしては、例えば、特開平2−21186
5号公報に記載されているポリマーが挙げられる。具体
的には、例えば、以下のモノマーの単独重合または共重
合によって得られる。使用し得るモノマーとしては、例
えば、(メタ)アクリルアミド化合物、N−(若しくは
N,N−ジ)アルキル置換(メタ)アクリルアミド誘導
体、またはビニルエーテル誘導体が挙げられ、コポリマ
ーの場合は、これらの中で任意の2種以上を使用するこ
とができる。更には、上記モノマー以外のモノマー類と
の共重合、ポリマー同士のグラフトまたは共重合、ある
いはポリマー、コポリマーの混合物を用いてもよい。ま
た、ポリマー本来の性質を損なわない範囲で架橋するこ
とも可能である。
養に用いられるガラス、改質ガラス、ポリスチレン、ポ
リメチルメタクリレート等の化合物を初めとして、一般
に形態付与が可能である物質、例えば、上記以外の高分
子化合物、セラミックス類など全て用いることができ
る。
は、特に制限されないが、例えば、特開平2−2118
65号公報に記載されている方法に従ってよい。すなわ
ち、かかる被覆は、基材と上記モノマーまたはポリマー
を、電子線照射(EB)、γ線照射、紫外線照射、プラ
ズマ処理、コロナ処理、有機重合反応のいずれかによ
り、または塗布、混練等の物理的吸着等により行うこと
ができる。
答性高分子が被覆されたA領域と、(1)細胞と親和性
の低い高分子が被覆されている領域、(2)A領域と異
なる量の温度応答性高分子が被覆されている領域、
(3)A領域と異なる温度に応答する高分子が被覆され
ている領域のいずれか、または(1)〜(3)の任意の
2つもしくは3つの組み合わせからなるB領域の2領域
を表面に持つことを特徴とするものである。
を有するものであれば何ら制約されるものではないが、
例えば、基材表面上全体にまずB領域を作成し、その
後、最終的にB領域となる部分をマスクしてA領域を上
乗せする方法、或いはそのA,Bを逆にした方法、あ
らかじめA,Bの2層を被覆しておき、超音波或は走査
型機器によりどちらかの層を削り取る方法、被覆物質
をオフセット印刷する方法、等を単独または併用する方
法が挙げられる。
えば、ラインとスペースからなるパターン、水玉模
様のパターン、格子状のパターン、その他特殊な形の
パターン、或いはこれらが混ざっている状態のパターン
が挙げられ何ら限定されるものではないが、眼内の各組
織の状態を考え、の円形状のパターンのものが好まし
い。
はないが、眼内の各組織の大きさ、並びに培養した前眼
部関連細胞シートまたは3次元構造体を剥離した際、収
縮することを考え、円形状のパターンでその円内にある
細胞を使用する場合、その円の直径は5cm以下、好ま
しくは3cm以下、さらに2cm以下が好ましい。円の
外側を使う場合は、その円の直径は1mm以下、好まし
くは3mm以下、さらに5mm以下が好ましい。
6.0μg/cm2の範囲が良く、好ましくは0.5〜
3.5μg/cm2であり、さらに好ましくは0.8〜
3.0μg/cm2である。0.2μg/cm2より少な
い被覆量のとき、刺激を与えても当該高分子上の細胞は
剥離し難く、作業効率が著しく悪くなり好ましくない。
逆に6.0μg/cm2以上であると、その領域に細胞
が付着し難く、細胞を十分に付着させることが困難とな
る。
とは、細胞が付着しないものならば何ら制約されるもの
ではないが、例えば、ポリアクリルアミド、ポリジメチ
ルアクリルアミド、ポリエチレングリコール、セルロー
ス等の親水性高分子、或いはシリコーン高分子、フッ素
高分子等の強疎水性高分子等が挙げられる。
にして製造された細胞培養支持体上(例えば、細胞培養
皿)で行われる。培地温度は、基材表面に被覆された前
記ポリマーが上限臨界溶解温度を有する場合はその温度
以下、また前記ポリマーが下限臨界溶解温度を有する場
合はその温度以上であれば特に制限されない。しかし、
培養細胞が増殖しないような低温域、あるいは培養細胞
が死滅するような高温域における培養が不適切であるこ
とは言うまでもない。温度以外の培養条件は、常法に従
えばよく、特に制限されるものではない。例えば、使用
する培地については、公知のウシ胎児血清(FCS)等
の血清が添加されている培地でもよく、また、このよう
な血清が添加されていない無血清培地でもよい。
い、前眼部関連細胞シートまたは3次元構造体の使用目
的に合わせて培養時間を設定すればよい。培養した細胞
を支持体材料から剥離回収するには、培養された前眼部
関連細胞シートまたは3次元構造体を高分子膜に密着さ
せ、細胞の付着した支持体材料の温度を支持体基材の被
覆ポリマーの上限臨界溶解温度以上若しくは下限臨界溶
解温度以下にすることによって、そのまま高分子膜とと
もに剥離することができる。なお、シートを剥離するこ
とは細胞を培養していた培養液において行うことも、そ
の他の等張液において行うことも可能であり、目的に合
わせて選択することができる。前眼部関連細胞シートま
たは3次元構造体を密着させる際に使用する高分子膜と
しては、例えば、ポリビニリデンジフルオライド(PV
DF)、ポリプロピレン、ポリエチレン、セルロース及
びその誘導体、キチン、キトサン、コラーゲン、ウレタ
ン等を挙げることができる。
に限定されるものではないが、例えば、一般的に知られ
ている3T3細胞をフィーダーレイヤーとして増殖、重
層化させる方法、或いは上記の高分子膜に密着した表皮
培養細胞シートを利用することで製造する方法等を挙げ
ることができる。具体的には、次のような方法が例示さ
れる。 (1)高分子膜と密着した細胞シートを細胞培養支持体
に付着させ、その後培地を加えることで高分子膜を細胞
シートからはがし、そして更に別の高分子膜と密着した
細胞シートを付着させることを繰り返すことで細胞シー
トを重層化させる方法。 (2)高分子膜と密着した細胞シートを反転させ細胞培
養支持体上で高分子膜側で固定させ、細胞シート側に別
の細胞シートを付着させ、その後培地を加えることで高
分子膜を細胞シートからはがし、再び別の細胞シートを
付着させる操作を繰り返すことで細胞シートを重層化さ
せる方法。 (3)高分子膜と密着した細胞シート同士を細胞シート
側で密着させる方法。 (4)高分子膜と密着した細胞シートを生体の患部に当
て、細胞シートを生体組織に付着させた後、高分子膜を
はがし、再び別の細胞シートを重ねていく方法。
角膜上皮細胞だけからなるものでなくても良い。例え
ば、角膜上皮細胞からなる細胞シート或いは3次元構造
体に、同様に操作して作製した角膜内皮細胞シート及び
/または結膜上皮細胞シートを重ね合わせることも可能
である。生体内の前眼部組織により近いものとする上で
このような技術は極めて有効である。
を高収率で剥離、回収する目的で、細胞培養支持体を軽
くたたいたり、ゆらしたりする方法、更にはピペットを
用いて培地を撹拌する方法等を単独で、あるいは併用し
て用いてもよい。加えて、必要に応じて培養細胞は等張
液等で洗浄して剥離回収してもよい。
シートまたは3次元構造体は、従来の方法により得られ
たものに比べて、剥離性の点でも非侵襲性の点でも極め
て優れており、移植用角膜等の臨床応用が強く期待され
る。特に、本発明の前眼部関連細胞の3次元構造体は従
来の移植シートとは異なり、基底膜様蛋白質をほじして
いるため、移植の際に患部組織を深く削っても、生着す
る。このことは、患部の治療効率の向上、更には患者の
負担の軽減もはかられ極めて有効な技術と考えられる。
なお、本発明の方法において使用される細胞培養支持体
は繰り返し使用が可能である。
く説明するが、これらは本発明を何ら限定するものでは
ない。
クトン・ディッキンソン・ラブウェア(Becton
Dickinson Labware)社製 ファルコ
ン(FALCON)3001ペトリディッシュ(直径
3.5cm)上に、N−イソプロピルアクリルアミドモ
ノマーを40%(実施例1)、50%(実施例2)になる
ようにイソプロピルアルコールに溶解させたものを0.
10ml塗布した。その塗布面上に直径2cmの孔を1
つ持つ直径3.5cmの金属製マスクをのせ、そのまま
の状態で0.25MGyの強度の電子線を照射し、培養
皿表面にN−イソプロピルアクリルアミドポリマー(P
IPAAm)を円形状(島状の部分。マスク下の部分は
電子線が当たらず何も被覆されない海部分となる。)に
固定化した。次に、その金属製マスクをはずし、20%
になるようにイソプロピルアルコールに溶解させたもの
を0.10ml塗布した。そして、今度は、その円形部
分にのみ直径2cmの円形の金属製マスクをおいて、そ
のままの状態で0.25MGyの強度の電子線を照射す
ることで、円形PIPAAm層の外側にアクリルアミド
ポリマーを固定化した。照射後、金属製マスクをはず
し、イオン交換水により培養皿を洗浄し、残存モノマー
および培養皿に結合していないPIPAAmを取り除
き、クリーンベンチ内で乾燥し、エチレンオキサイドガ
スで滅菌することで細胞培養支持体材料を得た。ここで
島部分のPIPAAmの被覆量は、マスクを使わずに上
と全く同条件で作製した細胞培養支持体材料より求め
た。その結果、この条件下であれば、基材表面に温度応
答性高分子が1.6μg/cm2(実施例1)、2.2
μg/cm2(実施例2)被覆されることが分かった。
得られた細胞培養支持体材料上にて、常法により正常ウ
サギ角膜上皮細胞を培養した(使用培地:コルネパック
(クラボウ(株)製。37℃、5%CO2下)。その結
果、何れの細胞培養支持体材料上の角膜上皮細胞におい
ても中心部の円形部分にのみ正常に付着し、増殖した。
培養14日後、培養した細胞の上に直径2cmのポリビ
ニリデンジフルオライド(PVDF)膜をかぶせ、培地
を静かに吸引し、細胞培養支持体材料ごと20℃で30
分インキュベートし冷却することで、何れの細胞培養支
持体材料上の細胞もそのかぶせた膜と共に剥離させられ
た。かぶせた膜は何れの細胞シートから容易に剥がすこ
とができた。また、剥離された細胞シートは、細胞、細
胞間のデスモソーム構造、及び細胞、基材間の基底膜様
蛋白質が保持され、1枚のシートとして十分に強度を持
ったものであった。
理」は20℃で30分インキュベートという条件下で行
われたが、本発明において「低温処理」はこれらの温度
及び時間に限定されない。本発明における「低温処理」
として好ましい温度条件は0℃〜30℃であり、好まし
い処理時間は2分〜1時間である。
イトマイシンCを含む通常のグリーンらの培地(DME
M+AB(フィーダーレイヤー作製用)、ヒト新生児由
来角化表皮細胞用)。に変更する以外は同様な方法で正
常ウサギ角膜上皮細胞を培養させた。その結果、培養支
持体材料上の角膜上皮細胞は中心部の円形部分にのみ正
常に付着し、増殖し、さらに重層化した。培養16日
後、細胞培養支持体材料ごと20℃で30分インキュベ
ートし冷却することで重層化角膜上皮細胞を剥離させら
れた。剥離された重層化角膜上皮細胞(3次元構造体)
は、円形で細胞、細胞間のデスモソーム構造、及び細
胞、基材間の基底膜様蛋白質が保持され、1枚のシート
として十分に強度を持ったものであった。
際のモノマー溶液を5%(比較例1)、60%(比較例
2)とする以外は実施例1と同様に細胞培養支持体材料
を製造した。得られた細胞培養支持体上の被覆量は、そ
れぞれ0.1μg/cm2(比較例1)、6.2μg/
cm2(比較例2)であった。その後、実施例1と同様
な操作で正常ウサギ角膜上皮細胞を培養、剥離を試み
た。その結果、比較例1の支持体上の細胞は低温処理し
ても剥離し難く、逆に比較例2の支持体上に細胞が付着
し難く、細胞を十分に増殖させることが困難であり、何
れの細胞培養支持体も培養基材として好ましいものでは
なかった。
回収した。実施例1のポリイソプロピルアミド(PIP
AAm)をグラフト化培養皿上に2×106cells
/cm2の細胞密度で播種し、常法に従って培養した
(使用培地:10%ウシ胎児血清を含むDMEM、37
℃、5%CO2下)。その結果、この角膜内皮細胞にお
いても中心部の円形部分にのみ正常に付着し、増殖し
た。10日後、角膜内皮細胞がコンフルエントになった
ことを確認した後、実施例1と同様に培養した細胞の上
に直径2cmのポリビニリデンジフルオライド(PVD
F)膜をかぶせ、培地を静かに吸引し、細胞培養支持体
材料ごと20℃で30分インキュベートし冷却すること
で、細胞をそのかぶせた膜と共に剥離させられた。かぶ
せた膜は細胞シートから容易に剥がすことができた。ま
た、剥離された細胞シートは、細胞、細胞間のデスモソ
ーム構造、及び細胞、基材間の基底膜様蛋白質が保持さ
れ、1枚のシートとして十分に強度を持ったものであっ
た。
おいて、まず直径2cmの円形の金属製マスクを培養皿
の中心に置き、PIPAAmを周囲に固定化し、次に直
径2cmの円形の孔のあいた金属製マスクをかぶせるこ
とでポリアクリルアミドを中心部に固定化した細胞培養
支持体材料(実施例1の内側の高分子層と外側の高分子
層とが逆なものとなる。)を製造した。孔の外側のPI
PAAmの被覆量は2.1μg/cm2であった。次
に、ウサギの眼より結膜上皮細胞を常法に従い回収し
た。先のグラフト化培養皿上に2×105cells/
cm2の細胞密度で播種し、常法に従って培養した(使
用培地:10%ウシ胎児血清を含むMEM、37℃、5
%CO2下)。その結果、播種された結膜上皮細胞は中
心部の周囲のみに正常に付着し、増殖した。10日後、
結膜上皮細胞がコンフルエントになったことを確認した
後、実施例1と同様に培養した細胞の上にポリビニリデ
ンジフルオライド(PVDF)膜をかぶせ、培地を静か
に吸引し、細胞培養支持体材料ごと20℃で30分イン
キュベートし冷却することで、細胞をそのかぶせた膜と
共に剥離させられた。かぶせた膜は細胞シートから容易
に剥がすことができた。また、剥離された結膜上皮細胞
シートは、細胞、細胞間のデスモソーム構造、及び細
胞、基材間の基底膜様蛋白質が保持され、1枚のシート
として十分に強度を持ったものであった。
の培養皿上の角膜上皮細胞シートに対し、実施例1で剥
離された角膜上皮細胞シートを直ちに重ねた。その後、
実施例3で用いた培地を静かに入れ、密着した高分子膜
を剥がした。この状態で2日間培養することで、角膜上
皮細胞の重層化シート(3次元構造体)を得た。得られ
た角膜上皮細胞の重層化シートは実施例3と同様に低温
処理を施すことにより支持体表面から剥離した。剥離さ
れた角膜上皮細胞の重層化シート(3次元構造体)は、
1枚のシートとして十分に強度を持ったものであった。
の培養皿上の角膜内皮細胞シートに対し、実施例3で剥
離された角膜上皮細胞の重層化シートを直ちに重ねた。
その後、実施例3で用いた培地を静かに入れ、密着した
高分子膜を剥がした。この状態で2日間培養すること
で、角膜内皮細胞層を有する角膜上皮細胞の重層化シー
ト(3次元構造体)を得た。得られた角膜上皮細胞の重
層化シートは実施例3と同様に低温処理を施すことによ
り支持体表面から剥離した。剥離された3次元構造体
は、細胞、細胞間のデスモソーム構造、及び細胞、基材
間の基底膜様蛋白質が保持され、1枚のシートとして十
分に強度を持ったものであった。
の培養皿上の角膜内皮細胞シートに対し、まず5%IV型
コラーゲン溶含有培地(コラーゲンが含まれること以外
は実施例4の培地と同一のもの。)を入れ、そのまま2
0分間静置させた。その後、再び冷却せずに静かに培地
を除去した。培養皿の上に残された角膜内皮細胞シート
に対し、実施例3で剥離された角膜上皮細胞の重層化シ
ートを直ちに重ねた。その後、実施例3で用いた培地を
静かに入れ、密着した高分子膜を剥がした。この状態で
2日間培養することで、角膜内皮細胞層を有する角膜上
皮細胞の重層化シート(3次元構造体)を得た。得られ
た角膜上皮細胞の重層化シートは実施例3と同様に低温
処理を施すことにより支持体表面から剥離した。剥離さ
れた3次元構造体は、1枚のシートとして十分に強度を
持ったものであった。
の培養皿上の孔のあいた結膜上皮細胞シートに対し、実
施例7で剥離された角膜内皮細胞層を有する角膜上皮細
胞の重層化シート(3次元構造体)を直ちに一部重ねる
ように置いた。その後、実施例3で用いた培地を静かに
入れ、密着した高分子膜を剥がした。この状態で2日間
培養することで、結膜上皮細胞シートが付着した角膜内
皮細胞層を有する角膜上皮細胞の重層化シート(3次元
構造体)を得た。得られた3次元構造体は実施例3と同
様に低温処理を施すことにより支持体表面から剥離し
た。剥離された3次元構造体は、1枚のシートとして十
分に強度を持ったものであった。
化シート(3次元構造体)を角膜上皮細胞部を欠損させ
たウサギに常法に従い移植した。その際、角膜上皮細胞
の重層化シートを直接、創傷部へ縫合した。約3週間
後、抜糸した結果、角膜上皮細胞の重層化シートは眼球
に良好に生着していた。
眼内にある細胞だけで十分な強度を持ったシートの作成
が可能であることがわかった。このことは、治療の効率
化による患者の負担軽減、また、さらなる精密な組織の
構築化において極めて有効な技術と考えられる。
次元構造体は、ディスパーゼ処理における場合のように
E−カドヘリン、ラミニン5を分解することがなく、し
かも構造欠陥が極めて少ないため、皮膚移植等の臨床応
用が強く期待される。したがって、本発明は細胞工学、
医用工学、などの医学、生物学等の分野における極めて
有用な発明である。
Claims (16)
- 【請求項1】 細胞、細胞間のデスモソーム構造、及び
細胞、基材間の基底膜様蛋白質が保持され、1枚のシー
トとして十分に強度を持った状態で回収される構造欠陥
の少ない前眼部関連細胞シートまたは3次元構造体。 - 【請求項2】 蛋白質分解酵素による処理を施されるこ
となく基材から剥離された、請求項1記載の前眼部関連
細胞シートまたは3次元構造体。 - 【請求項3】 前眼部関連細胞が、角膜上皮細胞、角膜
内皮細胞、結膜上皮細胞及び上皮幹細胞であることを特
徴とする請求項1又は2記載の前眼部関連細胞シートま
たは3次元構造体。 - 【請求項4】 3次元構造体が、角膜上皮細胞を重層化
培養させたものである請求項1〜3のいずれか1項記載
の前眼部関連細胞シートまたは3次元構造体。 - 【請求項5】 3次元構造体が、少なくとも角膜上皮細
胞シートもしくはその重層化物と角膜内皮細胞が組み合
わされたものである請求項1〜3のいずれか1項記載の
前眼部関連細胞シートまたは3次元構造体。 - 【請求項6】 3次元構造体が、請求項5の3次元構造
体に、さらに結膜上皮細胞が組み合わされたものである
請求項1〜3のいずれか1項記載の前眼部関連細胞シー
トまたは3次元構造体。 - 【請求項7】 水に対する上限もしくは下限臨界溶解温
度が0〜80℃である温度応答性高分子で基材表面を被
覆した細胞培養支持体上で細胞を培養し、必要に応じて
常法により培養細胞層を重層化させ、その後、(1)培
養液温度を上限臨界溶解温度以上または下限臨界溶解温
度以下とし、さらに必要に応じ、(2)培養した前眼部
細胞シートまたはその重層化シートを高分子膜に密着さ
せ、(3)そのまま高分子膜と共に剥離することを特徴
とする前眼部関連細胞シートまたは3次元構造体の製造
法。 - 【請求項8】細胞培養支持体として、温度応答性高分子
が被覆されたA領域と、(1)細胞と親和性の低い高分
子が被覆されている領域、(2)A領域と異なる量の温
度応答性高分子が被覆されている領域、(3)A領域と
異なる温度に応答する高分子が被覆されている領域のい
ずれか、または(1)〜(3)の任意の2つもしくは3
つの組み合わせからなるB領域の2領域を表面に持つも
のを利用することを特徴とする請求項7記載の前眼部関
連細胞シートまたは3次元構造体の製造法。 - 【請求項9】 請求項7で得られた前眼部関連細胞シー
トまたは3次元構造体を再び細胞培養支持体、温度応答
性ポリマーで表面を被覆した細胞培養支持体、高分子膜
等に付着させ、重ね合わせていくこと、或いは他の細胞
シート等に一部、もしくは全部を付着させ、重ね合わせ
ていくことを含む請求項7又は8記載の3次元構造体の
製造法。 - 【請求項10】 剥離が蛋白質分解酵素による処理が施
されていない、請求項7〜9のいずれか1項記載の前眼
部関連細胞シートまたは3次元構造体の製造法。 - 【請求項11】 温度応答性ポリマーが、ポリ(N−イ
ソプロピルアクリルアミド)である、請求項7〜9記載
の前眼部関連細胞シートまたは3次元構造体の製造法。 - 【請求項12】 高分子膜が、親水化処理が施されたポ
リビニリデンジフルオライドである、請求項7〜9のい
ずれか1項記載の前眼部関連細胞シートまたは3次元構
造体の製造法。 - 【請求項13】 他の細胞シートが、角膜上皮細胞シー
ト及びその重層化シート、角膜内皮細胞シート、及び結
膜上皮細胞シート、並びに請求項4記載の製造法で作製
した3次元構造体の中の1種もしくは2種以上のものか
らなる、請求項7〜9のいずれか1項記載の3次元構造
体の製造法。 - 【請求項14】 請求項7ないし13のいずれか1項記
載の方法により製造される前眼部関連細胞シートまたは
3次元構造体。 - 【請求項15】 前眼部組織の一部或いは全部を損傷も
しくは欠損した患部に対する治療用の請求項1〜6及び
14のいずれか1項記載の前眼部関連細胞シートまたは
3次元構造体。 - 【請求項16】 前眼部組織の一部或いは全部を損傷も
しくは欠損した患部に対し、請求項1〜6及び14のい
ずれか1項記載の前眼部関連細胞シートまたは3次元構
造体を移植することを特徴とする治療法。
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