JP2002524088A - 調節された遺伝子の検出方法としての二色ディファレンシャルディスプレー - Google Patents
調節された遺伝子の検出方法としての二色ディファレンシャルディスプレーInfo
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Abstract
Description
組成の分析およびディファレンシャル遺伝子発現の分析のための新規な方法なら
びにその方法の使用に関する。
よび単離のために最も頻繁に使用される方法の一つである(Liang P. & Pardee
A.B., 1992, Science 257: 967-971; Liang & Pardee, 1995, Current Opinion
in Immunology 7: 274-280; McClellandら, 1995, Trends in Genetics 11: 242
-246)。DDRT(ディファレンシャルディスプレー+逆転写:DDRT)法は
第一工程において、第一の逆プライマーを用いる単離RNAの逆転写(逆転写:
RT)を包含し、これにより相補性DNA(cDNA)の第一鎖を調製し、つい
でこのDNAを第二工程において、第一および第二のプライマーを用いるポリメ
ラーゼ連鎖反応(PCR)により増幅し、増幅されたcDNAサンプルの組成を
たとえば増幅cDNAのゲル中での分画化によって分析する。検出は、たとえば
標識プローブとのハイブリダイジングもしくは増幅cDNAの標識により行うこ
とができるが、放射性標識ヌクレオチド(通常は放射性標識dATP)の存在下
または、たとえば蛍光物質によって標識された標識プライマーの存在下(「蛍光
DDRT」)における増幅によって実施することもできる(Itoら, 1994, FEBS
Letters 351:231-236; Ito & Sasaki, Methods in Molecular Biology Vol. 85:
Differential Display Methods and Protocols, 1997, p37-44, Liang & Pardee
eds, Human Press Inc. Totowa, NJ; Jonesら, 1997, Biotechniques 22: 536-
543; Smithら,1997, Biotechniques 23: 274-279)。
のすべてが標識されることになる(放射性DDRT;古典的DDRT)。他方、
標識プライマーを使用すれば(たとえば蛍光DDRT)、PCR時に第一の標識
プライマーと第二の非標識プライマーの可能なプライマーの組み合わせの結果と
して、増幅されたcDNAの一部のみが標識され、一方他の部分は標識されない
まま残る。
(M=A,C,G;N=A,C,G,T)をその3′末端に有するオリゴ(dT
)プライマーである(5′−(T)12−MN−3′は(T)12−MNと表記)]はR
Tのために用いられる。以後のPCRにおいては、第二の非標識プライマー[こ
の場合、プライマー2は10個のランダムな順序のヌクレオチドの配列を有する
オリゴヌクレオチド(「10マー」)である]が、第一のプライマーに加えて用
いられる。しかしながら、第一のプライマーは慣用的に2倍過剰に使用される。
この方法では一般に、3′末端が第一プライマーの配列を示し、5′末端が第二
プライマーの配列を示す増幅されたcDNA[たとえば、5′−10マー------
---(T)12−MN−3′(式中、---------はプライマー配列間に位置する増幅c
DNA配列を表す]が比較的高割合で得られる。これに加えて、1)に比較して
プライマーの配列が入れ替わったcDNAが増幅される(その 5′および3′
末端にはそれぞれ (T)12−MNプライマーおよび10マープライマーが見いだ
される。2参照)。(T)12−MNプライマーのみを用いて(3参照)または10
マープライマーのみを用いて(4参照)他のcDNAも増幅される。結局、2つ
の異なるプライマーを用いた場合、可能なプライマーの組み合わせの結果として
、DDRTでは以下の反応生成物の増幅が可能である。すなわち、 1) 5′−10マー---------(T)12−MN−3′ 2) 5′−(T)12−MN---------10マー−3′ 3) 5′−(T)12−MN---------(T)12−MN−3′ 4) 5′−10マー---------10マー−3′
より、標識された第一のプライマーを用いて少なくとも一方向に増幅されたそれ
らのcDNA、すなわち1)、2)および3)に特定されたcDNAのみが増幅
されたcDNAの以後の分析において検出されるが、第二のプライマーのみを用
いて増幅されたcDNAは標識されていないし検出もされない(4参照)。した
がって、検出されるPCR産物(cDNA)は放射性DDRTの場合より複雑で
はない。この理由により、第二のプライマーのみを用いて増幅される慣用の蛍光
DDRTではそれらの調節されている遺伝子またはそれらに相当するmRNAは
検出されない。したがって、慣用の蛍光DDRTによって検出される調節されて
いる遺伝子の数は放射性DDRTで検出される数より少なくなる。
また慣用の蛍光DDRTでも、1)〜4)に示すように、均一なcDNA産物は
増幅されず、代わりに、長さの異なる数種のcDNA(これは、たとえばゲル中
での分画化によって明らかである)が、異なるプライマーの組み合わせの結果と
して増幅される。別異に増幅されたcDNAが1つの同じ調節される遺伝子のc
DNA産物であるか否は詳細な分析(たとえば、配列決定分析)によってのみ示
される。慣用のDDRTは、重複して標識された増幅cDNA間の識別の可能性
を提供するものではない。放射性DDRTでは1)〜4)の間を識別することは
不可能である。慣用の蛍光DDRTでは1)、2)および3)の間の識別は不可
能であるが、3′プライマーは蛍光染料で標識されているので可視的なcDNA
フラグメントが遺伝子の 3′領域から誘導されるより大きい確率がある。
よってのみ確立できる慣用の放射性DDRTで増幅されたcDNAフラグメント
の重複性、および他方では、慣用の放射性DDRTに比べて慣用の蛍光DDRT
において増幅されたcDNAの低い複雑性は、特定の調節された遺伝子の看過の
危険を伴い、それぞれ慣用の放射性DDRTおよび慣用の蛍光DDRT法の主要
な問題になっている。
遺伝子の分析に使用することができる方法であり、上述の欠点のない方法を提供
する。
(cDNAサンプル)の第一鎖を調製するため、適宜、第一の染料で標識された
第一のプライマーを使用し、 b) このcDNAサンプルの第二鎖を調製するために、好ましくは第二の染料
で標識された第二のプライマーを使用し、 c) 第一の染料で標識された第一のプライマーおよび第二の染料で標識された
第二のプライマーをcDNAサンプルの増幅のために使用し、ついで d) 増幅された標識cDNAサンプルの組成を分析することからなる方法に関
する。
においては、この方法にmRNAが用いられる。RNAは、たとえば、CsCl 2 密度勾配遠心分離またはカラムクロマトグラフィーのような既知の方法によっ
て単離することができる。RNAは細胞もしくは細胞集団または組織から単離す
るのが好ましい。必要によっては、mRNAは、たとえばオリゴ(dT)カラム
を通すクロマトグラフィーによってRNAから濃縮することができる。
プライマーは逆転写に用いられるプライマーである。第一のプライマーはそれが
mRNAとハイブリダイズし、相補性DNA(cDNA)の第一鎖の 3′末端
を定義するので 3′プライマーと呼ぶこともできる。第二のプライマーはcD
NAの第二鎖を合成するために用いられる。第二のプライマーは、それがcDN
Aの第一鎖とハイブリダイズし、cDNAの第二鎖の 5′末端を定義するので
5′プライマーとも呼ばれる。
プライマーは逆転写(処理工程a)および以後のcDNAの増幅(処理工程c)
に使用される。RTに用いられる第一のプライマーは染料で標識されてもされて
いなくてもよい。後者はたとえば、使用した逆転写酵素が標識プライマーを受け
入れない場合である。cDNAの増幅に用いられるときは、いずれ場合も第一の
プライマーは標識される。RTに用いられる第一のプライマーおよび増幅に用い
られる第一のプライマーは同一の配列を有することが好ましい。
の両者に用いられる第二のプライマーは第二鎖の合成時および増幅時ともに標識
されていることが好ましい。第二のプライマーはいずれの場合も同じ配列を有す
ることが好ましい。cDNAの第二鎖の合成および増幅は、第二のプライマーが
同一であるように、一反応の要素であることが好ましい。
デノシン(dA)、デオキシグアノシン(dG)、デオキシイノシン(dI)、
デオキシウリジン(dU)、(デオキシ)チミジン(dT)およびデオキシシチ
ジン(dC)から構成されるオリゴデオキシヌクレオチドである。
(単数または複数)の配列(単数または複数)に相補性の塩基配列(アデニン、
グアニン、シトシンおよびチミジンからなる配列;以下「配列」という)を有す
ることができる。特定の配列に相補性のプライマーは、この相補性配列またはこ
の相補性配列から誘導される配列(この相補性配列とある程度のホモロジーを示
す)を含有する核酸とハイブリダイズすることができる。たとえば、第一のプラ
イマーは好ましくはmRNAとハイブリダイズできる。cDNAの第一鎖はプラ
イマー伸長によって作られる。プライマーはまた、特定の核酸の配列に同一であ
るかまたは本質的に同一な配列を有することもできる。それでこのプライマーは
特定の核酸の配列に相補性の配列を有する核酸にハイブリダイズすることができ
る(特定の反応条件下に)。たとえば第二のプライマーの配列は、mRNAの配
列から誘導され、すなわち、第二のプライマーの配列はmRNAの配列と同一で
あるかまたは本質的に同一であることができる。第二のプライマーはしたがって
、mRNAの配列たとえばcDNAの第一鎖に相補性である配列を有する核酸と
(特定の反応条件下に)ハイブリダイズすることができる。
件は好ましくは温度および/または緩衝条件によって特定される。温度条件は、
好ましくはプライマーが相補性核酸配列と特異的にハイブリダイズし、すなわち
「正しい」塩基ペアリング(A−T;G−C)が優先的に起こり、正しくない塩
基ペアリングは可能な限りない、すなわち可能であれば、「至適」なハイブリダ
イゼーション温度(アニーリング温度)が選ばれるように選択される(たとえば
、Sambrookら, 1989, Cold Spring Harbor Laboratory Press)。これに加えて
、特異的な塩濃度、とくにMg2+濃度が選択される。
が誘導される核酸[すなわち、この配列(単数または複数)が核酸配列に相補性
または同一もしくは本質的に同一である]は、DNAたとえばcDNA、遺伝子
もしくはその部分、またはRNA好ましくはmRNAとすることができる。
ランダムな配列を有するプライマーと部分的にランダムな(たとえば1または2
以上の塩基に関してランダム)配列を有するプライマーの両者が含まれる。配列
はランダムであるが、それらは同時に個々の塩基の間で特定の比を表すことがで
きる。たとえばすべての塩基が同じ比で存在するか、または1もしくは2以上の
塩基が過剰にもしくは過小に存在する。とくにヒポキサンチンも使用できる。
この特定の配列(単数または複数)はランダムに選択され、すなわち、それらは
既知の配列に由来しない。この性質のプライマーは以前に同定されたことのない
新しい遺伝子またはタンパク質の同定に使用することができる。
する配列に由来する塩基配列を有することができる(すなわち、それはこれらの
配列と相補性または同一もしくは本質的に同一である)。たとえば、プライマー
は特定のコンセンサス配列と多かれ少なかれある程度の同一性を示すか、または
この配列に相当する配列を有することができる。このアプローチは、たとえば、
特定の遺伝子ファミリー/タンパク質ファミリーの既知および/または未知メン
バーのディファレンシャル発現の同定に使用することができる。
コンセンサス配列)に由来する塩基配列を有することができる。この場合、プラ
イマーには縮重、すなわち特定のアミノ酸配列に関する遺伝子コドンの縮重が許
され、したがってプライマーは異なる配列を有するプライマー分子の混合物から
構成され、相当するアミノ酸配列をコードするすべてのコード利用可能性が許さ
れる(縮重プライマー)。
を有する。
を保証するために、8〜20ヌクレオチドの長さであることが好ましい。しかし
ながら、長さは特定のプライマー配列および/または反応条件に応じて選択され
るのが好ましい。第一および第二のプライマーの長さおよび配列は、互いに独立
に選択される。
イゼーションを要求しない配列(単数または複数)および/またはハイブリダイ
ゼーションに寄与しない配列(単数または複数)を含有することもできる。この
性質の他の配列は、たとえば増幅cDNAの更なる特性解析または使用を容易に
することができる。これらの他の配列は好ましくはプライマーの5′末端に存在
する。たとえばプライマーは、以後の配列決定を容易にする配列、たとえばM13
配列および/または標識プローブの調製を容易にする配列(たとえば、ノーザン
ブロットもしくはサザンブロットハイブリダイジングおよび/またはインシトゥ
ハイブリダイジング)、たとえばT7プロモーター配列、T3プロモーター配列
もしくはSP6プロモーター配列を含有してもよい。
第一鎖が調製される(処理工程a)。染料で標識される第一のプライマーは適宜
RTのために使用される。第一のプライマーは、好ましくはオリゴ(dT)配列
(「(T)X」、「X」はチミジン残基の数を指示する)を有し、これがそれぞれ
のmRNAのポリ(A)鎖とハイブリダイズし、この方法でポリメラーゼ反応の
ための遊離 3′−OHを提供することができる。オリゴ(dT)配列は、好ま
しくは10〜20個のチミジン残基(X=10〜20)からなる配列であり、1
2チミジン残基(X=12)または15チミジン残基(X=15)からなる配列
がとくに好ましい。
T)配列の3′末端に、オリゴ(dT)配列に属さないさらに少なくとも1個の
ヌクレオチド、しかしながら好ましくは2個のヌクレオチドを有する。すなわち
オリゴ(dT)配列の3′末端に結合する最初のヌクレオチドはチミジンとは異
なることを意味する。第一のプライマーは、オリゴ(dT)配列に属さないヌク
レオチドの配列において異なるプライマー分子の混合物から構成されることが好
ましい。たとえば、第一のプライマーは、配列5′−(T)XMN−3′[式中「
M」はA(塩基アデニン)、C(塩基シトシン)もしくはG(塩基グアニン)で
あり、「N」はA、C、GもしくはT(塩基チミジン)である]を有することが
できる。たとえば、X=12または15とすることができる: 配列番号1:5′−TTTTTTTTTTTTMN−3′(5′−(T)12MN
−3′)、 配列番号2:5′−TTTTTTTTTTTTTTTMN−3′(5′−(T) 15 MN−3′) (式中「M」はA、CまたはGであり、「N」はA、C、GまたはTである)。
る異種プライマーの混合物から構成されるのが好ましい。 5′−(T)XMN−3′は、配列: 5′−(T)XAN−3′ 5′−(T)XCN−3′ 5′−(T)XGN−3′ (式中、N=A、C、G、T)を有するプライマー分子の混合物とすることが可
能であり、 5′−(T)XMN−3′は、配列: 5′−(T)XMA−3′ 5′−(T)XMC−3′ 5′−(T)XMG−3′ 5′−(T)XMT−3′ (式中、M=A、C、G)を有するプライマー分子の混合物でることが好ましい
。この場合、可能な塩基A,CおよびGは混合物中に均一に存在し、たとえば、
5′−(T)XMN−3′は以下の配列:すなわち5′−(T)XAG、5′−(T)X
CG、5′−(T)XGGまたは5′−(T)XAT、5′−(T)XCT、5′−(T)X GT等有をするプライマー分子の混合物である。この方法で、未知の配列の異な
るmRNAを増幅するためのプライマーを提供することができる。同時に、この
アレンジメントは、プライマーが相補性配列の3′末端に(mRNAのポリ(A)
鎖に)優先的に、ハイブリダイズすることが保証される。
を有する他のDNA依存性ポリメラーゼ、たとえばついで以後のcDNAの増幅
(処理工程c)にも使用できる適当な温度安定性ポリメラーゼが、RTにおける
使用に好ましい。本発明の特定の実施態様においては、cDNAの第二鎖の合成
がcDNAの増幅のための処理工程の要素であり、cDNAの増幅のための処理
工程はPCR反応であることが好ましい。
ましくは42℃で実施することができる。第一のプライマーが特異的に(できる
だけ正しくないペアリングが少なく)ハイブリダイズすることが可能なハイブリ
ダイゼーション温度を用いることが好ましく、これはポリメラーゼの活性が十分
高いことを保証し、可能な限り完全な転写体を得ることを可能にする。
れる。第二のプライマーは、好ましくは少なくとも6ヌクレオチドの長さであり
(6マー)、とくに好ましくは10(10マー)〜20(20マー)ヌクレオチ
ド長を有する。本発明の特定の実施態様においては、第二のプライマーは長さ1
3ヌクレオチド(13マー)である。たとえば、第二のプライマーの配列は「(
N)X」(式中、「X」は6〜20であり、「N」は互いに独立に、A、C、Gま
たはTである)とすることができる。
とえば市販品を入手できるかまたは既知の方法(たとえば、Caruthersら, 1983,
Tetrahedron Letters 24: 245 に記載されたホスホロアミダイト法)を用いて固
相上で合成することができる。プライマーは好ましくは、ヌクレオチドデオキシ
アデノシン、デオキシグアノシン、デオキシイノシン、デオキシシチジンおよび
デオキシチミジンから構成される。
PCR反応の要素であり、この鎖はPCRが行われる反応条件下に合成される。
のタイプの標識が使用可能であり、たとえばプライマーはこのプライマーを用い
て増幅されたcDNA分子をたとえば適当な抗体もしくは酵素で検出できるよう
なジゴキシゲニンまたはビオチンにカップリングできるか、あるいはプライマー
は、基質の添加後それを変換できる化学的化合物たとえば Atto−Phos システム
(JBLScientific, San Luis Obispo, CA, USA)もしくはECF基質(Amersham−
Pharmacia Biotech, Freiburg, Germany)にカップリングすることができる。
とくに優先性が与えられる。優先性は、第一のプライマーは第一の蛍光で、第二
のプライマーは第二の蛍光で標識することにより与えられる。第一および第二の
蛍光は好ましくは、使用した2つの蛍光が明瞭に識別できるように選択される。
これに関して、結果の明瞭性すなわち個々のcDNAの標識パターンの間の検出
可能な差は使用した蛍光および分析方法の感度の両者に依存する。一般に、結果
の評価にはコンピューター支援分析方法が用いられる。たとえば蛍光は第一およ
び第二の蛍光の検出可能な励起波長および/または発光波長が200nmまたはそ
れ以上たとえば250nm、300nm、350nmまたは400nm異なるようにする
。
てはCy2、Cy3、Cy5、FAM、6−FAM[6−カルボキシフルオレセ
イン(青)]、FITC(フルオレセインイソチオシアネート)、フルオレセイン
、HEX[4,7,2′,4′,5′,7′−ヘキサクロロ−6−カルボキシフルオ
レセイン(緑)]、5−IAF、TAMRA[6−カルボキシテトラメチレンロー
ダミン(黄)]、TET(4,7,2′,7′−テトラクロロ−6−カルボキシフル
オレセイン)、XRITC(ローダミン−X−イソチオシアネート)、ROX[
6−カルボキシローダミン(赤)]、Alexa 488、Alexa 532、Alexa 546、Alexa 5
94、テキサスレッドおよびリサミンがある。
およびAlexa 488 標識プライマー2;Cy5標識プライマー1およびFITC標
識プライマー2;Cy5標識プライマー1およびFAM標識プライマー2;Cy
5標識プライマー1およびCy2標識プライマー2;Cy5標識プライマー1お
よびCy3標識プライマー2;フルオレセイン標識プライマー1およびテキサス
レッド標識プライマー2;フルオレセイン標識プライマー1およびリサミン標識
プライマー2;フルオレセイン標識プライマー1およびROX標識プライマー2
;フルオレセイン−Cy3 標識プライマー1;Alexa 594 標識プライマー1およ
び Alexa 488 標識プライマー2;Alexa 568 標識プライマー1およびAlexa 488
標識プライマー2;Alexa 546 標識プライマー1およびAlexa 488 標識プライ
マー2;Alexa 532 標識プライマー1およびAlexa 448 標識プライマー2;テキ
サスレッド標識プライマー1およびAlexa 488 標識プライマー2;ROX標識プ
ライマー1および Alexa 488 標識プライマー2;Alexa 488 標識プライマー1
およびリサミン標識プライマー2;Alexa 488 標識プライマー1およびCy3標
識プライマー2;Alexa 488 標識プライマー1およびROX標識プライマー2で
ある。標識に用いられる蛍光物質が、上述の例に比べてプライマー1およびプラ
イマー2で入れ替えられた相当するプライマーの組み合わせも当然可能である。
リングされる。オリゴ(dT)プライマーの場合には、チミジンとは異なるヌク
レオチド、たとえばグアノシンがさらに蛍光物質の前の5′末端に存在してもよ
い。さらに蛍光物質は塩基によってオリゴヌクレオチドにカップリングすること
もできる。蛍光物質は適宜、適当なリンカーによって第一および/または第二の
プライマーにカップリングさせることもできる。
の例には、5′−CY5−G(T)15MN−3′、5′−CY2−G(T)15MN−
3′、5′−CY3−G(T)15MN−3′、5′−FAM−G(T)15MN−3′
、5′−6−FAM−G(T)15MN−3′、5′−FITC−G(T)15MN−3
′、5′−フルオレセイン−G(T)15MN−3′、5′−HEX−G(T)15MN
−3′、5′−5−IAF−G(T)15MN−3′、5′−TAMRA−G(T)15 MN−3′、5′−TET−G(T)15MN−3′、5′−XRITC−G(T)15 MN−3′、5′−ROX−G(T)15MN−3′、5′−Alexa 488−G(T)15
MN−3′、5′−Alexa 532−G(T)15MN−3′、5′−Alexa 546−G(T) 15 MN−3′、5′−Alexa594−G(T)15MN−3′、5′−テキサスレッド−
G(T)15MN−3′、5′−リサミン−G(T)15MN−3′(上記プライマーは
、好ましくは、第一のプライマーとして使用される)、5′−CY5−(N)13−
3′、5′−CY2−(N)13−3′、5′−CY3−(N)13−3′、5′−FA
M−(N)13−3′、5′−6−FAM−(N)13−3′、5′−FITC−(N)13 −3′、5′−フルオレセイン−(N)13−3′、5′−HEX−(N)13−3′、
5′−5−IAF−(N)13−3′、5′−TAMRA−(N)13−3′、5′−T
ET−(N)13−3′、5′−XRITC−(N)13−3′、5′−ROX−(N)13 −3′、5′−Alexa 488−(N)13−3′、5′−Alexa532−(N)13−3′、
5′−Alexa546−(N)13−3′、5′−Alexa 594−(N)13−3′、5′−テ
キサスレッド−(N)13−3′および 5′−リサミン−(N)13−3′(これらの
プライマーは、好ましくは第二のプライマーとして用いられる)がある(式中、
「M」はA、CまたはGであり、「N」はA、C、GまたはTである)。
は、励起後、観察される発光が予定される波長に確立できるために十分に離れる
ことを保証する注意が必要である。良好な組み合わせの例は、たとえば第一のプ
ライマーの(たとえばTX−MNプライマー)Cy5 標識(励起波長650nm)
と第二のプライマーの蛍光に基づく標識(励起波長490nm)である。2つの別
異に標識をされたプライマーの使用はたとえばゲル中で検出される増幅プライマ
ーのプライマー組成について明瞭な結論を引き出すことを可能にする。
5−標識プライマーを用いて増幅され、このcDNAは少なくとも一端に第一の
プライマー(たとえば(T)X−MNプライマー)を有する。発光が励起波長49
0nmに観察される場合、cDNAの少なくとも一端に第二のプライマーが提供さ
れる。特定の増幅されたcDNA(ゲル中)が1つの励起波長でのみ発光される
場合、cDNAはついで、1つのプライマー、相当する励起発光で発光する蛍光
物質を有するプライマーを用いて増幅された。特定の増幅されたcDNA(ゲル
中)が2つの励起波長で発光する場合には、このcDNAはついで第一および/
または第二のプライマーを用いて増幅された。
DNAポリメラーゼを用いて実施され、特定の優先性はこのDNAポリメラーゼ
が温度安定性DNAポリメラーゼ、たとえばTaqポリメラーゼ、VENTポリ
メラーゼ、AmpliTaq ポリメラーゼまたはとくにAmpliTaq Gold ポリメラー
ゼによって与えられる。PCRは好ましくは、cDNAの指数的な増幅を可能に
する温度プロファイルを用いて実施される。たとえば、実施例1に引用した温度
サイクルはこの目的に使用できる。30〜40またはそれ以上のサイクルが好ま
しい結果を与える。
をゲル中で分画化すると、それらの長さの異なる増幅cDNAは異なるバンドに
存在する。これらのバンドは、与えられた波長(各場合に用いられた蛍光物質に
依存する)において発光するスキャナーおよび/または化学ルミネセンス基質の
化学的変換に伴って発光する光を検出できるスキャナーでさらに分析することが
できる。発光された蛍光はついで、たとえば適当なコンピュータープログラムを
用いて評価し、ゲル像を(たとえばオートラジオグラフィーから分かるように)
アッセンブルすることができる。使用できるスキャナーの例には、Fluorlmager
575,FluorImager SI, FluorImager(Molecular Dynamics, Krefeld, Germany)
,Strom(Molecular Dinamics),FLA-2000(Fuji, Tokyo, Japan),FMBioII(
Hitachi, Biozym Diagnostic GmbH, Hess, Oldendorf, Germany を通じ),Fluo
r-S-MultiImager および Molecular Imager FX(BioRad, Munich, Germany)ス
キャナーがある。
いう)を使用する。一般に、この性質のサンプルは不均一mRNAサンプル(す
なわち、それはRNAが単離された時点でこの細胞中に存在した遺伝子である)
である。一般に、この不均一mRNAサンプルは、特定の時点に特定の条件下で
特定の細胞によって発現された遺伝子であり、すなわちmRNAサンプルの組成
は、たとえば細胞タイプ、その分化段階、細胞周期および/または細胞の以前の
処理等に依存する。
、 a) 不均一なmRNAサンプルからの相補性な不均一DNAサンプル(不均一
なcDNAサンプル)の第一鎖を調製するため、第一の染料により適宜標識され
た第一のプライマーを使用し、 b) この不均一なcDNAサンプルの第二の鎖を調製するために、好ましくは
第二の染料で標識された第二のプライマーを使用し、 c) 第一の染料で標識された第一のプライマー(「標識第一プライマー」)お
よび第二の染料で標識された第二のプライマー(「標識第二プライマー」)を不
均一なcDNAサンプルの増幅のために使用し、ついで d) 不均一な、増幅された標識cDNAサンプルの組成を分析することからな
る方法に関する。
発現または調節される遺伝子である。この場合とくに興味がもたれるのは別異に
発現または調節される遺伝子の分析的な比較である。本発明の特定の一実施態様
は2またはそれ以上の不均一なmRNAサンプルを分析的に比較するための相当
する類縁方法に関する。
2種以上の付加的な不均一mRNAサンプルと分析的に比較する方法において、 a) これらのmRNAサンプルから相補性の不均一DNAサンプル(不均一な
cDNAサンプル)の第一鎖を調製するために、2またはそれ以上の不均一なm
RNAサンプルのそれぞれについて、第一の染料で適宜標識された第一のプライ
マーを使用し、 b) これらのサンプルそれぞれについて、各場合、不均一なcDNAサンプル
の第二の鎖を調製するために、好ましくは第二の染料で標識された第二のプライ
マーを使用し、 c) 第一の標識されたプライマーおよび第二の標識されたプライマーをそれぞ
れの不均一なcDNAサンプルの増幅のために使用し、ついで d) 不均一な、増幅された標識cDNAサンプルの組成を分析し、サンプルの
組成を比較することからなる方法に関する。
(不均一なcDNAサンプル)の第一鎖を調製するために、2またはそれ以上の
不均一なmRNAサンプルのそれぞれについて第一の染料で適宜標識された第一
のプライマーを使用し、 b) これらのサンプルそれぞれについて、各場合、不均一なcDNAサンプル
の第二の鎖を調製するために、好ましくは第二の染料で標識された第二のプライ
マーを使用し、 c) 第一の標識されたプライマーおよび第二の標識されたプライマーをそれぞ
れの不均一なcDNAサンプルの増幅のために使用し、ついで d) サンプルのどれが個々のmRNA分子を含有するか否かを決定するために
分析を行うことからなる方法に関する。
のどれがどのプライマー組成をもつか、すなわち、どのcDNAが第一のプライ
マーのみを用いて増幅され、どれが第二のプライマーのみを用いて増幅され、ど
れが第一および第二のプライマーを用いて増幅されたかを決定するために検討を
行う(別異に増幅されたcDNAに群1)+2)、3)および4)への合併)。
本発明はまた、特定の増幅されたcDNAを増幅されたcDNAのプライマーの
組成に基づいて選択し、適宜更なる分析および/または使用に付す追跡方法に関
する。これに加えて、本発明は、増幅されたcDNAの全体のプライマー組成の
分布を群1)〜4)について分析する追跡方法に関する。
において、 a) RNAサンプル好ましくはmRNAから相補性DNAサンプル(cDNA
サンプル)の第一鎖を調製するために、第一の染料で適宜標識された第一のプラ
イマーを使用し、 b) このcDNAサンプルの第二の鎖を調製するために、好ましくは第二の染
料で標識された第二のプライマーを使用し、 c) 第一の染料で標識された第一のプライマーおよび第二の染料で標識された
第二のプライマーをcDNAサンプルの増幅のために使用し、ついで d) 増幅された標識cDNAサンプルの組成を分析し、 e) 増幅されたcDNAのプライマー組成を決定することからなる方法である
。
サンプル)の第一鎖を調製するために、第一の染料で適宜標識された第一のプラ
イマーを使用し、 b) このcDNAサンプルの第二の鎖を調製するために、好ましくは第二の染
料で標識された第二のプライマーを使用し、 c) 第一の染料で標識された第一のプライマーおよび第二の染料で標識された
第二のプライマーをcDNAサンプルの増幅のために使用し、ついで d) 増幅された標識cDNAサンプルの組成を分析し、 e) 増幅されたcDNAのプライマー組成を決定し、ついで f) 特定のプライマー組成を有するcDNA、好ましくは第一および第二のプ
ライマーの両者を含有するcDNAを選択し、それらを更なる分析に付すことか
らなる方法がある。
パターンを互いに比較すべき異なる細胞から単離することができる。これに関連
して、mRNAサンプルは、たとえば、互いにそれらの分化段階および/または
生育段階または細胞周期の段階が異なる細胞または細胞種、または異なる履歴を
有する(たとえば、pH、温度または組成のような異なる培養条件)、または薬
理学的に活性な化合物、疾患促進/疾患阻害または疾患誘発物質(たとえば発癌
性または突然変異誘発物質)で処置された、またはそれに(たとえばUV光線)
暴露された細胞または細胞種に由来するmRNAである。このようなRNAまた
はmRNAサンプルは、これらの物質に暴露されていないまたはこの程度までに
は暴露されていないRNAまたはmRNAサンプルと比較できる。RNAまたは
mRNAサンプルは特定の組織から単離することができる。たとえば健康な組織
を病的な組織と、若い組織を老齢な組織と、処置組織を非処置組織と、誘導組織
を非誘導組織と分析的に比較することができる。また異なる発育および/または
細胞周期および/または分化段階からの組織を分析的に比較することができる。
組織の語は組織、臓器、細胞種、培養誘導細胞、細胞系の細胞または個体の細胞
を意味する。
用することができる。とくに、この方法は、ディファレンシャル遺伝子発現(2
またはそれ以上の組織または細胞において)を分析的に比較するために使用する
ことができる。
することができる。さらにこの方法は、標的遺伝子または標的タンパク質の同定
および/または特性の解明に使用することができる。これらの標的遺伝子または
標的タンパク質はとくに、疾患の予防、起源および/または進行および/または
治癒における機能(可能な限り特異的な)、分化過程たとえば細胞分化(適宜、
誘導前または後)および/または疾患の分化過程、細胞周期または細胞周期制御
および/または細胞分化たとえば細胞老化過程に機能を有する遺伝子またはタン
パク質である。
光標識プライマーの使用で置換されるので、慣用の放射性DDRTに比べて有利
であると思われる。本明細書に記載された新規な方法(DDRT変法)は、既知
のDDRTに反して、それぞれの増幅cDNAは好ましくは異なる励起スペクト
ルを有する蛍光物質で別異に標識された2個のプライマーを用いて標識される。
この方法により、適当な評価方法を用いて、それぞれの増幅された標識cDNA
を検出することができる。すなわち、増幅されたcDNAの複雑性は維持され、
検出可能である[産物1)、2)、3)および4)は検出可能であり、ゲル中の
バンドの複雑性は維持される]。これに加えて、増幅された標識cDNAのプラ
イマー組成について明瞭な結論を引き出すことができる[すなわち、cDNAを
1)、2)、3)および4)に帰属させることができる]。これは、たとえば、
実際に遺伝子配列の 3′領域に由来する増幅されたcDNAを選択すべきそれ
らのプライマー組成により、更なる分析に付すcDNAの選択を可能にする。別
異に標識された2個のプライマーの使用に基づくこの方法を用いると、したがっ
て、重複cDNAの単離および分析に包含されると考えられる時間および経費を
低下させることができる。しかしながら、慣用の放射性DDRTと同様、慣用の
蛍光DDRTでは得られない特徴である、増幅されたすべてのcDNAを同時に
検出し分析することができる。
転写酵素およびTaq ポリメラーゼ)ならびに Promega(Heidelberg)(RNA
シン)から入手した。 サーモサイクラー:Perkin Elmer GeneAmp PCR System 2400(Perkin Elmer,
Weiterstadt)。
ngのポリA−RNA/mRNA)、1μlのプライマー1(10μMプライマー
1、たとえば(T)X−MA−3′またはCy5−(T)X−MA−3′、式中、M=
A、C、G、X=11〜15)、および8μlのH2O(ヌクレアーゼを含まな
い)。反応混合物は 70℃で5分間インキュベートしたのち、氷上に置いた。
SuperScript 逆転写酵素(200U/μl)(Gibco BRL)、1μlのRNAシ
ン(40U/μl)および2μlのdNTP(250μM)をついで加えた。 逆転写は37〜50℃で60分間実施され、ついで70℃で(10分間)酵素
を不活性化する。
(GibcoBRL)、0.75μlのMgCl2(50mM)(Gibco BRL)、1.6μlの
dNTP(250μM)、0.5μlのTaq ポリメラーゼ(5U/μl)(Gibc
o BRL)、各1μlのプライマー1およびプライマー2[10μM;たとえば、プ
ライマー1としてCy5−T7−(T)X−MA−3′(T7はT7プロモーター
からの配列セグメントである)、およびフルオレセイン−(N)X(Xは10〜2
5,N=A、C、G、Tである)]および10.26μlのH2Oを2μlの実施
例1からのRT混合物に加えた。
アクリルアミドゲル;8M尿素)上で分画化する。
励起波長490nm、発光波長520nm)および635±5nm(Cy5:励起波長
650nm、発光波長675nm)において励起するスキャナーを使用して検出する
ことができる。Molecular Dynamics Storm Imager はこのタイプのスキャナーの
例である。
Claims (12)
- 【請求項1】 RNAサンプルの分析方法において、 a) RNAサンプルから相補性DNAサンプル(cDNAサンプル)の第一鎖
を調製するため、適宜、第一の染料で標識された第一のプライマーを使用し、 b) このcDNAサンプルの第二の鎖を調製するため、好ましくは第二の染料
で標識された第二のプライマーを使用し、 c) 第一の染料で標識された第一のプライマーおよび第二の染料で標識された
第二のプライマーをcDNAサンプルの増幅のために使用し、ついで d) 増幅された標識cDNAサンプルの組成を分析する ことからなる方法。 - 【請求項2】 第一のプライマーはオリゴ(dT)配列を含有する請求項1
記載の方法。 - 【請求項3】 第一のプライマーのオリゴ(dT)配列は少なくとも10個
のチミジンヌクレオチドからなる請求項1または2に記載の方法。 - 【請求項4】 第一のプライマーは、オリゴ(dT)配列の3′末端にオリ
ゴ(dT)配列には属さない少なくともさらに2個のヌクレオチドを含有する請
求項1〜3のいずれかに記載の方法。 - 【請求項5】 第一のプライマーは、位置MもしくはNに存在するオリゴ(
dT)配列には属さないヌクレオチド配列において異なるプライマー分子の不均
一混合物である請求項1〜4のいずれかに記載の方法。 - 【請求項6】 第二のプライマーは長さが少なくとも6個のヌクレオチドで
ある請求項1〜5のいずれかに記載の方法。 - 【請求項7】 第一および第二の染料は異なる蛍光物質である請求項1〜6
のいずれかに記載の方法。 - 【請求項8】 蛍光物質は、蛍光物質Cy2、Cy3、Cy5、FAM、6
−FAM、FITC、フルオレセイン、HEX、5−IAF、TAMRA、TE
T、XRITC、ROX、Alexa 488、Alexa 532、Alexa 546、Alexa 594、テ
キサスレッドおよびリサミンから選択される請求項1〜7のいずれかに記載の方
法。 - 【請求項9】 第一のRNAサンプルとは別に1種または2種以上の付加的
なRNAサンプルを同様に分析的に比較する請求項1〜8のいずれかに記載の方
法。 - 【請求項10】 ディファレンシャル遺伝子発現を分析するための請求項1
〜9のいずれかに記載の方法の使用。 - 【請求項11】 医薬的に活性な化合物の同定および/または特性解明のた
めの請求項1〜9のいずれかに記載の方法の使用。 - 【請求項12】 標的遺伝子の同定のための請求項1〜9のいずれかに記載
の方法の使用。
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