JP2002272458A - Method for sandwich assay using specific antibody to canine bnp - Google Patents
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Landscapes
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Abstract
Description
【0001】[0001]
【発明の属する分野】本発明は、イヌBNPを認識する
単一特異的な抗体および該抗体を用いたイヌBNPのサ
ンドイッチ免疫測定方法に関する。[0001] 1. Field of the Invention [0002] The present invention relates to a monospecific antibody recognizing canine BNP, and a method for sandwich immunoassay of canine BNP using the antibody.
【0002】[0002]
【従来の技術】1988年、Sudohらはブタ脳から
心房性利尿ペプチド(AtrialNatriuret
ic Peptide;ANP)と構造が極めて類似し
たペプチドを分離同定し、脳性ナトリウム利尿ペプチド
(Brain Natriuretic Peptid
e;BNP)と命名した(Nature,332(61
59),78−81(1988).)。その後、Sai
toらはBNPはブタ心臓でも合成され、血中に分泌さ
れることを示した(Biochemicaland B
iophysical Research Commu
nications,158(2),360−368
(1989).)。その後、他の動物種からもBNPは
単離されている。1989年には、Itohらがラット
心房から(Biochemical and Biop
hysical Research Communic
ations,(2)161,732−739(198
9).)、Seilhamerらがイヌから(Bioc
hemical and Biophysical R
esearch Communications,16
5(2),650−658(1989).)BNPを単
離し、1990年にはKambayashiらがヒト心
房からBNPを単離した(FEBS Letters,
259(2),341−345(1990).)。2. Description of the Related Art In 1988, Sudoh et al. Obtained atrial diuretic peptide (AtrialNatriuret) from pig brain.
ic Peptide; ANP), a peptide having a structure very similar to that of ANP, was isolated and identified.
e; BNP) ( Nature , 332 (61
59), 78-81 (1988). ). After that, Sai
To et al. have shown that BNP is also synthesized in pig heart and secreted into the blood ( Biochemical B
iophysical Research Commu
nations , 158 (2), 360-368.
(1989). ). Since then, BNP has also been isolated from other animal species. In 1989, Itoh et al. Reported from the rat atria ( Biochemical and Biop).
physical Research Communication
ations , (2) 161, 732-739 (198
9). ), Seilhamer et al. From dogs ( Bioc)
chemical and Biophysical R
essearch Communications , 16
5 (2), 650-658 (1989). ) BNP was isolated, and in 1990, Kambayashi et al. Isolated BNP from human atria ( FEBS Letters ,
259 (2), 341-345 (1990). ).
【0003】現在までの臨床研究を通じて、ヒトBNP
の血中濃度測定は心疾患における心機能を反映する機能
評価法として広く臨床応用されるに至っている。一方、
イヌは人によってもっとも多く飼育されている愛玩動物
の一つであり、家族と変わることなく人の生活に入り込
んでいる動物種であるが、その心臓病の発生頻度はヒト
などに比べて壮年以降のイヌにおいては極めて多い。日
本においては、飼育されているイヌは登録されて管理さ
れており、病院も都市を中心に充実しているものの、心
臓の簡便な機能評価法がないため、心疾患を早期に発見
することが難しく、タイムリーな治療ができない現状に
ある。このような背景から、ヒトと同様にBNPの測定
の臨床応用はイヌのQOL改善をはじめとして、イヌ心
疾患の診断と治療に大きな意味があると考えられ、その
測定系の構築が望まれている。イヌBNPが単離されて
から現在までに報告されているイヌBNPの免疫学的測
定法は、イヌBNPを抗原とし、ウサギを免疫して得た
抗血清を用いて測定している。しかしながら、効率的な
サンドイッチ免疫測定を可能にするほどには特異性が高
くない抗血清を用いたため、臨床応用が可能な高感度測
定系は提供されていなかった。[0003] Through clinical studies to date, human BNP
Has been widely applied clinically as a function evaluation method that reflects cardiac function in heart disease. on the other hand,
Dogs are one of the most bred pet animals by humans, and are an animal species that has entered human life without changing from family members.However, the incidence of heart disease is later than that of humans, etc. It is extremely common in dogs. In Japan, breeding dogs are registered and managed, and hospitals are well established, mainly in cities.However, there is no simple method for evaluating the function of the heart, so it is difficult to detect heart disease early. It is difficult and timely treatment is not possible. Against this background, the clinical application of BNP measurement is considered to be of great significance in the diagnosis and treatment of canine heart disease, including improvement of QOL in dogs, as in humans. I have. The canine BNP immunoassay reported to date since the isolation of canine BNP was performed using canine BNP as an antigen and antiserum obtained by immunizing rabbits. However, since an antiserum that is not specific enough to enable an efficient sandwich immunoassay was used, no highly sensitive assay system that could be used for clinical application was provided.
【0004】[0004]
【発明が解決しようとする課題】イヌBNPに対するポ
リクローナル抗体は得られているものの、感度の高いサ
ンドイッチ測定系構築に必要なイヌBNPに結合性を有
する特異抗体は未だ得られていない。本発明は、イヌB
NPの効率的なサンドイッチ免疫測定を可能とするよう
な特定部位に高い特性を持つ単一特異的な抗体および該
抗体を用いたサンドイッチ免疫測定方法を提供するもの
である。Although a polyclonal antibody against canine BNP has been obtained, a specific antibody capable of binding to canine BNP, which is necessary for constructing a highly sensitive sandwich measurement system, has not yet been obtained. The present invention relates to dog B
An object of the present invention is to provide a monospecific antibody having a high property at a specific site which enables efficient sandwich immunoassay of NP, and a sandwich immunoassay method using the antibody.
【0005】[0005]
【課題を解決する手段】本発明者らは、イヌBNPの高
感度の測定方法の提供を目的として研究した結果、本発
明を見出し、これを完成した。Means for Solving the Problems The present inventors have conducted studies for the purpose of providing a highly sensitive method for measuring canine BNP, and as a result, have found the present invention and completed the present invention.
【0006】すなわち、本発明は、 (1) 配列番号1記載のアミノ酸配列のうち、109
位のSerから140位のTyrからなるイヌBNPを
認識する、イヌBNPサンドイッチ免疫測定に使用可能
な単一特異的な抗体; (2) 配列番号1記載のアミノ酸配列のうち、 (a)109位のSerから117位のGly; (b)118位のCysから134位のCys;または (c)135位のAsnから140位のTyr; のいずれか1つの部位を認識する(1)記載の抗体; (3)配列番号1記載のアミノ酸配列のうち、135位
のAsnから140位のTyrの部位を認識する(1)
記載の抗体; (4) モノクローナル抗体である(3)記載の抗体; (5) マウスハイブリドーマdBC107(FERM
P−18005)により産生される(4)記載の抗
体; (6) 配列番号1記載のアミノ酸配列のうち、118
位のCysから134位のCysの部位を認識する
(1)記載の抗体; (7) モノクローナル抗体である(6)記載の抗体; (8) マウスハイブリドーマdBR103(FERM
P−18004)により産生される(7)に記載の抗
体; (9) イヌBNPに対するモノクローナル抗体を産生
するマウスハイブリドーマdBC107(FERM P
−18005); (10) イヌBNPに対するモノクローナル抗体を産
生するマウスハイブリドーマdBR103(FERM
P−18004); (11) (1)および(2)記載の抗体から選ばれ
る、互いにイヌBNPに対する結合を阻害しない2種類
の抗体を組合わせたサンドイッチ免疫測定方法; (12) 118位のCysから134位のCysを認
識する単一特異的な抗体および135位のAsnから1
40位のTyrを認識する単一特異的な抗体を組合わせ
た(11)記載の免疫測定方法; (13) 118位のCysから134位のCysを認
識するモノクローナル抗体および135位のAsnから
140位のTyrを認識するモノクローナル抗体を組合
わせた(11)記載の免疫測定方法; (14) ハイブリドーマdBC107(FERM P
−18005)およびハイブリドーマdBR103(F
ERM P−18004)により産生されるモノクロー
ナル抗体を組合わせることを特徴とする(13)に記載
の免疫測定方法および; (15) (1)から(8)のいずれかに記載の抗体を
含むイヌBNP測定キット;に関する。That is, the present invention relates to (1) the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1
A monospecific antibody recognizing canine BNP consisting of Tyr at position 140 from Ser at position 140 and usable for canine BNP sandwich immunoassay; (2) an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1; (B) Cys at position 134 to Cys at position 134; or (c) Tyr at position 140 from Asn at position 135; (3) Recognizing the Tyr site at position 140 from Asn at position 135 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 (1)
(4) an antibody according to (3), which is a monoclonal antibody; (5) a mouse hybridoma dBC107 (FERM);
(18) the antibody of (4), which is produced by P-18005); (6) 118 of the amino acid sequences of SEQ ID NO: 1
The antibody according to (1), which recognizes the Cys site at position 134 from the Cys at position 134; (7) the antibody according to (6), which is a monoclonal antibody; (8) a mouse hybridoma dBR103 (FERM)
(18) an antibody according to (7), which is produced by P-18004); (9) a mouse hybridoma dBC107 (FERMP) that produces a monoclonal antibody against canine BNP.
(18005); (10) mouse hybridoma dBR103 (FERM) producing a monoclonal antibody against canine BNP
P-18004); (11) a sandwich immunoassay in which two antibodies selected from the antibodies described in (1) and (2) and which do not inhibit binding to dog BNP are combined; (12) Cys at position 118 A monospecific antibody that recognizes Cys at positions 134 through 134 and 1 from Asn at position 135
(11) the immunoassay according to (11), wherein a monospecific antibody recognizing Tyr at position 40 is combined; (13) a monoclonal antibody recognizing Cys from position 118 to position 134 and 140 from position 135 Asn. (11) the immunoassay according to (11), in which a monoclonal antibody recognizing Tyr at the position is combined; (14) the hybridoma dBC107 (FERMP)
-18005) and hybridoma dBR103 (F
(13) an immunoassay method according to (13), which comprises combining a monoclonal antibody produced by ERM P-18004); and (15) a dog containing the antibody according to any of (1) to (8). BNP measurement kit;
【0007】本発明において、「単一特異的な抗体」と
は、単一のエピトープを認識する抗体を意味する。その
様な抗体は、目的とするエピトープを含むポリペプチド
を免疫原とすることで得られる抗体および単一のエピト
ープのみを認識するような抗体成分だけをアフィニティ
精製することにより得られる抗体が含まれ、例えば、モ
ノクローナル抗体が挙げられる。従って、複数のエピト
ープを有するポリペプチドを免疫原として得られる抗
体、例えば、生理活性を有するタンパク質全体を免疫原
とすることで得られるポリクローナル抗体は、本発明の
「単一特異的な抗体」には含まれない。「イヌBNP」
とは、配列番号1記載のアミノ酸配列のうち109位の
Serから140位のTyrまでの32アミノ酸残基か
らなるポリペプチドを意味する。また、「イヌBNP」
は、配列番号1記載のアミノ酸配列のうち118位と1
34位のCysがS−S結合を形成し、シスチンとなる
ことで環状構造を形成することがあり、その様な構造を
とる場合、配列番号1記載の109位のSerから11
7位のGlyの9アミノ酸残基からなる部位を「N末
端」、118位のCysから134位のCysの17ア
ミノ酸残基からなる部位を「リング」、135位のAn
sから140位のTyrの6アミノ酸残基からなる部位
を「C末端」という。[0007] In the present invention, "monospecific antibody" means an antibody that recognizes a single epitope. Such antibodies include antibodies obtained by using a polypeptide containing an epitope of interest as an immunogen and antibodies obtained by affinity purification of only an antibody component that recognizes only a single epitope. For example, monoclonal antibodies can be mentioned. Accordingly, an antibody obtained by using a polypeptide having a plurality of epitopes as an immunogen, for example, a polyclonal antibody obtained by using a whole protein having a physiological activity as an immunogen, is a `` monospecific antibody '' of the present invention. Is not included. "Canine BNP"
Means a polypeptide consisting of 32 amino acid residues from Ser at position 109 to Tyr at position 140 in the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 1. Also, "dog BNP"
Corresponds to position 118 and 1 of the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 1.
Cys at position 34 may form an SS bond and become a cystine, thereby forming a cyclic structure. In such a structure, Ser from position 109 of SEQ ID NO: 1 to 11
The site consisting of 9 amino acid residues of Gly at position 7 is “N-terminal”, the site consisting of 17 amino acid residues from Cys at position 118 to Cys at position 134 is “ring”, and An at position 135
The site consisting of 6 amino acid residues of Tyr at position 140 from s is referred to as “C-terminal”.
【0008】「サンドイッチ免疫測定に使用可能」と
は、互いに異なるエピトープを認識する単一特異的な抗
体であって、該抗体が目的とする測定対象、例えば、イ
ヌBNPにお互いの結合を阻害することなく結合しうる
ことを意味する。本発明において、「マウスハイブリド
ーマdBC107」とは、イヌBNPのC末端配列を認
識するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマで
あり、該ハイブリドーマは、茨城県つくば市東1丁目1
番地1の行政独立法人産業技術総合研究所特許生物寄託
センターに、平成12年8月29日付けで、受託番号:
FERM P−18005として寄託されている。本発
明において、「マウスハイブリドーマdBR103」と
は、イヌBNPのリングを認識するモノクローナル抗体
を産生するハイブリドーマであり、該ハイブリドーマ
は、茨城県つくば市東1丁目1番1番地1の行政独立法
人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに、平成1
2年8月29日付けで、受託番号:FERM P−18
004として寄託されている。[0008] "Can be used for sandwich immunoassay" refers to a monospecific antibody that recognizes different epitopes, and inhibits the binding of the antibody to a target analyte, for example, canine BNP. Means that they can be combined without any modification. In the present invention, “mouse hybridoma dBC107” is a hybridoma that produces a monoclonal antibody that recognizes the C-terminal sequence of canine BNP, and the hybridoma is 1-1-1 Higashi, Tsukuba, Ibaraki, Japan
Accession No. 1 to the Patent Organism Depositary, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (AIST) on August 29, 2000, accession number:
Deposited as FERM P-18005. In the present invention, the “mouse hybridoma dBR103” is a hybridoma that produces a monoclonal antibody that recognizes a ring of canine BNP, and the hybridoma is a 1-1-1 east Higashi 1-chome, Tsukuba, Ibaraki Prefecture, Japan. Research Institute Patent Organism Depositary Center
Accession number: FERM P-18 on August 29, 2
No. 004.
【0009】「互いにイヌBNPに対する結合を阻害し
ない2種類の単一特異的な抗体を組合わせたサンドイッ
チ免疫測定方法」とは、イヌBNPを単一特異的に認識
する、エピトープの異なる2種類の抗体を用いたサンド
イッチ免疫測定方法であって、該抗体は、一方が、他方
に阻害されることなくイヌBNPと結合することが可能
な抗体を組合わせた免疫測定方法である。このような2
種類の単一特異的な抗体の組合わせとしては、例えば、
N末端とリングにそれぞれ単一特異的な抗体、N末端と
C末端にそれぞれ単一特異的な抗体、リングとC末端に
単一特異的な抗体などの組合わせが挙げられるが、好ま
しくは、リングとC末端を単一特異的に認識する抗体の
組合わせである。本測定方法に使用される2種類の単一
特異的な抗体としては、単一のエピトープを認識する抗
体であればいずれの抗体でも良く、好ましくは、モノク
ローナル抗体であり、更に好ましくは、マウスハイブリ
ドーマdBC107およびマウスハイブリドーマdBR
103により産生されるモノクローナル抗体である。[0009] The "sandwich immunoassay method in which two kinds of monospecific antibodies which do not mutually inhibit the binding to dog BNP" is described as "two kinds of epitopes which recognize dog BNP monospecifically and have different epitopes." A sandwich immunoassay using an antibody, wherein the antibody is an immunoassay in which one of the antibodies is capable of binding to dog BNP without being inhibited by the other. Such 2
Examples of combinations of monospecific antibodies include, for example,
Monospecific antibodies at the N-terminus and ring, monospecific antibodies at the N-terminus and C-terminus, and combinations of monospecific antibodies at the ring and C-terminus are preferred. This is a combination of a ring and an antibody that monospecifically recognizes the C-terminus. As the two types of monospecific antibodies used in the present measurement method, any antibody may be used as long as it recognizes a single epitope, preferably a monoclonal antibody, and more preferably a mouse hybridoma. dBC107 and mouse hybridoma dBR
103 is a monoclonal antibody produced by
【0010】「測定キット」は、本発明の単一特異的な
抗体を含んでおり、好ましくは、本発明の2種類の単一
特異的な抗体を含んでいる。使用する2種類の抗体のう
ち、一方の抗体は担体に固相化されていても良い。抗体
の担体への固相は直接的でも間接的でも良い。間接的な
固相方法としては、使用する抗体に対する抗体(ただ
し、測定対象への結合は阻害しないもの)、アビジン−
ビオチンや測定対象とは異なる抗原抗体等の組合わせた
方法が例示される。さらに、測定キットに固相化担体が
含まれていても良い。また、他方の抗体は標識されてい
ても良い。標識の抗体への結合は直接的でも間接的でも
良い。標識としては、放射性同位体、酵素、蛍光物質な
どが例示される。好ましくは、125I、ペルオキシダー
ゼ、アルカリフォスファターゼ、ルミノールである。ま
た、間接的な抗体への標識は前記標識を結合した使用す
る抗体に対する抗体(ただし、測定対象への結合は阻害
しないもの)、アビジン−ビオチンや測定対象とは異な
る抗原抗体等の組合わせた方法が例示される。このキッ
トは、更に、検量線、標準試薬、標準試薬の取り扱い指
示書などを含むことができる。[0010] The "assay kit" contains the monospecific antibody of the present invention, and preferably contains the two monospecific antibodies of the present invention. One of the two antibodies used may be immobilized on a carrier. The solid phase of the antibody on the carrier may be direct or indirect. Examples of the indirect solid-phase method include an antibody for the antibody to be used (however, one that does not inhibit the binding to the measurement object), avidin-
Examples of the method include a combination of biotin and an antigen / antibody different from the measurement target. Further, a solid support may be included in the measurement kit. Further, the other antibody may be labeled. The binding of the label to the antibody may be direct or indirect. Examples of the label include a radioisotope, an enzyme, and a fluorescent substance. Preferably, they are 125 I, peroxidase, alkaline phosphatase and luminol. The indirect labeling of the antibody may be a combination of an antibody to the antibody to be used to which the label is bound (however, it does not inhibit the binding to the measurement target), avidin-biotin, an antigen antibody different from the measurement target, and the like. A method is illustrated. The kit can further include a calibration curve, a standard reagent, instructions for handling the standard reagent, and the like.
【0011】[0011]
【発明の実施の形態】本発明の方法を説明する。免疫 イヌBNPに対する単一特異的な抗体を作製するために
は、まず、適切な抗原で動物を免疫する。特に、抗体と
イヌBNPとの結合部位を考慮して抗体を作製する場合
には、結合させたい部位のみを含むペプチドを用いて抗
体を産生しえるような適切な免疫原を作製して、動物を
免疫する。免疫に使用する動物としては、例えば、マウ
ス、ラット、ウサギ、ヤギなどが挙げられる。抗原に
は、イヌBNP自体またはその任意の部分のペプチドフ
ラグメントを用いることができ、好ましくは、C末端ま
たはリングのペプチドフラグメントである。ペプチドフ
ラグメントは、アミノ酸配列情報に基づき、ペプチド合
成機により化学的に合成され、免疫原として用いること
ができる。免疫原はそのまま使用することもできるが、
キャリアータンパク質と結合させてコンジュゲートで使
用することもできる。キャリアータンパク質としては、
例えば、ウシ血清アルビミン(BSA)、ヘモシアニ
ン、およびウシチオグロブリン(BTG)などの高分子
が挙げられるが、好ましくは、BSAである。コンジュ
ゲートを作製するために、ペプチドとキャリアータンパ
ク質を架橋試薬を用いて結合することもある。その様な
架橋試薬として、スクシンイミジル基およびマレイミド
基を有する2官能性架橋試薬であるマレイミド化合物を
用いることができ、スクシンイミジル4−(N−マレイ
ミドメチル)シクロヘキサン−1−カルボキシレート
(SMCC)、m−マレイミドベンゾイル−N−ヒドロ
キシスクシンイミドエステル(MBS)、スクシンイミ
ジル4−(p−マレイミドフェニル)ブチレート(SM
PB)、ならびにSulfo−MBS、Sulfo−S
MCCなどが例示される。これらの架橋試薬のスクシン
イミジル基が第一アミンと反応し、さらにチオール反応
性マレイミドと反応して、システイン残基のチオール基
と共有結合を形成し架橋される。免疫原による免疫反応
を高めるために、例えば、フロイントの完全アジュバン
ト(CFA)および不完全アジュバント(IFA)を投
与してもよい。DESCRIPTION OF THE PREFERRED EMBODIMENTS The method of the present invention will be described. To produce monospecific antibodies against immune dog BNP, first, immunizing an animal with the appropriate antigen. In particular, when an antibody is prepared in consideration of the binding site between the antibody and dog BNP, a suitable immunogen capable of producing the antibody using a peptide containing only the binding site is prepared, and Immunize. Animals used for immunization include, for example, mice, rats, rabbits, goats and the like. As the antigen, canine BNP itself or a peptide fragment of any part thereof can be used, and preferably a C-terminal or ring peptide fragment. Peptide fragments are chemically synthesized by a peptide synthesizer based on amino acid sequence information and can be used as an immunogen. The immunogen can be used as is,
It can also be used in a conjugate in combination with a carrier protein. As a carrier protein,
For example, macromolecules such as bovine serum albumin (BSA), hemocyanin, and bovine thioglobulin (BTG) can be mentioned, and BSA is preferable. In order to prepare a conjugate, the peptide and the carrier protein may be combined using a crosslinking reagent. As such a crosslinking reagent, a maleimide compound that is a bifunctional crosslinking reagent having a succinimidyl group and a maleimide group can be used, and succinimidyl 4- (N-maleimidomethyl) cyclohexane-1-carboxylate (SMCC), m- Maleimidobenzoyl-N-hydroxysuccinimide ester (MBS), succinimidyl 4- (p-maleimidophenyl) butyrate (SM
PB), and Sulfo-MBS, Sulfo-S
MCC etc. are illustrated. The succinimidyl group of these crosslinking reagents reacts with the primary amine and further reacts with the thiol-reactive maleimide, forming a covalent bond with the thiol group of the cysteine residue and crosslinking. To enhance the immune response by the immunogen, for example, Freund's complete adjuvant (CFA) and incomplete adjuvant (IFA) may be administered.
【0012】ポリクローナル抗体は、例えば、レーンら
の方法(Antibodies;ALaborator
y Manual,Cold Spring Harb
er Laboratory Press,New Y
ork(1989).)などに従って作製することがで
きる。哺乳動物に抗原をフロイントの完全アジュバント
などの適切なアジュバントに乳濁した乳濁液を腹腔内、
皮下、または静脈内に投与して数週間に渡り複数回投与
することで免疫された哺乳動物を得て、それらの哺乳動
物から血清を採取し、精製することで作製できる。血中
の抗体力価は、イヌBNPをヨウ素125で標識した
125I−Y0−イヌBNP−32をトレーサーとする競合
法RIAによって調べることができる。イヌBNPの目
的部位以外に結合する抗体を除去したい場合は、目的部
位のペプチドを固相化した担体を作製し、公知の方法に
よりアフィニティ精製することで除去できる。Polyclonal antibodies can be obtained, for example, by the method of Lane et al. ( Antibodies ; Alaborator).
y Manual, Cold Spring Harb
er Laboratory Press, New Y
ork (1989). ) And the like. Intraperitoneally the emulsion emulsified in a suitable adjuvant such as Freund's complete adjuvant,
The immunized mammals can be obtained by subcutaneous or intravenous administration and multiple administrations over several weeks to obtain immunized mammals, and serum can be collected from those mammals and purified. The antibody titer in the blood was determined by labeling dog BNP with iodine-125.
It can be examined by a competitive RIA using 125 I-Y 0 -dog BNP-32 as a tracer. When it is desired to remove an antibody that binds to a site other than the target site of canine BNP, the carrier can be prepared by immobilizing a peptide at the target site on a solid phase and affinity-purifying by a known method.
【0013】抗イヌBNPマウスモノクローナル抗体の
作製 また、モノクローナル抗体は、それらの哺乳動物から脾
臓またはリンパ節を採取し、それらから得られた抗体産
生細胞を骨髄腫(ミエローマ)細胞と融合させることに
より、モノクローナル抗体産生ハイブリドーマを得るこ
とができる。細胞融合の方法は既知の方法で行うことが
でき、例えば、ケーラーとミルスタインの方法(Nat
ure,256,495−497(1975).)に従
って作製することができる。イヌBNPを認識する特異
抗体を作製するために、上記に記載した方法に従ってマ
ウスを免疫する。十分に血中抗体力価が上昇しているこ
とを確認し、採血または脾臓細胞を分離する。モノクロ
ーナル抗体、特に、C末端やリングを認識するモノクロ
ーナル抗体を産生するハイブリドーマは、このようにし
て分離した脾臓細胞とミエローマ細胞を融合して作製し
得る。脾臓細胞は前記で免疫した動物、好ましくはマウ
ス由来である。ミエローマ細胞は、哺乳類由来であり、
好ましくはマウスミエローマ細胞である。細胞の融合に
はポリエチレングリコールなどを用い得る。融合により
得られたハイブリドーマをスクリーニングおよびクロー
ニングすることにより、望ましいハイブリドーマを選択
し得る。モノクローナル抗体の作製するには、前記で得
られたハイブリドーマをインビトロまたはインビボで培
養する。好ましくは、インビボで培養する。例えば、マ
ウスモノクローナルを含む腹水を産生させるために、マ
ウスの腹腔内に前記ハイブリドーマを投与する。モノク
ローナル抗体は、産生された腹水から、当業者に公知の
方法により容易に精製され得る。[0013] Anti-canine BNP mouse monoclonal antibody
Preparation As for monoclonal antibodies, monoclonal antibody-producing hybridomas can be obtained by collecting spleens or lymph nodes from those mammals and fusing antibody-producing cells obtained therefrom with myeloma (myeloma) cells. . Cell fusion can be performed by a known method, for example, the method of Kohler and Milstein ( Nat
ure , 256 , 495-497 (1975). ). Mice are immunized according to the method described above to generate specific antibodies that recognize canine BNP. Confirm that the blood antibody titer is sufficiently high, and collect blood or spleen cells. A hybridoma that produces a monoclonal antibody, particularly a monoclonal antibody that recognizes the C-terminus or ring, can be produced by fusing the spleen cells thus isolated with myeloma cells. The spleen cells are derived from the animal, preferably a mouse, immunized above. Myeloma cells are of mammalian origin,
Preferably, it is a mouse myeloma cell. For cell fusion, polyethylene glycol or the like can be used. The desired hybridoma can be selected by screening and cloning the hybridoma obtained by the fusion. To prepare a monoclonal antibody, the hybridoma obtained above is cultured in vitro or in vivo. Preferably, it is cultured in vivo. For example, the hybridoma is administered intraperitoneally to a mouse in order to produce ascites containing a mouse monoclonal. Monoclonal antibodies can be readily purified from the produced ascites by methods known to those skilled in the art.
【0014】免疫学的測定法 本免疫測定方法に用いる単一特異的な抗体としては、安
定的に供給しうるモノクローナル抗体が望ましい。以
下、モノクローナル抗体を用いて例示する。抗体(第一
のモノクローナル抗体)を固相に固定し、抗原を含む資
料と共にインキュベートする工程、さらに標識した第二
のモノクローナル抗体を加えて、得られた混合物をイン
キュベートする工程、および混合物中の生成した標識さ
れた抗原抗体複合体を検出する工程を包含するサンドイ
ッチ免疫学的測定法が例示される。また、本発明の免疫
学的測定法では、試料と、固相化した第一のモノクロー
ナル抗体および標識した第二のモノクローナル抗体とを
同時にインキュベートしてもよい。[0014] The monospecific antibodies used in immunoassays the immunoassay, a monoclonal antibody capable of supplying stably desirable. Hereinafter, an example will be described using a monoclonal antibody. Immobilizing the antibody (the first monoclonal antibody) on a solid phase and incubating with the material containing the antigen, adding a labeled second monoclonal antibody, incubating the resulting mixture, and producing the mixture A sandwich immunoassay including a step of detecting a labeled labeled antigen-antibody complex is exemplified. In the immunoassay of the present invention, the sample and the immobilized first monoclonal antibody and labeled second monoclonal antibody may be simultaneously incubated.
【0015】本発明のサンドイッチ免疫学的測定法とし
ては、その検出方法により、サンドイッチ放射免疫測定
法(RIA法)、サンドイッチ酵素免疫測定法(EIA
法)、サンドイッチ蛍光免疫測定法(FIA法)、サン
ドイッチ発光免疫測定法(CLIA法)、サンドイッチ
発光酵素免疫測定法(CLEIA法)、サンドイッチ法
に基づく免疫クロマトグラフ法などの全てのサンドイッ
チ免疫測定法が応用しうる。定量のためには、RIA
法、EIA法が好ましい。本発明の第一の単一特異的な
抗体は、マイクロタイタープレート、ビーズ、チュー
ブ、メンブレン、濾紙、プラスチック性カップなどの担
体に固相することができ、特に、ポリエチレンビーズが
好適に用いられる。測定する試料は、イヌの血漿、血
清、血液、尿などイヌBNPを含む試料であり得る。本
発明の第二のモノクローナル抗体は、放射性同位元素、
酵素、蛍光物質、発光物質、または目視判定可能な官位
測定法などでは金コロイドや着色ラテックスなどにより
標識されえる。標識に用いられる放射性同位元素として
は、14C、3H、32P、125I、131Iなどであり、特
に、125Iが好適に用いられる。これらは、クロラミン
T法、ペルオキシダーゼ法、Iodogen法、ボルト
ハンター法などにより、モノクローナル抗体に結合され
得る。標識に用い得る酵素としては、例えば、βガラク
トシダーゼ(βGAL)、アルカリフォスファターゼ
(ALP)、西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)な
どを含む。これらは、仲根法、石川らの方法(医学書
院;酵素免疫測定法,第3版,75−127,(198
7).)などによりモノクローナル抗体に結合され得
る。標識に用いる蛍光物質としては、フルオレセイン、
フルオレサミン、フルオレセインイソチオシアネート、
テトラメチルローダミンイソチオシアネートなどがあ
る。標識に用いる発光物質としては、ルシフェリン、ル
ミノール誘導体、アクリジニウムエステルなどがある。
簡易測定法などでは、金コロイドや着色ラテックスを用
いてもよい。The sandwich immunoassay of the present invention includes, as detection methods, sandwich radioimmunoassay (RIA) and sandwich enzyme immunoassay (EIA).
Method, sandwich fluorescent immunoassay (FIA method), sandwich luminescence immunoassay (CLIA method), sandwich luminescent enzyme immunoassay (CLEIA method), and immunochromatography based on the sandwich method. Can be applied. For quantification, RIA
And the EIA method are preferred. The first monospecific antibody of the present invention can be immobilized on a carrier such as a microtiter plate, a bead, a tube, a membrane, a filter paper, or a plastic cup, and polyethylene beads are particularly preferably used. The sample to be measured can be a sample containing dog BNP, such as dog plasma, serum, blood, urine, and the like. The second monoclonal antibody of the present invention is a radioisotope,
In the case of an enzyme, a fluorescent substance, a luminescent substance, or a visual determination method that can be visually determined, the labeling can be performed using gold colloid or colored latex. The radioisotope used for labeling is 14 C, 3 H, 32 P, 125 I, 131 I, etc., and 125 I is particularly preferably used. These can be bound to the monoclonal antibody by the chloramine T method, the peroxidase method, the iodogen method, the bolt hunter method, or the like. Examples of the enzyme that can be used for labeling include β-galactosidase (βGAL), alkaline phosphatase (ALP), horseradish peroxidase (HRP), and the like. These are described in Nakane method, Ishikawa et al. Method (Medical Shoin; Enzyme immunoassay, 3rd edition, 75-127, (198)
7). ) And the like. Fluorescein,
Fluorescamine, fluorescein isothiocyanate,
And tetramethylrhodamine isothiocyanate. Luminescent substances used for labeling include luciferin, luminol derivatives, and acridinium esters.
In a simple measurement method or the like, gold colloid or colored latex may be used.
【0016】好ましい実施態様によれば、イヌBNPサ
ンドイッチRIA法が行われ得る。イヌBNPサンドイ
ッチRIA法は、具体的には、標準イヌBNP溶液また
は試料に、第一のモノクローナル抗体を固相したビーズ
を加えて混和し、4℃から45℃、好ましくは25℃か
ら37℃で、1から4時間、好ましくは2時間インキュ
ベートする(第一反応)。洗浄後、例えば125Iで標識
した第二のモノクローナル抗体を含む溶液を加え、4℃
から45℃、好ましくは25℃から37℃で、1から4
時間好ましくは2時間インキュベートし、、ビーズ上に
抗体/イヌBNP/抗体複合体を形成する(第二反
応)。洗浄後、ビーズに結合した抗原抗体複合体の放射
活性をガンマーカウンターなどで検出することによりイ
ヌBNPの量を測定し得る。他の好ましい実施態様によ
れば、イヌBNPサンドイッチEIA法が行われ得る。
イヌBNPサンドイッチEIA法は、具体的には、標準
イヌBNP溶液または試料に、第一のモノクローナル抗
体を固定したビーズを加えて混和し、4℃から45℃、
好ましくは25℃から37℃で、1から4時間、好まし
くは2時間インキュベートする(第一反応)。洗浄後、
酵素標識、例えば、西洋ワサビペルオキシダーゼ(HR
P)で標識した第二のモノクローナル抗体を含む溶液を
加え、4℃から45℃、好ましくは25℃から37℃
で、1から4時間好ましくは2時間インキュベートし、
ビーズ上に抗体−イヌBNP−抗体からなる免疫複合体
を形成する(第二反応)。ビーズ上の酵素活性を、酵素
に特異的な基質、例えば、標識酵素がHRPであればテ
トラメチルベンヂチン(TMB)を介して比色法により
測定し、それによりビーズ上の捕獲されたイヌBNPの
量を測定し得る。比色定量は、通常の分光光度計などで
行われ得る。According to a preferred embodiment, a canine BNP sandwich RIA method can be performed. In the dog BNP sandwich RIA method, specifically, a standard dog BNP solution or sample is mixed with beads to which a first monoclonal antibody has been immobilized, and mixed at 4 ° C to 45 ° C, preferably 25 ° C to 37 ° C. Incubate for 1 to 4 hours, preferably 2 hours (first reaction). After washing, a solution containing, for example, a 125 I-labeled second monoclonal antibody is added, and the solution is added at 4 ° C.
From 4 to 45 ° C, preferably from 25 to 37 ° C, from 1 to 4
Incubate for a period of time, preferably 2 hours, to form an antibody / dog BNP / antibody complex on the beads (second reaction). After washing, the amount of canine BNP can be measured by detecting the radioactivity of the antigen-antibody complex bound to the beads using a gamma counter or the like. According to another preferred embodiment, a canine BNP sandwich EIA method can be performed.
The dog BNP sandwich EIA method is, specifically, a standard dog BNP solution or a sample, a bead on which a first monoclonal antibody is immobilized is added, and the mixture is mixed at 4 ° C to 45 ° C.
Incubate at preferably 25 ° C. to 37 ° C. for 1 to 4 hours, preferably 2 hours (first reaction). After washing
Enzyme labels such as horseradish peroxidase (HR
Add a solution containing a second monoclonal antibody labeled with P) and add 4 ° C to 45 ° C, preferably 25 ° C to 37 ° C.
And incubate for 1 to 4 hours, preferably 2 hours,
An immune complex consisting of the antibody-dog BNP-antibody is formed on the beads (second reaction). The enzymatic activity on the beads is measured colorimetrically via a substrate specific for the enzyme, for example, tetramethylbenztin (TMB) if the labeling enzyme is HRP, whereby the captured dog on the beads is measured. The amount of BNP can be measured. The colorimetric determination can be performed with a usual spectrophotometer or the like.
【0017】[0017]
【実施例】本発明を以下の実施例によりさらに説明す
る。 実施例1 イヌBNPに対する競合RIA法の設定 ヒトBNPのリング部位を認識し、イヌBNPに交叉結
合性を有する抗ヒトBNPモノクローナル抗体KY−h
BNP−II(特願平2−99623)、および125I-
Y0−ヒトBNP(1−32)を用いることにより、イ
ヌBNP測定のために競合系RIAを構築した。モノク
ローナル抗体KY−hBNP−IIを産生するハイブリ
ドーマKY−hBNP−IIは、平成2年(1990
年)4月11日から、茨城県つくば市東1丁目1番1番
地1の行政独立法人産業技術総合研究所特許生物寄託セ
ンターに、Mouse Hybridoma KY−h
BNP−II、受託番号:FERM BP−2863と
して、ブタペスト条約に基づき寄託されている。RIA
にはアッセイ緩衝液として0.01M PBS、pH
7.4(1mM EDTA・2Na、0.01%(W/
V) NaN3、0.2%(W/V) BSAを含む)
を使用した。125I−Y0−ヒトBNPはクロラミンT法
(Biochemical and Biophysi
cal Research Communicatio
ns,124(3),815−821(1984).)
により調製した。次の方法により、ヒトBNPおよびイ
ヌBNPの標準曲線を作成した。まず、ポリスチレンチ
ューブに各種濃度のBNP標準溶液を100μL、125
I−Y0−ヒトBNPを100μL(40,000cp
m)、モノクローナル溶液を100μLおよびアッセイ
緩衝液を200μLを分注し、攪拌した後、4℃で20
時間インキュベートした。この溶液に2.5%(W/
V)γ−グロブリンを100μLおよび25%(W/
V)PEG−6000を100μL加え、4℃で10分
間攪拌し後、3,000rpmで20分間遠心分離を行
い、得られた沈殿物の放射活性をガンマーカウンターで
測定した。The present invention is further described by the following examples. Example 1 Setting of Competitive RIA Method for Canine BNP Anti-human BNP monoclonal antibody KY-h which recognizes the ring site of human BNP and has cross-linking ability with canine BNP
BNP-II (Japanese Patent Application No. 2-99623) and 125 I-
By using Y 0 -human BNP (1-32), a competitive RIA was constructed for canine BNP measurement. The hybridoma KY-hBNP-II producing the monoclonal antibody KY-hBNP-II was introduced in 1990 (1990).
From April 11th, the Mouse Hybridoma KY-h was registered with the Patent Organism Depositary, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology at 1-1-1 Higashi, Tsukuba City, Ibaraki Prefecture.
BNP-II, accession number: FERM BP-2863, deposited under the Budapest Treaty. RIA
Contains 0.01M PBS as an assay buffer, pH
7.4 (1 mM EDTA · 2Na, 0.01% (W /
V) NaN 3 , containing 0.2% (W / V) BSA)
It was used. 125 I-Y 0 -human BNP was obtained by the chloramine T method ( Biochemical and Biophysi).
cal Research Communicatio
ns , 124 (3), 815-821 (1984). )
Prepared by A standard curve for human BNP and dog BNP was prepared by the following method. First, 100 [mu] L of BNP standard solutions of various concentrations in polystyrene tubes, 125
100 μL of I-Y 0 -human BNP (40,000 cp)
m), 100 μL of the monoclonal solution and 200 μL of the assay buffer were dispensed, stirred, and then stirred at 4 ° C. for 20 minutes.
Incubated for hours. 2.5% (W /
V) 100 μL of γ-globulin and 25% (W /
V) 100 μL of PEG-6000 was added, and the mixture was stirred at 4 ° C. for 10 minutes, centrifuged at 3,000 rpm for 20 minutes, and the radioactivity of the obtained precipitate was measured with a gamma counter.
【0018】ヒトBNPおよびイヌBNPの標準溶液に
おける各種濃度と放射活性との関係を、標準曲線として
第1図に示した。図中、横軸は各種BNP濃度を、縦軸
は各種BNP濃度における放射活性(B)とBNPゼロ
濃度における放射活性(B0)との比率(B/B0)を示
している。その結果、リングを認識するモノクローナル
抗体KY−hBNP−IIの標識抗原との反応は、イヌ
BNPによって競合され、ヒトBNPとほぼ同等の最小
検出限界を有する容量依存的な競合曲線を描いた。そこ
で、さらなる反応系の最適化を行なった。イヌBNPの
標準溶液における各種濃度と放射活性との関係を示す標
準曲線および正常イヌより採取した血漿サンプル3種類
の測定結果を第2図に示す。その結果、イヌBNPの最
小検出限界は約600pg/mLであり、正常イヌより
採取した血漿サンプルでは全く競合が起こらなかった。
よって、イヌBNP測定の臨床応用にはサンドイッチ免
疫測定法のような、より高感度の測定法の構築が必要で
あった。The relationship between the radioactivity and various concentrations in the standard solution of human BNP and dog BNP is shown in FIG. 1 as a standard curve. In the figure, the horizontal axis represents various BNP concentrations, and the vertical axis represents the ratio (B / B 0 ) between the radioactivity (B) at various BNP concentrations and the radioactivity (B 0 ) at zero BNP concentration. As a result, the reaction of the monoclonal antibody KY-hBNP-II that recognizes the ring with the labeled antigen was competed by canine BNP, and a volume-dependent competition curve having a minimum detection limit almost equivalent to that of human BNP was drawn. Therefore, further optimization of the reaction system was performed. FIG. 2 shows a standard curve showing the relationship between various concentrations and radioactivity in a standard solution of canine BNP, and the measurement results of three types of plasma samples collected from normal dogs. As a result, the minimum detection limit of canine BNP was about 600 pg / mL, and no competition occurred in plasma samples collected from normal dogs.
Therefore, clinical application of canine BNP measurement required the construction of a more sensitive assay such as a sandwich immunoassay.
【0019】実施例2 モノクローナル抗体の調製 (1)BNPのリングを認識するモノクローナル抗体d
BR103の調製 ペプチド合成機により調製した約2mgのイヌBNP
(10−26)を、カルボキシイミドを用いて、9mg
の牛チログロブリン(シグマ社製)に結合させた。フロ
イントの完全アジュバントに乳濁させた約20μgのイ
ヌBNP(10−26)を含有する上記化合物を、2か
ら3週間間隔で、BALB/c系マウスの背部皮下およ
び腹腔内投与して免疫をおこなった。6匹中5匹のマウ
スにおいて抗体価が上昇したので、より高い反応性を示
した1匹をからモノクローナル抗体作製のための脾臓細
胞を摘出し、細胞融合に用いた。脾臓細胞とマウスミエ
ローマ細胞X63−Ag8.653との融合は、Muk
oyamaらの方法(Hypertension,1
2,117−121(1988).)に従った。細胞融
合の後、抗体反応陽性を示した全ての融合株をクローン
化して、最も強い反応性を有するクローンを選択した。
このように確立されたモノクローナル抗体をdBR10
3と命名した。得られたハイブリドーマは、抗体産生能
に基づき選択し、限界希釈法によりクローン化して、B
ALB/cマウスの腹腔内で増殖させた。モノクローナ
ル抗体のアイソタイプは、マウスモノクローナルタイピ
ングキット(マイルス社製)を用いて、オクタロニー法
により決定した。親和定数(Ka(M-1))は、Sca
tchardらのスキャッチャードブロット(Ann.
N.Y.Acad.Sci.,51,660(194
9).)から得られた。dBR103は、イヌBNPに
対して3.0×108M-1の親和性を有する。しかしな
がら、ヒトBNP及びヒトANPとの交叉反応性は、い
ずれにおいても0.01%であった。Example 2 Preparation of Monoclonal Antibody (1) Monoclonal Antibody d Recognizing BNP Ring
Preparation of BR103 About 2 mg of canine BNP prepared by peptide synthesizer
9-10 mg of (10-26) using carboximide
Of beef thyroglobulin (Sigma). The above compound containing about 20 μg of dog BNP (10-26) emulsified in Freund's complete adjuvant was administered subcutaneously and intraperitoneally to the back of BALB / c mice at intervals of 2 to 3 weeks. Was. Since the antibody titer was increased in 5 out of 6 mice, spleen cells for monoclonal antibody production were excised from one mouse showing higher reactivity and used for cell fusion. Fusion of spleen cells with mouse myeloma cells X63-Ag8.653 was performed by Muk
Oyama et al.'s method ( Hypertension , 1).
2, 117-121 (1988). A). After the cell fusion, all the fusion strains that showed a positive antibody reaction were cloned, and the clone having the strongest reactivity was selected.
The monoclonal antibody thus established was identified as dBR10
No. 3. The resulting hybridomas were selected based on their ability to produce antibodies, cloned by limiting dilution, and
ALB / c mice were grown intraperitoneally. The isotype of the monoclonal antibody was determined by the Ouchterlony method using a mouse monoclonal typing kit (manufactured by Miles). The affinity constant (Ka (M -1 )) is expressed by Sca
tchard et al., Scatchard blot (Ann.
N. Y. Acad. Sci. , 51, 660 (194)
9). ). dBR103 has an affinity of 3.0 × 10 8 M −1 for canine BNP. However, the cross-reactivity with human BNP and human ANP was 0.01% in each case.
【0020】(2)BNPのC末端を認識するモノクロ
ーナル抗体dBC107の調製 イヌBNP(27−32)を抗原として上記(1)の方
法と同様にしてC末端を認識するモノクローナル抗体d
BC107を作製した。細胞融合の後、抗体反応陽性を
示した全ての融合株をクローン化して、最も強い反応性
を有するクローンを選択した。このように確立されたモ
ノクローナル抗体をdBC107と命名した。dBC1
07は、上記(1)と同様にして培養し、Kaを計算し
た。dBC107はイヌBNPに対して1.7×1010
M-1の親和性を有する。しかしながら、ヒトBNP及び
ヒトANPとの交叉反応性は、いずれにおいても0.0
1%であった。(2) Preparation of monoclonal antibody dBC107 recognizing the C-terminus of BNP Monoclonal antibody dC107 recognizing the C-terminus using dog BNP (27-32) as an antigen in the same manner as in the above (1).
BC107 was produced. After the cell fusion, all the fusion strains that showed a positive antibody reaction were cloned, and the clone having the strongest reactivity was selected. The monoclonal antibody thus established was named dBC107. dBC1
07 was cultured in the same manner as in the above (1), and Ka was calculated. dBC107 was 1.7 × 10 10 against dog BNP
It has an affinity of M- 1 . However, the cross-reactivity with human BNP and human ANP was 0.0
1%.
【0021】(3)イヌBNPに対する抗血清の調製 上記(1)および(2)で得られた各モノクローナル抗
体の比較検討のため、イヌBNPに対する抗血清を調製
した。免疫原としてイヌBNPを、免疫動物として5羽
の家兎を用い免疫を行った。免疫原は2〜3週間隔で計
5回の免疫を行い、各回での抗体力価を測定した。抗血
清は常法に従って調製した。その結果を表1に示す。但
し、「−」は採血を実施していないことを示している。
5羽の家兎のうちAntisera−4が第4回の免疫
時で83000と高い抗体力価を示したので、検討に用
いる抗血清を採取する対象として選択し、血液を採取し
て抗血清を調製した。また、今回検討に使用した各種抗
体の親和定数(Ka)およびヒトBNPおよびヒトAN
Pとの交叉反応性を表2に示した。(3) Preparation of antiserum to dog BNP For comparative study of the monoclonal antibodies obtained in the above (1) and (2), antiserum to dog BNP was prepared. Immunization was performed using dog BNP as an immunogen and five rabbits as immunized animals. The immunogen was immunized a total of five times at 2-3 week intervals, and the antibody titer was measured at each time. Antiserum was prepared according to a conventional method. Table 1 shows the results. However, "-" indicates that blood collection was not performed.
Antisera-4 out of the five rabbits showed a high antibody titer of 83,000 at the time of the fourth immunization. Therefore, the antiserum used for the study was selected as a subject to be collected, and blood was collected to obtain the antiserum. Prepared. In addition, the affinity constants (Ka) of various antibodies used in this study and human BNP and human AN
The cross reactivity with P is shown in Table 2.
【表1】 [Table 1]
【表2】 [Table 2]
【0022】実施例3 (1)ゲルろ過クロマトグラフィーによるイヌBNPと
抗体との複合体の分析 イヌBNPと抗体とによって形成される複合体の評価を
ゲルろ過法を用いて行なった。抗体として、モノクロー
ナル抗体dBC107およびdBR103、ならびにウ
サギ抗イヌBNP抗血清Antisera−4を用い
た。イヌBNPの125I標識体(125I−Y0−イヌBN
P)は、クロラミンT法により標識ヒトBNPと同様に
して調製し、クロマトグラフィー緩衝液(0.2% B
SAを含む)に溶解したものを用いた。 試薬としてア
ッセイ緩衝液0.01M PBS、pH7.4(1mM
EDTA・2Na、0.01%(W/V) Na
N3、0.2%(W/V) BSAを含む)およびクロ
マトグラフィー緩衝液10mM Tris−NaCl、
pH7.0(0.15M NaClを含む)を使用し
た。クロマトグラフィーの操作は全て室温で行った。ま
ず、ポリスチレンチューブに適当な濃度に調製したdB
C107抗体溶液、dB107/dBR103抗体溶液
を100μL分注したものおよび抗体溶液を分注してい
ないものに、125I−Y0−イヌBNP溶液100μLお
よびアッセイ緩衝液200μLを添加し、各試料を攪拌
後、室温で終夜インキュベートした。得られた各反応液
はSuperose HR12カラム(ファルマシアバ
イオテク社製)を用いてゲルろ過クロマトグラフィーに
て分画を行った。クロマトグラフィー緩衝液で平衡化し
たSuperose HR12カラムに、各試料をか
け、流速0.5mL/分で溶出した。カラムからのすべ
ての溶出物は、0.01M PBS、pH7.4(2%
BSA含む)100μLが入っているポリプロピレン
チューブに0.5mLで分画し、チューブ中の放射線量
をγ−カウンターで計測した。その結果を第3図に示し
た。125I−Y0−イヌBNPのみのものは(□)、12 5
I−Y0−イヌBNPとdBC107の組合わせは
(◇)、125I−Y0−イヌBNPとdBC107および
dBR103の組合わせは(●)で溶出パターンを示し
た。125I−Y0−イヌBNPは、40本目に、125I−
Y0−イヌBNPと抗体が1:1で結合した複合体は2
4本目に、1:2で結合したサンドイッチ複合体は22
本目にそれぞれ溶出した。Example 3 (1) Analysis of Complex of Canine BNP and Antibody by Gel Filtration Chromatography The complex formed by canine BNP and antibody was evaluated by gel filtration. As antibodies, monoclonal antibodies dBC107 and dBR103 and rabbit anti-canine BNP antiserum Antisera-4 were used. 125 I-labeled form of dog BNP ( 125 I-Y 0 -dog BN
P) was prepared in the same manner as labeled human BNP by the chloramine T method, and the chromatographic buffer (0.2% B
(Including SA). As a reagent, assay buffer 0.01M PBS, pH 7.4 (1 mM
EDTA · 2Na, 0.01% (W / V) Na
N 3 , 0.2% (W / V) BSA) and chromatography buffer 10 mM Tris-NaCl,
A pH of 7.0 (containing 0.15 M NaCl) was used. All chromatographic operations were performed at room temperature. First, dB adjusted to an appropriate concentration in a polystyrene tube
100 μL of 125 I-Y 0 -dog BNP solution and 200 μL of assay buffer were added to 100 μL of the C107 antibody solution, 100 μL of the dB107 / dBR103 antibody solution, and 100 μL of the antibody solution, and stirred each sample. Afterwards, it was incubated overnight at room temperature. Each of the obtained reaction solutions was fractionated by gel filtration chromatography using a Superose HR12 column (manufactured by Pharmacia Biotech). Each sample was applied to a Superose HR12 column equilibrated with the chromatography buffer, and eluted at a flow rate of 0.5 mL / min. All eluate from the column was 0.01 M PBS, pH 7.4 (2%
0.5 mL was fractionated into a polypropylene tube containing 100 μL of BSA (including BSA), and the radiation dose in the tube was measured with a γ-counter. The result is shown in FIG. 125 I-Y 0 - only those dogs BNP (□), 12 5
I-Y 0 - combination of canine BNP and dBC107 is (◇), 125 I-Y 0 - combination of canine BNP and dBC107 and dBR103 showed elution pattern (●). 125 I-Y 0 -canine BNP was used for 125 I-
The complex in which Y 0 -canine BNP and antibody were bound 1: 1 was 2
Fourth, the sandwich complex bound 1: 2 was 22
Each eluted in the first run.
【0023】適当な濃度に調製したAntisera−
4抗体溶液、dBC107/Antisera−4抗体
溶液を100μL分注したものおよび抗体溶液を分注し
ていないものに、125I−Y0−イヌBNP溶液100μ
Lおよびアッセイ緩衝液200μLを添加し、各試料を
攪拌後、室温で終夜インキュベートした。得られた各反
応液はSuperose HR12カラム(ファルマシ
アバイオテク社製)を用いてゲルろ過クロマトグラフィ
ーにて分画を行った。上記同様にクロマトグラフィー緩
衝液で平衡化したSuperose HR12カラム
に、各試料をかけ、流速0.5mL/分で溶出した。ゲ
ルろ過クロマトグラフィーを行い、0.01M PB
S、pH7.4(2% BSA含む)100μLが入っ
ているポリプロピレンチューブに0.5mLで分画し、
チューブ中の放射線量をガンマーカウンターで測定し
た。その結果を第4図に示した。125I−Y0−イヌBN
Pのみのものは(□)、12 5I−Y0−イヌBNPとAn
tisera−4の組合わせは(◇)、125I−Y0−イ
ヌBNPとAntisera−4およびdBC107の
組合わせは(●)で溶出パターンを示した。125I−Y0
−イヌBNPは、40本目に、125I−Y0−イヌBNP
と抗体が1:1で結合した複合体は24本目に、1:2
で結合したサンドイッチ複合体は22本目にそれぞれ溶
出した。Antisera prepared at an appropriate concentration
100 μL of the 4 antibody solution, 100 μL of the dBC107 / Antisera-4 antibody solution, and 100 μL of the 125 I-Y 0 -dog BNP solution,
L and 200 μL of assay buffer were added and each sample was stirred and then incubated overnight at room temperature. Each of the obtained reaction solutions was fractionated by gel filtration chromatography using a Superose HR12 column (manufactured by Pharmacia Biotech). Each sample was applied to a Superose HR12 column equilibrated with the chromatography buffer in the same manner as described above, and eluted at a flow rate of 0.5 mL / min. Perform gel filtration chromatography and use 0.01M PB
S, pH 7.4 (containing 2% BSA) 0.5 mL in a polypropylene tube containing 100 μL,
The radiation dose in the tube was measured with a gamma counter. The results are shown in FIG. 125 I-Y 0 -dog BN
The P only ones (□), 12 5 I- Y 0 - Dog BNP and An
The combination of tisera-4 (◇) and the combination of 125 I-Y 0 -dog BNP with Antisera-4 and dBC107 (−4) showed elution patterns. 125 I-Y 0
- Dog BNP is a 40 knots, 125 I-Y 0 - Dog BNP
The complex in which the antibody and the antibody were bound 1: 1 was the 24th one,
The sandwich complex bound by the above was eluted on the 22nd line, respectively.
【0024】(2)抗体の組み合わせによるサンドイッ
チ複合体の形成の検討 一般に、分子に2個以上の抗体結合部位(エピトープ)
をもつ化合物を免疫して得られた抗血清は、それぞれの
エピトープに対して抗体が産生されるため、固相及び標
識に同一の抗血清を用いてもサンドイッチ免疫反応が可
能である。測定する対象物がある程度の大きさをもった
ペプチドであれば、通常はエピトープの数が2個以下と
いうことは少なく、抗血清との反応の結果、巨大分子が
形成されることが多い。このような巨大分子は、一度複
合体を形成すると、加温や洗浄等によって乖離が起こり
にくく、むしろ測定系構築には好ましい場合も多い。ヒ
トBNPは、N末端、リング部位、C末端に抗体を産生
可能であることから、少なくとも3個以上のエピトープ
が存在すると想像される。実際、サンドイッチ測定が可
能であることから、2個以上の抗体が同時に結合しう
る。イヌBNPは、ヒトBNPとアミノ酸配列も異な
り、その高次構造の推察はできないが、少なくとも力価
の高い抗血清を選択することにより、サンドイッチ測定
系を構築できると推定できる。(2) Investigation of the formation of a sandwich complex by combining antibodies In general, two or more antibody binding sites (epitope)
Since an antiserum obtained by immunizing a compound having the above-mentioned formula (1) produces antibodies against the respective epitopes, a sandwich immune reaction is possible even when the same antiserum is used for the solid phase and the label. If the object to be measured is a peptide having a certain size, the number of epitopes is usually rarely 2 or less, and a macromolecule is often formed as a result of the reaction with the antiserum. Once such a macromolecule forms a complex, dissociation hardly occurs due to heating, washing, and the like, and it is often preferable to construct a measurement system. Since human BNP can produce antibodies at the N-terminus, ring site, and C-terminus, it is supposed that at least three or more epitopes are present. In fact, since sandwich measurements are possible, two or more antibodies may bind simultaneously. Canine BNP has a different amino acid sequence from human BNP, and its higher-order structure cannot be inferred. However, it can be estimated that a sandwich measurement system can be constructed by selecting at least a high-titer antiserum.
【0025】サンドイッチ測定系の感度を高めるために
は、出来る限り多くの抗原分子が反応し、反応液中に未
反応の抗原分子を残さないことが必要である。今回選択
したウサギ抗イヌBNP抗血清Antisera−4
は、表1に示すように血液採取時の抗体力価が83,0
00倍と高く、親和定数(Ka)も2×10-9と良好
で、125I−Y0−イヌBNPと組合わせたゲルろ過クロ
マトグラフィー分析によれば、125I−Y0−イヌBNP
は抗体との複合体溶出位置から回収されるが、125I−
Y0−イヌBNPの単体溶出位置からほとんど回収され
なかった。このことより、抗血清Antisera−4
は、反応系に存在する125I−Y0−イヌBNP分子のほ
とんどを結合できることが明らかとなった。この観点か
らすれば、この抗血清は、イヌBNP免疫測定系統に適
した抗血清である。しかしながら、Antisera−
4と125I−Y0−イヌBNPとの反応液は、大部分が2
4本目の溶出位置から回収されるていることから、125
I−Y0−イヌBNPに抗体が1分子結合した複合体で
あり、22本目の溶出位置から回収される125I−Y0−
イヌBNPに抗体が2分子結合した複合体は、形成され
た複合体全体の約20%であった。この比率は抗血清の
濃度を変化させても大きな変化は生じなかった。In order to increase the sensitivity of the sandwich measurement system, it is necessary that as many antigen molecules as possible react and no unreacted antigen molecules remain in the reaction solution. Rabbit anti-dog BNP antiserum Antisera-4 selected this time
Indicates that the antibody titer at the time of blood collection was 83.0 as shown in Table 1.
00 fold higher affinity constant (Ka) was good with 2 × 10 -9, 125 I- Y 0 - According to gel filtration chromatography analysis in combination with dog BNP, 125 I-Y 0 - Dog BNP
Is recovered from the elution position of the complex with the antibody, but 125 I-
Almost no recovery was obtained from the single elution position of Y 0 -dog BNP. This indicates that antiserum Antisera-4
Can bind most of the 125 I-Y 0 -canine BNP molecules present in the reaction system. From this viewpoint, this antiserum is an antiserum suitable for a canine BNP immunoassay line. However, Antisera-
The reaction solution of 4 with 125 I-Y 0 -dog BNP was mostly 2
Since it is recovered from the fourth elution position, 125
I-Y 0 -is a complex in which one molecule of antibody is bound to dog BNP, and 125 I-Y 0 -is recovered from the elution position of the 22nd line.
The complex in which two molecules of the antibody bound to dog BNP was about 20% of the total complex formed. This ratio did not change significantly when the concentration of antiserum was changed.
【0026】通常の作製方法により、イヌBNPに対す
る抗血清を作製した場合には、イヌBNP上の複数のエ
ピトープに対して抗体が作製される。しかしながら、単
純に抗体力価のみを指標として抗血清を選択すると、測
定すべきイヌBNP分子の大部分にはサンドイッチ反応
は起こらず、抗体が1分子だけ結合した複合体を形成す
るのみである。つまり、Antisera−4単独でサ
ンドイッチ免疫測定方法を構築しても、抗原を有効に測
定系に取り入れることができず、高感度化は難しい。抗
体が1分子だけ結合する複合体が大部分を占めた原因は
いくつか考えられるが、濃度依存的に比率に変化が生じ
ないのであれば、反応液中の抗体量の不足が原因ではな
い。いずれかのエピトープに対する抗体が優先的に産生
され、その抗体とイヌBNPが結合することによって他
の抗体の結合を阻害していることが可能性としては高
い。When an antiserum against canine BNP is prepared by a usual preparation method, antibodies are prepared against a plurality of epitopes on canine BNP. However, if an antiserum is simply selected using only the antibody titer as an index, a sandwich reaction does not occur in most of the dog BNP molecules to be measured, and only a complex in which only one antibody is bound is formed. That is, even if a sandwich immunoassay is constructed using Antisera-4 alone, the antigen cannot be effectively incorporated into the assay system, and it is difficult to increase the sensitivity. There are several possible causes for the majority of the complex to which only one antibody binds, but if the ratio does not change in a concentration-dependent manner, this is not due to the shortage of the antibody in the reaction solution. It is highly probable that antibodies to any of the epitopes are preferentially produced and that binding of the antibodies to dog BNP inhibits the binding of other antibodies.
【0027】一方、C末端を認識するモノクローナル抗
体dBC107と125I−Y0−イヌBNPとの反応液は
ゲルろ過クロマトグラフィー分析から、24本目の溶出
位置から回収されていることから、dBC107は125
I−Y0−イヌBNPの大部分と結合し複合体を形成す
ることができ、Antisera−4と同様にイヌBN
P免疫測定に使用可能な抗体であることが明らかとなっ
た(第3図)。そこで、 125I−Y0−イヌBNPとAn
tisera−4の組合わせにAntisera−4よ
り一桁高いKa値2×10-10を有するdBC107抗
体を加えるたところ、その反応液のゲルろ過クロマトグ
ラフィー分析から、22本目の溶出位置から回収され、
全てのイヌBNPがサンドイッチ複合体を形成した(第
4図)。イヌBNP分子の立体構造を推定することは難
しいが、C末端とのみ結合し、Antisera−4よ
り高いKa値を持ったdBC107抗体と125I−Y0−
イヌBNPの反応することにより、他の抗体の障害とな
っていた抗体の反応を阻害し、残りの抗体の結合を可能
にしたものと考えられる。On the other hand, a monoclonal antibody recognizing the C-terminus
With the body dBC107125I-Y0-Reaction solution with dog BNP
From the gel filtration chromatography analysis, the 24th elution
Because it was recovered from the location, dBC107125
I-Y0-Binds to a majority of canine BNP to form a complex
Canine BN as in Antisera-4
It is clear that the antibody can be used for P immunoassay
(FIG. 3). Therefore, 125I-Y0-Canine BNP and An
Antisera-4 in combination with tisera-4
Ka value 2 × 10-TenDBC107 anti-
After adding the reaction mixture, the reaction solution was subjected to gel filtration chromatography.
From the Raffy analysis, it was collected from the elution position of the 22nd,
All dog BNP formed a sandwich complex (primary
4). Difficult to deduce the three-dimensional structure of canine BNP molecule
Although it binds only to the C-terminus, antisera-4
With a BC107 antibody with a higher Ka value125I-Y0−
The reaction of canine BNP can interfere with other antibodies.
Inhibits the reaction of the antibody that was previously used, allowing the remaining antibody to bind
It is considered to have been.
【0028】次に、dBC107抗体と125I−Y0−イ
ヌBNPの組合わせに、イヌBNPのリングを認識する
モノクローナル抗体dBR103抗体を加えたところ、
その反応液のゲルろ過クロマトグラフィー分析から、2
4本目の溶出位置から回収され、イヌBNPがサンドイ
ッチ複合体を形成した(第3図)。この結果は、C末端
およびリングを認識する特異的に認識する抗体を組み合
わせることで測定系を構築することにより、測定目的の
125I−Y0−イヌBNP分子のほとんどをサンドイッチ
複合体とすることができることを示しており、イヌBN
P高感度測定のためのサンドイッチ免疫測定方法に適す
る抗体の組み合わせであることが確認できた。Next, when a monoclonal antibody dBR103 antibody recognizing a canine BNP ring was added to the combination of the dBC107 antibody and 125 I-Y 0 -canine BNP,
From the gel filtration chromatography analysis of the reaction solution, 2
Recovered from the fourth elution position, dog BNP formed a sandwich complex (FIG. 3). This result was obtained by constructing a measurement system by combining antibodies specifically recognizing the C-terminal and the ring.
It shows that most of the 125 I-Y 0 -dog BNP molecules can be in a sandwich complex,
It was confirmed that the combination was an antibody suitable for a sandwich immunoassay for P-sensitive measurement.
【0029】(3)サンドイッチRIA法 dBC107およびdBR103の両抗体を組み合わせ
て用い、イヌBNPのサンドイッチRIA系を確立し
た。試薬としてアッセイ緩衝液として0.01MPB
S、pH7.4(1mM EDTA・2Na、0.01
%(W/V) NaN3、0.2%(W/V) BSA
を含む)を、洗浄液として0.01M PB、pH7.
2(0.02%(W/V) Tween20を含む)を
用いた。まず、抗体固相ビーズを作製した。常法に従
い、アッセイ緩衝液で100μg/mLの濃度に調製し
たdBC107抗体溶液中にイムノビーズ(D=6.4
mm)を室温にて2時間放置し、抗体を固相化した。そ
の後、4倍に希釈したブロックエース溶液を用いてブロ
ックして抗体固相ビーズとした。また、常法に従い、d
BR103抗体を放射性同位体125Iで標識するため、
クロラミンT法にて1 25Iを導入し、標識抗体とした。
反応チューブに標準イヌBNP溶液または検体を100
μL分注し、各チューブに標識抗体(300,000c
pm)200μLおよび抗体固相ビーズ1個を入れて緩
やかに攪拌した。反応チューブはシールし、4℃にて1
8時間放置した後、ビーズを洗浄液にて4回洗浄し、ビ
ーズの放射活性をガンマーカウンターで測定した。標準
溶液中のイヌBNP濃度と放射活性との関係から標準曲
線を作成した。その結果を、第6図に示した。dBC1
07およびdBR103の両抗体を組み合わせてたサン
ドイッチRIA法の最小検出限界値は10pg/mL以
下であり、およそ数十pg/mLとされる血漿中の健常
イヌBNP(Journalof Veterinar
y Medical Science,61,523−
529(1999).)を充分に測定できる感度を有す
る測定系と考えられた。(3) Sandwich RIA method A sandwich RIA system for canine BNP was established using a combination of both antibodies dBC107 and dBR103. 0.01MPB as assay buffer as reagent
S, pH 7.4 (1 mM EDTA · 2Na, 0.01
% (W / V) NaN 3 , 0.2% (W / V) BSA
) As a washing solution, 0.01M PB, pH7.
2 (including 0.02% (W / V) Tween 20) was used. First, antibody solid-phase beads were prepared. According to a conventional method, immunobeads (D = 6.4) were added to a dBC107 antibody solution adjusted to a concentration of 100 μg / mL with an assay buffer.
mm) was left at room temperature for 2 hours to immobilize the antibody. Then, it was blocked using a 4-fold diluted Block Ace solution to obtain antibody solid phase beads. Also, according to the usual method, d
To label the BR103 antibody with the radioactive isotope 125 I,
Introducing 1 25 I by the chloramine T method, and the labeled antibody.
In a reaction tube, add 100 standard dog BNP solution or sample
Dispense μL and add labeled antibody (300,000c) to each tube.
pm) 200 μL and one antibody solid phase bead were added and gently stirred. The reaction tube is sealed, and
After standing for 8 hours, the beads were washed four times with a washing solution, and the radioactivity of the beads was measured with a gamma counter. A standard curve was prepared from the relationship between dog BNP concentration in the standard solution and radioactivity. The result is shown in FIG. dBC1
The minimum detection limit of the sandwich RIA method using both antibodies 07 and 103 is 10 pg / mL or less, and is approximately several tens of pg / mL in healthy dog BNP ( Journalof Veterinarnar) in plasma.
y Medical Science , 61, 523-
529 (1999). ) Was considered to be a measurement system with sufficient sensitivity to measure
【0030】[0030]
【発明の効果】イヌBNPは、ヒトBNPと同じ32ア
ミノ酸残基からなるものの、そのアミノ酸配列は異なる
(第5図)。従って、イヌBNPの立体構造をヒトBN
Pの場合と同様に捉えることは不可能である。ところ
で、分子上に2個以上の抗体結合部位(エピトープ)を
持つ分子を免疫原として得た抗血清は、それぞれのエピ
トープに対する抗体が産生されるため、固相および標識
に同一の抗血清を用いてもサンドイッチ複合体を形成し
うるとされている。そこで、常法に従い家兎抗血清を作
成し、イヌBNPのサンドイッチ免疫測定方法の構築を
試みたところ、イヌBNP上には複数のサンドイッチが
可能なエピトープが存在することは確認できた。しかし
ながら、該反応系中の多くのイヌBNPは、サンドイッ
チ複合体を形成しなかった。このことより、従来の指標
である抗体力価から選定されてきた抗体は、イヌBNP
とのサンドイッチ免疫測定方法の構築には適さないこと
が明らかとなった。この問題を解決されるため、抗体作
成時から特定のエピトープを定め、該エピトープにのみ
結合する特異抗体の作製を試みた。その結果、本発明の
特異抗体、特にC末端に対する特異抗体とリング部位に
対する抗体を組み合わせることで、反応系中に存在する
イヌBNPのほとんどがサンドイッチ複合体を形成する
ことが明らかとなった。従って、本発明は、従来困難で
あったイヌBNPの高感度な免疫測定方法を提供するも
のである。As described above, canine BNP consists of the same 32 amino acid residues as human BNP, but has a different amino acid sequence (FIG. 5). Therefore, the three-dimensional structure of canine BNP was
It is impossible to catch the same as in the case of P. By the way, an antiserum obtained by using as an immunogen a molecule having two or more antibody binding sites (epitope) on a molecule uses the same antiserum as a solid phase and a label because an antibody against each epitope is produced. It is also believed that a sandwich composite can be formed. Thus, a rabbit antiserum was prepared according to a conventional method, and an attempt was made to construct a sandwich immunoassay for dog BNP. As a result, it was confirmed that a plurality of sandwich-capable epitopes were present on dog BNP. However, many dog BNPs in the reaction did not form a sandwich complex. From this, the antibody that has been selected from the antibody titer which is a conventional index is the canine BNP.
It was found that this method was not suitable for the construction of a sandwich immunoassay method. In order to solve this problem, a specific epitope was determined from the time of preparing the antibody, and an attempt was made to prepare a specific antibody that binds only to the epitope. As a result, it was clarified that most of the canine BNP present in the reaction system formed a sandwich complex by combining the specific antibody of the present invention, particularly the specific antibody for the C-terminus and the antibody for the ring site. Therefore, the present invention provides a highly sensitive immunoassay method for canine BNP, which was conventionally difficult.
【0031】[0031]
【配列表】 SEQUENCE LISTING <110> Shionogi & Co., Ltd. <120> A sandwich immunoassay using specific antibodies against dog BNP <130> 01P00104 <150> JP2000-299300 <151> 2000-09-29 <160> 1 <170> PatentIn Ver. 2.0 <210> 1 <211> 140 <212> PRT <213> Canis familiaris <300> <301> Seilhamer, Jeffrey J. Arfsten, Ann Miller, Judy A. Lundquist, Penny Scarborough, Robert M. Lewicki, John A. Porter, J. Gordon <302> Human and canine gene homologs of porcine brain natriuretic peptide <303> Biochem. Biophys. Res. Commun. <304> 165 <305> 2 <306> 650-658 <307> 1989-12-15 <308> P16859 <309> 1990-08-01 <400> 1 Met Glu Pro Cys Ala Ala Leu Pro Arg Ala Leu Leu Leu Leu Leu Phe 1 5 10 15 Leu His Leu Ser Pro Leu Gly Gly Arg Pro His Pro Leu Gly Gly Arg 20 25 30 Ser Pro Ala Ser Glu Ala Ser Glu Ala Ser Glu Ala Ser Gly Leu Trp 35 40 45 Ala Val Gln Glu Leu Leu Gly Arg Leu Lys Asp Ala Val Ser Glu Leu 50 55 60 Gln Ala Glu Gln Leu Ala Leu Glu Pro Leu His Arg Ser His Ser Pro 65 70 75 80 Ala Glu Ala Pro Glu Ala Gly Gly Thr Pro Arg Gly Val Leu Ala Pro 85 90 95 His Asp Ser Val Leu Gln Ala Leu Arg Arg Leu Arg Ser Pro Lys Met 100 105 110 Met His Lys Ser Gly Cys Phe Gly Arg Arg Leu Asp Arg Ile Gly Ser 115 120 125 Leu Ser Gly Leu Gly Cys Asn Val Leu Arg Lys Tyr 130 135 140[Sequence List] SEQUENCE LISTING <110> Shionogi & Co., Ltd. <120> A sandwich immunoassay using specific antibodies against dog BNP <130> 01P00104 <150> JP2000-299300 <151> 2000-09-29 <160> 1 <170> PatentIn Ver. 2.0 <210> 1 <211> 140 <212> PRT <213> Canis familiaris <300> <301> Seilhamer, Jeffrey J. Arfsten, Ann Miller, Judy A. Lundquist, Penny Scarborough, Robert M Lewicki, John A. Porter, J. Gordon <302> Human and canine gene homologs of porcine brain natriuretic peptide <303> Biochem. Biophys. Res.Commun. <304> 165 <305> 2 <306> 650-658 < 307> 1989-12-15 <308> P16859 <309> 1990-08-01 <400> 1 Met Glu Pro Cys Ala Ala Leu Pro Arg Ala Leu Leu Leu Leu Leu Phe 1 5 10 15 Leu His Leu Ser Pro Leu Gly Gly Arg Pro His Pro Leu Gly Gly Arg 20 25 30 Ser Pro Ala Ser Glu Ala Ser Glu Ala Ser Glu Ala Ser Gly Leu Trp 35 40 45 Ala Val Gln Glu Leu Leu Gly Arg Leu Lys Asp Ala Val Ser Glu Leu 50 55 60 Gln Ala Glu Gln Leu Ala Leu Glu Pro Leu His Arg Ser His Ser Pro 65 70 75 80 Ala Glu Alu Pro Glu Ala Gly G ly Thr Pro Arg Gly Val Leu Ala Pro 85 90 95 His Asp Ser Val Leu Gln Ala Leu Arg Arg Leu Arg Ser Pro Lys Met 100 105 110 Met His Lys Ser Gly Cys Phe Gly Arg Arg Leu Asp Arg Ile Gly Ser 115 120 125 Leu Ser Gly Leu Gly Cys Asn Val Leu Arg Lys Tyr 130 135 140
【図1】 ヒトBNPのリング構造を認識するモノクロ
ーナル抗体(KY−hBNP−II)を用いた競合系R
IA法の、ヒトBNP(1−32)およびイヌBNP
(1−32)に対する標準曲線を示したものである。FIG. 1 shows a competitive R using a monoclonal antibody (KY-hBNP-II) that recognizes the ring structure of human BNP.
Human BNP (1-32) and canine BNP of the IA method
It shows the standard curve for (1-32).
【図2】 ヒトBNPのリング構造を認識するモノクロ
ーナル抗体(KY−hBNP−II)を用いた競合系R
IA法の、正常イヌ由来の血漿に対する反応性のプロフ
ァイルを示したものである。FIG. 2 shows a competitive system R using a monoclonal antibody (KY-hBNP-II) that recognizes the ring structure of human BNP.
Fig. 3 shows a profile of reactivity of the IA method to plasma derived from normal dogs.
【図3】 イヌBNPのC末端を認識するモノクローナ
ル抗体(dBC107)と標識イヌBNPとの反応生成
物(◇)、イヌBNPのリング構造を認識するモノクロ
ーナル抗体(dBR103)とモノクローナル抗体dB
C107と標識イヌBNPとの反応生成物(●)および
標識BNP単体(□)のゲルろ過クロマトグラフィーの
溶出プロフィールを示すものである。FIG. 3 shows a reaction product of a monoclonal antibody recognizing the C-terminus of canine BNP (dBC107) and labeled canine BNP (◇), a monoclonal antibody recognizing a ring structure of canine BNP (dBR103) and a monoclonal antibody dB
FIG. 2 shows elution profiles of a reaction product of C107 and labeled dog BNP (●) and labeled BNP alone (□) by gel filtration chromatography.
【図4】 イヌBNPに対するウサギ抗血清(Anti
sera−4)と標識イヌBNPとの反応生成物
(◇)、イヌBNPのC末端を認識するモノクローナル
抗体(dBC107)とAntisera−4との反応
生成物(●)および標識BNP単体(□)のゲルろ過ク
ロマトグラフィーの溶出プロフィールを示すものであ
る。FIG. 4. Rabbit antiserum against dog BNP (Anti
sera-4) and a labeled product of canine BNP (、), a reaction product of a monoclonal antibody recognizing the C-terminus of canine BNP (dBC107) and Antisera-4 (●), and a labeled BNP alone (□) 1 shows an elution profile of gel filtration chromatography.
【図5】 各種動物のBNPのアミノ酸配列を示したも
のである。FIG. 5 shows the amino acid sequences of BNP of various animals.
【図6】 イヌBNPのC末端を認識するモノクローナ
ル抗体(dBC107)およびリング構造を認識するモ
ノクローナル抗体(dBR103)を用いたイヌBNP
サンドイッチRIA法による各種イヌBNP標準溶液を
測定した結果(標準曲線)を示したものである。FIG. 6 shows a canine BNP using a monoclonal antibody recognizing the C-terminus of canine BNP (dBC107) and a monoclonal antibody recognizing a ring structure (dBR103).
FIG. 3 shows the results (standard curves) of the measurement of various canine BNP standard solutions by the sandwich RIA method.
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) // C12P 21/08 C12N 5/00 B (72)発明者 太田 英樹 大阪府大阪市福島区鷺洲5丁目12番4号 塩野義製薬株式会社内 Fターム(参考) 4B024 AA11 BA43 GA05 HA15 4B064 AG27 CA10 CA20 CC24 DA13 4B065 AA91 AB02 CA25 CA46 4H045 AA11 AA20 AA30 CA40 DA76 EA50 ──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (51) Int.Cl. 7 Identification symbol FI Theme coat ゛ (Reference) // C12P 21/08 C12N 5/00 B (72) Inventor Hideki Ota 5-chome Sagisu, Fukushima-ku, Osaka-shi, Osaka No. 12-4 Shionogi & Co., Ltd. F term (reference) 4B024 AA11 BA43 GA05 HA15 4B064 AG27 CA10 CA20 CC24 DA13 4B065 AA91 AB02 CA25 CA46 4H045 AA11 AA20 AA30 CA40 DA76 EA50
Claims (15)
109位のSerから140位のTyrからなるイヌB
NPを認識する、イヌBNPのサンドイッチ免疫測定に
使用可能な単一特異的な抗体。1. The amino acid sequence of SEQ ID NO: 1
Dog B consisting of Ser at position 109 to Tyr at position 140
Monospecific antibodies that recognize NP and can be used in sandwich immunoassays for dog BNP.
135位のAsnから140位のTyrを認識する請求
項1記載の抗体。3. The amino acid sequence of SEQ ID NO: 1
The antibody according to claim 1, which recognizes Tyr at position 140 from Asn at position 135.
の抗体。4. The antibody according to claim 3, which is a monoclonal antibody.
ERM P−18005)により産生される請求項4記
載の抗体。5. The mouse hybridoma dBC107 (F
The antibody according to claim 4, which is produced by ERM P-18005).
118位のCysから134位のCysを認識する請求
項1記載の抗体。6. The amino acid sequence of SEQ ID NO: 1
The antibody according to claim 1, which recognizes Cys at position 134 from Cys at position 118.
の抗体。7. The antibody according to claim 6, which is a monoclonal antibody.
ERM P−18004)により産生される請求項7に
記載の抗体。8. The mouse hybridoma dBR103 (F
The antibody according to claim 7, which is produced by ERM P-18004).
を産生するマウスハイブリドーマdBC107(FER
M P−18005)。9. A mouse hybridoma dBC107 (FER) producing a monoclonal antibody against canine BNP.
MP-18005).
体を産生するマウスハイブリドーマdBR103(FE
RM P−18004)。10. A mouse hybridoma dBR103 (FE) producing a monoclonal antibody against canine BNP.
RM P-18004).
れる、互いにイヌBNPに対する結合を阻害しない2種
類の単一特異的な抗体を組合わせたサンドイッチ免疫測
定方法。11. A sandwich immunoassay in which two monospecific antibodies selected from the antibodies according to claim 1 and 2 that do not inhibit binding to dog BNP are combined.
sを認識する単一特異的な抗体および135位のAsn
から140位のTyrを認識する単一特異的な抗体を組
合わせた請求項11記載の免疫測定方法。12. Cys at position 118 to Cy at position 134
and a specific antibody that recognizes Asn at position 135
The immunoassay according to claim 11, wherein a monospecific antibody that recognizes Tyr at positions 140 to 140 is combined.
sを認識するモノクローナル抗体および135位のAs
nから140位のTyrを認識するモノクローナル抗体
を組合わせた請求項11記載の測定方法。13. Cys at position 118 to Cy at position 134
antibody recognizing s and As at position 135
The method according to claim 11, wherein a monoclonal antibody recognizing Tyr at position 140 from n is combined.
M P−18005)およびハイブリドーマdBR10
3(FERM P−18004)により産生される2種
類のモノクローナル抗体を用いることを特徴とする請求
項13に記載の測定方法。14. The hybridoma dBC107 (FER)
MP-18005) and the hybridoma dBR10
14. The method according to claim 13, wherein two kinds of monoclonal antibodies produced by FERM P-18004 are used.
体を含むイヌBNP測定キット。A kit for measuring canine BNP, comprising the antibody according to any one of claims 1 to 8.
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|---|---|---|---|
| JP2001301898A JP2002272458A (en) | 2000-09-29 | 2001-09-28 | Method for sandwich assay using specific antibody to canine bnp |
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|---|---|---|---|
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| JP2000299300 | 2000-09-29 | ||
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|---|---|
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