[go: up one dir, main page]

JP2001292791A - Method for producing n-acetyllactosmine - Google Patents

Method for producing n-acetyllactosmine

Info

Publication number
JP2001292791A
JP2001292791A JP2000112404A JP2000112404A JP2001292791A JP 2001292791 A JP2001292791 A JP 2001292791A JP 2000112404 A JP2000112404 A JP 2000112404A JP 2000112404 A JP2000112404 A JP 2000112404A JP 2001292791 A JP2001292791 A JP 2001292791A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
enzyme
reaction
acetyllactosamine
glucose
acetylglucosamine
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP2000112404A
Other languages
Japanese (ja)
Inventor
Kiyoshi Suzuki
喜義 鈴木
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Seikagaku Corp
Original Assignee
Seikagaku Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Seikagaku Corp filed Critical Seikagaku Corp
Priority to JP2000112404A priority Critical patent/JP2001292791A/en
Publication of JP2001292791A publication Critical patent/JP2001292791A/en
Pending legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a method by which N-acetyllactosamine can be synthesized in a higher yield than that of a conventional method in the enzymic method for synthesizing the N-acetyllactosamine by making the enzyme having galactose transfer actions act on N-acetylglucosamine and lactose used as a substrate. SOLUTION: This method for producing the N-acetyllactosamine is to make the enzyme having the galactose transfer actions act on the lactose and N- acetylglucosamine and the method is characterized by making a glucose oxidase coexist when the enzyme having the galactose transfer actions is made to act on the lactose and N-acetylglucosamine.

Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、ラクトース及びN
-アセチルグルコサミンを基質とし、ガラクトース転移
作用を有する酵素を作用させてN-アセチルラクトサミ
ンを製造する方法に関する。
The present invention relates to lactose and N
The present invention relates to a method for producing N-acetyllactosamine by using -acetylglucosamine as a substrate and allowing an enzyme having a galactose transfer activity to act thereon.

【0002】[0002]

【従来の技術】N-アセチルラクトサミンはD-ガラクト
ースとN-アセチルグルコサミンがβ-1,4-グリコシド結
合している二糖であり、人乳オリゴ糖やリポ多糖、各種
糖タンパク質および糖脂質等の糖鎖中に存在し、生化学
的に非常に重要なオリゴ糖である。
2. Description of the Related Art N-acetyllactosamine is a disaccharide in which D-galactose and N-acetylglucosamine have a β-1,4-glycosidic bond, and is composed of human milk oligosaccharides, lipopolysaccharides, various glycoproteins and glycolipids. It is an oligosaccharide that is present in the sugar chains and is very important biochemically.

【0003】また、N-アセチルラクトサミンは、腸内
細菌の一種であるビフィズス菌の増殖活性を有してお
り、優れた整腸作用を示すことから、育児用調製粉乳の
ような高度栄養食品、特定保健用食品等への利用が期待
されている。さらに近年、N-アセチルラクトサミンを
含む複合糖質糖鎖の生理活性にも注目が集まっており、
例えば、細胞接着阻害活性を有するシアリルLe糖鎖
等の合成における原料としても重要になりつつある。
[0003] N-acetyllactosamine has a growth activity of bifidobacteria, which is a kind of intestinal bacteria, and exhibits an excellent intestinal regulating action. Therefore, N-acetyllactosamine is a highly nutritious food such as infant formula. It is expected to be used for foods for specified health use. In recent years, attention has also been focused on the physiological activity of glycoconjugate sugar chains containing N-acetyllactosamine.
For example, it is becoming important as a raw material in the synthesis of sialyl Le X sugar chains having cell adhesion inhibitory activity.

【0004】N-アセチルラクトサミンの合成法として
は、化学合成法と酵素合成法が知られているが、一段階
の反応で目的物質が得られることから、工業規模での合
成法としては、専ら酵素合成法の研究が広くなされてい
る。現在までに行われている酵素反応を利用したN-ア
セチルラクトサミンの合成法としては、ガラクトシルト
ランスフェラーゼを利用した方法とβ-ガラクトシダー
ゼを利用した方法が報告されている。
[0004] As a method for synthesizing N-acetyllactosamine, a chemical synthesis method and an enzyme synthesis method are known. However, since the target substance can be obtained by a one-step reaction, the synthesis method on an industrial scale is as follows. Research on enzyme synthesis methods has been extensively conducted. As a method of synthesizing N-acetyllactosamine using an enzymatic reaction, a method using galactosyltransferase and a method using β-galactosidase have been reported.

【0005】ガラクトシルトランスフェラーゼを利用し
た方法としては、例えば、Brewらが報告したウリジンジ
リン酸ガラクトースとN-アセチルグルコサミンからN-
アセチルラクトサミンを合成する方法(Proc. Natl. Ac
ad. Sci. U.S.A., 59, 491,1968)があるが、基質とし
て用いるウリジンジリン酸ガラクトースが高価なため、
工業規模での合成法としては実現性に乏しいものであっ
た。
As a method using galactosyltransferase, for example, N-acetylglucosamine and uridine diphosphate reported by Brew et al.
Method for synthesizing acetyllactosamine (Proc. Natl. Ac
ad. Sci. USA, 59, 491, 1968), but uridine diphosphate galactose used as a substrate is expensive,
It was not feasible as a synthetic method on an industrial scale.

【0006】この問題を解決する方法として、出家らは
反応系内でウリジンジリン酸ガラクトースを合成させる
ためにガラクトシルトランスフェラーゼとともにトルロ
プシス属酵母の乾燥菌体などを共存させる方法、即ち、
ウリジン-5’-モノリン酸、ガラクトース及びN-アセチ
ルグルコサミンからN-アセチルラクトサミンを酵素合
成する方法を発明している(特開昭62―134096
号公報)。具体的には、ガラクトース1モル当たり0.
2モルのN-アセチルラクトサミンを得ることに成功し
ている。しかしながら、本法では、最初に反応系内でウ
リジンジリン酸ガラクトースが合成されなければならな
いために反応が終了するまでに5日もかかり、工業規模
での酵素合成法としてはさらに工夫する必要がある。
As a method of solving this problem, Ikeda et al. Co-exist with galactosyltransferase and dried cells of the yeast of the genus Torulopsis in order to synthesize galactose uridine diphosphate in the reaction system.
A method for enzymatically synthesizing N-acetyllactosamine from uridine-5'-monophosphate, galactose and N-acetylglucosamine has been invented (JP-A-62-134096).
No.). Specifically, 0.1 mol per mol of galactose.
We have successfully obtained 2 moles of N-acetyllactosamine. However, in this method, uridine diphosphate galactose must be first synthesized in the reaction system, so that it takes as long as five days until the reaction is completed, and further devising as an industrial scale enzyme synthesis method is required.

【0007】一方、もう一つのアプローチとして、Baci
llus circulansや、Diplococcus pneumoniae(現在、St
reptcoccus pneumoniaeと改名)等の微生物由来のβ-ガ
ラクトシダーゼや酵母菌体を用いて、菌体内のβ-ガラ
クトシダーゼによるガラクトース転移反応を利用した方
法が報告されている。
On the other hand, as another approach, Baci
llus circulans, Diplococcus pneumoniae (currently St
A method using a galactose transfer reaction by β-galactosidase in cells using β-galactosidase or yeast derived from a microorganism such as reptcoccus pneumoniae) has been reported.

【0008】例えば、碓氷らは、Bacillus circulans由
来のβ-ガラクトシダーゼをラクトースとN-アセチルグ
ルコサミンに作用させることによりN-アセチルラクト
サミンを製造する方法を報告しており、ガラクトース供
与体であるラクトース1モル当たり0.42モルのN-ア
セチルラクトサミンが反応液中に合成されることを示し
ている(特開平3―49692号公報)。
For example, Usui et al. Reported a method for producing N-acetyllactosamine by allowing β-galactosidase derived from Bacillus circulans to act on lactose and N-acetylglucosamine. Lactose 1 which is a galactose donor is reported. This indicates that 0.42 mol of N-acetyllactosamine per mol is synthesized in the reaction solution (JP-A-3-49692).

【0009】また、鰺坂らはβ-1,4-結合選択性の高い
β-ガラクトシダーゼであるDiplococcus pneumoniae
(現在、Streptcoccus pneumoniaeと改名)由来の酵素
とガラクトース供与体としてフェニルガラクトピラノシ
ド誘導体とを用いたN-アセチルラクトサミンの製造法
を報告している(特開平6-335395号公報)。こ
の方法は、前述の碓氷らの方法において生成する反応副
生成物N-アセチルアロラクトサミンを生成させずに、
N-アセチルラクトサミンを合成する方法である。しか
しながら、この方法のN-アセチルラクトサミンの生産
性は60〜80mMで、碓氷らの方法に比べて低く、高
価な基質を用いるわりには基質一モル当たりの反応収率
が低いものであり、工業規模で用いるには適さない。
Ajizaka et al. Also reported that Diplococcus pneumoniae, a β-galactosidase with high β-1,4-linkage selectivity,
A method for producing N-acetyllactosamine using an enzyme (now renamed Streptcoccus pneumoniae) and a phenylgalactopyranoside derivative as a galactose donor has been reported (JP-A-6-335395). This method does not produce the reaction by-product N-acetylallolactosamine produced in the method of Usui et al.
This is a method for synthesizing N-acetyllactosamine. However, the productivity of N-acetyllactosamine in this method is 60 to 80 mM, which is lower than that of Usui et al., And the reaction yield per 1 mol of the substrate is low instead of using an expensive substrate. Not suitable for use on a scale.

【0010】上記のようにこれまで報告されているN-
アセチルラクトサミン酵素合成法は、基質一モル当たり
のN-アセチルラクトサミンの収率が低く、工業規模で用
いるにはあまり適したものではなかった。従って、基質
一モル当たりのN-アセチルラクトサミンの収率が高
く、工業的規模での製造に適するN-アセチルラクトサ
ミンの酵素合成方法が望まれていた。
[0010] As described above, N-
The acetyllactosamine enzyme synthesis method was not suitable for use on an industrial scale because the yield of N-acetyllactosamine per mole of substrate was low. Accordingly, a method for synthesizing N-acetyllactosamine, which has a high yield of N-acetyllactosamine per mole of substrate and is suitable for production on an industrial scale, has been desired.

【0011】[0011]

【発明が解決しようとする課題】本発明は、N-アセチ
ルグルコサミンとラクトースとを基質として用いて、ガ
ラクトース転移作用を有する酵素を作用させることによ
るN-アセチルラクトサミンの酵素合成法において、従
来法より高収率でN-アセチルラクトサミンを合成する
ことができる方法を提供することを目的とする。
SUMMARY OF THE INVENTION The present invention relates to a conventional method for synthesizing N-acetyllactosamine by using N-acetylglucosamine and lactose as substrates and reacting an enzyme having a galactose transfer activity. An object is to provide a method capable of synthesizing N-acetyllactosamine with higher yield.

【0012】[0012]

【課題を解決するための手段】本発明者らは、上記課題
を達成するために鋭意研究を重ねた結果、N-アセチル
グルコサミンとラクトースを含有する基質を用いるN-
アセチルラクトサミンの酵素合成法において、反応副生
成物であるグルコースが、ラクトースのガラクトース残
基をN-アセチルグルコサミンに転移させる反応(以
下、「ガラクトース転移反応」ともいう)を阻害する作
用を有することに着目し、反応系内から効率よくグルコ
ースを除去する方法を検討した。その結果、グルコース
オキシダーゼによりグルコースをグルコン酸に変換する
ことで合成反応の阻害が解除され、また分解により生じ
たグルコン酸はガラクトース転移反応に影響を示さない
こと、反応系内にグルコースオキシダーゼが共存して
も、N-アセチルラクトサミン合成反応には影響を及ぼ
さないことを見出し、本発明を完成した。
Means for Solving the Problems The present inventors have made intensive studies to achieve the above object, and as a result, have found that N-acetylglucosamine and a substrate containing lactose can be used.
In the method for synthesizing acetyllactosamine, glucose, which is a reaction by-product, has an action of inhibiting a reaction for transferring a galactose residue of lactose to N-acetylglucosamine (hereinafter, also referred to as “galactose transfer reaction”). Focusing on, a method for efficiently removing glucose from the reaction system was studied. As a result, the inhibition of the synthesis reaction is released by converting glucose to gluconic acid by glucose oxidase, the gluconic acid generated by the decomposition does not affect the galactose transfer reaction, and glucose oxidase coexists in the reaction system. However, they have found that they do not affect the N-acetyllactosamine synthesis reaction, and have completed the present invention.

【0013】即ち本発明は、ラクトース及びN-アセチ
ルグルコサミンにガラクトース転移作用を有する酵素を
作用させてN-アセチルラクトサミンを製造する方法で
あって、該酵素を作用させる際にグルコースオキシダー
ゼを共存させることを特徴とする方法を提供する。
That is, the present invention relates to a method for producing N-acetyllactosamine by allowing an enzyme having a galactose transfer activity to act on lactose and N-acetylglucosamine, wherein glucose oxidase is allowed to coexist with the enzyme. A method is provided.

【0014】上記特徴を有する本発明方法によれば、反
応副生成物として生成するグルコースが連続的にグルコ
ン酸に変換され、グルコースによるガラクトース転移反
応の阻害が緩和され、高収率でN-アセチルラクトサミン
を合成することが可能となる。
According to the method of the present invention having the above characteristics, glucose produced as a reaction by-product is continuously converted to gluconic acid, the inhibition of the galactose transfer reaction by glucose is reduced, and N-acetyl is obtained in high yield. Lactosamine can be synthesized.

【0015】上記本発明方法においては、ラクトース及
びN-アセチルグルコサミンにガラクトース転移作用を
有する酵素を作用させる際に、基質溶液中に混在するグ
ルコース濃度を80mM以下とすることが好ましい。
In the method of the present invention, when an enzyme having a galactose transfer activity is allowed to act on lactose and N-acetylglucosamine, the concentration of glucose mixed in the substrate solution is preferably 80 mM or less.

【0016】上記本発明方法に使用するグルコースオキ
シダーゼとしては、Aspergillus属又はPenicillium属に
属する微生物由来のグルコースオキシダーゼを好ましく
使用することができ、特にAspergillus niger由来のグ
ルコースオキシダーゼを好ましく使用することができ
る。
As the glucose oxidase used in the method of the present invention, glucose oxidase derived from a microorganism belonging to the genus Aspergillus or Penicillium can be preferably used, and glucose oxidase derived from Aspergillus niger can be particularly preferably used.

【0017】また、上記本発明方法に使用するガラクト
ース転移作用を有する酵素としては、Bacillus属、Rhod
otorula属、Sterigmatomyces属またはStreptococcus属
に属する微生物に由来するβ-ガラクトシダーゼを好ま
しく使用することができる。
The enzymes having a galactose transfer activity used in the method of the present invention include those belonging to the genus Bacillus and Rhod.
β-galactosidase derived from a microorganism belonging to the genus otorula, Sterigmatomyces or Streptococcus can be preferably used.

【0018】[0018]

【発明の実施の形態】以下に本発明をさらに詳細に説明
する。本発明方法は、ラクトース及びN-アセチルグル
コサミンを基質として、ガラクトース転移作用を有する
酵素を作用させて、N-アセチルラクトサミンを酵素的
に合成する際に、グルコースオキシダーゼを共存させ
て、高収率でN-アセチルラクトサミンを合成する方法
である。
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION Hereinafter, the present invention will be described in more detail. In the method of the present invention, when lactose and N-acetylglucosamine are used as substrates, an enzyme having a galactose transfer action is acted on, and when enzymatically synthesizing N-acetyllactosamine, glucose oxidase is allowed to coexist and a high yield is obtained. Is a method for synthesizing N-acetyllactosamine.

【0019】上記本発明方法におけるラクトースとN-
アセチルグルコサミンを含有する基質を用いたN-アセ
チルラクトサミンの酵素的合成は、具体的には、ラクト
ースとN-アセチルグルコサミンを含有する基質に、ガ
ラクトース転移作用を有する酵素を作用させ、ガラクト
ース転移反応を起こすことによって行う。そして該反応
においてグルコースオキシダーゼを共存させる。
In the method of the present invention, lactose and N-
The enzymatic synthesis of N-acetyllactosamine using a substrate containing acetylglucosamine is specifically performed by reacting a substrate containing lactose and N-acetylglucosamine with an enzyme having a galactosyltransferring activity. Do it by waking up. Then, glucose oxidase is allowed to coexist in the reaction.

【0020】上記反応に用いられるラクトースとN-ア
セチルグルコサミンを含有する基質は通常はラクトース
とN-アセチルグルコサミンを含有する水溶液あるいは
緩衝液溶液として用いられ、各物質の含有量、含有比等
は上記酵素反応に不都合でない限り特に限定されない
が、好ましくはラクトースは0.3〜1M程度、より好
ましくは0.5M程度、N-アセチルグルコサミンは0.
5〜1.5M程度、より好ましくは1M程度の濃度で用
いる。ラクトースとN-アセチルグルコサミンのモル比
は1:5〜1:1程度、好ましくは1:2〜1:1程度とす
る。
The substrate containing lactose and N-acetylglucosamine used in the above reaction is usually used as an aqueous solution or a buffer solution containing lactose and N-acetylglucosamine, and the content and content ratio of each substance are as described above. It is not particularly limited as long as it is not inconvenient for the enzymatic reaction, but preferably, lactose is about 0.3 to 1 M, more preferably about 0.5 M, and N-acetylglucosamine is 0.5.
It is used at a concentration of about 5 to 1.5 M, more preferably about 1 M. The molar ratio of lactose to N-acetylglucosamine is about 1: 5 to 1: 1, preferably about 1: 2 to 1: 1.

【0021】本発明において、「ガラクトース転移作用
を有する酵素」とは、ラクトースからガラクトース残基
をN-アセチルグルコサミンに転移する反応を触媒する
作用を有する酵素をいい、そのような作用を示す酵素で
あれば特に限定されない。このような酵素としては、精
製酵素の他、該酵素の作用を有する静止菌体、乾燥菌
体、菌体破砕物なども使用することができる。
In the present invention, the term "enzyme having a galactose transfer activity" refers to an enzyme having an activity of catalyzing a reaction for transferring a galactose residue from lactose to N-acetylglucosamine, and is an enzyme having such an activity. There is no particular limitation if it exists. As such an enzyme, in addition to the purified enzyme, quiescent cells, dried cells, crushed cells, and the like having the action of the enzyme can also be used.

【0022】具体的な酵素としては、Bacillus circula
ns等のBacillus属、Rhodotorula minutaやRhodotorula
lactosa等のRhodotorula属、Streptcoccus pneumoniae
やStreptcoccus sp 6646k株等のStreptcoccus属、 Ster
igmatomyces circulans等のSterigmatomyces属由来のβ
-ガラクトシダーゼの精製酵素もしくは部分精製酵素、
又は該酵素を含有する物質(静止菌体、乾燥菌体、菌体
破砕物等)を好ましく使用することができる。N-アセ
チルラクトサミンはD-ガラクトースとN-アセチルグル
コサミンがβ-1,4-グリコシド結合している二糖である
ので、β-1,4-グリコシド結合に対する特異性の高いβ-
ガラクトシダーゼが好ましい。特に、Bacillus circula
ns由来のβ-1,4グリコシド結合に対する特異性の高いβ
-ガラクトシダーゼの精製酵素もしくは部分精製酵素又
は該酵素を含有する物質(静止菌体、乾燥菌体、菌体破
砕物等)が好ましい。
As specific enzymes, Bacillus circula
genus Bacillus, Rhodotorula minuta and Rhodotorula
genus Rhodotorula such as lactosa, Streptcoccus pneumoniae
Genus such as Streptcoccus sp.
β from the genus Sterigmatomyces such as igmatomyces circulans
-Galactosidase purified enzyme or partially purified enzyme,
Alternatively, a substance containing the enzyme (static cells, dried cells, disrupted cells, etc.) can be preferably used. N-acetyllactosamine is a disaccharide in which D-galactose and N-acetylglucosamine are linked by β-1,4-glycosidic bonds, so that β-acetyllactosamine has high specificity for β-1,4-glycosidic bonds.
Galactosidase is preferred. In particular, Bacillus circula
Highly specific β for β-1,4 glycosidic bond from ns
-A purified or partially purified enzyme of galactosidase or a substance containing the enzyme (static cells, dried cells, disrupted cells, etc.) is preferred.

【0023】前記酵素の濃度は、上記反応が好適に進行
するように当業者が適宜設定することができるが、例え
ばβ-ガラクトシダーゼを用いた場合、終濃度で0.1
0 U/ml〜10 U/mlが好ましく0.10 U/ml〜0.20
U/mlとすることがより好ましい。尚、β-ガラクトシダ
ーゼ1Uの酵素活性は、 p-ニトロフェニル-β-ガラクト
ピラノシド溶液(pH 6.0)に、該酵素を添加し、30℃
で10分間反応を行った場合、1分間に1μモルのp-ニ
トロフェノールを遊離させる酵素量と定義する。
The concentration of the enzyme can be appropriately set by those skilled in the art so that the above-mentioned reaction proceeds suitably. For example, when β-galactosidase is used, the final concentration is 0.1%.
0 U / ml to 10 U / ml, preferably 0.10 U / ml to 0.20
More preferably, it is U / ml. The enzyme activity of 1 U of β-galactosidase was determined by adding the enzyme to a solution of p-nitrophenyl-β-galactopyranoside (pH 6.0) at 30 ° C.
When the reaction is carried out for 10 minutes, the amount of enzyme that releases 1 μmol of p-nitrophenol per minute is defined.

【0024】本発明において使用する「グルコースオキ
シダーゼ」は、グルコースをグルコン酸に変換する作用
を有する酵素である。グルコースオキシダーゼの精製酵
素又は部分精製酵素の他、該酵素作用を有する静止菌
体、乾燥菌体、菌体破砕物などを使用することができ
る。該酵素の由来は特に限定されないが、Aspergillus
niger等のAspergillus属由来のものや、Penicillium no
tatum等のPenisillium属由来のものが挙げられる。特に
Aspergillus niger由来のものが好ましい。
"Glucose oxidase" used in the present invention is an enzyme having an action of converting glucose to gluconic acid. In addition to a purified enzyme or a partially purified enzyme of glucose oxidase, a quiescent cell, a dried cell, a crushed cell, and the like having the enzyme action can be used. Although the origin of the enzyme is not particularly limited, Aspergillus
niger or other Aspergillus genus or Penicillium no
and those derived from the genus Penisillium such as tatum. In particular
Those derived from Aspergillus niger are preferred.

【0025】グルコースオキシダーゼ濃度に関しても、
グルコースをグルコン酸に変換する反応が好適に進行す
るように当業者が適宜設定することができる。ただし、
本発明方法は、ラクトースとN-アセチルグルコサミン
との酵素反応によって生じるグルコースによるガラクト
ース転移反応の阻害を、生成したグルコースをグルコー
スオキシダーゼでグルコン酸に変換することにより抑制
することを特徴とするので、反応系中のグルコース濃度
をなるべく低く維持するように反応条件を設定すること
が好ましい。具体的には、酵素反応中の反応系内のグル
コース濃度は80 mM程度以下とすることが好まし
く、さらに40 mM以下であるとより好ましい。この
ようなグルコース濃度を得るためには、上記のような濃
度でβ-ガラクトシダーゼを使用した場合、グルコース
オキシダーゼの濃度は、例えば終濃度で2〜10 U/ml
とすることが好ましい。尚、一般にグルコン酸は、水溶
液中では、グルコノ-1,4-ラクトン、グルコノ-1,5-ラク
トン及び遊離のグルコン酸の平衡混合物として存在する
ことが知られており、本発明においても、グルコースオ
キシダーゼにより生成したグルコン酸は溶液中でグルコ
ノ-1,4-ラクトン、グルコノ-1,5-ラクトン及び遊離のグ
ルコン酸の平衡混合物として存在している。
Regarding the glucose oxidase concentration,
Those skilled in the art can appropriately set such that the reaction of converting glucose to gluconic acid proceeds appropriately. However,
The method of the present invention is characterized by suppressing the inhibition of galactose transfer reaction by glucose generated by an enzymatic reaction between lactose and N-acetylglucosamine by converting generated glucose to gluconic acid with glucose oxidase. It is preferable to set the reaction conditions so as to keep the glucose concentration in the system as low as possible. Specifically, the glucose concentration in the reaction system during the enzymatic reaction is preferably about 80 mM or less, and more preferably 40 mM or less. In order to obtain such a glucose concentration, when β-galactosidase is used at the above concentration, the concentration of glucose oxidase is, for example, 2 to 10 U / ml in final concentration.
It is preferable that In general, gluconic acid is known to exist as an equilibrium mixture of glucono-1,4-lactone, glucono-1,5-lactone and free gluconic acid in an aqueous solution. Gluconic acid produced by oxidase is present in solution as an equilibrium mixture of glucono-1,4-lactone, glucono-1,5-lactone and free gluconic acid.

【0026】上記「ガラクトース転移作用を有する酵
素」及び、「グルコースオキシダーゼ」は共に、これら
の酵素生産能を有する非組換え微生物等の天然物から抽
出・精製された酵素、これらの酵素作用を有する微生物
菌体等、さらにこれらの酵素をコードする遺伝子DNA
を導入した微生物等の細胞を生育させるなど、遺伝子工
学的手法により製造したものであってもよい。ガラクト
ース転移反応を有する酵素あるいはグルコースオキシダ
ーゼの活性部位を含むポリペプチドであってもよく、こ
のようなポリペプチドは遺伝子工学的手法により製造で
きる。
Both the "enzyme having a galactose transfer activity" and the "glucose oxidase" are enzymes extracted and purified from natural products such as non-recombinant microorganisms capable of producing these enzymes, and have the enzyme activities. Microbial cells, etc., and gene DNAs encoding these enzymes
May be produced by genetic engineering techniques, such as by growing cells of microorganisms or the like into which is introduced. It may be an enzyme having a galactose transfer reaction or a polypeptide containing an active site of glucose oxidase, and such a polypeptide can be produced by a genetic engineering technique.

【0027】本発明の製造方法における上記酵素反応に
おいては、上記基質を含有する溶液(例えば、水溶液、
緩衝液溶液)中で、ラクトース及びN-アセチルグルコ
サミンにガラクトース転移作用を有する酵素を作用させ
てN-アセチルラクトサミンとグルコースを生成させ、
それと並行して、生成したグルコースにグルコースオキ
シダーゼを作用させてグルコン酸に変換する。これら両
酵素反応が進行する限り、両酵素を作用させる態様、反
応条件等は限定されないが、用いるガラクトース転移作
用を有する酵素及びグルコースオキシダーゼの至適pH
及び至適温度において、緩衝液中で行うことが、好まし
い。例えば、Bacillus circulans由来のβ-ガラクトシ
ダーゼとAspergillus niger由来のグルコースオキシダ
ーゼを用いる場合、pH5〜7、30℃の条件下、該p
Hに保持できる緩衝液中で反応を行うことが好ましい。
In the enzymatic reaction in the production method of the present invention, a solution (for example, an aqueous solution,
Buffer solution), an enzyme having a galactose transfer effect is acted on lactose and N-acetylglucosamine to produce N-acetyllactosamine and glucose,
In parallel, glucose oxidase acts on the produced glucose to convert it to gluconic acid. As long as these two enzyme reactions proceed, the mode in which both enzymes act, reaction conditions and the like are not limited, but the optimal pH of the enzyme having a galactose transfer activity and glucose oxidase to be used.
It is preferable to perform the reaction in a buffer at an optimum temperature. For example, when β-galactosidase derived from Bacillus circulans and glucose oxidase derived from Aspergillus niger are used, the pH is 5 to 7 and 30 ° C.
It is preferable to carry out the reaction in a buffer solution that can hold H.

【0028】本発明は、N-アセチルラクトサミンの酵
素合成反応と該反応によって生じたガラクトース転移反
応阻害物であるグルコースを酵素的にグルコン酸に変換
する反応を同一反応系内で行うことが重要である。従っ
てこれらの酵素反応を実施する形態は、ガラクトース転
移酵素反応とグルコースをグルコン酸に変換する酵素反
応が同じ反応系内でほぼ並行して行われる形態である必
要があるが、このような条件を満たしていれば特に限定
されることはなく、当業者が適宜設定することができ
る。例えば、β-ガラクトシダーゼとグルコースオキシ
ダーゼを組み合わせた酵素調製物を、N-アセチルグル
コサミンとラクトースを含有する基質溶液に添加する方
法やβ-ガラクトシダーゼとグルコースオキシダーゼを
同一又は異なる担体(ビーズ、膜等)に固定したものを
用いる方法や、β-ガラクトシダーゼとグルコースオキ
シダーゼを限外濾過膜に固定化して行う方法等が考えら
れる。
In the present invention, it is important that the enzyme synthesis reaction of N-acetyllactosamine and the reaction of enzymatically converting glucose, which is a galactose transfer inhibitor produced by the reaction, into gluconic acid are performed in the same reaction system. It is. Therefore, the form in which these enzyme reactions are carried out must be a form in which the galactosyltransferase reaction and the enzyme reaction for converting glucose to gluconic acid are performed almost in parallel in the same reaction system. There is no particular limitation as long as they are satisfied, and those skilled in the art can appropriately set them. For example, a method of adding an enzyme preparation in which β-galactosidase and glucose oxidase are combined to a substrate solution containing N-acetylglucosamine and lactose, or using β-galactosidase and glucose oxidase on the same or different carriers (beads, membranes, etc.) A method using a fixed substance, a method in which β-galactosidase and glucose oxidase are immobilized on an ultrafiltration membrane, and the like can be considered.

【0029】[0029]

【実施例】本発明を実施例によりさらに具体的に説明す
るが、本発明は以下の実施例に限定されるものではな
い。
EXAMPLES The present invention will be described more specifically with reference to examples, but the present invention is not limited to the following examples.

【0030】参考例1 β-ガラクトシダーゼの活性測定 p-ニトロフェニル-β-ガラクトピラノシドを5 mMの濃度
となるように100 mM酢酸ナトリウム緩衝液(pH 6.0)中
に溶解し、基質溶液とした。100μlの基質溶液に同緩衝
液で様々な濃度に希釈したβ-ガラクトシダーゼ酵素溶
液を20μl加え、30℃で10分間反応を行った。880μ
lの1%K2BO4・7H20水溶液を添加して反応を停止させた
後、遊離したp-ニトロフェノール濃度をその特異的吸収
である400nmの吸光度を測定することにより求めた。1U
の酵素活性は、1分間に1μmolのp-ニトロフェノール
を遊離させる酵素量と定義した。
[0030]Reference example 1  Measurement of β-galactosidase activity p-nitrophenyl-β-galactopyranoside at 5 mM concentration
In 100 mM sodium acetate buffer (pH 6.0)
To give a substrate solution. Buffer with 100 μl substrate solution
Β-galactosidase enzyme solution diluted to various concentrations
The solution was added in an amount of 20 μl, and reacted at 30 ° C. for 10 minutes. 880μ
1% K of lTwoBOFour・ 7HTwoReaction was stopped by adding 0 aqueous solution
After that, the concentration of released p-nitrophenol is determined by its specific absorption
It was determined by measuring the absorbance at 400 nm. 1U
Enzyme activity is 1 μmol p-nitrophenol per minute
Was defined as the amount of enzyme that liberates

【0031】参考例2 酵素反応条件の決定 市販のラクトース(和光純薬工業(株)製)とN-アセ
チルグルコサミン(ナカライテスク製)を表1に示す様
々な濃度となるように100 mM酢酸ナトリウム緩衝液(pH
6.0)に添加して基質溶液を調製し、Bacillus circula
ns由来β-ガラクトシダーゼ(大和化成(株)製)を終
濃度として0.15 U/mlとなるように加え、30℃、37
℃、60℃の各温度条件下で17時間反応させた。反応
混合物を煮沸浴中で5分間加熱して酵素を失活させた
後、蒸留水で1/10に希釈し、高速液体クロマトグラフィ
ーで反応生成物の分析を行った。結果を表1に示す。
[0031]Reference example 2  Determination of enzyme reaction conditions Commercial lactose (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) and N-
Til glucosamine (Nacalai Tesque) as shown in Table 1.
100 mM sodium acetate buffer (pH
 6.0) to prepare a substrate solution, and add Bacillus circula
ns-derived β-galactosidase (Daiwa Kasei Co., Ltd.)
The solution was added to a concentration of 0.15 U / ml,
The reaction was performed for 17 hours under each temperature condition of 60 ° C. and 60 ° C. reaction
The mixture was heated in a boiling bath for 5 minutes to inactivate the enzyme
After that, dilute it to 1/10 with distilled water and use high-performance liquid chromatography.
The reaction product was analyzed by the above method. Table 1 shows the results.

【0032】[0032]

【表1】 表1に示した結果より、N-アセチルラクトサミンの生
産量は基質濃度に依存して増加するが、ガラクトース供
与体であるラクトースの濃度0.5M以上ではほぼ横ば
いとなり、またラクトース濃度が低い程、及び反応温度
が高い程、異性体であるN-アセチルアロラクトサミン
が生成される割合が増えることが判った。この結果か
ら、特に断らない限り以降の実験におけるN-アセチル
ラクトサミン合成反応においては酵素濃度を0.15 U/
ml、反応温度を30℃、ラクトースとN-アセチルグル
コサミンの基質濃度をそれぞれ0.5M及び1M、反応
時間を17時間とした。
[Table 1] From the results shown in Table 1, the production amount of N-acetyllactosamine increases depending on the substrate concentration, but it is almost flat at a concentration of lactose which is a galactose donor of 0.5 M or more. It was found that the higher the reaction temperature and the higher the reaction temperature, the higher the proportion of the isomer N-acetylallolactosamine produced. From these results, unless otherwise noted, the enzyme concentration was 0.15 U / N in the N-acetyllactosamine synthesis reaction in the subsequent experiments.
ml, the reaction temperature was 30 ° C., the substrate concentrations of lactose and N-acetylglucosamine were 0.5 M and 1 M, respectively, and the reaction time was 17 hours.

【0033】実施例1 N-アセチルラクトサミンの酵素的合成に対するグルコ
ース濃度の影響 参考例2で決定した条件によりBacillus circulans由来
β-ガラクトシダーゼによるN-アセチルラクトサミンの
酵素合成反応を行い、反応終了溶液を、活性炭-セライ
ト(1:1, 和光純薬)カラム(1.5 x 45 cm)にかけ、水
(500 ml)と30%メタノール(500 ml)を用いたメタノ
ール濃度の直線的増加グラディエント法で溶出し、精製
した。溶出パターンを図1に示す。溶出画分のうち、21
0 nm(アセチル基の吸収)におけるUV吸収とE690 nm
における吸収が検出された最初のピークをN-アセチル
グルコサミン画分とし、図1におけるフラクション番号
8〜34を回収し、凍結乾燥してN-アセチルグルコサ
ミン及びグルコースからなる単糖画分を得た。この回収
された単糖画分を基質として用い、上記と同様にN-ア
セチルラクトサミンの酵素合成反応を実施した。その結
果、上記酵素合成反応液から回収した単糖画分を用いた
場合は、市販のN-アセチルグルコサミン(ナカライテ
スク製)を用いたときよりN-アセチルラクトサミンの
生産量が30%低下した。
[0033]Example 1  Glucose for enzymatic synthesis of N-acetyllactosamine
Of Bacillus circulans depending on the conditions determined in Reference Example 2
of N-acetyllactosamine by β-galactosidase
Perform an enzyme synthesis reaction, and add
(1: 1, Wako Pure Chemicals) column (1.5 x 45 cm)
(500 ml) and 30% methanol (500 ml)
Elution by gradient method and purification
did. The elution pattern is shown in FIG. Of the eluted fractions, 21
UV absorption at 0 nm (absorption of acetyl group) and E690 nm
The first peak at which absorption was detected at
Glucosamine fraction, fraction number in Fig. 1
8 to 34 are collected, lyophilized and dried with N-acetylglucosa.
A monosaccharide fraction consisting of min and glucose was obtained. This collection
Using the obtained monosaccharide fraction as a substrate, the N-A
An enzymatic synthesis reaction of cetyl lactosamine was performed. The result
As a result, the monosaccharide fraction recovered from the enzyme synthesis reaction solution was used.
In the case, commercially available N-acetylglucosamine (Nacalaiite
From N-acetyllactosamine
Production dropped by 30%.

【0034】さらに、グルコースの濃度の違いによるN
-アセチルラクトサミン酵素合成への影響を調べるため
に下記の実験を行った。N-アセチルグルコサミン濃度
が990mMまたは480mMとなるように参考例2と同
様に調製した基質溶液に、表2に示す様々な濃度でグル
コースを添加し、参考例2と同様にN-アセチルラクト
サミン合成反応を実施した。結果を表2に示す。
Further, N due to the difference in glucose concentration
The following experiment was performed to investigate the effect on -acetyllactosamine enzyme synthesis. Glucose was added at various concentrations shown in Table 2 to a substrate solution prepared in the same manner as in Reference Example 2 so that the N-acetylglucosamine concentration was 990 mM or 480 mM, and N-acetyllactosamine synthesis was performed in the same manner as in Reference Example 2. The reaction was performed. Table 2 shows the results.

【0035】[0035]

【表2】 表2に示す結果より、80 mM以下のグルコース濃度ま
でであればN-アセチルラクトサミン合成反応はそれ程
強く阻害されないことが判った。ディクソンプロット解
析によると、高濃度のグルコースによる阻害効果の様式
は拮抗型で、そのKi値は190 mMであることが判明
した。
[Table 2] From the results shown in Table 2, it was found that the N-acetyllactosamine synthesis reaction was not so strongly inhibited up to a glucose concentration of 80 mM or less. Dixon plot analysis revealed that the mode of inhibition by high concentrations of glucose was antagonistic, with a Ki value of 190 mM.

【0036】実施例2 N-アセチルラクトサミンの酵素的合成に対する単糖類
の影響 参考例2で決定した条件でN-アセチルラクトサミンの
酵素合成反応を行うと250〜300mMのグルコース
が生成される。反応中に反応系内からグルコースを除去
する方法として、グルコースオキシダーゼやグルコース
イソメラーゼによってグルコースをグルコン酸やフルク
トースに変換する方法が考えられるが、これらの方法が
利用可能か否かを評価するために下記の実験を行った。
[0036]Example 2  Monosaccharides for enzymatic synthesis of N-acetyllactosamine
Of N-acetyllactosamine under the conditions determined in Reference Example 2
When the enzyme synthesis reaction is performed, glucose of 250 to 300 mM is obtained.
Is generated. Removes glucose from inside the reaction system during the reaction
Glucose oxidase or glucose
Isomerase converts glucose to gluconic acid or fruc
There are several ways to convert to tooth, but these methods are not
The following experiment was performed to evaluate whether or not it was available.

【0037】参考例2と同様に調製した基質溶液にグル
コース、フルクトースまたはグルコン酸をそれぞれ30
0mMの濃度になるように添加した3種類の基質を調製
し、参考例2の条件に従いN-アセチルラクトサミン酵
素合成を行った。結果を表3に示す。
Glucose, fructose or gluconic acid was added to a substrate solution prepared in the same manner as in Reference Example 2 for 30 minutes each.
Three kinds of substrates added to a concentration of 0 mM were prepared, and N-acetyllactosamine enzyme synthesis was performed under the conditions of Reference Example 2. Table 3 shows the results.

【0038】[0038]

【表3】 グルコースオキシダーゼによる反応生成物であるグルコ
ン酸を添加した溶液を用いたN-アセチルラクトサミン
の酵素合成活性は、対照として行った参考例2と同様の
基質溶液を用いた場合と同等であり、グルコン酸による
反応阻害はほとんどみられなかった。しかし、グルコー
スのグルコースイソメラーゼによる反応生成物であるフ
ルクトースは、グルコースと同等のガラクトース転移反
応阻害活性を示した。
[Table 3] The enzyme synthesizing activity of N-acetyllactosamine using a solution to which gluconic acid, a reaction product of glucose oxidase, was added was the same as that in the case where the same substrate solution as in Reference Example 2 was used as a control. The reaction was hardly inhibited by the acid. However, fructose, a reaction product of glucose with glucose isomerase, exhibited galactose transfer reaction inhibitory activity equivalent to that of glucose.

【0039】実施例3 N-アセチルラクトサミンの合成 参考例2に従い調製した基質溶液に0.15 U/mlとなるよ
うにBacillus circulans由来β-ガラクトシダーゼを添
加し、さらにAspergillus niger由来のグルコースオキ
シダーゼ(比活性156ユニット/mg、クラボウ(株)製)を
終濃度5 U/mlになるように添加し、15%アンモニア
水でpHを5〜7に制御しながらN-アセチルラクトサミ
ン酵素合成反応を行った。基質濃度として、N-アセチ
ルグルコサミン濃度は1Mに固定したが、ラクトース濃
度は0.5M及び1Mの2種とした。反応17時間目の
N-アセチルラクトサミン生産量を表4に示す。
[0039]Example 3  Synthesis of N-acetyllactosamine The substrate solution prepared according to Reference Example 2 had a concentration of 0.15 U / ml.
Add β-galactosidase from sea urchin Bacillus circulans
And glucose glucose from Aspergillus niger.
Sidase (156 units / mg specific activity, manufactured by Kurabo Industries, Ltd.)
Add to a final concentration of 5 U / ml and add 15% ammonia
While controlling the pH to 5 to 7 with water, N-acetyllactosami
An enzyme synthesis reaction was performed. As the substrate concentration, N-acetyl
Luglucosamine concentration was fixed at 1M, but lactose concentration
The degree was set to 0.5M and 1M. 17 hours after the reaction
Table 4 shows the amount of N-acetyllactosamine produced.

【0040】[0040]

【表4】 グルコースオキシダーゼを添加し、ラクトース濃度を1
Mとした場合のN-アセチルラクトサミン生産量は参考
例2に示した標準法と比較して31%増加した。
[Table 4] Add glucose oxidase and reduce lactose concentration to 1
When M was used, the amount of N-acetyllactosamine production increased by 31% as compared with the standard method shown in Reference Example 2.

【0041】[0041]

【発明の効果】本発明によれば、従来法より高収率でN
-アセチルラクトサミンを合成することができ、N-アセ
チルグルコサミンとラクトースとを基質として用い、ガ
ラクトース転移作用を有する酵素を作用させるN-アセ
チルラクトサミンの酵素合成方法において、工業規模で
のN-アセチルラクトサミンの製造に適した方法が提供
される。
According to the present invention, N yield can be increased with higher yield than the conventional method.
N-acetyllactosamine can be synthesized, N-acetylglucosamine and lactose are used as substrates, and an enzyme having a galactose transfer action is acted on. A method suitable for the production of lactosamine is provided.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】 Bacillus circulans由来β-ガラクトシダー
ゼによるN-アセチルラクトサミンの酵素合成反応におい
て得られる混合物についての活性炭・セライトクロマト
グラフィーにおける糖の溶出パターンを示す図である。
FIG. 1 is a diagram showing a sugar elution pattern in activated carbon / celite chromatography of a mixture obtained in an enzymatic synthesis reaction of N-acetyllactosamine by β-galactosidase from Bacillus circulans.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) (C12P 19/26 (C12P 19/26 C12R 1:645) C12R 1:645) (C12P 19/26 (C12P 19/26 C12R 1:80) C12R 1:80) (C12P 19/26 (C12P 19/26 C12R 1:685) C12R 1:685) ──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (51) Int.Cl. 7 Identification symbol FI theme coat ゛ (Reference) (C12P 19/26 (C12P 19/26 C12R 1: 645) C12R 1: 645) (C12P 19/26 (C12P 19/26 C12R 1:80) C12R 1:80) (C12P 19/26 (C12P 19/26 C12R 1: 685) C12R 1: 685)

Claims (5)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 ラクトース及びN-アセチルグルコサミ
ンにガラクトース転移作用を有する酵素を作用させてN
-アセチルラクトサミンを製造する方法であって、該酵
素を作用させる際にグルコースオキシダーゼを共存させ
ることを特徴とする前記方法。
1. An enzyme having a galactose transfer activity is acted on lactose and N-acetylglucosamine.
-A method for producing acetyllactosamine, wherein glucose oxidase is allowed to coexist when the enzyme is allowed to act.
【請求項2】 ラクトース及びN-アセチルグルコサミ
ンにガラクトース転移作用を有する酵素を作用させる際
に、基質溶液中に混在するグルコース濃度を80mM以
下とすることを特徴とする請求項1に記載の方法。
2. The method according to claim 1, wherein when an enzyme having a galactose transfer activity is allowed to act on lactose and N-acetylglucosamine, the concentration of glucose mixed in the substrate solution is 80 mM or less.
【請求項3】 グルコースオキシダーゼが、Aspergillu
s属又はPenicillium属に属する微生物由来のグルコース
オキシダーゼである請求項1又は2に記載の方法。
3. The method according to claim 1, wherein the glucose oxidase is Aspergillus.
The method according to claim 1 or 2, which is a glucose oxidase derived from a microorganism belonging to the genus s or Penicillium.
【請求項4】 グルコースオキシダーゼが、Aspergillu
s niger由来のグルコースオキシダーゼである請求項1
〜3のいずれかに記載の方法。
4. The method according to claim 1, wherein the glucose oxidase is Aspergillus.
s niger-derived glucose oxidase.
A method according to any one of claims 1 to 3.
【請求項5】 ガラクトース転移作用を有する酵素が、
Bacillus属、Rhodotorula属、Sterigmatomyces属または
Streptococcus属に属する微生物に由来するβ-ガラクト
シダーゼである請求項1〜4のいずれかに記載の方法。
5. An enzyme having a galactose transfer activity,
Genus Bacillus, Rhodotorula, Sterigmatomyces or
The method according to any one of claims 1 to 4, which is β-galactosidase derived from a microorganism belonging to the genus Streptococcus.
JP2000112404A 2000-04-13 2000-04-13 Method for producing n-acetyllactosmine Pending JP2001292791A (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2000112404A JP2001292791A (en) 2000-04-13 2000-04-13 Method for producing n-acetyllactosmine

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2000112404A JP2001292791A (en) 2000-04-13 2000-04-13 Method for producing n-acetyllactosmine

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JP2001292791A true JP2001292791A (en) 2001-10-23

Family

ID=18624583

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2000112404A Pending JP2001292791A (en) 2000-04-13 2000-04-13 Method for producing n-acetyllactosmine

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP2001292791A (en)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2006041401A (en) * 2004-07-29 2006-02-09 Sharp Corp Semiconductor device and manufacturing method thereof
JP2006223268A (en) * 2005-02-21 2006-08-31 Yakult Honsha Co Ltd Method for producing galactosyl disaccharide
JP2007197371A (en) * 2006-01-26 2007-08-09 Yaizu Suisankagaku Industry Co Ltd Beauty skin promoter and beauty health food
WO2024101286A1 (en) 2022-11-11 2024-05-16 雪印メグミルク株式会社 N-acetyllactosamine production method and n-acetyllactosamine-containing composition

Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS6214792A (en) * 1985-07-10 1987-01-23 Meiji Seika Kaisha Ltd Production of composition containing large amount of fructooligosaccharide
JPS632997A (en) * 1986-06-20 1988-01-07 Hitachi Ltd Removal of glucose
JPH0335787A (en) * 1989-06-29 1991-02-15 Ajinomoto Co Inc Production of galactose transition product
JPH0349692A (en) * 1989-07-18 1991-03-04 Yaizu Suisan Kagaku Kogyo Kk Production of n-acetyllactosamine
JPH0349693A (en) * 1989-07-18 1991-03-04 Yaizu Suisan Kagaku Kogyo Kk Production of n-acetyllactosamine
JPH06335395A (en) * 1993-05-28 1994-12-06 Meiji Milk Prod Co Ltd Production of n-acetyl-lactosamine
JPH0833496A (en) * 1994-07-25 1996-02-06 K I Kasei Kk Production of oligosaccharide

Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS6214792A (en) * 1985-07-10 1987-01-23 Meiji Seika Kaisha Ltd Production of composition containing large amount of fructooligosaccharide
JPS632997A (en) * 1986-06-20 1988-01-07 Hitachi Ltd Removal of glucose
JPH0335787A (en) * 1989-06-29 1991-02-15 Ajinomoto Co Inc Production of galactose transition product
JPH0349692A (en) * 1989-07-18 1991-03-04 Yaizu Suisan Kagaku Kogyo Kk Production of n-acetyllactosamine
JPH0349693A (en) * 1989-07-18 1991-03-04 Yaizu Suisan Kagaku Kogyo Kk Production of n-acetyllactosamine
JPH06335395A (en) * 1993-05-28 1994-12-06 Meiji Milk Prod Co Ltd Production of n-acetyl-lactosamine
JPH0833496A (en) * 1994-07-25 1996-02-06 K I Kasei Kk Production of oligosaccharide

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2006041401A (en) * 2004-07-29 2006-02-09 Sharp Corp Semiconductor device and manufacturing method thereof
JP2006223268A (en) * 2005-02-21 2006-08-31 Yakult Honsha Co Ltd Method for producing galactosyl disaccharide
JP2007197371A (en) * 2006-01-26 2007-08-09 Yaizu Suisankagaku Industry Co Ltd Beauty skin promoter and beauty health food
WO2024101286A1 (en) 2022-11-11 2024-05-16 雪印メグミルク株式会社 N-acetyllactosamine production method and n-acetyllactosamine-containing composition
EP4617370A1 (en) 2022-11-11 2025-09-17 Megmilk Snow Brand Co. Ltd. N-acetyllactosamine production method and n-acetyllactosamine-containing composition

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0327099B1 (en) Cyclomaltodextrin glucanotransferase, process for its preparation and novel microorganism useful for the process
JP3557289B2 (en) Recombinant thermostable enzyme that releases trehalose from non-reducing carbohydrates
JP2012016309A (en) Maltotriose-forming amylase, production method and use thereof
JP3557288B2 (en) Recombinant thermostable enzyme that produces non-reducing carbohydrates with terminal trehalose structure from reducing starch sugars
JP4473402B2 (en) Dextran production method
JP3559609B2 (en) Recombinant enzyme, its production method and use
JP2001046096A (en) PRODUCTION OF GLYCOSIDE WITH alpha-GLUCOSIDASE AND NEW alpha- GLUCOSIDASE AND ITS PRODUCTION
JP2001292791A (en) Method for producing n-acetyllactosmine
US6562600B1 (en) Production of cyclic alternan tetrasaccharides from oligosaccharide substrates
Mase et al. Purification and characterization of a novel glucoamylase from Acremonium sp. YT-78
JP2933960B2 (en) Method for producing branched oligosaccharide
JP2001292792A (en) Method for recovering N-acetylglucosamine
JP4161181B2 (en) Novel process for producing carbohydrates including cordierigosaccharides and nigerooligosaccharides, and cells and enzymes used therefor, and processes for producing the same
JP2652049B2 (en) Method for producing galactooligosaccharide
WO1995034570A1 (en) Process for producing disaccharides and novel saccharides
JP2004261132A (en) Pullulan degrading enzyme, its production method and use
JP3916682B2 (en) Method for producing glycoside
JPH02131592A (en) Sweetener manufacturing method
JP3995774B2 (en) Novel α-fucosidase
JP2002125692A (en) METHOD FOR PRODUCING ETHYL-alpha-D-GLUCOSIDE
JP3494686B2 (en) Method for producing isomaltosyl fructoside
JP4759028B2 (en) Method for producing non-reducing disaccharide containing α-galactosyl group
KURIKI et al. Production of isomalto/branched-oligosaccharide syrup by using immobilized neopullulanase and preliminary evaluation of the syrup as a food additive
JP2559400B2 (en) Malto-oligosaccharide-forming amylase and method for producing the same
JP2001299338A (en) Laminaribiose phosphorylase, a method for producing the same, and a method for producing a laminarioligosaccharide using the enzyme.

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20070402

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20100126

A02 Decision of refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02

Effective date: 20100525