JP2000201692A - 発酵法によるl―グルタミン酸の製造法 - Google Patents
発酵法によるl―グルタミン酸の製造法Info
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
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- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
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Abstract
(57)【要約】
【課題】 効率のよいL−グルタミン酸の製造法を提供
する。 【解決手段】 細胞内のピルビン酸カルボキシラーゼを
コードする遺伝子のコピー数を高めること、又は同遺伝
子の発現調節配列の機能が強化されることにより、細胞
中のピルビン酸カルボキシラーゼ活性が増強され、かつ
L−グルタミン酸生産能を有するコリネ型細菌を培地に
培養し、該培養物中にL−グルタミン酸を生成蓄積せし
め、該培養物からL−グルタミン酸を採取する。
する。 【解決手段】 細胞内のピルビン酸カルボキシラーゼを
コードする遺伝子のコピー数を高めること、又は同遺伝
子の発現調節配列の機能が強化されることにより、細胞
中のピルビン酸カルボキシラーゼ活性が増強され、かつ
L−グルタミン酸生産能を有するコリネ型細菌を培地に
培養し、該培養物中にL−グルタミン酸を生成蓄積せし
め、該培養物からL−グルタミン酸を採取する。
Description
【0001】
【発明の属する技術分野】本発明は、発酵法によるL−
グルタミン酸の製造法に関する。L−グルタミン酸は、
食品、医薬品等として重要なアミノ酸である。
グルタミン酸の製造法に関する。L−グルタミン酸は、
食品、医薬品等として重要なアミノ酸である。
【0002】
【従来の技術】従来、L−グルタミン酸は、主としてブ
レビバクテリウム属、コリネバクテリウム属、ミクロバ
クテリウム属に属するいわゆるコリネ型L−グルタミン
酸生産菌またはそれらの変異株を用いた発酵法により製
造されている(アミノ酸発酵、学会出版センター、19
5〜215頁、1986年)。
レビバクテリウム属、コリネバクテリウム属、ミクロバ
クテリウム属に属するいわゆるコリネ型L−グルタミン
酸生産菌またはそれらの変異株を用いた発酵法により製
造されている(アミノ酸発酵、学会出版センター、19
5〜215頁、1986年)。
【0003】近年は、遺伝子組換え技術を利用して、コ
リネ型L−グルタミン酸生産菌を育種する技術が開示さ
れている。例えば、α−ケトグルタル酸デヒドロゲナー
ゼ遺伝子の破壊等により同酵素活性が欠損したコリネ型
L−グルタミン酸生産菌が、過剰量のビオチンを含有す
る培地に培養する際、界面活性剤やペニシリンのような
ビオチン作用抑制物質を培地に添加することなく著量の
L−グルタミン酸を生成蓄積することが開示されている
(WO 95/34672号)。
リネ型L−グルタミン酸生産菌を育種する技術が開示さ
れている。例えば、α−ケトグルタル酸デヒドロゲナー
ゼ遺伝子の破壊等により同酵素活性が欠損したコリネ型
L−グルタミン酸生産菌が、過剰量のビオチンを含有す
る培地に培養する際、界面活性剤やペニシリンのような
ビオチン作用抑制物質を培地に添加することなく著量の
L−グルタミン酸を生成蓄積することが開示されている
(WO 95/34672号)。
【0004】L−グルタミン酸の生合成は、好気的条件
下では、グルコース等の糖から解糖系を経て、同経路で
生成するピルビン酸からアセチル−CoAを経由してト
リカルボン酸サイクルに入り、トリカルボン酸サイクル
の中間体であるα−ケトグルタル酸から分岐し、グルタ
ミン酸デヒドロゲナーゼあるいはグルタミンシンセター
ゼ/グルタミン酸シンターゼによる反応によって生合成
される。このような知見から、グルタミン酸デヒドロゲ
ナーゼ、イソクエン酸デヒドロゲナーゼ、アコニット酸
ヒドラターゼ及びクエン酸シンターゼをコードする遺伝
子を含む組換え体DNAを保有するコリネ型グルタミン
酸生産菌を用いるL−グルタミン酸の製造法が開示され
ている(特開昭63−214189号)。
下では、グルコース等の糖から解糖系を経て、同経路で
生成するピルビン酸からアセチル−CoAを経由してト
リカルボン酸サイクルに入り、トリカルボン酸サイクル
の中間体であるα−ケトグルタル酸から分岐し、グルタ
ミン酸デヒドロゲナーゼあるいはグルタミンシンセター
ゼ/グルタミン酸シンターゼによる反応によって生合成
される。このような知見から、グルタミン酸デヒドロゲ
ナーゼ、イソクエン酸デヒドロゲナーゼ、アコニット酸
ヒドラターゼ及びクエン酸シンターゼをコードする遺伝
子を含む組換え体DNAを保有するコリネ型グルタミン
酸生産菌を用いるL−グルタミン酸の製造法が開示され
ている(特開昭63−214189号)。
【0005】上記のような微生物の育種や製造法の改良
により、L−グルタミン酸の生産性は高まってはいる
が、今後の需要の一層の増大に応えるためには、さらに
微生物のL−グルタミン酸の生産性を高める技術の開発
が求められている。
により、L−グルタミン酸の生産性は高まってはいる
が、今後の需要の一層の増大に応えるためには、さらに
微生物のL−グルタミン酸の生産性を高める技術の開発
が求められている。
【0006】一方、コリネバクテリウム・グルタミカム
のピルビン酸カルボキシラーゼをコードする遺伝子(py
c遺伝子)はすでにクローニングされ、同遺伝子を発現
しピルビン酸カルボキシラーゼ活性が高められたコリネ
バクテリウム・グルタミカム、あるいは同遺伝子が不活
性化されたコリネバクテリウム・グルタミカムが知られ
ている(Peters-Wendisch, P. G. et al., Microbiolog
y, 144, 915-927 (1998))。しかし、これらの微生物
は、グルコースでの生育に必要な酵素に関する研究材料
として創製されたものであり、ピルビン酸カルボキシラ
ーゼ活性とL−グルタミン酸生産性との関係については
知られていない。
のピルビン酸カルボキシラーゼをコードする遺伝子(py
c遺伝子)はすでにクローニングされ、同遺伝子を発現
しピルビン酸カルボキシラーゼ活性が高められたコリネ
バクテリウム・グルタミカム、あるいは同遺伝子が不活
性化されたコリネバクテリウム・グルタミカムが知られ
ている(Peters-Wendisch, P. G. et al., Microbiolog
y, 144, 915-927 (1998))。しかし、これらの微生物
は、グルコースでの生育に必要な酵素に関する研究材料
として創製されたものであり、ピルビン酸カルボキシラ
ーゼ活性とL−グルタミン酸生産性との関係については
知られていない。
【0007】
【発明が解決しようとする課題】本発明は、上記観点か
らなされたものであり、効率のよいL−グルタミン酸の
製造法を提供することを課題とする。
らなされたものであり、効率のよいL−グルタミン酸の
製造法を提供することを課題とする。
【0008】
【課題を解決するための手段】本発明者は、上記課題を
解決するために鋭意研究を行った結果、前述のL−グル
タミン酸の生合成経路から分岐するアナプレロティック
経路の反応を触媒する酵素であるピルビン酸カルボキシ
ラーゼの活性を増強することにより、コリネ型細菌のL
−グルタミン酸生産能を向上させることができることを
見出し、本発明を完成するに至った。
解決するために鋭意研究を行った結果、前述のL−グル
タミン酸の生合成経路から分岐するアナプレロティック
経路の反応を触媒する酵素であるピルビン酸カルボキシ
ラーゼの活性を増強することにより、コリネ型細菌のL
−グルタミン酸生産能を向上させることができることを
見出し、本発明を完成するに至った。
【0009】すなわち本発明は、細胞中のピルビン酸カ
ルボキシラーゼ活性が増強され、かつL−グルタミン酸
生産能を有するコリネ型細菌を培地に培養し、該培養物
中にL−グルタミン酸を生成蓄積せしめ、該培養物から
L−グルタミン酸を採取することを特徴とするL−グル
タミン酸の製造法である。
ルボキシラーゼ活性が増強され、かつL−グルタミン酸
生産能を有するコリネ型細菌を培地に培養し、該培養物
中にL−グルタミン酸を生成蓄積せしめ、該培養物から
L−グルタミン酸を採取することを特徴とするL−グル
タミン酸の製造法である。
【0010】本発明はまた、前記方法において、ピルビ
ン酸カルボキシラーゼ活性が、前記細菌細胞内のピルビ
ン酸カルボキシラーゼをコードする遺伝子のコピー数を
高めること、又は同遺伝子の発現調節配列の機能が強化
されることにより増強されたことを特徴とする方法を提
供する。
ン酸カルボキシラーゼ活性が、前記細菌細胞内のピルビ
ン酸カルボキシラーゼをコードする遺伝子のコピー数を
高めること、又は同遺伝子の発現調節配列の機能が強化
されることにより増強されたことを特徴とする方法を提
供する。
【0011】本発明はさらに、前記方法において、前記
ピルビン酸カルボキシラーゼをコードする遺伝子がコリ
ネ型細菌由来であることを特徴とする方法を提供する。
ピルビン酸カルボキシラーゼをコードする遺伝子がコリ
ネ型細菌由来であることを特徴とする方法を提供する。
【0012】
【発明の実施の形態】以下、本発明を詳細に説明する。
本発明の方法においては、細胞中のピルビン酸カルボキ
シラーゼ活性が増強され、かつL−グルタミン酸生産能
を有するコリネ型細菌が用いられる。本発明にいうコリ
ネ型細菌は、従来ブレビバクテリウム属に分類されてい
たが現在コリネバクテリウム属に統合された細菌を含み
(Int. J. Syst. Bacteriol., 41, 255(1981))、また
コリネバクテリウム属と非常に近縁なブレビバクテリウ
ム属細菌を含む。このようなコリネ型細菌の例として以
下のものが挙げられる。
本発明の方法においては、細胞中のピルビン酸カルボキ
シラーゼ活性が増強され、かつL−グルタミン酸生産能
を有するコリネ型細菌が用いられる。本発明にいうコリ
ネ型細菌は、従来ブレビバクテリウム属に分類されてい
たが現在コリネバクテリウム属に統合された細菌を含み
(Int. J. Syst. Bacteriol., 41, 255(1981))、また
コリネバクテリウム属と非常に近縁なブレビバクテリウ
ム属細菌を含む。このようなコリネ型細菌の例として以
下のものが挙げられる。
【0013】コリネバクテリウム・アセトアシドフィラ
ム コリネバクテリウム・アセトグルタミカム コリネバクテリウム・アルカノリティカム コリネバクテリウム・カルナエ コリネバクテリウム・グルタミカム コリネバクテリウム・リリウム(コリネバクテリウム・
グルタミカム) コリネバクテリウム・メラセコーラ コリネバクテリウム・サーモアミノゲネス コリネバクテリウム・ハーキュリス ブレビバクテリウム・ディバリカタム(コリネバクテリ
ウム・グルタミカム) ブレビバクテリウム・フラバム(コリネバクテリウム・
グルタミカム) ブレビバクテリウム・インマリオフィラム ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム(コリネバ
クテリウム・グルタミカム) ブレビバクテリウム・ロゼウム ブレビバクテリウム・サッカロリティカム ブレビバクテリウム・チオゲニタリス ブレビバクテリウム・アンモニアゲネス(コリネバクテ
リウム・アンモニアゲネス) ブレビバクテリウム・アルバム ブレビバクテリウム・セリヌム ミクロバクテリウム・アンモニアフィラム
ム コリネバクテリウム・アセトグルタミカム コリネバクテリウム・アルカノリティカム コリネバクテリウム・カルナエ コリネバクテリウム・グルタミカム コリネバクテリウム・リリウム(コリネバクテリウム・
グルタミカム) コリネバクテリウム・メラセコーラ コリネバクテリウム・サーモアミノゲネス コリネバクテリウム・ハーキュリス ブレビバクテリウム・ディバリカタム(コリネバクテリ
ウム・グルタミカム) ブレビバクテリウム・フラバム(コリネバクテリウム・
グルタミカム) ブレビバクテリウム・インマリオフィラム ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム(コリネバ
クテリウム・グルタミカム) ブレビバクテリウム・ロゼウム ブレビバクテリウム・サッカロリティカム ブレビバクテリウム・チオゲニタリス ブレビバクテリウム・アンモニアゲネス(コリネバクテ
リウム・アンモニアゲネス) ブレビバクテリウム・アルバム ブレビバクテリウム・セリヌム ミクロバクテリウム・アンモニアフィラム
【0014】具体的には、下記のような菌株を例示する
ことができる。 コリネバクテリウム・アセトアシドフィラム ATCC
13870 コリネバクテリウム・アセトグルタミカム ATCC1
5806 コリネバクテリウム・アルカノリティカム ATCC2
1511 コリネバクテリウム・カルナエ ATCC15991 コリネバクテリウム・グルタミカム ATCC1302
0、13032、13060 コリネバクテリウム・リリウム(コリネバクテリウム・
グルタミカム) ATCC15990 コリネバクテリウム・メラセコーラ ATCC1796
5 コリネバクテリウム・サーモアミノゲネス AJ123
40(FERM BP−1539) コリネバクテリウム・ハーキュリス ATCC1386
8 ブレビバクテリウム・ディバリカタム(コリネバクテリ
ウム・グルタミカム)ATCC14020 ブレビバクテリウム・フラバム(コリネバクテリウム・
グルタミカム) ATCC13826、ATCC140
67 ブレビバクテリウム・インマリオフィラム ATCC1
4068 ブレビバクテリウム・ラクトフェルメンタム(コリネバ
クテリウム・グルタミカム) ATCC13665、A
TCC13869、 ブレビバクテリウム・ロゼウム ATCC13825 ブレビバクテリウム・サッカロリティカム ATCC1
4066 ブレビバクテリウム・チオゲニタリス ATCC192
40 ブレビバクテリウム・アンモニアゲネス(コリネバクテ
リウム・アンモニアゲネス) ATCC6871 ブレビバクテリウム・アルバム ATCC15111 ブレビバクテリウム・セリヌム ATCC15112 ミクロバクテリウム・アンモニアフィラム ATCC1
5354
ことができる。 コリネバクテリウム・アセトアシドフィラム ATCC
13870 コリネバクテリウム・アセトグルタミカム ATCC1
5806 コリネバクテリウム・アルカノリティカム ATCC2
1511 コリネバクテリウム・カルナエ ATCC15991 コリネバクテリウム・グルタミカム ATCC1302
0、13032、13060 コリネバクテリウム・リリウム(コリネバクテリウム・
グルタミカム) ATCC15990 コリネバクテリウム・メラセコーラ ATCC1796
5 コリネバクテリウム・サーモアミノゲネス AJ123
40(FERM BP−1539) コリネバクテリウム・ハーキュリス ATCC1386
8 ブレビバクテリウム・ディバリカタム(コリネバクテリ
ウム・グルタミカム)ATCC14020 ブレビバクテリウム・フラバム(コリネバクテリウム・
グルタミカム) ATCC13826、ATCC140
67 ブレビバクテリウム・インマリオフィラム ATCC1
4068 ブレビバクテリウム・ラクトフェルメンタム(コリネバ
クテリウム・グルタミカム) ATCC13665、A
TCC13869、 ブレビバクテリウム・ロゼウム ATCC13825 ブレビバクテリウム・サッカロリティカム ATCC1
4066 ブレビバクテリウム・チオゲニタリス ATCC192
40 ブレビバクテリウム・アンモニアゲネス(コリネバクテ
リウム・アンモニアゲネス) ATCC6871 ブレビバクテリウム・アルバム ATCC15111 ブレビバクテリウム・セリヌム ATCC15112 ミクロバクテリウム・アンモニアフィラム ATCC1
5354
【0015】コリネ型細菌細胞中のピルビン酸カルボキ
シラーゼ活性を増強するには、ピルビン酸カルボキシラ
ーゼをコードする遺伝子断片を、コリネ型細菌で機能す
るベクター、好ましくはマルチコピー型ベクターと連結
して組換えDNAを作製し、これをL−グルタミン酸生
産能を有するコリネ型細菌宿主に導入して形質転換すれ
ばよい。形質転換株の細胞内のピルビン酸カルボキシラ
ーゼをコードする遺伝子(以下、「pyc遺伝子」と略す
る)のコピー数が上昇する結果、ピルビン酸カルボキシ
ラーゼ活性が増強される。
シラーゼ活性を増強するには、ピルビン酸カルボキシラ
ーゼをコードする遺伝子断片を、コリネ型細菌で機能す
るベクター、好ましくはマルチコピー型ベクターと連結
して組換えDNAを作製し、これをL−グルタミン酸生
産能を有するコリネ型細菌宿主に導入して形質転換すれ
ばよい。形質転換株の細胞内のピルビン酸カルボキシラ
ーゼをコードする遺伝子(以下、「pyc遺伝子」と略す
る)のコピー数が上昇する結果、ピルビン酸カルボキシ
ラーゼ活性が増強される。
【0016】pyc遺伝子は、コリネ型細菌の遺伝子を用
いることも、エシェリヒア・コリ等の他の生物由来の遺
伝子を用いることも可能である。コリネ型細菌のpyc遺
伝子の塩基配列は報告されている(Peters-Wendisch,
P. G. et al., Microbiology,144, 915-927 (1998))こ
とから、その塩基配列に基づいてプライマーを合成し、
ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム等の微生物
の染色体DNAを鋳型とするPCR法(polymerase cha
in reaction; White,T.J. et al., Trends Genet., 5,
185 (1989)参照)により、pyc遺伝子を取得することが
可能である。このようなプライマーとして、配列表配列
番号1、2に示す塩基配列を有するプライマーが挙げら
れる。
いることも、エシェリヒア・コリ等の他の生物由来の遺
伝子を用いることも可能である。コリネ型細菌のpyc遺
伝子の塩基配列は報告されている(Peters-Wendisch,
P. G. et al., Microbiology,144, 915-927 (1998))こ
とから、その塩基配列に基づいてプライマーを合成し、
ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム等の微生物
の染色体DNAを鋳型とするPCR法(polymerase cha
in reaction; White,T.J. et al., Trends Genet., 5,
185 (1989)参照)により、pyc遺伝子を取得することが
可能である。このようなプライマーとして、配列表配列
番号1、2に示す塩基配列を有するプライマーが挙げら
れる。
【0017】pyc遺伝子のクローニングに使用されるプ
ラスミドとしては、エシェリア属細菌等の微生物におい
て複製可能なものであればよく、具体的には、pBR322、
pTWV228、pMW119、pUC19等が挙げられる。
ラスミドとしては、エシェリア属細菌等の微生物におい
て複製可能なものであればよく、具体的には、pBR322、
pTWV228、pMW119、pUC19等が挙げられる。
【0018】コリネ型細菌で機能するベクターとは、例
えばコリネ型細菌で自律複製出来るプラスミドである。
具体的に例示すれば、以下のものが挙げられる。 pAM330 特開昭58−67699号公報参照 pHM1519 特開昭58−77895号公報参照 pAJ655 特開昭58−192900号公報参照 pAJ611 同 上 pAJ1844 同 上 pCG1 特開昭57−134500号公報参照 pCG2 特開昭58−35197号公報参照 pCG4 特開昭57−183799号公報参照 pCG11 同 上 pHK4 特開平5−7491号公報参照
えばコリネ型細菌で自律複製出来るプラスミドである。
具体的に例示すれば、以下のものが挙げられる。 pAM330 特開昭58−67699号公報参照 pHM1519 特開昭58−77895号公報参照 pAJ655 特開昭58−192900号公報参照 pAJ611 同 上 pAJ1844 同 上 pCG1 特開昭57−134500号公報参照 pCG2 特開昭58−35197号公報参照 pCG4 特開昭57−183799号公報参照 pCG11 同 上 pHK4 特開平5−7491号公報参照
【0019】ピルビン酸カルボキシラーゼをコードする
pyc遺伝子とコリネ型細菌で機能するベクターを連結し
て組換えDNAを調製するには、pyc遺伝子の末端に合
うような制限酵素でベクターを切断する。連結は、T4
DNAリガーゼ等のリガーゼを用いて行うのが普通であ
る。
pyc遺伝子とコリネ型細菌で機能するベクターを連結し
て組換えDNAを調製するには、pyc遺伝子の末端に合
うような制限酵素でベクターを切断する。連結は、T4
DNAリガーゼ等のリガーゼを用いて行うのが普通であ
る。
【0020】上記のように調製した組換えDNAをコリ
ネ型細菌に導入するには、これまでに報告されている形
質転換法に従って行えばよい。例えば、エシェリヒア・
コリK−12について報告されているような、受容菌細
胞を塩化カルシウムで処理してDNAの透過性を増す方
法(Mandel,M.and Higa,A.,J. Mol. Biol., 53, 159 (1
970))があり、バチルス・ズブチリスについて報告され
ているような、増殖段階の細胞からコンピテントセルを
調製してDNAを導入する方法( Duncan,C.H.,Wilson,
G.A.and Young,F.E., Gene, 1, 153 (1977))がある。
あるいは、バチルス・ズブチリス、放線菌類及び酵母に
ついて知られているような、DNA受容菌の細胞を、組
換えDNAを容易に取り込むプロトプラストまたはスフ
ェロプラストの状態にして組換えDNAをDNA受容菌
に導入する方法( Chang,S.andChoen,S.N.,Molec. Gen.
Genet., 168, 111 (1979);Bibb,M.J.,Ward,J.M.and Ho
pwood,O.A.,Nature, 274, 398 (1978);Hinnen,A.,Hick
s,J.B.and Fink,G.R.,Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 75
1929 (1978))も応用できる。本発明の実施例で用いた
形質転換の方法は、電気パルス法(特開平2-207791号公
報参照)である。
ネ型細菌に導入するには、これまでに報告されている形
質転換法に従って行えばよい。例えば、エシェリヒア・
コリK−12について報告されているような、受容菌細
胞を塩化カルシウムで処理してDNAの透過性を増す方
法(Mandel,M.and Higa,A.,J. Mol. Biol., 53, 159 (1
970))があり、バチルス・ズブチリスについて報告され
ているような、増殖段階の細胞からコンピテントセルを
調製してDNAを導入する方法( Duncan,C.H.,Wilson,
G.A.and Young,F.E., Gene, 1, 153 (1977))がある。
あるいは、バチルス・ズブチリス、放線菌類及び酵母に
ついて知られているような、DNA受容菌の細胞を、組
換えDNAを容易に取り込むプロトプラストまたはスフ
ェロプラストの状態にして組換えDNAをDNA受容菌
に導入する方法( Chang,S.andChoen,S.N.,Molec. Gen.
Genet., 168, 111 (1979);Bibb,M.J.,Ward,J.M.and Ho
pwood,O.A.,Nature, 274, 398 (1978);Hinnen,A.,Hick
s,J.B.and Fink,G.R.,Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 75
1929 (1978))も応用できる。本発明の実施例で用いた
形質転換の方法は、電気パルス法(特開平2-207791号公
報参照)である。
【0021】ピルビン酸カルボキシラーゼ活性の増強
は、pyc遺伝子を上記宿主の染色体DNA上に多コピー
存在させることによっても達成できる。コリネ型細菌の
染色体DNA上にpyc遺伝子を多コピーで導入するに
は、染色体DNA上に多コピー存在する配列を標的に利
用して相同組換えにより行う。染色体DNA上に多コピ
ー存在する配列としては、レペッティブDNA、転移因
子の端部に存在するインバーティッド・リピートが利用
できる。あるいは、特開平2−109985号公報に開
示されているように、pyc遺伝子をトランスポゾンに搭
載してこれを転移させて染色体DNA上に多コピー導入
することも可能である。いずれの方法によっても形質転
換株内のpyc遺伝子のコピー数が上昇する結果、ピルビ
ン酸カルボキシラーゼ活性が増強される。
は、pyc遺伝子を上記宿主の染色体DNA上に多コピー
存在させることによっても達成できる。コリネ型細菌の
染色体DNA上にpyc遺伝子を多コピーで導入するに
は、染色体DNA上に多コピー存在する配列を標的に利
用して相同組換えにより行う。染色体DNA上に多コピ
ー存在する配列としては、レペッティブDNA、転移因
子の端部に存在するインバーティッド・リピートが利用
できる。あるいは、特開平2−109985号公報に開
示されているように、pyc遺伝子をトランスポゾンに搭
載してこれを転移させて染色体DNA上に多コピー導入
することも可能である。いずれの方法によっても形質転
換株内のpyc遺伝子のコピー数が上昇する結果、ピルビ
ン酸カルボキシラーゼ活性が増強される。
【0022】ピルビン酸カルボキシラーゼ活性の増強
は、上記の遺伝子増幅による以外に、pyc遺伝子のプロ
モーター等の発現調節配列を強力なものに置換すること
によっても達成される(特開平1-215280号公報参照)。
たとえば、lacプロモーター、trpプロモーター、trcプ
ロモーター、tacプロモーター、ラムダファージのPRプ
ロモーター、PLプロモーター等が強力なプロモーターと
して知られている。これらのプロモーターへの置換によ
り、pyc遺伝子の発現が強化されることによってピルビ
ン酸カルボキシラーゼ活性が増強される。発現調節配列
の増強は、pyc遺伝子のコピー数を高めることと組み合
わせてもよい。
は、上記の遺伝子増幅による以外に、pyc遺伝子のプロ
モーター等の発現調節配列を強力なものに置換すること
によっても達成される(特開平1-215280号公報参照)。
たとえば、lacプロモーター、trpプロモーター、trcプ
ロモーター、tacプロモーター、ラムダファージのPRプ
ロモーター、PLプロモーター等が強力なプロモーターと
して知られている。これらのプロモーターへの置換によ
り、pyc遺伝子の発現が強化されることによってピルビ
ン酸カルボキシラーゼ活性が増強される。発現調節配列
の増強は、pyc遺伝子のコピー数を高めることと組み合
わせてもよい。
【0023】本発明に用いるコリネ型細菌は、ピルビン
酸カルボキシラーゼの増強による効果を損なわない限
り、ピルビン酸カルボキシラーゼ活性に加えて、他のL
−グルタミン酸生合成を触媒する酵素の活性が増強され
ていてもよい。このようなL−グルタミン酸生合成を触
媒する酵素としては、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ、
グルタミンシンターゼ、グルタミン酸シンターゼ、イソ
クエン酸デヒドロゲナーゼ、アコニット酸ヒドラター
ゼ、クエン酸シンターゼ、ホスホエノールピルビン酸カ
ルボキシラーゼ、エノラーゼ、ホスホグリセロムター
ゼ、ホスホグリセリン酸キナーゼ、グリセルアルデヒド
−3−リン酸デヒドロゲナーゼ、トリオースリン酸イソ
メラーゼ、フルトースビスリン酸アルドラーゼ、ホスホ
フルクトキナーゼ、グルコースリン酸イソメラーゼ等が
ある。
酸カルボキシラーゼの増強による効果を損なわない限
り、ピルビン酸カルボキシラーゼ活性に加えて、他のL
−グルタミン酸生合成を触媒する酵素の活性が増強され
ていてもよい。このようなL−グルタミン酸生合成を触
媒する酵素としては、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ、
グルタミンシンターゼ、グルタミン酸シンターゼ、イソ
クエン酸デヒドロゲナーゼ、アコニット酸ヒドラター
ゼ、クエン酸シンターゼ、ホスホエノールピルビン酸カ
ルボキシラーゼ、エノラーゼ、ホスホグリセロムター
ゼ、ホスホグリセリン酸キナーゼ、グリセルアルデヒド
−3−リン酸デヒドロゲナーゼ、トリオースリン酸イソ
メラーゼ、フルトースビスリン酸アルドラーゼ、ホスホ
フルクトキナーゼ、グルコースリン酸イソメラーゼ等が
ある。
【0024】また、本発明に用いるコリネ型細菌は、ピ
ルビン酸カルボキシラーゼの増強による効果を損なわな
い限り、L−グルタミン酸の生合成経路から分岐してL
−グルタミン酸以外の化合物を生成する反応を触媒する
酵素の活性が低下あるいは欠損させてもよい。このよう
な酵素としては、α−ケトグルタル酸デヒドロゲナー
ゼ、イソクエン酸リアーゼ、リン酸アセチルトランスフ
ェラーゼ、酢酸キナーゼ、アセトヒドロキシ酸シンター
ゼ、アセト乳酸シンターゼ、ギ酸アセチルトランスフェ
ラーゼ、乳酸デヒドロゲナーゼ、L−グルタミン酸デカ
ルボキシラーゼ、1−ピロリンデヒドロゲナーゼ等が挙
げられる。
ルビン酸カルボキシラーゼの増強による効果を損なわな
い限り、L−グルタミン酸の生合成経路から分岐してL
−グルタミン酸以外の化合物を生成する反応を触媒する
酵素の活性が低下あるいは欠損させてもよい。このよう
な酵素としては、α−ケトグルタル酸デヒドロゲナー
ゼ、イソクエン酸リアーゼ、リン酸アセチルトランスフ
ェラーゼ、酢酸キナーゼ、アセトヒドロキシ酸シンター
ゼ、アセト乳酸シンターゼ、ギ酸アセチルトランスフェ
ラーゼ、乳酸デヒドロゲナーゼ、L−グルタミン酸デカ
ルボキシラーゼ、1−ピロリンデヒドロゲナーゼ等が挙
げられる。
【0025】さらに、L−グルタミン酸生産能を有する
コリネ型細菌に、界面活性剤等のビオチン作用抑制物質
に対する温度感受性変異を付与することにより、過剰量
のビオチンを含有する培地中にてビオチン作用抑制物質
の非存在下でL−グルタミン酸を生産させることができ
る(WO96/06180号参照)。このようなコリネ型細菌とし
ては、WO96/06180号に記載されているブレビバクテリウ
ム・ラクトファーメンタムAJ13029が挙げられる。AJ130
29株は、1994年9月2日付けで通商産業省工業技術院生
命工学工業技術研究所に、受託番号FERM P-14501として
寄託され、1995年8月1日にブダペスト条約に基づ
く国際寄託に移管され、受託番号FERM BP-5189が付与さ
れている。
コリネ型細菌に、界面活性剤等のビオチン作用抑制物質
に対する温度感受性変異を付与することにより、過剰量
のビオチンを含有する培地中にてビオチン作用抑制物質
の非存在下でL−グルタミン酸を生産させることができ
る(WO96/06180号参照)。このようなコリネ型細菌とし
ては、WO96/06180号に記載されているブレビバクテリウ
ム・ラクトファーメンタムAJ13029が挙げられる。AJ130
29株は、1994年9月2日付けで通商産業省工業技術院生
命工学工業技術研究所に、受託番号FERM P-14501として
寄託され、1995年8月1日にブダペスト条約に基づ
く国際寄託に移管され、受託番号FERM BP-5189が付与さ
れている。
【0026】染色体DNAの調製、染色体DNAライブ
ラリーの作製、ハイブリダイゼーション、PCR、プラ
スミドDNAの調製、DNAの切断及び連結、形質転
換、プライマーとして用いるオリゴヌクレオチドの設定
等の方法は、当業者によく知られている通常の方法を採
用することができる。これらの方法は、Sambrook, J.,F
ritsch, E. F., and Maniatis, T., "Molecular Clonin
g A Laboratory Manual, Second Edition", Cold Sprin
g Harbor Laboratory Press, (1989)等に記載されてい
る。
ラリーの作製、ハイブリダイゼーション、PCR、プラ
スミドDNAの調製、DNAの切断及び連結、形質転
換、プライマーとして用いるオリゴヌクレオチドの設定
等の方法は、当業者によく知られている通常の方法を採
用することができる。これらの方法は、Sambrook, J.,F
ritsch, E. F., and Maniatis, T., "Molecular Clonin
g A Laboratory Manual, Second Edition", Cold Sprin
g Harbor Laboratory Press, (1989)等に記載されてい
る。
【0027】上記のようにして細胞内のピルビン酸カル
ボキシラーゼ活性が増強されたコリネ型細菌を培地に培
養し、該培養物中にL−グルタミン酸を生成蓄積せし
め、該培養物からL−グルタミン酸を採取することによ
り、L−グルタミン酸を効率よく製造することができ
る。
ボキシラーゼ活性が増強されたコリネ型細菌を培地に培
養し、該培養物中にL−グルタミン酸を生成蓄積せし
め、該培養物からL−グルタミン酸を採取することによ
り、L−グルタミン酸を効率よく製造することができ
る。
【0028】培養に用いる培地は特に制限されず、炭素
源、窒素源、無機イオン及び必要に応じその他の有機微
量栄養素を含有する通常の培地を用いることができる。
源、窒素源、無機イオン及び必要に応じその他の有機微
量栄養素を含有する通常の培地を用いることができる。
【0029】炭素源としては、グルコース、ラクトー
ス、ガラクトース、フラクトースや澱粉加水分解物など
の糖類、エタノールやイノシトールなどのアルコール
類、酢酸、フマール酸、クエン酸、コハク酸等の有機酸
類を用いることができる。尚、炭素源として、上記糖
類、好ましくはグルコースとともにエタノールを併用す
ると、L−グルタミン酸生産量が向上する。炭素源中に
占めるエタノールの量としては、好ましくは5%以上、
より好ましくは10〜75%、特に好ましくは20〜3
0%である。
ス、ガラクトース、フラクトースや澱粉加水分解物など
の糖類、エタノールやイノシトールなどのアルコール
類、酢酸、フマール酸、クエン酸、コハク酸等の有機酸
類を用いることができる。尚、炭素源として、上記糖
類、好ましくはグルコースとともにエタノールを併用す
ると、L−グルタミン酸生産量が向上する。炭素源中に
占めるエタノールの量としては、好ましくは5%以上、
より好ましくは10〜75%、特に好ましくは20〜3
0%である。
【0030】窒素源としては、硫酸アンモニウム、塩化
アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機アンモニウ
ム塩、大豆加水分解物などの有機窒素、アンモニアガ
ス、アンモニア水等を用いることができる。
アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機アンモニウ
ム塩、大豆加水分解物などの有機窒素、アンモニアガ
ス、アンモニア水等を用いることができる。
【0031】無機イオンとしては、リン酸カリウム、硫
酸マグネシウム、鉄イオン、マンガンイオン等が少量添
加される。有機微量栄養素としては、ビタミンB1など
の要求物質または酵母エキス等を必要に応じ適量含有さ
せることが望ましい。
酸マグネシウム、鉄イオン、マンガンイオン等が少量添
加される。有機微量栄養素としては、ビタミンB1など
の要求物質または酵母エキス等を必要に応じ適量含有さ
せることが望ましい。
【0032】培養は好気的条件下で16〜72時間実施
するのがよく、培養温度は20℃〜45℃に、培養中p
Hは5〜8.5に制御する。尚、pH調整には無機ある
いは有機の酸性あるいはアルカリ性物質、更にアンモニ
アガス等を使用することができる。
するのがよく、培養温度は20℃〜45℃に、培養中p
Hは5〜8.5に制御する。尚、pH調整には無機ある
いは有機の酸性あるいはアルカリ性物質、更にアンモニ
アガス等を使用することができる。
【0033】培養物からのL−グルタミン酸の採取は通
常イオン交換樹脂法、沈澱法その他の公知の方法を組み
合わせることにより実施できる。
常イオン交換樹脂法、沈澱法その他の公知の方法を組み
合わせることにより実施できる。
【0034】
【実施例】以下、本発明を実施例によりさらに具体的に
説明する。
説明する。
【実施例1】<1>ピルビン酸カルボキシラーゼ活性が
増強されたブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム
の創製 ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタムATCC13869
のpyc遺伝子をPCR法(Polymerase Chain Reaction; Whi
te,T.J. et al., Trends Genet. (1990) 224, 317-324
参照)により増幅した。公知のコリネバクテリウム・グ
ルタミカム由来pyc遺伝子の塩基配列(Peters-Wendisc
h, P. G. et al., Microbiology, 144, 915-927 (199
8))に基づいて配列番号1及び2に示す塩基配列を有す
るオリゴヌクレオチドのプライマーを合成し、ブレビバ
クテリウム・ラクトファーメンタムATCC13869染色体DNA
を鋳型とし、PCRを行った。PCRは、宝酒造(株)製DN
AサーマルサイクラーMP型を用い、ExTaqDNAポリメ
ラーゼ(宝酒造(株)製)を用いて、94℃×30秒、55℃
×1秒、72℃×2.5分を25サイクルの条件で行った。
増強されたブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム
の創製 ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタムATCC13869
のpyc遺伝子をPCR法(Polymerase Chain Reaction; Whi
te,T.J. et al., Trends Genet. (1990) 224, 317-324
参照)により増幅した。公知のコリネバクテリウム・グ
ルタミカム由来pyc遺伝子の塩基配列(Peters-Wendisc
h, P. G. et al., Microbiology, 144, 915-927 (199
8))に基づいて配列番号1及び2に示す塩基配列を有す
るオリゴヌクレオチドのプライマーを合成し、ブレビバ
クテリウム・ラクトファーメンタムATCC13869染色体DNA
を鋳型とし、PCRを行った。PCRは、宝酒造(株)製DN
AサーマルサイクラーMP型を用い、ExTaqDNAポリメ
ラーゼ(宝酒造(株)製)を用いて、94℃×30秒、55℃
×1秒、72℃×2.5分を25サイクルの条件で行った。
【0035】次に、PCRで増幅した遺伝子断片(3622b
p)をアガロース電気泳動の後、ゲルから切り出し常法
により精製し、stratagene社のpCR-Script Ampキットを
使用して供給者に指定された方法にて、プラスミドpPCR
-Script SK(+)のSrfI部位に挿入し、得られた組換えプ
ラスミドでキットに付属している宿主を形質転換し、プ
ラスミドpPYC6を得た(図1)。
p)をアガロース電気泳動の後、ゲルから切り出し常法
により精製し、stratagene社のpCR-Script Ampキットを
使用して供給者に指定された方法にて、プラスミドpPCR
-Script SK(+)のSrfI部位に挿入し、得られた組換えプ
ラスミドでキットに付属している宿主を形質転換し、プ
ラスミドpPYC6を得た(図1)。
【0036】クローニングされた配列が目的の遺伝子で
あることを、サンガー等の方法(F.Sanger et al ;Pro
c.Natl.Acad.Sci.74,5463(1977)などがある)によりD
NA塩基配列を調べることによって確認した。
あることを、サンガー等の方法(F.Sanger et al ;Pro
c.Natl.Acad.Sci.74,5463(1977)などがある)によりD
NA塩基配列を調べることによって確認した。
【0037】上記のようにして得られたpyc遺伝子をコ
リネ型細菌に導入するためのベクターには、新規に構築
したコリネ型細菌用クローニングベクターpVC7を用い
た。pVC7は、以下のようにして、エシェリヒア・コリ用
ベクターであるpHSG399(クロラムフェニコール耐性;Ta
keshita, S. et al., Gene, 61,63-74 (1987)参照)に
ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタムのクリプテ
ィックプラスミドであるpAM330を結合することによって
構築した(図1)。pAM330はブレビバクテリウム・ラク
トファーメンタムATCC13869より調製した。pHSG399を一
箇所切断酵素であるBsaAI(ニューイングランドバイオ
ラボズ社製)にて切断したのち、HindIII(宝酒造
(株)製)にて切断しT4DNAポリメラーゼにて平滑
末端化したpAM330と接続した。pHSG399に対するpAM330
の挿入方向により、生成した2種類のプラスミドをpVC
6、pVC7と命名した。2種類のプラスミドをHaeII(宝酒
造(株)製)で切断したとき、1.7kbと5.0kbの断片を生
じる方がpVC6であり、2.8kbと3.9KBの断片を生じる方が
pVC7である。pVC6、pVC7はエッシェリヒア・コリ及びブ
レビバクテリウム・ラクトファーメンタムの細胞内で自
己複製可能であり、かつ、pHSG399由来のマルチクロー
ニングサイトとlacZ'を保持している。
リネ型細菌に導入するためのベクターには、新規に構築
したコリネ型細菌用クローニングベクターpVC7を用い
た。pVC7は、以下のようにして、エシェリヒア・コリ用
ベクターであるpHSG399(クロラムフェニコール耐性;Ta
keshita, S. et al., Gene, 61,63-74 (1987)参照)に
ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタムのクリプテ
ィックプラスミドであるpAM330を結合することによって
構築した(図1)。pAM330はブレビバクテリウム・ラク
トファーメンタムATCC13869より調製した。pHSG399を一
箇所切断酵素であるBsaAI(ニューイングランドバイオ
ラボズ社製)にて切断したのち、HindIII(宝酒造
(株)製)にて切断しT4DNAポリメラーゼにて平滑
末端化したpAM330と接続した。pHSG399に対するpAM330
の挿入方向により、生成した2種類のプラスミドをpVC
6、pVC7と命名した。2種類のプラスミドをHaeII(宝酒
造(株)製)で切断したとき、1.7kbと5.0kbの断片を生
じる方がpVC6であり、2.8kbと3.9KBの断片を生じる方が
pVC7である。pVC6、pVC7はエッシェリヒア・コリ及びブ
レビバクテリウム・ラクトファーメンタムの細胞内で自
己複製可能であり、かつ、pHSG399由来のマルチクロー
ニングサイトとlacZ'を保持している。
【0038】pyc遺伝子が組み込まれたプラスミドpPYC6
をKpnI(宝酒造(株)製)とNspI(宝酒造(株)製)で
消化してpyc遺伝子断片を切り出し、平滑化を行った。
平滑化はDNA Blunting kit(宝酒造(株)製)を使用し
た。平滑化されたDNA断片をpVC7のSmaI部位へ導入
し、pBPYC6を構築した(図1)。その後、ブレビバクテ
リウム・ラクトファーメンタムATCC13869をpBPYC6で形
質転換した。また、コントロールとして、ブレビバクテ
リウム・ラクトファーメンタムATCC13869をpVC7で形質
転換した。形質転換は、電気パルス法(特開平2−20
7791号公報参照)により行った。
をKpnI(宝酒造(株)製)とNspI(宝酒造(株)製)で
消化してpyc遺伝子断片を切り出し、平滑化を行った。
平滑化はDNA Blunting kit(宝酒造(株)製)を使用し
た。平滑化されたDNA断片をpVC7のSmaI部位へ導入
し、pBPYC6を構築した(図1)。その後、ブレビバクテ
リウム・ラクトファーメンタムATCC13869をpBPYC6で形
質転換した。また、コントロールとして、ブレビバクテ
リウム・ラクトファーメンタムATCC13869をpVC7で形質
転換した。形質転換は、電気パルス法(特開平2−20
7791号公報参照)により行った。
【0039】<2>L−グルタミン酸生産性の評価 得られたブレビバクテリウム・ラクトファーメンタムAT
CC13869/pBPYC6とブレビバクテリウム・ラクトファーメ
ンタムATCC13869/pVC7について、L−グルタミン酸の生
産性を調べた。使用した培地の組成は、グルコース 1.5
g/dl、リン酸2水素1カリウム 0.1g/dl、硫酸マグネシ
ウム7水和物 0.1g/dl、硫酸鉄7水和物0.001g/dl、硫
酸マンガン4〜5水和物 0.001g/dl、ビオチン 300μg/
l、大豆加水分解物 48mg/dl(総窒素として)、硫酸アン
モニウム 2.0g/dl、消泡剤(GD-113)0.01ml/dl、エタ
ノール 0.3g/dl、ポリオキシエチレンソルビタンモノパ
ルミテート 0.2g/dl、炭酸カルシウム 5.0g/dl、クロラ
ムフェニコール 5μg/mlであった。培養は坂口フラスコ
を用いて行った。
CC13869/pBPYC6とブレビバクテリウム・ラクトファーメ
ンタムATCC13869/pVC7について、L−グルタミン酸の生
産性を調べた。使用した培地の組成は、グルコース 1.5
g/dl、リン酸2水素1カリウム 0.1g/dl、硫酸マグネシ
ウム7水和物 0.1g/dl、硫酸鉄7水和物0.001g/dl、硫
酸マンガン4〜5水和物 0.001g/dl、ビオチン 300μg/
l、大豆加水分解物 48mg/dl(総窒素として)、硫酸アン
モニウム 2.0g/dl、消泡剤(GD-113)0.01ml/dl、エタ
ノール 0.3g/dl、ポリオキシエチレンソルビタンモノパ
ルミテート 0.2g/dl、炭酸カルシウム 5.0g/dl、クロラ
ムフェニコール 5μg/mlであった。培養は坂口フラスコ
を用いて行った。
【0040】前培養は、上記の培地のうちポリオキシエ
チレンソルビタンモノパルミテートを除いた培地で、3
1.5℃、7時間行った。また、主培養は、31.5℃で16
時間行った。培養評価の結果を表1に示す。尚、初発培
地のアミノ酸組成は豆濃含有量から算出した。
チレンソルビタンモノパルミテートを除いた培地で、3
1.5℃、7時間行った。また、主培養は、31.5℃で16
時間行った。培養評価の結果を表1に示す。尚、初発培
地のアミノ酸組成は豆濃含有量から算出した。
【0041】pyc遺伝子を増幅した菌株では、コントロ
ールと比較してグルタミン酸の蓄積が3.8%向上し、対糖
収率も2.1%向上した。
ールと比較してグルタミン酸の蓄積が3.8%向上し、対糖
収率も2.1%向上した。
【0042】
【表1】 表1 ──────────────────────────────── ク゛ルタミン酸 収率 アスハ゜ラキ゛ン酸 アラニン 培養液 [mg/dl] [%] [mg/dl] [mg/dl] ──────────────────────────────── 初発培地 60 − 36.0 18.5 ──────────────────────────────── ATCC13869/pVC7 1012 52.9 5.16 4.68 ──────────────────────────────── ATCC13869/pBPYC6 1050 55.0 10.31 4.19 ────────────────────────────────
【0043】
【実施例2】グルコースとエタノールの量を表2に示す
比率(合計2g/dl)で加えた以外は実施例1<2>と同
様にしてブレビバクテリウム・ラクトファーメンタムAT
CC13869/pBPYC6とブレビバクテリウム・ラクトファーメ
ンタムATCC13869/pVC7を培養した。培養後、培地中に蓄
積したL−グルタミン酸の量を測定した。結果を表2に
示す。
比率(合計2g/dl)で加えた以外は実施例1<2>と同
様にしてブレビバクテリウム・ラクトファーメンタムAT
CC13869/pBPYC6とブレビバクテリウム・ラクトファーメ
ンタムATCC13869/pVC7を培養した。培養後、培地中に蓄
積したL−グルタミン酸の量を測定した。結果を表2に
示す。
【表2】 表2 L−グルタミン酸収率 ───────────────────────────── 炭素源に占めるエタノールの比率 培養液 ─────────────────── 5% 10% 25% 75% 100% ───────────────────────────── ATCC13869/pVC7 51.8% 54.3% 55.5% 48.0% 45.1% ───────────────────────────── ATCC13869/pBPYC6 52.0% 59.3% 72.5% 59.3% 54.1% ─────────────────────────────
【0044】
【発明の効果】本発明により、コリネ型細菌を用いた効
率のよいL−グルタミン酸の製造法が提供される。ま
た、本発明は、コリネ型細菌のL−グルタミン酸生産菌
の育種に利用することができる。
率のよいL−グルタミン酸の製造法が提供される。ま
た、本発明は、コリネ型細菌のL−グルタミン酸生産菌
の育種に利用することができる。
【0045】
【配列表】 SEQUENCE LISTING <110> 味の素株式会社(Ajinomoto Co., Inc.) <120> L−グルタミン酸の製造法(Method for producing L-glutamic acid) <130> P-6030 <141> 1998-01-13 <160> 2 <170> PatentIn Ver. 2.0
【0046】 <210> 1 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:primer <400> 1 tggggcgggg ttagatcctg gggg 24
【0047】 <210> 2 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence:primer <400> 2 ctttttacag aaaggtttag gaaa 24
【図1】 コリネ型細菌用クローニングベクターpVC7、
及び同プラスミドにピルビン酸デヒドロゲナーゼ遺伝子
(pyc)が組み込まれたプラスミドpPYC6の構築を示す
図。
及び同プラスミドにピルビン酸デヒドロゲナーゼ遺伝子
(pyc)が組み込まれたプラスミドpPYC6の構築を示す
図。
─────────────────────────────────────────────────────
【手続補正書】
【提出日】平成12年1月11日(2000.1.1
1)
1)
【手続補正1】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】0011
【補正方法】変更
【補正内容】
【0011】本発明はさらに、前記方法において、前記
ピルビン酸カルボキシラーゼをコードする遺伝子がコリ
ネ型細菌由来であることを特徴とする方法を提供する。
本発明はまた、前記方法において、前記培地は炭素源と
して糖類及びエタノールを含むことを特徴とする方法を
提供する。
ピルビン酸カルボキシラーゼをコードする遺伝子がコリ
ネ型細菌由来であることを特徴とする方法を提供する。
本発明はまた、前記方法において、前記培地は炭素源と
して糖類及びエタノールを含むことを特徴とする方法を
提供する。
【手続補正2】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】0043
【補正方法】変更
【補正内容】
【0043】
【実施例2】グルコースとエタノールの量を表2に示す
比率(合計2g/dl)で加えた以外は実施例1<2>と同
様にしてブレビバクテリウム・ラクトファーメンタムAT
CC13869/pBPYC6とブレビバクテリウム・ラクトファーメ
ンタムATCC13869/pVC7を培養した。培養後、培地中に蓄
積したL−グルタミン酸の量を測定した。結果を表2に
示す。エタノールを炭素源として用いることにより、L
−グルタミン酸の蓄積が増加した。細胞中のピルビン酸
カルボキシラーゼ活性を増強させることによるL−グル
タミン酸生産への効果は、炭素源中のエタノールの比率
が5%以上、好ましくは10から75%、より好ましく
は20から30%のときに大きくなる。
比率(合計2g/dl)で加えた以外は実施例1<2>と同
様にしてブレビバクテリウム・ラクトファーメンタムAT
CC13869/pBPYC6とブレビバクテリウム・ラクトファーメ
ンタムATCC13869/pVC7を培養した。培養後、培地中に蓄
積したL−グルタミン酸の量を測定した。結果を表2に
示す。エタノールを炭素源として用いることにより、L
−グルタミン酸の蓄積が増加した。細胞中のピルビン酸
カルボキシラーゼ活性を増強させることによるL−グル
タミン酸生産への効果は、炭素源中のエタノールの比率
が5%以上、好ましくは10から75%、より好ましく
は20から30%のときに大きくなる。
【表2】 表2 L−グルタミン酸収率 ───────────────────────────── 炭素源に占めるエタノールの比率 培養液 ─────────────────── 5% 10% 25% 75% 100% ───────────────────────────── ATCC13869/pVC7 51.8% 54.3% 55.5% 48.0% 45.1% ───────────────────────────── ATCC13869/pBPYC6 52.0% 59.3% 72.5% 59.3% 54.1% ─────────────────────────────
【手続補正3】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】図面の簡単な説明
【補正方法】変更
【補正内容】
【図面の簡単な説明】
【図1】 コリネ型細菌用クローニングベクターpVC7、
及び同プラスミドにピルビン酸カルボキシラーゼ遺伝子
(pyc)が組み込まれたプラスミドpBPYC6の構築を示す
図。
及び同プラスミドにピルビン酸カルボキシラーゼ遺伝子
(pyc)が組み込まれたプラスミドpBPYC6の構築を示す
図。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI テーマコート゛(参考) (C12N 1/21 C12R 1:13) (C12N 15/09 ZNA C12R 1:15) (C12N 15/09 ZNA C12R 1:13) (72)発明者 杉本 雅一 神奈川県川崎市川崎区鈴木町1−1味の素 株式会社発酵技術研究所内 (72)発明者 三輪 治文 神奈川県川崎市川崎区鈴木町1−1味の素 株式会社発酵技術研究所内 Fターム(参考) 4B024 AA01 AA05 AA07 BA07 CA04 DA10 EA04 FA13 HA20 4B064 AE19 CA02 CA19 CA21 CC03 CC24 CD06 CD09 DA01 DA10 DA11 4B065 AA22X AB01 AC14 AC20 BA02 CA17 CA41 CA44 CA47
Claims (4)
- 【請求項1】 細胞中のピルビン酸カルボキシラーゼ活
性が増強され、かつL−グルタミン酸生産能を有するコ
リネ型細菌を培地に培養し、該培養物中にL−グルタミ
ン酸を生成蓄積せしめ、該培養物からL−グルタミン酸
を採取することを特徴とするL−グルタミン酸の製造
法。 - 【請求項2】 前記ピルビン酸カルボキシラーゼ活性
が、前記細菌細胞内のピルビン酸カルボキシラーゼをコ
ードする遺伝子のコピー数を高めること、又は同遺伝子
の発現調節配列の機能が強化されることにより増強され
たことを特徴とする請求項1記載の方法。 - 【請求項3】 前記ピルビン酸カルボキシラーゼをコー
ドする遺伝子がコリネ型細菌由来である請求項2記載の
方法。 - 【請求項4】 前記培地は炭素源として糖類及びエタノ
ールを含むことを特徴とする請求項1記載の方法。
Priority Applications (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP11007058A JP2000201692A (ja) | 1999-01-13 | 1999-01-13 | 発酵法によるl―グルタミン酸の製造法 |
| BR0000041-8A BR0000041A (pt) | 1999-01-13 | 2000-01-11 | Processo para produzir ácido l-glutâmico |
| US10/307,320 US6852516B2 (en) | 1999-01-13 | 2002-12-02 | Method for producing L-glutamic acid by fermentation |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP11007058A JP2000201692A (ja) | 1999-01-13 | 1999-01-13 | 発酵法によるl―グルタミン酸の製造法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2000201692A true JP2000201692A (ja) | 2000-07-25 |
Family
ID=11655478
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP11007058A Pending JP2000201692A (ja) | 1999-01-13 | 1999-01-13 | 発酵法によるl―グルタミン酸の製造法 |
Country Status (3)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US6852516B2 (ja) |
| JP (1) | JP2000201692A (ja) |
| BR (1) | BR0000041A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2013069634A1 (ja) | 2011-11-11 | 2013-05-16 | 味の素株式会社 | 発酵法による目的物質の製造法 |
| JP2015156844A (ja) * | 2014-02-25 | 2015-09-03 | 花王株式会社 | 枯草菌変異株及びそれを用いたジピコリン酸の製造方法 |
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|---|---|---|---|---|
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| US7335277B2 (en) * | 2003-09-08 | 2008-02-26 | Hitachi High-Technologies Corporation | Vacuum processing apparatus |
| DE102005048818A1 (de) | 2005-10-10 | 2007-04-12 | Degussa Ag | Mikrobiologische Herstellung von 3-Hydroxypropionsäure |
| CN101490251B (zh) * | 2006-07-19 | 2016-06-29 | 味之素株式会社 | 使用肠杆菌科细菌产生l-氨基酸的方法 |
| DE102010029973A1 (de) | 2010-06-11 | 2011-12-15 | Evonik Degussa Gmbh | Mikrobiologische Herstellung von C4-Körpern aus Saccharose und Kohlendioxid |
| CN105063159B (zh) * | 2015-09-19 | 2021-06-25 | 内蒙古阜丰生物科技有限公司 | 浓缩连续等电提取谷氨酸的新工艺 |
| KR102075160B1 (ko) | 2018-12-13 | 2020-02-10 | 대상 주식회사 | L-글루탐산 생산능이 향상된 변이 균주 및 이를 이용한 l-글루탐산의 제조 방법 |
| KR102269639B1 (ko) | 2020-02-12 | 2021-06-25 | 대상 주식회사 | L-글루탐산 생산능이 향상된 코리네박테리움 글루타미쿰 변이주 및 이를 이용한 l-글루탐산의 생산 방법 |
| CA3217309A1 (en) * | 2021-04-30 | 2022-11-03 | Cj Cheiljedang Corporation | Corynebacterium glutamicum variant having improved l-lysine production ability, and method for producing l-lysine by using same |
| KR102572849B1 (ko) | 2022-07-11 | 2023-08-31 | 대상 주식회사 | L-글루탐산을 생산하는 코리네박테리움 속 변이 미생물 및 이를 이용한 l-글루탐산의 생산 방법 |
| KR102792507B1 (ko) | 2022-07-11 | 2025-04-09 | 대상 주식회사 | L-글루탐산을 생산하는 코리네박테리움 속 변이 미생물 및 이를 이용한 l-글루탐산의 생산 방법 |
| KR102636674B1 (ko) | 2022-07-11 | 2024-02-15 | 대상 주식회사 | L-글루탐산을 생산하는 코리네박테리움 속 변이 미생물 및 이를 이용한 l-글루탐산의 생산 방법 |
| KR102572850B1 (ko) | 2022-07-11 | 2023-08-31 | 대상 주식회사 | L-글루탐산을 생산하는 코리네박테리움 속 변이 미생물 및 이를 이용한 l-글루탐산의 생산 방법 |
| KR102546734B1 (ko) | 2022-10-31 | 2023-06-23 | 대상 주식회사 | L-글루탐산을 생산하는 코리네박테리움 속 변이 미생물 및 이를 이용한 l-글루탐산의 생산 방법 |
| KR102636672B1 (ko) | 2022-10-31 | 2024-02-15 | 대상 주식회사 | L-글루탐산을 생산하는 코리네박테리움 속 변이 미생물 및 이를 이용한 l-글루탐산의 생산 방법 |
| KR102905116B1 (ko) | 2022-10-31 | 2025-12-31 | 대상 주식회사 | L-글루탐산을 생산하는 코리네박테리움 속 변이 미생물 및 이를 이용한 l-글루탐산의 생산 방법 |
| KR102843469B1 (ko) | 2023-04-28 | 2025-08-12 | 대상 주식회사 | L-글루탐산을 생산하는 코리네박테리움 속 미생물 및 이를 이용한 l-글루탐산 생산 방법 |
| WO2024258202A1 (ko) | 2023-06-16 | 2024-12-19 | 대상 주식회사 | 알킬하이드로페록시다아제 ahpd 패밀리 코어 도메인 신규 변이체 및 이를 이용한 l-글루탐산의 생산 방법 |
Family Cites Families (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE59812638D1 (de) | 1997-10-04 | 2005-04-14 | Degussa | Verfahren zur mikrobiellen herstellung von aminosäuren der aspartat- und/oder glutamatfamilie und im verfahren einsetzbare mittel |
-
1999
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