[go: up one dir, main page]

HU212592B - Method for producing antibodies genetechnologically - Google Patents

Method for producing antibodies genetechnologically Download PDF

Info

Publication number
HU212592B
HU212592B HU886680A HU668088A HU212592B HU 212592 B HU212592 B HU 212592B HU 886680 A HU886680 A HU 886680A HU 668088 A HU668088 A HU 668088A HU 212592 B HU212592 B HU 212592B
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
functional
protein
proteins
antibody
hapten
Prior art date
Application number
HU886680A
Other languages
English (en)
Other versions
HUT49169A (en
Inventor
Andreas Plueckthun
Arne Skerra
Original Assignee
Plueckthun
Skerra
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=6343878&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=HU212592(B) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Plueckthun, Skerra filed Critical Plueckthun
Publication of HUT49169A publication Critical patent/HUT49169A/hu
Publication of HU212592B publication Critical patent/HU212592B/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/62DNA sequences coding for fusion proteins
    • C12N15/625DNA sequences coding for fusion proteins containing a sequence coding for a signal sequence
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/62DNA sequences coding for fusion proteins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00Preparation of peptides or proteins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2319/00Fusion polypeptide
    • C07K2319/01Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif
    • C07K2319/02Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif containing a signal sequence
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2319/00Fusion polypeptide
    • C07K2319/01Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif
    • C07K2319/035Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif containing a signal for targeting to the external surface of a cell, e.g. to the outer membrane of Gram negative bacteria, GPI- anchored eukaryote proteins

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Steroid Compounds (AREA)

Description

A találmány tárgya eljárás antitestek géntechnológiai előállítására.
Antitestek élesztőben történő kifejezése ismert (C. R. Wood, M. A. Boss, J. H. Kenten, J. E. Calvert, N. A. Roberts és J. S. Emtage: Natúré, 314, 446, 1985), de a kifejezett fehérjéknek csak nagyon kis része bizonyult hatásosnak. E. coliban antitest fehérjék eddig csak denaturált formában voltak előállfthatók (M. A. Boss, J. H. Kenten, C. R. Wood és J. S. Emtage: Nucleic Acids Rs. 12, 3791, 1984; S. Cabilly, A. D. Riggs, H. Pande, J. E. Shively, W. E. Holmes, M. Rey, L. J. Perry, R. Wetzel és H. L. Heyneker: Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 81, 3273, 1984). Élesztőből vagy más mikroorganizmusokból nyert aktív antitestek vagy antitestfragmensek tisztítása nem ismert. Az eddigi fehérjehajtogatási kísérletek csak csekély százalékos arányban eredményeztek megfelelően hajtogatott rekombináns antitest fehérjét. A kívánt funkciós fehéije nehezen választható el a nem kívánt és nem funkciós fehérjéktől, ami a kötési állandók pontos mérését, a hajtogatott fehérje kitermelését, a spektrális tulajdonságokat lerontja és a terápiában vagy technológiában történő felhasználást megnehezíti. A hajtogatási körülmények optimalizálása ezért különösen nehéz, elsősorban azért, mert nem ismert megfelelő eljárás és mérési módszer a visszahajtogatásra.
Funkcionálisan teljes antitestek vagy antitestek funkcionális kötésterületének kifejezése bakteriális kifejező rendszerekben nem ismert és megvalósításának lehetőségeit negatívan értékelték. (S. L. Morrison: Science, 229, 1202, 1985; M. A. Boss és C. R. Wood: Immunoi. Today 6, 12, 1985).
Egy ilyen rendszer különösen előnyös volna, mivel a géntechnológiai eljárások elsősorban az E. coli vonatkozásában megfelelően ki vannak dolgozva, és a gyors növekedés lehetővé teszi a tömegtermelést, ami gazdaságilag nagyjelentőségű lenne.
A találmány tárgya eljárás funkcióképes antitestek, ezek funkcionális fragmenseinek vagy antitestdoménekből és más fehérjékből képzett fúziós fehérjék Gram-negatív baktériumokban, elsősorban E. coliban történő előállítására.
A találmány szerinti eljárás jellemző vonása, hogy az antites molekula vagy fragmens, vagy az antitest doménből és más fehérjéből álló fúziós fehéije egyes láncainak megfelelő géneket citoplazma-membrán-transzfer szignálszekvenciához kapcsoljuk, a kapott génszerkezetet szabályozható operon-rendszer formájában kapcsoljuk, és egy ismert vektorba beépítve Gram-negatív baktériumban kifejezzük és a funkciós fehérjét a periplazmatikus térből vagy közegből izoláljuk.
A találmány szerinti eljárás előnyös megvalósítási módjait az alábbiakban ismertetjük, illetve az igénypontokban definiáljuk.
A szignálszekvenciával ellátott láncoknak megfelelő gének kapcsolását előnyösen szabályozható operonrendszer kapcsolásával azonos módon végezzük, ami lehetővé teszi a közös szabályozószakasszal történő egyidejű kifejezést. Ily módon az egyes fehérjeláncok közel sztöchiometrikus arányban együtt fejeződnek ki, és a periplazmatikus térbe kerülnek, ahol funkcionális molekulává kapcsolódnak össze. A fehérjéknek a citoplazmából történő elszállítása önmagában ismert módon játszódik le (például 0 006 694 számú európai szabadalmi leírás).
Szabályozőszakaszként bármely megfelelő szabályozható génszabályozó szakasz felhasználható, például lac, tac, trp vagy szintetikus szekvenciák. Különösen előnyösek a megbízhatóan lehasítható szabályozószakaszok.
A fehérjéket a periplazmatikus térből előnyösen úgy izoláljuk, hogy az összegyűjtött sejtekre enyhe ozmotikus nyomást fejtünk ki és a kapott folyékony fázist ultraszűréssel vagy kicsapással, például sókkal, fgy ammónium-szulfáttal végzett kicsapással koncentráljuk.
Az enyhez ozmotikus nyomás hatására a periplazma a periplazmatikus térből kilép, míg a citoplazmatikus membrán intakt marad.
A fehérjekoncentrátumot, célszerűen dialízis után, egy adszorbensre, előnyösen affinitásoszlopra visszük, amely a megfelelő antigént vagy haptént hordozza. Megfelelő elúcióval, előnyösen az antigénnel vagy hapténnel végrehajtott elúcióval az antitestet, illetve a funkcionális antitest fragmenset kapjuk.
Eukarióta sejtekben az antitest az endoplazmatikus retikulum lumenjében - feltehetően diszulfid-izomerázok, prolin-cisz-transz-izomerázok és esetleg további enzimek vagy fehérjék közreműködésével - képződik. Meglepő, hogy baktériumsejtek is képesek a két láncot mintegy azonos sztöchiometriai mennyiségben előállítani, a két lánc előfehérjét a periplazmatikus térbe vagy az ezt körülvevő közegbe szállítani, a szignálszekvenciát pontosan lehasítani, a globuláris és oldható doméneket szabályosan hajtogatni, az intramolekuláris diszulfid kötéseket kialakítani, és a láncot heterodimérré asszociálni, mivel nem volt előre látható, hogy a baktériumsejtek rendelkeznek az ilyen vagy ezekkel egyenértékű enzimekkel. Meglepő továbbá, hogy Gram-negatív baktériumok esetén a bakteriális periplazma ebben a vonatkozásban funkcionálisan ekvivalens az eukarióta endoplazmatikus retikulum lumenjével.
A találmány szerinti eljárás egy sor előnnyel rendelkezik:
Eltekintve nagymennyiségű baktérium könnyű és gyors fermentálásától, közvetlenül funkciós fehérjék képződnek, és így elkerülhető a fúziós fehérjék hasítása, a kívánt fehérje vagy fehérjefragmens izolálása, ezek oxidálása vagy in vitro visszahajtogatása.
A találmány szerinti eljárás során a celluláris proteázok sem okoznak problémákat. Ismert ugyanis, hogy a celluláris proteázok miatt fehérjék baktériumban általában fúziós fehérje, elsősorban oldhatatlan zárványtest formájában exprimálódnak, ami magával hozza a fent említett bonyolult feldolgozási műveleteket. Ezzel szemben, a találmány szerinti eljárás során gyors és egyszerű leválasztással és tisztítással homogén terméket kapunk.
A találmány lehetővé teszi antitestek, funkcionális fragmensek, valamint a természetes antitesttől eltérő aminosavak beépítésével, kiiktatásával és/vagy kicse2
HU 212 592 Β rélésével kialakított, módosított antitestek könnyű előállítását. így például lehetővé válik a cisztein kiiktatása vagy más aminosavra történő kicserélése a nemkívánatos hajlat megszűntetésére. Lehetséges továbbá egér antitestek humán antitesttel történő összeépítése vagy más mutációk kialakítása. A farmakológiai és technológiai felhasználási területek mellett lehetővé válik az antitest szerkezetek és funkciók, valamint az enzimatikus katalízis alapjainak közelebbi kutatása (V. Raso és B. D. Stollar: Biochemistry, 14, 584, 1975; V. Raso és B. D. Stollar: Biochemistry, 14, 591, 1975; A. Tramontano, K. D. Janda és R. A. Lemer: Science, 234,1566, 1986; S. J. Pollack, J. W. Jacobs és P. G. Schultz: Science, 234, 1570, 1986; J. Jacobs, P. G. Schultz, R. Sugasawara és M. Powell: J. Am. Chem. Soc. 109, 2174, 1987).
A találmány lehetővé teszi továbbá vizsgálati rendszereknek közvetlenül az adott funkcionális antitestet előállító bakteriális sejten történő alkalmazását, és így az esetlegesen mutált antitest gyors felismerését.
Az antitest molekula egy vagy több aminosav megváltoztatásával történő módosítása mellett lehetséges az is, hogy az antitest génbe más génszakaszokat ültetünk be, vagy egyes szakaszokat inért génszakaszokra cserélünk ki. Ezáltal funkcionális antitest doménekből és más fehérjékből álló fúziós fehérjék jöhetnek létre, így beépíthetők jelzőenzimek (M. S. Neuberger, G. T. Williams és R. O. Fox: Natúré, 312, 604, 1984), toxinok (G. Möller: Antibody carriers of drugs and toxins in tumor therapy, Immuno. Rév. 62, Munksgaard, Copenhangen, 1982) vagy más osztályba tartozó immunoglobulin szakaszok (M. S. Neuberger, G. T. Williams, Ε. B. Mitchell, S. S. Jouhal, J. G. Flanagan és T. H. Rabbitts: Natúré, 314,268, 1985), illetve más fajhoz tartozó immunoglobulin szakaszok (P. T. Jones, P. H. Dear, J. Foote, M. S. Neuberger és G. Winter·. Natúré, 321,522, 1986).
A találmány szerinti eljárást közelebbről a foszforilkolint megkötő antitest mielóma fehérje McPC603 változtatható doménjának példáján mutathatjuk be. Az egér immunoglobulin A háromdimenziós szerkezete ismert (D. M. Segal, E. A. Padlan, G. H. Cohen, S. Rudikoff, M. Potter és D. R. Davies: Proc. Natl. Acad. Sci. 71, 4298, 1974). A példában a változtatható VL könnyűlánc és VH nehézlánc szintetikus génjét alkalmazzuk. Ezeket a géneket a 37 15 033 számú német szövetségi köztársaságbeli közrebocsátási irat, illetve a 0 290 005 számú európai közrebocsátási irat és a 15 631/88 számú ausztrál közrebocsátási irat (lásd annak 1. és 2. táblázatát) ismerteti. Az ilyen szintetikus gének különösen előnyös kialakítását ismerteti a fenti táblázat, amelyben a teljes kifejező plazmid DNS szekvenciája szerepel, és a két lánc génjeit az aminosavak adják meg. A DNS szekvencia kialakítása során az E. coli által ritkán alkalmazott kodonokat kiiktattuk. Ezenkívül szinguláris restrikciós enzim hasítóhelyeket építettünk be és figyelembe vettük az RNS szekunder szerkezetét is.
A modellként alkalmazott funkcionális antitest fehérjében minden dómén intramolekuláris diszulfid híddal rendelkezik (Cys 23-ból Cys 94-be a VL esetén és Cys 22-ből Cys 98-ba a VH esetén). Nincs azonban láncok közötti diszulfid híd vagy szabad cisztein.
Az alkalmazott pASK 22 kifejezővektort vázlatosan az 1. ábra mutatja.
Ebben a vektorban a VL és VH doméneknek megfelelő szintetikus génekhez egyrészt a külső membrán fehéije A (ompA) bakteriális szignál szekvenciájának megfelelő génfiragmensek, másrészt lúgos foszfatáz + kódoló génfragmens (phoA) kapcsolódik. A két előfehérjének megfelelő gén meseterséges operonszerű rendszerben a lac promotor mögött van elhelyezve, ami biztosítja a két gén egyidejű indukcióját, kifejezését és kiválasztását.
A génkifejezés indulálása után a sejteket begyűjtjük és enyhe ozmotikus nyomásnak tesszük ki. A keletkező folyadékfázist, amely tartalmazza a periplazmatikus fehérjéket, ultraszűréssel koncentráljuk, dializáljuk és közvetlenül egy affinitásoszlopra visszük fel, amely affinitás ligandumként foszforilkolin-származékot (B. Chesebro és H. Metzger: Biochemistry, 11, 766, 1972) tartalmaz. Foszforilkolinnal történő eluálás után homogén Fv ffagmenst kapunk, amely gélelektorforetikusan egységes. Az SDS-poliakrilamid gél eletroforézisből arra lehet következtetni, hogy a tisztított Fv fragmens mindkét lánca 1:1 mólarányban fordul elő és az érett fehérje várt móltömegét mutatja (VH: 13 600 D, VL: 12 400 D). A két szignálszekvencia korrekt lehasításának igazolására mindkét lánc hat N-terminális aminosavját szekvenáljuk. Az eredmény szerint mindkét lánc az érett fehérjének megfelelő N-terminális részt mutatja. A bakteriális szignálpeptidáz tehát mindkét heterológ előfehérjét megfelelően hasította, és nincs olyan rész, amely pontatlan folyamatra vagy N-terminális leépítési reakciókra utalna.
Az McPC603 rekombináns Fv fragmensének affinitáskonstansát egyensúlyi dialízissel mérjük. Ennek során az egér antitestből izolált természetes McPC603 antitest affinitáskonstansának meghatározásakor alkalmazottakkal azonos körülmények között dolgozunk. Az Fy fragmensre 1,21 ± 0,06 x 105 M'1 érték a kísérleti pontosságon belül azonos a természetes antitestnél mért 1,6 ± 0,4 x 105 M_1 értékkel. A Scatchardféle kötési görbe (Ann. N.Y. Acad. Sci. 51, 660, 1949) egyenes és az extrapolálás szerint minden Fv fragmens molekulához közel egy molekula haptén kötődik.
Megállapítható tehát, hogy Fv fragmensenként csak egy kötési hely típus van, és az izolált fehérjékben nem találhatók inaktív alkotórészek.
Meglepő módon azt találtuk tehát, hogy az McPC603 antitest Fv fragmense E. coliban teljes mértékben funkcionál és stabil fehérjeként előállítható. Ezt bizonyítja, hogy a baktériumsejt periplazmájába történő szállítás funkcionálisan ekvivalens az eukarióta sejtek endoplazmatikus retikulumának lumenjébe történő szállítással. Ez az ekvivalencia eddig nem ismert és nem volt várható, mivel az eddig legjobban jellemzett bakteriális fehérje, amely a periplazmában oldható heterodimer fehérjeként jelentkezik, vagyis az E. coli penicillin aciláz, az egyláncú előfehérjéből proteoliti3
HU 212 592 B kus folyamat során a periplazmában képződik (G. Schumacher, D. Sizmann, H. Hang, P. Buckel és A. Böck: Nucleic Acids Rés. 14, 5713, 1986). Ezenkívül utaltunk már arra, hogy jelenlegi ismereteink alapján a baktériumok nem rendelkeznek olyan enzimekkel, vagy fehérjékkel, amelyek eukariótákban részt vesznek a hajtogatásban.
Meglepő volt továbbá, hogy az McPC603 Fv fragmense foszforilkolin vonatkozásában lényegében azonos affinitáskonstanst mutat, mint maga az intakt McPC603 antitest. Ez az eredmény nem volt előre várható, mivel az irodalomban vitatják az Fv fragmens funkcionalitását (J. Sen és S. Beychok: Proteins, 1,256,1986). Kimutatható, hogy a konstans domének módosítása, vagy akár teljes kiiktatása megtartja a funkcionalitást.
Az Fv fragmensek előállítására eddig ismert egyetlen módszerrel, vagyis az antitest proteolízisével szemben a találmány szerinti eljárás során nem kell számolni nemfunkcionális, nem megfelelően hajtogatott, nem megfelelően reasszociált vagy kémiailag módosított fehérjékkel. Az izoláláshoz előnyösen alkalmazott antigén vagy haptén tartalmú adszorbens felhasználható az ismert eljárással előállított Fv fragmens előállítására, mivel az ilyen szennyezőanyagok vagy nem kötődnek meg, vagy nem eluálódnak.
1. példa pASK22 plazmid előállítása
A pASK22 kifejező plazmidot a pUC12 nagy EcoRI-HindlII-fragmensből (C. Yanisch-Perron, J. Vieira és J. Messing: Gene 33, 103, 1985), a pIN III-OmpAl vektorok fragmenséből (Y Hasúi, J. Coleman és M. Inouye: Experimental Manipulation of Gene Expression, M. Inouye, ed. Academic Press, 1983) és pHI61ből (H, Inouye, W. Bames és J. Beckwith: J. Bacteriol. 149, 434, 1982), valamint különböző szintetikus DNS fragmensekből több lépésben önmagában ismert módon (T. Maniatis, E. F. Fritsch és J. Sambrook: Molecular Cloning, Cold Spring Harbor, 1982) állítjuk elő. A kapott pASK22 vektor teljes DNS szekvenciáját a 2. ábra mutatja. A szintetikus DNS fragmensek szekvenciáit a 3. és 4. ábrák mutatják, ahol megjelöltük az egyes hasítási helyeket és a komplementaritást meghatározó CORI-CDRÜI szakaszokat. A nukleotid szekvencia alatt megadjuk az aminosav szekvenciát is, amikor is a nehéz VH lánc változó szakaszát ábrázoló 3. ábrán az egybetűs kódokat, míg a könnyű VL lánc változó szakaszát ábrázoló 4. ábrán a hárombetűs kódokat használjuk.
A ligáló eleggyel kompetens E. coli sejteket transzformálunk, és ampicillin rezisztenciára kiválogatjuk. A kívánt génszerkezetű plazmidot restrikciós analízissel, valamint a kritikus átmenetek szekvenálásával jellemezzük.
2. példa
Fv fragmens előállítása pASK22-vel transzformált W3110E. coli törzsek 100 mg/ml ampicillint tartalmazó LB közegben történő tenyészetét ÓD55() = 0,5 értékig tenyésztjük. A kifejeződést 1 mmól/1 végkoncentrációjú IPTG adagolással indukáljuk. 45 perc elteltével a sejteket centrifugálással 4000 g mellett (10 perc, 4 *C) begyűjtjük. A sejtpelletet TES-pufferben (0,2 mól/1 Tris-HCl, pH = 8,0,0,5 mmól/I EDTA, 0,5 mól/1 szacharóz) az eredeti tenyészetre számolva 10 ml/1 értékben szuszpendáljuk, majd sejtfrakcionálást hajtunk végre. A sejteket az eredeti tenyészetre vonatkoztatott 15 ml/1 TES-puffer, amelyet 1:4 arányban vízzel előzetesen hígítunk és amely 2 mmól/1 foszforilkolint tartalmaz, hozzáadásával enyhe ozmotikus nyomásnak teszünk ki. Jégen 30 percen keresztül inkubáljuk, majd a szuszpenziót 10 percen keresztül 5000 g mellett centrifugáljuk és a felülúszót ismét 15 percen keresztül 48 000 g mellett centrifugáljuk. Az így kapott felülúszót, amely az összes oldható periplazmatikus fehérjét tartalmazza, ultraszűréssel (AMICON YMS membrán) az eredeti tenyészetre vonatkoztatva mintegy 2,5 ml/1 térfogatra bekoncentráljuk és BBS pufferrel (0,2 mól/1 borát/NaOH, pH = 8,0, 0,16 mól/1 nátrium-klorid) szemben dializáljuk. A koncentrált oldatot foszforilkolin-származékot (B. Chesebro és H. Metzger: idézett műve) tartalmazó affinitásoszlopra visszük (1-4 ml oldat 1 ml töltetre számolva), BBS pufferrel mossuk és a tiszta Fv ffagmenst 1 mmól/1 foszforilkolint tartalmazó BBS pufferral eluáljuk.
3. példa
Egyensúlyi dialízis
A membrán mindkét oldalán mintegy 100 mikroliter térfogatú dializáló kamrában az egyik oldalra 50 mikroliter tisztított Fv fragmens BBS pufferben felvett elegyét és a másik oldalra 50 mikroliter foszforil(metil-14C)-kolin (50 mCi/mmól) BBS pufféiban felvett oldatát töltjük. Az OD20S = 6,85 értéknél az Fv fragmens 0,22 mg/ml koncentrációt mutat (R. K. Scopes: Protein Purification-Principles and Practice, Springer-Verlag, New York, 1982, 241. oldal). Az egyensúlyt hagyjuk 22 óra alatt szobahőmérsékleten beállni, majd mindkét oldatból 20 mikroliteres mintát szcintillációs számlálóban (Beckmann LS 1801) mérünk és az adatokat Sctachard (lásd idézett mű) szerint feldolgozzuk. A kapott egyenes meredekségből számítható affinitás konstans Kj, = 1,21 ± 0,06 x 103 M-1.

Claims (4)

1. Eljárás funkcionális fehérjeként funkcionális antitestek, antitestek funkcionális fragmenseinek vagy funkcionális antitest doménekből és más fehéijékböl álló fúziós fehérjék előállítására, azzal jellemezve, hogy a funkcionális antitest vagy az antitest funkcionális fragmensének láncait vagy az antitest doménekből és más fehéijékböl álló fúziós fehérjét kódoló géneket citoplazma membrántranszfer szignálszekvenciával kapcsoljuk, a kapott génszerkezeteket szabályozható operon-rendszer formájában kapcsoljuk, és egy ismert vektorba beépítve Gramnegatív baktériumban kifejezzük, és a funkciós fehérjét a periplazmatikus térből vagy közegből izoláljuk.
2. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy baktériumsejtként E. coli sejtet alkalmazunk.
3. Az 1-2. igénypontok szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a funkcionális fehérjének a periplazmati4
HU 212 592 Β kus térből történő izolálását úgy végezzük, hogy a leválasztott baktériumsejteket szabályozott ozmotikus nyomásnak tesszük ki, majd a keletkező folyadékfázist centrifugálással dúsítjuk és a koncentrátumból a kívánt fehérjét kinyerjük. 5
4. Az 1-3. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a funkciós fehérjét tartalmazó oldatot megfelelő antigént vagy haptént tartalmazó adszorbensre visszük és a kívánt fehérjét az antigént vagy haptént tartalmazó oldattal eluáljuk.
HU886680A 1987-12-31 1988-12-30 Method for producing antibodies genetechnologically HU212592B (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19873744595 DE3744595A1 (de) 1987-12-31 1987-12-31 Verfahren zur gentechnischen herstellung von antikoerpern

Publications (2)

Publication Number Publication Date
HUT49169A HUT49169A (en) 1989-08-28
HU212592B true HU212592B (en) 1996-08-29

Family

ID=6343878

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU886680A HU212592B (en) 1987-12-31 1988-12-30 Method for producing antibodies genetechnologically

Country Status (12)

Country Link
EP (1) EP0324162B1 (hu)
JP (1) JP2771204B2 (hu)
KR (1) KR970007861B1 (hu)
AT (1) ATE102651T1 (hu)
AU (1) AU628310B2 (hu)
DE (2) DE3744595A1 (hu)
DK (1) DK732988A (hu)
ES (1) ES2063022T3 (hu)
HU (1) HU212592B (hu)
IE (1) IE62257B1 (hu)
PT (1) PT89362B (hu)
ZA (1) ZA889711B (hu)

Families Citing this family (28)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4816567A (en) 1983-04-08 1989-03-28 Genentech, Inc. Recombinant immunoglobin preparations
US5618920A (en) * 1985-11-01 1997-04-08 Xoma Corporation Modular assembly of antibody genes, antibodies prepared thereby and use
US5576195A (en) * 1985-11-01 1996-11-19 Xoma Corporation Vectors with pectate lyase signal sequence
US6172197B1 (en) 1991-07-10 2001-01-09 Medical Research Council Methods for producing members of specific binding pairs
US6916605B1 (en) 1990-07-10 2005-07-12 Medical Research Council Methods for producing members of specific binding pairs
US7063943B1 (en) 1990-07-10 2006-06-20 Cambridge Antibody Technology Methods for producing members of specific binding pairs
GB9015198D0 (en) 1990-07-10 1990-08-29 Brien Caroline J O Binding substance
GB9206318D0 (en) * 1992-03-24 1992-05-06 Cambridge Antibody Tech Binding substances
SE9101433D0 (sv) * 1991-05-13 1991-05-13 Marianne Hansson Recombinant dna sequence and its use
US5858657A (en) * 1992-05-15 1999-01-12 Medical Research Council Methods for producing members of specific binding pairs
US5962255A (en) * 1992-03-24 1999-10-05 Cambridge Antibody Technology Limited Methods for producing recombinant vectors
US6225447B1 (en) 1991-05-15 2001-05-01 Cambridge Antibody Technology Ltd. Methods for producing members of specific binding pairs
US6492160B1 (en) 1991-05-15 2002-12-10 Cambridge Antibody Technology Limited Methods for producing members of specific binding pairs
US5871907A (en) 1991-05-15 1999-02-16 Medical Research Council Methods for producing members of specific binding pairs
WO1993006217A1 (en) * 1991-09-19 1993-04-01 Genentech, Inc. EXPRESSION IN E. COLI OF ANTIBODY FRAGMENTS HAVING AT LEAST A CYSTEINE PRESENT AS A FREE THIOL, USE FOR THE PRODUCTION OF BIFUNCTIONAL F(ab')2 ANTIBODIES
US5837491A (en) * 1991-11-04 1998-11-17 Xoma Corporation Polynucleotides encoding gelonin sequences
US5621083A (en) * 1991-11-04 1997-04-15 Xoma Corporation Immunotoxins comprising ribosome-inactivating proteins
US6146850A (en) * 1991-11-04 2000-11-14 Xoma Corporation Proteins encoding gelonin sequences
DE69233782D1 (de) 1991-12-02 2010-05-20 Medical Res Council Herstellung von Autoantikörpern auf Phagenoberflächen ausgehend von Antikörpersegmentbibliotheken
WO1993012246A1 (en) * 1991-12-18 1993-06-24 The University Of Calgary Expression-secretion vectors for the production of biologically active fv fragments
US5733743A (en) * 1992-03-24 1998-03-31 Cambridge Antibody Technology Limited Methods for producing members of specific binding pairs
US7368111B2 (en) 1995-10-06 2008-05-06 Cambridge Antibody Technology Limited Human antibodies specific for TGFβ2
GB9705376D0 (en) * 1997-03-14 1997-04-30 Harris William J Antibody fragment formulations and assay formats for detecting the presence an d concentration of analytes
US6492497B1 (en) 1999-04-30 2002-12-10 Cambridge Antibody Technology Limited Specific binding members for TGFbeta1
EP1908769A1 (en) * 2001-08-27 2008-04-09 Genentech, Inc. A system for antibody expression and assembly
MXPA04001566A (es) * 2001-08-27 2004-05-17 Genentech Inc Un sistema para expresion y ensamblado de anticuerpos.
JP5226697B2 (ja) * 2007-01-12 2013-07-03 ダウ グローバル テクノロジーズ エルエルシー 浸透圧によって細胞にショックを与えるための装置および方法
EP3080629B1 (en) 2013-12-12 2023-11-08 Koninklijke Philips N.V. Method to enable standard alternating current (ac)/direct current (dc) power adapters to operate in high magnetic fields

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB8308235D0 (en) * 1983-03-25 1983-05-05 Celltech Ltd Polypeptides
EP0196864A3 (en) * 1985-03-25 1988-03-23 Cetus Corporation Alkaline phosphatase-mediated processing and secretion of recombinant proteins, dna sequences for use therein and cells transformed using such sequences
EP0234592A1 (en) * 1986-02-28 1987-09-02 Teijin Limited Plasmid containing DNA fragment coding for human immunoglobulin G Fc region protein and use thereof for production of said protein
JPS62201581A (ja) * 1986-02-28 1987-09-05 Rikagaku Kenkyusho 新規プラスミド、微生物細胞及びヒト免疫グロブリンG Fc領域蛋白質の製造方法
WO1989000605A1 (en) * 1987-07-16 1989-01-26 Codon Transfected cells containing plasmids having genes oriented in opposing directions and methods of obtaining the same
CA1341235C (en) * 1987-07-24 2001-05-22 Randy R. Robinson Modular assembly of antibody genes, antibodies prepared thereby and use

Also Published As

Publication number Publication date
DK732988D0 (da) 1988-12-30
ATE102651T1 (de) 1994-03-15
ES2063022T3 (es) 1995-01-01
PT89362A (pt) 1989-12-29
HUT49169A (en) 1989-08-28
DE3744595A1 (de) 1989-07-13
AU628310B2 (en) 1992-09-17
DE3888337D1 (de) 1994-04-14
KR890010203A (ko) 1989-08-07
EP0324162A1 (de) 1989-07-19
JP2771204B2 (ja) 1998-07-02
DK732988A (da) 1989-07-01
IE62257B1 (en) 1995-01-11
PT89362B (pt) 1993-08-31
JPH02799A (ja) 1990-01-05
IE883893L (en) 1989-06-30
ZA889711B (en) 1989-09-27
EP0324162B1 (de) 1994-03-09
AU2761788A (en) 1989-07-06
KR970007861B1 (ko) 1997-05-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HU212592B (en) Method for producing antibodies genetechnologically
Melchers et al. Growth control of activated, synchronized murine B cells by the C3d fragment of human complement
Terzaghi et al. Change of a sequence of amino acids in phage T4 lysozyme by acridine-induced mutations.
Shapiro et al. Expression of Met-(− 1) angiogenin in Escherichia coli: conversion to the authentic< Glu-1 protein
Shapiro et al. Identification of functional arginines in human angiogenin by site-directed mutagenesis
GB2272698A (en) Fusion peptides which bind to streptavidin
JPH06500006A (ja) ユビキチン特異的プロテアーゼ
US11390652B2 (en) Transcriptional regulatory fusion polypeptide
JPH0753118B2 (ja) 原核宿主生物によるジスルフィド架橋された蛋白質の分泌の際に天然蛋白質の立体配座の形成を向上させる方法
Gray et al. Pseudomonas aeruginosa secretes and correctly processes human growth hormone
KR870000501B1 (ko) 사람의 프로인슐린의 아미노산 배열을 함유하는 단백질의 제조방법
JPH02501108A (ja) 微生物によるヒト副甲状腺ホルモンの生産
US5037744A (en) Process for the microbiological preparation of human serum albumin
CA2159079C (en) Methods and dna expression systems for over-expression of proteins in host cells
JP4333880B2 (ja) コンドロイチン合成酵素および該酵素をコードするdna
Emerick et al. Expression of a β-lactamase preproinsulin fusion protein in Escherichia coli
JP4338038B2 (ja) コンドロイチン合成酵素および該酵素をコードする核酸
KR950010817B1 (ko) 사카로미세스 세레비시아에에서 재조합 인간 psti의 제법
JP2540039B2 (ja) プラスミドベクタ−
RU2143492C1 (ru) Рекомбинантная плазмида, кодирующая гибридный белок - предшественник инсулина человека (варианты), штамм бактерий e.coli - продуцент гибридного белка - предшественника инсулина человека (варианты), способ получения инсулина человека
CN110607304A (zh) 肝细胞生长因子的重组表达方法
JP2637392B2 (ja) 遺伝子操作による生物活性β−NGFの生産方法
JPH06311884A (ja) プラスミド及びそれで形質転換されたエ シェリチア・コリ
RU2144082C1 (ru) Рекомбинантная плазмида, кодирующая гибридный белок-предшественник инсулина человека (варианты), штамм бактерий e.coli - продуцент гибридного белка-предшественника инсулина человека (варианты) и способ получения инсулина человека
Ribó et al. Production of Human Pancreatic Ribonuclease inSaccharomyces cerevisiaeandEscherichia coli

Legal Events

Date Code Title Description
HMH4 Cancellation of final prot. due to relinquishment