FR2902429A1

FR2902429A1 - Double pair of oligonucleotides to amplify two target sequences localized respectively in H5 gene and N1 genes of the genome influenza A virus, i.e. each the pair of oligonucleotides contains first and second oligonucleotides

Info

Publication number: FR2902429A1
Application number: FR0511974A
Authority: FR
Original assignee: Biomerieux SA
Current assignee: Biomerieux SA
Priority date: 2005-11-25
Filing date: 2005-11-25
Publication date: 2007-12-21
Also published as: CN101313079B; CN101313079A

Abstract

Double pair of oligonucleotides to amplify two target sequences localized respectively in the H5 gene and N1 genes of the genome Influenza A virus, i.e. the pair of oligonucleotides amplifying H5 gene contains a first oligonucleotide and a second oligonucleotide; and the pair of oligonucleotides amplifying N1 gene contains a first oligonucleotide and a second oligonucleotide. Double pair of oligonucleotides to amplify two target sequences localized respectively in the H5 gene and N1 genes of the genome influenza A virus, i.e. the pair of oligonucleotides amplifying H5 gene contains a first oligonucleotide containing 10-50 nucleotides and comprising at least a consecutive nucleotide fragment comprising a fully defined 19 base pair (SEQ ID NO: 1) sequence as given in the specification, or its complementary sequence, and a second oligonucleotide containing 10-50 nucleotides and comprising at least a consecutive nucleotide fragment comprising a fully defined 18 base pair (SEQ ID NO: 2) sequence as given in the specification, or its complementary sequence; and the pair of oligonucleotides amplifying N1 gene contains a first oligonucleotide containing 10-50 nucleotides and comprising at least a consecutive nucleotide fragment comprising a fully defined 18 base pair (SEQ ID NO: 3) sequence as given in the specification or its complementary sequence and a second oligonucleotide containing 10-50 nucleotides and comprising at least a consecutive nucleotide fragment comprising a fully defined 21 base pair (SEQ ID NO: 4) sequence as given in the specification or its complementary sequence. Independent claims are included for: (1) oligonucleotide pair intended to be used as detection probes of two target sequences respectively localized in the H5 and N1 genes of the genome influenza A virus, i.e. the probe for detecting H5 gene comprising a fully defined 22 base pair (SEQ ID NO: 7) sequence as given in the specification, or its complementary sequence and the probe for detecting gene N1 comprises a fully defined 25 base pair (SEQ ID NO: 8) sequence as given in the specification, or its complementary sequence, each sequence comprising at least a marker; (2) detection of nucleic acids of the influenza A virus susceptible to be present in a sample, comprising subjecting the sample to an amplification reaction of nucleic acids using the pair of oligonucleotides, in the presence of the amplification reactive agents necessary for an amplification and detecting the presence of amplicons; (3) amplification method of two H5 and N1 genes of influenza A virus present in a sample, comprising: incubating the sample in an amplification buffer in the presence of two amplification initiators, each having 10-50 nucleotides, one comprising additionally a promoter sequence, the other of polarity opposed to the initiator associated with the promoter sequence, to hybrid itself respectively upstream and downstream of a zone of interest located in the H5 gene of the Influenza A virus and two amplification initiators, each having 10-50 nucleotides, one comprising additionally a promoter sequence, the other of polarity opposed to the initiator associated with the promoter sequence, to hybrid itself respectively upstream and downstream of a zone of interest located in the N1 gene of the Influenza A virus; adding the reactive agents such as an enzyme having a RNA dependent DNA polymerase activity, an enzyme having a DNA dependent DNA polymerase activity, an enzyme having a RNase H activity and an enzyme having a DNA dependent RNA polymerase activity; and maintaining the reaction mixture for amplification; and (4) detection kit of the H5 gene and N1 gene of the influenza A virus present in a sample, comprising: the double pair of oligonucleotides; two marked oligonucleotides or being able to be marked and having a nucleic acid sequence substantially complementary with at least a part of the amplified nucleic acid sequence; and the reactive agents for amplification.

Description

La présente invention concerne un procédé de marquage d'acides nucléiquesThe present invention relates to a method for labeling nucleic acids

en présence d'au moins un support solide. La présente invention concerne des oligonucléotides destinés à permettre l'amplification et la détection de deux séquences cibles localisées respectivement dans les 5 gènes H5 et N1 du génome du virus Influenza A. L'invention concerne également l'utilisation de ces oligonucléotides, une méthode de détection et un kit permettant de diagnostiquer la présence des gènes H5 et Ni du virus Influenza A. in the presence of at least one solid support. The present invention relates to oligonucleotides for amplifying and detecting two target sequences located respectively in the H5 and N1 genes of the influenza A genome. The invention also relates to the use of these oligonucleotides, a method of detection and a kit for diagnosing the presence of the H5 and Ni genes of Influenza A.

10 Parmi les techniques classiques utilisées en routine pour le diagnostic de la grippe, on peut citer l'agglutination, l'inhibition d'agglutination ou la diffusion en gel d'agar. Ces méthodes sont communément employées et permettent la caractérisation du virus A de la grippe. Une alternative possible à ces méthodes est la culture virale dans des oeufs au stade 15 d'embryon ou dans des cellules MDCK, selon le protocole du manuel de l'OIE (Office International des Epizooties). Cependant, plusieurs jours sont nécessaires pour obtenir les résultats de caractérisation, délai parfois incompatible avec les besoins ou urgences cliniques. Des techniques d'ELISA pour la détection d'anticorps ou d'antigène ou des tests d'immunofluorescence ont été également massivement développées mais ces méthodes de 20 détection, dites immunologiques, sont souvent moins sensibles et moins spécifiques que la culture virale classique. L'émergence récente d'une forme hautement pathogénique du virus de la grippe aviaire, le sous-type H5N1, a donc fortement relancé le besoin d'un test de diagnostic rapide, spécifique et très sensible. Pour cette raison, les différentes méthodes précédemment 25 énumérées ont été progressivement remplacées par des techniques dites moléculaires, telle que la technique de RT-PCR (transcription inverse associée à une réaction de polymérisation en chaîne). La RT-PCR, plus sensible, ne nécessite pas la présence de virus viable dans les échantillons, et a ainsi permis le typage et sous-typage des différentes formes du virus de la grippe. Le développement de cette technique en temps réel ( real time RT-PCR ) a 30 également grandement favorisé son utilisation pour le diagnostic du virus de type A. 2 Par exemple, Whiley D. M. et al. décrivent dans une récente publication (Diagnostic Microbiology and Infectious Diseases (2005), sous presse), un test pour la détection d'un large spectre de sous-types de la grippe dans des échantillons cliniques, basé sur une réaction de RT-PCR faisant intervenir une 5' nucléase. Deux oligonucléotides et une sonde ont été choisis de façon à être homologues au gène codant la protéine M (matrice) de 23 sous-types du virus A. Ce test permet donc la détection du virus Influenza A dans des échantillons cliniques mais ne permet pas par contre le sous-typage précis de la forme impliquée. Ng E.K.O. et al. ont récemment divulgué (Emerging Infectious Diseases (2005) vol. 11 (8), p. 1303-1305) un test basé sur une réaction de RT-PCR en multiplex comprenant deux étapes, utilisant deux jeux d'oligonucléotides et de sondes marquées afin de cibler spécifiquement deux régions du gène HA de H5N1. Ceci a ainsi permis de développer un test rapide et sensible pour détecter directement le sous-type H5 dans des échantillons humains. Ce test a été validé sur des échantillons cliniques provenant de patients infectés à Hong Kong et au Vietnam par le sous-type H5N1 du virus, mais ne permet pas de diagnostiquer directement quel sous-type de virus est impliqué dans l'infection. Payungporn S. et al. décrivent (Viral Immunology (2004) vol. 17 (4), p. 588-593 et Journal of Virological Methods (2005), sous presse) une méthode de détection simultanée des séquences M, H5 et N1 du soustype H5N1, basée sur un test multiplex RT-PCR en temps réel et en une seule étape. Des oligonucléotides correspondant aux séquences M, H5 et N1, ainsi que différentes sondes TaqMan marquées ont été sélectionnées et utilisées dans le test afin de détecter simultanément trois signaux fluorescents. Les oligonucléotides H5 et NI ont été choisis à partir de régions invariantes couvrant plus de 50 séquences connues spécifiques du virus H5N1. Cependant, il est à noter que cette méthode de RT-PCR, non isotherme, est parfois assujettie à des contaminations. Typical techniques routinely used for the diagnosis of influenza include agglutination, agglutination inhibition or agar gel diffusion. These methods are commonly used and allow the characterization of influenza A virus. A possible alternative to these methods is viral culture in eggs in the embryo stage or in MDCK cells, according to the protocol of the OIE handbook (Office International des Epizooties). However, several days are needed to obtain the results of characterization, a delay sometimes incompatible with clinical needs or emergencies. ELISA techniques for the detection of antibodies or antigen or immunofluorescence tests have also been massively developed, but these so-called immunological detection methods are often less sensitive and less specific than conventional viral culture. The recent emergence of a highly pathogenic form of the avian influenza virus, the H5N1 subtype, has therefore strongly revived the need for a rapid, specific and highly sensitive diagnostic test. For this reason, the various methods previously listed have been progressively replaced by so-called molecular techniques, such as the RT-PCR technique (reverse transcription associated with a polymerization chain reaction). The more sensitive RT-PCR does not require the presence of viable virus in the samples, and has allowed the typing and subtyping of different forms of the influenza virus. The development of this real-time RT-PCR technique has also greatly promoted its use for the diagnosis of type-A virus. For example, Whiley D. M. et al. described in a recent publication (Diagnostic Microbiology and Infectious Diseases (2005), in press), a test for the detection of a broad spectrum of influenza subtypes in clinical samples, based on an RT-PCR reaction to intervene a 5 'nuclease. Two oligonucleotides and one probe were chosen to be homologous to the gene encoding the M protein (template) of 23 subtypes of virus A. This test therefore allows the detection of Influenza A virus in clinical samples but does not allow by against the precise subtyping of the involved form. Ng E.K.O. et al. recently disclosed (Emerging Infectious Diseases (2005) vol 11 (8), pp. 1303-1305) a test based on a multiplex RT-PCR reaction comprising two steps, using two sets of oligonucleotides and labeled probes so to specifically target two regions of the H5N1 HA gene. This has made it possible to develop a rapid and sensitive test for directly detecting the H5 subtype in human samples. This test has been validated on clinical specimens from patients infected in Hong Kong and Vietnam by the H5N1 subtype of the virus, but does not directly diagnose which subtype of virus is involved in the infection. Payungporn S. et al. disclose (Viral Immunology (2004) 17 (4), 588-593 and Journal of Virological Methods (2005), in press) a method for the simultaneous detection of the M, H5 and N1 sequences of the H5N1 subtype, based on a RT-PCR multiplex test in real time and in one step. Oligonucleotides corresponding to the M, H5 and N1 sequences as well as various labeled TaqMan probes were selected and used in the assay to simultaneously detect three fluorescent signals. The oligonucleotides H5 and NI were chosen from invariant regions covering more than 50 known H5N1 specific sequences. However, it should be noted that this non-isothermal RT-PCR method is sometimes subject to contamination.

Une autre méthode moléculaire pouvant être employée pour détecter la présence d'agent infectieux est la technique NASBA (Nucleic Acid Sequence-Based Amplification). Par exemple, Collins R.A et al. décrivent (Journal of Virological Methods (2002) vol. 103, p.213-225 et Avian Diseases (2003) vol. 47 (3), p. 1069-1074) la détection du sous-type H5 de la grippe aviaire (détection du sous-type hautement pathogénique et faiblement pathogénique) en utilisant la technique NASBA couplée à un système de détection ECL (electrochemiluminescence). La technique NASBA est une méthode d'amplification 3 isotherme d'acides nucléiques faisant intervenir plusieurs activités enzymatiques, qui permet une détection rapide du virus H5. L'amplification d'acides nucléiques par cette voie convient bien aux génomes à ARN, comme le génome du virus de la grippe, grâce à l'introduction de l'étape de transcription inverse directement dans la réaction d'amplification. Néanmoins, même si la méthode décrite dans cette publication permet de détecter et de distinguer les souches faiblement pathogéniques des souches hautement pathogéniques, elle ne permet d'identifier spécifiquement la forme H5N1 du virus. Un test d'identification du virus Influenza A sous sa forme H5N1 utilisant une technique d'amplification transcriptionnelle, particulièrement adaptée à l'amplification et à la détection de virus à ARN, est donc toujours attendu. De plus un test multiplexe, c'est-à-dire permettant l'amplification et la détection simultanément des deux gènes H5 et N1, la technique d'amplification étant une technique d'amplification transcriptionnelle telle que la NASBA, est particulièrement avantageuse. Another molecular method that can be used to detect the presence of infectious agent is NASBA (Nucleic Acid Sequence-Based Amplification) technique. For example, Collins R.A et al. describe (Journal of Virological Methods (2002) 103, p.213-225 and Avian Diseases (2003) 47 (3), pp. 1069-1074) the detection of the H5 subtype of avian influenza (detection highly pathogenic and low pathogenic subtype) using the NASBA technique coupled to an ECL (electrochemiluminescence) detection system. The NASBA technique is a method of isothermal amplification of nucleic acids 3 involving several enzymatic activities, which allows rapid detection of the H5 virus. Nucleic acid amplification by this route is well suited to RNA genomes, such as the influenza virus genome, by introducing the reverse transcription step directly into the amplification reaction. Nevertheless, even though the method described in this publication can detect and distinguish low pathogenic strains from highly pathogenic strains, it does not specifically identify the H5N1 form of the virus. An identification test of Influenza A virus in its H5N1 form using a transcriptional amplification technique, particularly suitable for the amplification and detection of RNA viruses, is therefore still expected. In addition, a multiplex test, that is to say, allowing the amplification and the simultaneous detection of the two genes H5 and N1, the amplification technique being a transcriptional amplification technique such as NASBA, is particularly advantageous.

La présente invention concerne donc une double paire d'oligonucléotides destinée à permettre l'amplification de deux séquences cibles localisées respectivement dans le gène H5 et dans le gène N1 du génome du virus Influenza A, la paire d'oligonucléotides destinée à l'amplification du gène H5 consistant en : un premier oligonucléotide d'une longueur comprise entre 10 et 50 nucléotides et comprenant au moins un fragment de 10 nucléotides consécutifs issus de : SEQ ID No. 1 : TGTATGTTGTGGAATGGCA, ou sa séquence complémentaire, et un second oligonucléotide d'une longueur comprise entre 10 et 50 nucléotides et comprenant au moins un fragment de 10 nucléotides consécutifs issus de : SEQ ID No. 2 : GCCGAATGATGCCATCAA, ou sa séquence complémentaire, alors que la paire d'oligonucléotides destinée à l'amplification du gène N1 consiste en : un premier oligonucléotide d'une longueur comprise entre 10 et 50 nucléotides et comprenant au moins un fragment de 10 nucléotides consécutifs issus de : SEQ ID No. 3 : CGTGGATTGTCTCCGAAA, ou sa séquence complémentaire, et un second oligonucléotide d'une longueur comprise entre 10 et 50 nucléotides et comprenant au moins un fragment de 10 nucléotides consécutifs issus de : SEQ ID No. 4 : GGAATGCTCCTGTTATCCTGA, ou sa séquence complémentaire. 4 L'invention peut également avoir trait à une paire d'oligonucléotides destinée à permettre l'amplification d'une séquence cible localisée dans le gène H5 du génome du virus Influenza A, la paire d'oligonucléotides consistant en : un premier oligonucléotide d'une longueur comprise entre 10 et 50 nucléotides et comprenant au moins un fragment de 10 nucléotides consécutifs issus de : SEQ ID No. 1 : TGTATGTTGTGGAATGGCA, ou sa séquence complémentaire, et un second oligonucléotide d'une longueur comprise entre 10 et 50 nucléotides et comprenant au moins un fragment de 10 nucléotides consécutifs issus de : SEQ ID No. 2 : GCCGAATGATGCCATCAA, ou sa séquence complémentaire. The present invention therefore relates to a double pair of oligonucleotides intended to allow the amplification of two target sequences localized respectively in the H5 gene and in the N1 gene of the genome of Influenza A virus, the oligonucleotide pair intended for the amplification of the H5 gene consisting of: a first oligonucleotide of a length of between 10 and 50 nucleotides and comprising at least one fragment of 10 consecutive nucleotides derived from: SEQ ID No. 1: TGTATGTTGTGGAATGGCA, or its complementary sequence, and a second oligonucleotide of a length of between 10 and 50 nucleotides and comprising at least one fragment of 10 consecutive nucleotides derived from: SEQ ID No. 2: GCCGAATGATGCCATCAA, or its complementary sequence, while the oligonucleotide pair intended for the amplification of the N1 gene consists of in: a first oligonucleotide with a length of between 10 and 50 nucleotides and comprising at least one fragment of 10 nucleotides consecutive IDs derived from: SEQ ID No. 3: CGTGGATTGTCTCCGAAA, or its complementary sequence, and a second oligonucleotide of a length of between 10 and 50 nucleotides and comprising at least one fragment of 10 consecutive nucleotides derived from: SEQ ID No. 4 : GGAATGCTCCTGTTATCCTGA, or its complementary sequence. The invention may also relate to a pair of oligonucleotides for amplifying a target sequence located in the H5 gene of the influenza A genome, the oligonucleotide pair consisting of: a first oligonucleotide of a length between 10 and 50 nucleotides and comprising at least one fragment of 10 consecutive nucleotides derived from: SEQ ID No. 1: TGTATGTTGTGGAATGGCA, or its complementary sequence, and a second oligonucleotide of a length of between 10 and 50 nucleotides and comprising at least one fragment of 10 consecutive nucleotides derived from: SEQ ID No. 2: GCCGAATGATGCCATCAA, or its complementary sequence.

De la même manière, l'invention peut aussi couvrir une paire d'oligonucléotides destinée à permettre l'amplification d'une séquence cible localisée dans le gène N1 du génome du virus Influenza A, la paire d'oligonucléotides consistant en : un premier oligonucléotide d'une longueur comprise entre 10 et 50 nucléotides et comprenant au moins un fragment de 10 nucléotides consécutifs issus de : SEQ ID No. 3 : CGTGGATTGTCTCCGAAA, ou sa séquence complémentaire, et un second oligonucléotide d'une longueur comprise entre 10 et 50 nucléotides et comprenant au moins un fragment de 10 nucléotides consécutifs issus de : SEQ ID No. 4 : GGAATGCTCCTGTTATCCTGA, ou sa séquence complémentaire. Dans les trois cas de figure précédents, dans la (ou les) paire(s) d'oligonucléotides, le premier oligonucléotide comprend additionnellement une séquence promotrice qui peut être reconnue par une enzyme ARN polymérase ADN dépendante. Plus précisément, la séquence promotrice qui peut être reconnue par une enzyme ARN polymérase ADN dépendante est une polymérase T7. En relation avec les deux cas précédents, lorsque cet oligonucléotide, auquel est additionnée la séquence promotrice, permet l'amplification de la séquence cible localisée dans le gène H5, il consiste essentiellement en la séquence suivante : SEQ ID No. 5 : aattctaatacgactcactataggggTGTATGTTGTGGAATGGCA, ou sa séquence complémentaire. La partie de la séquence en lettres minuscules correspond à la séquence promotrice T7. In the same way, the invention may also cover an oligonucleotide pair intended to allow the amplification of a target sequence located in the N1 gene of the influenza A virus genome, the oligonucleotide pair consisting of: a first oligonucleotide of a length of between 10 and 50 nucleotides and comprising at least one fragment of 10 consecutive nucleotides resulting from: SEQ ID No. 3: CGTGGATTGTCTCCGAAA, or its complementary sequence, and a second oligonucleotide having a length of between 10 and 50 nucleotides and comprising at least one fragment of 10 consecutive nucleotides derived from: SEQ ID No. 4: GGAATGCTCCTGTTATCCTGA, or its complementary sequence. In the three preceding cases, in the (or) pair (s) of oligonucleotides, the first oligonucleotide additionally comprises a promoter sequence which can be recognized by a DNA-dependent RNA polymerase enzyme. More specifically, the promoter sequence that can be recognized by a DNA dependent RNA polymerase enzyme is a T7 polymerase. In relation to the two preceding cases, when this oligonucleotide, to which the promoter sequence is added, allows the amplification of the target sequence localized in the H5 gene, it essentially consists of the following sequence: SEQ ID No. 5: aattctaatacgactcactataggggTGTATGTTGTGGAATGGCA, or its complementary sequence. The portion of the sequence in lowercase letters corresponds to the T7 promoter sequence.

De la même manière que précédemment, lorsque cet oligonucléotide permet l'amplification de la séquence cible localisée dans le gène N1, il consiste essentiellement en la séquence suivante: SEQ ID No. 6 : aattctaatacgactcactataggggCGTGGATTGTCTCCGAAA, ou sa séquence complémentaire. Dans tous les cas de figure, chaque oligonucléotide peut être d'une longueur comprise 5 entre 12 et 30 nucléotides et comprenant au moins un fragment de 16 nucléotides consécutifs, et préférentiellement d'une longueur comprise entre 15 et 26 nucléotides et comprenant au moins un fragment de 18 nucléotides consécutifs. L'invention concerne également une paire d'oligonucléotides destinée à être utilisée comme sonde de détection de deux séquences cibles localisées respectivement dans les gènes H5 et N1 du génome du virus Influenza A, la sonde destinée à la détection du gène H5 consistant en : SEQ ID No. 7 : ACACCAAGTGTCAAACTCCAAT, ou sa séquence complémentaire, alors que la sonde destinée à la détection du gène N1 consiste en : SEQ ID No. 8 : GCGAAATCACATGTGTGTGCAGGGA, ou sa séquence complémentaire, 15 chaque séquence comportant au moins un moyen de marquage. L'invention peut également avoir trait à un oligonucléotide, destiné à être utilisé comme sonde de détection d'une séquence d'acides nucléiques amplifiée résultant de l'amplification d'une séquence cible localisée dans le gène H5 du génome du virus Influenza A, ladite amplification étant réalisée par l'intermédiaire d'une paire d'oligonucléotides telle 20 que décrite précédemment, la sonde de détection étant d'une longueur comprise entre 10 et 50 nucléotides et comprenant au moins un fragment de 10 nucléotides consécutifs issus de : SEQ ID No. 7 : ACACCAAGTGTCAAACTCCAAT, ou sa séquence complémentaire, la séquence comportant au moins un moyen de marquage. Lorsque l'on souhaite détecter le gène Ni du génome du virus Influenza A, l'invention 25 préconise un oligonucléotide, destiné à être utilisé comme sonde de détection d'une séquence d'acides nucléiques amplifiée résultant de l'amplification d'une séquence cible localisée dans ce gène N1, ladite amplification étant réalisée par l'intermédiaire d'une paire d'oligonucléotides telle que décrite précédemment, la sonde de détection étant d'une longueur comprise entre 10 et 50 nucléotides et comprenant au moins un fragment de 10 nucléotides 30 consécutifs issus de : SEQ ID No. 8 : GCGAAATCACATGTGTGTGCAGGGA, ou sa séquence complémentaire, 6 la séquence comportant au moins un moyen de marquage. In the same manner as above, when this oligonucleotide allows the amplification of the target sequence located in the N1 gene, it consists essentially of the following sequence: SEQ ID No. 6: aattctaatacgactcactataggggCGTGGATTGTCTCCGAAA, or its complementary sequence. In all cases, each oligonucleotide may be between 12 and 30 nucleotides in length and comprising at least one fragment of 16 consecutive nucleotides, and preferably of a length of between 15 and 26 nucleotides and comprising at least one fragment of 18 consecutive nucleotides. The invention also relates to a pair of oligonucleotides for use as a probe for detecting two target sequences located respectively in the H5 and N1 genes of the genome of Influenza A virus, the probe intended for the detection of the H5 gene consisting of: SEQ ID No. 7: ACACCAAGTGTCAAACTCCAAT, or its complementary sequence, while the probe for the detection of the N1 gene consists of: SEQ ID No. 8: GCGAAATCACATGTGTGTGCAGGGA, or its complementary sequence, each sequence comprising at least one labeling means. The invention may also relate to an oligonucleotide, for use as a probe for detecting an amplified nucleic acid sequence resulting from the amplification of a target sequence located in the H5 gene of the influenza A genome, said amplification being carried out via a pair of oligonucleotides as described above, the detection probe being between 10 and 50 nucleotides in length and comprising at least one fragment of 10 consecutive nucleotides from: SEQ ID No. 7: ACACCAAGTGTCAAACTCCAAT, or its complementary sequence, the sequence comprising at least one labeling means. When it is desired to detect the Ni gene of the influenza A virus genome, the invention recommends an oligonucleotide, for use as a probe for detecting an amplified nucleic acid sequence resulting from the amplification of a sequence. target located in this gene N1, said amplification being carried out via an oligonucleotide pair as described above, the detection probe being between 10 and 50 nucleotides in length and comprising at least one fragment of 10 consecutive nucleotides derived from: SEQ ID No. 8: GCGAAATCACATGTGTGTGCAGGGA, or its complementary sequence, the sequence comprising at least one labeling means.

Dans un mode de réalisation intéressant de l'invention, la sonde de détection est constituée par un molecular beacon , appellé par la suite sonde moléculaire. Les sondes moléculaires sont des sondes de détection sous forme d'oligonucléotides simple brin, qui ont une structure en tige et bouche (stem loop structure) bien connue de l'homme du métier. La bouche contient une séquence sonde complémentaire de la séquence cible (amplicon en général), et la tige est formée par l'hybridation de deux séquences formant bras, qui sont localisées chacune à chaque extrémité de la sonde. Un fluorophore est lié de façon covalente à l'extrémité d'un des deux bras et un absorbeur de fluorescence (quencher) est lié de façon covalente à l'extrémité de l'autre bras. Les sondes moléculaires ne fluorescent pas lorsqu'ils sont libres en solution. Cependant, en présence d'amplicons complémentaires, quand ils s'hybrident à ces cibles, ils subissent un changement conformationnel qui leur permet de fluorescer. En l'absence de cibles, la tige conserve le fluorophore en étroite proximité avec l'absorbeur de fluorescence, ce qui entraîne le transfert de la fluorescence du fluorophore vers l'absorbeur. Ledit absorbeur de fluorescence est un chromophore non fluorescent qui dissipe l'énergie reçue du fluorophore en chaleur. Quand la sonde rencontre une cible moléculaire, il y a formation d'un hybride sonde-cible qui est plus long et plus stable que l'hybride créé par les deux bras de la tige. La rigidité et la longueur de l'hybride sonde-hybride empêchent l'existence simultanément de l'hybride tige. En conséquence, la sonde moléculaire subit une réorganisation conformationnelle spontanée qui force l'hybride tige à se dissocier et le fluorophore et l'absorbeur à s'éloigner l'un de l'autre, ce qui restaure la fluorescence. Plus précisément la sonde de détection est constituée par une sonde moléculaire préférentiellement constituée par : SEQ ID No. 9 : [6-FAM]-cgatcgACACCAAGTGTCAAACTCCAATcgatcg-[DabSyl], pour la détection du gène H5, SEQ ID No. 10 : [6-FAM]-cgatcgGCGAAATCACATGTGTGTGCAGGGAcgatcg-[DabSyl], pour la détection du gène N1. Lorsque le test que l'on souhaite effectuer et un test multiplexe où la détection des 30 gènes H5 et N1 est simultanée et effectuée dans un unique récipient, il convient d'utiliser deux marqueurs différents. Parmi les marqueurs fluorescents possibles, citons de manière non limitative : • la fluorescéine (FAM), • la tétrachloro-6-carboxyfluorescéine (TET), • la tétraméthylrhodamine (TMR), • la 5-carboxyrhodamine 6G (RHD), • la carboxy-rhodamine (ROX), et • la cyanine 5 (CY5). Chacune des deux séquences SEQ ID Nos. 9 et 10 ci-dessus sera donc munie d'un de ces marqueurs, les deux marqueurs utilisés étant différents l'un de l'autre afin de permettre une 10 différentiation des signaux détectés. In an interesting embodiment of the invention, the detection probe is constituted by a molecular beacon, hereinafter referred to as a molecular probe. Molecular probes are detection probes in the form of single-stranded oligonucleotides, which have a stem loop structure well known to those skilled in the art. The mouth contains a probe sequence complementary to the target sequence (amplicon in general), and the stem is formed by the hybridization of two arm sequences, which are each located at each end of the probe. A fluorophore is covalently bound to the end of one of the two arms and a fluorescence absorber (quencher) is covalently bound to the end of the other arm. Molecular probes do not fluoresce when they are free in solution. However, in the presence of complementary amplicons, when they hybridize to these targets, they undergo a conformational change that allows them to fluoresce. In the absence of targets, the rod retains the fluorophore in close proximity to the fluorescence absorber, resulting in the transfer of fluorescence from the fluorophore to the absorber. The fluorescence absorber is a non-fluorescent chromophore that dissipates the energy received from the fluorophore in heat. When the probe encounters a molecular target, a probe-target hybrid is formed which is longer and more stable than the hybrid created by the two arms of the stem. The rigidity and length of the hybrid-probe hybrid prevent the simultaneous existence of the stem hybrid. As a result, the molecular probe undergoes a spontaneous conformational reorganization that forces the stem hybrid to dissociate and the fluorophore and absorber to move away from each other, thereby restoring fluorescence. More precisely, the detection probe consists of a molecular probe preferably consisting of: SEQ ID No. 9: [6-FAM] -cgatcgACACCAAGTGTCAAACTCCAATcgatcg- [DabSyl], for the detection of the H5 gene, SEQ ID No. 10: [6- FAM] -cgatcgGCGAAATCACATGTGTGTGCAGGGAcgatcg- [DabSyl], for the detection of the N1 gene. When the test is desired and a multiplex test where the detection of the H5 and N1 genes is simultaneous and carried out in a single container, two different markers should be used. Possible fluorescent markers include, but are not limited to: • fluorescein (FAM), • tetrachloro-6-carboxyfluorescein (TET), • tetramethylrhodamine (TMR), • 5-carboxyrhodamine 6G (RHD), • carboxy -rhodamine (ROX), and • cyanine (CY5). Each of the two sequences SEQ ID Nos. 9 and 10 above will therefore be provided with one of these markers, the two markers used being different from each other in order to allow a differentiation of the detected signals.

L'invention propose aussi l'utilisation d'une ou deux paires d'oligonucléotides, telle(s) que décrite(s) précédemment, dans une réaction d'amplification d'acides nucléiques ou comme sonde de détection du génome du virus Influenza A suspecté d'être présent dans un 15 échantillon biologique. The invention also proposes the use of one or two pairs of oligonucleotides, as described above, in a nucleic acid amplification reaction or as a detection probe for the genome of Influenza A virus. suspected to be present in a biological sample.

L'invention concerne encore une méthode de détection d'acides nucléiques du virus d'Influenza A susceptible d'être présent dans un échantillon, dans laquelle l'échantillon est soumis à une réaction d'amplification d'acides nucléiques utilisant une paire 20 d'oligonucléotides, telle que décrite précédemment, en présence des réactifs d'amplification nécessaires à une telle amplification et la présence d'amplicons d'intérêt est détecté. Cette méthode de détection peut être basée sur une réaction d'amplification RT-PCR. Alternativement, cette méthode de détection peut être basée sur une technique d'amplification transcriptionnelle. Préférentiellement cette technique est la technique 25 NASBA. L'invention concerne aussi une méthode d'amplification de deux gènes H5 et N1 du virus d'Influenza A susceptible d'être présent dans un échantillon, comprenant les étapes suivantes : - incuber l'échantillon dans un tampon d'amplification en présence : 30 • de deux amorces d'amplification, chacune ayant une longueur comprise entre 10 et 50 nucléotides, l'une comprenant additionnellement une séquence promotrice, 8 l'autre de polarité opposée à l'amorce associée à la séquence promotrice, pour s'hybrider respectivement en amont et en aval d'une zone d'intérêt localisée dans le gène H5 du virus d'Influenza A, • de deux amorces d'amplification, chacune ayant une longueur comprise entre 10 et 50 nucléotides, l'une comprenant additionnellement une séquence promotrice, l'autre de polarité opposée à l'amorce associée à la séquence promotrice, pour s'hybrider respectivement en amont et en aval d'une zone d'intérêt localisée dans le gène N1 du virus d'Influenza A, - ajouter les réactifs suivants dans l'échantillon: • une enzyme ayant une activité RNA dépendant DNA polymérase, • une enzyme ayant une activité DNA dépendant DNA polymérase, • une enzyme ayant une activité RNase H, • une enzyme ayant une activité DNA dépendent RNA polymérase, et -maintenir le mélange réactionnel ainsi créé sous des conditions appropriées et 15 pendant une durée de temps suffisante pour qu'une amplification ait lieu. Les enzymes ci-dessus énumérés sont au nombre de quatre mais il est tout à fait possible de recourir à une enzyme ayant deux voir trois des activités ci-dessus mentionnées, dans ce cas l'utilisation de trois voir de deux enzymes reste possible et couverte par l'invention. De plus, d'autres éléments nécessaires à l'établissement d'une amplification sont nécessaires tels que 20 des nucléotides. De tels éléments sont bien connus de l'homme du métier. The invention also relates to a method for detecting nucleic acids of Influenza A virus that may be present in a sample, wherein the sample is subjected to a nucleic acid amplification reaction using a pair of nucleic acids. Oligonucleotides, as previously described, in the presence of the amplification reagents necessary for such amplification and the presence of amplicons of interest is detected. This detection method can be based on an RT-PCR amplification reaction. Alternatively, this detection method may be based on a transcriptional amplification technique. Preferably, this technique is the NASBA technique. The invention also relates to a method for amplifying two H5 and N1 genes of influenza A virus that may be present in a sample, comprising the following steps: incubating the sample in an amplification buffer in the presence of: Two amplification primers, each having a length of between 10 and 50 nucleotides, one additionally comprising a promoter sequence, the other of opposite polarity to the primer associated with the promoter sequence, for hybridizing respectively upstream and downstream of an area of interest localized in the H5 gene of Influenza A virus, • two amplification primers, each having a length of between 10 and 50 nucleotides, one additionally comprising a promoter sequence, the other of opposite polarity to the primer associated with the promoter sequence, for hybridizing respectively upstream and downstream of an area of interest located in the N1 gene of the Influenza virus A, - add the following reagents in the sample: • an enzyme with an RNA dependent DNA polymerase activity, • an enzyme with a DNA-dependent DNA polymerase activity, • an enzyme with an RNase H activity, • an enzyme with a DNA activity RNA polymerase, and maintain the reaction mixture thus created under appropriate conditions and for a period of time sufficient for amplification to take place. The enzymes listed above are four in number but it is quite possible to use an enzyme having two or three of the above mentioned activities, in this case the use of three or two enzymes remains possible and covered. by the invention. In addition, other elements necessary for establishing amplification are needed such as nucleotides. Such elements are well known to those skilled in the art.

Enfin l'invention propose un kit de détection des gènes H5 et N1 du virus Influenza A susceptible d'être présent dans un échantillon, contenant : deux paires d'oligonucléotides ou amorces d'amplification telles que décrites 25 précédemment pour réaliser l'amplification des deux régions d'intérêt H5 et N1, deux oligonucléotides marqués ou pouvant être marqués, tels que décrits précédemment, et ayant une séquence d'acide nucléique substantiellement complémentaire avec au moins une partie de la séquence d'acide nucléique amplifiée H5 ou N1, 30 des réactifs nécessaires à la réalisation d'une réaction d'amplification. Par substantiellement complémentaire on entend qu'une hybridation est réalisée 9 entre un oligonucléotide marqué ou pouvant être marqué, autrement appelé sonde de détection, et au moins une partie de la séquence d'acide nucléique amplifiée ou amplicon, cette hybridation étant spécifique et sélective de manière suffisante pour permettre la détection de l'amplicon d'intérêt. Finally, the invention proposes a kit for detecting the H5 and N1 genes of the Influenza A virus that may be present in a sample, containing: two pairs of oligonucleotides or amplification primers as described previously for carrying out the amplification of two regions of interest H5 and N1, two labeled or labeled oligonucleotides, as previously described, and having a nucleic acid sequence substantially complementary to at least a portion of the amplified H5 or N1 nucleic acid sequence, reagents necessary for carrying out an amplification reaction. By substantially complementary is meant that hybridization is carried out between a labeled or labelable oligonucleotide, otherwise known as a detection probe, and at least a portion of the amplified nucleic acid sequence or amplicon, this hybridization being specific and selective to sufficient to allow detection of the amplicon of interest.

D'autre part, les réactifs nécessaires à la réalisation d'une réaction d'amplification sont des réactifs permettant une amplification NASBA. On the other hand, the reagents necessary for carrying out an amplification reaction are reagents allowing NASBA amplification.

Par marqueur détectable , on entend au moins un marqueur capable de générer directement un signal détectable. Par exemple la présence de biotine est considéré comme un marquage direct, car elle est détectable, même s'il est possible de l'associer ultérieurement avec de la streptavidine marquée. Une liste non limitative de ces marqueurs suit : • les enzymes qui produisent un signal détectable par exemple par colorimétrie, fluorescence, luminescence, comme la péroxydase de raifort, la phosphatase alcaline, la (3-galactosidase, la glucose-6-phosphate déshydrogénase, • les chromophores comme les composés fluorescents, luminescents, colorants, • les groupements à densité électronique détectable par microscopie électronique ou par leur propriété électrique comme la conductivité, l'ampérométrie, la voltamétrie, l'impédance, • les groupements détectables, par exemple dont les molécules sont de tailles suffisantes pour induire des modifications détectables de leurs caractéristiques physiques et/ou chimiques, cette détection peut être réalisée par des méthodes optiques comme la diffraction, la résonance plasmon de surface, la variation de surface, la variation d'angle de contact ou des méthodes physiques comme la spectroscopie de force atomique, l'effet tunnel, • les molécules radioactives comme le 32P, le 35S ou le 125I. By detectable marker is meant at least one marker capable of directly generating a detectable signal. For example, the presence of biotin is considered direct labeling because it is detectable, although it can be subsequently associated with labeled streptavidin. A nonlimiting list of these markers follows: • the enzymes which produce a detectable signal for example by colorimetry, fluorescence, luminescence, such as horseradish peroxidase, alkaline phosphatase, (3-galactosidase, glucose-6-phosphate dehydrogenase, Chromophores such as fluorescent compounds, luminescent compounds, dyes, electron density groups detectable by electron microscopy or by their electrical property such as conductivity, amperometry, voltammetry, impedance, detectable groups, for example the molecules are of sufficient size to induce detectable changes in their physical and / or chemical characteristics, this detection can be carried out by optical methods such as diffraction, surface plasmon resonance, surface variation, angle variation of contact or physical methods like atomic force spectroscopy, the tunnel effect, • radioactive molecules such as 32P, 35S or 125I.

De préférence, le marqueur n'est pas un marqueur radioactif pour éviter les problèmes de sécurité liés à ces marqueurs. Dans un mode de réalisation particulier de la présente invention le marqueur est détectable électrochimiquement, et en particulier le marqueur est un dérivé d'un complexe de fer, comme un ferrocène. Preferably, the marker is not a radioactive marker to avoid the security problems associated with these markers. In a particular embodiment of the present invention the label is electrochemically detectable, and in particular the label is a derivative of an iron complex, such as a ferrocene.

Le terme acide nucléique signifie un enchaînement d'au moins deux désoxyribonucléotides ou ribonucléotides comprenant éventuellement au moins un nucléotide 10 modifié, par exemple au moins un nucléotide comportant une base modifiée, telle que l'inosine, la méthyl-5-désoxycytidine, la diméthylamino-5-désoxyuridine, la désoxyuridine, la diamino-2,6-purine, la bromo-5-désoxyuridine ou toute autre base modifiée permettant l'hybridation. Ce polynucléotide peut aussi être modifié au niveau de la liaison internucléotidique comme par exemple les phosphorothioates, les H-phosphonates, les alkylphosphonates, au niveau du squelette comme par exemple les alpha-oligonucléotides (FR 2 607 507) ou les PNA (M. Egholm et al., J. Am. Chem. Soc., 114, 1895-1897, 1992 ou les 2' O-alkyl ribose et les LNA (BW, Sun et al., Biochemistry, 4160-4169, 43, 2004). L'acide nucléique peut être naturel ou synthétique, un oligonucléotide, un polynucléotide, un fragment d'acide nucléique, un ARN ribosomique, un ARN messager, un ARN de transfert, un acide nucléique obtenu par une technique d'amplification enzymatique telle que : • PCR (Polymerase Chain Reaction), décrite dans les brevets US-A-4,683,195, US-A-4,683,202 et US-A-4,800,159, et sa dérivée RT-PCR (Reverse Transcription PCR), notamment dans un format en une étape, tel que décrit dans le brevet EP-B-0.569.272, • LCR (Ligase Chain Reaction), exposée par exemple dans la demande de brevet EP-A-0.201.184, • RCR (Repair Chain Reaction), décrite dans la demande de brevet WO-A-90/01069, • 3SR (Self Sustained Sequence Replication) avec la demande de brevet WO-A-90/06995, • NASBA (Nucleic Acid Sequence-Based Amplification) avec la demande de brevet WO-A- 91/02818, et • TMA (Transcription Mediated Amplification) avec le brevet US-A-5,399,491. • RCA (Rolling Circle Amplification (US-6,576,448). On parle alors d'amplicons pour désigner les acides nucléiques générés par une technique d'amplification enzymatique. The term nucleic acid means a sequence of at least two deoxyribonucleotides or ribonucleotides optionally comprising at least one modified nucleotide, for example at least one nucleotide comprising a modified base, such as inosine, methyl-5-deoxycytidine or dimethylamino. -5-deoxyuridine, deoxyuridine, diamino-2,6-purine, bromo-5-deoxyuridine or any other modified base for hybridization. This polynucleotide can also be modified at the level of the internucleotide linkage, for example phosphorothioates, H-phosphonates or alkylphosphonates, at the level of the backbone such as, for example, alpha-oligonucleotides (FR 2 607 507) or NAPs (M. Egholm). et al., J. Am Chem Soc., 114, 1895-1897, 1992 or the 2 'O-alkyl ribose and LNA (BW, Sun et al., Biochemistry, 4160-4169, 43, 2004). The nucleic acid may be natural or synthetic, an oligonucleotide, a polynucleotide, a nucleic acid fragment, a ribosomal RNA, a messenger RNA, a transfer RNA, a nucleic acid obtained by an enzymatic amplification technique such that: PCR (Polymerase Chain Reaction), described in US-A-4,683,195, US-A-4,683,202 and US-A-4,800,159, and its derivative RT-PCR (Reverse Transcription PCR), in particular in a one-step format, as described in the patent EP-B-0.569.272, • LCR (Ligase Chain Reaction), exposed for example in the Patent Application EP-A-0.201.184, • RCR (Repair Chain Reaction), described in patent application WO-A-90/01069, 3SR (Self-Sustained Sequence Replication) with the patent application WO-A-A- 90/06995, NASBA (Nucleic Acid Sequence-Based Amplification) with the patent application WO-A-91/02818, and TMA (Transcription Mediated Amplification) with the patent US-A-5,399,491. • RCA (Rolling Circle Amplification (US-6,576,448) .Then we speak of amplicons to designate the nucleic acids generated by an enzymatic amplification technique.

Chacune de ces modifications peut être prise en combinaison. Each of these modifications can be taken in combination.

Les étapes d'amplification et de détection ci-dessus exposées peuvent être précédées par une étape de purification. Par étape de purification , on entend notamment la séparation entre les acides nucléiques des micro-organismes et les constituants cellulaires relargués dans l'étape de lyse qui précède la purification des acides nucléiques. Ces étapes de lyse sont bien 11 connues à titre d'exemple indicatif, on peut utiliser les méthodes de lyse telles que décrite dans les demandes de brevet : -WO-A-00/60049 sur la lyse par sonication, - WO-A-00/05338 sur la lyse mixte magnétique et mécanique, - WO-A-99/53304 sur la lyse électrique, et - WO-A-99/15621 sur la lyse mécanique. L'homme du métier pourra utiliser d'autres méthodes de lyse bien connues telles que les chocs thermiques ou osmotiques ou les traitements par des agents chaotropiques, tels que les sels de guanidium (brevet US-A-5,234,809). The amplification and detection steps described above may be preceded by a purification step. By purification step is meant in particular the separation between the nucleic acids of the microorganisms and the cellular constituents released in the lysis step which precedes the purification of the nucleic acids. These lysis steps are well known by way of indicative example, one can use the lysis methods as described in patent applications: -WO-A-00/60049 on lysis by sonication, - WO-A- 00/05338 on magnetic and mechanical mixed lysis, - WO-A-99/53304 on electrical lysis, and - WO-A-99/15621 on mechanical lysis. Those skilled in the art may use other well-known lysis methods such as thermal or osmotic shocks or treatments with chaotropic agents, such as guanidium salts (US-A-5,234,809).

Cette étape permet généralement de concentrer les acides nucléiques. A titre d'exemple, on peut utiliser des supports solides, tels que des particules magnétiques (voir à ce sujet les brevets US-A-4,672, 040 et US-A-5,750,338), et ainsi purifier les acides nucléiques, qui se sont fixés sur ces particules magnétiques, par une étape de lavage. Cette étape de purification des acides nucléiques est particulièrement intéressante si l'on souhaite amplifier ultérieurement lesdits acides nucléiques. Un mode de réalisation particulièrement intéressant de ces particules magnétiques est décrit dans les demandes de brevet WO-A-97/45202 et WOA-99/35500. Le terme "support solide" tel qu'utilisé ici inclut tous les matériaux sur lesquels peut être fixé un acide nucléique. Des matériaux de synthèse ou des matériaux naturels, éventuellement modifiés chimiquement, peuvent être utilisés comme support solide, notamment les polysaccharides, tels que les matériaux à base de cellulose, par exemple du papier, des dérivés de cellulose tels que l'acétate de cellulose et la nitrocellulose, ou le dextran ; des polymères, des copolymères, notamment à base de monomères du type styrène, des fibres naturelles telles que le coton, et des fibres synthétiques telles que le nylon ; des matériaux minéraux tels que la silice, le quartz, des verres, des céramiques ; des latex ; des particules magnétiques ; des dérivés métalliques, des gels, etc. Le support solide peut être sous la forme d'une plaque de microtitration, d'une membrane, d'une particule ou d'une plaque sensiblement plane de verre ou silicium ou dérivés. On peut réaliser l'ensemble du protocole (de l'échantillon prélevé aux amplicons prêts 30 à être hybridé) dans un seul et même tube, traité manuellement ou dans un automate. 12 Les exemples ci-joints représentent des modes particuliers de réalisation et ne peuvent pas être considérés comme limitant la portée de la présente invention. This step generally makes it possible to concentrate the nucleic acids. For example, solid supports such as magnetic particles (see US Pat. No. 4,672,040 and US Pat. No. 5,750,338) can be used to purify nucleic acids which have fixed on these magnetic particles, by a washing step. This nucleic acid purification step is particularly advantageous if it is desired to subsequently amplify said nucleic acids. A particularly interesting embodiment of these magnetic particles is described in patent applications WO-A-97/45202 and WOA-99/35500. The term "solid support" as used herein includes all materials to which a nucleic acid may be attached. Synthetic materials or natural materials, optionally chemically modified, can be used as solid support, in particular polysaccharides, such as cellulose-based materials, for example paper, cellulose derivatives such as cellulose acetate and nitrocellulose, or dextran; polymers, copolymers, especially based on styrene-type monomers, natural fibers such as cotton, and synthetic fibers such as nylon; mineral materials such as silica, quartz, glasses, ceramics; latexes; magnetic particles; metal derivatives, gels, etc. The solid support may be in the form of a microtiter plate, a membrane, a particle or a substantially planar plate of glass or silicon or derivatives. The entire protocol (from the sample taken with amplicons ready to be hybridized) can be carried out in a single tube, processed manually or in a PLC. The accompanying examples represent particular embodiments and can not be considered as limiting the scope of the present invention.

Exemple 1 : Expérience d'évaluation des amorces H5N1 sur un ARN H5N1 provenant 5 d'échantillon clinique d'Asie : Les séquences des paires d'oligonucléotides (N1_P1 et N2_P2, utilisées pour l'amplification et la détection de la séquence N1, et H5_13 1 et H5_P2, utilisées pour 10 l'amplification et la détection de la séquence H5) et des sondes de détection présentes sous forme de sondes moléculaires (sonde moléculaire N1 et sonde moléculaire H5) sont indiquées ci-dessous : N1 P2 5'-GGAATGCTCCTGTTATCCTGA-3' Ni P1 5'-AATTCTAATACGACTCACTATAGGGGCGTGGATTGTCTCCGAAA-3' Ni Sonde 5'-CGATCGGCGAAATCACATGTGTGTGCAGGGACGATCG-3' H5_P2 5'-GCCGAATGATGCCATCAA3' H5 P1 5'-AATTCTAATACGACTCACTATAGGGGTGTATGTTGTGGAATGGCA-3' H5 Sonde 5'-CGATCGACACCAAGTGTCAAACTCCAATCGATCG-3' 15 La séquence indiquée en gras correspond à la séquence promotrice T7, reconnue par l'ARN polymérase T7 et est retrouvée dans les oligonucléotides P1 pour la mise en oeuvre de la technique NASBA. Le traitement de l'échantillon se fait à l'aide du système miniMAG, comme décrit dans le protocole opératoire. Les kits utilisés sont : 20 - NucliSens Lysis Buffer, bioMérieux B. V. (Boxtel, Hollande), Lot No. 200295, et - NucliSens Magnetic Extraction Reagents, bioMérieux B. V., Lot No. #200297. Example 1: Evaluation experiment of H5N1 primers on H5N1 RNA from Asian clinical sample: The sequences of the oligonucleotide pairs (N1_P1 and N2_P2, used for the amplification and detection of the N1 sequence, and H5_13 1 and H5_P2, used for the amplification and detection of the sequence H5) and detection probes present in the form of molecular probes (molecular probe N1 and molecular probe H5) are indicated below: N1 P2 5'- GGAATGCTCCTGTTATCCTGA-3 '5'-Ni P1 AATTCTAATACGACTCACTATAGGGGCGTGGATTGTCTCCGAAA-3' 5'-Ni probe CGATCGGCGAAATCACATGTGTGTGCAGGGACGATCG-3 '5'-H5_P2 GCCGAATGATGCCATCAA3 H5 P1 5'-AATTCTAATACGACTCACTATAGGGGTGTATGTTGTGGAATGGCA-3' H5 probe 5'-CGATCGACACCAAGTGTCAAACTCCAATCGATCG-3 '15 The indicated sequence in bold corresponds to the T7 promoter sequence, recognized by the T7 RNA polymerase and is found in the P1 oligonucleotides for the implementation of the NASBA technique. The sample is processed using the miniMAG system, as described in the operating procedure. The kits used are: NucliSens Lysis Buffer, bioMérieux B.V. (Boxtel, Holland), Lot No. 200295, and NucliSens Magnetic Extraction Reagents, bioMérieux B.V., Lot No. 200297.

Protocole opératoire du test de détection: Selon les instructions du kit Nuclisens EasyQ Basic Kit (bioMérieux B.V., Boxtel, 25 Hollande, Lot No. #285006), deux mélanges réactionnels, l'un servant à l'amplification et à la détection de la séquence H5 ( mix H5 ) et le second à l'amplification et à la détection de la séquence N1 ( mix N1 ) ont été préparés. Brièvement, à 64 l de diluant ont été ajoutés 11 l d'eau, 13 l de KC1 à 1,2 M, 4 l de chaque oligonucléotide (H5_P1 et H5_P2 ou N1_P1 20 13 et N1 P2, solution mère à 10 M) et 0,8 gl de la sonde de détection appropriée (la sonde moléculaire H5 ou la sonde moléculaire Ni, solution mère à 2 M). Un volume de 10 gl de chaque mélange a ensuite été ajouté à 5 l de la cible ARN. Parallèlement, une solution d'enzymes a été préparée, et 5 l de cette solution ont été ajoutés au mélange réactionnel dans le tube,pour un volume final de 20 l. Les échantillons ont ensuite été placés dans les conditions de réaction préconisées par le kit Nuclisens EasyQ Basic Kit afin de permettre l'amplification et la détection des séquences d'intérêt par la technique isotherme NASBA (Kievits T. et al. J. Virol. Methods (1991) vol. 35(3) p.273-286). Operating protocol of the detection test: According to the instructions of the Nuclisens EasyQ Basic Kit kit (bioMérieux BV, Boxtel, Holland, Lot No. 285006), two reaction mixtures, one used for the amplification and detection of the H5 sequence (H5 mix) and the second to the amplification and detection of the N1 sequence (mix N1) were prepared. Briefly, to 64 l of diluent were added 11 l of water, 13 l of 1.2 M KCl, 4 l of each oligonucleotide (H5_P1 and H5_P2 or N1_P1 13 and N1 P2, 10 M stock solution) and 0.8 μg of the appropriate detection probe (the H5 molecular probe or the Ni molecular probe, 2 M stock solution). A volume of 10 μl of each mixture was then added to 5 μl of the RNA target. In parallel, an enzyme solution was prepared, and 5 l of this solution was added to the reaction mixture in the tube, for a final volume of 20 l. The samples were then placed under the reaction conditions recommended by the Nuclisens EasyQ Basic Kit in order to allow amplification and detection of sequences of interest by the NASBA isothermal technique (Kievits T. et al., J. Virol. (1991) vol 35 (3) p.273-286).

Afin de valider ce test de détection, les cibles ARN utilisées ont été les suivantes: H5N1: Influenza A sous-type H5N1 Vietnam 1194/2004, Influenza A: sous-type H3N2, ARN contrôle H5: sous-type H5N3, Influenza B. In order to validate this detection test, the RNA targets used were as follows: H5N1: Influenza A subtype H5N1 Vietnam 1194/2004, Influenza A: subtype H3N2, control RNA H5: subtype H5N3, Influenza B.

Les contrôles appropriés (positif et négatif) ont été inclus dans le test. Appropriate controls (positive and negative) were included in the test.

Après amplification et détection sur le système NucliSens EasyQ, les résultats suivants ont été obtenus : Virus Résultats H5 NASBA Résultats Ni NASBA Contrôle négatif Négative Négative Influenza A H3N2 Négative Négative Negative Négative Négative Flu A H5N1 Vietnam 1194/2004 Positive Positive Contrôle négatif Négative Négative Flu A H5N1 Vietnam 1194/2004 Positive Positive Flux A H5N3 Duck control virus Positive Négative Ces résultats montrent que les oligonucléotides et sondes de détection H5N1 sont spécifiques et détectent bien leurs cibles respectives H5 et N1. 25 14 Exemple 2 : Expérience d'évaluation des amorces et sondes de détection pour H5N1 dans un test multiplex : After amplification and detection on the NucliSens EasyQ system, the following results were obtained: Virus Results H5 NASBA Results Neither NASBA Negative Negative Negative Influenza A H3N2 Negative Negative Negative Negative Negative Flu A H5N1 Vietnam 1194/2004 Positive Positive Negative Negative Negative Negative Flu These results show that the oligonucleotides and H5N1 detection probes are specific and correctly detect their respective targets H5 and N1. Example 2: Evaluation experiment of primers and detection probes for H5N1 in a multiplex test:

Dans le cas du multiplex, la sonde moléculaire N1 utilisée est marquée au CY5, alors 5 que la sonde moléculaire H5 reste marquée au FAM. In the case of the multiplex, the N1 molecular probe used is labeled with CY5, while the H5 molecular probe remains labeled with FAM.

Selon les instructions du kit Nuclisens EasyQ Basic Kit (bioMérieux B.V., Boxtel, Hollande, Lot No. #285006 ), un mélange réactionnel permettant la détection simultanée du gène H5 et du gène N1 est préparé. Brièvement, à 64 l de diluant ont été ajoutés 11 gl d'eau, 10 13 l de KC1 à 1,2 M, 8 l d'une solution d'oligonucléotides et de sondes moléculaires (contenant les oligonucléotides Pl et P2 pour H5 à 10 M, les oligonucléotides Pl et P2 pour N1 à 10 M, la sonde moléculaire H5-FAM à 2 M et la sonde moléculaire N1-CY5 à 21.tM). Un volume de 10 l de chaque mélange a ensuite été ajouté à 5 l de la cible ARN. Parallèlement, une solution d'enzymes a été préparée, et 5 id de cette solution ont été ajoutés 15 au mélange réactionnel dans le tube, pour un volume final de 20 l. Les échantillons ont ensuite été placés dans les conditions de réaction préconisées par le kit Nuclisens EasyQ Basic Kit afin de permettre l'amplification et la détection des séquences d'intérêt par la technique isotherme NASBA (Kievits T. et al. J. Virol. Methods (1991) vol. 35(3) p. 273-286). 20 According to the instructions of the kit Nuclisens EasyQ Basic Kit (bioMérieux B.V., Boxtel, Holland, Lot No. 285006), a reaction mixture allowing the simultaneous detection of the gene H5 and the gene N1 is prepared. Briefly, to 64 μl of diluent was added 11 μl of water, 10 13 μl of 1.2 M KCl, 8 μl of a solution of oligonucleotides and molecular probes (containing oligonucleotides P1 and P2 for H5 to 10M, oligonucleotides P1 and P2 for N1 at 10M, the molecular probe H5-FAM at 2M and the molecular probe N1-CY5 at 21.tM). A volume of 10 l of each mixture was then added to 5 l of the RNA target. In parallel, an enzyme solution was prepared, and 5 μl of this solution was added to the reaction mixture in the tube, for a final volume of 20 l. The samples were then placed under the reaction conditions recommended by the Nuclisens EasyQ Basic Kit in order to allow amplification and detection of sequences of interest by the NASBA isothermal technique (Kievits T. et al., J. Virol. (1991) vol 35 (3) pp. 273-286). 20

Claims

1. Double pair of oligonucleotides intended to allow the amplification of two target sequences located respectively in the H5 gene and in the N1 gene of the influenza A virus genome, the oligonucleotide pair intended for the amplification of the H5 gene consisting of a first oligonucleotide of a length of between 10 and 50 nucleotides and comprising at least one fragment of 10 consecutive nucleotides derived from: SEQ ID No. 1: TGTATGTTGTGGAATGGCA, or its complementary sequence, and a second oligonucleotide of a length between 10 and 50 nucleotides and comprising at least one fragment of 10 consecutive nucleotides derived from: SEQ ID No. 2: GCCGAATGATGCCATCAA, or its complementary sequence, while the oligonucleotide pair intended for the amplification of the N1 gene consists of: a first oligonucleotide of a length of between 10 and 50 nucleotides and comprising at least one fragment of 10 consecutive nucleotides derived from: S EQ ID No. 3: CGTGGATTGTCTCCGAAA, or its complementary sequence, and a second oligonucleotide of a length of between 10 and 50 nucleotides and comprising at least one fragment of 10 consecutive nucleotides resulting from: SEQ ID No. 4: GGAATGCTCCTGTTATCCTGA, or its complementary sequence. 20

2. Pair of oligonucleotides for amplification of a target sequence located in the H5 gene of the genome of Influenza A virus, the oligonucleotide pair consisting of: a first oligonucleotide of a length of between 10 and 50 nucleotides and comprising at least one fragment of 10 consecutive nucleotides derived from: SEQ ID No. 1: TGTATGTTGTGGAATGGCA, or its complementary sequence, and a second oligonucleotide of a length of between 10 and 50 nucleotides and comprising at least one fragment of 10 nucleotides consecutive from: SEQ ID No. 2: GCCGAATGATGCCATCAA, or its complementary sequence. 30

3. Pair of oligonucleotides intended to allow the amplification of a target sequence 16 located in the N1 gene of the influenza A virus genome, the oligonucleotide pair consisting of: a first oligonucleotide with a length of between 10 and 50 nucleotides and comprising at least one fragment of 10 consecutive nucleotides derived from: SEQ ID No. 3: CGTGGATTGTCTCCGAAA, or its complementary sequence, and a second oligonucleotide having a length of between 10 and 50 nucleotides and comprising at least one fragment of 10 nucleotides consecutive from: SEQ ID No. 4: GGAATGCTCCTGTTATCCTGA, or its complementary sequence.

4. Pair (s) of oligonucleotides according to any one of claims 1 to 3, characterized in that the first oligonucleotide additionally comprises a promoter sequence which can be recognized by a DNA-dependent RNA polymerase enzyme.

5. Pair (s) of oligonucleotides according to claim 4, characterized in that the promoter sequence which can be recognized by a DNA dependent RNA polymerase enzyme is a T7 polymerase.

6. First oligonucleotide according to any one of claims 4 or 5, when this oligonucleotide allows the amplification of the target sequence located in the H5 gene, characterized in that it consists essentially of the following sequence: SEQ ID No. 5: AATTCTAATACGACTCACTATAGGGGTGTATGTTGTGGAATGGCA, or its complementary sequence.

7. First oligonucleotide according to any one of claims 4 to 6, when this oligonucleotide allows the amplification of the target sequence located in the N1 gene, characterized in that it consists essentially of the following sequence: SEQ ID No 6: AATTCTAATACGACTCACTATAGGGGCGTGGATTGTCTCCGAAA, or its complementary sequence.

8. Pair of oligonucleotides according to any one of claims 1 to 7, characterized in that each oligonucleotide is between 12 and 30 nucleotides in length and comprising at least one fragment of 16 consecutive nucleotides, and preferentially a length of between 15 and 26 nucleotides and comprising at least one fragment of 18 nucleotides.

9. Pair of oligonucleotides for use as a probe for the detection of two target sequences located respectively in the H5 and N1 genes of the genome of Influenza A virus, the probe intended for the detection of the H5 gene consisting of: SEQ ID No. 7 ACACCAAGTGTCAAACTCCAAT, or its complementary sequence, while the probe intended for the detection of the N1 gene consists of: SEQ ID No. 8: GCGAAATCACATGTGTGTGCAGGGA, or its complementary sequence, each sequence comprising at least one labeling means.

10. Oligonucleotide, for use as a probe for detecting an amplified nucleic acid sequence resulting from the amplification of a target sequence localized in the H5 gene of the genome of Influenza A virus, said amplification being carried out by the intermediate of a pair of oligonucleotides according to any one of claims 2, 4 to 8, the detection probe being of a length of between 10 and 50 nucleotides and comprising at least one fragment of 10 consecutive nucleotides derived from: SEQ ID No. 7: ACACCAAGTGTCAAACTCCAAT, or its complementary sequence, the sequence comprising at least one labeling means.

11. Oligonucleotide, for use as a probe for detecting an amplified nucleic acid sequence resulting from the amplification of a target sequence located in the N1 gene of the genome of Influenza A virus, said amplification being carried out by the intermediate of an oligonucleotide pair according to any one of claims 3 to 8, the detection probe being of a length of between 10 and 50 nucleotides and comprising at least one fragment of 10 consecutive nucleotides from: SEQ ID No. 8: GCGAAATCACATGTGTGTGCAGGGA, or its complementary sequence, the sequence comprising at least one labeling means. 30 18

12. Detection probe according to any one of claims 9 to 11, characterized in that it consists of a molecular probe.

13. Detection probe according to any one of claims 9 to 12, characterized in that it consists of a molecular probe, preferably consisting of: SEQ ID 9: [6-FAM] -cgatcgaCACCAAGTGTCAAACTCCAAtcgatcg- [DabSyl] , for the detection of the H5 gene, SEQ ID 10: [6-FAM] -cgatcgGCGAAATCACATGTGTGTGCAGGGAcgatcg- [DabSyl], for the detection of the N1 gene.

Use of one or two pairs of oligonucleotides according to any one of claims 1-8 in a nucleic acid amplification reaction or as a detection probe for the genome of influenza A virus suspected to be present. in a biological sample.

15. Influenza A virus nucleic acid detection method capable of being present in a sample, in which the sample is subjected to a nucleic acid amplification reaction using an oligonucleotide pair, according to US Pat. any one of claims 1 to 8, in the presence of the amplification reagents necessary for such amplification and the presence of amplicons of interest is detected.

16. Method according to claim 15, characterized in that the amplification reaction used is RT-PCR.

17. Method according to claim 15, characterized in that the amplification reaction used is a transcriptional amplification technique.

18. Method according to claim 17, characterized in that the amplification reaction used is the NASBA technique.

19. A method of amplifying two H5 and N1 genes of Influenza A virus capable of being present in a sample, comprising the steps of: incubating the sample in amplification buffer in the presence of: amplification primers, each having a length of between 10 and 50 nucleotides, one additionally comprising a promoter sequence, the other of opposite polarity to the primer associated with the promoter sequence, for hybridizing respectively upstream and downstream, downstream of an area of interest localized in the H5 gene of Influenza A virus, • two amplification primers, each having a length of between 10 and 50 nucleotides, one additionally comprising a promoter sequence, another of opposite polarity to the primer associated with the promoter sequence, to hybridize respectively upstream and downstream of an area of interest located in the N1 gene of Influenza A virus, - add the reagents in the sample: • an enzyme with an RNA-dependent DNA polymerase activity, • an enzyme with DNA-dependent DNA polymerase activity, • an enzyme with RNase H activity, • an enzyme with RNA polymerase-dependent DNA activity, and - maintaining the reaction mixture thus created under appropriate conditions and for a period of time sufficient for amplification to take place.

20. Kit for detecting H5 and N1 genes of Influenza A virus that may be present in a sample, containing: two pairs of oligonucleotides according to claims 1 to 8, two labeled or labeled oligonucleotides, according to any one of Claims 9 to 13, and having a nucleic acid sequence substantially complementary to at least a portion of the amplified nucleic acid sequence, reagents necessary for carrying out an amplification reaction.

21. Kit according to claim 20, in which the reagents necessary for carrying out an amplification reaction are reagents allowing NASBA amplification.