ES2643606T3 - Matriz de microagujas huecas - Google Patents
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Description
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DESCRIPCION
Matriz de microagujas huecas Campo
La presente invencion se refiere a dispositivos de administracion de medicamentos mediante microagujas huecas. Antecedentes
Los parches transdermicos se han utilizado desde hace tiempo para la administracion de medicamentos lipofilos de moleculas pequenas que se pueden absorber facilmente a traves de la piel. Esta ruta de administracion no invasiva es ventajosa para la administracion de muchos medicamentos incompatibles con la administracion oral, ya que permite una absorcion directa del medicamento en la circulacion sistemica, salvando los sistemas portales digestivo y hepatico que pueden reducir enormemente la biodisponibilidad de muchos medicamentos. La administracion transdermica salva tambien muchos de los desafios asociados con la inyeccion subcutanea reduciendo en gran medida la incomodidad del paciente, el miedo a las agujas, el riesgo de lesiones accidentales al administrador y problemas relacionados con el desecho de materiales punzantes.
A pesar de estas muchas ventajas, la administracion transdermica de medicamentos esta confinada a clases de moleculas compatibles con la absorcion a traves de la piel. La administracion de sales en forma de moleculas pequenas y proteinas terapeuticas no es viable de forma tipica con la administracion transdermica tradicional, ya que la piel proporciona una barrera protectora eficaz frente a dichas moleculas incluso en presencia de excipientes mejoradores de la absorcion.
Se han propuesto dispositivos de administracion de medicamentos en forma de microagujas (incluidas microcuchillas). Algunos son solidos, p. ej., con un medicamento recubierto en su superficie, y otros son huecos, p. ej., administrandose el medicamento desde un deposito. Algunos son de metal, mientras que otros estan hechos de material de silicio y otros de plasticos tales como el policarbonato.
El numero, tamano, forma, y disposicion de las microagujas tambien varia de forma considerable. Algunos tienen una aguja sencilla, mientras que otros, especialmente las microagujas solidas, tienen cientos de agujas por matriz. La mayoria tienen un tamano comprendido de 100 micrometros a 2 mm.
Las microagujas se han mostrado prometedoras para la administracion intradermica y transdermica de medicamentos, especialmente cuando se requiere una cantidad relativamente pequena de medicamento, como en el caso de vacunas o medicamentos potentes.
Una de las ventajas deseadas de las microagujas es por supuesto sustituir, si procede, las agujas hipodermicas convencionales, que pueden causar ansiedad y/o dolor a muchos pacientes. Tambien hay ventajas en la administracion de algunos medicamentos, p. ej., vacunas, en la piel, en lugar de administrarlos mediante inyeccion intramuscular. Sin embargo, los sistemas de suministro de microagujas se han considerado a menudo como sistemas que proporcionan unas velocidades de administracion bastante bajas, limitando por lo tanto la utilidad de dichos sistemas al requerir o bien el uso de pequenas cantidades de formulacion de medicamento o tiempos de suministro amplios. Por ejemplo, se ha descrito la infusion transdermica tipica utilizando microagujas con velocidades de infusion lentas de menos de 30 mm3/hora (30 mcl/hora), y volumenes de infusion bajos de menos de 200 mcl. Algunas descripciones han indicado tambien que se produce un dolor significativo si se intentan aplicar velocidades de infusion mas elevadas.
El documento WO 03/074102 describe un dispositivo y un metodo de transporte de fluidos a traves de barreras biologicas que mejora la penetracion de una barrera biologica mediante el uso de insercion direccional, preferiblemente con microagujas asimetricas y/o microagujas con bordes afilados. Tambien se describe un dispositivo y un metodo que combina la penetracion superficial de microagujas huecas con inyeccion de chorro mediante microagujas para lograr una profundidad de penetracion de liquido total superior a la profundidad de penetracion mecanica de las microagujas.
El documento WO 2008/053481 describe una matriz de microagujas que incluye una pluralidad de microagujas solidas o huecas que se disenan para la administracion de un agente en la piel para tratar irregularidades en el contorno de la piel o trastornos de la piel.
El documento US-2005/209565 describe matrices de microagujas que tienen unas distancias de separacion entre microagujas en el intervalo de 100-300 micrometros y, mas preferiblemente, en el intervalo de 100-200 micrometros.
Sumario
Se ha descubierto ahora que el numero de microagujas utilizado y su densidad por region unitaria puede producir velocidades de suministro mucho mayores sin apenas inducir dolor. Esto ofrece por primera vez la posibilidad de utilizar matrices de microagujas para remplazar las inyecciones hipodermicas para una administracion indolora y rapida de formulaciones de medicamentos inyectables.
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La matriz de microagujas de la invencion es una matriz (11) de microagujas hueca para la infusion intradermica, de alto volumen y rapida sin apenas dolor, comprendiendo la matriz (11) de microagujas huecas: una matriz de 10 a 30 microagujas huecas (14) que tienen una longitud de mas de 100 um a menos de 1 mm; estando la matriz de microagujas huecas (11) adaptada para bombear mas de 200 ul de fluido a traves de las microagujas huecas a una velocidad superior a 20 mm3/min (20 ul/min); y caracterizada por que las microagujas (14) estan separadas un promedio de al menos 2 mm entre si.
En una realizacion preferida, la matriz de microagujas huecas tiene de 13 a 20 microagujas (14).
En otra realizacion preferida las microagujas huecas (14) tienen un orificio de canal promedio con un area de seccion transversal de 20 a 50 um2.
En otra realizacion preferida las microagujas (14) tienen una longitud de entre 500 um y 750 um.
En otra realizacion preferida las microagujas (14) tienen un agujero de salida situado en una pared lateral de cada microaguja (14).
En configuraciones preferidas, las matrices de microagujas de la presente invencion pueden administrar hasta 1 ml, o mas, de formulacion liquida a la velocidad sorprendentemente alta de 500 mm3/min (500 ul/min). Por lo tanto, por ejemplo, a diferencia de otras matrices de microagujas descritas que solo administran 100 ul a una velocidad reducida de 10 mm3 por hora (10 ul por hora) (no por minuto), las matrices de microagujas de la presente invencion pueden administrar una inyeccion de 1 ml de forma intradermica en aproximadamente un minuto o menos.
Una matriz de microagujas segun la presente invencion tendra generalmente de 13 a 20 microagujas, con una densidad espacial de 30 a 50 microagujas por cm2. En un ejemplo se utilizan 18 microagujas.
Las microagujas generalmente tendran una longitud de entre 500 um y 750 um, y un orificio de canal promedio con un area de seccion transversal de 20 a 50 pm2.
La matriz de microagujas huecas de la invencion puede proporcionar una infusion en la que se bombean al menos 750 ul de fluido a traves de las microagujas. El fluido se puede bombear a traves de las microagujas huecas a una velocidad de al menos 400 mm3/min (400 ul/min). La contrapresion durante el bombeo es generalmente no superior a 172,37 Kilopascales (25 psi) y generalmente se mantiene a 137,90 Kilopascales (20 psi).
Las microagujas tienen un agujero de salida situado en una pared lateral de cada microaguja.
Las microagujas penetran de forma tipica de 100 um a 400 um en la dermis (por lo que la profundidad de penetracion no es la altura total de las propias microagujas).
Sin pretender imponer ninguna determinada teoria, muchas matrices de microagujas del estado de la tecnica utilizan al parecer una gran cantidad de agujas situadas muy proximas entre si, lo que puede limitar el volumen y la velocidad de fluido que se puede introducir en el tejido dermico. Tratando de inyectar fluido rapidamente con dichos dispositivos se puede bien crear contrapresion indebida, perdida del fluido por salida al exterior desde la piel durante la inyeccion, dislocacion de la matriz de agujas, abultamiento del tejido y/o un dolor significativo.
En la presente memoria, se entendera que determinados terminos tienen los significados indicados a continuacion: “Microaguja” se refiere a una estructura microscopica especifica asociada con la matriz que se disena para perforar la capa cornea para facilitar la administracion transdermica de agentes terapeuticos o el muestreo de fluidos a traves de la piel. A modo de ejemplo, las microagujas pueden incluir agujas o estructuras similares a agujas, incluidas microcuchillas, asi como otras estructuras capaces de perforar el estrato corneo.
Las caracteristicas y ventajas de la presente invencion se entenderan considerando la descripcion detallada de la realizacion preferida, asi como las reivindicaciones anexas. Estas y otras caracteristicas y ventajas de la invencion se pueden describir a continuacion con diversas realizaciones ilustrativas de la invencion. El resumen anterior de la presente invencion no pretende describir cada realizacion descrita ni cada implementacion de la presente invencion. Las Figuras y la descripcion detallada que se proporciona a continuacion ilustran de forma mas especifica realizaciones ilustrativas.
Breve descripcion de los dibujos
A continuacion, se describiran mas detalladamente realizaciones preferidas de la invencion con referencia a los dibujos anexos, en donde:
Las Figuras 1A y B son una vista en perspectiva de una realizacion de matriz de microagujas, que muestra tambien una vista mas proxima de una microaguja hueca individual.
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Las Figuras 2A y B muestran imageries de piel de cobaya sin pelo tras la retirada de un parche de microagujas huecas con tincion.
Las Figuras 3A y B muestran imagenes de un sitio de infusion con microagujas que muestra azul de metileno.
La Figura 4 muestra una grafica comparativa de niveles de naloxona en sangre frente al tiempo por via de administracion. La Figura 5 representa el dolor de infusion frente a determinadas categorias de infusion.
La Figura 6 representa la presion de infusion maxima frente a determinadas categorias de infusion.
La Figura 7 representa la velocidad de infusion maxima frente a determinadas categorias de infusion.
La Figura 8 representa el volumen de infusion maxima frente a determinadas categorias de infusion.
La Figura 9 representa el dolor de infusion frente a la presion de infusion maxima.
La Figura 10 representa el dolor de infusion frente a la velocidad de infusion maxima.
La Figura 11 representa el dolor de infusion frente al volumen de infusion.
Si bien las figuras identificadas anteriormente describen varias realizaciones de la presente invencion, se contemplan tambien otras realizaciones, como se indica en la descripcion. En todos los casos, esta exposicion presenta la invencion por via de la representacion y no de la limitacion. Debe comprenderse que los expertos en la tecnica pueden concebir muchas otras modificaciones y realizaciones que esten dentro del alcance de los principios de la presente invencion. Las figuras pueden no estar dibujadas a escala. Se han utilizado los mismos numeros de referencia a lo largo de las figuras para designar partes iguales.
Descripcion detallada
La invencion se describira ahora por referencia a la siguiente realizacion no limitativa.
Matriz de microagujas
Un dispositivo 10 de microagujas tiene una matriz 11 de microagujas que comprende un sustrato 12 desde el que se extiende una pluralidad de dieciocho microagujas 14. Cada microaguja 14 tiene una altura de aproximadamente 500 pm desde su base 16 hasta su punta 18. Un canal hueco (no mostrado) se extiende a traves del sustrato 12 y una microaguja 14, desembocando en una abertura 20 de canal cerca de la punta de la microaguja. Esto permite una comunicacion de fluidos desde la parte trasera de la matriz (p. ej., desde un deposito, no mostrado) a traves de cada microaguja 14. El canal discurre a lo largo de un eje central de la microaguja 14, pero sale de forma similar a una aguja hipodermica sobre una pared lateral inclinada de la microaguja para ayudar a prevenir bloqueos debidos al tejido tras la insercion. El canal tiene un area de seccion transversal promedio de aproximadamente 20-50 pm2.
Las microagujas 14 estan espaciadas de forma que la distancia d entre microagujas adyacentes 14 es de 2 mm. El sustrato 12 en forma de disco tiene un area de aproximadamente 1,27 cm2 y las microagujas 14 se extienden sobre un area de aproximadamente, 42 cm2 medida utilizando el perimetro de las filas de las microagujas 14 situadas mas hacia el exterior. Esto proporciona una densidad de microagujas de aproximadamente 14 microagujas/cm2.
La matriz 11 de microagujas se obtiene mediante moldeo por inyeccion en ciclos termicos de un polimero tal como policarbonato de grado medico, seguido de perforacion por laser para formar el canal de la microaguja.
Para unir al sustrato 12 de las microagujas un miembro de soporte (no mostrado) que incorpora un disco adhesivo (no mostrado) (3M 1513 Medical Tape, 3M Corp, St. Paul MN) que se extendera hacia el exterior desde el perimetro 24 del sustrato 12 para fijar la matriz 11 de microagujas huecas a la piel durante la infusion se utiliza una estructura 22 de reborde en forma de matriz. La superficie de contacto con la piel de todo el dispositivo 10 de microagujas que incluye un anillo adhesivo sera de aproximadamente 5,5 cm2.
El dispositivo 10 de microagujas se aplica de forma tipica a la piel utilizando un aplicador externo (no mostrado). El aplicador esta disenado, p. ej., utilizando un mecanismo de resorte, para lograr una velocidad deseada de forma que las microagujas penetraran en la piel en lugar de meramente deformar la piel. Una vez aplicado, el anillo adhesivo fija el dispositivo de microagujas contra la piel. Se describen diversos dispositivos aplicadores, por ejemplo, en WO2005/123173, WO2006/055802, WO2006/05579, WO2006/055771, WO2006/108185, WO2007/002521, y WO2007/002522.
El fluido que se desea administrar a traves de la matriz de microagujas puede estar contenido en un deposito (no mostrado) que contenga el fluido o que tenga el fluido bombeado desde una fuente externa, tal como una jeringa u otro recipiente que se puede conectar, p. ej., mediante tubos o utilizando un adaptador luer. El medicamento se
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puede disolver o suspender en la formulacion, y las formulaciones tipicas son aquellas del tipo que se puede inyectar desde una aguja hipodermica.
Se puede utilizar cualquier sustancia que se pueda formular y administrar mediante inyeccion hipodermica, incluidos agentes farmaceuticos, nutraceuticos, cosmaceuticos, de diagnostico y terapeuticos cualesquiera (denominados en conjunto “medicamento” por razones de comodidad). Ejemplos de medicamentos que pueden ser utiles en formulaciones inyectables con la presente invencion incluyen, aunque no de forma limitativa, ACTH (p. ej., inyeccion de corticotropina), hormona liberadora de hormona luteinizante (p. ej., hidrocloruro de gonadorelina), hormona liberadora de hormona del crecimiento (p. ej., acetato de sermorelina), colecistoquinina (sincalida), hormona paratiroidea y fragmentos de la misma (p. ej., acetato de teriparatida), agentes liberadores de hormona tiroidea y analogos de la misma (p. ej., protirelina), secretina y similares, Alfa-1 anti-tripsina, agentes anti-angiogenesis, sustancias para terapia antisentido, butorfanol, calcitonina y analogos, ceredasa, inhibidores de COX-II, agentes dermatologicos, dihidroergotamina, agonistas y antagonistas de la dopamina, encefalinas y otros peptidos opioides, factores de crecimiento epidermico, eritropoyetina y analogos, hormona estimulante del foliculo, G-CSF, glucagon, GM-CSF, granisetron, hormona del crecimiento y analogos (incluida hormona liberadora de hormona del crecimiento), antagonistas de la hormona del crecimiento, hirudin y analogos de hirudin tales como hirulog, supresores de IgE, insulina, insulinotropina y analogos, factores del crecimiento similares a la insulina, interferones, interleucinas, hormona luteinizante, hormona liberadora de hormona luteinizante y analogos, heparinas, heparinas de bajo peso molecular y otros glicosaminoglucuronanos naturales, modificados, o sinteticos, M-CSF, metoclopramida, midazolam, anticuerpos monoclonales, anticuerpos pegilados, proteinas pegiladas u otras proteinas cualesquiera modificadas con polimeros hidrofilos o hidrofobos u otros grupos funcionales adicionales, proteinas de fusion, fragmentos de anticuerpo de cadena sencilla o los mismos con una combinacion cualquiera de proteinas unidas, macromoleculas, o grupos funcionales adicionales de las mismas, analgesicos narcoticos, nicotina, agentes antiinflamatorios no esteroideos, oligosacaridos, ondansetron, hormona paratiroidea y analogos, antagonistas de hormona paratiroidea, antagonistas de prostaglandinas, prostaglandinas, receptores solubles recombinantes, escopolamina, agonistas y antagonistas de la serotonina, sildenafilo, terbutalina, agentes tromboliticos, activadores tisulares del plasminogeno, TNF y antagonistas de TNF, las vacunas, con o sin vehiculos/adyuvantes, incluidos agentes profilacticos y terapeuticos (incluidos, aunque no de forma limitativa, subunidad proteica, peptido y polisacarido, conjugados de polisacarido, toxoides, vacunas de base genetica, celulas enteras inactivadas, recombinadas, atenuadas vivas, vectores viricos y bacterianos) en relacion con, adiccion, artritis, colera, adiccion a la cocaina, difteria, tetanos, HIB, enfermedad de Lyme, meningococcus, sarampion, paperas, rubeola, varicela, fiebre amarilla, virus sincital respiratorio, encefalitis japonesa transmitida por garrapatas, pneumococcus, streptococcus, fiebre tifoidea, gripe, hepatitis, incluidas hepatitis A, B, C y E, otitis media, rabias, polio, VIH, virus parainfluenza, rotavirus, virus de Epstein-Barr, CMV, clamidia, haemophilus no tipable, moraxella catarrhalis, virus del papiloma humano, tuberculosis, incluida BCG, gonorrea, asma, aterosclerosis, malaria, E-coli, enfermedad de Alzheimer, H. Pylori, salmonella, diabetes, cancer, herpes simplex, papiloma humano y similares, otras sustancias incluidas todas las sustancias terapeuticas principales, tales como agentes para el resfriado comun, sustancias antiadiccion, antialergicas, antiemeticas, antiobesidad, antiosteoporeticas, antiinfectivas, analgesicas, anestesicas, anorexicas, antiartriticas, agentes antiasmaticos, anticonvulsivos, antidepresivos, agentes antidiabeticos, antihistaminicos, agentes antiinflamatorios, preparados contra la migrana, preparados contra el mareo por movimiento, sustancias contra las nauseas, agentes antineoplasicos, medicamentos contra el Parkinson, antipruriticos, antipsicoticos, antipireticos, anticolinergicos, antagonistas de las benzodiazepinas, vasodilatadores, incluidos agentes estimulantes del hueso, perifericos y cerebrales, coronarios y generales, estimulantes del sistema nervioso central, hormonas, hipnoticos, inmunosupresores, relajantes musculares, agentes parasimpatoliticos, agentes parasimpatomimeticos, prostaglandinas, proteinas, peptidos, polipeptidos y otras macromoleculas, psicoestimulantes, sedantes y agentes para la hipofuncion sexual y tranquilizantes.
Se entendera que se puede utilizar una amplia variedad de formas de microaguja hueca, tales como formas de cono, cilindrica, piramidal, truncada, asimetrica, y combinaciones de las mismas. Tambien se pueden utilizar diversos materiales, tales como polimeros, metales, y materiales basados en silicio, y se pueden fabricar por cualquier metodo, por ejemplo, por moldeo por inyeccion, estampacion, y utilizando fotolitografia. La disposicion de las microagujas sobre el sustrato puede ser con cualquier diseno, tal como al azar, poligonal, cuadrado, y circular (visto orientado hacia la superficie de la matriz que entra en contacto con la piel).
Ademas de la descripcion anterior, los siguientes documentos de patente describen dispositivos de microagujas, materiales, fabricacion, aplicadores, y usos que son utiles o adaptables para usar segun la presente invencion: US- 6.881.203; US-6.908.453; US-2005-0261631; WO2005/065765; WO2005/082596; WO2006/062974;
WO2006/135794; US-2006/048640; la solicitud provisional US-60/793611; US-2007/064789; WO2006/062848; WO2007/002523; y la solicitud provisional US-60/793564.
Experimental
El dispositivo de matriz de microagujas como se ha descrito anteriormente en relacion con la Figura 1A se utilizo para los siguientes experimentos y ejemplos.
Modelos animales y preparacion de la piel
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Cobayas sin pelo (HGP)
Se hizo un pedido de HGP macho de Charles River Laboratories (Wilmington, MA, EE. UU.) en conformidad con una aplicacion de uso de animales IACUC de 3M y se utilizaron segun ese protocolo. Todos los animales utilizados en este estudio pesaban 0,8-1 kg.
Cerdos domesticos
La prueba se llevo a cabo con cerdos domesticos hembra de aproximadamente 6-18 semanas de edad y que pesaban aproximadamente 10-30 kg, y se obtuvieron en conformidad con una aplicacion de uso de animales IACUC de 3M. Durante la infusion y durante la totalidad de los estudios, los cerdos se mantuvieron anestesiados con una mezcla de oxigeno con isoflurano (2-5 %). La porcion superior de la cadera de los cerdos se afeito utilizando primero una hoja cortadora para cirugia (hoja cortadora num. 50) y a continuacion con una cuchilla Schick 3 utilizando una pequena cantidad de crema de afeitar Espuma Gillette. Tras el afeitado, el sitio se aclaro con agua, y frotando suavemente se seco y a continuacion se aplico alcohol isopropilico (Phoenix Pharmaceutical, Inc., St. Joseph, MO, EE. UU.).
Determinacion de naloxona en suero
En cada momento, se recogieron 1,5-2 ml de sangre entera de la vena de la oreja de los cerdos utilizando un set de recogida Vacutainer (Becton Dickenson & Co., Franklin Lakes, NJ, EE. UU.). La sangre se dejo reposar a temperatura ambiente durante al menos 30 minutos antes de centrifugarla a 1.500 rpm durante 10 minutos. Tras la centrifugacion, se separo el suero de la sangre entera y se almaceno en frio hasta la extraccion.
Se prepararon muestras de suero a temperatura ambiente utilizando cartuchos de extraccion en fase solida (Phenomenex, Torrance, CA, EE. UU.). Los cartuchos se acondicionaron con metanol (EMD Chemicals, Inc, Gibbstown, NJ, EE. UU.) y se equilibraron con agua de grado reactivo antes de cargarlos con muestras de suero. El suero se lavo con 2 ml de metanol al 5 % en agua de grado reactivo y eluyo naloxona con metanol 100 %. El eluyente se recogio en un tubo de vidrio de 14 ml o un tubo de 16x100 mm y se seco a 103,42 kPa (15 psi) de nitrogeno en un bano de agua a 37 °C.
Los extractos se reconstituyeron con acetonitrilo 5 %/acido formico 95 % 0,1 % (Alfa Aesar, Ward Hill, MA, EE. UU.) en agua, se transfirieron a tubos de microcentrifuga (Eppendorf, Westbury, NY, EE. UU.) y se centrifugaron a 14.000 rpm durante 10 minutos.
Los extractos se analizaron cuantitativamente utilizando LCMSMS. La separacion se logro utilizando una columna Agilent Eclipse XDB-C18 (Agilent Technologies, Wilmington, DE, EE. UU.) en secuencia con una columna Phenomenex C18 Guard Column (Phenomenex, Torrence, CA, EE. UU.); la fase movil era de acido formico 0,1 % y acetonitrilo; El acido formico se llevo de 95 % a 10 % en 1 minuto. Se utilizo un espectrometro de masas de triple cuadrupolo Sciex API3000 (Applied Biosystems, Foster City, CA, EE. UU.) funcionando en modo de ion positivo utilizando la interfaz Turbo IonSpray para monitorizar cuantitativamente los iones de producto resultantes de las transiciones m/z siguientes: 328,17 ^ 310,10 y 342,16^ 324,30. El intervalo lineal para la naloxona fue de 0,1 a 100 mg/m3 (de 0,1 a 100 ng/ml) evaluados utilizando una ponderacion de curva de 1/x.
Se dosificaron diversos tamanos de cerdos, para normalizar los niveles de naloxona en la sangre con respecto al peso del cerdo, los niveles de naloxona en la sangre se multiplicaron por un factor de conversion de 62 ml de sangre/kg de peso de cerdo y a continuacion se multiplicaron por el peso del cerdo correspondiente a la dosificacion (kg). Los resultados finales se representan como pg de naloxona/cerdo.
Profundidad de penetracion en HGP y cerdos
Teniendo en cuenta la literatura tecnica y considerando el tamano de las microestructuras, se estimo que se requiere una fuerza de 0,004-0,16 N por microestructura para penetrar la capa cornea. S.P. David, B.J. Landis, Z.H. Adams, M.G. Allen, M.R. Prausnitz. Insertion of microneedles into skin: measurement and prediction of insertion force and needle fracture force. Journal of Biomechanics. 37:115-116 (2004). Para asegurar suficiente durabilidad de las microestructuras utilizadas en la presente memoria, se comprimio la matriz contra una superficie no elastica; la flexion de la punta se produjo cuando se aplicaron aproximadamente 245 N de fuerza a la matriz.
Con la excepcion de que no contiene glandulas sudoriparas, la piel porcina se considera generalmente similar a la piel humana en terminos de espesor, densidad del pelo y union al tejido subyacente. Si la profundidad de la epidermis del cerdo utilizada en estos estudios es aproximadamente similar a la de los humanos, los datos de profundidad de penetracion indican que la profundidad de infusion probable de los dispositivos de microagujas huecas utilizados en la presente memoria (ver Figura 1A) es de 180-280 pm (promedio 250 pm), una profundidad que podria corresponder a la dermis o la epidermis, lo que puede afectar a la magnitud de la contrapresion encontrada durante la infusion. Se entendera por lo tanto que, aunque el peso de la microaguja era de aproximadamente 500 pm, la profundidad real de penetracion era aproximadamente la mitad de ese valor.
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Los experimentos de profundidad de penetracion (PDP) se completaron tanto en HGP como en cerdos domesticos; los resultados se resumen en la Tabla I.
Tabla I. Resumen de datos de PDP recogidos para HGP y cerdos domesticos.
- PDPen HGP PDP en cerdos
- Numero de aplicaciones*
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- Promedio (pm)
- 210 pm 250 pm
- Desviacion estandar (pm)
- 30 pm 40 pm
- %RSD
- 15 % 16 %
* cada aplicacion consiste en 1 matriz con 18 microestructuras medidas
No se observo fracturacion de las microestructuras en el experimento de prueba de fuerza ni se observo ninguna aguja rota despues de la prueba de PDP.
Las Figuras 2A y 2B muestran un sitio de aplicacion sobre un HGP tras la retirada del parche. La Figura 2A muestra marcas hechas por tinte Rodamina B que se habia recubierto sobre las microagujas antes de la aplicacion. La Figura 2B muestra marcas hechas mediante tincion con azul de metileno despues de retirar una matriz de microagujas. La penetracion de la capa cornea por cada una de las 18 microestructuras resulta evidente a partir del diseno de puntos de azul de metileno en la Figura 2B. No se observo sangre durante o despues de la aplicacion.
En los cerdos, se realizaron diversas infusiones de hasta 1 ml utilizando una solucion esteril de dextrosa al 5 % o azul de metileno al 0,001 %. Una vez suministrada la formulacion, se mantuvo el dispositivo en su lugar durante un tiempo de hasta 10 minutos mientras la contrapresion sobre el sistema volvia a los niveles previos a la infusion. La Figura 2 muestra los resultados de una infusion intradermica de 800 pl de una formulacion de azul de metileno al 0,001 % a cerdos. La piel resulta seca al tacto tras la retirada del parche; el azul profundo de la formulacion inyectada proporciona una valoracion visual del tratamiento.
Las Figuras 3A y 3B muestran imagenes de infusion intradermica de una formulacion de azul de metileno al 0,05 % en cerdos a T= 0 y T= 9 min, respectivamente, despues de la retirada del parche. La piel resultaba seca al tacto.
Cada punto azul sobre la piel corresponde a una de las dieciocho microestructuras huecas sobre la matriz. Aunque el tinte parece algo emborronado (difuso) al cabo de nueve minutos, la mancha azul permanecia esencialmente inalterada 24 horas despues, aunque la roncha desaparecio en menos de una hora. Es probable que el tinte realmente manchara o precipitara en el tejido y, en este sentido, probablemente no es un indicador eficaz de disenos de infusion intradermica extendidos despues de la infusion.
Despues de la retirada del parche de microagujas hueco tras la infusion, se observa de forma tipica una pequena cantidad (1-3 pl) de formulacion sobre la superficie de la piel. Cuando se retira este fluido frotando suavemente con un tejido, no se observa fluido adicional. De forma tipica se ve una mancha rosacea, del tamano de la matriz de microagujas huecas, tras la retirada del parche, pero la mancha desaparece volviendose practicamente indistinguible en el transcurso de 5 minutos. Se observo tambien un pequeno abultamiento, de nuevo de aproximadamente el tamano de la matriz de microagujas huecas sobre la piel de los cerdos. El abultamiento cedia, pero no “supuraba”, al aplicar una suave presion. El abultamiento desaparecio, tanto en sentido visual como tactil, en el transcurso de 40 minutos desde la retirada del parche aplicado. Las observaciones del sitio de aplicacion 24 y 48 horas despues de la aplicacion no mostraron senales de eritema o edema.
Ejemplo 1. Infusion de dextrosa de alto volumen en cerdos
Se han demostrado infusiones de alto volumen en cerdos domesticos. Conectado con el parche de matriz de microagujas huecas tras la aplicacion, el sistema de infusion utilizado con los cerdos emplea instrumentacion medica estandar para suministrar la formulacion. El parche de aplicacion de microagujas huecas se acopla a una bomba de jeringa Medfusion 3500 (Smiths Medical, St. Paul, MN, EE. UU.) mediante un set de extension Polyethylene IV previamente esterilizado comercial (Vygon Corporation, Ecouen, Francia) que incluye un transductor para medir presiones DTX Plus TNF-R (BD Infusion Therapy Systems, Inc, Sandy, UT, EE. UU.). La bomba Medfusion 3500 es de uso hospitalario habitual y tiene caracteristicas de parada segura ajustables previamente. Las lecturas de presion se registraron a una velocidad de aproximadamente una medicion cada dos segundos. Se utilizo una solucion dextrosa USP al 5 % para inyeccion (Baxter Healthcare, Deerfield, IL, EE. UU.) para utilizarla en infusion tal cual se recibio. Se preparo la solucion de azul de metileno al 0,001 % utilizando agua esteril y se filtro antes de administrarla.
La prueba se llevo a cabo con cerdos domesticos hembra de aproximadamente 6-18 semanas de edad y que pesaban aproximadamente 10-30 kg, y se obtuvieron en conformidad con una aplicacion de uso de animales IACUC de 3M. Durante la infusion y durante la totalidad de los estudios, los cerdos se mantuvieron anestesiados con isoflurano (2-5 %)
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40
y una mezcla de oxfgeno. La porcion superior de la cadera de los cerdos se afeito utilizando primero una hoja cortadora para cirugia (hoja cortadora num. 50) y a continuacion con una cuchilla Schick 3 utilizando una pequena cantidad de crema de afeitar Espuma Gillette. Tras el afeitado, el sitio se aclaro con agua y frotando suavemente se seco y a continuacion se aplico alcohol isopropilico (Phoenix Pharmaceutical, Inc., St. Joseph, MO, EE. UU.).
Se suministro hasta 1 ml de dextrosa al 5 % en agua o hasta 425 mcl de naloxona a la parte de la cadera superior de los cerdos. Se observo continuamente la contrapresion durante la infusion para verificar la ausencia de fugas en el sistema de infusion. A continuacion, en la Tabla II, se proporcionan perfiles de velocidad de infusion tipicos utilizados en los cerdos.
Tabla II. Resumen de las condiciones de infusion para 2 infusiones aparte de 1 ml de dextrosa en cerdos
- Infusion
- Velocidad maxima (mm3/min [pl/minl) Programa de velocidad de infusion en mm3/min (pl/min) (tiempo)
- 1.003 pl dextrosa
- 50 (50) 10 (10) (5 min), 20 (20) (7,5 min), 30 (30) (10 min), 40 (40) (7,5 min), 50 (50) (4 min)
- 1.003 pl dextrosa
- 75 (75) 10 (10) (1 min), 25 (25) (2 min), 50 (50) (4 min), 75 (75) (aprox. 10 min)
- 425 pl naloxona
- 100 (100) 10 (10) (1 min), 25 (25) (1 min), 50 (50) (1 min), 100 (100) (duracion)
- 330 pl naloxona
- 75 (75) 10 (10) (1 min), 25 (25) (2 min), 50 (50) (5 min), 75 (75) (duracion)
Despues de la infusion, se retiro la matriz de microagujas huecas, dejando una pequena ampolla bajo la piel. Esta ampolla desaparecio por completo en el transcurso de 40 minutos. No se observo reaccion del sitio en los cerdos durante observaciones realizadas durante 48 horas despues de la retirada del parche.
Se observo la contrapresion y se registro continuamente durante las infusiones de dextrosa y azul de metileno. En la Tabla III se proporciona la contrapresion maxima medida, junto con las condiciones de infusion.
Tabla III Resumen de las condiciones de infusion para 2 infusiones aparte de 1 ml de dextrosa en cerdos
- Infusion
- Velocidad maxima (mm3/min [pl/minl) Contrapresion max. kPa (psi) Programa de velocidad de infusion en mm3/min (pl/min) (tiempo)
- 1.003 pl dextrosa
- 50 (50) 62,74 (9,1) 10 (10) (5 min), 20 (20) (7,5 min), 30 (30) (10 min), 40 (40) (7,5 min), 50 (50) (4 min)
- 1003 pl dextrosa
- 75 (75) 30,33 (4,4) 10 (10) (1 min), 25 (25) (2 min), 50 (50) (4 min), 75 (75) (aprox. 10 min)
- 750 pl azul de metileno
- 100 (100) 111,69 (16,2) 10 (10) (1 min), 25 (25) (1 min), 50 (50) (1 min), 100 (100) (duracion)
Ejemplo 2. Infusion de naloxona con perfil PK (farmacocinetico) resultante
En un esfuerzo para cuantificar mejor la infusion, se realizo una infusion de una formulacion comercial a una concentracion de 1 kg/m3 (1 mg/ml) de naloxona en los cerdos utilizando el dispositivo POC de microagujas huecas. La naloxona es un antagonista competitivo de receptores p opioides utilizado principalmente para contrarrestar la sobredosis de drogas tales como la heroina. Administrada de forma tipica por via intravenosa para obtener una respuesta rapida, la naloxona tiene una biodisponibilidad de solamente aproximadamente el 2 % cuando se administra por via oral. La naloxona se absorbe bien, pero se retira en practicamente un 90 % durante la primera pasada. Estudios bibliograficos indican que la semivida de la naloxona en adultos humanos es de 30-81 minutos y es considerablemente mas larga (aprox. 3 horas) en los ninos. La naloxona es excretada en la orina en forma de metabolitos.
Se recogieron muestras de sangre de la vena de la oreja de los cerdos antes de realizar la infusion y en momentos especificos de hasta 2 horas despues de la infusion. Las muestras se prepararon y se analizaron para determinar el nivel de naloxona en los sueros. Con fines comparativos, se dosifico a cerdos sin tratamiento previo la misma formulacion de naloxona comercial utilizando inyeccion subcutanea o intravenosa. Del mismo modo que con la infusion intradermica, se recogieron muestras de sangre y se analizaron para determinar los niveles de naloxona.
Se utilizaron tres animales diferentes para el estudio de comparacion de los perfiles PK generados tras la infusion con microagujas huecas, inyeccion subcutanea e inyeccion intravenosa. Los cerdos pesaban entre 10-22 kg en el momento de la dosificacion y sus edades estaban comprendidas entre 1,5-3 meses. Para la infusion se utilizo una formulacion comercial de hidrocloruro de naloxona (1 kg/m3 [1 mg/ml]) (International Medication Systems, Ltd, So.
5
10
15
20
25
30
35
40
El Monte, CA, EE. UU.). La Tabla IV muestra los perfiles de infusion utilizados con las administraciones de naloxona realizadas con el dispositivo de microagujas huecas.
Tabla IV. Resumen de condiciones de infusion para la infusion de naloxona
- Volumen total
- Velocidad max. Perfil de velocidad de infusion en mm3/min (pl/min) (tiempo)
- 425 pl
- 30 mm3/min (30 [pl/min]) 10 (10) (5 min), 20 (20) (7,5 min), 30 (30) (duracion)
- 200 pl
- 75 mm3/min (75 [pl/min]) 25 (25) (1 min), 50 (50) (2 min), 75 (75) (duracion)
- 330 pl
- 75 mm3/min (75 [pl/min]) 10 (10) (1 min), 25 (25) (2 min), 50 (50) (5 min), 75 (75) (duracion)
La Figura 4 muestra una grafica comparativa de niveles de naloxona en sangre frente al tiempo por via de administracion. Se administro tambien naloxona mediante inyeccion subcutanea a los cerdos, cuyo peso y edad eran similares a las de los cerdos a los que se habia administrado naloxona mediante el dispositivo de microagujas hueco. Estos resultados indican una administracion comparable de naloxona mediante las microagujas huecas y la inyeccion subcutanea. A partir de las muestras de sangre recogidas hasta 2 horas despues de iniciar la infusion, se estima que la biodisponibilidad de la naloxona administrada por la tecnologia de microagujas huecas era 107+/-35 % de la resultante de la administracion subcutanea.
Ejemplo 3. Estudio de infusion humana con dextrosa
Utilizando el mismo aparato descrito anteriormente en la misma memoria, se realizo una demostracion de la infusion de alta velocidad y alto volumen en humanos. Durante un experimento clinico en humanos, se administro a 28 individuos 4-6 infusiones de placebo con microagujas huecas secuenciales en la parte superior del brazo y/o de la pierna. Se observo la contrapresion de forma continua durante la infusion. Utilizando una escala de dolor de 10 puntos (ver Figura 4), se pidio a cada individuo que puntuase el dolor asociado con la aplicacion y retirada del parche de microagujas huecas y que evaluase el dolor asociado con la infusion cada 10 minutos durante la infusion, o al final de la infusion si la infusion terminaba en menos de 10 minutos.
Las Figuras 5, 9, 10 y 11 representan datos correspondientes al dolor a partir de la siguiente escala de dolor.
- Sin dolor 1 1
- Molesto I I Incomodo I I I Actividad I I Insoportable I I
- 0 1
- 2 3 4 5 6 7 8 9 10
- Sin dolor
- Dolor Dolor Dolor Peor dolor
- leve
- moderado intenso imaginable
De las 125 infusiones iniciadas, se administraron 46 infusiones de un volumen igual o superior a 750 pl. Durante el estudio se utilizaron diferentes perfiles de velocidad de infusion, comprendiendo velocidades de infusion de 10-433 mm3/min (10433 pl/min). No habia ninguna diferencia estadisticamente significativa entre el dolor percibido por los individuos y el volumen de la infusion. La Tabla V resume, por categorias, los valores mas altos de velocidad de infusion, volumen de infusion y molestias durante la infusion para los pacientes que recibieron infusiones de alto volumen (categoria 3, >750 pl).
Tabla V. Resumen de parametros de infusion por categoria
- Num. de infusiones Dolor promedio Contrapresion promedio kPa (psi) Vol. promedio P1 Max. velocidad mm3/min (pl/min)
- Categoria 1 (0-250 pl)
- 52 1,40+/-0,77 60,67+-35,85 (8,8+/-5,2) 133+/-60 76+/-79 (76+/-79)
- Categoria 2 (250-750 pl)
- 27 1,96+/-1,66 93,07+-34,47 (13,5+/-5,0) 427+/-148 90+/-73 (90+/-73)
- Categoria 3 (750-1000 pl)
- 46 1,83+/-1,12 92,18+-28,95 (13,37+/-4,20) 970+/-65 126+/-93(126+/-93)
Las Figuras 5-8 proporcionan un resumen de la distribucion de parametros de infusion agrupados por categorias. La Figura 5 representa el dolor de infusion segun la categoria. La Figura 6 representa la presion de infusion maxima segun la categoria. La Figura 7 representa la velocidad de infusion maxima segun la categoria. La Figura 8 representa el volumen de infusion segun la categoria.
La Tabla VI proporciona un resumen de parametros de infusion para todas las infusiones de la categoria 3.
Tabla VI. Resumen de parametros de infusion y puntuaciones de dolor para sujetos que recibieron infusiones de alto volumen
- Id. indiv.
- Sitio Velocidad final (mm3/min [pl/min]) Velocidad inicial (mm3/min [mcl/min]) Velocidad max. (mm3/min [pl/min]) Vol. (pl) Presion max. kPa (psi) Tiempo total de infusion (min) Dolor de infusion
- 7
- LLT 30 (30) 10 (10) 30 (30) 800 66,18 (9,6) 2
- 7
- LUT 35 (35) 10 (10) 35 (35) 1000 57,22 (8,3) 1
- 7 10
- RUT LUT 46,7 (46,7) 25 (25) 10 (10) 46,7 (46,7) 25 (25) 908 767 50,33 (7,3) 38,61 (5,6) 1 4
- 10 10
- LLT RUT 58.3 (58,3) 58.3 (58,3) 10 (10) 58.3 (58,3) 58.3 (58,3) 1001 1001 81,35 (11,8) 40,67 (5,9) 4 4
- 11
- RLT 30 (30) 10 (10) 30 (30) 804 116,52 (16,9) 3
- 11
- LUT 46,7 (46,7) 10 (10) 46,7 (46,7) 1000 88,94 (12,9) 2
- 12
- LUT 46,7 (46,7) 10 (10) 46,7 (46,7) 1001 53,77 (7,8) 4
- 12
- LLT 58,3 (58,3) 10 (10) 58,3 (58,3) 1001 59,29 (8,6) 4
- 12
- RLT 80 (80) 10 (10) 80 (80) 1001 90,32 (13,1) 5
- 13
- LLT 66,7 (66,7) 166,7 (166,7) 166,7 (166,7) 1000 91,70 (13,3) 3
- 13
- RUT 95 (95) 25 (25) 95 (95) 1000 63,43 (9,2) 3
- 13
- LUT 58,3 (58,3) 16,6 (16,6) 58,3 (58,3) 1000 58,60 (8,5) 3
- 14
- RA 58,3 (58,3) 16,6 (16,6) 58,3 (58,3) 858 96,52 (14,0) 1
- 15
- LLT 83,3 (83,3) 83,3 (83,3) 83,3 (83,3) 1000 96,52 (14,0) 2
- 15
- RLT 243,3 (243,3) 83,3 (83,3) 243,3 (243,3) 1000 68,94 (10,0) 2
- 16
- LUT 100 (100) 83,3 (83,3) 100 (100) 1002 95,14 (13,8) 2
- 16
- LLT 58,3 (58,3) 83,3 (83,3) 83,3 (83,3) 1001 105,48 (15,3) 1
- 17
- RA 50 (50) 83,3 (83,3) 83,3 (83,3) 1000 79,97 (11,6) 1
- 17
- LT 58,3 (58,3) 83,3 (83,3) 83,3 (83,3) 1000 97,21 (14,1) 2
- 17
- RT 58,3 (58,3) 83,3 (83,3) 83,3 (83,3) 1000 114,45 (16,6) 3
- 18
- LUT 83,3 (83,3) 83,3 (83,3) 83,3 (83,3) 1001 76,53 (11,1) 2
- 18
- RUT 100 (100) 83,3 (83,3) 100 (100) 1001 83,42 (12,1) 2
- 19
- LLT 83,3 (83,3) 83,3 (83,3) 83,3 (83,3) 1000 82,73 (12,0) 2
- 19
- LUT 100 (100) 83,3 (83,3) 100 (100) 823 98,59 (14,3) 1
- 19
- RUT 100 (100) 83,3 (83,3) 100 (100) 1000 29,64 (4,3) 1
- 20
- LA 66,7 (66,7) 83,3 (83,3) 83,3 (83,3) 1001 100,66 (14,6) 1
- 20
- RA 50 (50) 83,3 (83,3) 83,3 (83,3) 1001 100,66 1
- 21 23 22
- LUT LLT LLT 100 (100) 200 (200) 166,7 (166,7) 100 (100) 100 (100) 100 (100) 100 (100) 200 (200) 166,7 (166,7) 1000 840 1000 (14.6) 104,80 (15,2) 113,07 (16,4) 121,34 (17.6) 0:10:11 0:05:30 0:08:30 2 2 1
- 22
- LMT 183,3 (183,3) 116,7 (116,7) 183,3 (183,3) 1001 133,06 (19,3) 0:07:12 1
- 24
- LUT 266,7 (266,7) 66,7 (66,7) 266,7 (266,7) 1000 107,55 (15,6) 0:06:30 1
- 26
- LMT 250 (250) 100 (100) 250 (250) 880 105,48 (15,3) 0:06:00 1
- 26
- LLT2 116,7 (116,7) 116,7 (116,7) 116,7 (116,7) 1002 102,04 (14,8) 0:10:50 1
- 26
- RLT 100 (100) 133,3 (133,3) 133,3 (133,3) 1001 111,69 (16,2) 0:12:10 1
- 28
- RUT 200 (200) 200 (200) 200 (200) 1000 119,27 (17,3) 0:07:06 1
- 28
- LUT 150 (150) 400 (400) 400 (400) 913 114,45 (16,6) 0:07:58 1
- 28
- LLT 100 (100) 433,3 (433,3) 433,3 (433,3) 1000 71,70 (10,4) 0:11:14 1
- 25
- RMT 150 (150) 100 (100) 150 (150) 970 151,68 (22,0) 0:09:00 1
- 25
- RUT 180 (180) 117 (117) 180 (180) 1000 137,89 (20,0) 0:08:48 1
- 27
- LUT 117 (117) 150 (150) 150 (150) 1000 127,55 (18,5) 0:11:00 1
- 27
- RUT 183 (183) 167 (167) 183 (183) 1000 106,17 (15,4) 0:07:00 1
- 27
- RLT 200 (200) 200 (200) 200 (200) 1000 157,20 (22,8) 0:07:38 1
- 27
- LMT 117 (117) 333 (333) 333 (333) 1000 117,21 (17,0) 0:10:17 1
Leyenda del sitio: 1-I/D=izquierda/derecha; 2-B/S/M=bajo/superior/medio; 3-M/B=muslo/brazo
Las Figuras 9-11 representan las relaciones entre el dolor de infusion y diversos parametros de infusion solamente para las infusiones de la Categoria 3 (750-1,000 pl). La Figura 9 representa el dolor de infusion frente 5 a la presion de infusion maxima. La Figura 10 representa el dolor de infusion frente a la velocidad de infusion maxima. La Figura 11 representa el dolor de infusion frente al volumen de infusion.
Se entendera que diversas modificaciones y alteraciones no previstas de la presente invencion resultaran obvias para los expertos en la tecnica sin abandonar el ambito de la presente invencion. Se debera entender que no esta previsto 10 limitar de forma indebida la presente invencion a las realizaciones y ejemplos ilustrativos indicados en la presente memoria y que dichos ejemplos y realizaciones se presentan solamente a modo de ejemplo, por lo que se pretende que el alcance de la invencion quede solamente limitado por el conjunto de reivindicaciones definidas de la siguiente forma.
Claims (5)
- 10
- 2.15
- 3.
- 4.20
- 5.REIVINDICACIONESUna matriz (11) de microagujas huecas para la infusion intradermica de alto volumen y rapida con un dolor mmimo, comprendiendo la matriz (11) de microagujas huecas:una matriz de 10 a 30 microagujas huecas (14) que tienen una longitud de mas de 100 um a menos de 1 mm;estando la matriz (11) de microagujas huecas adaptada para bombear mas de 200 ul de fluido a traves de las microagujas huecas a una velocidad superior a 20 ul/min;y caracterizada por que las microagujas (14) estan separadas un promedio de al menos 2 mm entre sf.La matriz (11) de microagujas huecas de la reivindicacion 1, en donde la matriz tiene de 13 a 20 microagujas (14).La matriz (11) de microagujas huecas de las reivindicaciones 1 o 2, en donde las microagujas huecas (14) tienen un orificio de canal promedio con un area de seccion transversal de 20 a 50 um2.La matriz (11) de microagujas huecas de la reivindicacion 1, en donde las microagujas (14) tienen una longitud de entre 500 um y 750 um.La matriz (11) de microagujas huecas de la reivindicacion 1, en donde las microagujas (14) tienen un orificio de salida situado en una pared lateral de cada microaguja (14).
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